ES2624306T3 - Composiciones cosméticas dermales que tienen actividad osmoprotectora - Google Patents
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Abstract
Composiciones cosméticas que comprenden como los ingredientes activos una asociación de ectoína y trehalosa en cantidades totales que están de 0,5 a 2% en base al peso total de la composición en combinación con excipientes y/o diluyentes adecuados.
Description
Tab. I. Liberación de LDH expresada como % de citotoxicidad.
- Tabla I
- % viabilidad
- Control 16 h
- 91,55
- RHE estresado 30 min + 16 h
- 0
- Estresado + suero 30 min + 16 h
- 52,06
- Gli 5% 30 min + 16 h
- 80,70
- Sol 1 30 min + 16 h
- 76,82
- Sol 2 30 min + 16 h
- 48,01
- Sol 3 30 min + 16 h
- 53,15
- Sol 1 estándar 30 min + 16 h
- 83,44
- Sol 2 estándar 30 min + 16 h
- 92,34
- Sol 3 estándar 30 min + 16 h
- 99,95
- Gli 5% estándar 30 min + 16 h
- 96,08
- Control 48 h
- 79,08
- RHE estresado 30 min + 48 h
- 80,23
- Estresado + suero 30 min + 48 h
- 69,27
- Gli 5% 30 min + 48 h
- 61,11
- Sol 1 30 min + 48 h
- 56,18
- Sol 2 30 min + 48 h
- 62,63
- Sol 3 30 min + 48 h
- 34,56
- Sol 1 estándar 30 min + 48 h
- 71,46
- Sol 2 estándar 30 min + 48 h
- 93,26
- Sol 3 estándar 30 min + 48 h
- 90,33
- Gli 5% estándar 30 min + 48 h
- 63,14
Cuanto más alto se ha cuantificado la densidad óptica en el medio de RHE estresado y usado como 100% más alto es el valor de citotoxicidad. La densidad óptica del control negativo se ha considerado como un valor más bajo del 5 control.
En el medio de tejidos control (16h-48h) no se ha cuantificado ninguna citotoxicidad (91,55% y 79% viabilidad respectivamente).
Se encontró RHE estresado como la muestra estresada de control alto después de 16h de recuperación (100% citotoxicidad) pero recuperó la viabilidad después de 48h (80,23%).
10 RHE estresado tratado con disolución de suero mostró un comportamiento similar en corto tiempo y largo tiempo de recuperación (52,06 y 69,27%).
Todos los productos aplicados en condiciones estándar (sin estrés) y dejados durante 16h y 48h no eran citotóxicos.
Glicerina 5% resultó no ser citotóxico ni en condiciones estresadas después de 16h o 48h de recuperación ni en condiciones estándar.
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El único pico significativo de citotoxicidad se encontró después de 48h de recuperación de tejidos tratados con Sol 3 (34,56% viabilidad).
Es importante señalar que se encontró una variabilidad alta entre las dos series biológicas de cada tratamiento (Apéndice II).
En el párrafo 6.1, LDH se expresó como el medio de duplicados, pero estos datos no se usaron para clasificar la eficacia de los productos.
TEER (resistencia eléctrica transepitelial) se ha medido sobre todos los tejidos recibidos, a nivel basal: después de 30´ de inducción de estrés a -20ºC el TEER cayó drásticamente desde 10.000 Ω*cm2 a valores por debajo de 500 Ω*cm2 asociado a una modificación drástica de flujo paracelular. No se encontró diferencia en mediciones de TEER después de 16h y 48h de recuperación. Todos estos tejidos tenían un valor de alrededor de 10.000 Ω*cm2 y estos datos se confirmaron en todo momento.
4.2. Resultados de PCR en tiempo real.
En la figura 1 se analizó el gen AQP3 objetivo usando los controles negativos como las muestras de calibrador (CN 16h = 1 y CN 48h = 1).
Se ha aplicado Sol 1, Sol 2, Sol 3 y glicerina 5% sobre la superficie epidérmica de RHE estresado por frío durante tratamiento de 16h y 48h.
