ES2922353A1 - Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica - Google Patents
Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica Download PDFInfo
- Publication number
- ES2922353A1 ES2922353A1 ES202130179A ES202130179A ES2922353A1 ES 2922353 A1 ES2922353 A1 ES 2922353A1 ES 202130179 A ES202130179 A ES 202130179A ES 202130179 A ES202130179 A ES 202130179A ES 2922353 A1 ES2922353 A1 ES 2922353A1
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- compartment
- plate
- sperm
- selection
- plate according
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000000520 microinjection Methods 0.000 title claims abstract description 24
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 43
- 210000000287 oocyte Anatomy 0.000 claims description 34
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 11
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 claims description 10
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 8
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 6
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 claims description 5
- 238000000151 deposition Methods 0.000 claims description 4
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 3
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 3
- 210000001771 cumulus cell Anatomy 0.000 description 16
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 6
- 210000002459 blastocyst Anatomy 0.000 description 5
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 description 4
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 description 4
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 description 4
- 210000002503 granulosa cell Anatomy 0.000 description 4
- 238000010187 selection method Methods 0.000 description 4
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 4
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 3
- 108010003272 Hyaluronate lyase Proteins 0.000 description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 3
- 230000004899 motility Effects 0.000 description 3
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 3
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 3
- 210000000582 semen Anatomy 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 241000282465 Canis Species 0.000 description 2
- 241000282324 Felis Species 0.000 description 2
- 102000001974 Hyaluronidases Human genes 0.000 description 2
- 230000009471 action Effects 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 2
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 2
- 229960002773 hyaluronidase Drugs 0.000 description 2
- 230000031864 metaphase Effects 0.000 description 2
- 210000002394 ovarian follicle Anatomy 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 description 2
- 230000008010 sperm capacitation Effects 0.000 description 2
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 2
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 238000003744 In vitro fertilisation Methods 0.000 description 1
- 102000009151 Luteinizing Hormone Human genes 0.000 description 1
- 108010073521 Luteinizing Hormone Proteins 0.000 description 1
- 229920006328 Styrofoam Polymers 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 230000035558 fertility Effects 0.000 description 1
- 230000003325 follicular Effects 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 230000001788 irregular Effects 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 230000021121 meiosis Effects 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 230000003278 mimic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000016087 ovulation Effects 0.000 description 1
- 229940094443 oxytocics prostaglandins Drugs 0.000 description 1
- 230000004962 physiological condition Effects 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 230000031877 prophase Effects 0.000 description 1
- 150000003180 prostaglandins Chemical class 0.000 description 1
- 239000008261 styrofoam Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- 238000012549 training Methods 0.000 description 1
- 210000004340 zona pellucida Anatomy 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0608—Germ cells
- C12N5/0612—Germ cells sorting of gametes, e.g. according to sex or motility
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61B—DIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
- A61B17/00—Surgical instruments, devices or methods, e.g. tourniquets
- A61B17/42—Gynaecological or obstetrical instruments or methods
- A61B17/425—Gynaecological or obstetrical instruments or methods for reproduction or fertilisation
- A61B17/43—Gynaecological or obstetrical instruments or methods for reproduction or fertilisation for artificial insemination
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61D—VETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
- A61D19/00—Instruments or methods for reproduction or fertilisation
- A61D19/02—Instruments or methods for reproduction or fertilisation for artificial insemination
- A61D19/022—Containers for animal semen, e.g. pouches or vials ; Methods or apparatus for treating or handling animal semen containers, e.g. filling or closing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
- C12M1/22—Petri dishes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
- C12M21/06—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for in vitro fertilization
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0608—Germ cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0608—Germ cells
- C12N5/061—Sperm cells, spermatogonia
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M47/00—Means for after-treatment of the produced biomass or of the fermentation or metabolic products, e.g. storage of biomass
- C12M47/04—Cell isolation or sorting
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Reproductive Health (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Surgery (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Pregnancy & Childbirth (AREA)
- Gynecology & Obstetrics (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Placa de selección de espermatozoides para microinyección intracitoplasmática. La presente invención se refiere a una placa de selección fisiológica de espermatozoides para ICSI que comprende una placa de selección con al menos un carril en la parte inferior de la placa de selección, así como un método de selección de espermatozoides mediante el uso de la misma basado en el empleo de células del cúmulo oóforo.
Description
DESCRIPCI N
PLACA DE SELECCIÓN DE ESPERMATOZOIDES PARA MICROINYECCIÓN
INTRACITOPLASMÁTICA
Campo de la invención
La presente invención se encuadra en el campo de la fertilidad masculina y se refiere a una placa para la selección de espermatozoides, así como un método de uso para la selección de espermatozoides.
Antecedentes de la invención
La microinyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) es la tecnología más empleada en la actualidad en los centros de reproducción asistida en todo el mundo. Para la realización de la ICSI hay que disponer los ovocitos maduros y de espermatozoides capacitados en microgotas depositados en una placa de plástico de poliestireno (por ejemplo, USP class Vi). Para su uso comercial, esta placa debe ser estéril y debe ser embriotestada. En general, estas placas de ICSI se transportan a un microscopio invertido y con ayuda de los sistemas de micro manipulación el ovocito es sujetado mientras el espermatozoide es introducido en el mismo.
