FR2522014A1 - Support pour cultures cellulaires, ensemble de culture comportant un tel support et procede pour cultiver des cellules en presence de ce support - Google Patents
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Abstract
SUPPORT POUR CULTURES CELLULAIRES, ENSEMBLE DE CULTURE COMPORTANT UN TEL SUPPORT ET PROCEDE POUR CULTIVER DES CELLULES EN PRESENCE DE CE SUPPORT. LE SUPPORT 1 EN ELASTOMERE SILICONE TRANSPARENT ET SOUPLE PRESENTE A SA SURFACE SUPERIEURE 2 UNE PLURALITE DE MICROCUPULES 3 EN FORME DE TRONC DE PYRAMIDE, MICROCUPULES DANS LESQUELLES SONT CULTIVEES LES CELLULES. CE SUPPORT N'A PAS BESOIN D'ETRE TRAITE EN SURFACE ET IL EST D'UN EMPLOI TRES COMMODE.
Description
La présente invention concerne le domaine des cultures cellulaires; elle a trait plus précisément à un nouveau support pour cultures cellulaires,à un ensemble comprenant un milieu de culture et un tel support ainsi qu'à un procédé pour cultiver des cellules en présence dudit support.
I1 est bien connu d'utiliser pour la croissance cellulaire,des supports,qui sont habituellement en verre ou en matière plastique.
A titre d'exemple on peut mentionner les plaques pour culture connues sous la désignation commerciale "FALCON" et qui ont fait par exemple l'objet du brevet US 3.472.369.
On peut également citer les plaques dites Greiner-
Terasaki",les bottes de Pétri,les boites de Roux en verre borosilicate,et autres moyens connus de l'homme de l'art pour cultiver des cellules.
Terasaki",les bottes de Pétri,les boites de Roux en verre borosilicate,et autres moyens connus de l'homme de l'art pour cultiver des cellules.
Tous ces supports sont des supports autonomes rigides.
On connaît également des microsupports constitués de billes de dextrane.
Par ailleurs,la demande de brevet FR 77 24 421 (publication nO 2.400.063)au nom de l'institut Pasteur décrit l'application sur des supports de base d'une solution d'un plastique thermodurcissable pour obtenir un revêtement rigide.
Tous les supports selon l'art antérieur nécessitent un traitement particulier pour les rendre non toxiques et par cdnséquent aptes à la croissance cellulaire. I1 s'agit soit d'un traitement de surface soit d'un traitement en profondeur,par exemple,dans le cas de supports en matière plastique.
Ces traitements sont aléatoires,la qualité d'un bt à un autre varie et de nombreuses incertitudes subsistent au cours d'une manipulation, incertitudes qui ne sont pas tolérables car les manipulations sont longues et coûteuses.
En outre tous les supports connus tant en raison de leur matière constitutive que du cot du traitement pour les rendre non toxiques sont d'un prix de revient très élevé.
La présente invention propose un nouveau support pour cultures cellulaires qui n'est pas toxique et qui supprime donc le besoin d'effectuer soit un traitement de surface, soit un traitement en profondeur.
Le support selon la présente invention est d'un prix de revient extrêmement bas et permet une grande souplesse d'utilisation car sa forme et sa configuration peuvent varier à volonté.
Conformément à la présente invention,le support pour cultures cellulaires comprend un élastomère silicone transparent et souple.
En général,et selon un mode préféré de réalisation, l'élastomère silicone est du type bicomposant. I1 est alors formé après mise en présence des deux composants.
Le rapport en parties en poids entre les deux composants de l'élastomère silicone transparent et souple se situe alors dans la gamme de 85 à 95 parties pour 5 à 15 parties du premier composant par rapport au second.
Le produit préféré selon la présente invention est un produit du commerce connu sous la dénomination Rhodorsil
RTV 141 (Rhône Poulenc Industries France)constitué de deux composants savoir:
Rhodorsil RTV 141 A et Rhodorsil RTV 141 B.
RTV 141 (Rhône Poulenc Industries France)constitué de deux composants savoir:
Rhodorsil RTV 141 A et Rhodorsil RTV 141 B.
