ES2295027T3 - Factores neurotroficos en el tratamiento de disfunciones de los nervios perifericos del area pelvica. - Google Patents

Factores neurotroficos en el tratamiento de disfunciones de los nervios perifericos del area pelvica. Download PDF

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Abstract

Utilización de un factor neurotrófico, que es una neurturina (NTN), un factor neurotrófico derivado de células gliales (GDNF), o variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora, solos o en cualquier combinación, o secuencias de nucleótidos que codifican dichos factores neurotróficos para la fabricación de un producto médico para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.

Description

Factores neurotróficos en el tratamiento de disfunciones de los nervios periféricos del área pélvica.
La presente invención se refiere a la utilización de factores neurotróficos para la fabricación de productos médicos para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
Antecedentes de la invención
La erección es predominantemente un fenómeno vascular mediado por nervios. Los nervios pélvicos parasimpáticos tienen una importancia primordial en la relajación del músculo liso requerida para la tumescencia del pene, aunque los nervios hipogástricos simpáticos también pueden desempeñar algún papel. En el hombre, los nervios parasimpáticos que inervan el pene salen de la médula espinal sacra y aportan la entrada a células ganglionares en el plexo pélvico. El plexo pélvico es una asociación de neuronas simpáticas y parasimpáticas implicadas en funciones eliminatorias y reproductivas (Dail, 1996). Las neuronas inductoras de la erección del ganglio pélvico mayor (MPG) envían axones a través de los nervios cavernosos para inervar los vasos sanguíneos y el tejido eréctil del pene (Dail, 1996; Quinlan, 1989). Recientemente, en varios mamíferos se ha establecido bien el papel fundamental del óxido nítrico (NO), que actúa como neurotransmisor en los nervios que inervan las arterias del pene y el músculo liso cavernoso (Andersson, 1995). Se difunde dentro del músculo liso, aumenta la síntesis de GMPc y disminuye el Ca^{2+} citosólico, induciendo de este modo la relajación (Buj-Bello, 1995). La erección del pene normal en el hombre depende de una inervación intacta, del suministro adecuado de sangre y de un tejido eréctil sano (Andersson, 1995). Por consiguiente, la interrupción de las vías neuronales o los trastornos que afectan la unión neuromuscular es probable que produzca la disfunción eréctil (Batra, 1991).
A pesar del progreso en las técnicas quirúrgicas la impotencia neurogénica todavía es un efecto secundario no deseado pero que a menudo se encuentra en la cirugía prostática, vesical o rectal (Walsh, 1982). También es un síntoma común en neuropatías autónomas y sensoriales, por ejemplo, en hombres diabéticos (Eardley, 1991). Clínicamente, existe una necesidad de descubrir moléculas que mantengan la supervivencia y aumenten la regeneración de los nervios del pene.
Recientemente se describió que la hormona del crecimiento mejora la regeneración de ciertos nervios del pene en ratas (Jung, 1998). Se sugiere que el efecto está mediado por el factor del crecimiento I similar a la insulina (IGF-I), que es un factor neurotrófico potente para muchas poblaciones neuronales en el sistema nervioso central y periférico (Ishii, 1993). También se ha pensado que el factor del crecimiento del fibroblasto básico (FGF-2) desempeña un papel en la fisiología de la erección del pene (Te, 1994). Se ha sugerido la utilización terapéutica de proteínas neurotróficas o sus miméticas de molécula pequeña como remedios potenciales en diversas enfermedades y agresiones del sistema nervioso central (Hefti, 1997, Skaper, 1998). Sin embargo, para hacer posible una utilización exitosa de las mencionadas moléculas en la impotencia neurogénica, se requiere más conocimiento sobre los factores fisiológicos que regulan el mantenimiento y la regeneración de las neuronas del pene.