Glicerina 5% ha reducido significativamente la expresión de AQP3 después de tratamiento de 16h mientras que en el último tiempo de recuperación, 48 h, se ha inducido (aunque no significativamente) una sobreexpresión de AQP3 (RQ = 1,694) que se relaciona con la activación de canales de agua.
Las 3 disoluciones (Sol 1, Sol 2 y Sol 3) han reducido significativamente la expresión de AQP3 después de incubación durante 16h o 48h en condiciones estándar.
Estos resultados sugieren que en ausencia de estrés las 3 disoluciones han determinado un bloque de flujo de agua que da como resultado una vía conservadora fuerte de contenido de agua.
La figura 2 presenta la expresión del gen AQP3 en controles; se ha usado control en condiciones estándar como calibrador CN = 1.
Después de 30 minutos de inducción fría; el RHE estresado redujo la expresión del gen AQP3 (RQ = 0,697) (figura 2).
El estrés por frío llevado a cabo durante 30’ de inducción a -20ºC se corresponde con un bloque de flujo de agua: el tratamiento se ha hecho en este momento y siguió recuperación de 16h y 48h permitiendo monitorizar la dinámica de la respuesta genómica y estudiar el mecanismo de acción del producto: la figura 3 describe la respuesta fisiológica de RHE al tratamiento con disolución de suero y glicerol comparado con la respuesta fisiológica de RHE al mismo tratamiento con las disoluciones 1, 2, 3.
Después de recuperación de 16h y 48h, el RHE estresado incrementó los niveles del gen AQP3 (RQ = 6,090 y 12,635 respectivamente) como se esperaba se estableció un mecanismo de defensa para restaurar el flujo de agua.
Sol 1, aplicado después de 30’ de inducción de estrés, indujo una sobreexpresión de AQP3 después de 48h de recuperación (RQ = 3,745).
Sol 3 incrementó cerca de los valores significativos la expresión de AQP3 después de la incubación de 48h de recuperación (RQ = 1,954).
Después de 48h de recuperación, tanto Sol 2 como glicerina 5% redujeron la expresión de AQP3.
Ya que la disolución de suero de RHE estresado resultó tener influencia sobre la expresión de AQP-3 (RQ = 2, regulación por incremento significativo) y también porque representaba el placebo en este diseño experimental que se aplicaba mejor que el simple RHE estresado, el estrés positivo se usó como el calibrador y se ajustó = 1 para una mejor definición de la eficacia de los productos (figura 4).
La Sol 1 y valores más altos de Sol 3 han inducido una sobreexpresión significativa de AQP3 después de 48 h de recuperación (RQ = 3,745) en comparación con el suero RHE estresado usado como calibrador. La Sol 2, igual que glicerol 5%, redujo la expresión de AQP3.
La alta desviación estándar refleja la diferencia en liberación LDH de las dos réplicas biológicas.
Es interesante interpretar los resultados no sólo en términos de expresión AQP3 sino también en términos de cinética de mecanismo del producto en el modelo de estrés frío:
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El glicerol de referencia era inactivo al restaurar el flujo de agua fisiológica e hidratación después del estrés, por tanto determina un mecanismo de humectación activo a nivel molecular, que confirma su principal mecanismo de acción como molécula higroscópica. El glicerol en RHE no estresado ha determinado una sobreexpresión de AQP3 en la recuperación a largo plazo (fig 1) que sugiere de nuevo una influencia directa sobre el agua intracelular.
Las 3 disoluciones actúan primero, al principio del tiempo de recuperación (16h) mediante una vía conservadora de flujo de agua donde la expresión del gen AQP-3 se ha bloqueado permitiendo a las células mantener el contenido de agua fisiológica según se ha observado cuando se aplicaron los activos en condiciones no estresadas: se ha confirmado la eficacia protectora observada del mecanismo espesante de clúster de agua.
