ES2320975T3 - Mutante plb dominante negativo para su utilizacion en el tratamiento de enfermedades cardiacas. - Google Patents
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Abstract
Utilización de un vector vírico que contiene un polinucleótido que codifica el mutante S16E PLB dominante negativo de fosfolanban (PLB), que presenta una mutación de serina a ácido glutámico en el aminoácido 16, cuando se compara con la molécula de tipo salvaje, en la preparación de un medicamento destinado al tratamiento de las enfermedades cardíacas.
Description
Mutante PLB dominante negativo para su
utilización en el tratamiento de enfermedades cardíacas.
La transferencia genética somática ofrece miles
de posibilidades para la utilización terapéutica en diversas
enfermedades que incluyen defectos congénitos, así como en formas
adquiridas de anormalidades patológicas. Han existido diversas
limitaciones críticas que han dificultado la aplicación práctica de
la transferencia génica in vivo. Estas incluyen la duración
de la expresión de los genes transferidos, el balance entre la
especificidad tisular y la eficacia de la expresión génica, y los
efectos secundarios adversos de la inflamación local provocados por
los vectores.
En el campo de la medicina cardiovascular, la
terapia génica se ha focalizado en la transferencia génica vascular,
dirigida principalmente a la enfermedad coronaria isquémica. Muchos
grupos de investigadores han obtenido la transferencia génica
cardíaca utilizando vectores adenovíricos (Ad) con cassettes de
expresión génica intensa, no específicas tisulares, gobernadas por
promotores del citomegalovirus (CMV) o del virus del sarcoma de Rous
(RSV). Se han llevado a cabo ensayos clínicos de varios factores
angiogénicos que incluyen el factor de crecimiento de las células
endoteliales (VEGF), el factor de crecimiento fibroblástico (FGF) y
el factor de crecimiento hepatocítico (HGF). Lo que se espera es
que la transducción de las células cardíacas con vectores virales
dé lugar a la secreción de estos factores de crecimiento a partir de
las células cardíacas, que inducen el crecimiento de nuevos vasos
sanguíneos y que mejoran el suministro sanguíneo al corazón para
disminuir la isquemia.
Algunas publicaciones han informado de algunos
éxitos en la modificación de la función cardíaca mediante la
experimentación de la transferencia génica en ratas y conejos,
utilizando la inyección intra-aórtica o
intra-coronaria de los virus. Sin embargo, en estos
informes, no se describió apropiadamente el grado de especificidad
de la transferencia génica, o la expresión génica fue poco uniforme
en la distribución. En ratas, se creó la constricción aórtica
ascendente, para estimular la hipertrofia compensadora que a menudo
da lugar a la insuficiencia cardíaca (Miyamoto et al.,
2000). La actividad de la Ca^{2+} APTasa (SERCA 2a) del retículo
sarcoplásmico está reducida en los corazones insuficientes, lo que
conduce a una movilización anormal del Ca^{2+} y que lleva
eventualmente a un fallo en la contracción. La inyección
intracardíaca de un vector viral Ad-SERCA2a en
ratas fue suficiente para inducir alguna mejoría fisiológica; sin
embargo, existieron ciertas limitaciones. Los vectores Ad indujeron
una respuesta inmunológica robusta, dando lugar a la necrosis
miocárdica. Dicha respuesta inmune robusta prevendría la
re-administración del Ad y puede dar lugar a la
depuración de las células transducidas por el sistema inmune.
Aunque se reivindicó que la mayoría de los miocitos expresaron el
gen transferido, en el informe relativo a la transducción no se
consideraron otros tipos celulares en el corazón, o la
especificidad tisular de la expresión génica. En un estudio similar
por los mismos investigadores utilizando ratas normales, se informó
de la expresión poco uniforme de un constructo informador en el
corazón. Adicionalmente, se observó la expresión del gen
transferido en órganos alejados, incluyendo los pulmones y el hígado
(Hajjar et al.,1998).
Otros intentos para mejorar la función cardíaca
se han dirigido al receptor adrenérgico
\beta2(\beta-AR). La función de
\beta-AR disminuye en la insuficiencia cardíaca, y
la sobreexpresión de \beta-AR en ratones
transgénicos por lo demás normales da lugar al aumento de la función
cardíaca. Para determinar si \beta-AR podría
aumentar la función cardíaca en conejos normales, se inyectó durante
40 segundos, mediante un catéter, en el ventrículo izquierdo,
estando la aorta sujeta con una abrazadera, un adenovirus que
expresaba \beta-AR
(Ad-\beta-AR) (Maurice et
al, 1999). El procedimiento de suministro produjo una expresión
miocárdica multicavitaria difusa, mejorando la función cardíaca;
sin embargo, en el informe, no se tuvo en consideración ni la
eficacia ni la especificidad de la transferencia génica. A
continuación, a los corazones de los conejos que habían sufrido un
infarto miocárdico, se suministró, mediante un vector adenovírico,
un inhibidor quinásico \beta-adrenérgico, para
atenuar la desensibilización \beta-AR, con objeto
de obtener sólo una mejoría regional de la contractibilidad
cardíaca (Shah et al., 2001). Así, la demostración del efecto
terapéutico de la transferencia génica somática cardíaca se ha
dificultado por la falta de estrategias de suministro génico in
vivo, para llevar a cabo, en el corazón intacto, una expresión
cardiotrópica de alta eficacia a largo plazo.
La disfunción de una proteína puede corregirse
mediante modulación de un factor regulador de la proteína. En un
estudio por Minamisawa et al. (1999), se demostró que la
eliminación o interrupción de la fosfolanban (PLB), una proteína
que inhibe la función de SERCA2, pudo rescatar los defectos
cardíacos en un ratón en el que la proteína LIM músculo específica
(MLP) se suprimió (Arber et al., 1997). Se generaron ratones
con genes doblemente inactivados (DKO), cruzando un ratón PLB con
genes inactivados con un ratón MLP con genes inactivados. Los
ratones resultantes mostraron alguno de los defectos de la cepa de
ratones MLP con genes inactivados. A este respecto, estudios de
complementación genética en un modelo de ratón con genes diana de
cardiomiopatía dilatada, han identificado un papel esencial para los
defectos en el ciclo del calcio del retículo endoplásmico, en la
progresión de la insuficiencia cardíaca (Chien, 1999).