Les caractéristiques de ce produit sont les suivantes: -1- AVANT CATALYSE RHODORSIL
RTV 141 A RTV 141 B
Aspect Liquide visqueux
Couleur transparent
Densité à 250C,environ 1,0 1,020 (norme ASTH D 792)
Viscosité à 250C, mPa.s, environ 3000 500 -2-CATALYSE
RHODORSIL RTV 141 A 100 parties
RHODORSIL RTV 141 B 10 parties
Durée d'utilisation du mélange catalysé à 250C,environ 4 heures
Temps après lequel l'élastomère (ou l'objet)est manipulable,environ 24 heures -3-APRES RETICULATION
Mesures effectuées sur film de 2 mm d'épaisseur après réticulation de 24 heures à 250C.
RTV 141 A RTV 141 B
Aspect Liquide visqueux
Couleur transparent
Densité à 250C,environ 1,0 1,020 (norme ASTH D 792)
Viscosité à 250C, mPa.s, environ 3000 500 -2-CATALYSE
RHODORSIL RTV 141 A 100 parties
RHODORSIL RTV 141 B 10 parties
Durée d'utilisation du mélange catalysé à 250C,environ 4 heures
Temps après lequel l'élastomère (ou l'objet)est manipulable,environ 24 heures -3-APRES RETICULATION
Mesures effectuées sur film de 2 mm d'épaisseur après réticulation de 24 heures à 250C.
3.1 Propriétés mécaniques
Dureté Shore A,points, environ 45 (Norme AFNOR T 46 003)
Résistance à la rupture,MPa,environ 6,0 (Norme AFNOR T 46 002)
Allongement à la rupture,%,environ 130 (Norme AFNOR T 46 002) 3.2 Propriétés physiques
Retrait linéaire, %,environ de l'ordre de 0,1
Coefficient de dilatation cubique, environ 9.10
Conductibilité thermique,W/m.K, environ 0,16
Température de fragilité,oC,environ (Norme ASTM D 746) -100
Tenue thermique en pointe, 0environ +200
I1 va sans dire que l'exemple ci-dessus n'est nullement limitatif et qu'on peut utiliser,aux fins de l'invention des élastomères de silicone multi-composants,autres que les systèmes à deux composants précités.
Dureté Shore A,points, environ 45 (Norme AFNOR T 46 003)
Résistance à la rupture,MPa,environ 6,0 (Norme AFNOR T 46 002)
Allongement à la rupture,%,environ 130 (Norme AFNOR T 46 002) 3.2 Propriétés physiques
Retrait linéaire, %,environ de l'ordre de 0,1
Coefficient de dilatation cubique, environ 9.10
Conductibilité thermique,W/m.K, environ 0,16
Température de fragilité,oC,environ (Norme ASTM D 746) -100
Tenue thermique en pointe, 0environ +200
I1 va sans dire que l'exemple ci-dessus n'est nullement limitatif et qu'on peut utiliser,aux fins de l'invention des élastomères de silicone multi-composants,autres que les systèmes à deux composants précités.
Le support de la présente invention,constitué dudit élastomère silicone peut être moulé à volonté dans tous moules appropriés.
Dans un mode de réalisation,il se présente sous la forme d'une plaque ou d'un film.
Selon un autre mode de réalisation il se présente sous forme de billes.
Lorsque le support est sous la forme d'une plaque ou d'un film dont la configuration peut varier à volonté,la surface supérieure peut être lisse.
Toutefois selon un mode préféré de réalisation la surface supérieure de la plaque est munie d'une pluralité de microcupules.
Chaque microcupule présente,de préférence,une forme en tronc de pyramide évasé.
La dimension des côtés de chaque microcupule varie sensiblement dans la gamme de 10 microns à 1,5 mm d'une façon préférée.
Le support est appliqué soit comme revêtement amovible non toxique dans un support de base constitué d'un substrat de verre,d'une quelconque matière plastique ou analogue soit en tant que support de base non toxique.
La présente invention est également relative à un ensemble pour cultures cellulaires comprenant a) un milieu de culture connu en soi et adapté aux cellules à cultiver et b) un support tel que ci-dessus défini.
