FR2605184A1 - Nouveau micro-organisme et procede de culture l'utilisant - Google Patents
Nouveau micro-organisme et procede de culture l'utilisant Download PDFInfo
- Publication number
- FR2605184A1 FR2605184A1 FR8714304A FR8714304A FR2605184A1 FR 2605184 A1 FR2605184 A1 FR 2605184A1 FR 8714304 A FR8714304 A FR 8714304A FR 8714304 A FR8714304 A FR 8714304A FR 2605184 A1 FR2605184 A1 FR 2605184A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- microorganism
- seeds
- enterobacter cloacae
- plants
- soil
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01C—PLANTING; SOWING; FERTILISING
- A01C1/00—Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
- A01C1/06—Coating or dressing seed
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
- A01N63/20—Bacteria; Substances produced thereby or obtained therefrom
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C05—FERTILISERS; MANUFACTURE THEREOF
- C05F—ORGANIC FERTILISERS NOT COVERED BY SUBCLASSES C05B, C05C, e.g. FERTILISERS FROM WASTE OR REFUSE
- C05F11/00—Other organic fertilisers
- C05F11/08—Organic fertilisers containing added bacterial cultures, mycelia or the like
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/04—Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/828—Aerobacter
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Soil Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Agronomy & Crop Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Dentistry (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Fertilizers (AREA)
- Cultivation Of Plants (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
Abstract
MICRO-ORGANISME APPARTENANT AU GENRE ENTEROBACTER ET AYANT UNE ACTIVITE D'ACCELERATION DE LA CROISSANCE DES PLANTES, EN PARTICULIER ENTEROBACTER CLOACAE, ET PROCEDE POUR CULTIVER DES RECOLTES EN UTILISANT LE MICRO-ORGANISME OU DES POLYSACCHARIDES PRODUITS PAR CELUI-CI.
Description
NOUVEAU MICROORGANISME ET PROCEDE DE CULTURE L'UTILISANT.
La présente invention concerne un nouveau microorganisme ayant un effet d'accélération de la croissance des plantes, et un procédé de culture de
récoltes l'utilisant.
Une grande variété de microorganismes vivent dans la zone d'enracinement (rhizosphère) ou sur la surface des racines des plantes, exerçant une grande influence sur le développement des organismes vivants, sur la déclaration de maladies dans les organismes vivants, etc. Des essais pour séparer des microorganismes industriellement utiles et pour les utiliser pour améliorer la productivité agricole ont été effectués jusqu'à présent, et il existe un certain nombre de
relations sur ces études.
Par exemple, les bactéries fixatrices d'azote fixent l'azote de l'air, fournissant ainsi aux plantes de l'azote, un des trois éléments nutritifs des plantes. Il est connu que la bactérie mycorrhiza améliore la biodisponibilité du phosphore dans le sol
et accélère la croissance des plantes en leur four-
nissant du phosphore, qui est un élément essentiel pour celles-ci. En outre, bien que diverses bactéries pathogènes provoquant des maladies des plantes habitent dans le sol, il est connu que des microorganismes antagonisant ces bactéries pathogènes existent aussi dans le sol. Par exemple, les bactéries appartenant
au genre Pseudomonas ont été isolées comme microorga-
nismes antagonistes, -et leur utilité a été étudiée.
Cependant, comme la culture de la bactérie mycorrhiza exige des organismes végétaux en raison de leur caractère parasitaire, il était difficile de
les cultiver en masse, à l'échelle industrielle.
L'utilisation pratique de ces bactéries n'a par conséquent pas été établie jusqu'à présent. Bien que les bactéries fixatrices d'azote puissent être cultivées en masse industriellement, lorsqu'elles sont dispersées dans le sol, le nombre de cellules microbiennes diminue avec le temps, conduisant à une réduction du taux d'azote fixé. Ceci pose un problème économique par comparaison avec l'utilisation d'engrais azotés du commerce. En outre, un grand nombre des bactéries antagonistes décrites ci-dessus produisent des antagonistes contre la croissance
des bactéries pathogènes, c'est-à-dire des antibio-
tiques, qui ont parfois des effets plus ou moins
inhibiteurs sur la croissance des plantes.
Un des buts de l'invention est de fournir un microorganisme utile isolé de la rhizosphère des plantes, qui puisse être cultivé aisément à l'échelle industrielle, qui présente une fixation satisfaisante dans la rhizosphère ou à la surface des racines des plantes, et exerce une activité d'accélération de la
croissance des plantes.
Un autre but de l'invention est de fournir un procédé d'utilisation d'un tel microorganisme
pour améliorer le rendement des récoltes.
Pour atteindre les objectifs ci-dessus, la Demanderesse a sélectionné des microorganismes capables d'accélérer le développement des plantes à partir de la rhizosphère des plantes. A la suite de cette recherche, il a été trouvé-à présent qu'un nouveau microorganisme appartenant au genre Enterobacter isolé du sol dans la rhizosphère du concombre, à savoir Enterobacter cloacae était utilisable aux fins de la présente invention, pour l'accélération de la croissance de divers types de plantes utiles en agriculture, parmi lesquelles le concombre. La présente invention a été réalisée sur la base de
cette découverte.
La présente invention fournit le micro- organisme Enterobacter cloacae qui a une activité
d'accélération de la croissance des plantes.
La présente invention fournit en outre un procédé de culture qui consiste à
appliquer directement sur les semences un micro-
organisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la croissance des plantes, etc. et à semer les semences ainsi traitées dans le sol, ou à mélanger le microorganisme avec le sol et à semer les semences dans le sol
ainsi traité.