Los mutantes dominantes negativos de una
proteína pueden utilizarse para inhibir la función de la proteína,
dando lugar esencialmente a una mutación con genes inactivados.
Algunos de los mutantes dominantes negativos de PLB se han
identificado y caracterizado mediante diversos procedimientos (WO
00/25804, que se incorporan como referencia a la presente memoria).
Estas mutaciones incluyen las mutaciones puntuales E2A, K3E, R14E,
S16N, S16E, L37A, I40A y V49A, así como la mutación doble K3E/R14E,
algunas de las cuales se han ensayado solamente in vitro
(Toyofuku et al, 1994). La inyección neonatal en la cavidad
ventricular de un vector viral AD expresando una forma dominante
negativa de PLB (V49A), inhibió la función de la PLB nativa,
rescatando la función cardíaca. La transferencia génica
cardiotrópica in vivo a largo plazo con alta eficacia en
varias formas del modelo de insuficiencia cardíaca crónica, se ha
considerado un ensayo crítico para evaluar el valor terapéutico de
la modificación funcional de la fosfolanban.
A partir de estudios sobre la fibrosis quística,
es conocido que no es necesaria la transducción de todas las
células para una mejora en la función. La expresión del canal de
sodio de tipo salvaje en un porcentaje tan bajo como el
6-10%de las células en el interior de una capa
epitelial, a las que les falte un canal de sodio, es suficiente
para el transporte normal del ión sodio (Johnson et al,1992).
Esto se conoce como "el efecto bystander". Es probable que la
expresión esporádica de un canal de calcio o receptor puede ser
suficiente para aumentar la función de un tejido enfermo; sin
embargo, el reemplazo de una proteína estructural necesitará de una
transferencia génica más eficiente. Hasta la fecha, no existen
informes de una transferencia génica estable de alta eficacia al
tejido cardíaco.
La cardiomiopatía autosómica recesiva (CM) del
hamster Sirio que se presenta de modo natural en las cepas BIO14.6,
UMX7.1 y TO-2 del hamster, se han identificado
recientemente como debidas a una mutación en el gen
\delta-sarcoglicano (Nigro et al.,1997;
Sakamoto, et al., 1997). Esta mutación da lugar a una
disminución en la expresión estable de todos los genes
sarcoglicanos (\alpha, \beta y \gamma), dando lugar a una
disminución de la integridad estructural de todas las células
musculares. La progresiva dilatación venticular izquierda, la
disfunción sistólica y diastólica, y la pérdida de células en el
hámster CM se parece a muchas características fenotípicas de la
cardiomiopatía dilatada primaria humana (DCM) (Ryoke et
al.,1999; Ikeda et al, 2000). En el hamster, estos
cambios fenotípicos se asocian con un aumento en la permeabilidad de
la célula miocárdica, y rotura. En los ratones transgénicos, la
interrupción del gen \delta-sarcoglicano provocó
daño cardíaco, que se informó que estaba asociado al menos,
parcialmente, con anormalidades de los músculos lisos vasculares
(Coral-Vazquez et al., 1999). En los ratones
transgénicos, se informó de que la interrupción del gen
\delta-sarcoglicano estaba asociada con
anormalidades de los músculos lisos vasculares y daño miocárdico
secundario (Coral-Vázquez et al., 1999). Se
cree que la fragilidad de las células es debida al ensamblaje
incorrecto del complejo distrofina asociado a glicoproteína (DAGC)
(Sakamoto, et al., 1997). Normalmente, los componentes del
DAGC se encuentran perpendiculares al plano del sarcolema y se unen
a la proteína laminina de la matriz extracelular y a la proteína
distrofina intracelular, estabilizando la célula. En ausencia de
\delta-sarcoglicano, el complejo se colapsa y ya
no puede estabilizar las células, haciéndolas más susceptibles al
estrés mecánico.
El rescate de la distrofia del músculo
esquelético del hamster CM tuvo lugar mediante la inyección
intramuscular de Ad (Holt, et al.,1998) o del virus asociado
al adenovirus (AAV) (Greelish, et al., 1999) que contiene el
gen \delta-sarcoglicano. El rescate mediante el
Ad-\delta-sarcoglicano se llevó a
cabo mediante la inyección directa del
Ad-\delta-sargocoglicano en el
cuadriceps femoris. La expresión fue inicialmente alta \geq 80%),
y alguna de las expresiones se apreciaron hasta 198 días después de
la administración viral; sin embargo, la expresión disminuyó
significativamente a lo largo del tiempo. No se trató la expresión
del producto génico, o de su ausencia, en sitios alejados.
La inyección directa del
AAV-\delta-sarcoglicano en un
músculo pequeño (es decir, el tibial anterior), fue suficiente para
el suministro génico a través del músculo; sin embargo, el
suministro génico eficiente en los músculos más grandes (por
ejemplo, de los miembros posteriores) requirió el suministro a
través de la circulación con la interrupción simultánea del
endotelio, utilizando histamina. El miembro posterior se aisló de
la circulación sistémica mediante torniquetes, seguido por la
inyección de papaverina en histamina, y finalmente, de virus, en el
vaso femoral. Después de 4 a 6 semanas, se ensayó en un sistema
ex vivo la integridad estructural de las células. En ambos
sistemas, el tratamiento con el virus que expresaba el
\delta-sarcoglicano dio lugar a un aumento de la
estabilidad estructural de las células musculares. No se trató el
suministro génico al corazón. Además, el aislamiento del corazón de
la circulación mediante el torniquete para aumentar la exposición
del virus al tejido de interés, será probablemente problemática; por
tanto, un procedimiento idéntico no podría utilizarse para el
tejido cardíaco.
