ES2675121T3 - Una estructura multicapa - Google Patents
Una estructura multicapa Download PDFInfo
- Publication number
- ES2675121T3 ES2675121T3 ES10837114.7T ES10837114T ES2675121T3 ES 2675121 T3 ES2675121 T3 ES 2675121T3 ES 10837114 T ES10837114 T ES 10837114T ES 2675121 T3 ES2675121 T3 ES 2675121T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- layer
- enzyme
- laminar
- multilayer structure
- fuel
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 239000010410 layer Substances 0.000 claims abstract description 146
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims abstract description 63
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims abstract description 63
- 239000000446 fuel Substances 0.000 claims abstract description 55
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 claims abstract description 36
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 19
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 claims abstract description 15
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims abstract description 11
- 230000001590 oxidative effect Effects 0.000 claims abstract description 6
- 238000012546 transfer Methods 0.000 claims abstract description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims description 61
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 23
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 20
- 239000011111 cardboard Substances 0.000 claims description 18
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 18
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 16
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 14
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 14
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 claims description 14
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 claims description 14
- 108010015776 Glucose oxidase Proteins 0.000 claims description 11
- KTWOOEGAPBSYNW-UHFFFAOYSA-N ferrocene Chemical compound [Fe+2].C=1C=C[CH-]C=1.C=1C=C[CH-]C=1 KTWOOEGAPBSYNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 241000589232 Gluconobacter oxydans Species 0.000 claims description 8
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 8
- 235000019420 glucose oxidase Nutrition 0.000 claims description 8
- RXGJTUSBYWCRBK-UHFFFAOYSA-M 5-methylphenazinium methyl sulfate Chemical compound COS([O-])(=O)=O.C1=CC=C2[N+](C)=C(C=CC=C3)C3=NC2=C1 RXGJTUSBYWCRBK-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 7
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims description 7
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 7
- 238000007639 printing Methods 0.000 claims description 7
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 claims description 6
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 claims description 6
- 239000000123 paper Substances 0.000 claims description 6
- 239000004366 Glucose oxidase Substances 0.000 claims description 5
- 229940116332 glucose oxidase Drugs 0.000 claims description 5
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 5
- SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N D-xylopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N 0.000 claims description 4
- 108020005199 Dehydrogenases Proteins 0.000 claims description 4
- QIGBRXMKCJKVMJ-UHFFFAOYSA-N Hydroquinone Chemical compound OC1=CC=C(O)C=C1 QIGBRXMKCJKVMJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- XJLXINKUBYWONI-DQQFMEOOSA-N [[(2r,3r,4r,5r)-5-(6-aminopurin-9-yl)-3-hydroxy-4-phosphonooxyoxolan-2-yl]methoxy-hydroxyphosphoryl] [(2s,3r,4s,5s)-5-(3-carbamoylpyridin-1-ium-1-yl)-3,4-dihydroxyoxolan-2-yl]methyl phosphate Chemical compound NC(=O)C1=CC=C[N+]([C@@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@H](COP([O-])(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]3[C@H]([C@@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](O3)N3C4=NC=NC(N)=C4N=C3)O)O2)O)=C1 XJLXINKUBYWONI-DQQFMEOOSA-N 0.000 claims description 4
- 239000000370 acceptor Substances 0.000 claims description 4
- -1 butyl ferrocene Chemical compound 0.000 claims description 4
- 239000002041 carbon nanotube Substances 0.000 claims description 4
- 229910021393 carbon nanotube Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 230000008021 deposition Effects 0.000 claims description 4
- 108010054770 glucose dehydrogenase (pyrroloquinoline-quinone) Proteins 0.000 claims description 4
- 150000002772 monosaccharides Chemical class 0.000 claims description 4
- 229930027945 nicotinamide-adenine dinucleotide Natural products 0.000 claims description 4
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 4
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 4
- PCCVSPMFGIFTHU-UHFFFAOYSA-N tetracyanoquinodimethane Chemical compound N#CC(C#N)=C1C=CC(=C(C#N)C#N)C=C1 PCCVSPMFGIFTHU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 claims description 3
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 claims description 3
- 230000027756 respiratory electron transport chain Effects 0.000 claims description 3
- 241000588624 Acinetobacter calcoaceticus Species 0.000 claims description 2
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 claims description 2
- 229930091371 Fructose Natural products 0.000 claims description 2
- 239000005715 Fructose Substances 0.000 claims description 2
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 claims description 2
- 108010050375 Glucose 1-Dehydrogenase Proteins 0.000 claims description 2
- 108010035289 Glucose Dehydrogenases Proteins 0.000 claims description 2
- OFOBLEOULBTSOW-UHFFFAOYSA-N Malonic acid Chemical compound OC(=O)CC(O)=O OFOBLEOULBTSOW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 108700020962 Peroxidase Proteins 0.000 claims description 2
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 claims description 2
- 241000589774 Pseudomonas sp. Species 0.000 claims description 2
- 241000204673 Thermoplasma acidophilum Species 0.000 claims description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 claims description 2
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 claims description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 claims description 2
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 claims description 2
- 229920001940 conductive polymer Polymers 0.000 claims description 2
- MQHZGUNMWQBVDK-UHFFFAOYSA-N cyclopenta-1,3-diene cyclopenta-2,4-diene-1-carbaldehyde iron(2+) Chemical class [Fe++].c1cc[cH-]c1.O=Cc1ccc[cH-]1 MQHZGUNMWQBVDK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- BFUZANWGLHWYKK-UHFFFAOYSA-N cyclopenta-1,3-diene iron(2+) 5-methylcyclopenta-1,3-dien-1-ol Chemical compound [Fe++].c1cc[cH-]c1.C[c-]1cccc1O BFUZANWGLHWYKK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 150000002016 disaccharides Chemical class 0.000 claims description 2
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 claims description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 claims description 2
- KYMNSBSWJPFUJH-UHFFFAOYSA-N iron;5-methylcyclopenta-1,3-diene;methylcyclopentane Chemical compound [Fe].C[C-]1C=CC=C1.C[C-]1[CH-][CH-][CH-][CH-]1 KYMNSBSWJPFUJH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000012978 lignocellulosic material Substances 0.000 claims description 2
- 239000002923 metal particle Substances 0.000 claims description 2
- BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N nicotinamide-adenine dinucleotide Chemical compound C1=CCC(C(=O)N)=CN1[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@@H](O2)N2C3=NC=NC(N)=C3N=C2)O)O1 BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N 0.000 claims description 2
- 239000011087 paperboard Substances 0.000 claims description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 2
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims description 2
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 2
- 239000002344 surface layer Substances 0.000 claims description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims 1
- 239000011229 interlayer Substances 0.000 abstract 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 15