La présente invention fournit en outre un procédé pour cultiver des récoltes par hydroculture qui consiste à utiliser un engrais liquide contenant un microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la croissance des plantes. La présente invention fournit en outre un procédé de culture de récoltes qui consiste à appliquer directement sur des semences un polysaccharide produit par un microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la croissance des plantes, et à semer les semences traitées dans le sol, ou à mélanger le polysaccharide avec le sol et à semer les semences dans le sol traité, ou à pulvériser le polysaccharide sur le feuillage des cultures. Le microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la croissance des plantes, Enterobacter cloacae, conforme à la présente invention, peut être isolé du sol dans la rhizosphère du concombre, et il a Les propriétés microbiologiques suivantes: 1. Propriétés morphologiques (1) Forme et dimension: bacille, 0,8 à 1,0 X 1,5 à 3,0 pm (2) Polymorphisme: aucun (3) Motilité: mobile avec des flagelles péritriches (4) Spore: aucun (5) Coloration de Gram: négative - (6) Coloration acido-résistante: négative 2. Croissance dans divers milieux (1) Culture sur plaque d'extrait de viande-géLose: les cellules microbiennes ne produisent aucun
pigment distingabLe, mais se développent vigoureu-
sement en prenant une couleur jaune pâle.
(2) Culture inclinée sur extrait de viande-gélose:
comme en (1) ci-dessus.
(3) Culture liquide sur extrait de viande: toute la masse du champignon se développe en devenant
trouble. Aucune pellicule ne se forme.
(4) Culture en piqûre sur extrait de viande-géLatine:
il se produit une liquéfaction extrêmement lente.
(5) Culture sur lait: on n'observe pas de modifica-
tion marquée de la liquéfaction, de la coaguLa-
tion, du pH, etc. 3. Propriétés physiologiques (1) Réduction du Nitrate: positive (2) Réaction de dénitrification: négative (3) Test MR: négatif (4) Test VP: positif (5) Formation d'Indole: négative (6) Formation d'hydrogène sulfuré: négative (7) Hydrolyse de l'amidon: négative
2605184
(8) Utilisation de L'acide citrique: positive (9) Source d'azote minérale: les nitrates et les sels d'ammonium sont utilisés comme source d'azote (10) Formation de pigment: aucune production décelable de pigments solublesou insolubLes n'est observée (11) Uréase positive (12) Oxydase: négative (13) Catalase: positive (14) IntervaLLe de développement: les températures de développement vont de 15 à 45 C, la température
optimale allant de 28 à 37 C, et le pH de déveLop-
pement approprié est au voisinage de la neutralité (15) Comportement visà-vis de l'oxygène: anaérobie facultative (16) Test O-F: type F
(17) Formation d'acide et de gaz à partir de saccha-
rides: Saccharide Formation d'acide Formation de gaz
L-arabinose + -
D-xylose + + D-glucose + + D-mannose + + D-fructose + + D-galactose + + maLtose + + saccharose + + lactose + + tréhalose + + D-sorbitol + + Dmannitol + +
inocitol + -
glycérinol - -
amidon _
adonitol - -
4. Autres propriétés (1) Production de DNase: négative (2) Production de tryptophane Déaminase: négative (3) Production de 8-galactosidase: positive (4) Test de décomposition de l'arginine: positif (5) Réaction de décarboxylation de la lysine: négative (6) Réaction de décarboxylation de l'ornithine: positive (7) Décomposition de l'Esculine: négative
Comme on l'a montré ci-dessus, la souche de l'in-
vention a des propriétés morphologiques telles qu'elle est un bacille Gram-négatif et facultativement anaérobie qui ne forme pas de spore et se déplace au moyen de flagelles péritriches; et des propriétés physiologiques telles qu'elle est négative vis-à-vis de l'oxydase et positive dans la réduction du nitrate. Sur la base de ces propriétés, on estime que la souche appartient à la famille des Entérobactériacées. En outre, compte tenu de diverses autres
propriétés physiologiques, le plus raisonnable est de consi-
dérer que la souche appartient à Enterobacter cloacae. La souche a été déposée à l'Agency of Fermentation Research Institute, au Japon, sous la désignation Bikoken-kin ki n 8968 (FERM P-8968)-qui a été converti le 15 octobre 1987
en FERM BP-1529.
Conformément au procédé de culture de la présen-
te invention, pour accélérer la croissance des plantes, le microorganisme décrit ci-dessus appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la croissance des plantes, par exemple Enterobacter cloacae peut être appliqué sur des semences à raison de 106 à 1010 cellules par semence, puis les semences ainsi traitées peuvent être semées directement dans Le sol. On peut aussi mélanger le microorganisme avec le sol à raison de 105 à 1010 cellules par gramme de sol et semer les semences dans le sol ainsi traité. Dans le cas de l'hydroculture, le microorganisme décrit ci-dessus peut être mélangé à un engrais liquide pour hydroculture à raison de 106 à 108 cellules/ml et, si on le désire, des microorganismes peuvent être apportés
en supplément au cours de la culture.
L'inoculation du microorganisme de la présente invention manifeste son effet.d'abord par une accélération
de la croissance du systeme des racines puis par une accéLé-
ration de la croissance de la partie feuiLLe et tige.
