ES2335849B1 - Derivados de cromano y sus usos como inhibidores de la actividad de las proteinas desacoplantes. - Google Patents
Derivados de cromano y sus usos como inhibidores de la actividad de las proteinas desacoplantes. Download PDFInfo
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Abstract
Derivados de cromano y sus usos como inhibidores
de la actividad de las proteínas desacoplantes.
Compuestos derivados del cromano, que presentan
la fórmula general (I), donde R^{1} y R^{2}, son iguales o
diferentes entre sí, y están representados por un átomo de hidrógeno
(H) o un grupo alquilo (C_{1}-C_{8}); R^{3}
está representado por un átomo de H, un halógeno, un grupo arilo o
un grupo -COOR^{5}; donde R^{5} es alquilo
(C_{1}-C_{4}) o un alquilarilo; y R^{4} está
representado por un átomo de hidrógeno (H), un grupo alquilarilo o
un grupo alquilo (C_{1}-C_{8}), lineal o
ramificado. Así como sus diferentes usos, más concretamente en la
identificación de compuestos terapéuticos, como compuestos
reguladores de las proteínas desacoplantes o su uso terapéutico para
el tratamiento de diferentes enfermedades y dolencias que cursen con
un aumento en la actividad de dichas proteínas.
Description
Derivados de cromano y sus usos como inhibidores
de la actividad de las proteínas desacoplantes.
La presente invención se refiere a una serie de
compuestos derivados del cromano, así como sus diferentes usos, más
concretamente en la identificación de compuestos terapéuticos, como
compuestos reguladores de las proteínas desacoplantes o su uso
terapéutico para el tratamiento de diferentes enfermedades y
dolencias que cursen con un aumento en la actividad de dichas
proteínas como son el cáncer, la caquexia, la diabetes no
dependiente de insulina, las infecciones o la fiebre.
\vskip1.000000\baselineskip
Las "especies reactivas de oxígeno" (ROS)
son moléculas muy reactivas debido a que tienen un electrón no
pareado (radical libre) como el ión superóxido o el radical
hidroxilo. Se incluyen en esta denominación las moléculas
precursoras de los radicales libres, como por ejemplo el
H_{2}O_{2}. Las ROS son un subproducto más del metabolismo
oxidativo, siendo la acción de la NADPH oxidasa, la xantina oxidasa,
el citocromo P450 y la cadena transportadora de electrones de la
mitocondria las fuentes de ROS más significativas. Las ROS
participan en procesos fisiológicos, actuando en muchos casos como
señales intracelulares [D'Autréaux B, Toledano MB (2007) ROS as
signalling molecules: mechanisms that generate specificity in ROS
homeostasis. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8:813-24]. En
situaciones fisiológicas normales hay un equilibrio entre la
producción de ROS y su inactivación mediante los mecanismos
celulares de defensa frente al estrés oxidativo, en los que
intervienen moléculas antioxidantes de bajo peso molecular (tales
como glutation y vitamina E) y enzimas como la catalasa, superóxido
dismutasa y la glutation peroxidasa, que inactivan las ROS. Además,
un aumento de la actividad de la cadena respiratoria también mitiga
la producción mitocondrial de ROS. Cuando se rompe este equilibrio
se produce el estrés oxidativo. Este genera una serie de cambios
fisiológicos y bioquímicos que son la base de muchos procesos
patológicos y que pueden originar incluso la muerte celular. El daño
celular ocurre a varios niveles, siendo los más importantes la
alteración del ADN mitocondrial, la peroxidación lipídica y la
modificación covalente de proteínas.
El uso de agentes que provocan un aumento en la
producción de ROS es una estrategia que se ha explotado de modo
satisfactorio en la terapia contra el cáncer. Este objetivo se puede
conseguir mediante dos aproximaciones: (i) induciendo directamente
la generación de ROS en la célula tumoral o (ii) inhibiendo los
sistemas de defensa. Entre los agentes químicos utilizados para esta
estrategia están la procarbazina, vinblastina, doxorubicina,
motexafina, camptotecina, neocarzinostatina, y el cisplatino
[Renschler MF (2004) The emerging role of reactive oxygen species in
cancer therapy. Eur. J. Cancer 40:1934-1940; y Ozben
T (2007) Oxidative stress and apoptosis: impact on cancer therapy.
J. Pharm. Sci. 96:2181-2196].
La respiración celular es un proceso
mitocondrial de oxidación de azúcares y grasas. La transferencia de
electrones desde las moléculas que se están oxidando hasta el
oxígeno tiene lugar en la membrana mitocondrial interna y se acopla
a un bombeo de protones de dentro hacia afuera de la mitocondria,
con lo que se forma un gradiente de protones. La energía almacenada
en este gradiente es usada para la síntesis del ATP mediante la
fosforilación oxidativa de su precursor. El ATP es la molécula
universal que permite almacenar la energía y distribuirla luego a la
fabricación de componentes celulares, el transporte de moléculas, la
transmisión de señales, etc. Los dos procesos (respiración y
síntesis de ATP) se encuentran acoplados, de modo que la velocidad
de oxidación de sustratos (respiración) se ajusta a la demanda
celular de ATP, evitando así que se malgasten las reservas
energéticas.
Las proteínas desacoplantes (uncoupling
proteins, UCP) son transportadores que pertenecen a la
superfamilia formada por los transportadores mitocondriales de
metabolitos, proteínas relacionadas evolutivamente y que presentan
semejanzas estructurales y funcionales. La función de las UCP es
disminuir la eficiencia de la fosforilación oxidativa, mediante una
disipación controlada del gradiente de protones [Krauss S, Zhang CY
& Lowell BB (2005) The mitochondrial uncoupling protein
homologues. Nature Rev. Mol. Cell Biol. 6:248-261].
En mamíferos se han descrito cinco UCP, con una distribución
anatómica específica para cada una de ellas.
La proteína desacoplante UCP1, exclusiva del
tejido adiposo marrón de mamíferos, es la mejor conocida jugando un
importante papel por ejemplo en el mantenimiento de la temperatura
corporal en recién nacidos. Cuando la UCP1 es activada por ácidos
grasos provoca que los protones vuelvan al interior de la
mitocondria sin que haya síntesis de ATP. Se acelera, por tanto, la
respiración, pero la energía del gradiente de protones se disipa en
forma de calor [Nicholls DG, & Locke RM (1984) Thermogenic
mechanisms in brown fat. Physiol. Rev. 64: 1-64], La
actividad transportadora es inhibida por los nucleótidos de purina
que se unen en el interior de la proteína, a la que acceden desde la
cara expuesta al espacio intermembranar. El sitio de unión de esos
nucleótidos aún no se conoce con detalle, pero los datos disponibles
sugieren que el anillo de purina interacciona con los loops
(lazos) que cierran por el lado matricial el barril formado por las
regiones transmembrana de la proteína [Ledesma A et al.
(2002) Modeling the transmembrane arrangement of the uncoupling
protein UCP1 and topological considerations of the
nucleotide-binding site. J Bioenerg Biomembr.
34:473-86].
La UCP2 se encuentra en numerosos tejidos y
órganos y su función no está totalmente esclarecida. Sin embargo,
hay numerosas evidencias de su papel en el control de la producción
de ROS, constituyendo un mecanismo de defensa frente al estrés
oxidativo basado en que la inducción del desacoplamiento entre
respiración y síntesis de ATP origina una aceleración de la
respiración y esto provoca una reducción de la producción de ROS.
[Krauss S, Zhang CY & Lowell BB (2005) The mitochondrial
uncoupling protein homologues. Nature Rev. Mol. Cell Biol.
6:248-261]. El primer fenotipo que se describió en
el ratón knock-out para la UCP2 fue unos
mayores niveles de ROS en los macrófagos, lo cual confirió a estos
ratones una mayor resistencia a la infección por toxoplasma
[Arsenijevic D, et al. (2000) Disruption of the uncoupling
protein-2 gene in mice reveáis a role in immunity
and reactive oxygen species production. Nat. Genet.
