FR2955333A1 - Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux; - Google Patents

Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux; Download PDF

Info

Publication number
FR2955333A1
FR2955333A1 FR1000152A FR1000152A FR2955333A1 FR 2955333 A1 FR2955333 A1 FR 2955333A1 FR 1000152 A FR1000152 A FR 1000152A FR 1000152 A FR1000152 A FR 1000152A FR 2955333 A1 FR2955333 A1 FR 2955333A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
collagen
matrix
porous
glycosaminoglycans
cartilage
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR1000152A
Other languages
English (en)
Other versions
FR2955333B1 (fr
Inventor
Dominique Vacher
Florence Heraud
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Ibsa Pharma Sas Fr
Original Assignee
Laboratoires Genevrier SAS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Laboratoires Genevrier SAS filed Critical Laboratoires Genevrier SAS
Priority to FR1000152A priority Critical patent/FR2955333B1/fr
Priority to FR1150365A priority patent/FR2955334B1/fr
Publication of FR2955333A1 publication Critical patent/FR2955333A1/fr
Application granted granted Critical
Publication of FR2955333B1 publication Critical patent/FR2955333B1/fr
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068General culture methods using substrates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0652Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0655Chondrocytes; Cartilage
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50Proteins
    • C12N2533/54Collagen; Gelatin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/70Polysaccharides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

L'invention concerne l'utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse, principalement composée de collagène de type II et de glycosaminoglycanes, comme support à la culture cellulaire in vitro de chondrocytes destinée à être implantée pour réparer les défauts localisés du cartilage et douée d'une stabilité mécanique et dimensionnelle en culture. Elle est composée de collagène de type II et de glycosaminoglycanes. Elle est réticulée chimiquement. Le procédé de préparation de la matrice comprend une étape de mélange du collagène II et du glycosaminoglycanes, une étape de lyophilisation, une étape de réticulation chimique et une étape de stérilisation ; la réticulation chimique de la composition de collagène II et de glycosaminoglycanes est effectuée à l'aide de N-hydroxysuccinimide (NHS) et d'éthyl-3(3-diméthylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Cette matrice sert à la culture de chondrocytes autologues et plus particulièrement à la conservation des chondrocytes dans les pores de la matrice grâce à la taille et à la stabilité de son maillage.