La cinética de un mecanismo de hidratación activo a nivel molecular se muestra claramente mediante los resultados de 48h donde la sobreexpresión de AQP-3 finalmente determina la abertura del canal de agua y realza la entrada de agua y la eficacia humectante. Este mecanismo se ha confirmado para Sol 1 y 3 y no para Sol 2.
En la figura 5 se analizó el gen HSP1A1 objetivo usando el control negativo como muestras de calibrador (CN 16h = 1 y CN 48h = 1).
De nuevo es interesante discutir no sólo los niveles de expresión si no también la dinámica de la repuesta genómica:
Las 3 disoluciones (Sol 1, Sol 2 y Sol 3) y glicerina 5% redujeron significativamente la expresión de HSP1A1 después de incubar durante 16h en condiciones estándar.
En el último periodo de recuperación, tratamiento de 48h, se ha cuantificado una sobreexpresión de HSP 72 sólo para Sol 2 y glicerina 5%: Sol 1 y Sol 3 no modularon significativamente el gen cuando se aplicaron en RHE no estresado.
En la figura 6 se analizó el gen HSP1A1 objetivo usando el control positivo estresado como muestras de calibrador (CN 16h = 1 y CN 48h = 1).
Después de 16 h y 48 h de recuperación en el RHE estresado los niveles del gen HSP 72 (RQ = 2,821 y 3,954 respectivamente) incrementaron.
Ya que el tratamiento con disolución de suero resultó tener influencia sobre la expresión de HSP 72 (regulación por disminución) y también debido a que está mejor representado el placebo en este diseño experimental aplicado en comparación con RHE estresado, el estrés positivo se usó como calibrador y se ajustó a =1 para una mejor comprensión de la eficacia de Sol 1, 2 y 3 (fig 6).
Sol 1, Sol 2, Sol 3 y glicerina 5% redujeron la expresión de HSP 72 después de 16h de recuperación: según se observó para AQP3 donde se estableció una vía conservadora de agua y también se observó en este momento un mecanismo adaptativo para HSP 72.
Después de 48h de recuperación, solo Sol 3 incrementó significativamente la expresión de HSP 72.
En la figura 7 se analizó el gen HSP1A1 objetivo usando la disolución de suero (CN 16h = 1 y CN 48h = 1).
Se cuantificó una regulación por disminución de HSP 72 después de 16h de recuperación en RHEs tratados con Sol 1, Sol 2, Sol 3 y glicerina 5%, por el contrario se observó una cinética diferente para Sol 3 que en el último periodo de recuperación incrementó la expresión de HSP 72.
5. Discusión.
Para entender el mecanismo de acción sobre espesante de agua y protección de clúster del agua epidérmica comparado con sus componentes (ectoína y trehalosa) y con glicerol como producto higroscópico de referencia, se ha propuesto un modelo modificado de secado in vitro basado en un estrés corto pero intenso seguido de periodos precoces y tardíos de recuperación modelados para seguir la dinámica de la respuesta genómica conducida por la eficacia del activo.
Los 3 productos llamados Sol 1, Sol 2, Sol 3 también se han aplicado en condiciones estándar para extrapolar su influencia directa en condiciones no estresadas.
El estrés osmótico se indujo por condiciones de frío (-20ºC) durante 30 minutos: TEER se redujo intensamente y el daño a nivel de membrana se confirmó por la liberación de LDH.
El modelo de estrés por frío descrito fue seguido de una respuesta de defensa fisiológica (recuperación de 16h y 48h) permitiendo monitorizar la dinámica de la respuesta genómica (AQP3 y HSP1A1) y estudiar mecanismos del producto de acción.
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Después de 3 semanas de aplicación el gel activo llevó a un incremento estadísticamente significativo en densidad cutánea, dando como resultado una acción de densificación del gel activo.
Ejemplo 3. Pruebas de simulación.
El solicitante también llevó a cabo simulación de dinámicas moleculares usando como modelo la proteína C12 en disolución de ectoína y/o trehalosa para estudiar la distribución de estos compuestos alrededor de la proteína y evaluar un posible efecto osmótico.
Método para llevar a cabo simulaciones dinámicas.