Comme il a été décrit ci-dessus, les microorganis- mes appartenant au genre Enterobacter, et en particulier
Enterobacter Cloacae, sont capables d'accélérer la croissan-
ce des plantes lorsqu'ils sont appliqués sur des semences, etc, ou mélangés au sol. On a trouvé en outre que des polysaccharides extracellulaires produits par culture
d'Enterobacter Cloacae présentent le même effet d'accélé-
ration de la croissance des plantes.
Les polysaccharides ci-dessus peuvent être produits en cultivant Enterobacter cloacae (FERM P-8968) dans un milieu M-gélose ayant la même composition que le milieu M utilisé dans l'exemple 1 qui sera décrit plus loin, plus 0,0033 % en poids de Rose Bengale et 1,5% en poids de gélose, à 30 C, sur une base expérimentale. A l'échelle industrielle, les polysaccharides peuvent être produits par une culture agitée de Enterobacter cloacae (FERM P-8968) dans un milieu liquide contenant par exemple 1% en poids de lactose, 0,5% en poids de peptone, 0,1% en poids de KH2P04, et 0,05% en poids de MgSO4.7H20 à 30 C pendant
2 à 3 jours, en soumettant la culture obtenue à une sépara-
tion centrifuge pour éliminer le corps de champignon, en con-
centrant la liqueur surnageant à un tiers de son volume initial, en ajoutant au concentré un volume triple d'éthanol pour précipiter les polysaccharides produits et en les isolant
et en les séchant pour obtenir 0,6 à 1,2 g de poly-
saccharides par litre de la culture.
Les polysaccharides ainsi obtenus sont solubles dans l'eau. Les polysaccharides, lorsqu'ils sont appliqués à des plantes, accélèrent la croissance des systèmes de
racine et de pousse des plantes, conduisant à une augmenta-
tion des rendements. Lorsqu'on effectue l'application sur des plantes, les polysaccharides peuvent être appliqués directement sur les semences à raison de 5 à 100 y/semence; ou bien on peut pulvériser une solution aqueuse à 50-200 y/ml des polysaccharides sur le sol, dans une quantité de 0,5 à 5,0 kg/ha; ou bien on peut pulvériser une solution aqueuse à 20- 200 y/ml des polysaccharides sur le feuilLage conformément au traitement de pulvérisation foliaire. En outre, les polysaccharides peuvent être incorporés à un engrais liquide pour hydroculture. Par ces traitements, les rendements des cultures peuvent être augmentés, et les cultures ainsi cultivées ont un excellent goût et une excellente qualité, tels qu'exprimés, par exemple, par une
amélioration de la teneur en amidon.
Les plantes auxquelles est applicable la présente invention ne sont pas particulièrement limitées et les préférées sont les cultures. Le terme "cultures" désigne ici tous les types de plantes agricoles et de récolte de celles-ci, tels que céréales, légumes, fleurs, arbres fruitiers, etc. Les plantes comprennent aussi des plants de légumes, par exemple des concombres, des potirons, des aubergines, des tomates, des melons, des pastèques, etc; des plants de fleurs, des plants de céréales et des plants de toutes
les autres plantes utiles. Le terme "semences, etc."
désigne ici non seulement des semences, mais des pommes de terre de semence (tubercules radiculaires, etc.). Le terme "hydrocultures" désigne ici la culture dans l'eau, la culture sur sable, la culture sur gravier, la culture sur laine de roche, etc. La présente invention sera décrite à présent en détail en se référant aux exemples suivants, mais il est à noter que la présente invention n'est pas limitée à ceux-ci. Dans ces exemplestous les pourcentages sont en
poids sauf indication contraire.
EXEMPLE 1
(1) Culture de masse d'Enterobacter cloacae.
Dans un ballon à trois tubulures d'un litre, on introduit 400 ml d'un milieu de culture liquide contenant -9 1,0% de glucose, 0,5% de peptone, 0,1% de KH2P04, et 0,05% de MgSO4.7H20 (désigné ci-après sous le nom de milieu M). Après stérilisation à 120 C pendant 30 min., on refroidit le milieu et on lui inocule une anse de platine d'Enterobacter cloacae (FERM P-8968), et on le cultive à 240 tours/min. pendant 24 heures à 30 C pour préparer une culture de semences. Dans un fermenteur à bocaux de 30 litres, on introduit 20 I de milieu M, et on stérilise le milieu à 120 C pendant 30 minutes. Après refroidissement à 30 C, on inocule dans le milieu la culture de semences obtenu ci-dessus, et on la cultive
à 200 tours/min. pendant 24 heures à 30 C sous une aéra-
tion de 100 vvm. La culture obtenue contient 1 x 1010
cellules/ml d'Enterobacter cloacae.
(2) Culture en pépinière du concombre.
Du sol pour pépinière est placé dans un plateau de pépinière (30 cm x 50 cm x 3 cm), et on y sème 100 semences de concombre (variété: Kifujin). Après culture à 20 à 23 C pendant une semaine, on plante les jeunes plants de concombre dans un pot (diamètre de 90 mm, hauteur
76 mm) et on continue à les cultiver pendant deux semaines.
Les groupes d'expérience utilisés ont été les suivants: Groupe témoin: la pépinière a été utilisée
telle quelle.
Groupe de traitement du sol: Enterobacter cloacae(107 cel-
lules/g de sol) a été ajouté au
sol de la pépinière.
Groupe de traitement des: les semences (Kifujin) ont semences été plongées dans la culture d'Enterobacter cloacae (1,0 x 1010 cellules/ml) puis élevées en pépinière
dans un sol exempt d'Ente-
robacter cloacae.