Para depositar espermatozoides en la placa de ICSI, la muestra seminal debe estar previamente capacitada, es decir el semen se prepara para ser utilizado en las distintas técnicas de reproducción asistida (TRA). Para ello se utilizan principalmente dos técnicas de capacitación espermática: gradientes de densidad y swim-up, cuya finalidad es la obtención de espermatozoides con buena morfología y motilidad. Estas mejoras se han trasladado en el desarrollo de nuevas técnicas de selección espermática con el objetivo de seleccionar espermatozoides más competentes para mejorar los resultados de los tratamientos de reproducción asistida (TRA).
El documento ES1229586U describe un dispositivo para la selección de espermatozoides mediante la aplicación de un gradiente de temperatura.
El documento WO2018154169A1 describe un dispositivo para la selección de espermatozoides según su morfología y capacidad de movimiento.
Sin embargo, estos dispositivos para la selección de espermatozoides no seleccionan espermatozoides con buena capacidad fecundante ni genéticamente normales ya que,
entre otras cosas, no consiguen imitar las condiciones naturales que ocurren en el interior del tracto femenino.
En condiciones in vivo, los espermatozoides en el interior del tracto femenino sufren una serie de cambios a nivel de membrana necesarios para poder fecundar al ovocito. Por el contrario, los documentos del estado de técnica sobre la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI), no tienen en cuenta las condiciones naturales o fisiológicas para la selección del espermatozoide, ya que éste se introduce directamente en el interior de un ovocito maduro (en fase de Meiosis II, Mil) con la ayuda de una micropipeta.
Durante la fecundación natural, el complejo de células del cúmulo oóforo (COC) y su matriz extracelular (MEC) rodean el ovocito y sólo los espermatozoides que atraviesan el COC tienen la oportunidad de alcanzar y penetrar en la zona pelúcida y consecuentemente fertilizar el ovocito. Si el ovocito ovulado está completamente desprovisto de COC, permanece sin fertilizar.
Diversos estudios han demostrado que los espermatozoides capaces de atravesar el complejo del cúmulo oóforo presentan un mayor patrón de capacitación, mejor motilidad y morfología y una menor tasa de fragmentación del ADN (Naknam et al., Effect of sperm selection method by cumulus oophorus complexes and conventional sperm preparation method on sperm quality and DNA fragmentation for assisted reproduction techonology, European Journal of Obstetrics and amp; Gynecology and Reproductive Biology (2019)).
El artículo científico Wang et al 208 (https://doi.Org/10.1016/j.fertnstert.2017.12.026) describe un disco que comprende áreas utilizadas para la selección de espermatozoides donde se utilizan células de COC. El disco comprende 2 áreas alargadas situadas directamente encima del disco, donde se depositan espermatozoides y células de cúmulo oóforo en distintos puntos de dichas áreas. El disco no comprende un área para realizar La microinyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI), ya que esta se realiza posteriormente en otra placa.
Breve descripción de los dibujos
Para complementar la descripción y con objeto de ayudar a una mejor comprensión de las características de la invención, se acompaña como parte integrante de dicha descripción un juego de dibujos en donde con carácter ilustrativo y no limitativo, se ha representado lo siguiente:
Figura 1: Vista frontal superior de la placa de selección, donde se observa la porción (1) o zona de microinyección (1), de diámetro (a) y dos carriles (2a y 2b).
Figura 2: Vista frontal superior de un carril, donde se observa el compartimento de carga de la muestra de espermatozoides (3), el compartimento donde se colocan las células del cúmulo oóforo (4), el compartimento de recolección (5) y el conducto (6) que une los 3 compartimentos.
Figura 3: En la parte superior se observa la vista frontal superior de un carril con las señales indicativas de las vistas transversales de los compartimentos (3) y (5) mostradas en la parte inferior, también se puede observar parte del conducto (6).
Figura 4: En la parte superior se observa la vista frontal superior de un carril con la señal indicativa de la vista transversal longitudinal del mismo en la parte inferior, también se aprecian los compartimentos (3), (4) y (5) y el conducto (6).
Figura 5: Vista de perfil de la placa de selección (1) que comprende una protuberancia (7) que la rodea.
Descripción detallada de la invención
Tal como se usa en el presente documento, el término "ovocito" se refiere a un gameto femenino, que puede ser inmaduro (profase I, Pl, metafase I, MI) o maduro (metafase II, Mil). Dicho ovocito maduro está en condiciones de ser fecundado por un espermatozoide. Preferiblemente, los espermatozoides de la invención son espermatozoides de mamíferos. Mas preferiblemente los espermatozoides se seleccionan de una lista que consiste en humanos, ganado y animales de compañía (que incluyen, pero sin limitación, caninos y felinos). Los espermatozoides de ganado pueden se bovinos, porcinos y/o ovinos. Los espermatozoides de animales de compañía pueden ser, caninos y felinos.
