FI60316B - APPARATUS AND EQUIPMENT FOR THE CONSTRUCTION OF ANTIBIOTICS - Google Patents
APPARATUS AND EQUIPMENT FOR THE CONSTRUCTION OF ANTIBIOTICS Download PDFInfo
- Publication number
- FI60316B FI60316B FI762861A FI762861A FI60316B FI 60316 B FI60316 B FI 60316B FI 762861 A FI762861 A FI 762861A FI 762861 A FI762861 A FI 762861A FI 60316 B FI60316 B FI 60316B
- Authority
- FI
- Finland
- Prior art keywords
- container according
- blocks
- filling
- cuvette
- solution
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
@ SU OM I —FI N LAN D patenttijulkaisu—patentskrift 6031 6 IT © © Kv.lk7lnt.CI? G 01 N 21/03 φ © Patenttihakemus — Patentansökning 762861 ® @ Hakemispäivä — Ansöknlngsdag O7.lO.76 @ Alkupäivä —Giltlghetsdag 13.08.73 ® Tullut julkiseksi — Blivlt offentllg 07.10.76 @ Nähtäväkslpanon ja kuul.julkaisun pvm.—@ SU OM I —FI N LAN D Patent Publication — patentkrift 6031 6 IT © © Kv.lk7lnt.CI? G 01 N 21/03 φ © Patent application - Patentansökning 762861 ® @ Application date - Ansöknlngsdag O7.lO.76 @ Start date —Giltlghetsdag 13.08.73 ® Published to the public - Blivlt offentllg 07.10.76 @ Date of publication and publication.
Ansökan utlagd och utl.skriften publicerad 31.08.8lAnsökan utlagd och utl.skriften publicerad 31.08.8l
Patentti- ja rekisterihallitus © Patentti myönnetty — Patent meddelat 10.12.81National Board of Patents and Registration © Patent granted - Patent meddelat 10.12.81
Patent- och registerstyrelsen ΛPatents and registration Λ
Pyydetty etuoikeus — Begärd prioritet 18.08.72 USA(US) 2819^6 (73) Warner-Lambert Company, 201 Tabor Road, Morris Plains, New Jersey O795O, USA(US) (72) Julius Praglin, East Lyme, Conn., David Kenneth Longhenry, East Lyme,Claim claimed - Begärd priority 18.08.72 USA (US) 2819 ^ 6 (73) Warner-Lambert Company, 201 Tabor Road, Morris Plains, New Jersey O795O, USA (US) (72) Julius Praglin, East Lyme, Conn., David Kenneth Longhenry, East Lyme,
Conn., Alan Clarkston Curtiss, Old Lyme, Conn., James Edward McKie,Conn., Alan Clarkston Curtiss, Old Lyme, Conn., James Edward McKie,
Jr., Ledyard, Conn., USA(US) (7*0 Oy Kolster Ab (5*0 Menetelmä ja laite antibioottien herkkyyden määrittämiseksi - Förfarande och apparatur för bestämning av antibioters känslighet (62) Jakamalla erotettu hakemuksesta 2537/73 (patentti 53591) -Avdelad frän ansökan 2537/73 (patent 53591)Jr., Ledyard, Conn., USA (US) (7 * 0 Oy Kolster Ab (5 * 0 Method and apparatus for determining the susceptibility of antibiotics - Förfarande och apparatur för bestämning av antibioters känslighet (62) Separated from application 2537/73 (patent 53591 ) -Avdelad frän trap 2537/73 (patent 53591)
Keksinnön kohteena on säiliö, joka on tarkoitettu käytettäväksi jaettaessa liuosta useisiin identtisiin näytteisiin, joihin lisätään eri reagensseja, joiden kunkin reaktio liuoksen kanssa on tutkittava, ja joka käsittää täyttölohkoja, joihin jaettava liuos sijoitetaan tasaisesti niihin jaettuna ja joista se siirretään vastaaviin koelohkoihin.The invention relates to a container for use in dispensing a solution into a plurality of identical samples to which different reagents are added, each of which must be tested for reaction with the solution, comprising filling blocks in which the dispensed solution is evenly distributed and transferred to respective test blocks.
Sairaaloiden kliinisillä laboratorioilla on ollut ongelmia määritettäessä antibiootti, jolle potilaasta eristetty tautia synnyttävä bakteeri on herkin. Kirby-Bauerin menetelmässä, joka on kuvattu "Disc Suspeptibility Testing"-otsikoidussa artikkelissa julkaisussa "Hospital Practice", February 1970, Voi. 5, n:o 2, sivut 91-100, mitataan estovyöhyke bakteeria sisältävässä hyytelössä olevan antibiootti-levyn eli -pyörylän ympäriltä. Tähän kuluu noin yksi vuorokausi ja se vaatii melkoisesti käsittelyä, työaikaa ja altistamista tautia synnyttävälle bakteerille. Pitkälle automatisoitu hiukkaslaskentajärjestelmä on kuvattu julkaisussa "Applied Microbiology", December 1971, sivut 98Ο-986, Se antaa tulokset parissa kolmessa tunnissa, mutta on äärimmäisen monimutkainen ja kallis ja tappaa bakteerit estäen siten toiston. Valoa hajottavia lasersädefotometreja on myös käytetty pyörivällä ilmaisimella saadun hajaantumiskäyrän muutosten tutkimiseen bakteerien antibioottiherkkyyden määrittämiseksi. Tällaiset järjestelmät ja laitteet perustuvat solun koon ja muodon 2 60316 muutoksiin eivätkä kasvun estoon (jolla voidaan tehdä päteviä johtopäätöksiä bakteerien herkkyydestä), sekä vaativat erittäin paljon taitoa kysyvän analyysin ja ovat suhteellisen kalliita, Tämän keksinnön tavoitteena on saada aikaan suhteellisen yksinkertainen ja huokea lokerosäiliö, joka on sopiva antibioottiherkkyystutkimukseen ja joka ei ainoastaan perustu antibioottiherkkyystutkimuksen hyväksytyille ja oikeiksi osoitetuille periaatteille, vaan on myös nopea, tehokas, taloudellinen ja yksinkertainen käyttää.Hospital clinical laboratories have had problems identifying the antibiotic to which the disease-causing bacterium isolated from the patient is most sensitive. In the Kirby-Bauer method described in the article entitled "Disc Suspeptibility Testing" in "Hospital Practice", February 1970, Vol. 5, No. 2, pages 91-100, a zone of inhibition is measured around an antibiotic plate or vortex in a gel containing bacteria. This takes about one day and requires quite a bit of handling, labor, and exposure to the disease-causing bacterium. A highly automated particle counting system is described in "Applied Microbiology", December 1971, pages 98Ο-986. It gives results in a couple of three hours, but is extremely complex and expensive and thus kills bacteria, thus preventing replication. Light scattering laser beam photometers have also been used to study changes in the scattering curve obtained with a rotating detector to determine the antibiotic susceptibility of bacteria. It is an object of the present invention to provide a relatively simple and inexpensive compartment container which is suitable for antibiotic susceptibility testing and is not only based on accepted and validated principles of antibiotic susceptibility testing, but is also fast, efficient, economical and simple to use.