Mientras estudiaban el GDNF y la expresión del ARNm de sus receptores en ratas, los presentes inventores obtuvieron resultados que indicaban que GDNF y sus receptores pueden desempeñar un papel en la inervación del pene de rata. Alentados por estas observaciones, los presentes inventores continuaron sus programas de investigación y fueron capaces de encontrar una utilidad mucho más amplia de los factores neurotróficos. De hecho, se dio a conocer una solución para algunos de los problemas discutidos anteriormente, es decir, un tratamiento para las disfunciones de los nervios periféricos del área pélvica, entre las que se incluyen las disfunciones eréctiles, aunque no quedan restringidas a las mismas, en base a las mencionadas observaciones preliminares.
Características de la invención
Los aspectos característicos de la presente invención son tal como que se definen en las reivindicaciones.
Descripción breve de los dibujos
La figura 1 representa la expresión del ARNm de NTN en el cuerpo esponjoso del pene.
La figura 2 representa la expresión de los ARNm para los componentes del receptor de NTN en el MPG.
La figura 3 representa el análisis por transferencia Northern de la expresión del ARNm de NTN en órganos pélvicos de rata adulta.
La figura 4 representa el transporte axonal retrógrado de ^{125}I-NTN desde el cuerpo esponjoso del pene hasta el MPG y el DRG.
La figura 5 representa los niveles de ARNm de NTN en pene de rata adulta después de la axotomía del nervio cavernoso bilateral (ax) o en una operación simulada.
La figura 6 representa la histoquímica de la NADPH diaforasa en penes de ratones GFR\alpha2^{-/-} y de tipo salvaje.
La figura 7 representa la expresión del ARNm de GDNF en el cuerpo esponjoso del pene.
La figura 8 representa el análisis por transferencia Northern de la expresión del ARNm de GDNF en órganos pélvicos de rata adulta.
La figura 9 representa la cuantificación y especificidad del transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF dentro del MPG y de diferentes DRGs de rata adulta.
La figura 10 representa el transporte axonal retrógrado de ^{125}I-GDNF desde el cuerpo esponjoso del pene hasta el MPG y el DRG.
La figura 11 representa el crecimiento de neuritas en un ganglio trigeminal de ratón en el día 13 embrionario, después de 3 días en gel de colágeno.
La figura 12 representa la expresión de los ARNm de GFR\alpha3 y Ret en el MPG de rata adulta y del ARNm de GFR\alpha3 en el DRG S1.
La figura 13 representa la preparación de ARN y la hibridación Northern de la expresión del ARNm de NGF, BDNF y NT-3 en órganos pélvicos de rata adulta.
La figura 14 representa la cuantificación y especificidad del transporte retrógrado de ^{125}I-NGF, ^{125}I-BDNF, ^{125}I-NT-3 dentro del MPG de rata adulta y de diferentes DRGs.
Los dibujos se analizan con detalle al final de la Descripción General de la presente Invención.
Descripción detallada de la invención Referencias
A lo largo de la presente solicitud se hace referencia a varias publicaciones, muchas en paréntesis incluyen el apellido del primer autor con el año de la publicación. Las citas completas de estas publicaciones se facilitan al final de la Descripción General de la Invención.
Definiciones
En la presente invención los términos utilizados tienen el significado que generalmente tienen en los campos de la bioquímica, farmacología, tecnología del ADN recombinante, que incluye la producción de animales transgénicos, pero algunos términos se utilizan con un significado más amplio o que de algún modo se desvía del contexto normal. Por consiguiente, a efectos de evitar la incertidumbre provocada por términos con un significado poco claro, algunos de los términos utilizados en la presente descripción y en las reivindicaciones se definen con más detalle a continuación.
El término "factores neurotróficos" comprende el factor neurotrófico derivado de la línea celular glial (GDNF), compuestos relacionados con la familia o neurotrofinas (NTFs), sus receptores, así como sus sustancias de unión. También se incluyen en la definición las secuencias de nucleótidos que codifican dichos factores. Los compuestos relacionados con la familia del GDNF comprenden la neurturina (NTN), el factor neurotrófico derivado de células gliales (GDNF), la artemina (ARTN) y/o la persefina (PSPN). Las neurotrofinas (NTFs) comprenden el factor nervioso (NGF), el factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF), la neurotrofina-3 (NT-3) y/o la neurotrofina 4/5 (NT-4/5).