Enfin la présente invention se rapporte aussi à un procédé de culture cellulaire en présence d'un tel support pour les cellules et d'un milieu de culture.
Divers avantages et caractéristiques de la présente invention ressortiront de la description détaillée ci-après faite en regard des dessins annexés sur lesquels:
Fig.l est une vue en perspective d'une première forme de réalisation d'un support selon la présente invention dont la surface supérieure est munie d'une pluralité de microcupules;
Fig.2 est une vue analogue à celle de la figure 1 illustrant un support dont la surface supérieure présente des microcupules de plus grandes dimensions que celles de la figure 1;
Fig.3 illustre un support selon la présente invention dont la surface supérieure est lisse;
Fig.4 représente très schématiquement un support selon la présente invention sous forme de billes;
Fig.5 montre à échelle agrandie et en coupe la structure de microcupules préférées ayant une forme en tronc de pyramide.
Fig.l est une vue en perspective d'une première forme de réalisation d'un support selon la présente invention dont la surface supérieure est munie d'une pluralité de microcupules;
Fig.2 est une vue analogue à celle de la figure 1 illustrant un support dont la surface supérieure présente des microcupules de plus grandes dimensions que celles de la figure 1;
Fig.3 illustre un support selon la présente invention dont la surface supérieure est lisse;
Fig.4 représente très schématiquement un support selon la présente invention sous forme de billes;
Fig.5 montre à échelle agrandie et en coupe la structure de microcupules préférées ayant une forme en tronc de pyramide.
Aux dessins annexés,on a représenté,à titre d'exemples non limitatifs quelques modes de réalisation du support selon la présente invention qui est constitué d'un élastomère silicone transparent et souple.
Le support 1 de la figure 1 est un microsupport dont la surface supérieure 2 présente une pluralité de microcupules 3. Dans l'exemple considéré il est prévu 400 microcupules contenus dans un carré sensiblement de 3 cm de côté. Les microcupules 3 ont la forme illustrée sur la figure 5 c'est-àdire une forme en tronc de pyramide.
Le support 1 selon la figure 2 est un support de plus grande dimension schématisé sous forme d'un rectangle et dont la surface supérieure 2 renferme,par exemple, 240 microcupules 3 de plus grandes dimensions que celles de figure 1 mais qui ont également une forme en tronc de pyramide.
La figure 3 illustre un support 1 dont la surface supérieure 2 est lisse. Un tel support se présente sous forme d'un film souple qui sera utilisé tel quel ou qui sera appliqué dans un support de base connu tel que,par exemple, une botte de Pétri.
La figure 4 illustre un support 1 sous forme de billes 4.
L'invention est encore illustrée par les exemples non limitatifs suivants:
EXEMPLE 1
Obtention d'un support à surface lisse.
EXEMPLE 1
Obtention d'un support à surface lisse.
On mélange à la main 90 parties de Rhodorsil
RTV 141 A avec 10 parties de Rhodorsil RTV 141 B. Ces deux produits sont commercialisés par la Société Rhône Poulenc
Industries France. Ils sont d'un aspect sirupeux. Le mélange terminé,on le dégaze sous vide d'une manière classique.
RTV 141 A avec 10 parties de Rhodorsil RTV 141 B. Ces deux produits sont commercialisés par la Société Rhône Poulenc
Industries France. Ils sont d'un aspect sirupeux. Le mélange terminé,on le dégaze sous vide d'une manière classique.
On coule ensuite ledit mélange à température ambiante dans n'importe quel substrat approprié de forme quelconque.
Dans le présent exemple on a utilisé une botte de Pétri.
On accélère la polymérisation en plaçant ledit mélange dans une étuve portée à 600C environ,on retire le produit de l'étuve et on l'introduit pendant 2 heures dans une autre étuve dont la température est de 1600C. Le produit obtenu se présente sous forme d'un film ayant une épaisseur de quelques millimètres. Un tel film,illustré très schématiquement sur la figure 3 peut etre utilisé directement comme support pour les cultures cellulaires ou bien il peut reposer sur le fond d'un support-base tel qu'une boîte de Pétri. Ce film est souple et sa surface supérieure est lisse. Grâce à son interchangeabilité dans le cas d'une utilisation dans un supportbase on comprend aisément qu'il est d'un prix de revient très faible.Le support ainsi obtenu n'est pas toxique et ne nécessite aucun traitement particulier. I1 est apte en tant que tel à la croissance cellulaire.