Keksinnön mukaisesti saadaan aikaan lokeroitu säiliö, joka on tarkoitettu käytettäväksi jaettaessa liuos useisiin identtisiin näytteisiin, joihin lisätään erilaisia reagensseja, joiden kunkin reaktio liuoksen kanssa on tutkittava, jolloin säiliö käsittää pitkittäisen lokerosarjan, jolla on pituusakseli, jolloin kussakin lokerossa on täyttö- ja koelohko, jotka kykenevät pitämään sisässään nesteitä, jolloin kaikkien lokeroiden täyttö- ja koelohkot ovat olennaisesti samalla suoralla linjalla, koelohkotuen lokerosarjan koelohkojen pitämiseksi alhaalla nesteen saamiseksi virtaamaan lokerosarjan koelohkoihin ja pysymään näissä, täyttölohkotuen täyttöloh-kojen pitämiseksi alhaalla liuoksen saamiseksi jakautumaan täyttölohkoihin, jakoti-lan, joka on yhdistetty kaikkiin täyttölohkoihin liuoksen saamiseksi virtaamaan jakotilasta täyttölohkoihin yhdysaukkojen kaikkien täyttölohkojen välille liuoksen saamiseksi tasan jakautumaan täyttölohkojen kesken, jolloin jokainen täyttölohko on yhdistetty sitä vastaavaan koelohkoon nesteen saamiseksi virtaamaan niiden välillä siten, että säiliön kääntäminen akselinsa ympäri asennosta, missä täyttölohkot ovat alhaalla, asentoon, missä koelohkot ovat alhaalla, mahdollistaa täyttölohkoihin tasan jakautuneiden liuosmäärien virtaamisen täyttölohkoista koelohkoihin, ja aukkoja jokaisen lokeron seinämässä koelohkojen yläpuolella reagenssien panemiseksi koelohkoihin.According to the invention, there is provided a compartmentalized container for use in dispensing a solution into a plurality of identical samples to which various reagents are added, each of which must be tested for reaction, the container comprising a longitudinal series of compartments having a longitudinal axis. are capable of holding fluids with the filling and test blocks of all compartments substantially in line, to keep the test block support block set test blocks down to allow fluid to flow into and remain in the compartment set test blocks, to fill the block to all the filling blocks to cause the solution to flow from the distribution space to the filling blocks between all the filling blocks of the connecting openings in order to make the solution evenly distributed among the filling blocks, each filling block being connected to allow fluid to flow between them so that rotating the container about its axis from the down position to the down position allows the amounts of solution evenly distributed in the charge blocks to flow from the upper block to the test block walls.
Esillä olevan keksinnön lokeroitu säiliö on erittäin käyttökelpoinen sellaisen laitteiston osana, jolla voidaan suorittaa hakemuksessa n:o 2537/72 kuvattu menetelmä eri antibioottien suhteellisen tehokkuuden määrittämiseksi bakteereihin.The compartmentalized container of the present invention is very useful as part of an apparatus for carrying out the method described in application No. 2537/72 for determining the relative efficacy of various antibiotics on bacteria.
Keksinnölle on pääasiallisesti tunnusomaista, että kukin täyttölohko ja siihen liittyvä koelohko sijaitsevat omassa pituusakselilla varustetun, pitkittäisen lokerosarjan lokerossaan, että säiliö on varustettu jakotilalla, joka ottaa vastaan jaettavan liuoksen ja säiliön levätessä täyttölohkotuen varassa, jolloin täyttölohkot sijoittuvat jakotilan alapuolelle, sijoittaa liuoksen täyttölohkoihin tasaisesti niihin jakautuneena täyttölohkojen välissä olevien yhdysaukkojen kautta, että kukin täyttölohko on yhdistetty siihen liittyvään koelohkoon siten, että liuos virtaa täyttölohkoista koelohkoihin, kun säiliötä pyöritetään pitkittäisakselin ympäri, kunnes se lepää koelohkotuen varassa, jolloin koelohkot sijoittuvat täyttölohkojen alapuolelle, ja että kunkin lokeron seinässä on koelohkon yläpuolella aukko reagenssin sijoittamiseksi koelohkoon.The invention is mainly characterized in that each filling block and the associated test block are located in their own longitudinal longitudinal compartment set compartment, that the container is provided with a distribution space which receives the solution to be dispensed and through the connecting openings between the filling blocks, that each filling block is connected to an associated test block so that the solution flows from the filling blocks to the test blocks when the container is rotated about the longitudinal axis until it rests on the test block support to place in the test block.
Käytettäessä tätä lokeroitua säiliötä, jota tästedes kutsutaan kyvetiksi, voidaan eri reagenssien, kuten antibioottien tehokkuus määrittää lisäämällä antibiootit 3 60316 samanaikaisesti useihin bakteerisuspension identtisiin näytteisiin. Näytteiden valmistus, antibioottien lisäys niihin ja niiden analyysi helpottuvat merkittävästi kun ne pannaan lokeroituun säiliöön eli kyvettiin ja sen jälkeen antibioottilevyt viedään samanaikaisesti levyjen jakelulaitteesta näytteisiin. Valmistauduttaessa tähän levyjen sisäänpanoon toisiinsa yhdistetyt täyttö- ja koelohkot käännetään kyljelleen niiden täyttämiseksi yhtä suurilla määrillä bakteerisuspensiota tämän siirtyessä jakotilasta lohkoihin. Kun kyvetti sitten käännetään asentoon, missä toisiinsa yhdistetyt lohkot ovat pystyasennossa, näyteliuos virtaa yhtyvistä täyttölohkoista erillisiin koelohkoihin, Antibioottilevyt voidaan sitten kätevästi pudottaa kaikkiin koelohkoihin näiden yläseinämässä olevan aukon läpi ja näin nämä levyt pidetään vähäisesti uppoutuneina jokaisen lokeron koelohkoon suljettuun bakteerisuspensioon. Antibioottilevyt voidaan panna kyvettiin jopa ennen inokulaattia, so. elatusaineino-kulumia, jos käytännön tarpeet niin vaativat. Koelohkot ovat edullisesti valoa läpäiseviä ja muotoiltu nopean fotometrisen analyysin mahdollistamiseksi, mikä tapahtuu esim. kuljettamalla ne nopeasti valonlähteen ja fotometrisen tuntoelimen, edullisesti valon hajuksen selville ottavaa tyyppiä olevan tuntoelimen ohi. Jos määritetty kasvuindeksi on liian pieni, kyvetti voidaan uudelleen inkuboida ja uudelleen lukea ennen poisheittoa.Using this compartmentalized container, hereinafter referred to as a cuvette, the efficacy of various reagents, such as antibiotics, can be determined by adding antibiotics 3,60316 simultaneously to several identical samples of the bacterial suspension. The preparation of samples, the addition of antibiotics to them and their analysis are greatly facilitated when they are placed in a compartmentalized container, i.e. a cuvette, and then the antibiotic plates are simultaneously transferred from the plate dispenser to the samples. In preparation for this insertion of the plates, the interconnected filling and test blocks are turned to the side to fill them with equal amounts of bacterial suspension as it moves from the distribution space to the blocks. When the cuvette is then turned to a position where the interconnected blocks are in an upright position, the sample solution flows from the confluent filling blocks to separate test blocks. Antibiotic plates can be placed in the cuvette even before the inoculum, i. subsistence wear, if required by practical needs. The test blocks are preferably light transmissive and shaped to allow rapid photometric analysis, e.g. by passing them quickly past the light source and the photometric sensor, preferably a sensor of the light odor detection type. If the determined growth index is too low, the cuvette can be re-incubated and re-read before discarding.