Los "factores neurotróficos" también incluyen las variantes sustituidas de forma conservadora o los derivados que tienen sustancialmente el mismo efecto que dichos factores neurotróficos sobre sus receptores o correceptores. Los receptores o correceptores comprenden la tirosina quinasa Ret y el receptor de la familia del GDNF \alpha:s (GFR\alphas) y los receptores proteína tirosina quinasa trk (trkA-C) así como el receptor p75.
Las "neurotrofinas (NTFs)" son proteínas que regulan la diferenciación neuronal, la maduración y la supervivencia. Las NTFs son el factor nervioso (NGF), el factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF), la neurotrofina-3 (NT-3), la neurotrofina 4/5 (NT-4/5) (Davies, 1994; Sariola y otros, 1994). Las NTFs se unen específicamente a receptores proteína tirosina quinasa trk y los activan (Barbacid, 1995). De este modo, el NGF activa trkA, el BDNF y la NT-4/5 activan trkB, y la NT-3 es un ligando de trkC, pero también de trkA y trkB, aunque menos eficazmente. Además de las formas catalíticas de longitud completa de los receptores trk, también existen algunas isoformas de trk obtenidas alternativamente por corte y empalme ("spliced"). El ARNm de la trkB catalítica de longitud completa (trkB.TK+) se corta y empalma alternativamente en dos isoformas truncadas (trkB.T1 y trkB.TS). También se describen cuatro formas truncadas de la trkC, además de otras isoformas con insertos en el dominio tirosina quinasa.
El término "derivados o variantes" significa compuestos que actúan como los dos grupos principales de "factores neurotróficos" de la presente invención sobre las señales de transmisión de sus respectivos receptores. Entre los "derivados o variantes" se incluyen polipéptidos "sustancialmente homólogos" a nivel de aminoácido que tienen una semejanza o identidad significativa, como mínimo, del 80%, preferentemente del 85%, la más preferente superior al 90%, con formas humanas de dichos factores neurotróficos.
El término "factores neurotróficos y variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora" comprende polipéptidos que tienen la estructura, propiedades y funciones características de los "factores neurotróficos" definidos anteriormente. De este modo, el término "factores neurotróficos y variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora" incluye los factores neurotróficos mencionados anteriormente, en los que se sustituyen uno o más residuos de aminoácidos por otro residuo de aminoácido. También se incluyen en el término las formas truncadas, complejadas o sustituidas químicamente de dichos factores neurotróficos. Entre las formas sustituidas químicamente se incluyen, por ejemplo, las formas alquiladas, esterificadas, eterificadas o amidizadas con un grado de sustitución bajo, especialmente utilizando moléculas pequeñas como sustituyentes, tales como metilo o etilo, siempre que las sustituciones no alteren las propiedades y funciones de los factores neurotróficos. Las variantes truncadas, complejadas y/o sustituidas de dichos polipéptidos se pueden producir mediante técnicas sintéticas o semisintéticas, que incluyen las enzimáticas y del ADN recombinante. El único prerrequisito adicional es que las variantes sean todavía sustancialmente homólogas a los factores neurotróficos mencionados, y tengan las propiedades y/o expresen las funciones características de los mismos.
El término "factores neurotróficos y variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora" abarca todas las variantes posibles obtenidas por corte y empalme de los "factores neurotróficos" definidos anteriormente. Los "factores neurotróficos" pueden existir en diferentes isoformas. El término "isoforma" se refiere a las diferentes formas de la misma proteína, que se originan a partir de diferentes procedencias, por ejemplo, tejidos. Las isoformas de una proteína o un polipéptido se pueden expresar mediante genes alélicos presentes en diferentes tejidos en diferentes especies, por ejemplo, en especies de mamíferos de origen humano o murino. En la presente invención, el término incluye fragmentos, complejos y sus variantes. Las isoformas de los factores neurotróficos se pueden generar mediante la escisión de la proproteína. Existen diferentes reacciones, entre las que se incluyen diferentes reacciones enzimáticas y no enzimáticas, proteolíticas y no proteolíticas, que son capaces de crear formas truncadas, derivadas y complejadas de los factores neurotróficos y sus variantes conservadas.