- 239000000976 ink Substances 0.000 description 14
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 239000010439 graphite Substances 0.000 description 12
- 229910002804 graphite Inorganic materials 0.000 description 12
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 12
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 8
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 7
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 7
- 101710088194 Dehydrogenase Proteins 0.000 description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 150000001323 aldoses Chemical class 0.000 description 6
- 239000003990 capacitor Substances 0.000 description 6
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 4
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 3
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 3
- 230000000975 bioactive effect Effects 0.000 description 3
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 3
- 238000007789 sealing Methods 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920002134 Carboxymethyl cellulose Polymers 0.000 description 2
- 229920000298 Cellophane Polymers 0.000 description 2
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 2
- 239000002551 biofuel Substances 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 2
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 2
- 239000003337 fertilizer Substances 0.000 description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 238000007650 screen-printing Methods 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- CJAOGUFAAWZWNI-UHFFFAOYSA-N 1-n,1-n,4-n,4-n-tetramethylbenzene-1,4-diamine Chemical compound CN(C)C1=CC=C(N(C)C)C=C1 CJAOGUFAAWZWNI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- 101100490769 Rattus norvegicus Aldh1a1 gene Proteins 0.000 description 1
- 229920002684 Sepharose Polymers 0.000 description 1
- 241000222357 Trametes hirsuta Species 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- OHDRQQURAXLVGJ-HLVWOLMTSA-N azane;(2e)-3-ethyl-2-[(e)-(3-ethyl-6-sulfo-1,3-benzothiazol-2-ylidene)hydrazinylidene]-1,3-benzothiazole-6-sulfonic acid Chemical compound [NH4+].[NH4+].S/1C2=CC(S([O-])(=O)=O)=CC=C2N(CC)C\1=N/N=C1/SC2=CC(S([O-])(=O)=O)=CC=C2N1CC OHDRQQURAXLVGJ-HLVWOLMTSA-N 0.000 description 1
- 230000002210 biocatalytic effect Effects 0.000 description 1
- 239000001768 carboxy methyl cellulose Substances 0.000 description 1
- 235000010948 carboxy methyl cellulose Nutrition 0.000 description 1
- 239000008112 carboxymethyl-cellulose Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 230000003197 catalytic effect Effects 0.000 description 1
- 238000005341 cation exchange Methods 0.000 description 1
- 239000011247 coating layer Substances 0.000 description 1
- 238000004440 column chromatography Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000000287 crude extract Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000006356 dehydrogenation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 239000003792 electrolyte Substances 0.000 description 1
- 239000008151 electrolyte solution Substances 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 235000012907 honey Nutrition 0.000 description 1
- 239000004973 liquid crystal related substance Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000036284 oxygen consumption Effects 0.000 description 1
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000005381 potential energy Methods 0.000 description 1
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 229940074404 sodium succinate Drugs 0.000 description 1
- ZDQYSKICYIVCPN-UHFFFAOYSA-L sodium succinate (anhydrous) Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)CCC([O-])=O ZDQYSKICYIVCPN-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000008362 succinate buffer Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01M—PROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
- H01M4/00—Electrodes
- H01M4/86—Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
- H01M4/88—Processes of manufacture
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01M—PROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
- H01M4/00—Electrodes
- H01M4/86—Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
- H01M4/88—Processes of manufacture
- H01M4/8825—Methods for deposition of the catalytic active composition
- H01M4/8828—Coating with slurry or ink
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01M—PROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
- H01M4/00—Electrodes
- H01M4/86—Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
- H01M4/90—Selection of catalytic material
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01M—PROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
- H01M4/00—Electrodes
- H01M4/86—Inert electrodes with catalytic activity, e.g. for fuel cells
- H01M4/90—Selection of catalytic material
- H01M4/9008—Organic or organo-metallic compounds
-
- H—ELECTRICITY
- H01—ELECTRIC ELEMENTS
- H01M—PROCESSES OR MEANS, e.g. BATTERIES, FOR THE DIRECT CONVERSION OF CHEMICAL ENERGY INTO ELECTRICAL ENERGY
- H01M8/00—Fuel cells; Manufacture thereof
- H01M8/16—Biochemical fuel cells, i.e. cells in which microorganisms function as catalysts
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E60/00—Enabling technologies; Technologies with a potential or indirect contribution to GHG emissions mitigation
- Y02E60/30—Hydrogen technology
- Y02E60/50—Fuel cells
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P70/00—Climate change mitigation technologies in the production process for final industrial or consumer products
- Y02P70/50—Manufacturing or production processes characterised by the final manufactured product
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Manufacturing & Machinery (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Sustainable Energy (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Materials Engineering (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Inert Electrodes (AREA)
Abstract
Una estructura multicapa adecuada como un electrodo en una fuente de energía, que comprende - una capa laminar conductiva; - una capa enzimática laminar que contiene una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas; - una capa de combustible laminar que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco, y - una capa intermedia laminar que es capaz de ser mojada para transferir humedad o agua a dicha capa enzimática, siendo dicha capa intermedia porosa, caracterizada por que dicha capa intermedia laminar está colocada entre dicha capa de combustible y dicha capa enzimática.
Description
5
10
15
20
25
30
35
40
45
DESCRIPCION
Una estructura multicapa Antecedentes de la invención Campo de la invención
La presente invención se refiere a estructuras laminadas para fuentes de energía, tales como celdas de combustible. En particular, la presente invención concierne a estructuras multicapas adecuadas como electrodo en fuentes de energía, que comprenden generalmente una capa laminar conductiva en combinación con una capa enzimática. La presente invención también concierne a métodos de producción de tales estructuras.
Descripción de la técnica relacionada
Previamente se conocen celdas de combustible completamente enzimáticas que superponen capas laminares que contienen enzimas, combustible químico y electrodos, véase, por ejemplo, el documento US 3403053.
En la técnica, se han ensayado diversas mezclas de enzimas con mediadores, combustible, electrolitos y agregado tanto conductivo como gelificante. Generalmente, el componente de combustible, tal como glucosa, se mezcla con aditivos conductores y de empalme y, a continuación, se imprime sobre un colector de corriente.
Hay un problema relacionado con la tecnología conocida en el sentido de que las celdas de combustible completamente enzimáticas tienden a perder prematuramente la capacidad de energía mediante la degradación del combustible: se ha encontrado que durante la producción normal, la mezcla de combustible/catalizador es reactiva y la capa de combustible ya estará consumida cuando la celda se esté montando.