La estructura inicial de la proteína C12 se obtuvo mediante la base de datos PDB (CODE 1YPC). En todos los casos la proteína se insertó en una caja cúbica virtual de 80 Å de lado, se añadió la cantidad necesaria de osmoprotector para alcanzar la concentración deseada. Los osmoprotectores se insertan en posiciones casuales dentro de la celda de solvatación, por lo tanto el sistema se solvató con agua descrito mediante el modelo TIP4P. Después, estando la proteína cargada positivamente, la electroneutralidad del sistema se garantizó mediante la adición de dos aniones cloruro.
Las simulaciones se llevaron a cabo usando el software GROMACS 4.5.3. El sistema preparado según se ha descrito anteriormente se sometió a 10.000 etapas de optimización de geometría usando alternativamente los métodos de máxima pendiente (SD) y gradiente conjugado (CG), en particular 1 etapa SD para 10 etapas CG. El sistema después se equilibró para 100 etapas a volumen y temperatura constantes, seguido de otras 100 etapas a presión y temperatura contantes. Durante la fase de equilibrio los Cα átomos de la proteína se fijaron a su posición inicial seguido de una fase productiva que duró 20 ns bajo presión y temperatura constantes, en la que se eliminaron los enlaces armónicos sobre Cα.
La temperatura se mantuvo en el valor de referencia 36,85ºC (310ºK) recalculando la velocidad de las partículas que forman el sistema, mientras que se mantiene la presión en un valor medio de 1 bar emparejando el sistema por isotropía a un baño bárico usando el algoritmo de Berendsen. Las distancias de enlaces entre todos los átomos se mantuvieron en su valor de equilibrio usando algoritmo de LINKS, permitiendo por tanto usar una etapa de integración de 2 fs fs = femtosegundo. Todas las simulaciones se llevaron a cabo usando condiciones límite periódicas, las interacciones electrostáticas se determinaron por medio del método de malla de partícula de Ewald, mientras en lo que se refiere a las interacciones de Van der Waals, se aplicó un corte de 14Å.
Se usó el campo de fuerza AMBER03 para describir la proteína, mientras que se usó el campo de fuerza GAFF para describir osmoprotectores. Los análisis de simulación se llevaron a cabo con módulos GROMACS.
Para evaluar el efecto osmótico, se calcularon los coeficientes preferenciales de los compuestos individuales (ectoína y trehalosa) con respecto a la proteína. Un coeficiente preferencial positivo indica una reunión del compuesto (ectoína o trehalosa) con respecto a la disolución en bruto, un coeficiente negativo significa su enrarecimiento.
En la figura 8 se presentan los coeficientes preferenciales de ectoína en disolución 1M y trehalosa en disolución 1M, como una función de la distancia desde la superficie de la proteína. Es evidente si se excluye el suelo más bajo de 1Å que para ambos compuestos que muestran los parámetros positivo anteriormente mencionados no se puede observar efecto osmótico a la concentración anteriormente mencionada ya que, tanto el coeficiente preferencial de ectoína como los de trehalosa son positivos e incrementan con la distancia desde la superficie de la proteína.
Como se presenta en la figura 9 una disolución de ectoína y trehalosa cada una a concentración 1M da los siguientes resultados: es osmófobo hasta el suelo de 2,5-3,0 Å. Por el contrario ectoína y trehalosa por separado muestran efecto osmófobo cuando tienen concentraciones 2M según se hace evidente en la figura 10 donde trehalosa resulta ser siempre osmófoba, y ectoína resulta osmófoba hasta 2,5 Å.
Por lo tanto es evidente que la característica osmófoba está presente cuando la concentración total de ectoína y trehalosa bien solos o su concentración total, cuando están mezclados es = 2M.
Por el contrario el solicitante con la prueba experimental in vitro descrita anteriormente sorprendentemente encontró que la mezcla de trehalosa y ectoína es activa a concentración total que es al menos 2 magnitudes más bajas que la concentración más baja indicada anteriormente (2M), a la que según la simulación anteriormente descrita la asociación de estos osmoprotectores muestran efecto osmófobo, mediante la aplicación de modelos de simulación.