Esillä olevan keksinnön saamiseksi paremmin ymmärrettäväksi sitä selitetään seuraavassa lähemmin oheisten piirustusten yhteydessä, joissa samanlaiset osat on merkitty samoilla viitenumeroilla ja joissa kuvio 1 on osittain luonnosmainen kaavio antibioottiherkkyystutkimukseen käytettävästä laitteistosta, johon sisältyy esillä olevan keksinnön mukainen kyvetti; kuvio 2 on päällikuva kuviossa 1 esitetyn laitteiston kyvetistä; kuvio 3 on etukuva kuviossa 2 esitetystä kyvetistä; kuvio il on pohjakuva kuvioissa 2 ja 3 esitetystä kyvetistä; kuvio 5 on takakuva kuvioissa 3 ja li esitetystä kyvetistä; kuvio 6 on päätykuva kuvioissa 2 ja 3 esitetyn kyvetin vasemmasta päästä; kuvio 7 on päätykuva kuvioissa 2 ja 3 esitetyn kyvetin oikeasta päästä; kuvio 8 on poikkileikkauskuva kuvion 3 linjalta 8-8; ja kuviot 9-13 ovat osittain kaaviollisia kuvia kuvioissa 2-8 esitetyn kyvetin peräkkäisistä täyttövaiheista sitä syöttöputkesta täytettäessä.For a better understanding of the present invention, it will now be described in more detail with reference to the accompanying drawings, in which like parts are designated by like reference numerals and in which Figure 1 is a partially schematic diagram of an antibiotic susceptibility test apparatus including a cuvette according to the present invention; Figure 2 is a plan view of the cuvette of the apparatus shown in Figure 1; Figure 3 is a front view of the cuvette shown in Figure 2; Fig. 11 is a plan view of the cuvette shown in Figs. 2 and 3; Figure 5 is a rear view of the cuvette shown in Figures 3 and 11; Figure 6 is an end view of the left end of the cuvette shown in Figures 2 and 3; Figure 7 is an end view of the right end of the cuvette shown in Figures 2 and 3; Fig. 8 is a cross-sectional view taken along line 8-8 of Fig. 3; and Figures 9-13 are partially schematic views of the sequential steps of filling the cuvette shown in Figures 2-8 as it is filled from the feed tube.
Kuviossa 1 esitetään laitteisto useiden eri reagenssien, kuten antibioottien (esim. kaksitoista), suhteellisen tehokkuuden määrittämiseksi bakteerien kasvun estämisessä, joka laitteisto käsittää kertakäyttöisen muovikyvetin 12, jossa herk-kyyskokeet suoritetaan, jakelulaitteen 14 levyjen 16 panemiseksi kyvettiin 12, inku-baattoriravistimen 30 bakteerien inkuboimiseksi ja kyvettien ravistelemiseksi ja automaattisen valonhajotusfotometri-analysaattorin 62 bakteerien kasvun avalvoi-miseksi ja tulosten kirjoittamiseksi esikirjoitetulle lomakkeelle tai nauhalle 22, kuten myöhemmin lähemmin selitetään.Figure 1 shows an apparatus for determining the relative effectiveness of a variety of reagents, such as antibiotics (e.g., twelve), in inhibiting bacterial growth, comprising a disposable plastic cuvette 12 in which sensitivity tests are performed, a plate 16 in a dispenser 14 and shaking the cuvettes and an automatic light scattering photometer analyzer 62 to expose bacterial growth and write the results on a preformed form or tape 22, as will be explained in more detail later.
Ennen tässä yksityiskohtaisesti kuvattua tutkimusmenetelmää saatu kliininen eriste pannaan petrinmaljaan 20, jossa sen annetaan inkuboitua yön yli.The clinical isolate obtained prior to the assay described in detail herein is placed in a petri dish 20 where it is allowed to incubate overnight.
4 603164,60316
Sitten bakteorologi poimii maljasta useita morfologisesti samanlaisia kasvu-pesäkkeitä silmukkaa 24 käyttäen, minkä jälkeen ne pyörresekolttamalla suepen-doIdaan putkessa 13 olevaan suolaliuokseen. Fotometrin vakiointimenetelmää käyttäen putkessa oleva suspensio saatetaan normitettuun bakteeripitoisuuteen, joka tarkistetaan analysaattorissa 62 pistämällä putki kannessa 74 olevaan aukkoon ja katsomalla lukema mittarista 68. Kaksi millilitraa koi suspensiota lisätään 18 millilitraan reheväkasvuista elastusainetta, joka on pantu kier-repäiseen koeputkeen 7Θ. Koeputki 7Θ ruuvataan kiinni muovikyvettiin 12 ja yksinkertaisella käsittelyllä saadaan koeputken sisältö tasaisesti jakautumaan kyvetin kolmeentöistä koelokeroon Sc ja S1_12· Nyt lisätään eluutiolevyt 16 aukkojen 26 kautta, jotka paljastetaan poistamalla suljin 34» levynJakelu-laitteen 14 avulla ja pidetään suspendoituneina kammioiden S^_12 kahdessatoista erillietetyssä lohkossa 17 olevassa kasvuaineessa 28 kyvetin yläosassa olevien muoviputkein 29 avulla. Kolmastoista kammio SQ on kontrollikammio.The bacteriologist then picks up several morphologically similar growth colonies from the dish using loop 24, after which they are vortexed into saline in tube 13. Using the photometer conditioning method, the suspension in the tube is brought to the normalized bacterial concentration, which is checked in analyzer 62 by inserting the tube into the opening in cover 74 and viewing the reading on meter 68. Two milliliters of moth suspension is added to 18 milliliters of fertile resin. The test tube 7Θ is screwed into a plastic cuvette 12 and a simple treatment causes the contents of the test tube to be evenly distributed in the cuvette triplicate in the test compartment Sc and S1_12. 17 in the growth medium 28 by means of plastic tubes 29 at the top of the cuvette. The thirteenth chamber SQ is a control chamber.