Compendio de la invención
Es un objetivo de la presente invención eliminar al menos algunos de los problemas de la técnica y proporcionar nuevos tipos de ánodos para, en particular, celdas de combustible completamente enzimáticas imprimibles.
Es otro objetivo de la presente invención proporcionar un método de producción de tales ánodos.
La presente invención se basa en la idea de mantener las capas de combustible y catalizador separadas hasta que la celda se monte y se tome en uso. En ese momento, el sistema se activa humedeciéndolo con una solución de electrolito.
Por tanto, según la presente invención, en una estructura multicapa adecuada como electrodo en una fuente de energía, hay una capa enzimática que contiene una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas.
Una estructura multicapa del presente tipo se consigue combinando una capa de combustible laminar que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco y una capa enzimática laminar que contiene la enzima básicamente seca. Estas capas se colocan una enfrente de la otra en interrelación conductiva para formar una estructura multicapa.
Más específicamente, las nuevas estructuras según la presente invención están caracterizadas por la reivindicación 1.
El método según la invención está caracterizado por la reivindicación 14.
Por la presente invención se obtienen ventajas considerables. Por tanto, la presente invención preverá fuentes de corriente eléctrica imprimibles completamente enzimáticas. Debido a que la capa ánodo enzimática y la capa que contiene combustible no están interactuando durante la producción y puesto que se mantienen latentes durante el tiempo de almacenamiento, la fuente de energía se mantendrá estable durante periodos de tiempo prolongados, incrementando así la utilidad de la fuente de energía.
La presente invención es de significancia potencialmente inmensa en el sentido de que permite la producción en masa de fuentes de energía tipo celda de combustible completamente enzimática usando tecnología de impresión.
Las presentes estructuras se pueden usar con diversas fuentes de energía químicas, incluyendo azúcar y miel.
A continuación, la invención se examinará más atentamente con la ayuda de la siguiente descripción detallada y ejemplo de referencia con referencia a los dibujos adjuntos.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 muestra en vista lateral la sección trasversal de una celda de combustible impresa con fuentes de energía autónomas combinadas con capas impresas;
la Figura 2 presenta en forma de un diagrama de barras los resultados de la medición de la permeabilidad a oxígeno de un colector de corriente impreso sobre cartón revestido con PE;
la Figura 3 muestra las propiedades de descarga (potencial de celda en función de la densidad de corriente) de una celda de biocombustible impresa calculadas en dos momentos (20 h y 40 h);
5 la Figura 4 muestra la producción de energía de una celda (6,25 cm2) en función de la tensión de celda;
la Figura 5 muestra la corriente consumida mediante un termómetro digital a partir de una cascada de tres celdas de ALDH/ThL (FC1 a FC3) construidas entre dos láminas de cartón revestido con PE;
la Figura 6 presenta en forma de un diagrama de barras la actividad restante de una capa bioactiva conductiva después de 2 y 4 semanas de almacenamiento (Ejemplo 7);
10 la Figura 7 presenta en forma de un diagrama de barras la actividad restante de una capa bioactiva conductiva después de la adición de glicerol y carboximetil celulosa (Ejemplo 7);
la Figura 8 muestra el efecto de la temperatura de almacenamiento sobre la tensión de celda abierta y la tensión de la celda cargada (15 kOhm) (Ejemplo 8);
la Figura 9 muestra la actividad enzimática de aldosa deshidrogenasa en presencia de diferentes 15 concentraciones de glucosa;
la Figura 10 muestra la tensión de celda en función del tiempo para celdas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito usando diferente cantidades de combustible;
la Figura 11 muestra la tensión de celda en función del tiempo para tres fuentes de energía enzimáticas de ALDH/ThL cada una construida entre dos placas de grafito y conectadas en serie cuando se saca una corriente 20 de 5 mA durante 3 s cada 20 minutos;
La Figura 12 muestra la tensión de celda en función del tiempo para tres fuentes de energía enzimáticas de ALDH/ThL cada una construida entre dos placas de grafito y conectadas en serie con un condensador comercial de 0,16 F cuando se saca una corriente de 5 mA durante 3 s cada 20 minutos; y
la Figura 13 muestra la tensión de celda en función del tiempo para celdas de ALDH/ThL construidas entre dos 25 placas de grafito en comparación con fuentes de energía que contienen una correspondiente cantidad de glucosa oxidasa (Gox) a tres pH diferentes.
Como se discutió anteriormente, la presente invención prevé estructuras de ánodo para celdas de combustible catalizadas por enzima imprimibles. Tales celdas generalmente tienen cuatro componentes principales, concretamente un colector de corriente, una capa de combustible, una capa enzimática y una capa separadora para 30 separar las tres capas anteriormente mencionadas del cátodo de la celda de combustible.
Según una realización, la estructura del ánodo se puede fabricar combinando primero de forma separada un colector de corriente con una capa de combustible y una capa de enzima con una capa separadora. A continuación, la capa que contiene combustible y las capas que contienen enzima se unen una a otra y se humedecen solamente cuando el ánodo se toma en uso.
35 Por medio de la invención, llega a ser posible fabricar una tinta que contiene tanto una enzima/mediador como el combustible a usar e imprimir ésta sin pérdida prematura de energía de la celda.
Para separar las capas de combustible y de enzima unas de otras hay una capa laminar colocada entre ellas. La capa separadora laminar es de un tipo capaz de ser mojada para transferir humedad o agua a la capa de enzima.
La capa intermedia es porosa. Tal sustrato poroso se puede seleccionar del grupo que consiste en tejidos fibrosos 40 porosos y láminas de origen natural o sintético, en particular el sustrato poroso se selecciona de materiales celulósicos y lignocelulósicos, tales como láminas de papel o cartón, por ejemplo, papel de filtro.
Generalmente, en las realizaciones anteriores, la capa enzimática se deposita sobre una primera capa de sustrato laminar y la capa de combustible se deposita sobre la capa enzimática. Alternativamente, la capa de combustible se puede depositar sobre una segunda capa de sustrato laminar.
45 La primera capa de sustrato laminar se puede formar mediante una capa superficial formada por una membrana permeable a iones.
La segunda capa de sustrato laminar se puede formar mediante una lámina de papel, cartón o plástico, la cual es básicamente impermeable a humedad.
Para alcanzar la actividad catalítica deseada por la capa enzimática, la enzima preferiblemente se mezcla con un 50 mediador de transferencia de electrones.