Description

1 La présente invention se rapporte au domaine de la régénération tissulaire et plus particulièrement de l'implantation de matrice de collagène. Elle a plus précisément pour objet l'utilisation d'une matrice composée de collagène de type II et de glycosaminoglycanes qui servent de support à la culture de cellules avant d'être implantée pour la régénération d'un tissu cartilagineux. L'association de collagène de type II et de glycosaminoglycanes pour la constitution de matrices a déjà été décrite notamment dans les brevets WO99/19005 et EP-1254670. Le brevet WO99/19005 décrit un procédé de préparation d'une membrane 1 o multicouche pouvant être utilisée « in vivo » pour la reconstruction d'un tissu osseux ou cartilagineux. L'une des couches de cette membrane est constituée d'un mélange de collagène de type II et de glycosaminoglycanes qui sera lyophilisé, réticulé et stérilisé pour former une matrice poreuse. Cette couche matriciéllée comprend de 1 à 10% en masse de glycosaminoglycanes et donc 90 à 99% de collagène de type II. La 15 réticulation des matrices est ici réalisée par la chaleur. Le brevet EP-1254670 concerne une méthode de préparation de matrices poreuses réticulées, constituées de collagène II modifié, et destinées à être utilisées dans l'ingénierie ou la régénération du cartilage. Ces matrices sont préparées à partir de collagène II modifié avec ou sans glycosaminoglycanes selon des proportions 20 connues et sont réticulées chimiquement par un bain de N-hydroxysuccinimide (NHS) et d'éthyl-3 (3-diméthylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Ces deux brevets décrivent donc des procédés de préparation de matrices à partir de collagène de type II et de glycosaminoglycanes. Toutefois, l'utilisation de proportions particulières de ces composés associées aux étapes du procédé de 25 préparation selon l'invention, notamment au niveau de la réticulation chimique, n'avait encore jamais été décrite. On sait que les matrices de collagène connues ne conservent pas leurs caractéristiques physiques lors de la culture et de l'implantation, ce qui diminue grandement l'efficacité des implants auxquels elles servent de base. 30 La présente invention a pour but de procurer une utilisation des matrices de collagène ayant la capacité de conserver leur stabilité mécanique et dimensionnelle en culture, en augmentant ainsi leur aptitude à la manipulation lors de l'utilisation. Leur efficacité dans le domaine de la régénération tissulaire s'en trouve sensiblement accrue. La présente invention a pour objet l'utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse, principalement composée de collagène de type II et de glycosaminoglycanes, destinée à servir de support à la culture cellulaire « in vitro » de chondrocytes avant d'être implantée pour réparer les défauts localisés du cartilage. Elle est douée d'une stabilité mécanique et dimensionnelle en culture. Elle est caractérisée en ce qu'elle est composée avantageusement de 80 à 90% de collagène de 1 o type II et de 10 à 20% de glycosaminoglycanes puis réticulée chimiquement. Selon un mode d'exécution particulier, les glycosaminoglycanes sont choisis parmi l'acide chondroitine sulfurique, l'acide hyaluronique, le dermatan sulfate et le Keratan sulfate. Selon une caractéristique de l'invention, le matériau de collagène de type II est 15 dérivé de cartilage naturel provenant de tissus bovins, porcins ou aviaires. Selon une autre caractéristique, le cartilage naturel est dérivé du cartilage articulaire porcin. Selon une caractéristique la matrice présente une porosité comprise entre 50 et 150 µm. 20 Selon une autre caractéristique la matrice présente, après découpe dans son épaisseur et conservation de la tranche centrale, une porosité ouverte sur les deux faces. Selon une caractéristique le procédé de préparation de la matrice comprend une étape de mélange du collagène de type II et des glycosaminoglycanes, une étape de 25 lyophilisation, une étape de réticulation chimique et une étape de stérilisation. Selon une caractéristique de l'invention, la réticulation chimique de la composition formée de 80 à 90% de collagène II et de 5 à 45% glycosaminoglycanes est effectuée à l'aide de N-hydroxysuccinimide (NHS) et d'un carbodiimide soluble dans l'eau tel que l'éthyl-3 (3-diméthylaminopropyl) carbodiimide (EDC). • 2955333 3 Selon une autre caractéristique, la lyophilisation est conduite après congélation du gel de collagène dans le lyophilisateur entre -20°C et -40°C et plus précisément à ù 35°C. Selon une caractéristique, la réticulation est réalisée grâce à un bain de 5 NHS/EDC 34mM en solution dans un tampon MES (acide 2-(Morpholino-éthane) sulfonique) à pH 5,5 à 60% et éthanol à 40% suivi d'un lavage par un bain de solution saline (NaCl) et par l'eau purifiée. Selon un mode particulier d'exécution de l'invention, la stérilisation est conduite par irradiation à une dose minimale de 25 kGy. 1 o La matrice selon l'invention s'applique à la culture de chondrocytes autologues. La matrice selon l'invention s'applique tout particulièrement à la conservation des chondrocytes dans ses pores par la taille et la stabilité de son maillage. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront plus clairement à la lecture de la description donnée ci-après de modes de réalisation 15 particuliers. L'invention concerne spécifiquement l'utilisation de cette matrice destinée à être implantée chez un patient, atteint d'arthrose ou présentant des lésions d'origine traumatique ou une ostéochondrite dissécante après avoir servi de support à la culture de ses chondrocytes, pour réparer ses tissus cartilagineux lésés. 20 Afin de réaliser cette implantation, une biopsie de cartilage du patient doit être prélevée et les chondrocytes autologues doivent être extraits puis amplifiés. La matrice de collagène II doit ensuite être ensemencée et doit subir une phase de culture cellulaire. Le prélèvement provient d'une biopsie pratiquée au niveau du cartilage du 25 patient à traiter. L'amplification des chondrocytes extraits est alors réalisée ex-vivo pendant 25 à 30 jours. Cette étape vise à augmenter le nombre de chondrocytes autologues présents dans le prélèvement afin d'obtenir un plus grand nombre de cellules bien différenciées nécessaires lors de l'ensemencement. La matrice tridimensionnelle de collagène de type II est ensuite ensemencée par 30 une suspension de chondrocytes autologues amplifiés selon une technique dite du serpentin permettant un ensemencement homogène. 4 Enfin, la matrice de collagène II cellulaire subit une phase de culture pendant 7 à 14 jours avant d'être réimplantée au niveau de la lésion du cartilage du patient. La durée totale du processus est de 32 à 40 jours. Le procédé base de l'invention comporte cinq étapes permettant d'obtenir des matrices poreuses réticulées. Tout d'abord, le gel est préparé en mélangeant le collagène de type II et les glycosaminoglycanes. Ce mélange est ensuite lyophilisé pour obtenir des matrices poreuses dont la porosité est comprise entre 50 et 150 µm. Après cela, les matrices sont découpées dans leur épaisseur afin de présenter une porosité ouverte sur les deux faces. Elles sont ensuite réticulées chimiquement par bain z o de NHS/EDC dans un tampon MES et éthanol. Enfin, elles sont lyophilisées, découpées, conditionnées et stérilisées afin d'obtenir des matrices stériles de tailles et de formes spécifiées.