Kyvetti 12 inkoboidaan nyt kolme tuntia inkubaattori-ravietimessa 30, Joka on rakennettu ottamaan vastaan 30 kyvettiä. Kolmen tunnin kuluttua kyvetti 12 pistetään analysaattoriin 62 ja kasvu kussakin kammiossa SQ ja evaluoidaan.The cuvette 12 is now incubated for three hours in an incubator-trot 30 which is constructed to receive 30 cuvettes. After three hours, cuvette 12 is injected into analyzer 62 and growth in each chamber SQ and evaluated.
Vertaamalla kontrollikammioon SQ jokaisen kammioissa S.j_12 olevan antibiootin suhteellinen inhibitoiva vaikutus lasketaan ja kirjoitetaan kuten lähemmin jäljempänä kuvataan.By comparing the control chamber SQ, the relative inhibitory effect of each antibiotic in the chambers S.j_12 is calculated and written as described in more detail below.
Reheväkasvuisella elatusaineella on seuraava koostumus grammoissa/litra ja sen pH-arvo on 7»0.The lush growth medium has the following composition in grams / liter and has a pH of 7 »0.
aineosa pitoisuus peptoni "C" 15,0 peptoni "S" 5,0 dekstroosi 5,5 natriumkloridi 4,0 natriumsulfiitti 0,2 1-systiini 0,7Ingredient concentration peptone "C" 15.0 peptone "S" 5.0 dextrose 5.5 sodium chloride 4.0 sodium sulphite 0.2 1-cystine 0.7
Laitteiston 10 neljän komponentin yksityiskohtaista rakennetta selitetään seuraavassa: A. Kyvetti 12The detailed structure of the four components of the apparatus 10 is explained as follows: A. Cuvette 12
Antimikrobieten aineiden vaikutuksen mittaaminen elastusaineessa olevien mikro-organismien (bakteerien) kasvuun vaatii kammion (kennon ) jossa on inoku-loitua elastusainetta. Elastusaineessa tapahtuvan kasvun mittaaminen valonhajo-tuksella vaatii, että tämä kammio on sekä käytettyä säteilevää valoa läpäisevä että geometrisesti yhteensopiva valonhajotusfotometrin kanssa. Monien antimikro-bisten aineiden vaikutusta mikro-organismin kasvuun voidaan kätevästi ja nopeasti tarkastella järjestelmällä nämä optiset kammiot suoraan jonomuotoon yhdeksi yksiköksi. Kyvetti 12 salli myös mukavasti siirtää yhtä paljon inokuloltua 6 u 31 6 elatusainetta jokaiseen kammioon S. Kyvetti 12 pystyy myös helposti ottamaan vastaan antimikrobisella aineella kyllästetyn pyöreän paperilevyn kaikkiin kammioihinsa, mutta ei pysty ottamaan vastaan tällaista antimikrobieta levyä yhteen kontrollikammioonsa. Lisäksi kyvetti 12 on veeitiivls, optisesti kiillotettu, optisesti toisinnettava, halpa, suhteellisen pieni, pinottava ja mahdollisesti kertakäyttöinen.Measuring the effect of antimicrobial agents on the growth of microorganisms (bacteria) in the resin requires a chamber (cell) containing the inoculated resin. Measuring growth in an elastic medium by light scattering requires that this chamber be both transmissive to the light emitted and geometrically compatible with the light scattering photometer. The effect of many antimicrobial agents on the growth of a microorganism can be conveniently and quickly viewed by a system of these optical chambers directly in queue form into a single unit. The cuvette 12 also comfortably allowed to transfer an equal amount of inoculated 6 u 31 6 medium to each chamber S. The cuvette 12 is also able to easily receive an antimicrobial impregnated round paper sheet in all its chambers, but cannot receive such an antimicrobial sheet in one of its control chambers. In addition, the cuvette 12 is waterproof, optically polished, optically reproducible, inexpensive, relatively small, stackable, and possibly disposable.
Kyvetti 12 esitetään kuvioissa 2-6. Se on optisesti kirkasta ja inertistä muovia, kuten polystyreeniä ja se valmistetaan ruiskupuristusmenetelmällä kaksiosaiseksi optiset! kiillotettuja teräsmuotteja käyttäen. Ruiskupuristuksen jälkeen molemmat osat saumataan yhteen joko liuotteella tai ultraääni -energialla kyvetin valmistamiseksi. Ultraäänisaumasta suoritetaan, koska silloin vältetään optisen pinnan turmeltuminen liiallisen liuottaen johdosta. Kyvetissä 12 on suorassa jonossa eli sarjassa yksi kontrollikammlo S. ja kaksi-toista antimlkrobisten eli bakteerien kasvua estävien aineiden koekammiota 12* Ainoa toinen materiaali esitetyssä kyvetissä 12 käytetyn polystyreenin ohella on taipuisa polymeeri, kuten styreeni-butadieenipolymeeri, josta tiiviste 32 ja suljin 34 on valmistettu. Tiiviste 32 Ja suljin 34 asetetaan kyvettiin 12 ennen lopullista pakkaamista.Cuvette 12 is shown in Figures 2-6. It is an optically clear and inert plastic such as polystyrene and is manufactured by injection molding into two-part optical! using polished steel molds. After injection molding, the two parts are sealed together with either solvent or ultrasonic energy to make a cuvette. Ultrasonic sealing is performed because it then avoids damage to the optical surface due to excessive dissolving. The cuvette 12 has one control chamber S in a straight line, i.e. in series, and two test chambers 12 for antimicrobial agents. . The seal 32 and closure 34 are placed in the cuvette 12 prior to final packaging.