EXEMPLE 1A Obtention d'un support hydrophile
Pour des cellules nécessitant impérativement un support hydrophile,on peut compléter la préparation du support tel que défini dans l'exemple 1 ci-dessus par un traitement avec un agent chimique provoquant l'apparition de groupements hydrophiles à la surface dudit support.
Pour des cellules nécessitant impérativement un support hydrophile,on peut compléter la préparation du support tel que défini dans l'exemple 1 ci-dessus par un traitement avec un agent chimique provoquant l'apparition de groupements hydrophiles à la surface dudit support.
A titre d'exemple,le support tel que préparé à l'exemple 1 a été traité par de l'acide chlorhydrique 2 N à température ambiante pendant 48 heures. (La température,la durée du traitement et la normalité de l'acide peuvent varier en fonction de la surface à traiter).
On a ensemencé des bottes de Pétri traitées selon le procédé décrit ci-après avec 104 cellules/ml.(Les cellules utilisées étaient des cellules L de souris). On a ajouté du milieu de culture RPMI 1640 auquel on additionne 10% de sérum de veau foetal. (Le milieu RPMI 1640 est vendu par
CIBCO. I1 a été décrit dans 3.A.M. A.1967199,pages 519 à 524 par HOORE G.E., GERNER R.E. et al).
CIBCO. I1 a été décrit dans 3.A.M. A.1967199,pages 519 à 524 par HOORE G.E., GERNER R.E. et al).
Les bottes de Pétri sont placées à l'étuve à 370C.
La confluence a été obtenue en 4 jours de manière identique avec les cellules placées dans des bottes plastiques de
Falcon. Une expérience préliminaire a montré que les MRC5 (cellules humaines normales)peuvent être multipliées sur ce support modifié par le traitement avec HC1.
Falcon. Une expérience préliminaire a montré que les MRC5 (cellules humaines normales)peuvent être multipliées sur ce support modifié par le traitement avec HC1.
EXEMPLE 2
Obtention d'un support muni d'une pluralité de microcupules.
Obtention d'un support muni d'une pluralité de microcupules.
On prépare un moule mère soit métallique soit en matière plastique rigide à partir duquel on obtient à volonté différentes matrices secondaires comme cela est bien connu dans la technique.
On mélange à la main comme dans l'exemple 1 ci-dessus 90 parties en poids de Rhodorsil RTV 141 A avec 10 parties en poids de Rhodorsil RTV 141 B.
On coule le produit dans le moule constitué par une matrice secondaire. On dégaze sous vide de façon habituelle dans une enceinte à vide pendant 5 à 10 minutes. On repasse ensuite le produit à l'étuve à 600C pendant 2 à 3 heures afin qu'il polymérise. On démoule. Pour bien terminer la polymérisation on le repasse encore au four à 1600C. Le produit est exempt de résidu libre et est stérilisé en même temps. I1 se présente sous forme d'une plaque souple de dimensions variables et fonction du moule utilisé. La surface supérieure de la plaque est pourvue d'une pluralité de microcupules dont le nombre et la dimension peuvent varier à volonté selon le moule de base utilisé. Comme on l'a déjà mentionné on préfère,selon la présente invention,que les microcupules présentent une forme en tronc de pyramide.
Toutefois, il est possible que lesdits microcupules présentent d'autres formes géométriques par exemple cylindriques, en forme de troncs de cône et analogues. De préférence encore la densité des microcupules sur la surface supérieure de la plaque est très importante et couvre toute ladite surface supérieure. I1 n'est cependant pas exclu de réaliser une plaque pourvue de microcupules à emplacements déterminés et choisis au préalable.
