ES2336684T3 - Vacunas de subunidades de ornithobacterium rhinotracheale. - Google Patents
Vacunas de subunidades de ornithobacterium rhinotracheale. Download PDFInfo
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Abstract
Ácido nucleico que codifica una proteína inmunogénica de 59,8 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 1.
Description
Vacunas de subunidades de Ornithobacterium
rhinotracheale.
La presente invención se refiere a ácidos
nucleicos que codifican proteínas de Ornithobacterium
rhinotracheale, a fragmentos de ADN, a moléculas de ADN
recombinante, vehículos recombinantes vivos y células hospedadoras
que comprenden tales ácidos nucleicos, a proteínas de
Ornithobacterium rhinotracheale, a anticuerpos contra tales
proteínas, a tales proteínas para el uso en vacunas, al uso de tales
proteínas en la fabricación de tales vacunas, a vacunas que
comprenden tales ácidos nucleicos, fragmentos de ADN, moléculas de
ADN recombinante, vehículos recombinantes vivos, células
hospedadoras, proteínas o anticuerpos contra tales proteínas y a
métodos para la preparación de tales vacunas.
El Ornithobacterium rhinotracheale es una
bacteria descubierta de forma relativamente reciente que se
encuentra más y más frecuentemente en granjas de aves de corral y
en aves silvestres. Especialmente los animales en granjas
comerciales de pollos, granjas de pavos y granjas de patos están
infectados frecuentemente. En aves de corral comerciales, la
infección está asociada con enfermedades respiratorias: las
características más comunes de infección por Ornithobacterium
rhinotracheale son aerosaculitis y neumonía. Estos signos se
pueden inducir por aerosol en administración intratraqueal o
intratorácica del organismo y se agravan por otros factores tales
como virus respiratorios, bacterias o condiciones de alojamiento
sub-óptimas. La osteítis, meningitis e infecciones articulares que
se pueden inducir por aplicación intravenosa se han asociado con
Ornithobacterium rhinotracheale. La infección se puede
transmitir horizontalmente así como verticalmente a través de los
huevos, lo que probablemente explica su propagación rápida y a
nivel mundial. Se ha proporcionado una revisión extensa de
Ornithobacterium rhinotracheale por van Empel, P.C.M. ad
Hafez, H. M. en Avian Pathology 28: 217-227 (1999).
La Patente Europea EP0.625.190 se refiere tanto a la bacteria
Ornithobacterium rhinotracheale como a vacunas contra
Ornithobacterium rhinotracheale.
La investigación serológica ha puesto de
manifiesto que las cepas de Ornithobacterium rhinotracheale
pueden tener diferentes serotipos, dependiendo hasta cierto grado
del origen geográfico de la cepa y del animal hospedador del que se
aislaron. En este momento se han encontrado dieciocho serotipos
diferentes.
El tratamiento terapéutico de la enfermedad
puede ser difícil debido a que dentro del género es muy común la
resistencia adquirida contra los antibióticos regulares. Además,
existe una reticencia creciente contra el uso de antibióticos en
animales de alimentación por motivos tanto públicos como sanitarios
y ambientales.
La vacunación ofrece una alternativa para el
tratamiento terapéutico con anticuerpos, pero hasta ahora solamente
ha sido posible la vacunación con vacunas vivas atenuadas y vacunas
inactivadas de células completas.
Avian Diseases, vol. 44, páginas
549-555, 2000, S. J. Sprenger et al. describe
la vacunación de pavos de 6 semanas de edad con una vacuna viva o
inactivada de Ornithobacterium rhinotracheale. Después de 14
ó 21 semanas, las aves se expusieron a Ornithobacterium
rhinotracheale vivo. Se observó que los pavos a los que se había
inoculado la vacuna viva o inactivada de Ornithobacterium
rhinotracheale estaban protegidos frente a cambios
patológicos.
Avian Diseases, vol. 46, páginas
177-185, 2002, V. Lopes et al. describe la
investigación de la protección provocada por un mutante sensible a
temperatura (Ts) de la vacuna de Ornithobacterium
rhinotracheale frente a una exposición a una cepa patógena. Los
resultados indicaron que el uso de la cepa mutante Ts de
Ornithobacterium rhinotracheale como una vacuna viva sería
adecuado para provocar protección contra infección por
Ornithobacterium rhinotracheale en pavos.
El éxito de vacunas vivas atenuadas
específicamente para Ornithobacterium rhinotracheale depende
en gran medida del equilibrio correcto entre atenuación y
activación del sistema inmune. Las vacunas inactivadas de células
completas básicamente son seguras y, por lo tanto, desde un punto de
vista de seguridad, parecerían el tipo preferido de vacuna.
Sin embargo, las vacunas inactivadas de células
vivas se tienen que dar a una mayor dosis en comparación con las
vacunas vivas atenuadas. Como una regla general, la mayor parte de
las proteínas presentes en una bacteria no desempeña ningún papel
en la activación del sistema inmune, es decir, no son inmunógenos
relevantes. Esto significa que, en el caso de vacunas inactivadas
de células completas, para proporcionar a seres humanos o animales
un nivel suficiente de inmunogénicas pertinentes, se administra una
gran cantidad de material no protector adicionalmente y de forma
inevitable. Esto no es una situación deseable.
El uso de vacunas de subunidades podría superar
este problema y, por lo tanto, sería altamente preferido, pero
actualmente no se conoce vacunas de subunidades inmunogénicas en la
técnica para combatir Ornithobacterium rhinotracheale.
Además, se conoce que aunque las vacunas vivas
atenuadas y las preparaciones inactivadas de células completas
proporcionan un cierto nivel de protección cruzada contra todas las
cepas de Ornithobacterium rhinotracheale, las vacunas de
subunidades pueden inducir o no reactividad cruzada.
\newpage
\global\parskip0.900000\baselineskip
La presente invención pretende proporcionar por
primera vez vacunas que están basadas en subunidades de
Ornithobacterium rhinotracheale que inducen reactividad
cruzada.
Este objetivo se alcanza proporcionando ocho
proteínas novedosas de Ornithobacterium rhinotracheale que
desempeñan sorprendentemente un papel importante en la activación
de una respuesta inmune protectora y proporcionando vacunas que
comprenden una o más de estas proteínas inmunogénicas novedosas. Aún
más sorprendentemente, se observó que estas ocho proteínas
novedosas no solamente inducen una respuesta inmune homóloga
protectora, sino que también inducen una respuesta inmune con
reactividad cruzada protectora. Una respuesta inmune homóloga es
una respuesta contra cepas del mismo serotipo, mientras que una
respuesta inmune de reactividad cruzada es una respuesta contra
cepas serológicamente tanto homólogas como heterólogas.
La primera proteína novedosa, Or01, que tiene un
peso molecular de 59,8 kD, está codificada por un ácido nucleico que
tiene una secuencia de nucleótidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
1.
Se conoce bien en la técnica que muchas
secuencias de nucleótidos diferentes pueden codificar la misma
proteína. Este fenómeno se conoce comúnmente como titubeo en la
segunda y especialmente en la tercera base de cada triplete que
codifica un aminoácido. Este fenómeno puede dar como resultado una
heterología de aproximadamente el 20-30% para dos
secuencias de nucleótidos que todavía codifican la misma proteína.
Por lo tanto, dos ácidos nucleicos que tienen una homología de
secuencia de nucleótidos de aproximadamente el 80% todavía pueden
codificar la misma proteína.
Por tanto, una realización se refiere a un ácido
nucleico que codifica una proteína de 59,8 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale o una parte de dicho ácido nucleico que codifica
un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho ácido
nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al menos el
80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 1.
El peso molecular de la proteína (y las siete
otras proteínas) se determina basándose en el peso molecular de los
aminoácidos como se dan en la secuencia de aminoácidos.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 59,8 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esta proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 1.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
El nivel de homología de nucleótidos se puede
determinar con el programa informático "BLAST 2 SEQUENCES"
seleccionado el sub-programa: "BLASTN" que se
puede encontrar en
www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/bl2sea/bl2.html. Una referencia
para este programa es Tatiana A. Tatusova, Thomas L. Madden FEMS
Microbiol. Letters 174: 247-250 (1999). Los
parámetros usados son los parámetros por defecto:
Recompensa por una coincidencia: +1.
Penalización por un apareamiento erróneo: -2. Hueco abierto: 5.
Extensión de hueco: 2. Disminución x de hueco: 50.
Otra estrategia para decidir si una cierta
secuencia de ácido nucleico es o no una secuencia de ácido nucleico
de acuerdo con la invención se refiere a la cuestión de si una
cierta secuencia de ácido nucleico híbrida en condiciones rigurosas
con la secuencia de nucleótidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 1
(o en la SEC ID Nº: 3, 5, 7, 9, 11, 13 ó 15, véase más adelante).
Si una secuencia de ácido nucleico híbrida en condiciones rigurosas
con la secuencia de nucleótidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 1
o, por supuesto, como se ilustra en la SEC ID Nº: 3, 5, 7, 9, 11,
13 y 15, se considera que es una secuencia de ácido nucleico de
acuerdo con la invención.
La definición de condiciones rigurosas se deduce
de la fórmula de Meinkoth y Wahl (1984. Hybridization of nucleic
acids immobilized on solid supports. Anal. Biochem. 138:
267-284.).