26:435-439]. En consonancia con este posible papel
protector frente al daño por estrés oxidativo, se ha encontrado que
UCP2 está implicada en procesos patológicos en los que las ROS
juegan un papel importante para el desarrollo de la enfermedad
(aterosclerosis, cáncer e inflamación crónica) [Nübel T &
Ricquier D (2006) Respiration under control of uncoupling proteins:
clinical perspective. Hormone Res. 65:300-
310].
310].
El papel protector de UCP2 frente al daño por
estrés oxidativo es relevante para el tratamiento del cáncer, ya que
en muchos casos la aparición de células tumorales resistentes a la
quimioterapia está asociada con su capacidad de defensa frente al
estrés oxidativo [Benhar M, Engelberg D & Levitzki A (2002) ROS,
stress-activated kinases and stress signalling in
cancer. EMBO Rep. 3:420-425 y Derdak Z et al.
(2008) The mitochondrial uncoupling protein-2
promotes chemoresistance in cancer cells. Cancer Res.
68:2813-2819], Existen datos que demuestran una
mayor síntesis de UCP2, acompañada de una mayor protección frente al
estrés oxidativo, en sublíneas de células tumorales resistentes a
quimioterapia [Harper ME, et al. (2002) Characterization of a
novel metabolic strategy used by drug-resistant
tumor cells. FASEB J. 16:1550-1557], Asimismo, se ha
encontrado aumento de la expresión de UCP2 en cáncer de colon
[Horimoto M, et al. (2004) Expression of uncoupling
protein-2 in human colon cáncer. Clin. Cancer Res.
10:6203-6207] y que esta mayor síntesis está
asociada a una respuesta al estrés oxidativo [Derdák Z, et
al. (2006) Enhanced colon tumor induction in uncoupling
protein-2 deficient mice is associated with
NF-kB activation and oxidative stress.
Carcinogenesis 27:956-961], Además, se ha demostrado
que un aumento de la expresión de la UCP2 en la línea celular de
hematoma HepG2 disminuye el daño por estrés oxidativo y hace las
células más resistentes a la apoptosis [Jones CP, et al.
(2005) Increased expression of uncoupling protein 2 in HepG2 cells
attenuates oxidative damage and apoptosis. Liver Int.
25:880-887].
Por otra parte, el cáncer es una causa de la
caquexia, un proceso multifactorial que provoca un incremento del
gasto energético, anorexia, pérdida de las reservas de grasa y
degradación proteica, y conlleva una severa pérdida de peso que es,
en muchos casos, la causa de la muerte del enfermo de cáncer. La
zinc-a2-glicoproteína (ZAG),
segregada por los tumores caquécticos, promueve la oxidación de las
reservas de lípidos y provoca un aumento en los niveles de UCP2 en
el músculo esquelético, tejido adiposo e hígado así como en los de
UCP3 en músculo [Bing C et al. (2002) Expression of
uncoupling proteins-1 -2 and -3 mRNA is induced by
adenocarcinoma-derived
lipid-mobilizing factor. Br. J. Cancer 86:
612-618; y Sanders PM & Tisdale MJ (2004) Effect
of zinc-a2-glycoprotein (ZAG) on
expression of uncoupling proteins in skeletal muscle and adipose
tissue. Cancer Lett. 212: 71-81]. Las UCP podrían
estar jugando un doble papel en este proceso: actuar como vías
disipadoras de energía y como mecanismo de protección frente al
estrés oxidativo que se origina por la alta oxidación lipídica.
Las UCP pueden por tanto ser dianas
farmacológicas para el tratamiento del cáncer y para mitigar los
efectos de la caquexia tumoral. El desarrollo de inhibidores de su
actividad desacoplante serviría para potenciar el efecto antitumoral
de todos aquellos agentes que actúan aumentando el estrés oxidativo
y también contrarrestaría el efecto del aumento en los niveles de
UCP2 en los tumores caquécticos.
Además de los nucleótidos de purina, que son los
inhibidores naturales de las UCP, se ha descrito un compuesto
natural, la genipina, que actúa como inhibidor de la UCP2 en células
beta pancreáticas [Zhang CY, et al. (2006) Genipin inhibits
UCP2-mediated proton leak and acutely reverses
obesity- and high glucose-induced beta cell
dysfunction in isolated pancreatic islets. Cell Metabolism
3:417-427 y Zhang CY, et al. (2008) Genipin
derivatives and uses thereof. Publicación US2008/0009450 A9]. Este
compuesto se obtiene a partir de extractos cíe los frutos de la
planta Gardenia jasmonides Ellis, que han sido utilizados en
la medicina tradicional china para tratar una variedad de
patologías, incluida la diabetes tipo 2. La relación entre UCP2
(como modulador de la secreción de insulina) y la diabetes tipo 2
está bien establecida [Zhang CY, et al. (2001) Uncoupling
protein-2 negatively regulates insulin secretion and
is a major link between obesity, beta cell dysfunction, and type 2
diabetes. Cell 105:745-755]. Aunque la citotoxicidad
de la genipina es baja, puede causar estrés oxidativo e inducir
apoptosis [Kim BC, et al. (2005)
Genipin-induced apoptosis in hepatoma cells is
mediated by reactive oxygen species/c-Jun
NH2-terminal kinase-dependent
activation of mitochondrial pathway. Biochem Pharmacol.
70:1398-
407].
407].
\vskip1.000000\baselineskip
En la presente invención se describen una serie
de compuestos derivados del cromano. Dichos compuestos han sido
caracterizados como inhibidores de la actividad transportadora de la
UCP1 tras un primer cribado realizado en levaduras y validados
posteriormente como inhibidores de la UCP2 utilizando células
tumorales. Estos compuestos pueden ser utilizados para el
tratamiento de enfermedades y dolencias en las que hay un aumento en
los niveles y/o actividad de las UCPs como, por ejemplo, pero sin
limitarse a, el cáncer, la caquexia tumoral, la diabetes no
dependiente de insulina, las infecciones o la fiebre.
\newpage
Por tanto, un primer aspecto de la presente
invención se refiere a compuestos derivados del cromano, que
presentan la fórmula general (I), sus enantiómeros, y cualquiera de
sus sales aceptables farmacéuticamente (a partir de ahora compuestos
de la invención):
Donde:
R^{1} y R^{2}, son iguales o diferentes
entre sí, y están representados por un átomo de hidrógeno (H) o un
grupo alquilo (C_{1}-C_{8});
R^{3} está representado por un átomo de H, un
halógeno, un grupo arilo o un grupo -COOR^{5}; donde R^{5} es
alquilo (C_{1}-C_{4}) o un alquilarilo; y
R^{4} está representado por un átomo de
hidrógeno (H), un grupo alquilarilo o un grupo alquilo
(C_{1}-C_{8}), lineal o ramificado.
Una realización preferida de los compuestos de
la invención comprende derivados 2,2-alquilcromanos,
donde R^{1} es un grupo alquilo (C_{1}-C_{4}),
más preferiblemente un grupo metilo, y R^{2} es H.
Otra realización preferida de los compuestos de
la invención comprende derivados 4,4-alquilcromanos,
donde R^{1} es H y R^{2} es un grupo alquilo
(C_{1}-C_{4}), más preferiblemente R^{2} es un
grupo metilo.
El término "alquilo" se refiere en la
presente invención a cadenas alifáticas, lineales o ramificadas, que
tienen de 1 a 8 átomos de carbono, por ejemplo, metilo, etilo,
n-propilo, i-propilo,
n-butilo, tert-butilo,
sec-butilo, n-pentilo, etc.
Preferiblemente el grupo alquilo tiene entre 1 y 4 átomos de
carbono.