Selon un mode de réalisation particulier, le gel est préparé avec 77% de 15 collagène II et 23% de glycosaminoglycanes. De préférence, le glycosaminoglycane est l'acide chondroitine sulfurique. Le collagène est repris en solution à 1,5% et l'acide chondroitine sulfurique est repris à 3,0 %. L'ajout de l'acide chondroitine sulfurique au collagène se fait sous agitation et le mélange est ensuite réparti dans un moule. Le gel obtenu est lyophilisé afin d'obtenir des matrices ayant une porosité de 50 20 à 150 µm. Cette lyophilisation est réalisée après congélation du gel à -30°C environ dans le lyophilisateur. Les matrices obtenues sont refendues dans leur épaisseur avec une lame afin d'obtenir trois tranches à savoir une tranche inférieure, une tranche centrale et une tranche supérieure. Seule la tranche centrale est conservée ce qui permet d'obtenir une 25 porosité ouverte de 50 à 150 µm sur les deux faces des matrices. Ces matrices sont ensuite réticulées chimiquement par un bain de NHS/EDC 34 mM en solution dans un tampon MES pH 5,5 à 60% et éthanol à 40% puis lavées par bain de solution saline (NaCl) et eau purifiée. Enfin, les matrices réticulées sont réparties dans des plateaux et lyophilisées. 30 Elles sont ensuite découpées à l'emporte pièces et conditionnées en double sachet puis stérilisées par irradiation (3 à 25kGy.
Le collagène de type II utilisé dans le procédé de préparation de la matrice est obtenu à partir de collagène articulaire porcin. Ce collagène II peut par exemple être extrait des rotules de porcs par digestion enzymatique du cartilage par la pepsine. Pour permettre l'utilisation de la matrice dans le domaine médical, il faut garantir la sécurité 5 microbiologique du collagène II qui la compose. Ce collagène II doit donc être prélevé dans des abattoirs ne travaillant qu'avec des porcs pour éliminer tout risque de contamination croisée inter espèce et sur des animaux ayant fait l'objet d'un contrôle vétérinaire assurant qu'ils sont propres à la consommation humaine. Le collagène II extrait doit ensuite subir des traitements efficaces pour inactiver les virus 1 o potentiellement présents dans les tissus et les agents transmissibles non conventionnels tels que les prions, en particulier l'agent responsable de l'ESB (Encéphalopathie Spongiforme Bovine) La co-précipitation, c'est-à-dire la réalisation du gel de collagène II et de glycosaminoglycanes avant la lyophilisation, permet d'obtenir des taux de 15 glycosaminoglycanes non extractibles dans la matrice de 9 à 20% ce qui est nettement supérieur aux taux obtenus lorsque le greffage est réalisé sur une matrice de collagène II déjà lyophilisée. La réticulation de la matrice est indispensable pour maintenir les caractéristiques mécaniques de ladite matrice lors des étapes de culture cellulaire lui 20 permettant ainsi de conserver sa bonne tenue et de ne pas se déliter une fois réhydratée. La réticulation chimique avec le NHS/EDC permet également d'obtenir une meilleure stabilité thermique de la matrice soit par exemple une stabilité thermique de 87,4°C avant stérilisation et de 71,5°C après stérilisation ce qui est supérieur aux valeurs connues. 25 Les exemples suivants illustrent l'invention, sans toutefois limiter sa portée. Exemple I : Etude de tolérance et d'efficacité. On a effectué en premier lieu un essai d'efficacité et de bonne tolérance en 30 utilisant une matrice poreuse préalablement lyophilisée, produite selon le procédé décrit précédemment sur un modèle animal utilisant la brebis présentant des lésions 6 induites par l'expérimentateur. Les résultats obtenus ont montré que l'implantation d'une telle matrice cellularisée dans laquelle des chondrocytes autologues sont ensemencés, amène une amélioration significative de la réparation du cartilage. Le tissu cartilagineux néoformé montre un caractère typique hyalin attesté par une coloration intense à la Safranine O. En outre, les cellules chondrocytaires présentent une organisation en colonnes.
Exemple II : L'objectif d'une seconde étude a été d'évaluer la tolérance et l'efficacité d'une 1 o matrice telle que décrite, ensemencée avec des chondrocytes autologues associée à une membrane suturable au cours de la réparation du défaut du cartilage. Le but d'une telle association utilisant une membrane suturable était d'éviter le détachement de l'implant. On a créé deux lésions dans le cartilage à l'intérieur d'une même articulation dans le genou de la brebis (un site trochléaire et un site condylaire).
15 Le groupe témoin n'a pas reçu d'implantation de matrice cellularisée et un autre groupe d'animaux a constitué le groupe d'essai dans lequel les animaux ont été implantés par la matrice cellularisée et par la membrane suturable. Les animaux ont été euthanasiés au bout de six mois et une évaluation locale macroscopique de l'articulation n'a pas mis en évidence de particularités anormales 20 sauf chez un seul animal. On n'a pas constaté de situation anormale locale macroscopique qui pourrait résulter du biomatériau cellularisé implanté. En ce qui concerne la réparation du cartilage le résultat des évaluations macroscopiques et microscopiques a suivi la même évolution et a montré une réparation du cartilage à la fois quantitative et qualitative.
25 On a pu observer dans le groupe d'essai qu'une meilleure réparation du cartilage pouvait être constatée avec un score macroscopique maximum et le meilleur score microscopique, avec un cartilage ayant subi une réparation qui était ainsi parfaitement intégrée et qui présentait les caractéristiques typiques d'un cartilage hyalin (c'est-à-dire une coloration par la Safranine O) et surtout un aspect cellulaire chondrocytaire ainsi 30 qu'une organisation en colonnes, pratiquement complet de la zone radiale.
7 Résultats : L'interprétation globale de ces résultats a montré que la sécurité générale de l'élément expérimental et la tolérance locale sont bonnes. Les résultats d'efficacité ont indiqué qu'il y a un effet positif dans le groupe d'essai. Ces résultats montrent que quand la matrice est implantée, les scores globaux macroscopiques et microscopiques sont meilleurs que chez les animaux témoins. A l'issue de cette étude la membrane précédemment implantée et les points de suture n'étaient plus visibles chez aucun des animaux ayant subi une telle implantation. Il est encore possible d'envisager une évolution de la matrice dans les lésions 10 ostéochondrales en prévoyant une couche intermédiaire à base de sels minéraux contribuant à l'ossification de la partie sous chondrale.