Kyvetti 12 käsittää Soisi osaa: (1) Inokulumluutkiaukko (P) (kuviot 2-7)Cuvette 12 comprises a Soisi part: (1) Inoculum orifice (P) (Figures 2-7)
Kierteitetty aukko, Joka ottaa vastaan inokuloitua elatusainetta Aeäl-tävän 18-143 klerrepäisen putken 78· Aukon pohjaosaan asetettu tiiviste 32 muodostaa vedenpitävän sulun kyvetin ja lnokulumiputken välille.Threaded orifice receiving the inoculated medium 18-43 of the 18-143 spherical tube 78 · A seal 32 placed in the bottom of the orifice forms a watertight seal between the cuvette and the inoculum tube.
(2) Jakotila (r) (kuviot 2-7)(2) Distribution space (r) (Figures 2-7)
Se ottaa vastaan inukuloidun elatusaineen inokulumiputkesta, kun kyvet-tiä käännöllään käsin.It receives the inuculated medium from the inoculum tube when the cuvette is inverted by hand.
(3) Tolsiinsa yhdistetyt täyttölohkot 15 Täyttölohkorivi 15 ulottui kyvetin päästä päähän sen pituusakselin suunnassa (jakotilaa R lukuunottamatta). Ne on yhdistetty jakotilaan pääjakoaukolla 31 ja ottavat vastaan inokuloidun elatusaineen jakotliasta, kun kyvettiä käännöllään käsin yhtä suurien liuosmäärien saamiseksi virtaamaan ko. lohkoihin jakoaukkojen 33 kautta, mitä auttaa ilman paluuvirtaus ilmareikien 35 läpi. Jakeluaukkojen 33 pinta-ala suurenee jakotilasta R poispäin.(3) Filling blocks 15 connected to their tolls The row of filling blocks 15 extended from end to end of the cuvette in the direction of its longitudinal axis (except for the division space R). They are connected to the dispensing space by the main dispensing opening 31 and receive the inoculated medium from the dispenser when the cuvette is turned by hand to cause equal volumes of solution to flow. to the blocks through the manifolds 33, which is aided by the return flow of air through the air holes 35. The area of the distribution openings 33 increases away from the distribution space R.
(4) Koelohkot 17 (kuviot 7 .1a 8)(4) Test blocks 17 (Figures 7 .1a 8)
Kolmetoista erillistä lokeroiden Sc, (s^, S2"si2^ va*oa hajottavaa koe-lohkoa 17 ottavat vastaan yhtä suuren tilavuusmäärän inokuloitua elatusainetta toisiinsa yhdistetyistä täyttölohkoista 15, kun kyvettiä käännetään käsin 90° pituusakselinsa ympäri täyttölohkojen laskemiseksi. Kun nämä kolmetoista lokeroa S on täytetty inokuloidulla elatusaineella, ne on eristetty toisistaan 6 6 L» ό 1 6 väliseinillä 3β· Jakeluaukot 33 ja llmareiät 35, jotka sijaitsevat väliseinän 36 yläosassa ja selvästi elatusainetason yläpuolella, ovat ainoat yhteydet lokeroiden välillä. Nämä ilmareiät ovat välttämättömät nesteen saamiseksi oikein jakautumaan alasvietyihin täyttölohkoihin 13« kuten yllä kuvattiin.Thirteen separate test blocks 17 disintegrating in the compartments Sc1 (S2, S2 "si2 ^ va * oa) receive an equal volume of inoculated medium from the interconnected filling blocks 15 when the cuvette is manually rotated 90 ° about its longitudinal axis to count the filling blocks. filled with inoculated medium, they are insulated from each other by 6 6 L »ό 1 6 partitions 3β · Distribution openings 33 and ll holes 35 located at the top of the partition 36 and well above the level of the medium are the only connections between the compartments, these air holes are necessary to distribute the liquid correctly. 13 «as described above.
(5) Antimikrobilevy.ien ontelonitlmet (29) (kuviot 7 .1a 8)(5) Cavities of antimicrobial plates (29) (Figures 7 .1a 8)
Kaksitoista aukkoista onttoa puikkoa 29 ulottuvat alas kahdentoista lokeron koelohkoihin. Jokainen ontto puikko, tunnettu levynpitimenä, ottaa vastaan pyöreän antimikrobipaperllevyn 16 (halkaisija 6,5 mm) kyvetin 12 yläpinnassa olevan kahdentoista levyaukon 26 kautta. Levy putoaa levynpitimeen 29 ja jää lepäämäänpitimen pohjalle 73· Levynpitimen seinämään lähelle levyä 16 on muodostettu kaksi eluutioaukkoa E, jotka sallivat antimikroblsen (so. bakteerien kasvua estävän) aineen eluutlon koelohkossa olevaan inokuloituun elatusaineeseen. Sulkimen 34 kaksitoista nystyrää 40 (kutsutaan sulkutulpiksi) pistetään levyaykkoihin 26 vedenpitävän sulun muodostamiseksi kuhunkin levynpitimeen. Suljin 34 on asetettu kahden yhdensuuntaisen kiskon 34a väliin, joiden välissä kyvetin 12 yläpinnan aukot 26 ovat.Twelve apertured hollow rods 29 extend down to the test blocks of the twelve compartments. Each hollow rod, known as a plate holder, receives a round antimicrobial paper plate 16 (6.5 mm in diameter) through twelve plate openings 26 in the upper surface of the cuvette 12. The plate falls into the plate holder 29 and rests on the bottom of the holder 73 · Two elution openings E are formed in the wall of the plate holder near the plate 16, allowing the antimicrobial (i.e., antibacterial) agent to elute into the inoculated medium in the test block. Twelve bumps 40 (called plugs) of the closure 34 are inserted into the plate openings 26 to form a watertight seal in each plate holder. The closure 34 is interposed between two parallel rails 34a between which the openings 26 in the upper surface of the cuvette 12 are located.
(6) Kannike B (kuviot 2 ,1a 4-8)(6) Bracket B (Figures 2, 1a 4-8)
Kyvetin 12 takaosaan on sijoitettu sen pituussuuntainen L-muotoinen kannike B, jolla kyvetti voidaan kiinittää inkubaattoriravistimen 30 pitimiin 42 ja fotometrin vaunun pltimeen. Kyvetin kannike B mahdollistaa siis sen oikean aeennoinnin sekä inkubaatio-ravistusjakson että fotometrin pyyhkälsyjakson ajaksi.At the rear of the cuvette 12 is a longitudinal L-shaped bracket B with which the cuvette can be attached to the holders 42 of the incubator shaker 30 and to the spreader of the photometer carriage. Thus, the cuvette holder B allows its correct accumulation for both the incubation-shaking period and the photometer wiping period.