Tm = [81,5ºC +
16,6(log M) + 0,41(% GC) - 0,61(% de formamida) - 500/L]
-1ºC/1% de apareamiento
erróneo
En esta fórmula, M es la molaridad de cationes
monovalentes; %GC es el porcentaje de nucleótidos guanosina y
citosina en el ADN; L es la longitud del híbrido en pares de
bases.
Las condiciones rigurosas son las condiciones en
las que las secuencias de ácido nucleico o fragmentos de las mismas
todavía hibridan, si tienen un apareamiento erróneo del 20% como
mucho, preferiblemente del 10%, más preferiblemente del 8, 6, 5,
4,3, 2, 1 o el 0% en ese orden o preferencia, con la secuencia de
ácido nucleico como se ilustra en cualquiera de las SEC ID Nº: 1, 3,
5, 7, 9, 11, 13 ó 15.
Otra realización se refiere a un ácido nucleico
que codifica una proteína de 58,2 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or02, o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 3.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 58,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica una fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 3.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
Otra realización más se refiere a un ácido
nucleico que codifica una proteína de 46,0 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or03 o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 5.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 46,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 5.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
De nuevo, otra realización se refiere a un ácido
nucleico que codifica una proteína de 37,2 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or04 o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 7.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 37,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 7.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
Otra realización se refiere a un ácido nucleico
que codifica una proteína de 45,6 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or11 o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 9.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 45,6 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 9.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
De nuevo, otra realización se refiere a un ácido
nucleico que codifica una proteína de 42,2 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or77 o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 11.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 42,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 11.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
También, otra realización se refiere a un ácido
nucleico que codifica una proteína de 34,0 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or98A o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 13.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 34,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 13.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
\newpage
Otra realización se refiere a un ácido nucleico
que codifica una proteína de 32,9 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale Or98B o una parte de dicho ácido nucleico que
codifica un fragmento inmunogénico de dicha proteína, donde dicho
ácido nucleico o dicha parte del mismo tiene una homología de al
menos el 80% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 15.
Preferiblemente, un ácido nucleico de acuerdo
con la invención que codifica esta proteína de 32,9 kD
Ornithobacterium rhinotracheale o una parte de ese ácido
nucleico que codifica un fragmento inmunogénico de esa proteína
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra
en la SEC ID Nº: 15.
Se prefiere incluso más un nivel de homología
del 98%, del 99% o incluso del 100%.
También pertenecen al alcance de la invención
secuencias de nucleótidos que son complementarias a la secuencia
ilustrada en la SEC ID Nº 1, 3, 5, 7, 9, 11,13 ó 15 o secuencias de
nucleótidos que comprenden series en tándem de las secuencias de
acuerdo con la invención.
Ya que la presente invención describe ácidos
nucleicos que codifican 8 proteínas novedosas de Ornithobacterium
rhinotracheale, ahora por primera vez es posible obtener estas
proteínas en cantidades significativas. Esto se puede realizar, por
ejemplo, usando sistemas de expresión para expresar la totalidad o
partes de un gen que codifica la proteína o un fragmento
inmunogénico del mismo.
Por lo tanto, en una forma preferida de esta
realización, la invención se refiere a fragmentos de ADN que
comprenden un ácido nucleico de acuerdo con la invención. Un
fragmento de ADN es un tramo de nucleótidos que funciona como un
vehículo para un ácido nucleico de acuerdo con la invención. Tales
fragmentos de ADN pueden ser, por ejemplo, plásmidos, en los que se
clona un ácido nucleico de acuerdo con la invención. Tales
fragmentos de ADN son útiles, por ejemplo, para aumentar la
cantidad de ADN para el uso como un cebador y para la expresión de
un ácido nucleico de acuerdo con la invención, como se describe más
adelante.
Un requisito esencial para la expresión del
ácido nucleico es un promotor adecuado unido funcionalmente al
ácido nucleico, de tal forma que el ácido nucleico esté bajo el
control del promotor. Es obvio para el especialista en la técnica
que la elección de un promotor se extiende a cualquier promotor
eucariota, procariota o vírico capaz de dirigir la transcripción
génica en células usadas como células hospedadoras para la expresión
de proteína. Por lo tanto, una forma más preferida de esta
realización se refiere a una molécula de ADN recombinante que
comprende un fragmento de ADN y/o un ácido nucleico de acuerdo con
la invención, donde el ácido nucleico de acuerdo con la invención
se pone bajo el control de un promotor unido funcionalmente. Esto se
puede obtener mediante, por ejemplo, técnicas de biología molecular
convencionales.
(Maniatis/Sambrook (Sambrook, J. Molecular
cloning: a laboratory manual, 1989. ISBN
0-87969-309-6). Los
promotores unidos funcionalmente son promotores que son capaces de
controlar la transcripción de los ácidos nucleicos a los que se
unen. Tal promotor puede ser el promotor nativo del gen novedoso, es
decir, el promotor que está implicado en la transcripción del ácido
nucleico que codifica una proteína de acuerdo con la invención u
otro promotor de Ornithobacterium rhinotracheale, suponiendo
que ese promotor sea funcional en la célula usada para la
expresión. También puede ser un promotor heterólogo. Cuando las
células hospedadoras son bacterias, las secuencias de control de la
expresión útiles que se pueden usar incluyen el promotor y el
operador de Trp (Goeddel, et al., Nucl Acids Res., 8, 4057,
1980); el promotor y operador lac (Chang, et al., Nature,
275, 615, 1978); el promotor de proteína de membrana externa
(Nakamura, K. y Inouge, M., EMBO J., 1,
771-775,1982); los promotores y operadores de
bacteriófago lambda (Remaut, E. et al., Nucl. Acids Res., 11,
4677-4688, 1983); el promotor y operador de
\alpha-amilasa (B. subtilis), secuencias de
terminación y otras secuencias de mejora y control de la expresión
compatibles con la célula hospedadora seleccionada. Cuando la célula
hospedadora es una levadura, las secuencias de control de la
expresión útiles incluyen, por ejemplo, factor de apareamiento
\alpha. Para células de insecto, se pueden usar los promotores de
polihedrina o p10 de baculovirus (Smith, G. E. et al., Mol.
Cell. Biol. 3, 2156-65, 1983). Cuando la célula
hospedadora es de origen vertebrado, las secuencias de control de
la expresión útiles ilustrativas incluyen el promotor temprano
inmediato de citomegalovirus (humano) (Seed, B. et al.,
Nature 329, 840-842,1987; Fynan, E. F. et
al., PNAS 90, 11478-11482, 1993; Ulmer, J. B.
et al, Science 259, 1745-1748, 1993), LTR de
virus de sarcoma de Rous (RSV, Gorman, C. M. et al., PNAS
79, 6777-6781, 1982; Fynan et al.,
anteriormente; Ulmer et al., anteriormente), el LTR de MPSV
(Stacey et al, J. Virology 50,
725-732,1984), el promotor temprano inmediato de
SV40 (Sprague J. et al., J. Virology 45, 773, 1983), el
promotor de SV40 (Berman, P. W. et al., Science, 222,
524-527, 1983), el promotor de metalotioneína
(Brinster, R. L. et al., Nature 296, 39-42,
1982), el promotor de choque térmico (Voellmy et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 82, 4949-53, 1985), el
promotor tardío principal de Ad2 y el promotor de
\beta-actina (Tang et al., Nature 356
152-154, 1992). Las secuencias reguladoras también
pueden incluir secuencias terminadoras y de
poli-adenilación. Entre las secuencias que se pueden
usar están la secuencia bien conocida de
poli-adenilación de hormona de crecimiento bovino,
la secuencia de poli-adenilación de SV40, las
secuencias terminadoras y de poli-adenilación de
citomegalovirus humano (hCMV).
Los sistemas de expresión de células
bacterianas, de levadura, fúngicas, de insecto y de vertebrados son
sistemas usados muy frecuentemente. Tales sistemas se conocen bien
en la técnica y están disponibles de forma general, por ejemplo, en
el mercado por Clontech Laboratories, Inc. 4030 Fabian Way, Palo
Alto, California 94303-4607, EEUU. Además de estos
sistemas de expresión, los sistemas de expresión basados en
parásitos son sistemas de expresión atractivos. Tales sistemas se
describen, por ejemplo, en la Solicitud de Patente Francesa con el
Nº de Publicación 2 714 074 y en la Publicación NTIS de Estados
Unidos Nº US 08/043109 (Hoffman, S. y Rogers, W.: Public. Fecha 1 de
diciembre de 1993).
Una forma incluso más preferida de esta
realización de la invención se refiere a Vehículos Recombinantes
Vivos (LRC) que comprenden un ácido nucleico que codifica una
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento
inmunogénico de la misma de acuerdo con la invención, un fragmento
de ADN de acuerdo con la invención o una molécula de ADN
recombinante de acuerdo con la invención. Estos LRC son
microorganismos o virus en los que se ha clonado información
genética adicional, en este caso, un ácido nucleico que codifica una
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento
inmunogénico de la misma, un fragmento de ADN o una molécula de ADN
recombinante de acuerdo con la invención. Los pollos infectados por
tales LRC producirán una respuesta inmunológica no solamente contra
los inmunógenos del vehículo, sino también contra las partes
inmunogénicas de la proteína o las proteínas para las que se clona
el código genético adicionalmente en el LRC, por ejemplo, un gen de
proteína de Ornithobacterium rhinotracheale de acuerdo con la
invención.