La dimension des microcupules est fonction du moule mère utilisé. Dans le cas d'un moule métallique la dimension limite susceptible d'être obtenue est de l'ordre d'une dizaine de microns,tandis que dans le cas d'un moule mère en matière plastique la dimension limite des microcupules obte nues est de l'ordre du millimètre. Ainsi la dimension d'un côté varie de 0,5 à 1,5 mm.
Le support ainsi obtenu qui dans le cas d'une très petite dimension de la plaque est un micro-support peut être utilisé directement comme support non toxique pour cultures cellulaires.
A cet effet,on introduit dans ledit support,comme cela est habituel,le milieu à l'aide d'une microseringue.
EXEMPLE 3
Obtention d'un support sous forme de billes.
Obtention d'un support sous forme de billes.
1) On reprend le mode opératoire selon l'exemple 2 si ce n'est que l'élastomère silicone souple final est moulé dans deux cavités hémisphériques pourvues d'un évent de libération des gaz. Les billes obtenues ont une dimension variant à volonté fonction des dimensions des cavités de moulage.
2) Des billes de petites dimensions (diamètre compris entre 0,1 micron et quelques millimètres)sont obtenues par suspension du composé élastomère silicone préparé selon l'exemple 2,dans une solution aqueuse sous agitation.Le contrôle de la vitesse d'agitation et d'injection du composé permet d'obtenir des billes dans une gamme de taille choisie. La polymérisation s'effectue directement dans la solution aqueuse chauffée.
EXEMPLE 4
Application directe du support selon l'exemple 2 sans l'utilisation de microseringues.
Application directe du support selon l'exemple 2 sans l'utilisation de microseringues.
Le support selon l'exemple 2 est autoclavé à l'envers dans de l'eau distillée c'est-à-dire que sa surface supérieure est tournée vers le bas. On fait le vide dans l'autoclave,on admet de la vapeur pendant 20 minutes,on fait le vide pendant 20 minutes en produisant une évaporation de liquide,les microcupules sont chargées d'eau,on fait un rinçage du support avec le milieu de culture de façon à faire un échange avec l'eau et éviter les problèmes de bulles d'air,directement sur le support lavé avec le milieu de culture. On place les cellules qui sont dans le milieu de culture,elles se répartissent au hasard. Après trois ou quatre jours de culture,on observe des colonies dans chaque microcupule.
EXEMPLE 5
Application du support selon la figure 3 pour cultiver des macrophages péritonéaux.
Application du support selon la figure 3 pour cultiver des macrophages péritonéaux.
On recouvre le fond de bottes de Petri en verre au borosilicate d'un film circulaire de 3 mm d'épaisseur selon la figure 3 et on stérilise en chauffant 2 heures à 16O0C.
On prépare des cellules péritonéales à partir de souris souche C57B116 2 (femelles).
On rince avec du liquide Hanks (5 ml).
On effectue un lavage à 1000 tlminutel40C/l0 minutes.
On effectue ensuite une reprise du culot de cellules avec du milieu Eagle contenant 5% de sérum de veau foetal.
On a 5 x 106 -cellulesibottes dans 20 ml de milieu.
On constate un étalement très convenable des macrophages.
EXEMPLE 6
Application du support selon la figure 3 pour
A-étalement des macrophages
B-transformation des lymphocytes péritonéaux avec la concanavaline A
A- On prépare comme dans l'exemple 5 des bottes de
Pétri dans lesquelles on place le film support en élastomère silicone transparent et souple.
Application du support selon la figure 3 pour
A-étalement des macrophages
B-transformation des lymphocytes péritonéaux avec la concanavaline A
A- On prépare comme dans l'exemple 5 des bottes de
Pétri dans lesquelles on place le film support en élastomère silicone transparent et souple.
On prélève des cellules péritonéales de souris souche C57 81/6 2 ,on rince avec du liquide de Hanks à raison de 5 ml, on effectue un lavage et on reprend le culot avec du milieu Eagle renfermant 5% de sérum de veau.
La mise en culture est effectuée sur la base de 8 x 104 cellules/cm2 avec une densité analogue en surface
-en botte "Falcon"
-en botte Pétri avec le revêtement de film support selon l'invention.