1 0
Les résultats sont donnés dans le tableau 1 ci-
dessous. Le tableau 1 indique que La proportion de jeunes plants de taille S ayant une hauteur au-dessus du sol de cm ou moins était de 37% dans le groupe témoin, tandis queceLLes du groupe de traitement du sol et du groupe de traitement des semences étaient plus petitesque dans le groupe témoin, de 6 et 18% respectivement. Ainsi, il a été prouvé que l'on pouvait obtenir de jeunes plants plus grands et plus forts lorsque soit le sol, soit les semences, étaient
traités par Enterobacter cloacae.
TABLEAU 1
Taille du Groupe Groupe de Groupe de plant témoin traitement traitement du sol des semences
L 13% 39% 30%
M 50% 55% 52%
S 37% 6% 18%
Note: * taille L: hauteur au-dessus du sol 15 cm ou davantage, taille M: hauteur au-dessus du sol de 10 à 15 cm taille S: hauteur au-dessus du sol de 10 cm ou moins.
(3) Culture du concombre.
Les jeunes plants de concombre obtenus en (2) ci-
dessus ont été plantés dans le sol d'une serre à des inter-
valles de 80 cm et cultivés en serre dans des conditions de température naturelle et de lumière naturelle pendant trois mois. Un engrais minéral (Kasei N 14: 14% NH4-N,
% P, 13% K) a été appliqué à la base en cas de nécessité.
En outre, pour lutter contre les aphides on a pulvérisé du "Taijiston", une préparation de 5% de phosphorodithioate de 0,0 diéthyl-S-2 (éthylthio) éthyle, si on le désirait,
après la fin de la deuxième semaine de culture. Les résul-
tats sont donnés dans le tableau 2.
Le tableau 2 indique que les plants de concombre tant du groupe de traitement du sol que du groupe de traitement des semences, ont des hauteurs au-dessus du sol plus grandes que celles du groupe témoin et que le rendement des concombres était supérieur de 8 à 12% à
celui du groupe témoin.
TABLEAU 2
Hauteur moyenne Groupe Hauteur moyenne Rendement * l* au-dessus du sol (kg/plant)* (cm) Groupe de traitement du sol 432 (120)** 5,49 (112)** Groupe de traitement des semences 428 (119) 5,30 (108) Groupe témoin 360 (100) 4,91 (100) Note: * n = 16 **: les valeurs entre parenthèses sont des valeurs relatives en prenant le résultat du groupe témoin comme étalon (100) (ceci s'applique
également ci-dessous).
(4) Fixation d'Enterobacter cloacae à la surface des racines. Les racines des plants de concombre ont été prélevées à certains intervalles de temps au cours de la culture, et le nombre de cellules d'Enterobacter cloacae qui se sont développées sur les racines a été compté. Le comptage des cellules a été effectué conformément à la méthode décrite dans Dojo Biseibutsu Kenkyukai (ed.), Dojo Biseibutsu Jikkenho (Procedures of Experiments of
Soil Microorganisms, Yokendo, Tokyo, Japon) (1975), p. 380.
Comme Enterobacter cloacae prend une couleur et une forme caractéristiques et produit des polysaccharides lorsqu'il est cultivé dans un milieu de Martin (glucose = 1%; peptone = 0,5%; KH2PO4 = 0,1%, MgSO4.7H20 = 0,05%; Rose Bengale = 0,0033%; agar-agar = 2,0%; pH 6,8) à 30 C pendant 24 à 48 heures, le nombre des colonies a été
compté en utilisant ces propriétés comme indications.
Les résultats sont donnés dans le tableau 3.- Dans le tableau 3, le nombre des cellules a été exprimé par le nombre des cellules viables par gramme de racine (poids humide).
TABLEAU 3
Groupe 2 semaines 5 semaines 15 semaine
4 4
1 Groupe témoin 1,2 x 10 4,2 x 10 3,8 x 10 Groupe de traite-67 ment des s emences 4,1 x 106 1,1 x 107 1,8 x 107 ment des semences Groupe de traite677 Groupment de traite-sol 4,0 x 106 2,0 x 107 3,2 x 107
EXEMPLE 2
Deux semences de laitue "sunny lettuce" sont placées sur un mat d'uréthane carré de 4 cm et plongées dans un engrais liquide contenant 0, 15% d'Otsuka House Hiryo N 1 (10%N, 8% P205, 24% K20-, 5% MgO, 0,1% MnO, 0,1% B203, 0,18% Fe), et 0,1% d'Otsuka House Hiryo N 2 (11% N, 23% CaO). Après culture pendant 10 jours à 24 C et sous 5000 lux,les jeunes plants sont plantés dans un appareil d'hydroculture et cultivés pendant 35 jours à 24 C et sous 8000 lux. Les groupes d'expérience utilisés ont été les suivants: Groupe témoin:groupe ayant reçu de l'engrais
Otsuka House exempt de microorga-
nisme. Groupe de traitement: De l'Enterobacter cloacae a été ajouté à l'engrais Otsuka House dans un rapport de 1 x 10 cellules/ ml à 1 x 109 cellules/ml. Au cours de la culture, Enterobacter cloacae a été ajouté une fois par semaine (4 fois en tout). La souche ajoutée
13 2605184
avait été obtenue de la même manière
que dans L'exemple 1.
Les résultats sont donnés dans le tableau 4 ci-
dessous.