Como un ejemplo de LRC bacteriano, se pueden
usar cepas atenuadas de Salmonella conocidas en la técnica de forma
muy atractiva. Además, también se han descrito entre otras cosas
parásitos portadores recombinantes vivos por Vermeulen, A. N. (Int.
Journ. Parasitol. 28: 1121 -1130 (1998)). Además, se pueden usar
virus LRC como un modo de transportar el ácido nucleico al interior
de una célula diana. Los virus portadores recombinantes vivos
también se denominan virus vectores. Los virus usados con frecuencia
como vectores son virus Vaccinia (Panicali et al. 1982,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 79: 4927(1982)), virus herpes
(documento EP 0473210-A2) y retrovirus (Valerio, D.
et al. en: Baum, S. J., Dicke, K. A., Lotzova, E. y Pluznik,
D. H. (Eds.), "Experimental Haematology today" 1988, Springer
Verlag, New York, págs. 92-99 (1989)). Los virus
conocidos y usados en la técnica como virus vectores muy adecuados
específicamente en aves de corral son virus de peste aviar, virus de
Marek serotipo 3, virus Herpes de Pavo, virus Semliki Forest y virus
de Enfermedad de Newcastle.
Los Vehículos Recombinantes Vivos también se
conocen en la técnica como "vectores vivos", o de forma
resumida, "vectores". Por lo tanto, las vacunas basadas en un
Vehículo Recombinante Vivo también se conocen en la técnica como
vacunas de vector.
La técnica de recombinación homóloga in
vivo, bien conocida en la técnica, se puede usar para introducir
un ácido nucleico recombinante en el genoma de una bacteria,
parásito o virus de elección, capaz de inducir la expresión del
ácido nucleico insertado de acuerdo con la invención en el animal
hospedador.
Finalmente, otra forma de esta realización de la
invención se refiere a una célula hospedadora que comprende un
ácido nucleico de acuerdo con una proteína de acuerdo con la
invención, un fragmento de ADN que comprende tal ácido nucleico o
una molécula de ADN recombinante que comprende tal ácido nucleico
bajo el control de un promotor unido funcionalmente. Esta forma
también se refiere a una célula hospedadora que contiene un vehículo
recombinante vivo que comprende una molécula de ácido nucleico que
codifica una proteína de Ornithobacterium rhinotracheale o
un fragmento inmunogénico de la misma de acuerdo con la invención.
Una célula hospedadora puede ser una célula de origen bacteriano,
por ejemplo, Escherichia coli, Bacillus subtilis y especies
de Lactobacillus, en combinación con plásmidos basados en
bacterias como pBR322, o vectores de expresión bacterianos tales
como pGEX o con bacteriófagos. La célula hospedadora también puede
ser de origen eucariota, por ejemplo, células de levadura en
combinación con moléculas de vector específico de levadura o células
eucariotas superiores como células de insecto (Luckow et al;
Bio-technology 6: 47-55 (1988)) en
combinación con vectores o baculovirus recombinantes, células
vegetales en combinación, por ejemplo, con vectores basados en
plásmido Ti o vectores víricos de plantas (Barton, K. A. et
al; Cell 32: 1033 (1983), células de mamífero como células Hela,
células de Ovario de Hámster Chino (CHO) o células de Riñón Felino
Crandell, también con vectores o virus recombinantes apropiados.
Otra realización de la invención se refiere a
una proteína de Ornithobacterium rhinotracheale y fragmentos
inmunogénicos de la misma de acuerdo con la invención.
El concepto de fragmentos inmunogénicos se
definirá más adelante.
Una forma de esta realización se refiere a una
proteína de 59,8 kD de Ornithobacterium rhinotracheale y a
fragmentos inmunogénicos de la misma que tienen una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 80% con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 2.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una homología
de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente el 95% de homología con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 2. Se prefiere incluso más un nivel
de homología del 98%, del 99% o incluso del 100%.
El nivel de homología de proteína se puede
determinar con el programa informático "BLAST 2 SEQUENCES"
seleccionando el sub-programa: "BLASTP", que se
puede encontrar en
www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/bl2seq/bl2.html.
\newpage
Una referencia para este programa es Tatiana A.
Tatusova, Thomas L. Madden FEMS Microbiol. Letters 174:
247-250 (1999). La matriz usada: "blosum62".
Los parámetros usados son los parámetros por defecto:
Hueco abierto: 11. Extensión de hueco: 1.
Disminución x de hueco: 50.
Otra forma de esta realización se refiere a una
proteína de 58,2 kD de Ornithobacterium rhinotracheale y a
fragmentos inmunogénicos de la misma, que tienen una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 80% con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 4.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una homología
de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% de homología con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 4. Se prefiere incluso más un
nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del 100%.
Otra forma más de esta realización se refiere a
una proteína de 46,0 kD de Ornithobacterium rhinotracheale y
a fragmentos inmunogénicos de la misma, que tienen una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 80% con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 6.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una homología
de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% de homología con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 6. Se prefiere incluso más un
nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del 100%.
De nuevo, otra forma de esta realización se
refiere a una proteína de 37,2 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale y a fragmentos inmunogénicos de la misma, que
tienen una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el 80%
con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
8.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una homología
de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% de homología con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 8. Se prefiere incluso más un
nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del 100%.
Otra forma más de esta realización se refiere a
una proteína de 45,6 kD de Ornithobacterium rhinotracheale y
a fragmentos inmunogénicos de la misma, que tienen una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 80% con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 10.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una homología
de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% de homología con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 10. Se prefiere incluso más un
nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del 100%.
Otra forma más de esta realización se refiere a
una proteína de 42,2 kD de Ornithobacterium rhinotracheale y
a fragmentos inmunogénicos de la misma, que tienen una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 80% con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 12.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y a fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una
homología de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente el 95% de homología con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 12. Se prefiere
incluso más un nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del
100%.
Y de nuevo, otra forma de esta realización se
refiere a una proteína de 34,0 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale y a fragmentos inmunogénicos de la misma, que
tienen una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el 80%
con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
14.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y a fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una
homología de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente el 95% de homología con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 14. Se prefiere
incluso más un nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del
100%.
Finalmente, otra forma de esta realización se
refiere a una proteína de 32,9 kD de Ornithobacterium
rhinotracheale y a fragmentos inmunogénicos de la misma, que
tienen una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el 80%
con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
16.
En una forma preferida, la realización se
refiere a tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale
y a fragmentos inmunogénicos de las mismas, que tienen una
homología de secuencia de al menos el 85%, preferiblemente del 90%,
más preferiblemente el 95% de homología con la secuencia de
aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº: 16. Se prefiere
incluso más un nivel de homología del 98%, del 99% o incluso del
100%.
Otra forma de esta realización se refiere a
tales proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale y
fragmentos inmunogénicos de dichas proteínas de acuerdo con la
invención, donde las proteínas y los fragmentos inmunogénicos de
las mismas están codificados por un ácido nucleico de acuerdo con la
invención.
Se comprenderá que, para las proteínas
particulares incluidas en este documento, pueden existir variaciones
naturales entre cepas individuales de Ornithobacterium
rhinotracheale. Estas variaciones se pueden demostrar por una
diferencia o diferencias de aminoácidos en la secuencia global o por
deleciones, sustituciones, inserciones, inversiones o adiciones de
un aminoácido o aminoácidos en dicha secuencia. Las sustituciones de
aminoácidos que no alteran esencialmente las actividades biológicas
e inmunológicas se han descrito, por ejemplo, por Neurath et
al en "The Proteins" Academic Press New York (1979). Las
sustituciones de aminoácidos entre aminoácidos relacionados o
sustituciones que han tenido lugar frecuentemente en la evolución
son, entre otras, Ser/Ala, Ser/Gly, Asp/Gly, Asp/Asn, IIe/Val
(véase Dayhof, M. D., Atlas of protein sequence and structure, Nat.
Biomed. Res. Found., Washington D.C., 1978, vol. 5, supl. 3). Otras
sustituciones de aminoácidos incluyen Asp/Glu, Thr/Ser, Ala/Gly,
Ala/Thr, Ser/Asn, Ala/Val, Thr/Phe, Ala/Pro, Lys/Arg, Leu/Ile,
Leu/Val y Ala/Glu. Basándose en esta información, Lipman y Pearson
desarrollaron un método para la comparación rápida y sensible de
proteínas (Science, 227, 1435-1441, 1985) y para
determinar la similitud funcional entre proteínas homólogas. Tales
sustituciones de aminoácidos de las realizaciones ilustrativas de
esta invención, así como variaciones que tienen deleciones y/o
inserciones, pertenecen al alcance de la invención siempre que las
proteínas resultantes conserven su inmunorreactividad. Esto explica
por qué las proteínas de Ornithobacterium rhinotracheale de
acuerdo con la invención, cuando se aíslan de diferentes aislados de
campo, puede tener niveles de homología de tan solo el 80%,
mientras que todavía representan la misma proteína con las mismas
características inmunológicas. Las variaciones en la secuencia de
aminoácidos de una cierta proteína de acuerdo con la invención que
todavía proporcionan una proteína capaz de inducir una respuesta
inmune contra infección por Ornithobacterium rhinotracheale
o al menos contra las manifestaciones clínicas de la infección se
consideran "que no influyen esencialmente en la
inmunogenicidad".