Claims (9)

  1. REVENDICATIONS1. Utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse, principalement composée de collagène de type II et de glycosaminoglycanes comme support à la culture cellulaire in vitro de chondrocytes destinée à être implantée pour réparer les défauts localisés du cartilage, composée de 80 à 90% de collagène de type II et de 10 à 20% de glycosaminoglycanes et réticulée chimiquement.
  2. 2. Utilisation selon la revendication 1 d'une matrice de collagène réticulée 10 poreuse caractérisée en ce que le glycosaminoglycane est l'acide chondroitine sulfurique, l'acide hyaluronique, le dermatan sulfate ou le keratane sulfate.
  3. 3. Utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse selon la revendication 1, caractérisée en ce que le collagène de type II est dérivé d'un cartilage naturel. 15
  4. 4. Utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse selon la revendication 3, caractérisée en ce que le cartilage naturel est dérivé du cartilage articulaire porcin, bovin ou aviaire. 20
  5. 5. Utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la matrice présente une porosité comprise entre 50 et 150µm.
  6. 6. Utilisation d'une matrice de collagène réticulée poreuse selon l'une 25 quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la matrice présente, après découpe dans son épaisseur et conservation de la tranche centrale, une porosité ouverte sur les deux faces.
  7. 7. Utilisation de la matrice selon l'une quelconque des revendications 30 précédentes destinée à la culture de chondrocytes autologues.
  8. 8. Utilisation de la matrice de collagène réticulée poreuse selon l'une quelconque des revendications précédentes comme agent de conservation des chondrocytes dans ses pores par la taille et la stabilité de son maillage.
  9. 9. Utilisation de la matrice de collagène réticulée poreuse selon l'une des revendications précédentes comme agent assurant la réparation du cartilage.
FR1000152A 2010-01-15 2010-01-15 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux; Expired - Fee Related FR2955333B1 (fr)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR1000152A FR2955333B1 (fr) 2010-01-15 2010-01-15 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux;
FR1150365A FR2955334B1 (fr) 2010-01-15 2011-01-17 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR1000152A FR2955333B1 (fr) 2010-01-15 2010-01-15 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux;