En algunos casos de las distrofias hereditarias,
como en la distrofia muscular de Duchenne, la muerte es causada
habitualmente por insuficiencia cardíaca debida a cardiomiopatía,
más que a miopatía del músculo esquelético, como sucede con CM en
los hamsters. Como los productos del gen del sarcoglicano son
elementos estructurales de la célula, para el tratamiento eficaz de
la enfermedad, será necesaria la transferencia eficaz para casi
todas las células. Por tanto, los procedimientos para una
transferencia génica eficiente al músculo cardíaco serán útiles en
el tratamiento de diversas distrofias musculares.
El suministro génico eficaz para el corazón
presenta un problema mayor que el suministro al tejido del músculo
estriado, debido a las diferencias estructurales de los tejidos. Las
células del músculo estriado son grandes, multinucleadas, que se
derivan a partir de la fusión de mioblastos múltiples. Por tanto, el
suministro de una partícula vírica a una única célula dará lugar a
una expresión sobre un área mucho más grande, pues el ARN
transcrito en un único núcleo será transportado a través de la
célula. Las células cardíacas contienen sólo uno o dos núcleos por
célula y son mucho más pequeñas (10 veces). La expresión en la misma
área porcentual necesitará la transducción eficiente de un número
de células significativamente más alto.
Los promotores histo-específicos
se han utilizado para aumentar la especificidad de la expresión
génica miocárdica, pero los niveles de expresión del gen
transferido fueron bajos (Rothmann et al, 1996). Otra
estrategia para restringir la expresión de los genes transferidos
al corazón ha implicado la inyección directa del virus en el
miocardio (Gutzman et al.,1993; French et al.,1994).
Otro intento implicó la inyección intrapericárdica del vector
vírico combinada con el tratamiento con proteinasa (Fromes et
al., 1999). Estas manipulaciones consiguieron el suministro
génico local debido a la falta de una intensa difusión del vector
viral; sin embargo, el resultado de estos procedimientos es la
expresión génica altamente restringida con el daño tisular
local.
La eficacia del suministro génico
cardiomiocítico mediante un vector AAV se documentó in vitro
utilizando células neonatales cultivadas de rata, así como en un
sistema ex vivo utilizando la inmersión del músculo papilar
de rata (Maeda et al.,1998). Se informó de que la
transferencia ex vivo del vector AAV, seguida por el
trasplante cardíaco singeneico alcanzó una expresión del gen
marcador de alta eficacia (Svensson et al, 1999). El
suministro intracoronario de AAV se intentó en el miocardio porcino;
sin embargo, se observó una eficacia extremadamente baja de la
transferencia génica (0,2%) (Kaplitt et al, 1996). Hasta la
fecha, no existe un informe del sistema del suministro génico
cardiotrópico in vivo de alta eficacia con una expresión
sostenible a largo plazo.
Se requiere el desarrollo de otros medios para
el tratamiento de problemas cardíacos.
La invención consiste en la utilización de un
vector vírico que contiene un polinucleótido que codifica el
mutante S16E PLB dominante negativo de fosfolanban (PLB), que
presenta una mutación de serina a ácido glutámico en el aminoácido
16, al compararla con la molécula de tipo salvaje, en la preparación
de un medicamento para el tratamiento de las enfermedades
cardíacas.
La invención supera las limitaciones en los
medios anteriores, para alcanzar un alto nivel de transferencia
génica cardiotrópica in vivo con una alta coherencia
(promedio del 60-70% de los miocitos cardíacos) en
modelos animales y normales cardiomiopáticos. La invención implica
el aumento del tiempo de permanencia del vector viral, Ad o AAV,
que contiene el gen de interés, en el corazón, mediante la inducción
de la hipotermia, mediante el aislamiento del corazón de la
circulación, y mediante la parada cardíaca completa o parcial. Los
agentes permeabilizantes constituyen un componente esencial de la
invención, y se utilizan durante la administración del virus, para
aumentar la absorción de éste por las células cardíacas. La
expresión del gen mediante los vectores AAV está muy restringida al
músculo cardíaco y se mantiene durante largo tiempo, sin síntomas de
inflamación miocárdica.
Se utilizaron hamsters normales, así como
hamsters CM, para demostrar la utilidad de la invención. Los
animales se anestesiaron y se enfriaron a una temperatura central
de 18-25ºC aproximadamente en bolsas rellenas con
agua helada. La aorta y la arteria pulmonar se ocluyeron utilizando
lazos corredizos metálicos para aislar el corazón de la
circulación. Las soluciones se inyectaron en la aorta en la
siguiente secuencia: solución cardioplégica del Hospital Sto.
Thomas, agentes permeabilizantes en solución cardioplégica, y
finalmente virus, Ad o AAV, con agentes permeabilizantes en
solución cardioplégica. El tiempo para el aislamiento del corazón
varió de 4 a 10 minutos antes de la liberación de los lazos
corredizos metálicos. El animal se resucitó y se devolvió a la
temperatura corporal normal.
Los animales se analizaron con respecto a la
especificidad de la transferencia génica, entre 4 y 6 días después
de ésta utilizando Ad, o de 5 semanas a 3 meses después de utilizar
AAV, empleando constructos informativos
(\beta-galactosidasa), o para la mejora en la
función cardíaca utilizando \delta-sarcoglicano,
formas dominantes negativas de PLB u otros genes estructurales o
funcionales. La expresión de la
\beta-galactosidasa se detectó a través de los
corazones de los hámsters normales (78,1 \pm 30,1% con Ad y 79
\pm 8% con AAV de los miocitos del ventrículo izquierdo por
unidad de área que expresen \beta-galactosidasa).