Cuando una proteína se usa, por ejemplo, con
propósitos de vacunación para generar anticuerpos, sin embargo, no
es necesario usar toda la proteína. También es posible usar un
fragmento de esta proteína que sea capaz, como tal o acoplado a un
vehículo tal como, por ejemplo, KLH, de inducir una respuesta inmune
contra esa proteína, un denominado fragmento inmunogénico. Se
entiende que un "fragmento inmunogénico" es un fragmento de la
proteína de longitud completa que todavía ha conservado su
capacidad de inducir una respuesta inmune en un hospedador
vertebrado, por ejemplo, comprende un epítopo de célula B o T. En
resumen, un fragmento inmunogénico es un fragmento que es capaz de
inducir una respuesta antigénica contra una proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale de acuerdo con la invención.
En este momento, está disponible una diversidad de técnicas para
identificar de forma sencilla fragmentos de ADN que codifican
fragmentos antigénicos (determinantes). El método descrito por
Geysen et al (Solicitud de Patente WO 84/03564, Solicitud de
Patente WO 86/06487, Patente de Estados Unidos Nº 4.833.092, Proc.
Natl Acad. Sci. 81: 3998-4002 (1984), J. Imm. Meth.
102, 259-274 (1987), el denominado método PEPSCAN
es un método fácil de realizar, rápido y bien establecido para la
detección de epítopos; las regiones inmunológicamente importante de
la proteína. El método se usa a nivel mundial y, como tal, se conoce
bien por el especialista en la técnica. Este método (empírico) es
especialmente adecuado para la detección de epítopos de células B.
También, dada la secuencia del gen que codifica cualquier proteína,
los algoritmos informáticos son capaces de indicar fragmentos de
proteína específicos como los epítopos inmunológicamente
importantes basándose en su concordancia secuencial y/o estructural
con epítopos que ahora se conocen. La determinación de estas
regiones está basada en una combinación de los criterios de
hidrofilicidad de acuerdo con Hopp y Woods (Proc. Natl. Acad. Sci.
78: 38248-3828 (1981)) y los aspectos de estructura
secundaria de acuerdo con Chou y Fasman (Advances in Enzymology 47:
45-148 (1987) y Patente de Estados Unidos Nº
4.554.101). Los epítopos de células T se pueden predecir asimismo a
partir de la secuencia por ordenador con la ayuda del criterio de
anfifilicidad de Berzofsky (Science 235, 1059-1062
(1987) y Solicitud de Patente de Estados Unidos 07/005.885). Una
revisión condensada se encuentra en Shan Lu en common principles:
Tibtech 9: 238-242 (1991), Good et al en
Malaria epitopes; Science 235: 1059-1062 (1987), Lu
para una revisión; Vaccine 10: 3-7 (1992),
Berzofsky para HIV-epitopes; The FASEB Journal 5:
2412-2418 (1991). Un fragmento inmunogénico tiene
habitualmente una longitud mínima de 8 aminoácidos, preferiblemente
más de 8, tal como 9, 10, 12, 15 o incluso 20 aminoácidos. Los
ácidos nucleicos que codifican tal fragmento, por lo tanto, tienen
una longitud de al menos 24, pero preferiblemente 27, 30, 36, 45 o
incluso 60 ácidos
nucleicos.
nucleicos.
Por lo tanto, una forma de otra realización más
de la invención se refiere a vacunas para combatir infección por
Ornithobacterium rhinotracheale, que comprenden una proteína
de Ornithobacterium rhinotracheale o fragmentos inmunogénicos
de la misma, de acuerdo con la invención como se ha descrito
anteriormente junto con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Otra realización más de la presente invención se
refiere a una proteína de Ornithobacterium rhinotracheale de
acuerdo con la invención o fragmentos inmunogénicos de la misma para
el uso en una vacuna.
Otra realización más de la presente invención se
refiere al uso de un ácido nucleico, o fragmento de ADN, una
molécula de ADN recombinante, un vehículo recombinante vivo, una
célula hospedadora o un proteína o un fragmento inmunogénico de la
misma de acuerdo con la invención para la fabricación de una vacuna
para combatir la infección por Ornithobacterium
rhinotracheale.
\newpage
Un modo de preparar una vacuna de acuerdo con la
invención es cultivar la bacteria, seguido de purificación
bioquímica de una proteína de Ornithobacterium rhinotracheale
o un fragmento inmunogénico de la misma, de la bacteria. Sin
embargo, esto es un modo para preparar la vacuna que requiere mucho
tiempo.
Por lo tanto, es mucho más conveniente usar los
productos de expresión del gen que codifica una proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale o fragmentos inmunogénicos de
la misma en vacunas. Esto es posible por primera vez ahora debido a
que en la presente invención se proporcionan los ácidos nucleicos
que codifican las proteínas de Ornithobacterium
rhinotracheale.
Las vacunas basadas en los productos de
expresión de estos genes se pueden preparar de forma sencilla
mezclando la proteína de acuerdo con la invención o fragmentos
inmunogénicos de la misma de acuerdo con la invención con un
vehículo farmacéuticamente aceptable como se describe más
adelante.
Alternativamente, una vacuna de acuerdo con la
invención puede comprender vehículos recombinantes vivos como se ha
descrito anteriormente, capaces de expresar la proteína de acuerdo
con la invención o fragmentos inmunogénicos la misma. Tales
vacunas, por ejemplo, basadas en un vehículo de Salmonella o
un vehículo vírico, por ejemplo, un vector de virus Herpes tiene la
ventaja con respecto a vacunas de subunidades que imitan mejor el
modo natural de infección de Ornithobacterium
rhinotracheale. Además, su auto-propagación es
una ventaja, ya que solamente son necesarias pequeñas cantidades
del vehículo recombinante para la inmunización.
Las vacunas también se pueden basar en células
hospedadoras como se ha descrito anteriormente, que comprenden la
proteína o fragmentos inmunogénicos de la misma de acuerdo con la
invención.
Todas las vacunas que se han descrito
anteriormente contribuyen a la vacunación activa, es decir, activan
el sistema de defensa del hospedador.
Alternativamente, se pueden generar anticuerpos,
por ejemplo, en conejos o se pueden obtener a partir de líneas
celulares productoras de anticuerpos como se describe más adelante.
Tales anticuerpos se pueden administrar entonces a los pollos. Este
método de vacunación, vacunación pasiva, es la vacunación de
elección cuando un animal ya está infectado y no hay tiempo para
permitir que se active la respuesta inmune natural. También es el
método preferido para vacunar animales que tienden a alta presión
de infección repentina. Los anticuerpos administrados contra la
proteína de acuerdo con la invención o fragmentos inmunogénicos de
la misma, en estos casos, se unen directamente a Ornithobacterium
rhinotracheale. Esto tiene la ventaja de que disminuye o
detiene la multiplicación de Ornithobacterium rhinotracheale.
Por lo tanto, otra forma más de esta realización de la invención se
refiere a una vacuna para combatir infección por Ornithobacterium
rhinotracheale que comprende anticuerpos contra una proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale de acuerdo con la invención o
un fragmento inmunogénico de esa proteína y un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
Otra realización más de esta invención se
refiere a anticuerpos contra una proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale de acuerdo con la invención o un fragmento
inmunogénico de esa proteína.
Los métodos para la producción a gran escala de
anticuerpos de acuerdo con la invención también se conocen en la
técnica. Tales métodos dependen de la clonación de (fragmentos de)
la información genética que codifica la proteína de acuerdo con la
invención en un fago filamentoso para la presentación en fagos.
Tales técnicas se describen, entre otros, en la "Antibody
Engineering Page" bajo "filamentous phage display" en
http://aximt1.imt.uni-marburg.de/-rek/aepphage.html.
y en artículos de revisión de Cortese, R. et al., (1994) en
Trends Biotechn. 12: 262-267; de Clarckson, T.
& Wells, J. A. (1994), en Trends Biotechn. 12:
173-183; por Marks, J. D. et al., (1992) en
J. Biol. Chem. 267: 16007-16010; por Winter, G.
et al., (1994) en Annu. Rev. Immunol. 12:
433-455 y por Little, M. et al., (1994)
Biotechn. Adv. 12: 539-555. Los fagos se usan
posteriormente para explorar bibliotecas de expresión de camélido
que expresan anticuerpos de cadena pesada de camélido. (Muyldermans,
S. y Lauwereys, M., Journ. Molec. Recogn. 12:
131-140 (1999) y Ghahroudi, M. A., et al.,
FEBS Letters 414: 512-526 (1997)). Las células de
la biblioteca que expresan los anticuerpos deseados se pueden
replicar y se pueden usar posteriormente para expresión a gran
escala de anticuerpos.
Otra realización más se refiere a un método para
la preparación de una vacuna de acuerdo con la invención que
comprende la mezcla de anticuerpos de acuerdo con la invención y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
Un modo alternativo y eficaz de vacunación es la
vacunación directa con ADN que codifica el antígeno pertinente. La
vacunación directa con ADN que codifica proteínas ha sido exitosa
para muchas proteínas diferentes. (Como se revisa, por ejemplo, en
Donnelly et al., The Immunologist 2: 20-26
(1993)). Este modo de vacunación también es muy atractivo para la
vacunación de pollo contra la infección por Ornithobacterium
rhinotracheale. Por lo tanto, otras formas más de esta
realización de la invención se refieren a vacunas que comprenden
ácidos nucleicos que codifican una proteína de acuerdo con la
invención o fragmentos inmunogénicos de la misma, que comprenden
fragmentos de ADN que comprenden tales ácido nucleicos o que
comprenden moléculas de ADN recombinante de acuerdo con la invención
y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Los ejemplos de plásmido de ADN que son
adecuados para el uso en una vacuna de ADN de acuerdo con la
invención son plásmido de clonación o expresión convencionales para
células hospedadoras bacterianas, eucariotas y de levadura, estando
muchos de dichos plásmidos disponibles en el mercado. Los ejemplos
bien conocidos de tales plásmidos son pBR322 y pcDNA3 (Invitrogen).