A continuación se presentan con propósitos ilustrativos algunos ejemplos de la composición cosmética de la invención.
Serum 1.
- Agua
- 54,358 ÷ 62,039
- Glicerina
- 6,129 ÷ 6,995
- Triglicérido caprílico/cáprico
- 3,680 ÷ 4,200
- Dimeticona
- 3,680 ÷ 4,200
- Almidón octenilsuccinato de aluminio
- 2,760 ÷ 3,150
- Glicol butileno
- 2,760 ÷ 3,150
- Esteres tribehenina PEG-20
- 2,760 ÷ 3,150
- Aceite de semilla de macadamia ternifolia
- 1,840 ÷ 2,100
- Dipentaeritritil hexacaprilato/hexacaprato
- 1,380 ÷ 1,575
- Cetil alcohol
- 1,104 ÷ 1,260
- Aceite olus
- 1,104 ÷ 1,260
- Ciclopentasiloxano
- 0,920 ÷ 1,050
- Dimeticonol
- 0,920 ÷ 1,050
- Lecitina hidrogenda
- 0,920 ÷ 1,050
- Metil glucosa sesquiestearato PEG-20
- 0,920 ÷ 1,050
- Trehalosa
- 0,920 ÷ 1,050
- Amonio acriloildimetiltaurato/beheneth 25 metacrilato copolímero
- 0,552 ÷ 0,630
- Gliceril dibehenato
- 0,552 ÷ 0,630
- Ectoína
- 0,465 ÷ 0,530
- Bis-etilhexil hidroxidimetoxi benzilmalonato
- 0,460 ÷ 0,525
- Caprilil glicol
- 0,460 ÷ 0,525
- Fenoxietanol
- 0,382 ÷ 0,436
- Poliacrilamida
- 0,331 ÷ 0,378
- Tribehenina
- 0,331 ÷ 0,378
- Fermento thermus termófilo
- 0,276 ÷ 0,315
- Gliceril behenato
- 0,221 ÷ 0,252
- Aceite vegetal hidrogenado
- 0,207 ÷ 0,236
- Lactilato estearoil sódico
- 0,184 ÷ 0,210
- Perfume
- 0,175 ÷ 0,200
- Isoparafina C13-14
- 0,166 ÷ 0,189
- Ceramida 3
- 0,119 ÷ 0,135
- Lecitina
- 0,117 ÷ 0,133
- Clorfenesina
- 0,092 ÷ 0,105
- Dehidroacetato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Hialuronato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Fitato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- EDTA tretasódico
- 0,083 ÷ 0,095
- Cera candelilla
- 0,069 ÷ 0,079
- Mica
- 0,064 ÷ 0,074
- Alcohol desnat.
- 0,046 ÷ 0,053
- Ácido cítrico
- 0,046 ÷ 0,053
- Laureth 7
- 0,041 ÷ 0,047
- Colesterol
- 0,027 ÷ 0,030
- Ácido esteárico
- 0,027 ÷ 0,030
- CI 77491
- 0,021 ÷ 0,024
- Ácido lisofosfátidico
- 0,018 ÷ 0,021
- Manitol
- 0,012 ÷ 0,014
- Hidróxido sódico
- 0,009 ÷ 0,011
- CI 77891
- 0,005 ÷ 0,005
- Ciclotetrapéptido 24 aminociclohexano carboxilato
- 0,005 ÷ 0,005
- Lisolecitina
- 0,003 ÷ 0,003
- Sorbato potásico
- 0,003 ÷ 0,003
- Trietoxi caprililsilano
- 0,002 ÷ 0,002
Emulsión 1.