La expresión de \delta-sarcoglicano en los
hámsters BIO14.6 CM deficientes en
\delta-sarcoglicano, se restauró al 57,2 \pm
8,2% de aquélla en los hamsters "golden" normales, utilizando
el vector Ad, conjuntamente con una marcada mejoría de la expresión
de otros componentes del complejo DAGG. La transferencia de un gen
para una forma dominante negativa de la fosfolanban potenció la
contractibilidad en el corazón de los hamsters CM, suprimiendo la
insuficiencia cardíaca mediante la potenciación de la función de
SERCA2. El análisis histológico de las células cardíacas demostró
que fueron menos dañadas que las células de los hámster CM
emparejados por edades.
Estos datos demuestran que la invención resulta
útil para la transferencia de una secuencia codificante para ambos
tipos de proteínas, estructurales y reguladoras, a las células
cardíacas. Ambos vectores, Ad y AAV, pudieron mediar una
transferencia génica eficiente, y pueden utilizarse igualmente bien
en el procedimiento de la invención. La selección de un vector
viral dependerá del tamaño del gen que vaya a ser transferido y de
otras consideraciones bien conocidas para los expertos en la
materia. Por ejemplo, es conocido que diversos promotores funcionan
en el corazón, incluyendo los promotores del citomegalovirus (CMV) y
el virus del sarcoma de Rous (RSV). Estos promotores pueden
utilizarse con o sin los elementos potenciadores del virus. Además,
otros elementos, tal como un intrón 40 del virus simiano (SV), u
otra estructura intrónica artificial, puede insertarse para
aumentar la expresión génica. Experimentos utilizando hamsters
normales sin una función cardíaca comprometida incluyeron la
administración de una segunda dosis del virus, mientras que sólo una
dosis del virus se administró a hámsters BIO 14.6 para reducir la
cantidad de tiempo de hipotermia y de aislamiento del corazón de la
circulación. El número de partículas virales y el de dosis
administradas variarán dependiendo del estado del paciente, que
será evaluado por el experto en la materia.
La presente invención se comprenderá mejor a
partir de la siguiente descripción detallada, conjuntamente con las
figuras adjuntas, en las cuales los números de referencia similares
se refieren a partes similares y en las que:
Figura 1 A-C: Caracterización
del mutante de pseudofosforilación de la fosfolanban (S16EPLB).(A):
Alineación (comparativa entre) las especies del péptido de PLB de
52 aminoácidos, que está muy conservado. El sitio de fosforilación
en Ser 16 catalizado por la quinasa cAMP dependiente mutó como
Glu16.(B): Aumento regulado de la hemodinámica cardíaca
independiente de las catecolaminas en los ratones transgénicos
616EPLB. S16EPLB se situó detrás del promotor
\alpha-MHC del ratón de 5,5 kilobases (donación
del Dr.Jeffery Robbins, Universidad de Cincinnati), generándose los
ratones transgénicos en los antepasados CB6F1 mediante inyección
intranuclear. (En cuadros): el ritmo cardíaco (izquierdo), la
derivada máxima (central) y mínima (derecho) del cambio de la
presión LV con dosis crecientes de dobutamina, el agonista
\beta-adrenégico, se midieron en animales de
control (círculos abiertos, n=8), y animales
\alpha-MHC-S16EPLB (círculos
cerrados, n=8) tal como se ha descrito anteriormente (Palakodeti
et al, 1997). Media \pm SE, *P<0,05 (medida repetida de
ANOVA, seguida por el ensayo post hoc
Student-Newman-Keuls). (C): Rescate
de la disfunción cardimiopática de las células ventriculares MLPKO
mediante transferencia del gen AdenoS16EPLB. AdenoS16EPLB se inyectó
juntamente con AdenoEGFP en los neonatos ratones MLPKO de 0 a 3
días. Entre 4 y 6 semanas más tarde, se midieron las contracciones
únicas celulares de las células transgénicas positivas (S16E) y de
las células negativas (de control) de los ratones MLPKO, y de las
células transgénicas positivas de los ratones de tipo salvaje
inyectados con solo AdenoEGFP (normales). (Christensen et
al., 2000).
Figura 2 A-D: Efecto terapéutico
de rAAV/S16EPLB sobre la progresión de la disfunción de LV en los
hamsters BIO14.6 CM. (A,B): Medición ecocardiográfica de %FS (A) y
LVDd (B) antes, y 5 semanas y 3-6 meses después de
transferencia génica intra-coronaria (GT) sin
tratamiento viral (barras abiertas, n=10 durante 5 semanas y n=16
durante 3-6 meses), rAAV/LacZ (barras punteadas n=11
durante 5 semanas y n=11 durante 3-6 meses) y
rAAV/S16EPLB (barras rellenas, n=11 durante 5 semanas y n=13 durante
3-6 meses). Media \pm SE, *P<0,05 vs. LacZ,
#P<0,05 vs.sin virus. (medida repetida de ANOVA, seguida por el
ensayo post hoc
Student-Newman-Keuls).
(C,D):Contractibilidad del ventrículo izquierdo (max LV dP/dt) se
evaluó en el valor basal y en respuesta al aumento de las dosis de
la dobutamina a las 5 semanas (C) y 3 meses (D) después de la
transfección de rAAV/S16EPLB (círculos cerrados,n=6 durante 5
semanas y n=9 durante 3 meses), suministro de rAAV/LacZ (círculos
abiertos,n=7 durante 5 semanas y n=5 durante 3 meses) y hamster F1B
normal de control (triángulos cerrados, n=7 durante 5 semanas y n=6
durante 3 meses). Media \pm SE, *P< 0,05 S16EPLB vs. LacZ
(medida repetida de ANOVA, seguida por el ensayo post hoc
Student-Newman-Keuls). De los
procedimientos para el análisis funcional cardíaco de los hamsters
CM mediante ecocardiografía y la cateterización cardíaca se informó
anteriormente (Ryoke et al, 1999).