El término "arilo" se refiere en la
presente invención a una cadena carbocíclica aromática, que tiene de
6 a 12 átomos de carbono, pudiendo ser de anillo único ó múltiple,
en este último caso con anillos separados y/o condensados. Un
ejemplo, no limitante, de arilo es un grupo fenilo.
Por "arilalquilo" se entiende en la
presente invención a un grupo arilo unido al resto de la molécula
por un grupo alquilo. Un ejemplo, no limitante, de arilalquilo es un
grupo bencilo.
Por "halógeno" se entiende en la presente
invención a un átomo de bromo, cloro, yodo o flúor.
Otra realización preferida de la presente
invención comprende cualquiera de los compuestos de fórmula:
8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
6-bromo-8-etil-2,2-dimetilcromano;
6-bromo-2,2-dimetil-8-propil-cromano;
6-bromo-8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
6-bromo-8-terc-butil-2,2-dimetilcromano;
6-bromo-8-isopropil-4,4-dimetilcromano;
6-fenil-8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
8-isopropil-2,2-dimetilcroman-6-carboxilato
de etilo; ó
4,4-dimetilcroman-8-isopropil-6-carboxilato
de etilo.
Los compuestos de la invención, de fórmula
general (I), en los que R^{1} es alquilo
(C_{1}-C_{8}), R^{2} es H, y R^{3} es H ó
halógeno se obtienen por reacción de un alcohol alílico con un fenol
en presencia de una cantidad catalítica de ácido
p-toluensulfónico (Esquema 1).
Esquema
1
La síntesis de los compuestos de la invención,
de fórmula general (I), en los que R^{1} es H, R^{2} es alquilo
(C_{1}-C_{8}) y R^{3} es H o halógeno se puede
llevar a cabo en una secuencia de tres pasos (Esquema 2). El primer
paso es la reacción entre un bromuro alílico (a) y un fenol (b) en
presencia de una base, que produce un aril alil eter (c). La
transformación de (c) en (d) se realiza por tratamientos
consecutivos con acetato de mercurio, borohidruro sódico y
finalmente NaOH. En el tercer paso, (d) cicla en presencia de
tricloruro de aluminio, dando lugar a los derivados de cromano de
fórmula general (I) en los que R^{2} es alquilo
(C_{1}-C_{8}) y R^{3} es H o halógeno.
Esquema
2
Los compuestos de fórmula general (I) en los que
R^{3} es arilo se preparan por reacción de los bromo cromanos (e)
(siendo R^{3} = Br) con arilestannanos (f) y un catalizador de
paladio, en presencia de cristales de BHT
(2,6-di-terc-butil-4-metilfenol)
en tolueno (Esquema 3).
Esquema
3
Los compuestos de fórmula general (I) en los que
R^{3} = -COOR^{5} se preparan por reacción de los bromo cromanos
(e) (siendo R^{3} = Br) con terc-butillitio en
tetrahidrofurano a 78ºC [1)], seguido por adición del un electrófilo
adecuado, por ejemplo un cloroformiato [2)] (Esquema 4).
Esquema
4
Los compuestos de la invención pueden tener las
siguientes aplicaciones o usos:
- -
- reguladores de la actividad de las proteínas desacoplantes;
- -
- reguladores del consumo de oxígeno celular modulando la actividad respiratoria mitocondrial;
- -
- reguladores de la producción de ROS, a través de la modulación de la actividad de las proteínas desacoplantes;
- -
- tratamiento de patologías asociadas a un aumento de la actividad de las proteínas desacoplantes;
- -
- inhibidores de la actividad de las proteínas desacoplantes en el tratamiento de enfermedades como el cáncer;
- -
- inhibidores de la actividad de las proteínas desacoplantes en el tratamiento de enfermedades como la diabetes no dependiente de insulina;
- -
- inhibidores de la actividad de las proteínas desacoplantes en el tratamiento de enfermedades en las que se necesite aumentar la producción de radicales libres en los macrófagos para combatir las infecciones; o
- -
- inhibidores de la actividad de las proteínas desacoplantes en el tratamiento de enfermedades como la caquexia y dolencias como la fiebre.
Por tanto, otro aspecto de la presente invención
se refiere al uso de cualquiera de los compuestos de la invención
para la elaboración de una composición farmacéutica.
Preferiblemente, la composición farmacéutica es capaz de inhibir la
actividad desacopladora de las proteínas desacoplantes.
Un aspecto más de la presente invención se
refiere al uso de cualquiera de los compuestos de la invención para
la elaboración de una composición farmacéutica para el tratamiento
de enfermedades y/o dolencias en las que hay un aumento en los
niveles y/o actividad de las proteínas UCP, como por ejemplo, no
limitante, cualquiera del grupo que comprende el cáncer, la caquexia
tumoral, la diabetes no dependiente de insulina, las infecciones o
la fiebre.
Otro aspecto de la presente invención se refiere
a una composición farmacéutica que comprende al menos un compuesto
de la invención en cantidad terapéuticamente efectiva, o mezclas de
los mismos, una sal, profármaco, solvato o estereoisómero
farmacéuticamente aceptable del mismo junto con un portador,
adyuvante o vehículo farmacéuticamente aceptable, para la
administración a un paciente.
Los adyuvantes y vehículos farmacéuticamente
aceptables que pueden ser utilizados en dichas composiciones son los
adyuvantes y vehículos conocidos por los técnicos en la materia y
utilizados habitualmente en la elaboración de composiciones
terapéuticas.
En el sentido utilizado en esta descripción, la
expresión "cantidad terapéuticamente efectiva" se refiere a la
cantidad del agente o compuesto capaz de desarrollar la acción
terapéutica determinada por sus propiedades farmacológicas,
calculada para producir el efecto deseado y, en general, vendrá
determinada, entre otras causas, por las características propias de
los compuestos, la edad y estado del paciente, la severidad de la
alteración o trastorno, y de la ruta y frecuencia de
administración.
A lo largo de la descripción y las
reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no
pretenden excluir otras características técnicas, aditivos,
componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos,
ventajas y características de la invención se desprenderán en parte
de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los
siguientes ejemplos y figuras se proporcionan a modo de ilustración,
y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
Figura 1.- Comparación del efecto inhibidor del
nucleótido GDP (guanidin-difosfato) y del derivado
de cromano E379 en mitocondrias aisladas de Sacharomyces
cerevisiae transformada para que exprese la proteína
desacoplante UCP1. Fig. 1A.- Disminución de la fluorescencia del
NADH con el tiempo debido a su oxidación por las mitocondrias. Fig.
1B.- Consumo de NADH. En ambas figuras se representan los resultados
obtenidos en situación basal (control) en presencia del activador
palmitato (círculos), tras la adición del inhibidor GDP a una
concentración de 100 \muM (triángulos negros hacia abajo) y tras
la adición de compuesto E379 a una concentración de 20 \muM
(triángulos blancos hacia arriba).
Figura 2.- Efectos de distintos compuestos
derivados de cromano a distintas concentraciones (0, 2, 20 y 125
\muM) sobre la respiración de mitocondrias aisladas de S.
cerevisiae transformadas con un vector con el que no se expresa
ninguna proteína recombinante (círculo negro) y transformadas para
que expresen UCP1 (cuadrados).
Figura 3.- Actividad inhibidora de compuestos
derivados de cromano. Se representa la EC_{50} para la inhibición
de la actividad de la UCP1 determinada a partir de la velocidad de
oxidación de NADH en mitocondrias aisladas de S. cerevisiae
transformadas para que expresen UCP1 a la que se sustrajo el efecto
de los mismos compuestos observado en mitocondrias de S.
cerevisiae no transformadas. En todos los casos, las
concentraciones de inhibidor usadas para el cálculo de la EC_{50}
fueron 0, 2, 20, 125 y 250 \muM. Las barras cortadas representan
valores de EC_{50} mayores de 200 \muM.