TABLEAU 4
Nombre de Poids moyen Poids Groupe cellules de la récol- moyen ajoutées te/plante des (cellules/ml) (g) racines __________(g) Groupe de traitement 1 x 105 39 7,9 1 x 106 54 10,6 1 x 107 73 11,1 1 x 108 70 12,3 1 x 109 40 8,4 Groupe témoin 0 38 7,6 Note: n=16 On voit d'après le tableau 4 que le poids de la récolte et de la racine peut être augmenté par l'addition d'Enterobacter cloacae à l'engrais liquide. Cet effet est particulièrement remarquable dans les groupes dans lesquels
on a ajouté 1 x 106 à 1 x 108 cellules/mL de la souche.
EXEMPLE 3
Sur une terre noire, dans une boite de pépinière (50 cm x 15 cm x 20 cm), on disperse 40 g de semence de riz (variété: Akinishiki) et on recouvre les semences de terre jusqu'à une épaisseur de 3 à 4 mm. On cultive
les semences à 30-32 C pendant deux jours pour la germi-
nation, puis à 25 C pendant 17 jours. Les groupes d'expé-
rience utilisés ont été les suivants.
Groupe témoin:,On a utilisé une terre non traitée
(terre noire).
Groupe de traitement: le sol a été traité par addition de 1,0 x 107 cellules/g d'Enterobacter cloacae. La souche utilisée avait été obtenue de la même manière que
dans l'exemple 1.
On trouve que la Longueur moyenne tige-feuille du groupe de traitement est de 18,4 cm, soit une augmentation de 13% par comparaison avec celle du groupe témoin, qui
est de 16,3 cm.
EXEMPLE 4
Dans un pot (50 cmx 15 cm x 20 cm), on plante semences d'épinards (variété: Jiromaru), et on les cultive pendant 40 jours à 20 C et sous 30000 lux. Les groupes d'expérience utilisés ont été les suivants: Groupe témoin: on a utilisé une terre non traitée (terre noire) Groupe de traitement: la terre a été traitée par addition de 1,0 x 108 cellules/g d'Enterobacter cloacae. La souche avait été obtenue de la même manière que dans l'exemple 1.
Les résultats sont donnés dans le tableau 5.
TABLEAU 5
Hauteur moyenne Poids moyen Groupe (cm) (g) Groupe de traitement 20,1 15, 7 Groupe témoin 17,5 11,8
2 5 _ _.....
Comme il ressort clairement du tableau 5, le poids moyen de la récolte du groupe de traitement était
% de celui du groupe témoin.
EXEMPLE 5
On sème une semence de mais dans de la terre noire dans un pot (diamètre de 90 mm, hauteur de 76 mm)
et on la cultive pendant 20 jours à 25 C et sous 5000 lux.
Les groupes expérimentaux utilisés ont été les suivants.
Groupe témoin: On a utilisé une terre noire non traitée.
Groupe de traitement: la terre a été traitée en ajoutant 1 x 104 à 1 x 109 cellules/g d'Enterobacter cloacae. La souche avait été obtenue de la même manière que dans l'exemple 1.
Les résultats sont donnés dans le tableau 6.
TABLEAU 6
Nombre de cellules Longueur moyen-
Groupe ajoutées ne de la feuille (cellules/g de terre) et tige (cm) Groupe de traitement 1 x 10 37,8 1 x 10 42,3 1 x 106 44,5 1 x 107 51,5 1 x 108 48,4 1 x 109 36,4 Groupe témoin O 37,2 Note: n = 6 On peut voir d'après le tableau 6 que l'addition
d'Enterobacter cloacae à la terre est efficace pour aug-
menter la longueur de la feuille et tige de la plante.
En particulier, les groupes dans lesquels la terre a été traitée par 1 x 10 à 1 x 10 cellules/g de souche a présenté une accélération de la croissance de 14 à 37%
par rapport au groupe témoin.
EXEMPLE 6
On disperse 40 g de semences de riz (variété:
Akinishiki) sur de la terre noire dans une boite de pépi-
nière (50 cm x 15 cm x 20 cm), et on les recouvre de terre jusqu'à une épaisseur de 3 à 4 mm. Après avoir cu.ltivé à -32 C pendant 7 jours, on plonge les racines des jeunes plants dans une suspension contenant I x 105/ml à 1 x 106/ml cellules viables d'Enterobacter cloacae, et on poursuit la culture pendant 10 jours. Dans cet exemple, l'addition d'engrais et l'arrosage ont été effectués de la manière ordinaire. Les cellules viables de La souche utilisée
avaient été préparées de La même manière que dans l'exem-
pLe 1. Les résults sont donnés dans le tableau 7.
TABLEAU 7
Nombre de Longueur moyenne Groupe cellules en de la feuiLLe et suspension tige (cellules/ml) (cm)
1 0 _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _
Groupe de traitement 1 x 105 18,0 (103 1 x 10 18,4 (106) 1 x 107 18,7 (107) 1 x 108 19,0 (109) 1 x 109 18,9 (109) 1 x 1010 19,2 (110) Groupe témoin O0 17,4 (100) Note: n-15 Comme il ressort clairement du tableau 7, la croissance des jeunes plants peut être accélérée en inoculant Enterobacter cloacae aux racines des jeunes plants.
EXEMPLE 7
On a planté 56 semences de pommes de terre (variété: Danshaku) dans une parcelle expérimentale de ,8 m par groupe, le 27 Février, et on les a cultivé
jusqu'au 29 Mai. Au cours de la culture, l'addition d'en-
grais et-l'arrosage ont été effectués de la manière ordinaire. Les groupes d'expérience utilisés ont été les suivants:
Groupe de traitement du sol: le sol a été traité en ajou-
tant 1 x 107 cellules/g
d'Enterobacter cloacae.