Preferentemente, todos los "factores neurotróficos y sus variantes conservadas" deberían ser reconocibles cuando se utilizan sustancias de unión capaces de reconocer y de unirse específicamente a factores neurotróficos naturales de mamífero, entre los que se incluyen los humanos y murinos, o como mínimo a una parte específica de dichos factores. Tales sustancias de unión son, por ejemplo, anticuerpos o ligandos que reconocen o se unen específicamente a los factores neurotróficos, receptores de los factores neurotróficos entre los que se incluyen los GFR\alpha:s (GFR\alpha1-4), los receptores proteína tirosina quinasa trk (trkA, trkB, trkC) u otras proteínas o péptidos de unión, que comprenden partes específicas de los mencionados GFR\alpha:s, pero sobre todo se hace referencia a anticuerpos capaces de reconocer específicamente, como mínimo, un factor neurotrófico solo o en cualquier combinación. Entre los anticuerpos se incluyen anticuerpos policlonales y/o monoclonales, así como fragmentos o derivados de los mismos. Preferentemente, las mencionadas sustancias de unión deberían reconocer y unirse a epítopos o sitios activos específicos de los factores neurotróficos.
Las sustancias de unión también comprenden moléculas pequeñas capaces de unirse específicamente a los "factores neurotróficos" o a sus respectivos "receptores". Las "sustancias de unión" se pueden producir mediante dominios específicos de dichos "factores neurotróficos", sus isómeros, y sus fragmentos, receptores, derivados, variantes y complejos, así como receptores con el prerrequisito de que sean capaces de funcionar en las respectivas vías de señalización.
Los "factores neurotróficos" actúan como antígenos y se encuentran como tales o como composiciones capaces de provocar una respuesta de anticuerpos específica al "factor neurotrófico o variante conservada del mismo" respectivo. Dichos anticuerpos se pueden producir mediante técnicas convencionales para la producción de anticuerpos policlonales, así como de anticuerpos monoclonales. Entre los métodos para la preparación de anticuerpos monoclonales se incluyen las técnicas de hibridoma. Se pueden desarrollar fragmentos de anticuerpos o de otras proteínas de unión como péptidos de unión específicos mediante técnicas de expresión en fagos ("phage display") y se pueden producir mediante técnicas del ADN recombinante. Todos los métodos son bien conocidos por los especialistas de la técnica y se describen en manuales de laboratorio.
En la presente invención el término "secuencia de ácidos nucleicos" significa cualquier secuencia de nucleótidos aislada y purificada o fragmento de la misma que codifica "factores neurotróficos" o "secuencias de ácidos nucleicos" con semejanza sustancial, preferentemente a las de mamífero, especialmente de origen humano, cuyas secuencias de nucleótidos son capaces de codificar los factores neurotróficos de la presente invención. Las "secuencias de ácidos nucleicos" de la presente invención codifican los "factores neurotróficos" de las reivindicaciones y se pueden utilizar como tales que se pueden introducir en células huésped adecuadas u organismos huésped para proporcionar métodos in vitro para la producción de proteínas de factores neurotróficos o para la utilización in vivo en el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
Las "secuencias de ácidos nucleicos" de la presente invención no se encuentran en su estado natural pero se aíslan y purifican, preferentemente, a partir de su entorno natural como los ARNm expresados de forma transitoria a partir de tejidos adecuados. Posteriormente, los ARNm se purifican y multiplican in vitro a efectos de proporcionar nuevas copias por medios técnicos, las cuales son capaces de codificar dichos factores neurotróficos, derivados o variantes de los mismos.
\newpage
En el presente contexto el término "ADNc" significa una secuencia de ADN que se puede obtener mediante traducción inversa de ARNm traducido a partir de la secuencia de ADN genómico. También son útiles secuencias de nucleótidos antisentido en algunas aplicaciones de la presente invención.