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2955333A1 true FR2955333A1 (fr) 2011-07-22
FR2955333B1 FR2955333B1 (fr) 2014-03-21

Family

ID=42340603

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR1000152A Expired - Fee Related FR2955333B1 (fr) 2010-01-15 2010-01-15 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux;
FR1150365A Active FR2955334B1 (fr) 2010-01-15 2011-01-17 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR1150365A Active FR2955334B1 (fr) 2010-01-15 2011-01-17 Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux

Country Status (1)

Country Link
FR (2) FR2955333B1 (fr)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0296078A1 (fr) * 1987-06-15 1988-12-21 Centre National De La Recherche Scientifique (Cnrs) Nouveaux biomatériaux à base de mélanges de collagène, de chitosan et de glycosaminoglycanes, leur procédé de préparation ainsi que leurs applications en médecine humaine
WO1999019005A1 (fr) * 1997-10-10 1999-04-22 Ed Geistlich Söhne Ag Für Chemische Industrie Membrane utilisee dans la regeneration tissulaire
EP1254670A1 (fr) * 2001-05-03 2002-11-06 Stichting Katholieke Universiteit Matrices de collagène II pour la régéneration de cartilage

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0296078A1 (fr) * 1987-06-15 1988-12-21 Centre National De La Recherche Scientifique (Cnrs) Nouveaux biomatériaux à base de mélanges de collagène, de chitosan et de glycosaminoglycanes, leur procédé de préparation ainsi que leurs applications en médecine humaine
WO1999019005A1 (fr) * 1997-10-10 1999-04-22 Ed Geistlich Söhne Ag Für Chemische Industrie Membrane utilisee dans la regeneration tissulaire
EP1254670A1 (fr) * 2001-05-03 2002-11-06 Stichting Katholieke Universiteit Matrices de collagène II pour la régéneration de cartilage

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHAJRA H ET AL: "Collagen-based biomaterials and cartilage engineering. Application to osteochondral defects", BIO-MEDICAL MATERIALS AND ENGINEERING, IOS PRESS, AMSTERDAM, NL, vol. 18, no. Suppl. 1, 1 January 2008 (2008-01-01), pages S33 - S45, XP009108989, ISSN: 0959-2989 *
HUI CAO ET AL: "EDC/NHS-crosslinked type II collagen-chondroitin sulfate scaffold: characterization and in vitro evaluation", JOURNAL OF MATERIALS SCIENCE: MATERIALS IN MEDICINE, KLUWER ACADEMIC PUBLISHERS, BO, vol. 19, no. 2, 6 December 2007 (2007-12-06), pages 567 - 575, XP019575683, ISSN: 1573-4838 *
KO C -S ET AL: "Type II collagen-chondroitin sulfate-hyaluronan scaffold cross-linked by genipin for cartilage tissue engineering", JOURNAL OF BIOSCIENCE AND BIOENGINEERING 2009 ELSEVIER NLD LNKD- DOI:10.1016/J.JBIOSC.2008.09.020, vol. 107, no. 2, February 2009 (2009-02-01), pages 177 - 182, XP002593846, ISSN: 1389-1723 *
LIEN S -M ET AL: "Effect of pore size on ECM secretion and cell growth in gelatin scaffold for articular cartilage tissue engineering", ACTA BIOMATERIALIA 200902 GB LNKD- DOI:10.1016/J.ACTBIO.2008.09.020, vol. 5, no. 2, February 2009 (2009-02-01), pages 670 - 679, XP002593848, ISSN: 1742-7061 *
PIEPER J S ET AL: "Crosslinked type II collagen matrices: preparation, characterization, and potential for cartilage engineering", BIOMATERIALS, ELSEVIER SCIENCE PUBLISHERS BV., BARKING, GB LNKD- DOI:10.1016/S0142-9612(02)00067-4, vol. 23, no. 15, 1 August 2002 (2002-08-01), pages 3183 - 3192, XP004354888, ISSN: 0142-9612 *
VICKERS SCOTT M ET AL: "Effects of cross-linking type II collagen-GAG scaffolds on chondrogenesis in vitro: dynamic pore reduction promotes cartilage formation.", TISSUE ENGINEERING MAY 2006 LNKD- PUBMED:16771647, vol. 12, no. 5, May 2006 (2006-05-01), pages 1345 - 1355, XP002593847, ISSN: 1076-3279 *