Groupe de traitement des semences: les semences de pommes de terre ont été traitées en revêtant chaque semence de
1 x 1010 cellules d'Entero-
bacter cloacae.
Groupe témoin: aucun traitement n'a été effectué ni sur le sol ni sur les semences de pommes
de terre.
L'Enterobacter cloacae utilisé était constitué de cellules viables obtenues de la même manière que dans l'exemple 1. Les résultats sont donnés dans le tableau 8 ci-dessous.
TABLEAU 8
Rendement de Teneur Groupe la pomme de en terre (g/plant) amidon(%) Groupe de traitement du sol 526,4 (113) 9,25 (108) Groupe de traitement des 510,3 (100) 9,54 (112) semences Groupe témoin 464,3 (100) 8,54 (100) Le tableau 8 montre que le rendement de la récolte et la teneur en amidon s'élèvent de 110 à 113% et de 108 à 112%, respectivement, en traitant le sol ou les semences de pommes de terre par Enterobacter cloacae dans une quantité de 1 x 107 cellules/g ou de I x 1010
cellules/semence de pommes de terre, respectivement, par compa-
raison avec le groupe témoin.
EXEMPLE 8
Sur une partie en poids de semences de Kaiware Daikon (littéralement: radis cotylédon, il s'agit d'un radis cultivé artificiellement, ayant une tige et un cotylédon blanc), on pulvérise une solution aqueuse contenant de 0,7% à 0,025% de polysaccharides produits par Enterobacter cloacae (FERM P-8968),et 0,75% d'alginate de sodium, et on les sèche dans un courant d'air à 40-50 C pour préparer des semences revêtues de diverses quantités
allant de 2,5 à 100 y des polysaccharides.
On disperse 50 des semences revêtues de poly-
saccharides ainsi obtenues sur un mat de résine synthé-
tique placé dans un récipient de verre, et on leur ajoute ml d'eau du robinet. On cultive les semences à 23 C dans l'obscurité pendant quatre jours, puis pendant deux jours sous un éclairage de 5000 lux. Comme groupe témoin,
on cultive de la même manière des semences non traitées.
Les résultats sont donnés dans le tableau 9.
TABLEAU 9
Quantité de poly- Longueur moyenne Longueur moyenne saccharide appliqué de la feuille et de la racine (y/semence) tige (cm) (cm)
7,97 (120) 11,4 (218)
7,50 (113) 10,2 (196)
7,30 (110) 8,60 (165)
5 7,17 (108) 6,30 (121)
2,5 6,65 (10.0) 5,31 (102)
Témoin 6,64 (100) 5,21 (100) Note: n=25 Comme il ressort clairement des résultats du
tableau 9, le traitement des semences par 5 à 100 y/se-
mences de polysaccharides produits par Enterobacter cloacae est efficace pour accélérer la croissance à 108-120% pour la hauteur de la feuille et tige et à 121-218% pour la
longueur de La racine par comparaison avec le groupe té- moin dans lequel on a utilisé des semences non traitées.
Les polysaccharides extra-cellulaires utilisés dans cet exemple ont été préparés à partir d'Enterobacter
cloacae de la manière suivante.
Dans un balLon à trois tubulures de 250 ml, on introduit 30 ml d'un milieu contenant 1% de lactose,
2Z605184
0,5% de peptone, 0,1% de KH2PO4 et 0,05% de MgSO4.7H20.
On stérilise le milieu à 120 C pendant 15 minutes, et on lui inocule une anse de platine d'Enterobacter cloacae (FERM P-8968), et on le cultive à 240 tours/minute pendant 24 heures à 30 C, pour préparer une première culture de semences. Dans un ballon à trois tubulures d'un litre, on introduit 300 ml du milieu ci-dessu. Après stérilisation à 1200C pendant 15 minutes, on lui inocule 10 ml de la culture de semences préparée cidessus, puis on cultive à 240 tours/minute pendant 24 heures à 30 C pour obtenir
une seconde culture de semences.
Dans un fermenteur à bocaux de 30 l, on introduit
l de milieu ayant la même composition que le milieu ci-
dessus, et on stérilise à 120 C pendant 30 minutes. On inocule au milieu 100 ml de la seconde culture de semences qui est cultivée à 300C et 240 tours/minute pendant deux jours. On ajoute à la culture un volume égal d'eau et on centrifuge la culture sous 10000 G pendant 40 minutes pour
éliminer le corps fongique. On concentre la liqueur sur-
nageante à un volume de 3 l et on ajoute 7 l d'éthanol
au concentré pour précipiter les polysaccharides formés.
On recueille le précipité par centrifugation et on le
sèche, ce qui fournit 16 g des polysaccharides.
EXEMPLE 9
On utilise les polysaccharides produits par Enterobacter cloacae de La même manière que dans l'exemple
8 pour étudier leur activité d'accélération de la crois-
sance des plantes sur un radis Kaiware de la manière suivante. On disperse 36 semences de Kaiware Daikon sur un mat de résine synthétique placé dans un récipient de verre, et on ajoute au récipient 70 ml d'eau du robinet contenant les polysaccharides à des concentrations de 0,000025 à 0,25%, après quoi on cultive à 23 C pendant 4 jours dans l'obscurité, puis pendant 2 jours sous un éclairage de 5000 lux. Les résultats sont donnés dans le
tableau 10.