Figura 3: Rescate de la lesión progresiva de
células miocárdicas con fibrosis intersticial e interrupción de la
membrana en hamsters CM, mediante suministro
intra-coronario de rAAV/S16EPLB. El área lesionada
se cuantificó en los cortes sometidos a una tinción doble para la
aglutinina de germen de trigo y la distrofina, seguida por la
utilización del programa NIH de imagen. Los cortes (6 cortes
transparietales de cada animal, 3 animales por cada grupo) fueron
de LVs aisladas de animales después de 5 semanas y 3 meses con
suministro génico rAAV/LacZ y rAAV/S16EPLB. Al mismo análisis
lesional se sometieron hamsters normales (cepa F1B) de 5 semanas de
edad. Media \pm SE, *P< 0,05 S16EPLB vs.LacZ (medición
repetida de ANOVA, seguida por el ensayo post hoc
Student-Newman-Keuls).
\vskip1.000000\baselineskip
Es conocido que la eficacia de la transferencia
génica cardíaca en el corazón aislado se ve afectada por múltiples
parámetros, que incluyen el flujo coronario, el tiempo de
permanencia, la concentración vírica, la temperatura, la presencia
de hematíes en el perfundido coronario, y la permeabilidad vascular.
Para optimizar varios de estos factores, particularmente la
perfusión, el tiempo de permanencia y la permeabilidad vascular, se
indujo una hipotermia total del cuerpo conjuntamente con una parada
cardíaca, incluyéndose durante la inyección de las partículas
virales agentes permeabilizantes tales como histamina, substancia P
y serotonina. Este procedimiento dio lugar sistemáticamente a una
alta expresión del transgén en el corazón del hamster normal y
enfermo, restaurando el complejo de sarcoglicano en los corazones
de los hamster BIO14.6 CM.
La técnica hipotérmica se basa en la que se
utilizó para la cirugía cardiovascular neonatal humana que se llevó
a cabo en los años 1960, que permitió la parada cardíaca de hasta 1
hora (Mohri et al., 1969). Asimismo, se llevó a cabo con
éxito una hipotermia total del cuerpo en perros con parada cardíaca
durante por lo menos 45 minutos (Mohri et al.,1968). Esto
permite un gran aumento en el tiempo de permanencia del virus en el
corazón, aumentando la eficacia de la transducción. Los agentes
permeabilizantes aumentaron asimismo la eficacia de la
transducción. Las inyecciones de Ad sin agentes permeabilizantes
vasculares dieron lugar a una expresión transgénica limitada. La
histamina contribuyó a alcanzar una parada cardíaca completa,
presumiblemente mejorando la perfusión miocárdica. Sin embargo, el
efecto principal fue, sin duda, aumentar la permeabilidad vascular.
Se ha mostrado que el aumento a corto plazo en la permeabilidad
vascular producida por la histamina proviene de la comunicación
lagunar endotelial, un efecto que permite que las partículas virales
penetren en el espacio extravascular.
Aunque no forme parte de la presente invención,
se advirtió que la transferencia del gen del
\delta-sarcoglicano aumentó sorprendentemente la
expresión proteica de las otras proteínas sarcoglicano que se
encuntran en el DAGC, sugiriendo que el gen
\delta-sarcoglicano expresa una proteína que está
apropiadamente plegada y dirigida hacia su propia localización en
la célula. Esto demuestra que una transferencia de un gen que
codifica una proteína en las células cardíacas es factible y que
puede dar lugar a una corrección substancial de la deficacia de una
proteína mutante sarcolémica, puede acarrear implicaciones para el
tratamiento futuro de algunas formas de la DCM genética humana.
El procedimiento de transferencia génica de alta
eficacia se aplicó para rescatar la alteración del acoplamiento
excitación-contracción (E-C) y
defectos asociados en la realización de la contracción cardíaca que
se observa en los hámsters CM. La ablación de PLB rescató un
espectro de fenotipos que se encontraron en un modelo murino de
cardiomiopatía dilatada, en el que el ratón aloja una deficacia en
la proteína citoesquelética MLP (Minamisawa et al.,1999).
Se diseñó e insertó en un vector AAV un mutante dominante negativo
que interfería PLB, para determinar si la interrupción de la
actividad de PLB podría también rescatar una deficacia en el gen
\delta-sarcoglicano en el hamster CM. El PLB
dominante negativo contenía un ácido glutámico en lugar de una
serina en el aminoácido 16 (S16EPLB), por lo que el PLB ya no
podría ser fosforilado por una proteína dependiente del AMP
cíclico. Como control, se utilizó un vector
rAAV-LacZ. Los dos AAVs se transfirieron al
miocardio de hamsters BIO14.6 de 5-6 semanas de edad
mediante el procedimiento anterior, en el cual se había confirmado
mediante ecocardiografía un estadio medio de insuficiencia cardíaca.
Cinco semanas y 3-6 meses después del suministro
génico, se llevaron a cabo ecocardiografía y la medición de alta
fidelidad de la presión ventricular izquierda (LV), para evaluar la
función cardíaca in vivo. El tratamiento con la transferencia
del gen AAV-S16EPLB suprimió el fallo progresivo de
la contractibilidad cardíaca en estos animales, demostrando la
eficacia del procedimiento de transferencia génica para modificar
funcionalmente el estado de la bomba cardíaca.
(Antecedentes de la
invención)
Construcción de los vectores virales. Se
construyó un vector Ad de replicación deficiente (E1A y E1B
suprimidos), que contiene el gen
\beta-galactosidasa con una secuencia señal de
localización nuclear (Ad.CMV LacZ), o el gen
\delta-sarcoglicano
(Ad.CMV\delta-sarcoglicano) del hamster gobernado
por el promotor CMV. Los constructos virales se generaron
utilizando el vector lanzadera PACCMV.PLPA mediante el procedimiento
de Graham et al., 1995 (que se incorpora a la presente
memoria como referencia). Los vectores Ad generados mediante la
recombinación in vitro se amplificaron en 293 células. Las
células se recuperaron y se sometieron a tres ciclos de
congelación-descongelación para liberar las
partículas virales. Se purificaron los virus a través de dos
gradientes consecutivos de CsCl. Los títulos promedio de los virus
fueron de 1,27 x 10^{11} pfu/ml para Ad.CMV LacZ y de 5,5 x
10^{9} pfu/ml para Ad.CMV
\delta-sarcoglicano.