Figura 4.- Efecto del compuesto E379 sobre la
supervivencia de las células de la línea celular de adenocarcinoma
de colon humano Caco-2, tratadas con trióxido de
arsénico. Fig. 4A.- Inmunodetección de la proteína desacoplante UCP2
en extractos mitocondriales obtenidos a partir de cultivos de la
línea celular Caco-2. Como control se muestra la
señal obtenida con mitocondrias extraídas de bazo. Fig. 4B.- Efecto
del compuesto E379 sobre la viabilidad de las células de la línea
Caco-2 tratadas durante 24 horas con distintas
concentraciones de trióxido de arsénico en ausencia (círculos) o en
presencia (cuadrados) del compuesto E379 a una concentración de 50
\muM.
La presente invención se describe adicionalmente
en conexión con los siguientes ejemplos no limitantes.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
El procedimiento general es la adición gota a
gota de
3-metil-2-buten-1-ol
a una disolución de un fenol y ácido p-toluensulfónico en
1,2-dicloroetano (3,5 mL/mmol) y posterior
calentamiento a 80ºC hasta la completa desaparición del sustrato de
partida. Posteriormente se hidroliza la mezcla con disolución
saturada de NaHCO_{3} (1,5 mL/mmol) y H_{2}O (2 mL/mmol) y se
separan las fases. Se extrae la fase acuosa con Et_{2}O, se secan
las fases orgánicas reunidas con MgSO_{4} anhidro, y se filtran y
concentran a presión reducida para dar lugar a un crudo de reacción
del que, tras purificación cromatográfica en gel de sílice, se
obtiene el 2,2-dimetilcromano.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de 2-isopropilfenol
(0,41 mL, 3,0 mmol),
3-metil-2-buten-1-ol
(0,10 mL, 1,0 mmol) y ácido p-toluensulfónico (9,5
mg, 0,05 mmol) siguiendo el procedimiento general (2 h) se obtuvo un
crudo de reacción que tras purificación (usando
EtOAc-hexano 1-5%) condujo a 91 mg
(0,45 mmol, 45%) de E 155 como un aceite amarillo.
Datos de E155: R_{f} = 0.58
(EtOAc/Hex, 10%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,21
(d, 6 H, J = 7,1 Hz), 1,34 (s, 6 H), 1,79 (t, 2 H, J =
6.8 Hz, H_{3}), 2.79 (t, 2 H, J = 6.7 Hz, H_{4}), 3.27
(sept, 1 H, CH), 6.79 (t, 1 H, J = 7,4 Hz, H_{6}), 6,91 (d,
1H, J = 7.8 Hz, H_{5}), 7.04 (d, 1 H, J = 7,4 Hz,
H_{7}). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 22.4 (2 C),
22,7, 26,9 (2 C), 27,0, 32,7, 73,7, 119,1, 120,3, 123,6, 126,8,
136,5, 151,1. EM (API-ES): 205 [M+H]^{+}.
IR (película): 2972, 2928, 2866,1591, 1453, 1444, 1368, 1240, 1219,
1199, 1157, 1123, 942, 746 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
4-bromo-2-etilfenol
(402 mg, 2,0 mmol),
3-metil-2-buten-1-ol
(0,41 mL, 4,0 mmol) y ácido p-toluensul-
fónico (57 mg, 0,3 mmol) siguiendo el procedimiento general (20 h) se obtuvo un crudo de reacción que tras purificación (usando hexano) condujo a 439 mg (1,64 mmol, 82%) de E225 como un aceite amarillo.
fónico (57 mg, 0,3 mmol) siguiendo el procedimiento general (20 h) se obtuvo un crudo de reacción que tras purificación (usando hexano) condujo a 439 mg (1,64 mmol, 82%) de E225 como un aceite amarillo.
Datos de E225: R_{f} = 0,42
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDC_{3}, 300 MHz) \delta 1,13 (t,
3 H, J = 7,5 Hz), 1.29 (s, 6 H), 1.74 (t, 2 H J = 6,8
Hz, H_{3}), 2,52 (c, 2 H, J = 7,5 Hz), 2.72 (t, 2 H,
J = 6,8 Hz, H_{4}), 7,01 (s, 1 H), 7,03 (s, 1 H). ^{13}C
RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 13,8, 22,5, 23,1, 26,9 (2 C),
32,4, 74,1 111,1, 122,5, 129,3, 129,3, 134,6, 150,8. EM
(API-ES): 291 [M+Na]^{+}, 270
[M+2]^{+}, 268 [M]^{+}. IR (película): 2974, 2932,
2873, 1456, 1369, 1239, 1201, 1157, 1123, 928, 866, 835
cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
4-bromo-2-propilfenol
(430 mg, 2,0 mmol),
3-metil-2-buten-1-ol
(0,41 mL, 3,5 mmol,) y ácido p-toluensulfónico (38 mg, 0,2
mmol) siguiendo el procedimiento general (20 h) se obtuvo un crudo
de reacción que tras purificación (usando
EtOAc-hexano, 0-10%) condujo a 487
mg (1,72 mmol, 86%) de E221 como un aceite amarillo.
Datos de E221: R_{f} = 0,45
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 0,90 (t,
3 H, J = 7,3 Hz), 1,28 (s, 6 H), 1,54 (sext, 2 H, J =
7,6 Hz), 1,74 (t, 2 H, J = 6,8 Hz, H_{3}), 2.47 (t, 2 H,
J = 7,3 Hz), 2,71 (t, 2 H, J = 6,8 Hz, H_{4}),
7,00-7.02 (m, 2 H, H_{7}, H_{5}). ^{13}C RMN
(CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 13,9, 22,6, 22,7, 26,9 (2 C), 31,9,
32,5, 74,1, 110,9, 122,5, 129,3, 130,2, 133,1, 150,9. EM (IE): 284
[M+2]^{+}, 282 [M]^{+}, 227, 69 (100%). IR
(película): 2959, 2926, 2867, 1456, 1382, 1369, 1240, 1201, 1157,
1123, 942 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
4-bromo-2-isopropilfenol
(697 mg, 3,2 mmol),
3-metil-2-buten-1-ol
(0,83 mL, 7,9 mmol) y ácido p-toluensulfónico (62 mg, 0,3
mmol) siguiendo el procedimiento general (40 h) se obtuvo un crudo
de reacción que tras purificación (usando
EtOAc-hexano, 1%) condujo a 623 mg (2,2 mmol, 68%)
de E183 como un aceite amarillo.
Datos de E183: R_{f} = 0,44
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,15 (d,
6H, J = 6,8 Hz), 1,29 (s, 6 H), 1.75 (t, 2 H, J = 6,8
Hz, H_{3}), 2,76 (t, 2 H, J = 6,8 Hz, H_{4}), 3,19 (sept,
1 H, J = 6.8 Hz), 7,00 (s, 1 H, H_{7}), 7.07 (s, 1 H,
H_{5}). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 22,3 (2 C),
22,6, 26,8 (2 C), 26,9, 32,4, 74,1, 111,5, 122,6, 126,7, 129,1,
138,9, 150,2. EM (API-ES): 285 [M+2]^{+},
284 [M+1]^{+}, 283 [M]^{+}. IR (película): 2973,
2926, 2871, 1459, 1441, 1240, 1200, 1159, 1123, 941, 863, 762
cm^{-1}. Anal, calcd para C_{14}H_{19}BrO: C = 59,37; H =
6,76, Br = 28,21. Encontrado: C = 59,60; H = 6,84, Br = 27,88.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
4-bromo-2-terc-butilfenol
(458 mg, 2,0 mmol), con
3-metil-2-buten-1-ol
(0,31 mL, 3,0 mmol) y ácido p-toluensulfónico (38 mg, 0,2
mmol) siguiendo el procedimiento general (22 h) se obtuvo un crudo
de reacción que tras purificación (usando hexano) condujo a 557 mg
(1,87 mmol, 94%) de E231 como un aceite amarillo.