La expresión " células del cúmulo oóforo " se refiere a células en los folículos ováricos en desarrollo que están en proximidad directa o cercana de un ovocito. Las células del cúmulo son células de la granulosa que rodean al ovocito tanto en el folículo ovárico como después de la ovulación.
Como se usa en el presente documento, el término "esperma" o "espermatozoide" se refiere a un gameto reproductivo masculino. Una célula espermática uniflagelar que es móvil o no móvil también se conoce como un espermatozoide.
Los términos “ensanchamiento” y “compartimento” son sinónimos y se emplean de forma intercambiable.
El primer aspecto de la invención se refiere a una placa de selección fisiológica de espermatozoides para la ICSI que comprende una placa de selección (1) con al menos 1 carril (2) situado en una porción de la placa, teniendo cada carril tres compartimentos (3, 4, 5) donde:
- El compartimento (3) es adaptado para recibir una muestra seminal procesada;
- El compartimento (4) está adaptado para depositar células del cúmulo de oóforo y
- el compartimento (5) está adaptado para hospedar y recuperar espermatozoides de la muestra seminal procesada;
estando los compartimentos (3) y (5) situados en los extremos del carril, el compartimento (4) situado entre los compartimentos (3) y (5) y todos ellos comunicados mediante un conducto (6).
El termino porción de la placa se refiere a una de las 2 porciones o mitades divididas mediante el diámetro o eje longitudinal (a) de la placa de selección (Figura 1). Las porciones no tienen por qué tener exactamente la misma área. La placa de selección del primer aspecto tiene la ventaja que, al tener al menos un carril (2), dicho carril está situado en una porción de la placa; esta disposición facilita trabajar sobre la placa evitando la interacción de la muestra seminal con las células del cúmulo del oóforo proporciona una mejor selección y reduce y/o elimina la contaminación de los diferentes compartimentos.
A diferencia del estado de la técnica, el carril (2) está configurado como hendiduras o surcos en la placa (1). Esto permite asegurar el manejo de la placa y del material biológico, tanto la muestra seminal como la muestra de células del cúmulo del oóforo de manera segura, sin perdidas, ni derrames, ni contaminación entre ellas. Consecuentemente se obtienen un mejor rendimiento en el número de espermatozoides
que llegan al carril (5). Preferiblemente, el carril (2) tiene forma circular u ovalada, esto permite un mejor aprovechamiento de la muestra seminal y de la muestra de células del cúmulo del oóforo, reduciendo perdidas de dichas muestras en partes irregulares del carril (2). Consecuentemente se obtienen un mejor rendimiento en el número de espermatozoides que llegan al carril (5). De la misma manera los compartimentos (3, 4 y 5) así como el conducto (6) también se forman mediante una hendidura o surco en dicha palca (1).
La placa comprende una zona o porción de microinyección (1) (ICSI), opuesta a la zona o porción donde se sitúa el carril (2), tal como se ve en la figura 1. Esta porción (1) o zona de microinyección (1) es adecuada para depositar los ovocitos y realizar la microinyección (ICSI) de los espermatozoides seleccionados en la otra porción, porción donde que comprende el carril (2). La disposición del carril (2) o carriles y la zona de microinyección (1) en la placa agiliza la etapa de ICSI y evita contaminaciones de las células del cúmulo oóforo sobre los ovocitos depositados en la porción opuesta. Por lo tanto, la placa del primer aspecto, proporciona una mejor selección y reduce y/o elimina la contaminación entre los diferentes compartimentos y porciones. En una realización preferida la placa del primer aspecto comprende una zona de microinyección adaptada para contener por lo menos una hendidura o surco donde se depositan los ovocitos, preferiblemente como microgotas. Mas preferiblemente, cada hendidura o surco comprende al menos 2 microgotas que contienen ovocitos, más preferiblemente no más 6 microgotas.
El carril (2) está configurado para recibir la muestra seminal, siendo dicha muestra incorporada a en el compartimento (3), donde el compartimento (3) está situado preferiblemente en un extremo. El carril (2) también está configurado para depositar las células del cúmulo del oóforo (4) en el compartimento (4), situado el centro, y para recuperar los espermatozoides que han llegado al compartimento (5). En una realización preferida, el compartimento (5) está situado en un extremo del carril, por lo tanto, El carril (2) está configurado para que los espermatozoides alcancen el compartimento (5), situado en el del extremo opuesto al compartimento (3).
En una realización preferida, la placa de selección (1) presenta 2 carriles (2a) y 2b), estando el carril (2a) o (2b) situado paralelamente al otro carril (2a) o (2b) y/o estando ambos carriles 2(a) y 2(b) situados en la misma porción de la placa. Siendo dicha porción la parte inferior según se ve en la figura 1), de una de las 2 porciones divididas mediante el diámetro o eje longitudinal (a) de la placa de selección
En otra realización preferida del primer aspecto, la placa (1) comprende 2 carriles (2a) y (2b) paralelos situados a una la distancia de separación de al menos 3 mm, evitar contaminaciones entre los compartimentos de dos carriles diferentes, preferiblemente para evitar contaminaciones del material biológico (células del cúmulo del oóforo) del compartimento (4) en el compartimento (3) (muestra seminal). Preferiblemente, la distancia de separación es de al menos 5 mm, más preferiblemente 7 mm. La distancia de separación entre carriles se mide tomando como punto de referencia el centro de cada carril. En ningún caso los carriles podrán estar en contacto entre ellos.