TABLEAU 10
Concentration Indice de Lon- Indice de Lon-
* des gueur de la gueur de La polysaccharides feuille et tige racine
(%) (%) (%)
0,25 118 212
0,025 120 201
0,0025 116 165
0,00025 106 121
0,000025 98 101
Note: n=36
Les indices moyens obtenus dans les mêmes condi-
tions que ci-dessus, excepté que l'on utilise de l'eau
exempte de polysaccharides, ont été pris comme étalons (100).
Le tableau 10 indique que dans l'hydroculture l'utilisation d'une eau contenant de 0,25 à 0,00025% des polysaccharides produits par Enterobacter cloacae accélère la croissance tant de la partie feuille et tige
que de la partie racine.
EXEMPLE 10
On plante 56 semences de pommes de terre (variété: Danshaku) dans une parcelle expérimentale (10,8 m 2/groupe) le 27 Février et on les cultive pendant deux mois. On dilue avec de l'eau les polysaccharides extracellulaires produits par Enterobacter cloacae de la même manière que dans l'exemple 8, aux concentrations indiquées ci-dessous, et on les pulvérise deux fois sur la surface des feuilles
dans la phase de bourgeonnement (le 28 Avril et le 8 Mai).
La culture est terminée le 29 Mai. Les résultats d'essai
sont donnés dans le tableau 11 ci-après.
TABLEAU 11
Concentration Rendement de Teneur en Groupe des polysaccha- la pomme de amidon N rides terre (?/ml) (q/Dlant) (%)
1 200 510,7 (110) 9,96 (117)
2 20 482,9 (104) 9,32 (109)
3 2,0 455,0 ( 98) 8,65 (101)
4 0 464,3 (100) 8,54 (100)
(Témoin) _ Comme on le voit clairement dans le tableau 11, le traitement de pulvérisation du feuillage par 200 y/ml à 20 y/ml des polysaccharides produits par Enterobacter
cloacae élève le rendement et la teneur en %amidon.
EXEMPLE 11
Dans un pot (17 cm x 60 cm x 15 cm), on introduit 9 kg de terre noire et on y plante 40 semences de chou de Chine (Brassica Rapa var. pervidis.) (variété: Misugi), et on les cultive dans les conditions naturelles du 15 Juin au 4 juillet. Au cours de la culture, le pot est arrosé avec les solutions aqueuses des polysaccharides produits par Enterobacter cloacae de la même manière que dans l'exemple 8, ayant les concentrations indiquées dans le tableau 12 ci-dessous. Les résultats sont donnés dans le
tableau 12.
TABLEAU 12
Groupe Concentration Taux Poids moyen des polysaccha- d'arrosage par plant N rides (y/ml) (kg/ha) (g)
1 200 5 5,76 +. 2,4(120)
2 100 2,5 5,38 + 1,8(112)
3 50 0,5 5,33 + 1,6(111)
4 0 - 4,80 + 1,6(100)
(Témoin) _ Note: n=40 Le tableau 12 montre que L'arrosage avec 0,5
kg/ha à 2,5 kg/ha des polysaccharides produits par Entero-
bacter cloacae élève le rendement à 111-120%.
Comme il a été décrit ci-dessus, la présente invention fournit un nouveau microorganisme ayant un effet
d'accélération de la croissance des plantes, et l'utilisa-
tion de ce microorganisme améliore le rendement des cultu-
res.
Claims (8)
1. Microorganisme appartenant au genre Entero-
bacter et ayant une activité d'accélération de La crois-
sance des plantes.
2. Microorganisme suivant la revendication 1, dans lequel ce microorganisme est Enterobacter cloacae.
3. Procédé de culture qui consiste à appliquer directement sur des semences un microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité
d'accélération de la croissance des plantes, ou des poly-
saccharides produits extra-cellulairement par celui-ci, et à semer sur la terre les semences ainsi traitées ou à mélanger ce microorganisme ou ces polysaccharides avec la terre et à semer les semences dans la terre ainsi traitée.
4. Procédé suivant la revendication 3, dans
lequel ce microorganisme est Enterobacter cloacae.
5. Procédé de culture qui comprend une hydroculture de jeunes plants ou de récoltes en utilisant un engrais liquide contenant un microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité
d'accélération de la croissance des plantes ou des poLy-
saccharides produits extra-cellulairement par ce micro-
organisme.
6. Procédé suivant la revendication 5, dans
lequel ce microorganisme est Enterobacter cloacae.
7. Procédé de culture qui consiste à pulvériser sur le feuillage des cultures une solution
aqueuse contenant des polysaccharides produits extra-
cellulairement par un microorganisme appartenant au genre Enterobacter et ayant une activité d'accélération de la
croissance des plantes.