La enzima de oxidación o deshidrogenación se selecciona del grupo de peroxidasas y oxidasas. Para mencionar algunos ejemplos: la enzima se puede seleccionar del grupo de oxidorreductasas (EC 1.), incluyendo deshidrogenasas con NAD+, NADH+, NADP+ o NADPH+ como aceptores de electrones (EC 1.1.1), por ejemplo, glucosa deshidrogenasas (1.1.1.47), oxidasas con oxígeno como aceptor de electrones (EC 1.1.3), por ejemplo, 55 glucosa oxidasas (EC 1.1.3.4) y quinoproteína deshidrogenasas (EC 1.1.5), por ejemplo, quinoproteína glucosa deshidrogenasas (EC 1.1.5.2).
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
La enzima debería tener una actividad suficiente para activar la celda; preferiblemente la actividad es de aproximadamente 1 a 100.000 nkat/g, preferiblemente 10 a 1.000 nkat/g, y se emplea en una cantidad de 0,0001 a 10 mg de proteína/g de material seco de la capa cátodo.
La actividad de la enzima preferiblemente se refleja en su potencial redox el cual, expresado como V frente a ENH, generalmente es de aproximadamente 0,01 a 0,5, preferiblemente no más de 0,3.
Preferiblemente, la enzima se selecciona de quinoproteína glucosa deshidrogenasa (EC 1.1.5.2) de Gluconobacter oxydans, Gluconobacter suboxydans o Acinetobacter calcoaceticus o glucosa oxidasa (EC 1.1.3.4) de Aspergillus niger o glucosa deshidrogenasa (1.1.1.47) de Pseudomonas sp. o de Thermoplasma acidophilum.
El mediador usado en las presentes estructuras preferiblemente presenta buenas propiedades electroquímicas.
En particular, el mediador se selecciona del grupo que consiste en TMPD (W,W,W',W'-tetrametil-p-fenilendiamina), tetracianoquinodimetano (TCNQ), metosulfato de fenazina (PMS, del inglés “Phenazine methosulphate”), hidroquinona, niqueloceno y dimetil ferroceno, ferroceno, butil ferroceno, ácido acético de ferroceno, hidroximetil ferroceno, ácido dicarboxílico de ferroceno, ferroceno carboxialdehido y otros derivados de ferroceno, y sus mezclas.
Se prefiere tener el mediador presente a concentraciones en el intervalo de aproximadamente 0,001 a aproximadamente 10,0 % en peso de la capa cátodo.
Además, la capa enzimática puede contener una tinta conductiva. La tinta conductiva generalmente comprende un componente eléctricamente conductivo seleccionado del grupo que consiste en nanotubos de carbono, partículas de metal, partículas de carbono y polímeros inherentemente conductivos y sus mezclas y, opcionalmente, un aglutinante.
La capa de combustible puede contener una fuente de energía química seleccionada del grupo de mono- y disacáridos. Por tanto, por ejemplo, la capa de combustible contiene un monosacárido seleccionado del grupo de xilosa, glucosa, arabinosa, manosa, galactosa y fructosa.
El método de producción de una estructura multicapa adecuada como electrodo en una fuente de energía, comprende las siguientes etapas, concretamente formar, en orden opcional, una primera estructura laminar mediante la proporción de una capa de combustible que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco; y formar una segunda estructura laminar mediante la proporción de una capa enzimática que contiene una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar el material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas.
A continuación, la capa de combustible de la primera estructura laminar se coloca en relación contigua con la capa enzimática de la segunda estructura laminar para formar una estructura multicapa.
La etapa de formación de la primera estructura laminar comprende proporcionar una primera capa de sustrato; depositar sobre la primera capa de sustrato una capa laminar conductiva; y proporcionar sobre la capa laminar conductiva una capa de combustible que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco del tipo anterior.
Una capa intermedia capaz de ser humedecida se coloca entre las capas de combustible y enzima, en donde dicha capa laminar conductiva se separa de dicha capa enzimática con dicha capa intermedia.
Es posible depositar la capa de combustible a partir de una suspensión o una solución. La suspensión puede tener una concentración del carbohidrato de generalmente aproximadamente 0,1 a 75 %, preferiblemente aproximadamente 1 a 50 %, en particular aproximadamente 1 a 30 % del peso total de la suspensión o la solución. Tal capa generalmente se seca después de la deposición.
Según una realización preferida la cual se puede combinar con una cualquiera de las anteriores realizaciones, la etapa de formación de la segunda estructura laminar comprende proporcionar una segunda capa de sustrato; y proporcionar sobre la segunda capa de sustrato una capa enzimática. Generalmente, la capa enzimática contiene una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar el material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas. Las enzimas pueden ser cualquiera de los tipos anteriormente discutidos. Como es el caso con la capa de combustible, la capa enzimática se puede depositar a partir de una suspensión acuosa o solución, y la capa depositada preferiblemente se seca después de la deposición.
Usando los compuestos y métodos anteriores, la capa conductiva se forma por impresión, revestimiento o por una técnica equivalente para proporcionar una capa que tiene un grosor promedio de aproximadamente 20 nm a 100 pm.
Para conseguir el objetivo anteriormente explicado de una estructura laminar la cual es eléctricamente estable durante la producción y el almacenamiento, es preferido que o bien la capa enzimática o la capa de combustible esté básica seca tras el montaje de la estructura del ánodo. En el caso de la capa enzimática, se prefiere un contenido de humedad máximo de menos de 10 % en peso, preferiblemente menos de aproximadamente 5 % en peso. Igualmente, una capa de combustible “básicamente seca” tiene un contenido de humedad de menos del 10 % en
5
10
15
20
25
30
35
40
45
peso, preferiblemente menos de aproximadamente 5 % en peso. Es particularmente preferido que el contenido de humedad de las capas activas (enzima y combustible) sea menos de aproximadamente 5 % en peso para ambas.
Los siguientes ejemplos de referencia, que no caen dentro del alcance de las reivindicaciones, son útiles para entender la invención.
Ejemplo 1. Producción y purificación de ALDH a partir de Gluconobacter oxydans
Se conservaron células de Gluconobacter oxydans y se cultivaron usando un procedimiento en tres etapas. Comenzando con un precultivo de 3 l en matraces de agitación de los cuales se inoculó un pre-fementador de 28 l, lo cual por turnos después de 23 h de crecimiento se usó para inocular un fementador de producción de 300 l. Después de otras 23 h de cultivo el cultivo (DO=2,8) se enfrió a <20 °C y se separó en un separador Alfa Laval. La fase de biomasa era de 5,2 litros, este material se centrifugó en una centrífuga de laboratorio, dando como resultado una fracción de masa celular empaquetada de 970 g (peso húmedo) la cual se almacenó a -20 °C y se usó para la purificación de la enzima ALDH. Para esto primero se sometieron a lisis 200 g de células usando una célula de presión French a 6,89x107 Pas (10.000 psi), después de lo cual la ALDH se podía extraer del lisado usando el detergente Tritón X-100. Se realizaron cuatro extracciones secuenciales enumeradas I, II, III y IV.