La placa de selección puede presentar cualquier geometría, en una realización preferida la placa de selección es circular u ovalada, ya que se facilita el agarre y su manejo. A efectos de una mejor claridad, en el caso de que la geometría de la placa no sea regular, el diámetro o eje longitudinal de la placa a considerar para identificar cada porción de la misma es aquel que conecte los 2 extremos más distantes.
En una realización particular, la placa de selección (1) puede reutilizarse. En una realización preferida la placa de selección (1) es un artículo desechable configurado para un solo uso. En una realización preferida la placa de selección es de poliestireno, más preferiblemente el poliestireno tiene una densidad desde 1- 1.1 g/CC, resistencia a la tracción de 35 -50 MPa y/o un módulo de elasticidad desde 2.7-3.5 GPa.
En otra realización preferida del primer aspecto, la longitud del carril (2) está en un rango entre 15 y 40 mm, más preferiblemente entre 20 y 30 mm. En otra realización preferida, los carriles (2a) y (2b) pueden tener la misma longitud.
En otra realización preferida del primer aspecto, la distancia entre el eje longitudinal o diámetro de la placa de selección (a) y el carril más cercano al mismo es de al menos 3 mm, preferiblemente 5 mm, más preferiblemente 7 mm.
El carril de la placa de selección comprende al menos los compartimentos (3) (4), (5) comunicadas entre sí por un conducto (6), tal como se describe en las Figuras 2 y 3.
El compartimento (3) es adecuado o configurado para para recibir una muestra seminal procesada, es decir donde se depositan los espermatozoides y está situado en los extremos del carril (2). El compartimento (3) también puede ser referido como compartimento de carga.
El compartimento (4) está configurado para depositar las células del cúmulo de oóforo y está situado entre los compartimentos de los extremos (3) y (5)
El compartimento (5), corresponde con el compartimento de recuperación, es decir, al área final donde llegaran los espermatozoides que han conseguido atravesar el compartimento (4). Los espermatozoides contenidos en el compartimento (5) podrán ser recuperados mediante medios de extracción, preferiblemente mediante microinyección ICSI con una micropipeta, para ser inyectados en etapas posteriores en el interior del ovocito.
En una realización preferida, la anchura o diámetro de los compartimentos (3), (4) y (5) puede ser idéntica o diferente y está comprendida en un intervalo entre 2,2 y 5 mm, preferiblemente entre 2,5 y 4 mm. (Figura 3).
En una realización más preferida, la anchura o diámetro del compartimento (4) comprendida en un intervalo entre 2,2 y 4 mm, proporcionado simultáneamente una buena eficacia, así como un buen rendimiento. Cuando anchura o diámetro es inferior a 2,2 mm el rendimiento disminuye. Asimismo, cuando la anchura o diámetro es superior a 4 mm la eficacia disminuye. Las dimensiones del compartimento (4) también lo hace adecuado para para depositar las células del cúmulo de oóforo.
En otra realización preferida la anchura o diámetro del compartimento (5) está comprendida en un intervalo entre 2,2 y 5 mm, preferiblemente entre 2,2-4 mm. Las dimensiones del compartimento (5) y su posición en el carril lo hace adecuado para recibir los espermatozoides que han atravesado el compartimento (4) y para poder recuperarlos mediante medios de extracción, preferiblemente mediante microinyección ICSI con una micropipeta, para ser inyectados en etapas posteriores en el interior del ovocito.
En otra realización preferida la anchura o diámetro del compartimento (3) está comprendida en un intervalo entre 2,2 y 4 mm, más preferiblemente entre 2,5-3 mm. Las dimensiones del compartimento (3) lo hace adecuado para recibir y depositar la muestra seminal procesada, así como para optimizar el rendimiento en relación al número de espermatozoides que llegan al compartimento (5)
En otra realización particular los compartimentos de los extremos (3) y (5) son idénticos o diferentes, y pueden adoptar cualquier conformación poligonal. En una realización
preferida de la placa de selección, los compartimentos de los extremos (3) y (5) son circulares u ovalados.
En otra realización preferida de la placa de selección, el compartimento central (4) está situado entre los compartimentos de los extremos (3) y (5) a la misma distancia de los compartimentos de los extremos (3) y (5) (Figura 4).
En otra realización preferida, la placa de selección del primer aspecto además comprender una tapa que cubre toda la superficie de la misma. De este modo la placa del primer aspecto presenta la ventaja de que evita la evaporación de los líquidos en la muestra seminal, en las células del cúmulo del oóforo y durante la etapa de selección de espermatozoides, preservando la calidad y las concentraciones tanto la muestra seminal como de las células de cumulo y mejorando el rendimiento en relación al número de espermatozoides recuperados en el compartimento (5) y la selección de espermatozoides apropiados en tanto a su morfología y motilidad, para la microinyección posterior.