Los vectores AAV se basan en el tipo 2 de
parvovirus incompleto y no patogénico, y se construyeron
esencialmente tal como se ha descrito por Xiao et al. 1998
(que se incorpora a la presente memoria como referencia).
Brevemente, los tres constructos plasmídicos, un vector lanzadera,
un vector de empaquetamiento y un vector auxiliador
mini-adenovirus no infeccioso, se cotransfectaron a
293 células para generar partículas virales de replicación
deficiente. Las partículas virales AAV se recuperaron a partir de
dos gradientes secuenciales de CsCl o mediante un procedimiento de
columna de heparina en una sola etapa. El título promedio de los
virus fue de 1-3 x 10^{12} partículas virales
(VP)/ml para ambos AAV-LacZ y
AAV-S16EPLB.
(Antecedentes de la
invención)
Transducción in vivo. Se
anestesiaron unos hamsters con pentobarbitol sódico
(85 mg/kg, vía intraperitoneal), se intubaron y se ventilaron, se
situaron electrodos para ECG en las extremidades y se insertó un
catéter termistor 6F en el recto. El pecho se afeitó y en el segundo
espacio intercostal se llevó a cabo una pequeña toracotomía
anterior izquierda (4-5 mm); alrededor de la aorta
ascendente y la arteria pulmonar principal se dispusieron ligaduras
de seda, trenzadas, y se enhebraron a través de tubos plásticos de
oclusión. A través de una incisión media en el cuello, se expuso la
carótida derecha, se canuló con un tubo PE-60
moldeado a la llama, avanzando el extremo por la aorta ascendente,
justamente por encima de la válvula aórtica (por debajo del lazo
corredizo metálico) para la medición de la presión arterial y las
inyecciones posteriores de las partículas virales.
Las bolsas rellenas con el agua helada se
situaron alrededor del animal decúbito supino, incluyendo la cabeza,
controlando cada 3 minutos la frecuencia cardíaca y la temperatura,
hasta que la temperatura central alcanzó 18ºC (tiempo promedio 40
minutos) en el hamster normal. Se ocluyeron a continuación la aorta
y la arteria pulmonar, inyectándose las soluciones en la aorta de
la siguiente forma: solución cardioplégica modificada del Hospital
Sto. Tomás (20 mM KCl, 2 \mul/g peso corporal(BW), 10
segundos más tarde, 20 mM histamina (2,5 \mul/g BW), disueltos en
solución cardioplégica; 5 minutos más tarde, solución de virus (100
\mul) con histamina y solución cardioplégica; 2 minutos más
tarde, una segunda inyección de virus con histamina, en hamsters
normales. Debido a la disminución de la función basal en los
hamsters CM, se llevó a cabo sólo una inyección. Ambos lazos
corredizos metálicos se liberaron (después de, aproximadamente, un
período de tiempo de oclusión de 10 minutos para los hamsters
normales y de 6 minutos para los hamsters CM), iniciándose entonces
una infusión intra-aórtica de dobutamina (10
\mug/kg/min) con compresión periódica del pecho. La recuperación
del ritmo sinusal y de la presión tuvo lugar aproximadamente en
1-2 minutos después del comienzo de la dobutamina.
Cuando la presión arterial sistólica alcanzó alrededor de 50 mmHg,
el animal se situó en un cojín de calentamiento (42ºC),
calentándose gradualmente hasta 36ºC. El pecho se cerró a
continuación y se succionó, evacuándose, el aire intratorácico,
dejando que los animales se recuperaran.
En los experimentos posteriores, se mostró que
la hipotermia moderada (24-26ºC) y el tiempo más
corto de oclusión aórtica (4-5 minutos) dio lugar a
sólo una pérdida moderada de la eficacia transfeccional (67,5%, no
significativa a partir de las eficacias del 77,3% utilizando el
protocolo inicial).
(Antecedentes de la
invención)
El procedimiento de transducción que utiliza
un gen informador no altera la función cardíaca. Mediante
ecocardiografía (ECG) se estudiaron hamsters normales (n=10) a los 4
días después de la administración de Ad.CMV LacZ. El porcentaje de
acortamiento fraccional (%FS) del ventrículo izquierdo fue del 43,88
\pm 5,45%, indicador de una función normal y la dimensión
diastólica final del ventrículo izquierdo (LVDd) fue de 4,38 \pm
0,22 mm, indicador de un tamaño normal del corazón. En un grupo de
hamsters normales no tratados emparejados por la edad, el % FS fue
de 46,83 \pm 2,43 y la LVDd fue de 4,12 \pm 0,3 mm (no
significativamente diferentes). En los hamsters CM, se examinaron
algunos animales mediante ecocardiografia, tanto antes como 6 días
después de la administración de Ad.CMV LacZ. La función ventricular
izquierda se deprimió en los hamsters CM de control con respecto a
los hamsters de tipo salvaje, tal como se espera (% FS 27,77 \pm
3,17%, LVDd 5,44 \pm 0,25 mm) y algo más deprimida 6 días después
(%FS 23,59 \pm 4,93%, LVDd 5,60 \pm 0,37mm, ambos
p<0,05).
(Antecedentes de la
invención)
Expresión de\beta-galactosidasa
y\delta-sarcoglicano en hamsters BIO14.6 utilizando un
vector Ad. En los corazones de hamsters CM transducidos con
Ad.CMV LacZ, se dio una eficacia de transferencia génica similar a
la obtenida en los hamsters normales. Se observó que existía una
tendencia a la tinción positiva del ventrículo izquierdo superior a
la del ventrículo derecho, siendo la transducción algo menos
homogénea que en los corazones normales. En los corazones
transducidos con Ad.CMV \delta-sarcoglicano, la
expresión de la proteína \delta-sarcoglicano
promedió 57,2 \pm 8,2% de la (obtenida) en el corazón normal, tal
como se determinó mediante transferencia Western. Los aumentos en
el \alpha- y \beta-sarcoglicano fueron incluso
más intensos que el aumento que se apreció en el
\delta-sarcoglicano. En los corazones CM, tanto
transducidos con LacZ como no transducidos, no se detectó la
expresión del \delta-sarcoglicano y la expresión
de las proteínas \alpha- y \beta-sarcoglicano
fue muy baja. De este modo, existió una restauración exitosa del
complejo del sarcoglicano en los corazones de los hamsters
BIO14.6.