Los fragmentos de ADN o las moléculas de ADN recombinante de acuerdo
con la invención deben ser capaces de inducir la expresión de
proteína de las secuencias de nucleótidos. Los fragmentos de ADN o
las moléculas de ADN recombinante pueden comprender una o más
secuencias de nucleótidos de acuerdo con la invención. Además, los
fragmentos de ADN o las moléculas de ADN recombinante pueden
comprender otras secuencias de nucleótidos tales como los
oligonucleótidos inmunoestimulantes que tienen dinucleótidos CpG no
metilados o secuencias de nucleótidos que codifican otras proteínas
antigénicas o citocinas de potenciación con adyuvante.
La secuencia de nucleótidos de acuerdo con la
presente invención o el plásmido de ADN que comprende una secuencia
de nucleótidos de acuerdo con la presente invención, preferiblemente
unido operativamente a una secuencia reguladora de la
transcripción, a usar en la vacuna de acuerdo con la invención,
puede estar desnudo o empaquetado en un sistema de suministro. Los
sistemas de suministro adecuados son vesículas lipídicas, iscoms,
dendrómeros, niosomas, matrices de polisacáridos y similares (véase
más adelante), todos conocidos bien en la técnica. También muy
adecuadas como sistema de suministro son bacterias vivas atenuadas
tales como especies de Salmonella y virus vivos atenuados
tales como vectores de virus Herpes, como se ha mencionado
anteriormente.
Las vacunas de ADN se pueden administrar, por
ejemplo, de forma sencilla mediante aplicación intradérmica tal
como por el uso de un inyector sin aguja. Este modo de
administración suministra el ADN directamente a las células del
animal a vacunar. Las cantidades de ADN en el intervalo entre 10 pg
y 1000 \mug proporcionan buenos resultados. Preferiblemente, se
usan cantidades en el intervalo de microgramos entre 1 y 100
\mug.
En una realización adicional, la vacuna de
acuerdo con la presente invención comprende uno o más antígenos
adicionales obtenidos de un virus o microorganismo patógeno para
aves de corral, un anticuerpo contra tal antígeno o información
genética que codifica dicho antígeno.
Por supuesto, tales antígenos pueden ser, por
ejemplo, otros antígenos de Ornithobacterium rhinotracheale.
Es beneficioso combinar, en una vacuna, dos o más de las proteínas o
fragmentos inmunogénicos de las mismas de acuerdo con la invención,
anticuerpos contra tales proteínas o fragmentos inmunogénicos de las
mismas o información genética que codifica tales proteínas o
fragmentos inmunogénicos de las mismas. Además de esto, es
beneficioso incluir en una vacuna de acuerdo con la invención
antígenos procedentes de otro microorganismo o virus patógeno para
aves de corral, un anticuerpo contra tal antígeno o información
genética que codifica dicho antígeno.
Preferiblemente, el virus o microorganismo se
selecciona entre el grupo que consiste en virus de peste aviar,
virus de Bronquitis Infecciosa, Enfermedad de Bursa Infecciosa
(Gumboro), Virus de la Enfermedad de Marek, agente de Anemia del
pollo, Reovirus Aviar, Mycoplasma gallisepticum, Virus de la
Rinotraqueitis del Pavo, Haemophilus paragallinarum
(Coriza), Poxvirus de Pollo, virus de la encefalomielitis aviar,
virus de la Peste de Pato, virus de la Enfermedad de Newcastle,
virus del síndrome de Caída de Huevo, virus de Laringotraqueitis
Infecciosa, Virus Herpes de Pavos, especies de Eimeria,
Ornithobacterium rhinotracheale, Pasteurella multocida, Mycoplasma
synoviae, especies de Salmonella y E. coli.
Las vacunas basadas en las proteínas de
Ornithobacterium rhinotracheale de acuerdo con la invención
también son muy adecuadas como vacunas marcadoras. Una vacuna
marcadora es una vacuna que permite diferenciar entre pollos
vacunados e infectados en campo, por ejemplo, basándose en el panel
de anticuerpos característico, diferente del panel de anticuerpos
inducido por infección de tipo silvestre. Se induce un panel de
anticuerpos diferente, por ejemplo, cuando una proteína
inmunogénica presente en una bacteria de tipo silvestre no está
presente en una vacuna: entonces el hospedador no preparará
anticuerpos contra esa proteína después de la vacunación. Por
tanto, una vacuna basada en una proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale de acuerdo con la invención induciría solamente
anticuerpos contra esa proteína, mientras que una vacuna basada en
Ornithobacterium rhinotracheale de tipo silvestre vivo, vivo
atenuado o completo inactivado induciría anticuerpos contra todas o
la mayoría de las proteínas bacterianas. Un simple ensayo ELISA, que
tiene pocillos que comprenden una proteína de acuerdo con la
invención y pocillos que comprenden otra proteína de acuerdo con la
invención es suficiente para ensayar el suero de pollos y para
indicar si los pollos están vacunados con una vacuna de subunidades
de acuerdo con la invención o han padecido infección de campo por
Ornithobacterium rhinotracheale; los pollos vacunados con
una vacuna que comprende una proteína de acuerdo con la invención no
tendrían anticuerpos contra otra proteína de acuerdo con la
invención. Los pollos que se han encontrado con una infección de
campo por Ornithobacterium rhinotracheale, sin embargo,
tendrían anticuerpos contra todas las proteínas inmunogénicas de
Ornithobacterium rhinotracheale y, por tanto, también contra
otra proteína de acuerdo con la invención.
Todas las vacunas de acuerdo con la presente
invención comprenden un vehículo farmacéuticamente aceptable. Un
vehículo farmacéuticamente aceptable puede ser, por ejemplo, agua
estéril o una solución salina fisiológica estéril. En una forma más
compleja, el vehículo puede ser, por ejemplo, un tampón.
Los métodos para la preparación de una vacuna
comprenden la mezcla de una proteína o un fragmento inmunogénico de
la misma, de acuerdo con la invención y/o anticuerpos contra esa
proteína o un fragmento inmunogénico de la misma y/o un ácido
nucleico y/o un fragmento de ADN, una molécula de ADN recombinante,
un vehículo recombinante vivo o una célula hospedadora de acuerdo
con la invención y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Las vacunas de acuerdo con la presente invención
también pueden contener en una presentación preferida una sustancia
inmunoestimuladora, un denominado adyuvante. Los adyuvantes
comprenden en general sustancias que refuerzan la respuesta inmune
del hospedador de un modo no específico. En la técnica se conocen
varios adyuvantes diferentes. Los ejemplos de adyuvantes usados
frecuentemente en vacunas de pollo son dipéptidos de muramilo,
lipopolisacáridos, varios glucanos y glicanos y Carbopol^{(R)} (un
homopolímero). La vacuna también puede comprender un denominado
"vehículo". Un vehículo es un compuesto al que se adhiere la
proteína, sin unirse covalentemente al mismo. Tales vehículos son,
entre otros, bio-microcápsulas, microalginatos,
liposomas y macrosoles, todos conocidos en la técnica. Una forma
especial de tal vehículo, en el que el antígeno se incluye
parcialmente en el vehículo, es el denominado ISCOM (documentos EP
109.942, EP 180.564, EP 242.380). Además, la vacuna puede
comprender uno o más compuestos con actividad superficial o
emulsionantes adecuados, por ejemplo, Span o Tween.
Con frecuencia, la vacuna se mezcla con
estabilizantes, por ejemplo, para proteger proteínas con tendencia
a degradación contra que sean degradadas, para mejorar la vida útil
de la vacuna o para mejorar la eficacia de secado por congelación.
Los estabilizantes útiles son, entre otros, SPGA (Bovarnik et
al; J. Bacteriology 59: 509 (1950)), hidratos de carbono, por
ejemplo, sorbitol, manitol, trehalosa, almidón, sacarosa, dextrano
o glucosa, proteínas tales como albúmina o caseína o productos de
degradación de las mismas y tampones, tales como fosfatos de metal
alcalino.
Además, la vacuna se puede suspender en un
diluyente fisiológicamente aceptable. No es necesario decir que en
la presente invención también se incluyen otros modos de potenciar
con adyuvante, añadir compuestos o diluyentes de vehículo,
emulsionar o estabilizar una proteína.
Las vacunas de acuerdo con la invención que se
basan en la proteína de acuerdo con la invención o fragmentos
inmunogénicos de la misma se pueden administrar de forma muy
adecuada en cantidades que varían entre 1 y 100 microgramos de
proteína por animal, aunque en principio se pueden usar dosis
menores. Una dosis que supera 100 microgramos, aunque
inmunológicamente será muy adecuada, será menos atractiva por
motivos comerciales.