La ADLH se purificó de estos extractos de detergente usando un procedimiento de cromatografía en dos columnas. El extracto I y II se combinaron y así eran los extracto III y IV y se realizaron dos rondas de purificación según el procedimiento descrito a continuación (véase la Tabla 1).
Primero se aplicó el extracto crudo a una columna de intercambio catiónico de CM-Sefarosa FF en tampón de NaAc 10 mM de pH 5,0, Tritón X-100 al 0,1 % y la proteína unida se eluyó usando un gradiente de sal lineal. Las fracciones que contenían ALDH (basándose en la actividad enzimática) se reunieron y se purificaron más usando una columna de intercambio aniónico de FPLC UNO-Q en Tris-HCl 2,5 mM pH 7,2, Tritón X-100 al 0,1 %. Después de esto ALDH estaba semi pura como se juzgó por SDS-PAGE. Un resumen del rendimiento de las dos purificaciones se puede encontrar en la Tabla 1.
Este ejemplo ilustra la viabilidad de producir aldosa deshidrogenasa (ALDH) a partir de la bacteria Gluconobacter oxydans en un procedimiento de fermentación y purificación a gran escala. Esta ampliación de la producción de enzima facilitará la producción a mayor escala de electrodos enzimáticos impresos basado en que esta enzima se usa como catalizador.
Tabla 1. Resumen de la producción de ALDH a partir de 200 g de células (peso húmedo) que representa 1/5 de la fermentación.
- Lote
- Volumen (ml) Actividad (nkat/ml) [Proteína] (mg/ml) Actividad de ALDH total (nkat)
- Purificación I+II
- 10 298 4,7 2.984
- Purificación III+IV
- 20 79 0,45 1.587
- Total
- 4.571
Ejemplo 2. Construcción de la celda de cartón impresa
Se prepararon capas de electrodos enzimáticos revistiendo o imprimiendo tintas conductivas que incluían componentes biocatalícos sobre un papel, cartón o un soporte de fieltro de carbón. Se atraparon los componentes activos sobre el soporte mediante el efecto de inmovilización física de la tinta.
La estructura de la celda de cartón impresa se muestra en la Figura 1.
Los siguientes métodos se usaron para preparar las diferentes capas de la fuente de energía:
Se imprimió una capa de colector de corriente 1 sobre cartón (Cupforma classic PE, Stora Enso, Finlandia) usando tinta conductiva a base de carbono comercial (tinta conductiva a base de carbono de Peters SD 2843 HAL) mediante serigrafía. Se formó una capa de electrodo enzimático catódico 2 sobre la capa de colector de corriente seca usando la tinta activa que contenía enzima que consistía en 2,5 ml de tinta conductiva comercial (DuPont Carbono 5067), 200 mg de nanotubos de carbono (multi-pared, diámetro 10 a 30 nm, pureza >80 % de Hydrocell), 400 nkat de lacasa de Trametes hirsuta (ThL) y 50 mmol de ácido 2,2'-Azino-bis(3-etilbenzotialzolin-6-sulfónico) (ABTS), tinta diluida con tampón de succinato de Na 50 mM (pH 4,5) a consistencia adecuada para revestir o imprimir. Se formó una capa 3 formadora del electrodo enzimático anódico sobre la capa de colector de corriente seca usando la tinta activa que contenía enzima que consistía en 2,5 ml de tinta conductiva comercial (DuPont Carbono 5067), 200 mg de nanotubos de carbono (multicapa, diámetro de 10 a 30 nm, pureza >80 % de Hydrocell), 400 nkat de enzima aldosa deshidrogenasa de Gluconobacter oxydans (ALDH) y 50 mmol de mediador redox N'N'N'-tetrametil-p- fenilendiamina (TMPD, del inglés “Tetramethyl-p-phenylenediamine”), tinta diluida con tampón de fosfato de K 50
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
mM de pH 6,0 a consistencia adecuada para revestir o imprimir. Se formó una capa de combustible 4 a partir de la energía de glucosa seca, esparcida directamente sobre la capa ánodo seca. Se formó una capa separadora 5 a partir de membrana de celofán.
Se usaron dos métodos diferentes para preparar una capa conductiva que contenía enzima, técnica de revestimiento a mano o serigrafía. El revestimiento a mano se realizó usando K Hand Coater de RK Print Coat Instruments Ltd. Se usaron papel filtro Whatman 1 y membrana de celofán (tubo de diálisis) como un sustrato de impresión. El grosor aproximado de las capas de revestimiento era de alrededor de 50 pm en ambos métodos. Las fuentes de energía autónomas con capas impresas se construyeron sellando las capas de colector de corriente con electrodos enzimáticos, capas de combustible y capas separadoras o bien en coberturas de grafito o de cartón 6.
Para usar la fuente de energía, se activará por humedad. Se usó tampón, por ejemplo, succinato de sodio a pH 5,0. La activación se podía realizar antes o después del sellado. Si la humidificación se realizaba después del sellado, la capa de cobertura debería estar equipada con suficiente abertura o pequeños poros (“pinhole”).
Ejemplo 3. Permeabilidad a oxígeno del colector de corriente
La permeabilidad a oxígeno del cartón revestido con polietileno, así como la permeabilidad a oxígeno de un colector de corriente impreso sobre un cartón revestido con polietileno se determinó con el Analizador de permeabilidad a oxígeno 8001. La humedad relativa (HR) del 50 % se usó en la medición del cartón revestido con PE. La permeabilidad a oxígeno del colector de corriente se determinó en humedad relativa del 0 %, 50 % y 80 %. La permeabilidad a oxígeno del cartón revestido con PE se midió tanto antes como después del tratamiento con calor necesario para el curado del colector de corriente, pero el tratamiento no tenía ningún efecto sobre la permeabilidad a oxígeno del cartón. Con el colector de corriente impreso sobre el cartón la permeabilidad a oxígeno disminuyó en un 85 %, de 2.000 cm3/m2/día a 270 cm3/m2/día. La humedad relativa no parecía tener un efecto importante sobre la permeabilidad a oxígeno del colector de corriente. Los resultados de la medición de la permeabilidad a oxígeno se presentan en la Figura 2.
Este ejemplo ilustra la idoneidad del material con permeabilidad a oxígeno limitada (es decir, 270 cm3/m2/día) para usarse como material de cobertura de la fuente de energía enzimática impresa.