En otros experimentos, en las semanas 1 y 3
después de la transferencia génica Ad.CMV
\delta-sarcoglicano, se demostró, mediante
inmunotinción, una restauración clara y difusa del
\delta-sarcoglicano (y de otros sarcoglicanos) al
sarcolema y a los túbulos-t.
(Antecedentes de la
invención)
Expresión de
\beta-galactosidasa en hamsters utilizando un
vector AAV. Se administraron 1 x 10^{12} partículas
víricas/kgBW AAV-LacZ a hamsters normales y hamsters
BIO14.6 CM,mediante el procedimiento de la invención. Se analizó la
expresión de LacZ 4-6 semanas y 3-6
meses después de la administración del virus. Se apreció la
expresión homogénea de LacZ a través del ventrículo izquierdo, con
una transducción de más del 60% de los miocitos. Contrariamente a
esto, no se observó una tinción significativa de LacZ en otros
órganos importantes, que incluían pulmones, hígado, bazo, riñones,
aorta, esófago, glándulas sexuales y músculo esquelético.
La expresión de la fosfolanban dominante
negativa interrumpe la función de la proteína de tipo salvaje.
El fosfolanban es un péptido de 52 aminoácidos altamente conservado
con dos sitios diferentes de fosforilación: Ser16 (quinasa
dependiente del AMP cíclico: proteínquinasa A) y Thr17 (quinasa
dependiente de la Ca^{2+}-calmodulina). Los
efectos lusitrópicos e inotrópicos in vivo de los agonistas
\beta-adrenérgicos están regulados principalmente
por la fosforilación de Ser16 de PLB mediante la proteín quinasa A y
la defosforilación, mediada primariamente por la fosfatasa tipo 1
unida al retículo sarcoplásmico (SR). Ya que se ha mostrado que la
fosforilación mediante la proteina quinasa A alivia la inhibición
de SERCA2 mediante la disociación de la acción inhibitoria de PLB,
generamos un mutante PLB pseudofosforilado reemplazando Ser16 con al
aminoácido básico glutamina, introduciendo por lo tanto una carga
negativa en posición 16 (S16EPLB) (Figura 1A). Para ensayar
directamente la capacidad de S16EPLB para activar un efecto
inotrópico en células cardíacas individuales, se utiliza un
protocolo in vivo de suministro del vector adenovírico. La
expresión del S16EPLB condujo a la activación constitutiva de la
contractibilidad y de la relajación en las células ventriculares del
ratón de tipo salvaje en ausencia de catecolaminas. Para examinar
si S16E podría tener un efecto similar en el corazón intacto in
vivo, se generan ratones transgénicos que albergaran un gen
S16EPLB gobernado por un promotor a-MHC. El análisis
de transferencia de ARN reveló una sobreexpresión de 5 veces
aproximadamente del transgen S16E con respecto a los niveles de
PLB. Estos ratones transgénicos no mostraban evidencias de defectos
morfogénicos, hipertrofia, o cardiomiopatía, pero desplegaron un
aumento basal en la contractibilidad cardíaca en ausencia de la
estimulación catecolamínica, que era similar cualitativamente al
fenotipo cardíaco de los ratones nulos en cuanto al fosfolanban
(Figura 1 B). A continuación, se transfieren AdenoS16EPLB a células
cardíacas neonatales deficientes en MLP. La contractibilidad
marcadamente deprimida y las propiedades relajantes que se
encontraron en células MLPKO aisladas, se rescató parcialmente
mediante S16EPLB a las 4-6 semanas después de la
transferencia génica neonatal (Figura 1C).
Potenciación de la contractibilidad cardíaca
mediante la administración de un fosfolanban dominante negativo.
Para comparar directamente los efectos terapéuticos potenciales del
vector adenovírico recombinante con respecto a la expresión mediada
por AAV de S16E, se generan los vectores AAV-S16EPLB
y AAV-LacZ (Xiao et al.,1998), y examinamos
sus efectos respectivos sobre la progresión de la insuficiencia
cardíaca en los hamsters BIO14.6 CM (de 5-34
semanas de edad).A las 5-6 semanas de edad, los
hamsters CM muestran una clara evidencia de disfunción cardíaca,
con una disminución significativa en el acortamiento fraccional (%
FS), evaluado mediante ecocardiografía (hamster normal 47,0 \pm
6,7., n=15 vs. hamster CM 39,6 \pm 7,2, n=14,P= 0,006). En las
siguientes 28 semanas, los hamsters CM desarrollaron rápidamente
una insuficiencia cardíaca que es comparable al tipo III de NYHA
(New York Heart Association), caracterizada por una ecocardiografía
con una marcada disminución en % FS (a las 18 semanas de edad, el
hamster normal 44,0 \pm 4,9, n=14,vs. hamster CM 24,1 \pm 4,3,
n=10, P<0,001) y dilatación de la cavidad, indicada por un
aumento dimensional al final de la diástole de la cavidad del
ventrículo izquierdo (LVDd)(a las 18 semanas de edad, el hamster
normal 4,46 \pm 0,37, n= 14, vs. hamster CM 5,28 \pm 0,41,
n=10, P <0,001). La administración
intra-coronaria del AdenoS16EPLB potenció
significativamente la contractibilidad cardíaca, indicado por un
aumento del 33% aproximadamente en la velocidad media del
acortamiento de las fibras circunferenciales (mVcf) 6 días después
de la transfección, mientras que Ad-LacZ no dio
lugar a un efecto significativo. La reducción de LVDd se produjo
también en los animales transfectados con AdenoS16PLB (6% de
disminución, p<0,05 vs. medición preoperativa), mientras que los
animales a los que se inyectó con Ad-LacZ mostraron
un ligero agrandamiento posterior en la cavidad LV, documentando de
esta forma la eficacia a corto plazo de la inhibición de PLB.