-en botte "Falcon"
-en botte Pétri avec le revêtement de film support selon l'invention.
On constate après 6 heures un étalement identique des macrophages.
B- transformation des lymphocytes péritonéaux en présence de concanavaline A (3 sg/ml final)
application : 12,5 ml sur botte de Pétri + film support de l'invention
5 ml sur boîte Falcon au taux de 5.105 cellules/ml.
application : 12,5 ml sur botte de Pétri + film support de l'invention
5 ml sur boîte Falcon au taux de 5.105 cellules/ml.
Les résultats obtenus sont les suivants:
Botte Falcon Support de l'invention
Quantité 2,5 x 106 cellules 6,25 x 106 cellules
Cellules surnageantes à 48 h 4,5 x 105 cellules 1,43 x 106 cellules
tl8X) (23%)
Tapis adhérent 6,6 x î05 cellules 1,12 x 106 cellules 48 h (après 0,01% EDTA (26%) (18%)
60 min à 4 C)
Nigrosine + 3% 67%
Pourcentage de cellules blastiques après coloration 80 à 85% 85% avec mitoses
EXEMPLE 7
Numération des cellules précurseurs (colonie)avec le support selon la figure 2 renfermant 240 microcupules par rapport à une plaque Greiner-Terasaki.
Botte Falcon Support de l'invention
Quantité 2,5 x 106 cellules 6,25 x 106 cellules
Cellules surnageantes à 48 h 4,5 x 105 cellules 1,43 x 106 cellules
tl8X) (23%)
Tapis adhérent 6,6 x î05 cellules 1,12 x 106 cellules 48 h (après 0,01% EDTA (26%) (18%)
60 min à 4 C)
Nigrosine + 3% 67%
Pourcentage de cellules blastiques après coloration 80 à 85% 85% avec mitoses
EXEMPLE 7
Numération des cellules précurseurs (colonie)avec le support selon la figure 2 renfermant 240 microcupules par rapport à une plaque Greiner-Terasaki.
On prélève des cellules de moelle C57B1/6 9 avec suspension à 1,03 x 108 cellules/ml.
On effectue une mise en culture en milieu:
RPMI 1640 8 ml
BSA sérum albumine bovine
10% 1 ml
Sérum de veau foetal
inactivé 1 ml mercapto-éthanol
(5 x 10 3M) 100 l
La suspension des cellules est de 3,2 x 104 cellulesimi on distribue 10 l dans chaque microcupule du support de l'invention et 10 rl dans chaque godet de la plaque Greiner
Terasaki.
RPMI 1640 8 ml
BSA sérum albumine bovine
10% 1 ml
Sérum de veau foetal
inactivé 1 ml mercapto-éthanol
(5 x 10 3M) 100 l
La suspension des cellules est de 3,2 x 104 cellulesimi on distribue 10 l dans chaque microcupule du support de l'invention et 10 rl dans chaque godet de la plaque Greiner
Terasaki.
On effectue une lecture au 7ème jour concernant le nombre de microcupules et de godets positifs en présence de
CSF (Facteur stimulant les colonies, en l'espèce il s'agit de sérum de souris qui a été prélevé 3 heures après que les souris aient reçu 5 fi g d'endotoxine ou LPS par voie sous-cutanée).
CSF (Facteur stimulant les colonies, en l'espèce il s'agit de sérum de souris qui a été prélevé 3 heures après que les souris aient reçu 5 fi g d'endotoxine ou LPS par voie sous-cutanée).
On note la présence de colonies de cellules comptant plus de 50 cellules en moyenne 500 à 2000
Les résultats obtenus sont les suivants:
plaque Greiner-Terasaki :14+ / 40
support selon la figure 2 :74+ / 200 14+/40 signifie 14 positifs sur 40 godets ensemencés; il s'agit d'une technique de numération simple qui consiste à compter les godets ou les microcupules positifs.
Les résultats obtenus sont les suivants:
plaque Greiner-Terasaki :14+ / 40
support selon la figure 2 :74+ / 200 14+/40 signifie 14 positifs sur 40 godets ensemencés; il s'agit d'une technique de numération simple qui consiste à compter les godets ou les microcupules positifs.