8. Procédé suivant la revendication 7, dans lequel
ce microorganisme est Enterobacter cloacae.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61245399A JPS63102668A (ja) | 1986-10-17 | 1986-10-17 | 新規微生物 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FR2605184A1 true FR2605184A1 (fr) | 1988-04-22 |
FR2605184B1 FR2605184B1 (fr) | 1993-05-07 |
Family
ID=17133074
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FR8714304A Expired - Lifetime FR2605184B1 (fr) | 1986-10-17 | 1987-10-16 | Nouveau micro-organisme et procede de culture l'utilisant |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5360737A (fr) |
JP (1) | JPS63102668A (fr) |
CA (1) | CA1315723C (fr) |
DE (1) | DE3735364C2 (fr) |
FR (1) | FR2605184B1 (fr) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES2112700B1 (es) * | 1994-04-07 | 1998-12-01 | Miera Antonio Almaraz | Panel prefabricado para edificaciones y construcciones y sistema para su acoplamiento y montaje. |
KR100397793B1 (ko) * | 2000-07-28 | 2003-09-13 | 삼성전자주식회사 | 느릅나무로부터 분리된 신규의 미생물 및 그를 이용한항암 면역활성의 세포밖 당화합물의 제조방법 |
US7527941B1 (en) * | 2006-05-24 | 2009-05-05 | Clear Water Technologies, Inc. | Process for producing ethyl alcohol from cellulosic materials |
CA3092129C (fr) * | 2014-11-25 | 2022-05-10 | Colorado State University Research Foundation | Consortiums bacteriens synergiques permettant de mobiliser le phosphore du sol |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1987000194A1 (fr) * | 1985-07-02 | 1987-01-15 | Allelix, Inc. | Rhizobacteries de promotion de l'emersion |
-
1986
- 1986-10-17 JP JP61245399A patent/JPS63102668A/ja active Granted
-
1987
- 1987-10-15 CA CA000549337A patent/CA1315723C/fr not_active Expired - Lifetime
- 1987-10-16 FR FR8714304A patent/FR2605184B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1987-10-19 DE DE3735364A patent/DE3735364C2/de not_active Expired - Lifetime
-
1993
- 1993-09-02 US US08/115,667 patent/US5360737A/en not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1987000194A1 (fr) * | 1985-07-02 | 1987-01-15 | Allelix, Inc. | Rhizobacteries de promotion de l'emersion |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
AGRONOMIE TROPICALE, vol. 35, no. 4, 1980, pages 319-334, Paris, FR; W. BURGOS-LEON et al.: "Un cas de fatigue des sols induite par la culture du sorgho" * |
PLANT AND SOIL, vol. 103, 1987, pages 221-226, Dordrecht, NL; T. FUJII et al.: "Effect of inoculation with klebsiella oxytoca and Enterobacter cloacae on dinitrogen fixation by rice-bacteria associations" * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0430271B2 (fr) | 1992-05-21 |
DE3735364A1 (de) | 1988-05-11 |
CA1315723C (fr) | 1993-04-06 |
DE3735364C2 (de) | 1996-08-08 |
JPS63102668A (ja) | 1988-05-07 |
US5360737A (en) | 1994-11-01 |
FR2605184B1 (fr) | 1993-05-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Xu et al. | Effects of organic fertilizers and a microbial inoculant on leaf photosynthesis and fruit yield and quality of tomato plants | |
KR101086367B1 (ko) | 식물생장 촉진 활성을 갖는 신균주 바실러스 아리아바타이 ls9 및 이의 용도 | |
CN115340968B (zh) | 微刺假单胞菌的新用途及其方法、微刺假单胞菌21 4.1 9.2-14及其产品 | |
JP2829325B2 (ja) | 抗菌・抗線虫剤、植物細胞活性剤及びそのための微生物 | |
Devi et al. | Production of biofertilizer from fruit waste | |
CA2016101C (fr) | Amelioration de la croissance de semis de coniferes | |
CN110591937A (zh) | 防控番茄青枯病的拮抗放线菌和生物有机肥及方法、用途 | |
JP2005533118A (ja) | 環境安全性農業サプリメント | |
US20220248684A1 (en) | Methylobacterium sp. nov. strain, compositions comprising it, and its use as biostimulant and endophyte nitrogen-fixing bacterium | |
CN102382782A (zh) | 植酸酶微生物菌制剂及制备方法 | |
CN110229757B (zh) | 一株有效促进作物生长的桔绿木霉js84及其研制的生物有机肥 | |
JPS63501286A (ja) | 微生物性植物成長促進剤と収量増強剤 | |
EP0223624B1 (fr) | Procédé pour la culture de la jacinthe d'eau, plantes obtenues et leurs utilisations | |
FR2605184A1 (fr) | Nouveau micro-organisme et procede de culture l'utilisant | |
CN116121082A (zh) | 抗旱作用的烟管菌mr-8及其应用 | |
RU2186847C2 (ru) | Штамм микромицета тrichoderma viride, шт.23, обладающий фунгицидными свойствами для получения комплексного биопрепарата со свойствами фунгицида и бактериального удобрения, способ получения комплексного биопрепарата, комплексный биопрепарат со свойствами фунгицида и бактериального удобрения | |
Nandana et al. | Growth promotion in Chilli (Capsicum annuum L.) on inoculation with co-cultured Piriformospora indica and Pseudomonas fluorescens | |
RU2170510C2 (ru) | Способ получения биологического препарата "экофит" для защиты растений от фитопатогенов и повышения урожая | |
JPH107483A (ja) | 植物の栽培促進剤およびそれを用いた植物の栽培促進方法 | |
CN118126905B (zh) | 一种解木糖链霉菌、其生物菌剂及应用 | |
RU2795347C1 (ru) | Способ возделывания раннего картофеля при капельном орошении в условиях северо-западного прикаспия | |
JPH09157122A (ja) | 植物の栽培促進剤およびそれを用いた植物の栽培促進方法 | |
Sahur et al. | Isolation and characterization of indigenous rhizosphere bacteria producing gibberellic acid and indole acetic acid from local soybeans in South Sulawesi | |
JPH09194315A (ja) | 新規微生物並びにそれを用いた植物の発芽・生育促進剤および促進方法 | |
RU2161884C1 (ru) | Сообщество микроорганизмов для получения регулятора роста растений, способ получения регулятора и регулятор роста растений |