Inkubaattori-ravistin, esitetty kuviossa 1, ottaa vastaan kolmekymmentä kyvettiä kolmessa keskenään vaihdettavassa hyllyssä 54. Kussakin hylsyssä 54 on kymmenen pidintä 42 kyvettien pitämiseksi näiden oman kannikkeen B avulla.The incubator shaker, shown in Figure 1, receives thirty cuvettes in three interchangeable shelves 54. Each sleeve 54 has ten holders 42 for holding the cuvettes by means of their own holder B.
Kyvettien kiertoravistus tai -sekoitus tapahtuu inkubaattorissa, jonka lämpötila pidetään arvossa 36- 0,5°C on-ei-tyyppisellä lämpötilansäätimellä. Inkubaattorissa on varotermostaatti 60 varalla olevan lämpötilansäätöjärjestel-män aikaansaamiseksi päätermostaatin sattuessa rikkoutumaan. lakubaattori-ravistimeesa 30 on nopeudensäätönuppi 63, jolla voidaan muuttaa sen ravistus-liikkeen klertotaajuutta ja mittari 65a kiertotaajuuden näyttämiseksi sekä läm-pötllanasetusnuppl 65 lämpötilan muuttamiseksi.The cuvettes are rotated or mixed in an incubator maintained at 36-0.5 ° C with an on-off temperature controller. The incubator has a safety thermostat 60 to provide a backup temperature control system in the event of a break in the main thermostat. the lacubator-shaker 30 has a speed control knob 63 with which its circulating frequency of the shaking movement and a meter 65a for changing the rotational frequency and a temperature setting knob 65 for changing the temperature can be changed.
A. Vakloinokulumin valmistaminenA. Preparation of vacloin wear
Vakiotyyppinen inokulumi on puhtaiden bakteerien suspensio 0,90 painoni sa 7 natriumkloridiliuoksessa, jolloin siinä on 1-3 x 10' elinkykyistä solua millilit-raa kohti. Tämä normaalityyppinen suolaliuoeinokulumi optisesti hyväksyttävässä, so. puhtaassa, naarmuttomassa 16 x 125 un kokoisessa pyöreäpohjäisessä piilasl-putkessa antaa 35 kulmassa hajotussignaalin - log S arvojen 2,2(l x 10 so- •7 lua/ml) ja 1,9 (3 x 10' solua/ml) välillä ollessaan asetettuna fotometriin.The standard type of inoculum is a suspension of pure bacteria in 0.90 wt.% Sodium chloride solution with 1-3 x 10 'viable cells per milliliter. This normal type of saline solution wear in an optically acceptable, i. in a clean, scratch-free 16 x 125 un round bottom silicon I tube, gives a scattering signal at 35 angles - log S between 2.2 (1x 10 cells / 7 cells / ml) and 1.9 (3 x 10 'cells / ml) when set the photometer.
6031 6 76031 6 7
Fotometrin vakiointimittarissa 68 on keskialue (kattaa 40 i° mittarin koko alueesta), joka on "oikean inokulumin alue". Sen molemmat rajat vastaavat hyväksyttävän hajotusalueen rajoja. Mittarin vasen alue (kattaa 30 $ mittarin koko alueesta) merkitsee "alle" ja/tai "lisää mikro-organismeja". Oikeanpuoleinen alue (kattaa loput 30 # mittarin koko alueeeta) merkitsee "yli" ja/tai "laimenna suolaliuoksella".The photometer conditioning meter 68 has a center range (covering 40 i ° of the entire range of the meter), which is the "right inoculum range". Its two limits correspond to the limits of the acceptable decomposition range. The left area of the meter (covering $ 30 of the entire area of the meter) means "below" and / or "more microorganisms." The area on the right (covering the remaining 30 # full area of the meter) indicates "over" and / or "dilute with saline".
Vakioinokulumi valmistetaan siirtämällä tietyn bakteerin kasvupesäke tai -pesäkkeitä 16-24 h agar-agarta 16 x 123 mm kokoiseen vakiotyyppiseen suolaliuos inokulumiputkeen 13» joka sisältää 6»0 ml 0,45 ^um kalvolla suodatettua, steriiliä 0,90 painosuolaliuosta. Tähän tarkoitukseen käytetään mikrobiologista silmukkaa 24 ja sterilointiin käytetään tavallista liekitystä.Standard inoculum is prepared by transferring the growth colony or colonies of a particular bacterium 16-24 h agar agar to a standard x 16 mm saline inoculum tube 13 containing 6 x 0 ml of 0.45 membrane filtered sterile 0.90 saline. A microbiological loop 24 is used for this purpose and a standard flame is used for sterilization.
Vaikka ratkaisu, kuinka monta kasvupesäkettä on asetettava vesiliuos-putkeen sopivan pitoieuusalueen saamiseksi, on loppujen lopuksi käytännön asia ja riippuu pesäkkeitten konsistensseista ja suuruuksista niin likimääräisiä suuntaviivoja pesäkkeitten halkaisijasta ja hiiden lukumäärästä voidaan kehitellä vakiotyyppisen inokulumin nopean valmistamisen helpottamiseksi.Although the solution of how many growth colonies must be placed in an aqueous solution tube to obtain a suitable concentration range is ultimately a matter of practice and depends on colony consistency and size, approximate guidelines for colony diameter and number of colonies can be developed to facilitate rapid inoculum production.
Kun pesäkkeet on silmukalla siirretty suolalluosputkeen 13 (silmukan varovainen hankaaminen putken sisäpuolta vasten heti koverankuperan osan alapuolelta auttaa irrottamaan erityisen tahnamaiset pesäkkeet silmukasta), putki 13 liekitetään, varustetaan klerrekannella, pidetään pyörrellikkeessä 13 sekuntia ja asetetaan fotometrin kannen inokulumiaukkoon. Putken yläosassa oleva valkoinen, pystysuora merkkiviiva auttaa sen asennolmisessa (valkoinen merkkiviiva asetetaan samaan linjaa fotometrin kannessa olevan samanlaisen viivan kanssa). Sitten painetaan vakiointinappia 79 ja pannaan merkille, mihin mittarin 66 osoitin asettuu. Jos osoitin on normaalin inokulumin alueella, suolaliuos-inokulumi on valmis vietäväksi kyvettiin. Jos osoitin on "alle"alueella, putki 13 otetaan pois fotometristä ja siihen lisätään kasvupesäke tai -pesäkkeitä.Once the colonies have been looped into the saline tube 13 (careful rubbing of the loop against the inside of the tube just below the concave portion helps to remove the particularly pasty colonies from the loop), the tube 13 is flamed, covered with a clearing cap, held in a vortex for 13 seconds and placed in the photometer cover. A white, vertical mark on the top of the tube helps to position it (the white mark is aligned with a similar line on the lid of the photometer). The conditioning button 79 is then pressed and it is noted where the pointer of the meter 66 is located. If the pointer is within the normal inoculum range, the saline inoculum is ready to be introduced into the cuvette. If the pointer is in the "below" range, the tube 13 is removed from the photometer and growth colony or colonies are added.