EXEMPLE 8
Numération des colonies avec le support selon la figure 1 et une plaque Greiner-Terasaki.
Numération des colonies avec le support selon la figure 1 et une plaque Greiner-Terasaki.
On prélève des cellules de moelle de souris
C57 Bol/6 2 . On ajuste en milieu RPMI 1640 ,BSA, SVF (sérum foetal de veau) et p-mercaptoéthanol en présence de
CSF (voir exemple 7).
C57 Bol/6 2 . On ajuste en milieu RPMI 1640 ,BSA, SVF (sérum foetal de veau) et p-mercaptoéthanol en présence de
CSF (voir exemple 7).
Le support selon la figure 1 renfermant 400 microcupules est autoclavé dans l'eau distillée,sous une boîte de
Pétri en verre de façon à obtenir un bon mouillage dudit support et on le rince avec le milieu de culture comme indiqué dans l'exemple 4. A cet effet on réalise un aSustement des cellules à 1,32 x 105 cellules /ml et à 4,8 x 104 cellules/ml.
Pétri en verre de façon à obtenir un bon mouillage dudit support et on le rince avec le milieu de culture comme indiqué dans l'exemple 4. A cet effet on réalise un aSustement des cellules à 1,32 x 105 cellules /ml et à 4,8 x 104 cellules/ml.
On place 1 ml de suspension cellulaire sur ledit support et on répartit les cellules dans le fond des microcupules.
La culture est mise en oeuvre durant 7 jours. Dans le même temps on réalise une dilution des cellules de façon à faire une culture sur une plaque de Greiner-Terasaki à 480 cellules/godet.
Résultats obtenus
Support de l'invention à 4,8 x 104 cellules/ml :
(130 cellules/microcupules) 308 /366
Support de l'invention à 1,32 x 105 cellules/ml
(330 cellules/microcupule) 254-/391
Plaque Terasaki-Greiner 20 /49
4,8 x 104 cellules/ml 27-/50
(480 cellules/godet)
Conclusion
On constate une excellente efficacité de clonage avec le support de l'invention sensiblement identique à celle d'une plaque Greiner-Terasaki alors que la concentration des cellules est plus faible.
Support de l'invention à 4,8 x 104 cellules/ml :
(130 cellules/microcupules) 308 /366
Support de l'invention à 1,32 x 105 cellules/ml
(330 cellules/microcupule) 254-/391
Plaque Terasaki-Greiner 20 /49
4,8 x 104 cellules/ml 27-/50
(480 cellules/godet)
Conclusion
On constate une excellente efficacité de clonage avec le support de l'invention sensiblement identique à celle d'une plaque Greiner-Terasaki alors que la concentration des cellules est plus faible.
La présente invention fournit donc un support pour cultures cellulaires d'un prix de revient extrêmement faible et exempt de contamination.
Selon un mode tel que celui de la figure 3,il suffit de placer ce support dans une botte de verre.
Il importe aussi d'observer que la forme en tronc de pyramide conduisant à une arête vive permet aux cellules de tomber dans le fond avec un mouvement limité,sans brassage,ce qui pourrait expliquer que de telles microcupules soient des sièges de développement privilégié des cultures.
Au sens de la présente invention,le mot film signifie une pellicule autonome d'épaisseur variable et de toute configuration qui n'adhère pas sur le substrat sur lequel elle repose et qui est par conséquent amovible.
L'invention n'est pas limitée aux modes de réalisation représentés et décrits en détails et elle englobe les équivalents techniques.
Claims (15)
- -REVENDICATIONSl.Support pour cultures cellulaires,caractérisé en ce qu'il comprend un élastomère silicone transparent et souple.
- 2.Support selon la revendication l,caractérisé en ce qu'il comprend un élastomère silicone à deux composants.
- 3.Support selon la revendication 2,caractérisé en ce que le rapport en parties en poids entre les deux composants de l'élastomère silicone transparent et souple se situe dans la gamme de 85 à 95 parties pour 5 à 15 parties du premier composant par rapport au second.