Asimismo, se evaluó la eficacia terapeútica a
largo plazo del suministro intracoronario de
rAAV-S16EPLB en los hamsters CM. La ecocardiografía
demostró que la transferencia génica rAAV/S16EPLB suprimió
intensamente la afectación progresiva de la contracción cardíaca y
la dilatación de la cavidad que se encontró en los hamsters CM
cinco semanas después de la transferencia génica (Figura 2A,B). Las
derivadas primeras máximas de la presión (LV) del ventrículo
izquierdo, LV max dP/dt, revirtieron ampliamente hacia los niveles
de los hamsters normales, mediante el tratamiento con rAAV/S16EPLB
a nivel básico, así como en respuesta al incremento de las dosis
del agonista \beta-adrenérgico dobutamina (Figura
2C). Este efecto de AAV-S16EPLB para mitigar el
desarrollo de la insuficiencia cardíaca fue evidente más adelante,
a los 3-6 meses de la transferencia génica, con una
mejoría substancial en %FS (animales AAV-S16EPLB,
25,9 \pm 5,7., n=13 vs. animales AAV-LacZ 20,2
\pm 6,2, n=11, P<0,05) (Figura 3A), y mVcf(animales
AAV-S16EPLB 3,4 \pm 0,7., n=13 vs. animales
AAV-lacZ 2,7\pm 0,7, n=11, P<0,05). La
medición de alta fidelidad de la presión del ventrículo izquierdo
documentó directamente que el suministro mediado por AAV del
mutante PLB de pseudofosforilación, mantuvo el efecto rescate sobre
la contractibilidad cardíaca durante 3 meses después del suministro
génico (Figura 2D), exhibiendo un aumento superior al 50% de LV max
dP/dt en los animales a los que se transfirió S16EPLB, comparados
con los controles LacZ. La expresión persistente del péptido S16E
se evidenció mediante análisis de inmunotransferencia con
anticuerpos anti-PLB y anti-fosfo
16-PLB (péptido S16EPLB vs. PLB
endógeno=1,5-5:1,n=6),y la transferencia southern
sugirió que el gen de fusión CMV-S16EPLB está, por
lo menos, parcialmente integrado en el genoma del huésped, lo que
sugiere que la expresión puede verdaderamente ser a largo plazo.
Considerados en conjunto, estos datos proporcionan una evidencia
directa de que la inhibición de PLB puede llevar a la reversión
crónica de la insuficiencia cardíaca, utilizando una nueva
estrategia terapéutica génica mediada por AAV, incluso en los
estadios de la enfermedad que corresponden a insuficiencia cardíaca
humana grave (que se encuentra) próxima a los estadios finales
(último NYHA tipo III).
La expresión de un fosfolanban dominante
negativo disminuye el daño en las células cardíacas
insuficientes. Estudios experimentales y clínicos previos
documentaron que los aumentos crónicos en la contractibilidad
mediada por los agonistas \beta-adrenérgicos o
los inhibidores de la fosfodiesterasa pueden conducir a la rápida
progresión de la disfunción cardíaca en la insuficiencia cardíaca
crónica. Además, la administración de
\beta-bloqueantes puede mejorar la supervivencia
y la progresión de la insuficiencia cardíaca clínica. Los mecanismos
que subyacen a este efecto perjudicial a larzo plazo se han
atribuido a la toxicidad catecolamínica, y han aumentado la duda
respecto a si la estimulación crónica del funcionamiento cardíaco
mediante las catecolaminas gobierna inherentemente la progresión de
la insuficiencia cardíaca. Utilizando un nuevo sistema AAV
intracoronario para suministrar un mutante PLB pseudofosforilado
que activa constitutivamente la contractibilidad cardíaca en
ausencia de la estimulación de cAMP, se ha mostrado que los aumentos
crónicos en la contractibilidad cardíaca pueden conducir a una
reversión a largo plazo de la disfunción cardíaca y a un marcado
efecto sobre la progresión de la insuficiencia cardíaca. En este
estudio, se proporcionan pruebas que sugieren que uno de los
mecanismos para los efectos terapéuticos sostenidos del suministro
génico de AAV-S16EPLB en el sistema de modelo del
hamster CM, se refiere a un efecto sobre el enlentecimiento de la
tasa de muerte de las células miocíticas, que subyace a la
progresión de la insuficiencia cardíaca en este modelo. El análisis
histológico a las 5 semanas después de la transferencia génica
reveló que la fibrosis instersticial cardíaca, que es progresiva en
la cardiomiopatía humana, fue regulada por disminución para un
extenso período de tiempo mediante el suministro génico
AAV-S16EPLB, y que el grado de lesión celular,
evaluado por la estabilidad del complejo de la distrofina,
disminuyó significativamente en los animales tratados con el
rAAV/S16EPLB (Figura 3).
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Claims (4)
1. Utilización de un vector vírico que contiene
un polinucleótido que codifica el mutante S16E PLB dominante
negativo de fosfolanban (PLB), que presenta una mutación de serina a
ácido glutámico en el aminoácido 16, cuando se compara con la
molécula de tipo salvaje, en la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento de las enfermedades cardíacas.
2. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el vector vírico comprende asimismo un promotor apto para su
utilización en el músculo cardíaco.
3. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el vector vírico es un vector vírico
adeno-asociado (AAV).
4. Utilización según la reivindicación 1, que
comprende asimismo la utilización de un gen que codifica un gen
CA2+ATPasa del retículo sarcoplásmico (SERCA-2),
para la preparación de un medicamento que combine dicho vector
codificante de SERCA-2 con el vector vírico que
codifica el mutante S16E PLB.
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