Jos osoitin sijaitsee "yli" alueella, silloin putkeen lisätään vähitellen steriiliä, suodatettua 0,90 paino-$ suolaliuosta kunnes Inokulumi on laimennettu normaalialueelle.If the pointer is in the "over" range, then sterile, filtered 0.90 wt% saline is gradually added to the tube until the inoculum is diluted to the normal range.
B. Vakioidun inokulumin altistamien antibiooteille (l) Ryvetin nanost «uninen antlmikroblsllla levyilläB. Antibiotics exposed to standardized inoculum (l) Ryvetin nanostructured with antimicrobial plates
Kun haluttu ryhmä antimikrobisia aineita (antibiootteja) on valittu, levynjakelulaite 14 panostetaan kääntämällä se ylösalaisin ja pistämällä varatut patruunat 39 (suu ylöspäin) jakelulaitteen 14 reikiin 19. On pidettävä huoli siltä, että jokaisen patruunan 39 levyt 16 on oikein pakattu (so. ovat 90° kulmassa patruunan pituusakselia vastaan) ja että ylimmän levyn ja putken suun välinen etäisyys ei ole 3 mm pitempi. Kun kalkki patruunat on panostettu, jake-lulaite 14 käännetään takaisin normaaliin pystyasentoonsa. Suljin 34 poistetaan 6 O 31 6 kyvetistä 12. Jakelulaitteen 14 seisoessa penkillä (tai sopivalla pöydällä) kyvetti 12 asetetaan jakelulaitteen ohjaimeen Ja työnnetään vasteeseen 45 saakka. Sitten painetaan jakelulaitteen vipuvartta 51, minkä jälkeen se vapautetaan, jolloin yksi levy 16 menee kyvetin 12 jokaiseen levyaukkoon 26. Kyvetti 12 poistetaan jakelulaitteesta ja suljin 54 pannaan lujasti paikalleen kyvetin sulkemiseksi.Once the desired group of antimicrobial agents (antibiotics) has been selected, the plate dispenser 14 is loaded by inverting it and inserting the charged cartridges 39 (mouth up) into the holes 19 of the dispenser 14. Care must be taken that the plates 16 of each cartridge 39 are properly packed (i.e., 90 ° at an angle to the longitudinal axis of the cartridge) and that the distance between the top plate and the mouth of the tube is no longer than 3 mm. Once the lime cartridges have been charged, the dispenser 14 is turned back to its normal vertical position. The closure 34 is removed 6 O 31 6 from the cuvette 12. With the dispenser 14 standing on a bench (or suitable table), the cuvette 12 is placed in the dispenser guide and pushed to the stop 45. The dispenser lever arm 51 is then depressed and then released, with one plate 16 entering each plate opening 26 of the cuvette 12. The cuvette 12 is removed from the dispenser and the closure 54 is firmly in place to close the cuvette.
(2) Kyvetin täyttäminen elatusalneinokulumi11a (kuviot 9-15)(2) Filling the cuvette with maintenance nine wear11a (Figures 9-15)
Vakiomenetelmää noudattaen putkesta 13 siirretään steriilillä pipetillä 2,0 ml euolaliuosinokulumia 20 x 12 mm kokoiseen putkeen 78 (tasapohjainen, piilasinen, 18-145 kierrekannella varustettu), jossa on 18,0 ml steriiliä, 0,45yum kalvolla suodatettua reheväkasvuista elatusainetta (kuvattu edellä). Käytetään tavallista mikrobiologista putkien suiden liekitysmenetelmää ja ino-kulumin sisäänpanon jälkeen putki suljetaan kierrekannella. Sitten tätä putkea 7Θ käännetään varovasti ylösalaisin useita kertoja sisällön sekoittamiseksi, kansi poistetaan ja heti sen jälkeen putki kierretään pystyasennossa kyvetin inokulumiaukkoon P kunnes se lujasti painautuu tiivistettä 52 vasten. Ensimmäinen vaihe ja seuraavat valheet kyvetin täyttämisessä eLatusaineinokulumilla esitetään vastaavasti kuvioissa 9 ja 10-13. Kyvetti 12 käännetään nyt varovasti 180° siten, että inokulumiputken 78 sisältö juoksee täydellisesti kyvetin jakotilaan R (kuvio 10). Kyvetti 12 asetetaan lepäämään jakotilansa päätypinnalla 112 vaakasuoralle pinnalle 114· Tässä asennossa kyvetin pituusakseli on kohtisuorassa vaakasuoraa pintaa vastaan, kuten kuviossa 11 on esitetty. Sitten kyvettiä 12 käännetään 90°, niin että inokulumi valuu jakotliasta toisiinsa yhdistettyihin jakelulohkoihin 15, kuten kuviossa 12 on esitetty. Tämä kääntö tapahtuu helpoimmin tarttumalla kyvetin ei-jakotilapäähän Ja laskemalla se vaakasuoralle pinnalle, niin että kyvetin takasivu 9 (jossa kyvetin kannike B on) lepää vaakasuoralla pinnalla 114 (kuten kuviossa 13 on esitetty), jolloin takasivu 9 muodostaa täyttölohkojen tuen niiden pitämiseksi ala-asennossa Ja elatusaineinokulumin saamiseksi jakautumaan täyttölohkoihin. Valuminen täyttö-lohkoihin on päättynyt 8 sekunnin kuluttua, minkä jälkeen suoritetaanlopulli-nen kääntö. Tähän kuuluu vain kyvetin kääntäminen 90° pituusakselinsa ympäri pystyasentoon (so. asento, missä se panostettiin antimikronisilla levyillä) lepäämään päätyseiniänsä alareunojen 116 ja Jakotilansa R alla olevan jalan 118 varassa, jolloin reunat 116 ja jalka 118 muodostavat koelohkotuen lokero-sarjan pitämiseksi niin, että koelohkot ovat alhaalla, jotta elatusaineinoku-luml juoksee näihin koelohkoihin ja pysyy niissä. On hyvin tärkeätä, että kyvetti pysyy vaakasuorassa tämän viimeisen käännön aikana, jolloin tämä taataan suorittamalla kääntö sillä tavalla, että kyvetin molemmat päät pysyvät käännön vaakasuoran pinnan aikana kosketuksessa. Oikein täytettyä kyvettiä tarkastelemalla voidaan nähdä, että elatusaineinokulumin korkeus on sama kaikis-Following the standard procedure, 2.0 ml of euum solution wear is transferred from tube 13 to a 20 x 12 mm tube 78 (flat-bottomed, silicate, 18-145 screw cap) with 18.0 ml of sterile, 0.45 μm membrane-filtered lush growth medium (described above) using a sterile pipette. . The usual microbiological method of flaming the mouths of the tubes is used, and after insertion of the ino-wear, the tube is closed with a screw cap. This tube 7Θ is then gently inverted several times to mix the contents, the lid is removed and immediately thereafter the tube is screwed vertically into the inoculation opening P of the cuvette until it presses firmly against the seal 52. The first