Las vacunas basadas en un vehículo recombinante
vivo atenuado, tales como los virus y bacterias LRC que se han
descrito anteriormente, se pueden administrar en dosis mucho
menores, debido a que se multiplican por sí mismos durante la
infección. Por lo tanto, las cantidades muy adecuadas variarían
entre 10^{3} y 10^{9} UFC/UFP para, respectivamente,
bacterias/virus.
Las vacunas de acuerdo con la invención se
pueden administrar, por ejemplo, por vía intradérmica, por vía
subcutánea, por vía intramuscular, por vía intraperitoneal, por vía
intravenosa o en superficies de la mucosa tal como por vía oral o
por vía intranasal. Las vacunas de vehículo recombinante vivo o
vacunas de vector se pueden administrar de forma más eficaz por
pulverización, por aerosol o por administración en el agua de
bebida.
\vskip1.000000\baselineskip
Para la construcción de una biblioteca de
expresión de la cepa O-95029 Nº 16279 de serotipo G
de Ornithobacterium rhinotracheale se aisló ADN genómico de
células cultivadas en caldo Todd Hewitt (THB) durante 24 horas a
37ºC en un agitador de 100 rpm de acuerdo con el método descrito en
Maniatis/Sambrook (Sambrook, J. et al. Molecular cloning: a
laboratory manual. ISBN
0-87969-309-6). Se
obtuvieron fragmentos de ADN de 1-4 kb por digestión
con enzimas de restricción y se ligaron en brazos de vector
\lambdaTriplEx (Clontech, Palo Alto, CA, EEUU). Se realizó el
empaquetamiento posterior usando el extracto de empaquetamiento
in vitro de Stratagene (La Jolla, CA, EEUU). Se usaron
células de Escherichia coli XL1 Blue, cultivadas en caldo
Luria Bertani (LB) complementado con MgSO_{4} 10 mM y
maltosa al 0,2% para la transfección. La complejidad de la
biblioteca de expresión construida se ensayó 6,9 y contenía el 97%
de recombinantes.
La biblioteca de expresión de serotipo G de
Ornithobacterium rhinotracheale se exploró con antisueros
policlonales dirigidos contra organismos vivos completos de varios
serotipos de Ornithobacterium rhinotracheale. Los sueros se
recogieron de pollos de engorde que estaban vacunados por
pulverización con aerosol con bacterias vivas de
Ornithobacterium rhinotracheale de serotipo B (cepa GGD
1261), serotipo G (cepa O-95029 Nº 16279) o serotipo
M (cepa TOP 98036 4500) a las dos semanas de edad. Tres semanas más
tarde, los pollos se expusieron por vía intravenosa a serotipo A de
Ornithobacterium rhinotracheale (cepa B3263/91). Se
recogieron sueros una semana después de la exposición. Todas las
aves vacunadas mostraron patología reducida (que variaba del 10% al
60%) en comparación con aves de control no vacunadas. Antes del uso
en la exploración de la biblioteca de expresión, los antisueros se
adsorbieron con lisado de células de Escherichia coli XL1
Blue como se describe en Maniatis/Sambrook (Sambrook, J. et
al. Molecular cloning: a laboratory manual. ISBN
0-87969-309-6) para
reducir una señal de fondo específica.
La biblioteca de expresión se exploró por
transferencia de placas usando una exploración inicial de
aproximadamente 20.000 placas. El procedimiento se realizó como se
describe en el manual de los fabricantes (Clontech, Palo Alto, CA,
EEUU). Todas las exploraciones de bibliotecas se realizaron en
condiciones nativas. En resumen, las células de Escherichia
coli XL1 Blue infectadas por fagos se sembraron en agar superior
LB en placas de agar LB ambas complementadas con MgSO_{4}10 mM.
Después, las placas se incubaron a 42ºC durante 4 horas. Un disco
de filtro de nitrocelulosa (Schleicher y Schuell, Dassel, Alemania),
embebido previamente en IPTG 10 mM, se puso en cada placa para
inducir la expresión de las proteínas codificadas por los insertos
clonados de Ornithobacterium rhinotracheale. Después de 4
horas de incubación a 37ºC todos los filtros se eliminaron de las
placas. Después del lavado y el bloqueo, los filtros se incubaron
con antisuero de pollo (combinado de 10 animales, dilución 1:250).
El antisuero usado en la primera exploración se obtuvo de pollos
vacunados con vacuna viva con el serotipo G de Ornithobacterium
rhinotracheale seguido de una exposición al serotipo A de
Ornithobacterium rhinotracheale. Como anticuerpo secundario
se usó IgG de conejo anti-pollo con peroxidasa
(Nordic, Tilburg, Países Bajos) a dilución 1:1000. Como sustrato se
usó la solución Vector SG (Vector, Burlingame, CA, EEUU). De la
exploración inicial de 20.000 placas, 200 placas reactivas se
localizaron en las placas de agar y se aislaron. Se repitió una
transferencia de placa y exploración como se ha descrito
anteriormente dos veces dando como resultado 175 placas reactivas
individuales, puras. Después, los clones puros se aplicaron de
forma puntual in duplo sobre una césped de agar superior de
E. coli XL1 Blue para dar placas confluentes de
aproximadamente 5 mm de diámetro. De nuevo se realizó una
transferencia de placas y los filtros se incubaron con los
antisueros obtenidos de aves vacunadas con vacuna viva con el
serotipo B o serotipo M de Ornithobacterium rhinotracheale
antes de la exposición a serotipo A de Ornithobacterium
rhinotracheale. De las 175 placas reactivas, se seleccionaron
30 placas porque presentaban reactividad cruzada con sueros de aves
vacunadas con vacuna viva con el serotipo B, serotipo G o serotipo
M de Ornithobacterium rhinotracheale y expuestas al serotipo
A de Ornithobacterium rhinotracheale.
\vskip1.000000\baselineskip
Los insertos de ADN de las 30 placas
seleccionadas se analizaron para identificar las fases de lectura
abierta que codifican las proteínas antigénicas. Se usaron
cebadores oligonucleotídicos diseñados para los brazos del vector
\lambda TriplEx tanto para la amplificación por PCR como la
secuenciación. Se realizó PCR en un volumen de reacción final de 50
\mul que contenía dNTP 50 \muM (Promega, Wl, EEUU), 10 pmol de
ambos cebadores, 20 U/ml de polimerasa Supertaq plus y 10X de
tampón Supertaq (ambos de HT Biotechnology Ltd, Cambridge, RU) en
agua. Se añadió ADN de fago seleccionando una placa recién sembrada
usando un palillo y transfiriendo este ADN desde el palillo a la
mezcla de reacción. Se usaron las siguientes condiciones:
desnaturalización a 94ºC durante 3 min, seguido de 30 ciclos de
desnaturalización a 94ºC durante 1 min, hibridación a 50ºC durante
2 min y elongación a 68ºC durante 2 min 30 s, seguido de una
extensión final a 68ºC durante 10 min. Para determinar la secuencia
de nucleótidos de los insertos de ADN amplificado, se realizó una
reacción de secuencia (94ºC 10 s; 50ºC 5 s; 60ºC 2 min durante 25
ciclos) usando la mezcla de reacción Big dye Terminator Ready
(Qiagen Inc., CA, EEUU), 50 ng de ADN de molde (producto de PCR) y
2,4 pmol de cebador en un volumen de reacción de 20 \mul.
Después del análisis de secuencia, los 30 clones
parecieron representar 8 genes diferentes. Ya que la mayoría de las
fases de lectura abierta eran una fusión con el gen de lacZ del
vector \lambdaTriplEx, el extremo 5' del gen estaba ausente. Por
este motivo se realizó una reacción de secuencia usando cebadores
internos y ADN cromosómico del serotipo G de Ornithobacterium
rhinotracheale como un molde para secuenciar el hueco 5'
ausente.
Se diseñaron cebadores oligonucleotídicos para
amplificar las fases de lectura abierta de longitud completa que
codifican los 8 antígenos con reactividad cruzada (Or01, Or02, Or03,
Or04, Or11, Or77, Or98A y Or98B) de ADN genómico de serotipo G de
Ornithobacterium rhinotracheale cepa 0-95029
Nº 16279 (véase la Tabla 1). Los cebadores oligonucleotídicos 5'
contienen un sitio de restricción (subrayado) que precede al codón
de inicio ATG (negrita) seguido de secuencias obtenidas del gen de
interés (cursiva). Los oligonucleótidos 3' contienen secuencias
codificantes (cursiva) seguido de un sitio de restricción
(subrayado). Los productos de PCR se clonaron en el vector de
expresión de interés. Los productos de ligación se transformaron
hasta células hospedadoras E. coli BL21 (DE3) codón RIL
pLysS (Novagen, Madison, Wl, EEUU) para la expresión de proteína.
Mediante el uso del vector plasmídico pET (pET22b) y un sistema de
expresión de ARN polimerasa de T7 (Novagen, Madison, Wl, EEUU), las
proteínas recombinantes se expresaron en E. coli, con un
péptido líder de E. coli pelB fusionado en la porción amino
terminal (los péptidos líder de Ornithobacterium
rhinotracheale de proteínas Or02, Or03, Or11 y Or77 se
sustituyeron) y 6 restos de histidina en la porción en carboxi
terminal de la proteína. Se usó la cepa de E. coli BL21
(DE3) codón RIL pLysS (Novagen, Madison, Wl, EEUU) para un alto
nivel de expresión durante la inducción con IPTG como se describe en
el manual del sistema pET (Novagen, Madison, Wl, EEUU).