Datos de E231: R_{f} = 0.46
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,32 (s,
15 H), 1,75 (t, 2 H, J = 6,8 Hz, H_{3}), 2.74 (t, 2 H,
J = 6,9 Hz, H_{4}), 7.03 (d, 1 H, J = 2,4 Hz), 7,15
(d, 1 H, J = 2,2 Hz). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz)
\delta 22,9, 26,8 (2 C), 29,5 (3 C), 32,3, 34,9, 74,3, 111.3,
123.0, 127.4, 129.8, 140.2, 151.6. EM (IE): 298 [M+2]^{+},
296
[M]^{+}, 281 [M-15]^{+}, 241 [M-55]^{+}, 225 [M-71]^{+} (100%). IR (película): 2971, 2950, 2867, 1436, 1384, 1369, 1241, 1215, 1166, 1124, 938, 868, 715 cm^{-1}.
[M]^{+}, 281 [M-15]^{+}, 241 [M-55]^{+}, 225 [M-71]^{+} (100%). IR (película): 2971, 2950, 2867, 1436, 1384, 1369, 1241, 1215, 1166, 1124, 938, 868, 715 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
A una disolución de
6-bromo-8-isopropil-2,2-dimetilcromano
(47 mg, 0,17 mmol) en tolueno anhidro (6 mL/
mmol), se añadió Pd(PPh_{3})_{4} (4 mg, 0,034 mmol) y BHT (2 cristales). La mezcla se agitó y se le añadió gota a gota feniltributilestannano (0,10 mL, 0,26 mmol). Se calentó a reflujo de tolueno (110ºC) hasta observar la desaparición del producto de partida. Tras 16 h se eliminó el disolvente a presión reducida, se disolvió en EtOAc y se filtró en gel de sílice para dar lugar a un crudo que tras purificación con CH_{2}Cl_{2}-hexano al 2%, condujo a 30 mg (0,11 mmol, 65%) de E379 como un aceite incoloro.
mmol), se añadió Pd(PPh_{3})_{4} (4 mg, 0,034 mmol) y BHT (2 cristales). La mezcla se agitó y se le añadió gota a gota feniltributilestannano (0,10 mL, 0,26 mmol). Se calentó a reflujo de tolueno (110ºC) hasta observar la desaparición del producto de partida. Tras 16 h se eliminó el disolvente a presión reducida, se disolvió en EtOAc y se filtró en gel de sílice para dar lugar a un crudo que tras purificación con CH_{2}Cl_{2}-hexano al 2%, condujo a 30 mg (0,11 mmol, 65%) de E379 como un aceite incoloro.
Datos de E379: R_{f} = 0.28
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1.07 (d,
6 H, J = 6.9 Hz), 1.34 (s, 6 H), 1.81 (t, 2 H, J = 6,6
Hz, H_{3}), 2.83 (t, 2 H, J = 6,9 Hz, H_{4}), 3.29 (sept,
1H, J = 7.,3 Hz), 7.12 (s, 1 H), 7.24 (m, 2 H), 7.37 (m, 2
H), 7.53 (d, 2 H). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 22.5
(2 C), 22.9, 27.0 (2 C), 27.1, 32.8, 74.0, 120.5, 122.8, 125.5,
126.2, 126.8 (2 C), 128.5 (2 C), 132.1, 136.8, 141.7, 150.9. EM
(IE): 280 [M]^{+} (100%), 265
[M-15]^{+}, 163
[M-55]^{+}. IR (película): 3056, 3026,
2927, 2926, 2867, 1600, 1573, 1464, 1368, 1252, 1216, 1188, 1158,
1123, 943, 877, 762, 697 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
A una disolución de
4-bromo-2-isopropilfenol
(851 mg, 3,9 mmol) en acetona anhidra (1.5 mL/mmol) se añadió
K_{2}CO_{3} (819 mg, 5,9 mmol), yoduro de tetrabutilamonio (0,30
mmol) y
4-bromo-2-metil-2-buteno
(0.6 mL, 4,7 mmol). La suspensión se agitó a temperatura ambiente
hasta observar la desaparición del producto de partida. Después de
20 h se añadió una disolución saturada de ditionito de sodio y
H_{2}O, se separaron las fases, se extrajo la fase acuosa tres
veces con EtOAc, las fases orgánicas se secaron con MgSO_{4}
anhidro, se filtraron y concentraron a presión reducida para dar
lugar a un crudo de reacción que, tras purificación cromatográfica
en gel de sílice (usando EtOAc-hexano,
2-4%) condujo a 890 mg (3,4 mmol, 93%) del producto
puro, como un aceite incoloro.
Datos de
4-bromo-2-isopropilfenil
3-metilbut-2-en-1-il
eter: R_{f} = 0,52 (EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN
(CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,16 (d, 6 H, J = 6,8 Hz),
1,70 (s, 3 H), 1.76 (s, 3 H), 3,27 (sept, 1 H, J = 6,9 Hz),
4,47 (d, 2 H, J = 6,6 Hz), 5,44 (m, 1 H), 6,69 (d, 1 H,
J = 8,7 Hz), 7,19-7,26 (m, 2 H). ^{13}C RMN
(CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 18,2, 22,5 (2 C), 25,7, 26,8, 65,3,
112,9, 113,4, 119,8, 128,9, 129,1, 137,5, 139.8, 155,1. EM (IE): 284
[M+2]^{+}, 282 [M]^{+}, 214
[M-68]^{+}, 199
[M-83]^{+}, 149 (100%). IR (película):
2964, 2926, 2865, 1485, 1447, 1342, 1239, 1189, 1003, 803
cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A una disolución de acetato de mercurio (1,06 g,
3,3 mmol) en THF:H_{2}O (1,0:1,5 mL/mmol) se añadió gota a gota
una disolución de
4-bromo-2-isopropilfenil
3-metilbut-2-en-1-il
eter (799 mg, 3.3 mmol) en THF (0,5 mL/mmol). La mezcla se agitó a
temperatura ambiente hasta observar la desaparición del producto de
partida. Después de 2 h 30 minutos se añadió NaOH 3 M (1,9 mL, 5,6
mmol), y una disolución de NaBH_{4} (125 mg) en NaOH 3 M (1,4 mL,
4,3 mmol). La mezcla resultante se agitó durante 30 minutos, hasta
observar la completa formación del producto, tras los cuales se
diluyó con hexano y se hidrolizó con disolución saturada de
NH_{4}Cl (3 mL/mmol) y H_{2}O (1,5 mL/mmol), se separaron las
fases, la fase acuosa se extrajo dos veces con hexano y una vez con
Et_{2}O. La fase orgánica se lavó con una disolución saturada de
NH_{4}Cl, se secó con MgSO_{4} anhidro, se filtró y concentró a
presión reducida para dar lugar a un crudo de reacción que tras
purificación cromatográfica en gel de sílice (usando
EtOAc-hexano, 5-50%) condujo a 506
mg (1,7 mmol, 51%) del producto puro, como un aceite incolo-
ro.
ro.