step and subsequent lies in filling the cuvette with eLoader consumption are shown in Figures 9 and 10-13, respectively. The cuvette 12 is now carefully rotated 180 ° so that the contents of the inoculum tube 78 flow completely into the cuvette distribution space R (Figure 10). The cuvette 12 is set to rest on its end space 112 on a horizontal surface 114 · In this position, the longitudinal axis of the cuvette is perpendicular to the horizontal surface, as shown in Figure 11. The cuvette 12 is then rotated 90 ° so that the inoculum flows from the manifold to the interconnected dispensing blocks 15, as shown in Figure 12. This inversion is most easily accomplished by gripping the non-dividing end of the cuvette and lowering it onto a horizontal surface so that the back side 9 of the cuvette (where the cuvette holder B is) rests on the horizontal surface 114 (as shown in Figure 13), the back side 9 providing support for holding blocks. And to cause the media wear to be divided into filling blocks. Drainage into the filling blocks is complete after 8 seconds, after which a final inversion is performed. This only involves rotating the cuvette 90 ° about its longitudinal axis to a vertical position (i.e., the position where it was loaded with antimicron plates) to rest on its lower walls 116 and the leg 118 below its Distribution R, the edges 116 and leg 118 forming a test block support to hold the test block assembly so that are down to allow the medium to run into and remain in these plots. It is very important that the cuvette remains horizontal during this last turn, this is ensured by performing the turn in such a way that both ends of the cuvette remain in contact during the horizontal surface of the turn. Examining a correctly filled cuvette, it can be seen that the height of the medium wear is the same for all
Claims (16)
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US00281946A US3832532A (en) | 1972-08-18 | 1972-08-18 | Method and apparatus for testing antibiotic susceptibility |
US28194672 | 1972-08-18 | ||
FI2537/73A FI53591C (en) | 1972-08-18 | 1973-08-13 | SAETTING THE EFFECTIVENESS OF THE EFFECTIVENESS OF HOS ETT FLERTAL ANTIBIOTICS |
FI253773 | 1973-08-13 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FI762861A FI762861A (en) | 1976-10-07 |
FI60316B true FI60316B (en) | 1981-08-31 |
FI60316C FI60316C (en) | 1981-12-10 |
Family
ID=26156611
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FI762862A FI63491C (en) | 1972-08-18 | 1976-10-07 | PHOTOMETRIC APPARATUS FOER JAEMFOERANDE AV EFFEKTEN AV ETT FLERTAL OLIKA AEMNEN PAO ETT VAETSKESYSTEM |
FI762861A FI60316C (en) | 1972-08-18 | 1976-10-07 | APPARATUS AND EQUIPMENT FOR THE CONSTRUCTION OF ANTIBIOTICS |
FI762863A FI53592C (en) | 1972-08-18 | 1976-10-07 | FOERDELARANORDNING FOER ANTIBIOTIKASKIVOR |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FI762862A FI63491C (en) | 1972-08-18 | 1976-10-07 | PHOTOMETRIC APPARATUS FOER JAEMFOERANDE AV EFFEKTEN AV ETT FLERTAL OLIKA AEMNEN PAO ETT VAETSKESYSTEM |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FI762863A FI53592C (en) | 1972-08-18 | 1976-10-07 | FOERDELARANORDNING FOER ANTIBIOTIKASKIVOR |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
FI (3) | FI63491C (en) |
-
1976
- 1976-10-07 FI FI762862A patent/FI63491C/en not_active IP Right Cessation
- 1976-10-07 FI FI762861A patent/FI60316C/en not_active IP Right Cessation
- 1976-10-07 FI FI762863A patent/FI53592C/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FI762862A (en) | 1976-10-07 |
FI53592B (en) | 1978-02-28 |
FI63491C (en) | 1983-06-10 |
FI60316C (en) | 1981-12-10 |
FI762863A (en) | 1976-10-07 |
FI53592C (en) | 1978-06-12 |
FI63491B (en) | 1983-02-28 |
FI762861A (en) | 1976-10-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
IL49468A (en) | Compartmented container for test samples | |
US4077845A (en) | Disposable inoculation device and process of using same | |
US5602028A (en) | System for growing multi-layered cell cultures | |
US4324859A (en) | Apparatus and associated methods for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work | |
US6268209B1 (en) | Device and method for determination of analyte in a solution | |
US4591556A (en) | Apparatus and associated methods for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work | |
FI93147C (en) | Disposable device for use in chemical, immunochemical and micro-organism analyzes | |
US3895661A (en) | Cuvette apparatus for testing a number of reactants | |
US10119112B2 (en) | Multi-reactor unit for dynamic cell culture | |
US4385115A (en) | Diagnostics testing devices and processes | |
US2904474A (en) | Process and means for carrying out bacteriological operations | |
US3986534A (en) | Device for measuring and dispensing fractionary volumes of liquid samples | |
US20020110905A1 (en) | Perfusion system for cultured cells | |
JP2004004074A (en) | Plate for automatically storing part of sample | |
US3234107A (en) | Diagnostic device | |
TWI760783B (en) | Biological detection cartridge and method for performing the same | |
US20100136608A1 (en) | Multiple Filter Array Assay | |
US3420107A (en) | Disposable urine specimen tube | |
FI60316B (en) | APPARATUS AND EQUIPMENT FOR THE CONSTRUCTION OF ANTIBIOTICS | |
US3205151A (en) | Inoculation device and method | |
ES2676523T3 (en) | Method and apparatus for culturing living cells | |
CN107683413B (en) | Method and device for absorbing water in water-absorbing medium by using liquid sample | |
JP2004520593A (en) | How to maintain test consistency in microbial test arrays | |
JPH06113817A (en) | Determination unit for drug-resistant staphylococcus | |
KR102132630B1 (en) | Rapid Cell Culture Device With Island Structure |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM | Patent lapsed |
Owner name: PFIZER INC. |