Also Published As

Publication number Publication date
FR2955334B1 (fr) 2013-09-06
FR2955334A1 (fr) 2011-07-22
FR2955333B1 (fr) 2014-03-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Parmaksiz et al. Decellularization of bovine small intestinal submucosa and its use for the healing of a critical‐sized full‐thickness skin defect, alone and in combination with stem cells, in a small rodent model
US10722339B2 (en) Flowable tissue products
Arslantunali et al. Peripheral nerve conduits: technology update
Güngörmüş et al. Histopathological and biomechanical evaluation of tenocyte seeded allografts on rat Achilles tendon regeneration
Wang et al. Decellularized tendon as a prospective scaffold for tendon repair
US8518436B2 (en) Engineered extracellular matrices
Park et al. Preparation of immunogen-reduced and biocompatible extracellular matrices from porcine liver
WO2018120672A1 (fr) Stent bioactif pour induire la régénération d'un tissu de tendon, son procédé de préparation et son utilisation
Hwang et al. Effect of extracellular matrix membrane on bone formation in a rabbit tibial defect model
Oryan et al. Implantation of a novel tissue-engineered graft in a large tendon defect initiated inflammation, accelerated fibroplasia and improved remodeling of the new Achilles tendon: a comprehensive detailed study with new insights
EP4104863A1 (fr) Procédé de production de biomatériau décellularisé, biomatériau décellularisé et utilisation de celui-ci
RU2593011C1 (ru) Биотрансплантат для восстановления дефектов хрящевой ткани суставов
Kajbafzadeh et al. A novel technique for simultaneous whole‐body and multi‐organ decellularization: umbilical artery catheterization as a perfusion‐based method in a sheep foetus model
Esmaeili et al. Processing and post-processing of fish skin as a novel material in tissue engineering
KR102182882B1 (ko) 돼지 진피-유래 치과용 차폐막 및 이의 제조방법
WO2020247793A1 (fr) Treillis injectable
Kumar et al. Extraction techniques for the decellularization of rat dermal constructs
Meimandi-Parizi et al. Novel application of a tissue-engineered collagen-based three-dimensional bio-implant in a large tendon defect model: A broad-based study with high value in translational medicine
Kumaresan et al. Development of Human Umbilical cord based scaffold for tissue engineering application
FR2955333A1 (fr) Utilisation d'une matrice de collagene ii reticulee poreuse comme support a la culture de cellules et la regeneration d'un tissu cartilagineux;
KR102182883B1 (ko) 콜라겐 멤브레인 및 이의 제조방법
US20090246247A1 (en) Composite enterocystoplasty
JP6097000B2 (ja) 組織工学のための3次元構造体を得る方法
Boyalı et al. Can Acellular Dermal Matrix and Kombucha Cellulose Membrane Be Used in Calvarial Reconstruction?
Guillén-García et al. The use of autologous fibroblasts for the reconstruction of the anterior cruciate ligament tears

Legal Events

Date Code Title Description
ST Notification of lapse

Effective date: 20110930

RN Application for restoration

Effective date: 20111121

FC Decision of inpi director general to approve request for restoration

Effective date: 20111128

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 7

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 8

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 9

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 10

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 11

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 12

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 13

CD Change of name or company name

Owner name: IBSA PHARMA SAS, FR

Effective date: 20220217

CJ Change in legal form

Effective date: 20220217

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 14

PLFP Fee payment

Year of fee payment: 15