\newpage
Datos de
4-(4-bromo-2-isopropilfenoxi)-2-metilbutan-2-ol:
R_{f} = 0,32 (EtOAc/Hex, 25%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300
MHz) \delta 1,14 (d, 6 H, J = 6,8 Hz), 1,28 (s, 6 H),
1,96-1,99 (m, 2 H), 3,19 (sept, 1 H, J = 6,8
Hz) 4,05-4,11 (m, 2 H), 5,25 (s, OH), 6,69 (d, 1 H,
J = 8,5 Hz), 7,19 (dd, 1 H, J = 8,5, 2,4 Hz), 7.24 (d,
1 H, J = 2,4 Hz). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta
21,0, 22,5 (2 C), 26,7, 29,4, 41,8, 65,3, 70,2, 112,8, 113,3, 129,1,
129,2, 139,2, 154,8. EM (API-ES): 325
[M+Na+H]^{+}. IR (película): 3392, 2966, 2926, 2871, 1489,
1474, 1240, 1191, 1156, 1026, 879, 804 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A una suspensión de AlCl_{3} (269 mg, 2,0
mmol) en CH_{3}NO_{2} (1,5 mL/mmol) enfriada a -5ºC se añadió
gota a gota una disolución de
4-(4-bromo-2-isopropilfenoxi)-2-metilbutan-2-ol
(407 mg, 1,3 mmol) en CH_{3}NO_{2} (0,5 mL/mmol). Se dejó subir
la temperatura a 0ºC y se agitó a esa temperatura hasta observar la
completa desaparición del producto de partida. Tras 2 h de reacción
se hidrolizó con disolución saturada de NaHCO_{3} (2 mL/mmol) y
H_{2}O, se separaron las fases y se extrajo la fase acuosa con
hexano. La fase orgánica se secó con MgSO_{4} anhidro, se filtró y
concentró a presión reducida para dar lugar a un crudo de reacción
que tras purificación cromatográfica en gel de sílice (usando
EtOAc-hexano, 1%) condujo a 183 g (0,65 mmol, 48%)
de E179, como un aceite incoloro.
Datos de E179: R_{f} = 0,56
(EtOAc/Hex, 5%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,5 (d,
6 H, J = 6,9 Hz), 1,29 (s, 6 H), 1,79 (t, 2 H, J = 5,5
Hz, H_{3}), 3,20 (sept, 1 H, J = 6,9 Hz), 4,16 (t, 2 H,
J = 5,5 Hz, H_{2}), 7,07 (d, 1 H, J = 2,3 Hz,
H_{7}), 7,24 (d, 1 H, J = 2,4 Hz, H_{5}). ^{13}C RMN
(CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 22,5 (2 C), 26,8, 31,1, 31,3 (2 C),
37,4, 62,9, 112,4, 126,6, 127,0, 133,4, 138,9, 149,9. EM (IE): 284
[M+2]^{+}, 282 [M]^{+}, 267
[M-15]^{+}, 239
[M-43]^{+}, 149 (100%). IR (película):
2962, 2932, 2871, 1453, 1462, 1425, 1334, 1247, 1218, 1193, 1063,
865, 691 cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
4
El procedimiento general consistió en añadirle
gota a gota, a una disolución de 6-bromocromano en
THF anhidro (5 mL/mmol de 6-bromocromano) enfriada a
78ºC, una disolución de tBuLi 1,5 M en pentano (2.0 equiv).
La mezcla se agitó a 78ºC durante 20 minutos, tras los cuales se
añadió mediante cánula, sobre una disolución de cloroformiato de
etilo (1,5 equiv) en THF anhidro (3 mL/mmol de
6-bromocromano) enfriada también a 78ºC. La mezcla
se agitó a la misma temperatura durante 30 minutos, hasta la
completa formación del producto. A continuación, se hidrolizó a baja
temperatura con disolución saturada de NH_{4}Cl (4 mL/mmol). Se
separaron las fases y la fase acuosa se extrajo con Et_{2}O. La
fase orgánica se secó con MgSO_{4} anhidro, se filtró, y concentró
a presión reducida para dar un crudo de reacción que se purificó
mediante cromatografía en gel de sílice.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
6-bromo-8-isopropil-2,2-dimetilcromano
(92 mg, 0,32 mmol), disolución de tBuLi 1,5 M en pentano
(0,43 mL, 0,64 mmol,) y cloroformiato de etilo (46 \muL, 0,48
mmol) siguiendo el procedimiento general se llegó a un crudo de
reacción que tras purificación (usando EtOAc-hexano,
1-10%) condujo a 47 mg (0,17 mmol, 53%) de E1127
como un aceite amarillo y a 17 mg (0,08 mmol, 26%) del producto de
protonolisis E155.
Datos de E1127: R_{f} = 0,36
(EtOAc/Hex, 10%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,19
(d, 6 H, J = 6,9 Hz), 1,32 (s, 6 H), 1,35 (t, 3 H, J =
6,9 Hz), 1,79 (t, 2 H, J = 6,7 Hz, H_{3}), 2,79 (t, 2 H,
J = 6,6 Hz, H_{4}), 3,22 (sept, 1 H, J = 6,9 Hz),
4.31 (c, 2 H, J = 7,2 Hz), 7,62 (s, 1 H, H_{5}), 7,69 (s, 1
H, H_{7}). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 14,4, 22,3
(2 C), 22,6, 26,9 (3 C), 32,4, 60,4, 74,9, 120,0, 121,1, 125,5,
128,9, 136,5, 155,4, 167,1 (C=O). EM (API-ES): 299
[M+Na], 277 [M+H]^{+}. IR (película): 2974, 2932, 2867
1712, 1606, 1464, 1447, 1368, 1284, 1238, 1194, 1157, 1122, 771
cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
6-bromo-4,4-dimetilcromano
(169 mg, 0,7 mmol), disolución de tBuLi 1,5 M en pentano (0,9
mL, 1,4 mmol) y cloroformiato de etilo (0,1 mL, 1,05 mmol) siguiendo
el procedimiento general, se llegó a un crudo de reacción que tras
purificación (usando EtOAc-hexano,
1-10%) condujo a 87 mg (0,3 mmol, 43%) de E 1113
como un aceite amarillo y 15 mg (0,09 mmol, 13%) del producto de
protonolisis.
Datos de E1113: R_{f} = 0,33
(EtOAc/Hex, 10%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,34
(s, 6 H), 1,34 (t, 3 H, J = 7,1 Hz), 1,83 (t, 2 H, J =
5,5 Hz, H_{3}), 4,22 (m, 2 H), 4,32 (m, 2 H), 6.77 (d, 1 H,
J = 8,5 Hz, H_{8}), 7.74 (dd, 1 H, J = 8,7, 2,1 Hz,
H_{7}), 7,97 (d, 1 H, J = 2,1 Hz, H_{5}). ^{13}C RMN
(CDCl_{3}, 75 MHz) \delta 14,4, 30,6, 30,8 (2 C), 37,1, 60,5,
63,4, 116,8, 122,5, 128,7, 129,1, 131,3, 157,6, 166,6. EM
(API-ES): 235.1 [M+H]^{+}. IR (película):
2932, 2963, 1713, 1611, 1493, 1249, 1192, 1107, 1062, 771
cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de
6-bromo-8-isopropil-4,4-dimetilcromano
(86 mg, 0,30 mmol), disolución tBuLi 1,5 M en pentano (0,40
mL, 0,61 mmol) y cloroformiato de etilo (58 \muL, 0,61 mmol)
siguiendo el procedimiento general, se llegó a un crudo de reacción
que tras purificación (usando EtOAc-hexano,
1-10%) condujo a 50 mg (0,18 mmol, 60%) de E 1131B
como un aceite amarillo y a 25 mg (0,12 mmol, 40%) del producto de
protonolisis.