Ejemplo 4. Propiedades de descarga de la fuente de energía completamente enzimática
Las celdas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se ensayaron con una carga resistiva de 10 a 75 kOhm después de un periodo de medición de OVC (de sus siglas en inglés) usando Adquisición de datos/Conmutador 34970A de Agilent con 20 posiciones independientes.
Las propiedades de descarga de la celda de biocombustible impresa calculadas en dos momentos (20 h y 40 h) se muestran en la Figura 3. Como se verá, la energía de producción máxima de la celda era de 11 pW correspondiendo a densidad de energía de 0,84 pW/cm2.
Ejemplo 5. Energía-corriente de la fuente de energía completamente enzimática con ánodo impreso
La curva de energía de la celda de ALDH/ThL construida entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se midió con un galvanostato conectado a un PC. La medición se empezó midiendo la tensión de circuito abierto durante 40 min después de lo cual la corriente sacada se incrementó con etapas de 0,2 pA cada minuto hasta que la tensión de la celda estaba bajo 0,1 V.
La producción de energía de la celda (6,25 cm2) en función de la tensión de celda se muestra en la Figura 4.
Ejemplo 6. Celda de combustible enzimática como la fuente de energía para termómetro digital
Tres celdas de ALDH/ThL (FC1...3 en la Figura 5) construidas entre dos láminas de cartón revestido con PE como se indicó anteriormente se conectaron en serie y las celdas se usaron como fuente de energía para un termómetro digital con una pantalla de cristal líquido. El consumo de corriente de un termómetro digital típico (1 a 1,2 V) para hacer funcionar el termómetro se muestra en la gráfica de la Figura 5. El circuito equivalente de FC1 está indicado con fuerza electromotriz U0, resistencia interna Ri y resistencia óhmica Rohm y un condensador efectivo interno Ci. Este ejemplo indica que la fuente de energía enzimática se puede usar para aplicaciones potenciales de energía con perfil de carga pulsada.
Ejemplo 7. Estabilidad de almacenamiento del ánodo impreso
Se almacenaron capas que contenían aldosa deshidrogenasa producidas como se indica en el Ejemplo 5 bajo diferentes condiciones (-20 °C, +4 °C, +22 °C (ambiente/HR al 50 %/bajo nitrógeno) y la actividad enzimática restante basada en la tasa de consumo de oxígeno unida a la oxidación del mediador se determinó durante el almacenamiento para evaluar la estabilidad de almacenamiento a largo plazo de las capas impresas. Se encontró que las temperaturas bajas -20 °C y +4 °C eran óptimas para el mantenimiento de la actividad enzimática (véase la l Figura 6).
5
10
15
20
25
30
35
40
45
La adición de glicerol y carboximetil celulosa (CMC) dio como resultado una estabilidad incrementada a temperatura ambiente y con aditivos añadidos a la tinta conductiva la actividad se podía mantener hasta 7 semanas (véase la Figura 7).
Por tanto, este ejemplo ilustra la idoneidad de ALDH como la capa bioactiva conductiva impresa.
Ejemplo 8. El efecto de la temperatura de almacenamiento de la capa anódica sobre el rendimiento de la fuente de energía
Las celdas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se ensayaron con una carga resistiva de 15 kOhm después de un periodo de medición de OVC usando Adquisición de datos/Conmutador 34970A de Agilent con 20 posiciones independientes. Las capas impresas que contenían ALDH se almacenaron durante 49 días (+4,5 °C o +25 °C).
El efecto de la temperatura de almacenamiento sobre la tensión de celda abierta y la tensión de la celda cargada (15 kOhm) se muestra en la Figura 8.
Este ejemplo indica que las capas impresas se pueden almacenar durante varias semanas antes de su uso en la fuente de energía enzimática y la temperatura de almacenamiento preferible es temperatura refrigerada.
Ejemplo 9. Concentración de glucosa optimizada para ALDH
La actividad enzimática de la aldosa deshidrogenasa se midió espectrofotométricamente usando metosulfato de fenazina (PMS) - sistema mediador de diclorofenol indofenol (DCIP, del inglés “Dichlorophenol indophenol”) en presencia de diferentes concentraciones de glucosa. En el intervalo de concentración entre 100 a 800 mM la actividad era prácticamente independiente de la concentración de glucosa (véase la Figura 9).
Este ejemplo ilustra que el catalizador enzimático es funcional en amplio intervalo de concentración del combustible.
Ejemplo 10. Concentración de glucosa optimizada para electrodo de ALDH impreso
Las celdas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se ensayaron con una carga resistiva de 30 kOhm después de un periodo de medición de OVC usando Datos de adquisición/Conmutador 34970A de Agilent. En la construcción de la celda se usaron diferentes cantidades de glucosa como combustible.
Los resultados se muestran en la Figura 10.
Como se verá, se descubrió que la producción de la celda era más alta cuando la cantidad de glucosa era de 50 mg (0,28 mmol) (correspondiente a 700 mM si toda la glucosa está disuelta en la celda). El consumo de combustible se puede calcular mediante la ecuación (1) era en el caso de celda de combustible con glucosa, z tiene un valor de 2 y F es la constante de Faraday. Por ejemplo, esta cantidad, 0,28 mmol, de glucosa es suficiente para producir corriente de 100 pA durante seis días.
Ejemplo 11. El ensayo de ráfagas de la fuente de energía enzimática impresa
Tres fuentes de energía enzimática de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se conectaron en serie y se sacó una ráfaga de corriente de 5 mA durante 3 s cada 20 minutos. La tensión de celda en función del tiempo se muestra en la Figura 11.
Este ejemplo demostró que incluso si la tensión de celda cae a 0 V durante cada ráfaga, la tensión de circuito abierto se podría mantener a nivel constante a través de todo el experimento durante varias horas.
Ejemplo 12. Ensayo de ráfaga de la fuente de energía enzimática impresa con condensador
Tres fuentes enzimáticas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se conectaron en serie con un condensador comercial de 0,16 F y se sacó una ráfaga de corriente de 5 mA durante 3 s cada 20 minutos. La tensión de celda en función del tiempo se muestra en la Figura 12.
Este ejemplo demostró que con condensador la capacidad de carga del sistema se podría incrementar considerablemente cuando el tiempo entre los pulsos es bastante largo para permitir la carga del condensador.
Ejemplo 13. Comparación de aldosa deshidrogenasa y glucosa oxidasa
Las celdas de ALDH/ThL construidas entre dos placas de grafito como se indicó anteriormente se ensayaron con una carga resistiva de 0 a 50 kOhm después de un periodo de medición de OVC usando Datos de adquisición/Conmutador 34970A de Agilent con 20 posiciones independientes. En paralelo a las celdas que 5 contienen ALDH, se prepararon fuentes de energía que contenían una cantidad correspondiente de glucosa oxidasa (Gox) como enzima anódica y se ensayaron en tres condiciones de pH (4,5, 5 y 6).