- Agua
- 54,358 ÷ 62,039
- Glicerina
- 6,129 ÷ 6,995
- Triglicérido caprílico/cáprico
- 3,680 ÷ 4,200
- Dimeticona
- 3,680 ÷ 4,200
- Almidón octenilsuccinato de aluminio
- 2,760 ÷ 3,150
- Glicol butileno
- 2,760 ÷ 3,150
- Esteres tribehenina PEG-20
- 2,760 ÷ 3,150
- Aceite de semilla de macadamia ternifolia
- 1,840 ÷ 2,100
- Dipentaeritritil hexacaprilato/hexacaprato
- 1,380 ÷ 1,575
- Cetil alcohol
- 1,104 ÷ 1,260
- Aceite olus
- 1,104 ÷ 1,260
- Ciclopentasiloxano
- 0,920 ÷ 1,050
- Dimeticonol
- 0,920 ÷ 1,050
- Lecitina hidrogenda
- 0,920 ÷ 1,050
- Metil glucosa sesquiestearato PEG-20
- 0,920 ÷ 1,050
- Trehalosa
- 0,920 ÷ 1,050
- Amonio acriloildimetiltaurato/beheneth 25 metacrilato copolímero
- 0,552 ÷ 0,630
- Gliceril dibehenato
- 0,552 ÷ 0,630
- Ectoína
- 0,465 ÷ 0,530
- Bis-etilhexil hidroxidimetoxi benzilmalonato
- 0,460 ÷ 0,525
- Caprilil glicol
- 0,460 ÷ 0,525
- Fenoxietanol
- 0,382 ÷ 0,436
- Poliacrilamida
- 0,331 ÷ 0,378
- Tribehenina
- 0,331 ÷ 0,378
- Fermento thermus termófilo
- 0,276 ÷ 0,315
- Gliceril behenato
- 0,221 ÷ 0,252
- Aceite vegetal hidrogenado
- 0,207 ÷ 0,236
- Lactilato estearoil sódico
- 0,184 ÷ 0,210
- Perfume
- 0,175 ÷ 0,200
- Isoparafina C13-14
- 0,166 ÷ 0,189
- Ceramida 3
- 0,119 ÷ 0,135
- Lecitina
- 0,117 ÷ 0,133
- Clorfenesina
- 0,092 ÷ 0,105
- Dehidroacetato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Hialuronato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Fitato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- EDTA tretasódico
- 0,083 ÷ 0,095
- Cera candelilla
- 0,069 ÷ 0,079
- Mica
- 0,064 ÷ 0,074
- Alcohol desnat.
- 0,046 ÷ 0,053
- Ácido cítrico
- 0,046 ÷ 0,053
- Laureth 7
- 0,041 ÷ 0,047
- Colesterol
- 0,027 ÷ 0,030
- Ácido esteárico
- 0,027 ÷ 0,030
- CI 77491
- 0,021 ÷ 0,024
- Ácido lisofosfátidico
- 0,018 ÷ 0,021
Emulsión 2.
- Agua
- 64,119 ÷ 73,180
- Glicerina
- 7,044 ÷ 8,040
- Triglicérido caprílico/cáprico
- 2,760 ÷ 3,150
- Dimeticona
- 2,760 ÷ 3,150
- Aceite de semilla de macadamia ternifolia
- 1,840 ÷ 2,100
- Gliceril estearato
- 0,920 ÷ 1,050
- Licitina hidrogenada
- 0,920 ÷ 1,050
- Estearato PEG-100
- 0,920 ÷ 1,050
- Dicaprilato propanediol
- 0,920 ÷ 1,050
- Almidón de tapioca
- 0,920 ÷ 1,050
- Trehalosa
- 0,920 ÷ 1,150
- Aceite olus
- 0,736 ÷ 0,840
- Ciclopentasiloxano
- 0,690 ÷ 0,788
- Dimeticonol
- 0,690 ÷ 0,788
- Amonio acriloildimetiltaurato/beheneth 25 metacrilato copolímero
- 0,644 ÷ 0,735
- Ectoína
- 0,465 ÷ 0,530
- Manteca de butyrospermum parkii
- 0,460 ÷ 0,525
- Caprilil glicol
- 0,460 ÷ 0,525
- Hidroxidimetoxi benzil malonato
- 0,460 ÷ 0,525
- Lactilato estearoil sódico
- 0,460 ÷ 0,525
- Fenoxietanol
- 0,382 ÷ 0,436
- Poliacrilamida
- 0,294 ÷ 0,336
- Fermento thermus termófilo
- 0,276 ÷ 0,315
- Gliceril dibehenato
- 0,230 ÷ 0,263
- Perfume
- 0,175 ÷ 0,200
- Isoparafina C13-14
- 0,147 ÷ 0,168
- Aceite vegetal hidrogenado
- 0,138 ÷ 0,158
- Tribehenina
- 0,138 ÷ 0,158
- Lecitina
- 0,177 ÷ 0,133
- Ceramida 3
- 0,105 ÷ 0,120
- Clorfenesina
- 0,092 ÷ 0,105
- EDTA disódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Gliceril behenato
- 0,092 ÷ 0,105
- Dihidroacetato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Hialuronato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Fitato sódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Ácido cítrico
- 0,074 ÷ 0,084
- Mica
- 0,052 ÷ 0,059
- Alcohol desnat.