Datos de E1131B: R_{f} = 0,35
(EtOAc/Hex, 10%). ^{1}H RMN (CDCl_{3}, 300 MHz) \delta 1,19
(d, 6 H, J = 6,8 Hz), 1,34 (s, 2 H), 1,36 (t, 3 H, J =
7,1 Hz), 1,82 (t, 2 H, J = 5,5 Hz, H_{3}), 3,32 (sept, 1H,
J = 6,9 Hz), 4,23 (t, 2 H, J = 5,5 Hz, H_{2}), 4,32
(c, 2 H, J = 6,9 Hz), 7,69 (d, 1 H, J = 1,9 Hz), 7,83
(d, 1 H, J = 2,1 Hz). ^{13}C RMN (CDCl_{3}, 75 MHz)
\delta 14,3, 22,4 (2 C), 26,6, 30,7, 30,9 (2 C), 37,0, 60,3, 63,1,
121,6, 124,9, 126,3, 130,7, 136,2, 154,8, 166,8 (C=O). EM
(API-ES): 299 [M+Na]^{+}, 277
[M+H]^{+}. IR (película): 2962, 2932, 2873, 1713, 1664,
1465, 1322, 1267, 1249, 1220, 1191, 1137, 1064, 1035, 771
cm^{-1}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
5
Para determinar si un compuesto dado inhibe la
actividad de una UCP1 se determina su efecto sobre la velocidad de
respiración de mitocondrias aisladas que contengan UCP1 activa, y se
compara dicho efecto sobre el que tiene lugar en mitocondrias
control sin UCP, para discriminar posibles efectos inespecíficos
[Rial E, González-Barroso MM, et al. (1999)
Retinoids actívate protón transport by the uncoupling proteins UCP1
and UCP2. EMBO J. 18: 5827-5833; Patente
ES9800225],
La obtención de mitocondrias que contengan UCP1
se inició por transformación de la cepa W303 de Saccharomyces
cerevisiae con el vector
pYeDP-1/8-10, que inserta la
secuencia de UCP1 en el genoma de la levadura bajo el control del
promotor gal-cyc [Arechaga I, Raimbault S, et
al. (1993) Cysteine residues are not essential for uncoupling
protein function. Biochem. J. 296: 693-700]. Con
este sistema, la expresión de UCP1 se reprime en presencia de
glucosa y se activa en presencia de galactosa. La UCP1 expresada en
estas levaduras recombinantes retiene sus propiedades
características: transporte de protones activado por ácidos grasos e
inhibido por nucleótidos. Como mitocondrias control se usaron las
aisladas de la misma cepa de levadura transformada con un vector
pYeDP en el que el ADN que codifica por la UCP1 se inserta en
sentido inverso, lo que impide la síntesis de dicha proteína. La
comparación de los efectos de un compuesto dado sobre la velocidad
de respiración de ambos tipos de mitocondrias permite discriminar
efectos inespecíficos de dicho compuesto sobre UCP1 [Rial E,
González-Barroso MM, et al. (1999) Retinoids
actívate protón transport by the uncoupling proteins UCP1 and UCP2.
EMBO J. 18: 5827-5833; Patente
ES9800225],
ES9800225],
La medida de la actividad de la UCP1 en las
mitocondrias se realizó de acuerdo a Rial E y
Jiménez-Jiménez J (2001) Procedimiento para la
determinación de la actividad de las proteínas desacoplantes (UCP)
mediante la monitorización del consumo de NAD(P)H
(Patente de invención ES2177404). En los ensayos realizados, la
concentración inicial de NADH fue de 0.3 mM y, puesto que para
determinar la posible inhibición de la actividad de la UCP1, hay que
asegurarse de que se encuentra activada, se añadió palmitato 9
\muM al medio de ensayo [Arechaga I, Raimbault S, et al.
(1993) Cysteine residues are not essential for uncoupling protein
function. Biochem. J. 296:693-700], La medida de la
actividad de la UCP1 se realizó determinando la fluorescencia del
NADH, usando placas de 96 pocilios y un lector de placas, ajustado a
una longitud de onda de excitación de 340 nm y de emisión de 460 nm.
En los pocilios de las placas conteniendo las mitocondrias se añade
el compuesto cuya actividad inhibidora de la UCP se quiere
determinar.
determinar.
La Figura 1 muestra el efecto de la adición de
100 \muM de GDP, inhibidor de la actividad de UCP1, así como de 20
\muM de E379
(6-fenil-8-isopropil-2,2-dimetilcromano,
sintetizado según se describe en el Ejemplo 2 de la presente
memoria). En el panel A se muestran el efecto del GDP y del E379
determinado por la disminución de la fluorescencia y en el panel B
la velocidad de consumo de NADH una vez transformados los valores de
fluorescencia en concentración de NADH por comparación con una curva
patrón del mismo. En ambas figuras se representan los resultados
obtenidos en situación basal en presencia del activador palmitato
(círculos), tras la adición del inhibidor GDP a una concentración de
100 \muM (triángulos negros hacia abajo) y tras la adición de
compuesto E379 a una concentración de 20 \muM (triángulos blancos
hacia arriba).
Se demuestra, por tanto, la capacidad del
compuesto E379 como inhibidor de la actividad UCP1, que es
equivalente a la mostrada por el GDP.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
6
Utilizando la metodología descrita en el ejemplo
anterior se ha caracterizado el efecto de los derivados de cromano
descritos en la Tabla 1, sintetizados según se ha descrito en los
ejemplos 1 a 4 de la presente memoria. La Figura 2 muestra los
resultados obtenidos con 14 compuestos derivados de cromano. La
Figura 3 muestra la EC_{50} correspondiente a cada uno de dichos
compuestos para la inhibición de la actividad de la UCP1. Los
derivados de cromano analizados tienen las siguientes fórmulas:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Para la determinación de las constantes de
inhibición, a los valores de velocidad de respiración obtenidos con
mitocondrias que expresan UCP1 se les sustrajo los obtenidos con
mitocondrias control que no la expresan. El cálculo de los
parámetros cinéticos se llevó a cabo con el programa de regresión de
SigmaPlot (Systat Software, Erkrath, Alemania) que realiza el ajuste
de los datos utilizando el algoritmo
Marquart-Levenberg. En todos los casos, las
concentraciones de inhibidor usadas para el cálculo de la EC_{50}
fueron 0, 2, 20, 125 y 250 \muM. En aquellos compuestos en los que
sus EC_{50} son tan altas que quedan fuera del rango de los datos,
se indica que la misma es "mayor de 200" (>200),
considerándose por tanto que dichos compuestos no tienen capacidad
inhibidora de la actividad de UCP1 (Figura 3 y Tabla 1).
Los resultados mostraron la capacidad inhibidora
de varios de los compuestos, en particular de E379, E1127, E1131B,
E225, E231 y E221, con EC_{50} de 20, 27, 32, 34, 39 y 54 \muM,
respectivamente.
Por el contrario, es importante destacar que
ensayos realizados con compuestos de fórmula general (I), en los que
R^{3} es -COOR^{5}, siendo R^{5} hidrógeno, es decir, en los
que R^{3} es un grupo carboxi (-COOH), tales como E137, no
presentan efecto inhibidor.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
7
Con el fin de estudiar el efecto de los
compuestos de la invención en células tumorales, se seleccionó la
línea celular Caco-2 de adenocarcinoma colorectal
humano (ATCC HTB-37), en la que se confirmó
previamente la presencia de UCP2 mediante inmunodetección en
extractos mitocondriales. Para la preparación de los extractos ricos
en mitocondrias, se cultivaron las células en medio completo (MEM
Alpha, Gibco, Invitrogen) suplementado con 20% de suero fetal
bovino, penicilina 100 U/ml y estreptomicina 100 \mug/ml) hasta
que llegaron a un 70-80% de confluencia en frascos
de cultivo de 75 cm^{2} (Falcon) a 37ºC y 5% de CO_{2}. Las
células se lavaron con solución tampón PBS fría y se recogieron con
un raspador en 1 ml de tampón 250 mM sacarosa, 10 mM Tris, 1 mM EDTA
pH 7.4. Se lavaron a 4ºC una vez en este medio y se centrifugaron a
2000 g 5 minutos. Los sedimentos celulares se resuspendieron en 1 ml
del mismo medio conteniendo inhibidores de proteasas (protease
inhibitor cocktail Sigma P8340) y se sometieron a tres ciclos de
congelación en nitrógeno líquido durante 5 minutos y descongelación
a 37ºC durante 10 minutos, para romper las células. Se centrifugaron
las muestras a 750 g, 10 minutos para eliminar las células que no se
habían roto y el sobrenadante se volvió a centrifugar a 10000 g, 20
minutos. El sedimento mitocondrial se resuspendió en
10-20 \mul de medio conteniendo inhibidores de
proteasas. Los extractos mitocondriales se sometieron a
electroforesis en gel en condiciones desnaturalizantes
(SDS-PAGE) y tras la electroforesis se transfirieron
las proteínas a membrana de nitrocelulosa. La membrana se trató 2
horas con PBS/Tween 0.1% y 5% de leche en polvo y, a continuación,
se incubó toda la noche con anticuerpo policlonal contra UCP2 (Santa
Cruz Biotechnology, Inc, Santa Cruz, EEUU). Posteriormente, se lavó
3 veces con PBS/Tween 0.1% y se incubó 2 horas con un anticuerpo
anti-goat IgG conjugado con peroxidasa (Santa Cruz
Biotechnology, Inc, Santa Cruz, EEUU). Para asegurar una carga
similar de proteína y de riqueza mitocondrial se utilizó un
anticuerpo policlonal anti-porina
(Sigma-Aldrich). La señal de quimioluminiscencia se
reveló con el kit ECL (GE Healthcare, Reino Unido) y se detectó con
la cámara CCD de un Fujifilm LAS-3000 analyzer. La
Figura 4 muestra la presencia de la UCP2 en extractos mitocondriales
de las células Caco-2, mostrándose como control la
señal obtenida con mitocondrias aisladas de bazo de ratón.