En otra realización preferida, la anchura o amplitud del conducto (6) está en un rango entre 1 y 2 mm, preferiblemente entre 1,2 y 1,6 mm. Estos rangos permitan trabajar con diferentes tipos de muestras seminales, en tanto a su calidad, mejorando así la versatilidad y aplicabilidad de la palca a su uso con muestras seminales de diferentes sujetos
En otra realización preferida del primer aspecto, la placa comprende, además, una protuberancia (7) que rodea al contorno, como se ve en la figura 5. Dicha protuberancia (7) facilita el agarre y la manipulación de la placa. Además, permite el intercambio gaseoso entre el interior de la placa y el exterior al dejar un pequeño espacio entre la porción donde se sitúa el carril (2) y la tapa, lo que mejora la extracción de los espermatozoides del compartimento (5) y la microinyección de los espermatozoides en los ovocitos en la zona de microinyección (1), ayudando a mantener un pH estable, en particular cuando no se use un medio tamponado, reduciendo fallos en la fecundación.
El segundo aspecto de la invención está relacionado con un método para la selección fisiológica de espermatozoides que comprende el uso la placa de selección de acuerdo al primer aspecto de la invención a partir de una muestra seminal procesada. Dicho método proporciona una buena y eficiente selección de espermatozoides, así como un buen rendimiento. La palca y el método del segundo aspecto, son adecuado para la selección de espermatozoides para la fecundación de ovocitos y/o óvulos de mujeres
de edad madura, preferiblemente en mujeres con edades entre 34 y 44 años, más preferiblemente en mujeres entre 34-40 años.
El segundo aspecto de la invención está relacionado con un método para la selección fisiológica de espermatozoides que comprende el uso de la placa del primer aspecto y comprende por lo menos las siguientes etapas:
a) proporcionar una muestra que comprende células del cúmulo de oóforo en el compartimento (4) de la placa del primer aspecto,
b) proporcionar una muestra seminal procesada en el compartimento (3) de la placa del primer aspecto,
c) incubar la placa del primer aspecto a una temperatura en un rango entre 30 45 °C, durante un periodo de tiempo comprendido entre 10 min y 3 horas, y d) extraer los espermatozoides que se encuentren en el compartimento de recuperación (5).
El método del segundo aspecto no se lleva a cabo dentro del cuerpo humano o animal. En el contexto de la presente invención, el termino muestra seminal procesada se refiere a una muestra seminal a la que se le ha eliminado el plasma seminal, por lo tanto, dicha muestra seminal no comprende sustancias descapacitantes, prostaglandinas y/o leucocitos La muestra seminal procesada se puede obtener siguiendo procesos del conocimiento general del estado de la técnica, conocidos por el experto en la materia. La muestra seminal procesada se puede obtener mediante un proceso que comprende: la realización de un seminograma de dicha muestra, seguido de la realización de un procedimiento para el tratamiento de la muestra seminal, por gradiente de densidad o swim-up. Una vez finalizado el gradiente de densidad se ajusta la muestra seminal procesada para obtener la muestra seminal con en una concentración de espermatozoides/ml en un medio de lavado específico de espermatozoides, como por ejemplo el método conocido en el estado de la técnica como sperm-washing, en un rango entre 5 y 20 millones/ml, preferiblemente 10 millones/ml. Preferiblemente, la muestra seminal procesada se añade en la etapa b) una cantidad de entre 1 y 10 pL, preferiblemente en un rango entre 2-5 pL.
Las células del cúmulo de oóforo de la etapa a) se obtienen previamente a partir de los complejos cúmulo-ovocitos. Los complejos cúmulo-ovocitos se obtienen mediante punción folicular. Con el uso de jeringas se retiran parte de los cúmulos y se guardan para su posterior utilización. Preferiblemente, se seleccionarán los cúmulos de aspecto
laxo. Dicha característica morfológica se puede determinar por un experto en la materia mediante el uso de una lupa. A continuación, se procede a la decumulación por la acción de la enzima hialuronidasa, el componente principal del ECM (matriz extracelular), que es sintetizado por las células cúmulos después de la oleada de LH (hormona luteinizante), según un protocolo habitual en el estado de la técnica. Brevemente, el protocolo de decumulación comprende la eliminación de las células del cúmulo mediante el empleo de hialuronidasa. Los complejos cúmulo-ovocito no deben de estar más de 30 segundos en contacto con la hialuronidasa. Durante este proceso los complejos se manipulan con unos capilares de diferentes diámetros que ayudan a la eliminación, por acción mecánica, de las células de la granulosa que quedan más adheridas a los ovocitos. Este proceso se realiza fuera de la incubadora durante un periodo de tiempo de 10 minutos. Preferiblemente, dicho periodo de tiempo no se extienda más de 10 min. Tras este procedimiento se obtienen los Mil disponibles para la microinyección y las células del cúmulo oóforo para la selección de espermatozoides.
En una realización preferida del método segundo aspecto, la muestra seminal procesada es humana.