- 0,046 ÷ 0,053
- Cera candelilla
- 0,046 ÷ 0,053
- Laureth 7
- 0,037 ÷ 0,042
- Ácido lisofosfatídico
- 0,018 ÷ 0,021
- CI 77491
- 0,017 ÷ 0,019
- Colesterol
- 0,013 ÷ 0,015
- Ácido esteárico
- 0,013 ÷ 0,015
- Manitol
- 0,006 ÷ 0,007
- Ciclopéptido 5
- 0,005 ÷ 0,005
- CI 77891
- 0,004 ÷ 0,004
- Lisolecitina
- 0,003 ÷ 0,003
- Sorbato potásico
- 0,003 ÷ 0,003
Emulsión solar.
- Agua
- 56,408 ÷ 64,379
- Butilen glicol dicaprilato/dicaprato
- 4,600 ÷ 5,250
- Etilexil salicilato
- 4,140 ÷ 4,725
- Butil metoxi dibenzoil metano
- 3,680 ÷ 4,200
- Etilhexil triazona
- 3,680 ÷ 4,200
- Alquil benzoato C12-15
- 2,760 ÷ 3,150
- Dibutil adipato
- 2,760 ÷ 3,150
- Glicerina
- 2,746 ÷ 3,134
- Bis-etilhexil oxifenol metoxifenil triazina
- 2,300 ÷ 2,625
- Almidón octenilsuccinato de aluminio
- 1,840 ÷ 2,100
- Acriloildimetil taurato amínico /VP copolímero
- 0,920 ÷ 1,050
- Octocrileno
- 0,920 ÷ 1,050
- Cetil fosfato potásico
- 0,920 ÷ 1,050
- Triacontanil PVP
- 0,920 ÷ 1,050
- Trehalosa
- 0,920 ÷ 1,050
- Fenoxietanol
- 0,461 ÷ 0,526
- Alantoína
- 0,460 ÷ 0,525
- Caprilil glicol
- 0,460 ÷ 0,525
- Aceite olus
- 0,460 ÷ 0,525
- Dipoli hidroxi estearato PEG-20
- 0,460 ÷ 0,525
- Ectoína
- 0,465 ÷ 0,530
- Tocoferil acetato
- 0,460 ÷ 0,525
- Dehidroacetato sódico
- 0,184 ÷ 0,210
- Bisabolol
- 0,092 ÷ 0,105
- EDTA disódico
- 0,092 ÷ 0,105
- Propilén glicol
- 0,056 ÷ 0,064
- Ácido cítrico
- 0,046 ÷ 0,053
- Carboximetil betaglucano sódico
- 0,046 ÷ 0,053
- Zumo de hoja de aloe barbadensis
- 0,041 ÷ 0,047
- Hialuronato sódico
- 0,018 ÷ 0,021
- Perfume
- 0,018 ÷ 0,021
- BHA
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- Extracto de caléndula oficinalis
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- Maltodextrina
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Bibliografía.
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