- 4.Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 3,caractérisé en ce que l'élastomère présente les caractéristiques ci-après: (a) avant catalyseRHODORSIL à deux composants
Mesures effectuées sur film de 2 mm d'épaisseur après réticulation de 24 heures à 250C.Temps après lequel l'élastomère (ou l'obJet)est manipulable,environ 24 heures (c) après réticulationDurée d'utilisation du mélange catalysé à 250C ,environ 4 heures<tb> (b) catalyse "Rhodorsil" RTV 141 A 100 parties "Rhodorsil" RTV 141 B 10 parties<tb> mPa.s, <SEP> environ <SEP> 3000 <SEP> 500<tb> Viscosité <SEP> à <SEP> 250C, <SEP><tb> (norme <SEP> ASTM <SEP> D <SEP> 792)<tb> Densité <SEP> à <SEP> 250C <SEP> environ <SEP> 1,0 <SEP> 1,020<tb> Couleur <SEP> s <SEP> Transparent<tb> Aspect <SEP> . <SEP> Liquide <SEP> visqueux<tb> <SEP> s <SEP> RTV <SEP> 141 <SEP> A <SEP> RTV <SEP> 141 <SEP> BTenue thermique en pointe, 0environ + 200Température de fragilité, C,environ (Norme ASTM D 746) - 100Conductibilité thermique,W/m.K, environ 0,16Coefficient de dilatation cubique environ 9.10-4Retrait linéaire,X,environ de l'ordre de 0,1Allongement à la rupture,%, environ (Norme AFNOR T 46 002) 130 bc)-2 propriétés physiquesDureté Shore A,points,environ (8orme AFNOB T 46 003) 45 Résistance a la rupture,MPa,environ, (Norme AFNOR T 46 002) 6,0(c)-l- propriétés mécaniques - 5.Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 4,caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme d'une plaque ou d'un film dont la configuration peut varier à volonté.
- 6.,Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que la surface suprieure de la plaque ou du filme est lisse.
- 7. Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 6,caractérisé en ce que la surface supérieure de la plaque, est munie d'une pluralité de microcupules.
- 8. Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que chaque microcupule présente une forme en tronc de pyramide évasé.
- 9. Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 caractérisé en ce que la dimension des côtés de chaque microcupule est compris dans la gamme de 10 microns à l,Smm.
- 10. Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 4,caractérisé en ce qu'il se présente sous forme de billes.
- 11. Support selon l'une quelconque des revendications 1 à lO,caractérisé en ce qu'il comprend,en outre,un support de base constitué d'un quelconque substrat en verre,en matière plastique ou analogue.
- 12.Support selon l'une quelconque des revendications 1 à lO,caractérisé en ce qu'il est traité avec un agent chimique pour rendre sa surface hydrophile.
- 13. Support selon la revendication 12,caractérisé en ce que l'agent chimique est de l'acide chlorhydrique;
- 14. Ensemble pour cultures cellulaires comprenant:a) un milieu de culture connu en soi et adapté aux cellules à cultiver et b) un support selon l'une quelconque des revendications 1 à 13.
- 15. Procédé pour cultiver des cellules en présence d'un support et d'un milieu de culture,caractérisé en ce que le support est tel que selon l'une quelconque des revendications 1 à 13.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8203159A FR2522014A1 (fr) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | Support pour cultures cellulaires, ensemble de culture comportant un tel support et procede pour cultiver des cellules en presence de ce support |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8203159A FR2522014A1 (fr) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | Support pour cultures cellulaires, ensemble de culture comportant un tel support et procede pour cultiver des cellules en presence de ce support |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| FR2522014A1 true FR2522014A1 (fr) | 1983-08-26 |
| FR2522014B1 FR2522014B1 (fr) | 1985-05-17 |
Family
ID=9271353
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| FR8203159A Granted FR2522014A1 (fr) | 1982-02-25 | 1982-02-25 | Support pour cultures cellulaires, ensemble de culture comportant un tel support et procede pour cultiver des cellules en presence de ce support |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| FR (1) | FR2522014A1 (fr) |
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1982
- 1982-02-25 FR FR8203159A patent/FR2522014A1/fr active Granted
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| ST | Notification of lapse |