En una realización preferida del método segundo aspecto, el proceso de incubación de la etapa c) se lleva a cabo mediante el uso de unos medios adecuados para proporcionar una temperatura a la placa en un rango entre 30-45°C, preferiblemente entre 36-380C. Preferiblemente, los medios adecuados para proporcionar una temperatura se seleccionan de la lista que consiste en, una estufa, una incubadora, una lámpara de calor o un horno de convección.
Durante el proceso de incubación, lo espermatozoides depositados en el compartimento (3) migran hacia las células del cúmulo del oóforo previamente depositadas en el compartimento (4) a través del canal (2), preferiblemente a través de 2 canales (2b) y (2b), y solo aquellos que consigan atravesarlas pasaran al compartimento (5), preferiblemente situado en el extremo del carril.
En una realización preferida del método segundo aspecto, el periodo de incubación, de la etapa c) tiene lugar en un periodo de tiempo comprendido en un rango entre 10 min y 3 horas, preferiblemente entre 30 min y 120 min, más preferiblemente entre 45 min y 75 min, aún más preferiblemente 60 min. Estos rangos de tiempo utilizados, mejoran el número de espermatozoides que se encuentran en el compartimento (5) así como la
calidad de los espermatozoides que presentarán una mayor capacitación para la posterior microinyección intracitoplasmática del ovocito.
En una realización particular, el método de selección del segundo aspecto comprende una etapa adicional e), previa a la etapa a), que comprende la adición de medio de lavado específico de espermatozoides al carril (2), preferiblemente el medio de lavado es el método sperm-wash. Dicha etapa mejora número de blastocistos obtenidos y su calidad, así como la selección de los espermatozoides.
El tercer aspecto de la presente invención está relacionado con el uso de la placa de selección de acuerdo al primer aspecto de la invención en un método para la selección de espermatozoides.
El cuarto aspecto de la presente invención está relacionado con el uso de la placa de selección de acuerdo al primer aspecto un método de fecundación in vitro. Placa del primer aspecto para su uso en método de fecundación in vitro, preferiblemente el método de fecundación in vitro es mediante Inyección Intracitoplasmática de Espermatozoides (ICSI).
El quinto aspecto de la presente invención comprende un método de fecundación in vitro que comprende por lo menos las etapas del método de selección de espermatozoides del segundo aspecto y adicionalmente una etapa que comprende la fecundación mediante microinyección de la muestra de espermatozoides obtenida en la etapa d) del método del segundo aspecto en una muestra de ovocitos, estando dichos ovocitos depositados en microgotas de un medio tamponado. En una realización más preferida, las microgotas que comprenden ovocitos, se han depositado en la zona de microinyección (1) de la placa del primer aspecto.
En una realización preferida del método del quinto aspecto, se depositan desde 2 microgotas de ovocitos hasta 6 microgotas. Las microgotas comprenden, preferiblemente un medio tamponado que comprenden ovocitos.
Ejemplo de placa según el primer aspecto y método del segundo aspecto para la selección fisiológica de espermatozoides
Evaluación de la efectividad de la placa del aspecto 1 y e l método de acuerdo al primer aspecto para la selección de espermatozoides para la terapia ICSI.
Se utilizó la placa de primer aspecto con 1 solo carril (2). La placa usada correspondía a la de la figura 4. Anchura del compartimento (3): 2-4 mm, anchura del compartimento (4): 3-4 mm y anchura del compartimento (5): 4 mm. Amplitud del conducto (6) 1,5 mm. Placa de poliestireno.
Método de selección de espermatozoides
Se proporciono una muestra de del cúmulo de oóforo, obtenidas previamente a partir de los complejos cúmulo-ovocitos tal como se describe en el segundo aspecto de la invención. Dicha muestra se depositó en el compartimento (4) de la placa.
Seguidamente, se proporcionó 4 pL de una muestra seminal procesada y se depositó en el compartimento (3) de la placa.
A continuación, se incubo la placa a una temperatura en un rango entre 37 °C, durante un periodo de tiempo comprendido entre 60 min. Una vez completado el proceso de incubación, se observaron los espermatozoides que consiguieron llegar al compartimento de recuperación (5). Finalmente se extrajeron dichos espermatozoides del compartimento 5 con una micropipeta para ser ¡inyectados posteriormente en los ovocitos que se encuentran en las microgotas en la porción (1) o zona de microinyección.
Para el estudio se evaluó el efecto en el desarrollo embrionario hasta el estadio de blastocito y su calidad.
Para ello se realizó un estudio prospectivo randomizado en el que se incluyeron 995 ovocitos procedentes de 90 pacientes que se sometieron a un tratamiento de FIV. Se generaron dos grupos: grupo control, 498 ovocitos, que fueron micro inyectados con espermatozoides seleccionados de manera convencional y grupo de estudio (n=497) que fueron micro inyectados con espermatozoides seleccionados mediante células de la granulosa en la placa. Todas las muestras seminales fueron procesadas mediante gradientes de densidad.
Casos válidos para la tasa de formación de blastocisto y calidad embrionaria=757 ovocitos fecundados. El grupo de estudio con la placa de primer aspecto y el método del primer aspecto se comparó con el grupo control. El grupo estudio se preparó con
células de la granulosa. La preparación espermática en todos los casos fue realizada mediante métodos convencionales (gradientes de densidad)
Tabla 1: Resultado del estudio.