\vskip1.000000\baselineskip
Se aislaron antígenos recombinantes expresados
en E. coli del sobrenadante (Or77), se purificaron por
cromatografía de afinidad de metales usando resina talon (Clontech
Inc., Palo Alto, CA, EEUU) como se describe por el fabricante (Or03,
Or04, Or98A y Or98B), o mediante ciclos repetidos de congelación -
descongelación, sonificación y centrifugación (Or01, Or02 y Or11).
Se usó electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE) seguido de
tinción con azul brillante de Coomassie para evaluar la pureza de
las proteínas recombinantes. Se estimaron las concentraciones de
proteína usando albúmina sérica bovina como el patrón.
Todas las proteínas recombinantes purificadas
(Or01, Or02, Or03, Or04, Or11, Or77, Or98A y Or98B) se formularon
individualmente en una emulsión de agua en aceite. Además, se
formularon cinco vacunas de subunidades diferentes (A, B, C, D y E)
que contenían diferentes composiciones de los 8 antígenos
recombinantes (tabla 2). La tinción con Coomassie de las 5 vacunas
de combinación mostró bandas de proteína claramente identificables
que se corresponden a proteínas recombinantes Or01, Or02 y Or77. Ya
que los pesos moleculares de Or03, Or04 y Or11 y los pesos
moleculares de Or98A y Or98B son aproximadamente iguales, no se
pudieron distinguir bandas de proteínas individuales (figura 1).
Todas las proteínas están presentes en concentraciones
aproximadamente iguales de 50 mg/antígeno/l (25 \mug/dosis). Por
lo tanto, la carga antigénica total de la vacuna A a D es 200 mg/l.
La concentración de antígeno de la vacuna E es 400 mg/l. El fondo
de proteína es material restante de la cepa de E. coli usada
para expresar los antígenos recombinantes de Ornithobacterium
rhinotracheale.
Se estudió la capacidad de las diferentes
vacunas de subunidades de estimular la respuesta inmune humoral
para producir anticuerpos específicos de proteína mediante inyección
subcutánea de 0,5 ml de vacuna a pollos de engorde SPF de 2 semanas
de edad. Cuatro semanas después de la vacunación se recogieron
muestras séricas y se ensayaron para la presencia de anticuerpos
reactivos contra las proteínas recombinantes. Se realizó
transferencia de Western semiseca de acuerdo con Towbin, H.,
Staehlin, T. y Gordon, J. (1979) Proc. Nat. Acad. Sci. 76:
43-50. La fase de proteína de las vacunas se
transfirió e incubó con suero combinado (dilución 1:100) de aves
vacunadas y no vacunadas. Los sueros obtenidos de aves vacunadas con
cada una de las 8 vacunas individuales Or01 a Or98B mostraron
reactividad específica de proteína (figura 2). La Figura 3 muestra
la reactividad de antisueros obtenidos de aves vacunadas con la
vacuna de subunidades A a E (véase la tabla 2 y la figura 1),
dirigidos contra las mismas vacunas en transferencia de Western. Por
ejemplo: se carga la transferencia A con las vacunas A, B, C, D y E
(correspondiendo a los carriles A a E). El suero usado para la unión
de anticuerpo primario se obtiene de aves vacunadas con la vacuna A
(se corresponde al número de transferencia). Por este motivo, en
este suero están presentes anticuerpos
\alpha-Or01, \alpha-Or02,
\alpha-Or03 y \alpha-Or04. En
la transferencia A, estas cuatro proteínas se tiñen en el carril A,
D y E, que son los carriles que se cargaron con las tres vacunas
que contienen estos antígenos (A, D y E). La transferencia B se
carga como la transferencia A y el suero usado se obtiene de aves
vacunas con la vacuna B. Los anticuerpos
\alpha-Or77, \alpha-Or11,
\alpha-Or03 y \alpha-Or04 tiñen
los antígenos correspondientes en la transferencia B en los
carriles B, C y E. Los demás antígenos que no estaban presentes en
la vacuna B no se pudieron detectar en esta transferencia. En la
transferencia E, todas las proteínas se tiñen debido a que la vacuna
E contiene los ocho antígenos de Ornithobacterium
rhinotracheale. El suero usado en la transferencia de Western F
se obtiene de aves no vacunadas que sirvieron como un control
negativo. No se pudieron detectar antígenos recombinantes de
Ornithobacterium rhinotracheale usando este suero.
\vskip1.000000\baselineskip
Para evaluar la capacidad protectora cruzada de
la respuesta de anticuerpos inducida por diferentes vacunas de
subunidades (vacunas combinadas A, B, C, D, E y la vacuna individual
Or77), se realiza un experimento animal. Se vacunaron pollos de
engorde SPF a las 2 semanas de edad como se ha descrito
anteriormente. A las 5 semanas de edad, las aves se sensibilizaron
con ND LaSota (dosis: 1*10^{6} E.I.D. por ave) por pulverización
con aerosol. A las 6 semanas de edad las aves se expusieron a la
cepa B3263/91 de serotipo A de Ornithobacterium
rhinotracheale (exposición heteróloga). La exposición se realizó
por pulverización con aerosol de un cultivo bacteriano fresco que
contenía 8,5*10^{8} unidades formadoras de colonias (UFC) por ml
de THB. Durante la exposición por aerosol, el cultivo bacteriano se
administró como una pulverización fina a las aves en un aislador de
aproximadamente 1,5 m^{3}, usando un pulverizador de pintura
comercial. La neblina desarrollada en los aisladores se mantuvo
durante al menos 10 min con la circulación de aire cerrada. Los
grupos de control de exposición y grupos de sensibilización con el
ND se incluyeron en el ensayo. Una semana después de la exposición,
a las 7 semanas de edad, las aves se sacrificaron y las lesiones
orgánicas se puntuaron macroscópicamente usando un sistema de
puntuación de Ornithobacterium rhinotracheale para enfermedad
respiratoria del siguiente modo: para sacos aéreos torácicos, 0 =
ninguna anormalidad, 1 = un saco aéreo afectado gravemente por
aerosaculitis fibrinosa o focos limitados de tamaño de cabeza de
alfiler o exudados fibrinosos en ambos sacos aéreos, 2 = ambos
sacos aéreos afectados gravemente por aerosaculitis fibrinosa; para
sacos aéreos abdominales, 0 = ninguna anormalidad, 1 = focos de
tamaño de cabeza de alfiler o exudados fibrinosos o aerosaculitis
fibrinosa ligeramente difusa, 2 = aerosaculitis fibrinosa grave. La
puntuación de aerosaculitis se proporciona como la suma de ambas
puntuaciones. Para pulmones, 0 = ninguna anormalidad, 1 = neumonía
unilateral, 2 = neumonía bilateral. Las puntuaciones de grupo
promedio se dan como un porcentaje de la máxima puntuación posible.
Se realizó análisis estadístico usando ANOVA de una vía no
paramétrico de Kruskal-Wallis.
La Figura 4 muestra la capacidad de protección
cruzada de las 5 vacunas de subunidades diferentes A a E. El grupo
de control de exposición no se vacunó pero se sensibilizó y expuso y
mostró la mayor puntuación. Las aves vacunadas con la vacuna E (que
contenía los 8 antígenos) mostró una protección prácticamente
completa comparable a los resultados del grupo que no recibió
vacunación y exposición pero que se sensibilizó con el virus de la
Enfermedad de Newcastle. Se pudo observar una protección cruzada
ligeramente menor, pero todavía significativa (P < 0,05) en aves
vacunadas con la vacuna A, B y C. La vacuna de combinación D mostró
protección cruzada de menor significación (p = 0,19). Las aves no
tratadas no mostraron lesiones orgánicas. Como se puede observar en
la figura 5, los animales vacunados con Or77 (= cepa de serotipo G)
y expuestos a serotipo A también mostraron una reducción
significativa (p < 0,05)) en puntuaciones de lesión respiratoria
en comparación con el grupo de control no vacunado.
Figura 1: Tinción de Coomassie en las 5 vacunas
de combinación (A a E). Cada vacuna contenía una composición
diferente de las 8 proteínas recombinantes purificadas. La vacuna de
subunidades A se corresponde al carril A, la vacuna de subunidades B
se corresponde a carril B, la vacuna de subunidades C se corresponde
al carril C, la vacuna de subunidades D se corresponde al carril D,
la vacuna de subunidades E se corresponde al carril E. Las proteínas
recombinantes con pesos moleculares aproximadamente iguales se
indican por una flecha sencilla.
Figura 2: Reactividad de antisueros
monovalentes, obtenidos de pollos vacunados con la vacuna de
subunidades recombinante sencilla, contra la misma proteína en
transferencia de Western. Las proteínas de vacuna reactivas se
indican por flechas negras.
Figura 3: Reactividad de antisueros, obtenidos
de pollos vacunados con las vacunas de subunidades A a E en
transferencia de Western. Cada transferencia contiene las proteínas
de las vacuna A, B, C, D y E (correspondientes a los carriles A a
E). El suero usado para la exploración se obtiene de aves vacunas
con la vacuna A (transferencia A), vacuna B (transferencia B),
vacuna C (transferencia C), vacuna D (transferencia D) o vacuna E
(transferencia E). El suero usado en la transferencia de Western F
se obtiene de aves no vacunadas. Las proteínas de vacuna reactivas
se indican por una línea negra.