Como se ve a partir de los resultados informados en la Figura 13, se descubrió que en las condiciones particulares con TMPD como mediador de transferencia de electrones el rendimiento de la ALDh era mejor que el de la GOx.
Claims (16)
- 5101520253035404550REIVINDICACIONES1. Una estructura multicapa adecuada como un electrodo en una fuente de energía, que comprende- una capa laminar conductiva;- una capa enzimática laminar que contiene una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas;- una capa de combustible laminar que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco, y- una capa intermedia laminar que es capaz de ser mojada para transferir humedad o agua a dicha capa enzimática, siendo dicha capa intermedia porosa, caracterizada por que dicha capa intermedia laminar está colocada entre dicha capa de combustible y dicha capa enzimática.
- 2. La estructura multicapa según la reivindicación 1, en donde la capa intermedia comprende un sustrato poroso que se selecciona del grupo que consiste en tejidos fibrosos porosos y láminas de origen natural o sintético, en particular el sustrato poroso se selecciona de materiales celulósicos y lignocelulósicos, tales como láminas de papel o cartón, por ejemplo, papel de filtro.
- 3. La estructura multicapa según la reivindicación 1 ó 2, en donde la capa enzimática se deposita sobre una primera capa de sustrato laminar.
- 4. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en donde la capa de combustible se deposita sobre una segunda capa de sustrato laminar, la cual preferiblemente está formada por una lámina de papel, cartón o plástico, la cual es básicamente impermeable a la humedad.
- 5. La estructura multicapa según la reivindicación 3 ó 4, comprendiendo además una capa superficial formada por una membrana permeable a iones, preferiblemente la membrana forma la primera capa de sustrato laminar.
- 6. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la enzima se mezcla con un mediador de transferencia de electrones.
- 7. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la enzima de oxidación se selecciona del grupo de peroxidasas y oxidasas, siendo la enzima preferiblemente seleccionada del grupo de oxidorreductasas (EC 1), incluyendo las deshidrogenasas con NAD+, NADH+, NADP+ o NADPH+ como aceptores de electrones (EC 1.1.1), por ejemplo, glucosa deshidrogenasas (1.1.1.47), oxidasas con oxígeno como aceptor de electrones (EC 1.1.3), por ejemplo, glucosa oxidasas (EC 1.1.3.4) y quinoproteína deshidrogenasas (EC 1.1.5), por ejemplo, quinoproteína glucosa deshidrogenasas (EC 1.1.5.2). y teniendo la enzima, por ejemplo, una actividad de aproximadamente 1 a 100.000 nkat/g, preferiblemente 10 a 1.000 nkat/g, y se emplea en una cantidad de 0,0001 a 10 mg de proteína/g de material seco de una capa cátodo.
- 8. La estructura multicapa según la reivindicación 7, en donde la enzima tiene un potencial redox, expresado como V frente a ENH, de no más de 0,3, siendo dicha enzima preferiblemente seleccionada de quinoproteína glucosa deshidrogenasa (EC 1.1.5.2) de Gluconobacter oxydans, Gluconobacter suboxydans o Acinetobacter calcoaceticus o glucosa oxidasa (EC 1.1.3.4) de Aspergillus niger o glucosa deshidrogenasa (1.1.1.47) de Pseudomonas sp. o de Thermoplasma acidophilum.
- 9. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones 6 a 8, en donde el mediador presenta propiedades electroquímicas, siendo el mediador preferiblemente seleccionado del grupo que consiste en TMPD (W,W,W',W'-tetrametil-p-fenilendiamina), TCNQ (tetracianoquinodimetano), PMS (metosulfato de fenazina), hidroquinona, niqueloceno y dimetil ferroceno, ferroceno, butil ferroceno, ácido acético de ferroceno, hidroximetil ferroceno, ácido dicarboxílico de ferroceno, ferroceno carboxialdehido y otros derivados de ferroceno, y sus mezclas, estando dicho mediador preferiblemente presente en una concentración de 0,001 a 10,0 % en peso de una capa cátodo.
- 10. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la capa enzimática contiene además una tinta conductiva, comprendiendo dicha tinta conductiva preferiblemente un componente eléctricamente conductivo seleccionado del grupo que consiste en nanotubos de carbono, partículas de metal, partículas de carbono y polímeros inherentemente conductivos y sus mezclas y, opcionalmente, un aglutinante.
- 11. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la capa laminar conductiva se forma por impresión, revestimiento o por una técnica equivalente para producir una capa que tiene un grosor promedio de 20 nm a 100 pm.
- 12. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la capa de combustible contiene una fuente de energía química seleccionada del grupo de mono- y disacáridos, preferiblemente la capa de combustible contiene un monosacárido seleccionado del grupo de xilosa, glucosa, galactosa y fructosa.51015202530
- 13. La estructura multicapa según cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde la capa enzimática básicamente seca tiene un contenido de humedad de menos del 10 % en peso, preferiblemente menos de aproximadamente 5 % en peso.
- 14. Un método de producción de una estructura multicapa adecuada como un electrodo en una fuente de energía, comprendiendo las etapas de formación de, en orden opcional,a) una primera estructura laminar mediante- la proporción de una capa de combustible que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco; yb) una segunda estructura laminar mediante- la proporción de una capa enzimática que contiene una enzima básicamente seca capaz deshidrogenar el material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas; y posteriormentec) colindar la capa de combustible de la primera estructura laminar con la capa enzimática de estructura laminar para formar una estructura multicapa,en donde la etapa de formación de la primera estructura laminar comprende- proporcionar una primera capa sustrato;- depositar sobre la primera capa sustrato una capa laminar conductiva; y- proporcionar sobre la capa laminar conductiva una capa de combustible que contiene una fuente de energía química que comprende un material de carbohidrato básicamente seco; en donde una capa intermedia capaz de ser mojada se coloca entre las capas del combustible y la enzima, en donde dicha capa laminar conductiva se separa de dicha capa enzimática con dicha capa intermedia.
- 15. El método según la reivindicación 14, en donde la etapa de formación de la segunda estructura laminar comprende- proporcionar una segunda capa sustrato; y- proporcionar sobre la segunda capa sustrato una capa enzimática, conteniendo dicha capa una enzima básicamente seca capaz de oxidar o deshidrogenar el material de carbohidrato bajo condiciones adecuadas.