Los ovocitos fertilizados en la placa del primer aspecto, con los espermatozoides seleccionados de la placa del primer aspecto de la invención fue superior a los del grupo control. Este resultado es especialmente bueno, para los ovocitos de mujeres en edades maduras entre 34-44 años, mas preferiblemente entre 34-40 años. La media de edad de les tud io fuede37años.
Los resultados con la placa y el método de la invención, mostraron mejoras significativas en relación a la tasa de formación de blastocitos, al porcentaje de blastocitos de buena calidad y a la fecundación los cuales fueron más altos con la placa de la invención comprado con el grupo control, como se ve en la tabla 1.
Claims (15)
1. Una placa de selección fisiológica de espermatozoides para ICSI que comprende al menos dos porciones, donde una porción comprende al menos un carril (2), teniendo cada carril tres compartimentos (3, 4, 5) donde:
- El compartimento (3) está adaptado para recibir una muestra seminal procesada;
- El compartimento (4) está adaptado para depositar células del cúmulo de oóforo;
- el compartimento (5) está adaptado para hospedar y recuperar espermatozoides de la muestra seminal procesada;
estando los compartimentos (3) y (5) situados en los extremos del carril (2), el compartimento (4) situado entre los compartimentos de los extremos (3) y (5) y todos ellos comunicados mediante un conducto (6);
donde, el carril (2) está configurado como hendiduras o surcos en la placa.
2. La placa según la reivindicación anterior, que comprende al menos 2 carriles (2b) y (2a) situados paralelamente el uno al otro y en la parte inferior de la placa.
3. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, que comprende una zona de microinyección (1) situada en la porción opuesta porción donde se sitúa el carril (2), siendo dicha zona de microinyección (1) adecuada para depositar ovocitos y realizar la microinyección de los espermatozoides seleccionados del compartimento (5) en los ovocitos depositados.
4. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde los carriles (2a) y (2b) tienen la misma longitud.
5. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde los carriles (2a) y (2b) están separados por una distancia de al menos 3 mm.
6. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde los compartimentos (3), (4) y (5) tienen una anchura en un rango entre 2,2 y 5 mm.
7. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde el compartimento (4) tienen una anchura en un rango entre 2,2 y 4 mm y el compartimento (5) tienen una anchura en un rango entre 2,2 y 5 mm.
8. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde el compartimento (4) está situado a la misma distancia de los compartimentos de los extremos (3) y (5).
9. La placa según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, donde el conducto (6) tiene una amplitud en un rango entre 1 y 2 mm.
10. Método para la selección fisiológica de espermatozoides que comprende el uso de la placa de selección de acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones 1 9, para una muestra seminal procesada, preferiblemente la muestra seminal es humana.
11. Método según la reivindicación anterior, que comprende las siguientes etapas:
a) proporcionar células del cúmulo de oóforo en el compartimento (4) de la placa de selección según cualquier de las reivindicaciones 1-8,
b) proporcionar una muestra seminal procesada en el compartimento (3) de la placa de selección según cualquier de las reivindicaciones 1-8,
c) incubar la placa obtenida en la etapa a) y/o b) a una temperatura en un rango entre 30-45 °C, durante un periodo de tiempo comprendido entre 10 min y 3 horas, y
d) extraer los espermatozoides que se encuentren en el compartimento (5) y
12. Método según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores 10 - 11, donde la muestra seminal procesada de la etapa b) se proporciona en una cantidad de entre 1 y10 pL.
13. Método según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores 10-12, donde periodo de incubación, de la etapa c) está comprendido en un rango entre 10 min y 3 horas, preferiblemente entre 30 min y 90 min.
14. Método según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores 10-13, donde el proceso de incubación de la etapa c) se lleva a cabo en un rango de temperatura entre 30-450C, preferiblemente, entre 36-380C.