Figura 4: Capacidad protectora cruzada de
vacunas de subunidades A a E, en comparación con grupos de
exposición y de control con NDV, representada como la máxima
puntuación posible de lesión orgánica respiratoria.
Figura 5: Capacidad protectora cruzada de la
vacuna de subunidades Or77, en comparación con los grupos de
exposición y de control con NDV, representada como la máxima
puntuación posible de lesión orgánica respiratoria.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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<110> AKZO Nobel N.V.
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<120> Vacunas de subunidades de
Ornithobacterium rhinotracheale
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\vskip0.400000\baselineskip
<130> 2004.011
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
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<211> 1614
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1614)
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<400> 1
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 537
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1572
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1572)
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<400> 3
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 523
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\newpage
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<400> 4
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 5
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<211> 1242
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\newpage
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<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1242)
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<400> 5
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
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<211> 413
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
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\newpage
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<210> 7
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<211> 1023
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1023)
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<400> 7
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<210> 8
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<211> 340
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1230
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1230)
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<400> 9
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<210> 10
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<211> 409
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
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<210> 11
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<211> 1140
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(1140)
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<400> 11
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<210> 12
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<211> 379
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<212> PRT
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
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\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
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<211> 918
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<212> ADN
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<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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<220>
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<221> CDS
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<222> (1)..(918)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 305
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 888
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222>(1)..(888)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 295
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Ornithobacterium
rhinotracheale
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (52)
1. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 59,8 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 1.
2. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 1, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 1.
3. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 58,2 kD Ornithobacterium rhinotracheale o una
parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o dicha parte del
mismo una homología de al menos el 80% con el ácido nucleico del gen
de proteína de Ornithobacterium rhinotracheale como se
ilustra en la SEC ID Nº: 3.
4. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 3, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 3.
5. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 46,0 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 5.
6. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 5, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 5.
7. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 37,2 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 7.
8. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 7, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 7.
9. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 45,6 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 9.
10. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 9, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 9.
11. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 42,2 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 11.
12. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 11, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 11.
13. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 34,0 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 13.
\newpage
14. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 13, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 13.
15. Ácido nucleico que codifica una proteína
inmunogénica de 32,9 kD de Ornithobacterium rhinotracheale o
una parte de dicho ácido nucleico que codifica un fragmento
inmunogénico de dicha proteína, teniendo dicho ácido nucleico o
dicha parte del mismo una homología de al menos el 80% con el ácido
nucleico del gen de proteína de Ornithobacterium
rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID Nº: 15.
16. Ácido nucleico o parte del mismo de acuerdo
con la reivindicación 15, caracterizado por que la secuencia
tiene una homología de al menos el 85%, preferiblemente del 90%, más
preferiblemente del 95% con el ácido nucleico del gen de proteína de
Ornithobacterium rhinotracheale como se ilustra en la SEC ID
Nº: 15.
17. Fragmento de ADN que comprende un ácido
nucleico de acuerdo con la reivindicación 1-16.
18. Molécula de ADN recombinante que comprende
un ácido nucleico de acuerdo con las reivindicaciones
1-16 o un fragmento de ADN de acuerdo con la
reivindicación 17, bajo el control de un promotor unido
funcionalmente.
19. Vehículo recombinante vivo que comprende un
ácido nucleico de acuerdo con las reivindicaciones
1-16, un fragmento de ADN de acuerdo con la
reivindicación 17 o una molécula de ADN recombinante de acuerdo con
la reivindicación 18.
20. Célula hospedadora que comprende un ácido
nucleico de acuerdo con las reivindicaciones 1-16,
un fragmento de ADN de acuerdo con la reivindicación 17, una
molécula de ADN recombinante de acuerdo con la reivindicación 18 o
un vehículo recombinante vivo de acuerdo con la reivindicación
19.
21. Una proteína inmunogénica de 59,8 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
2.
22. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 21, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 2.
23. Una proteína inmunogénica de 59,8 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2.
24. Una proteína inmunogénica de 58,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
4.
25. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 24, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 4.
26. Una proteína inmunogénica de 58,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 3 ó 4.
27. Una proteína inmunogénica de 46,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
6.
28. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 27, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 6.
29. Una proteína inmunogénica de 46,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 5 ó 6.
30. Una proteína inmunogénica de 37,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
8.
\newpage
31. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 30, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 8.
32. Una proteína inmunogénica de 37,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 7 u 8.
33. Una proteína inmunogénica de 45,6 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
10.
34. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 33, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 10.
35. Una proteína inmunogénica de 45,6 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 9 ó 10.
36. Una proteína inmunogénica de 42,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
12.
37. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 36, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 12.
38. Una proteína inmunogénica de 42,2 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 11 ó 12.
39. Una proteína inmunogénica de 34,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID Nº:
14.
40. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 39, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 14.
41. Una proteína inmunogénica de 34,0 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 13 ó 14.
42. Una proteína inmunogénica de 32,9 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, teniendo dicha proteína o fragmento inmunogénico
de la misma una homología de secuencia de aminoácidos de al menos el
80% con la secuencia de aminoácidos como se ilustra en la SEC ID
Nº:16.
43. Una proteína inmunogénica de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína, de acuerdo con la reivindicación 42, teniendo
dicha proteína o fragmento inmunogénico de la misma una homología de
secuencia de aminoácidos de al menos el 85%, preferiblemente del
90%, más preferiblemente del 95% con la secuencia de aminoácidos
como se ilustra en la SEC ID Nº: 16.
44. Una proteína inmunogénica de 32,9 kD de
Ornithobacterium rhinotracheale o un fragmento inmunogénico
de la misma, caracterizada por que está codificada por un
ácido nucleico de acuerdo con la reivindicación 15 ó 16.
45. Un ácido nucleico de acuerdo con las
reivindicaciones 1-16, un fragmento de ADN de
acuerdo con la reivindicación 17, una molécula de ADN recombinante
de acuerdo con la reivindicación 18, un vehículo recombinante vivo
de acuerdo con la reivindicación 19, una célula hospedadora de
acuerdo con la reivindicación 20 o una proteína de acuerdo con las
reivindicaciones 21-44 o un fragmento inmunogénico
de la misma, para el uso en una vacuna.
46. Uso de un ácido nucleico de acuerdo con la
reivindicaciones 1-16, un fragmento de ADN de
acuerdo con la reivindicación 17, una molécula de ADN recombinante
de acuerdo con la reivindicación 18, un vehículo recombinante vivo
de acuerdo con la reivindicación 19, una célula hospedadora de
acuerdo con la reivindicación 20 o una proteína de acuerdo con las
reivindicaciones 21-44 o un fragmento inmunogénico
de la misma para la fabricación de una vacuna para combatir
infección por Ornithobacterium rhinotracheale.
\newpage
47. Vacuna para combatir infección por
Ornithobacterium rhinotracheale, caracterizada por que
comprende un ácido nucleico de acuerdo con las reivindicaciones
1-16, un fragmento de ADN de acuerdo con la
reivindicación 17, una molécula de ADN recombinante de acuerdo con
la reivindicación 18, un vehículo recombinante vivo de acuerdo con
la reivindicación 19, una célula hospedadora de acuerdo con la
reivindicación 20 o una proteína de acuerdo con las reivindicaciones
21-44 o un fragmento inmunogénico de la misma y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
48. Vacuna para combatir infección por
Ornithobacterium rhinotracheale, caracterizada por que
comprende anticuerpos contra una proteína de acuerdo con las
reivindicaciones 21-44 o un fragmento inmunogénico
de dicha proteína y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
49. Vacuna de acuerdo con la reivindicación 47,
caracterizada por que comprende un adyuvante.
50. Vacuna de acuerdo con la reivindicación
47-49, caracterizada por que comprende un
antígeno adicional obtenido de un virus o microorganismo patógeno
para aves de corral, un anticuerpo contra tal antígeno o información
genética que codifica dicho antígeno.
51. Vacuna de acuerdo con la reivindicación 50,
caracterizada por que dicho virus o microorganismo patógeno
para pollos se selecciona entre el grupo que consiste en virus de
peste aviar, virus de Bronquitis Infecciosa, Enfermedad de Bursa
Infecciosa (Gumboro), Virus de la Enfermedad de Marek, agente de
Anemia del pollo, Reovirus Aviar, Mycoplasma gallisepticum,
Virus de la Rinotraqueitis del Pavo, Haemophilus
paragallinarum (Coriza), Poxvirus de Pollo, virus de la
encefalomielitis aviar, virus de la Peste del Pato, virus de la
Enfermedad de Newcastle, virus del síndrome de Caída de Huevo, virus
de Laringotraqueitis Infecciosa, Virus Herpes de Pavos, especies de
Eimeria, Ornithobacterium rhinotracheale, Pasteurella multocida,
Mycoplasma synoviae, especies de Salmonella y E.
coli.
52. Método para la preparación de una vacuna de
acuerdo con las reivindicaciones 47-51,
comprendiendo dicho método la mezcla de un ácido nucleico de acuerdo
con las reivindicaciones 1-16, un fragmento de ADN
de acuerdo con la reivindicación 17, una molécula de ADN
recombinante de acuerdo con la reivindicación 18, un vehículo
recombinante vivo de acuerdo con la reivindicación 19, una célula
hospedadora de acuerdo con la reivindicación 20, una proteína de
acuerdo con las reivindicaciones 21-44 o un
fragmento inmunogénico de la misma o anticuerpos contra una proteína
de acuerdo con las reivindicaciones 21-44 y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
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