- 16. El método según cualquiera de las reivindicaciones 14 a 15, en donde- la capa de combustible se deposita a partir de una suspensión y dicha capa se seca después de la deposición; y/o- la capa enzimática se deposita a partir de una suspensión acuosa y dicha capa se seca después de la deposición.de oxidar o la segunda
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FI20096338 | 2009-12-16 | ||
| FI20096338A FI122265B (fi) | 2009-12-16 | 2009-12-16 | Monikerrosrakenne |
| PCT/FI2010/051048 WO2011073530A1 (en) | 2009-12-16 | 2010-12-16 | A multilayered structure |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2675121T3 true ES2675121T3 (es) | 2018-07-06 |
Family
ID=41462799
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES10837114.7T Active ES2675121T3 (es) | 2009-12-16 | 2010-12-16 | Una estructura multicapa |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US9614243B2 (es) |
| EP (1) | EP2514017B1 (es) |
| ES (1) | ES2675121T3 (es) |
| FI (1) | FI122265B (es) |
| WO (1) | WO2011073530A1 (es) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013114973A (ja) * | 2011-11-30 | 2013-06-10 | Toyota Motor Corp | 燃料電池 |
| FI127226B (en) * | 2013-12-20 | 2018-01-31 | Teknologian Tutkimuskeskus Vtt Oy | PROCEDURE AND DEVICE FOR SKIN TREATMENT |
| US10985410B2 (en) * | 2015-10-13 | 2021-04-20 | Dongguk University Industry-Academic Cooperation Foundation | Plant-soil battery |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3403053A (en) * | 1962-07-09 | 1968-09-24 | Trw Inc | Enzyme activated biochemical battery |
| US7166208B2 (en) | 2004-03-03 | 2007-01-23 | Stephen Eliot Zweig | Apoenzyme reactivation electrochemical detection method and assay |
| JP5044900B2 (ja) * | 2004-06-07 | 2012-10-10 | ソニー株式会社 | 燃料電池、電子機器、移動体、発電システム及びコージェネレーションシステム |
| WO2006132595A1 (en) * | 2005-06-04 | 2006-12-14 | Agency For Science, Technology And Research | Laminated battery |
| JP2007103307A (ja) * | 2005-10-07 | 2007-04-19 | Sony Corp | 燃料電池の製造方法、燃料電池、燃料電池用負極の製造方法、燃料電池用負極、電子機器、移動体、発電システム、コージェネレーションシステム、酵素反応利用装置の製造方法、酵素反応利用装置、酵素反応利用装置用電極の製造方法、酵素反応利用装置用電極および固定化方法 |
| WO2007084249A2 (en) | 2005-11-02 | 2007-07-26 | St.Louis University | Direct electron transfer using enzymes in bioanodes, biocathodes, and biofuel cells |
| US20090192297A1 (en) * | 2006-02-02 | 2009-07-30 | Ube Industries, Ltd. | Carbon membrane having biological molecule immobilized thereon |
| FI20061064A0 (fi) * | 2006-06-19 | 2006-12-01 | Valtion Teknillinen | Uudet ohutkalvorakenteet |
-
2009
- 2009-12-16 FI FI20096338A patent/FI122265B/fi active IP Right Grant
-
2010
- 2010-12-16 EP EP10837114.7A patent/EP2514017B1/en not_active Not-in-force
- 2010-12-16 WO PCT/FI2010/051048 patent/WO2011073530A1/en not_active Ceased
- 2010-12-16 ES ES10837114.7T patent/ES2675121T3/es active Active
- 2010-12-16 US US13/516,332 patent/US9614243B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP2514017B1 (en) | 2018-04-18 |
| US9614243B2 (en) | 2017-04-04 |
| US20130017457A1 (en) | 2013-01-17 |
| FI20096338L (fi) | 2011-06-17 |
| EP2514017A1 (en) | 2012-10-24 |
| FI122265B (fi) | 2011-11-15 |
| FI20096338A0 (fi) | 2009-12-16 |
| WO2011073530A1 (en) | 2011-06-23 |
| EP2514017A4 (en) | 2014-12-24 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sund et al. | Effect of electron mediators on current generation and fermentation in a microbial fuel cell | |
| JP5613364B2 (ja) | 微生物燃料電池 | |
| JP5233176B2 (ja) | 燃料電池および電子機器 | |
| Wen et al. | A single-walled carbon nanohorn-based miniature glucose/air biofuel cell for harvesting energy from soft drinks | |
| De Poulpiquet et al. | Carbon nanofiber mesoporous films: efficient platforms for bio-hydrogen oxidation in biofuel cells | |
| Hou et al. | An integrated device of enzymatic biofuel cells and supercapacitor for both efficient electric energy conversion and storage | |
| ES2944483T3 (es) | Biopila con depósito de combustible | |
| Xia et al. | Direct energy conversion from xylose using xylose dehydrogenase surface displayed bacteria based enzymatic biofuel cell | |
| ITMI951441A1 (it) | Nuovi biosensori elettrochimici basati su nuovi trasduttori compositi | |
| CN103199270B (zh) | 一种三维多孔电极材料的制备方法及应用 | |
| CN105324825A (zh) | 生物相容的电化学超级电容器 | |
| Liu et al. | A biofuel cell with enhanced power output by grape juice | |
| ES2675121T3 (es) | Una estructura multicapa | |
| JP2006093090A (ja) | 燃料電池、燃料電池の使用方法、燃料電池用カソード電極、電子機器、電極反応利用装置および電極反応利用装置用電極 | |
| Skunik-Nuckowska et al. | Integration of supercapacitors with enzymatic biobatteries toward more effective pulse-powered use in small-scale energy harvesting devices | |
| US20230361329A1 (en) | Dual-cathode fuel biocell | |
| ES2867898T3 (es) | Bioelectrodo para la detección y/u oxidación de glucosa, su método de producción y dispositivo | |
| WO2007147947A3 (en) | Novel thin film structures | |
| JP2009158480A (ja) | 燃料電池用電極への酵素固定化方法 | |
| Ho et al. | Microbial electricity generation of diversified carbonaceous electrodes under variable mediators | |
| US20250046826A1 (en) | Redox mediator encapsulation | |
| Liu et al. | Enhanced direct electron transfer of glucose oxidase based on a protic ionic liquid modified electrode and its biosensing application | |
| Torrinha et al. | Microenergy generation and dioxygen sensing by bilirubin oxidase immobilized on a nanostructured carbon paper transducer | |
| Sugano et al. | A biohydrogen fuel cell using a conductive polymer nanocomposite based anode | |
| Xia et al. | Layer-by-layer assembly of a redox enzyme displayed on the surface of elongated bacteria into a hierarchical artificial biofilm based anode |