15. Uso de la placa de selección según cualquier de las reivindicaciones 1-9 para en un método para la selección de espermatozoides o un método de fecundación in vitro mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES202130179A ES2922353A1 (es) | 2021-03-03 | 2021-03-03 | Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica |
EP22715117.2A EP4303299A1 (en) | 2021-03-03 | 2022-03-03 | Plate for selecting spermatozoa for intracytoplasmic microinjection |
PCT/ES2022/070118 WO2022184960A1 (es) | 2021-03-03 | 2022-03-03 | Placa de selección de espermatozoides para microinyección intracitoplasmática |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES202130179A ES2922353A1 (es) | 2021-03-03 | 2021-03-03 | Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2922353A1 true ES2922353A1 (es) | 2022-09-13 |
Family
ID=81307368
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES202130179A Pending ES2922353A1 (es) | 2021-03-03 | 2021-03-03 | Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP4303299A1 (es) |
ES (1) | ES2922353A1 (es) |
WO (1) | WO2022184960A1 (es) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2709250A1 (fr) * | 1993-08-23 | 1995-03-03 | Ccd Laboratoire | Dispositif pour sélectionner des spermatozoïdes. |
CN201469382U (zh) * | 2009-07-10 | 2010-05-19 | 曾勇 | 用于体外受精的培养皿 |
CN202322835U (zh) * | 2011-12-05 | 2012-07-11 | 戴志俊 | 一种优选精子的体外受精培养皿 |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105936890A (zh) * | 2016-06-27 | 2016-09-14 | 广西壮族自治区妇幼保健院 | 应用卵丘细胞复合物优选精子的方法 |
AR107746A1 (es) | 2017-02-24 | 2018-05-30 | Herberto Ernesto Hector Repetto | Dispositivo y método de separación de células móviles |
ES1229586Y (es) | 2019-01-16 | 2019-08-09 | Instituto Nac De Investigacion Y Tecnologia Agraria Y Alimentaria Inia | Dispositivo para la seleccion de espermatozoides |
-
2021
- 2021-03-03 ES ES202130179A patent/ES2922353A1/es active Pending
-
2022
- 2022-03-03 WO PCT/ES2022/070118 patent/WO2022184960A1/es active Application Filing
- 2022-03-03 EP EP22715117.2A patent/EP4303299A1/en active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2709250A1 (fr) * | 1993-08-23 | 1995-03-03 | Ccd Laboratoire | Dispositif pour sélectionner des spermatozoïdes. |
CN201469382U (zh) * | 2009-07-10 | 2010-05-19 | 曾勇 | 用于体外受精的培养皿 |
CN202322835U (zh) * | 2011-12-05 | 2012-07-11 | 戴志俊 | 一种优选精子的体外受精培养皿 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
WANG CAIZHU ET AL. Cumulus oophorus complexes favor physiologic selection of spermatozoa for intracytoplasmic sperm injection. Fertility and Sterility, 20180328 Elsevier, AMSTERDAM, NL. , 28/03/2018, Vol. 109, Páginas 823 - 831 ISSN 0015-0282, (DOI: doi:10.1016/j.fertnstert.2017.12.026) * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2022184960A1 (es) | 2022-09-09 |
EP4303299A1 (en) | 2024-01-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Fadini et al. | Human oocyte cryopreservation: comparison between slow and ultrarapid methods | |
Silber et al. | High fertilization and pregnancy rate after intracytoplasmic sperm injection with spermatozoa obtained from testicle biopsy | |
Cochran et al. | Live foals produced from sperm-injected oocytes derived from pregnant mares | |
Keefer et al. | Cleavage development of bovine oocytes fertilized by sperm injection | |
Choi et al. | Equine blastocyst development after intracytoplasmic injection of sperm subjected to two freeze-thaw cycles | |
Tesarik et al. | Fertilizable oocytes reconstructed from patient's somatic cell nuclei and donor ooplasts | |
Cox et al. | In vitro fertilization and development of OPU derived goat and sheep oocytes | |
JP2005529609A (ja) | 体外受精 | |
Goto et al. | Co-culture of in vitro fertilized bovine embryos with different cell monolayers | |
Davachi et al. | The effect of conspecific ampulla oviductal epithelial cells during in vitro maturation on oocyte developmental competence and maturation-promoting factor (MPF) activity in sheep | |
Wrenzycki | In vitro production of (Farm) animal embryos | |
Chang et al. | Human oocyte vitrification: in-vivo and in-vitro maturation outcomes | |
Kurotaki et al. | Practical reproductive techniques for the common marmoset | |
Landim-Alvarenga et al. | New assisted reproductive technologies applied to the horse industry: successes and limitations | |
Lee et al. | Effects of laser-assisted thinning versus opening on clinical outcomes according to maternal age in patients with repeated implantation failure | |
ES2922353A1 (es) | Placa de seleccion de espermatozoides para microinyeccion intracitoplasmatica | |
Yamamoto et al. | Ooplasmic injections of rabbit round spermatid nuclei or intact round spermatids from fresh, cryopreserved and cryostored samples | |
Michal et al. | Cryopreservation of Human Gametes and Embryos: Current State and Future Perspectives | |
Layek et al. | Ovum pick-up and in vitro embryo production in bovine | |
Schoysman et al. | Oocyte insemination with spermatozoa precursors | |
WO2021198547A1 (es) | Selección de espermatozoides capacitados | |
LADYKA et al. | APPLICATION OF MODERN BIOTECHNOLOGICAL AND GENETIC METHODS IN THE SYSTEM OF PRESERVING THE GENE POOL OF THE UKRAINIAN BROWN DAIRY BREED. | |
Osman et al. | Outcomes of Hyaluronic Acid and HOS Test on Sperm Selection for Intracytoplasmic Sperm Injection: A Comparative Study | |
KR100860082B1 (ko) | 프로스타싸이클린 유사체 처리에 의한 포유동물 수정란대량 생산 방법 | |
ES1295630U (es) | Seleccion de espermatozoides capacitados |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
BA2A | Patent application published |
Ref document number: 2922353 Country of ref document: ES Kind code of ref document: A1 Effective date: 20220913 |
|
PA2A | Conversion into utility model |
Effective date: 20240806 |