Como la UCP2 aumenta la resistencia de las
células tumorales a la quimioterapia basada en agentes antitumorales
que provocan estrés oxidativo, se estudió el efecto del compuesto
E379 (que había demostrado su gran capacidad de inhibición de la
actividad de la UCP1) sobre la viabilidad de las células
Caco-2 sometidas a estrés oxidativo. Como agente
antitumoral que provoca estrés oxidativo se utilizó el trióxido de
arsénico [Laparra JM et al. (2008)
As_{2}O_{3}-induced oxidative stress and cycle
progression in a human intestinal epithelial cell line
(Caco-2). Toxicol In Vitro
22:444-449]. La viabilidad se determinó in
vitro por el ensayo de MTT (bromuro de
3-[4,5-dimetilltiazol-2-il]-2,5-difenill
tetrazolio), que se basa en que las deshidrogenasas mitocondriales
de las células viables rompen el anillo de tetrazolio del MTT dando
lugar a cristales de formazán que, tras la solubilización de las
células, dan un color morado. Para este ensayo, se sembraron 50000
células por pocilio en placas de 96 pocilios en MEM Alpha (Gibco,
Invitrogen) suplementado con 20% de suero fetal bovino (v/v)
inactivado por calor, penicilina 100 U/ml y estreptomicina 100
\mug/ml. Tras 24 horas, se trataron las células con
concentraciones crecientes de trióxido de arsénico en presencia o
ausencia del inhibidor E379 (50 \muM). Después de 24 horas, se
añadió a cada pocilio 0.5 mg/ml de MTT y se incubó durante 40
minutos hasta la aparición de cristales de formazán. Se añadió una
solución de isopropanol ácido (0.1 N HCl) con 10% de tritón
X-100, que permite disolver dichos cristales, y se
midió por espectrofotometría la absorbancia de los extractos
obtenidos a una longitud de onda de 595 nm.
La Figura 4 muestra que, aunque el tratamiento
con trióxido de arsénico provoca muerte de las células tumorales,
incluso a concentraciones del mismo de 10 \muM, la supervivencia
era superior al 70%. En las mismas condiciones, la adición del
compuesto E379 a una concentración de 50 \muM redujo la
supervivencia a aproximadamente el 50%. La misma concentración del
compuesto E379 cuando la concentración de trióxido de arsénico es de
0,5 \muM logra reducir la supervivencia a menos del 70%, frente a
una supervivencia de aproximadamente el 95% en ausencia de dicho
compuesto.
Claims (9)
1. Compuesto de fórmula general (I):
sus enantiómeros, así como sus
sales aceptables farmacéuticamente,
donde:
R^{1} y R^{2} son iguales o diferentes y se
seleccionan de entre hidrógeno o alquilo
(C_{1}-C_{8});
R^{3} es hidrógeno, un halógeno, arilo o
-COOR^{5}, donde R^{5} es alquilo
(C_{1}-C_{4}) o alquilarilo; y
R^{4} es hidrógeno, alquilo
(C_{1}-C_{8}) o alquilarilo.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Compuesto según la reivindicación 1, donde
R^{1} es un grupo alquilo (C_{1}-C_{4}) y
R^{2} es H.
3. Compuesto según la reivindicación 1, donde
R^{1} es H y R^{2} es un grupo alquilo
(C_{1}-C_{4}).
4. Compuesto según la reivindicación 1,
seleccionado de la lista que comprende:
- a.
- 8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
- b.
- 6-bromo-8-etil-2,2-dimetilcromano;
- c.
- 6-bromo-2,2-dimetil-8-propil-cromano;
- d.
- 6-bromo-8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
- e.
- 6-bromo-8-terc-butil-2,2-dimetilcromano;
- f.
- 6-bromo-8-isopropil-4,4-dimetilcromano;
- g.
- 6-fenil-8-isopropil-2,2-dimetilcromano;
- h.
- 8-isopropil-2,2-dimetilcroman-6-carboxilato de etilo; ó
- i.
- 4,4-dimetilcroman-8-isopropil-6-carboxilato de etilo.
\vskip1.000000\baselineskip
5. Uso del compuesto según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, para la elaboración de una composición
farmacéutica.
6. Uso del compuesto según la reivindicación 5,
donde la composición farmacéutica es capaz de inhibir la actividad
desacoplante de las proteínas desacoplantes (UCP).
7. Uso del compuesto según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, para la elaboración de una composición
farmacéutica para el tratamiento de enfermedades y dolencias en las
que hay un aumento en los niveles y/o actividad de las proteínas
UCP.
8. Uso según reivindicación 7 donde las
enfermedades y dolencias con aumento en los niveles y/o actividad de
las proteínas UCP se seleccionan de la lista que comprende el
cáncer, la caquexia tumoral, la diabetes no dependiente de insulina,
las infecciones o la fiebre.
9. Composición farmacéutica que comprende un
compuesto según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 y un
vehículo farmacéuticamente aceptable.
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PCT/ES2009/070397 WO2010037886A1 (es) | 2008-10-03 | 2009-09-23 | Derivados de cromano y sus usos como inhibidores de la actividad de las proteínas desacoplantes |
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WO2000037455A1 (en) * | 1998-12-21 | 2000-06-29 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Benzothiepin-anilide derivatives, their production and their use for antagonizing ccr-5 |
US7226951B2 (en) * | 2003-12-17 | 2007-06-05 | Allergan, Inc. | Compounds having selective cytochrome P450RAI-1 or selective cytochrome P450RAI-2 inhibitory activity and methods of obtaining the same |
WO2007070433A2 (en) * | 2005-12-12 | 2007-06-21 | Merck & Co., Inc. | 2-arylthiazole derivatives as cxcr3 receptor modulators |
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-
2009
- 2009-09-23 WO PCT/ES2009/070397 patent/WO2010037886A1/es active Application Filing
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Title |
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BROWN, C.W. et al. "{}Novel Heteroarotinoides as Potential Antagonists of Mycobacterium bovis BCG"{}. Journal of Medicinal Chemistry 2004, Volumen 47, páginas 1008-1017. Ver página 1009, compuesto 23. * |
ISHINO, Y. et al. "{}An improved method for synthesis of 1-benzopyrans from unsaturated alcohols and phenols using a catalytic amount of acids"{}. Synthetic Communications 2001, Volumen 31, Número 3, páginas 439-448. Ver página 442, tabla 2, compuestos 3a-3e. * |
YUS, M. et al. "{}Reductive lithiation of cyclic benzofused ethers: a source of oxygen-functionalised organolithium compounds"{}. Tetrahedron 2002, Volumen 58, páginas 4907-4915. Ver página 4909, esquema 4, compuesto 7; página 4908, esquema 3; página 4909, tabla 2, compuesto 6h. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO2010037886A1 (es) | 2010-04-08 |
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