El término "tecnología antisentido" significa lo contrario al hecho de que el mensaje de ARN esté en el sentido correcto. "En sentido" significa que cuando una copia de la cadena a del ADN se transcribe, se conserva la secuencia de bases en el ADN, con la excepción de que la secuencia es exactamente complementaria al código original. El ARNm, que ahora contiene instrucciones del ADN en su propio lenguaje, se traduce, a continuación, a un polipéptido. Si se realiza correctamente, el mensaje se dice que se encuentra en el sentido correcto. Sin embargo, si se encuentra presente un ARN exactamente complementario (es decir, antisentido) para combinarse con el ARN sentido, el mensaje del ARN sentido se anula.
Para hacer un complemento de ARN, se puede producir un mensaje antisentido a partir de la "otra cadena del ADN" e introducir en una célula o se puede transcribir por la célula después de la introducción de un gen antisentido. Cuando el ARN sentido se empareja o hibrida con su ARN antisentido no se puede combinar con un ribosoma y se inactiva. De este modo, el gen original se bloquea por su propio ARN antisentido sin que otros genes queden afectados. La tecnología antisentido se incluye como medio para la modulación y modificación del soporte trófico de los nervios.
El término "secuencia de ácidos nucleicos que codifica factores neurotróficos" significa secuencias de ácidos nucleicos que codifican el factor neurotrófico derivado de la línea celular glial (GDNF), compuestos relacionados con la familia o neurotrofinas (NTFs), sus receptores, así como sus sustancias de unión. También se incluyen en la definición las secuencias de nucleótidos que codifican dichos factores. Los compuestos relacionados con la familia del GDNF comprenden la neurturina (NTN), el factor neurotrófico derivado de células gliales (GDNF), la artemina (ARTN) y/o la persefina (PSPN). Las neurotrofinas (NTFs) comprenden el factor nervioso (NGF), el factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF), la neurotrofina-3 (NT-3) y/o la neurotrofina 4/5 (NT-4/5), así como "secuencias de ácidos nucleicos sustancialmente idénticas o similares". Dichas "secuencias de nucleótidos" o sus secuencias complementarias o secuencias que comprenden partes de las mismas, por ejemplo, fragmentos truncados en el extremo 3'-terminal o 5'-terminal, así como aquellas secuencias de nucleótidos que contienen mutaciones puntuales, son especialmente útiles como sondas o cebadores para la preparación de construcciones de ADN para la fabricación de células o líneas celulares que contengan dichas secuencias de ácidos nucleicos.
Sin embargo, para los expertos en la técnica está claro que se pueden preparar otras secuencias de ácidos nucleicos capaces de codificar factores neurotróficos y útiles para su producción. Las secuencias de ácidos nucleicos que codifican factores neurotróficos deberían ser capaces de hibridarse en condiciones astringentes (Sambrook, J. y otros, "Clonación Molecular: Un Manual de Laboratorio" ("Molecular Cloning: A Laboratory Manual"), Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory, 1989).
Las "secuencias de ácidos nucleicos" de la presente invención deberían tener una "semejanza sustancial" con las secuencias que codifican los factores neurotróficos definidos anteriormente. "Semejanza sustancial" en este contexto significa que las secuencias de nucleótidos cumplen los prerrequisitos definidos anteriormente y tienen una semejanza significativa, es decir, una identidad de secuencia, como mínimo del 60%, preferentemente del 70%, la más preferente, superior al 80%, con dichas secuencias. Este es también un criterio adecuado para la definición de variantes sustituidas de forma conservadora. Debería tenerse en cuenta la degeneración del codón.
El término "secuencias de ácidos nucleicos que codifican factores neurotróficos" incluye sus formas truncadas o complejadas, así como mutaciones puntuales de dichas secuencias de ácidos nucleicos siempre que sean capaces de codificar secuencias de aminoácidos que tengan las características estructurales esenciales, así como las propiedades y/o funciones de dichos factores neurotróficos. Los ácidos nucleicos son útiles como tales o insertados en vectores de transformación o expresión o huéspedes, siendo dichas "secuencias de ácidos nucleicos" capaces de codificar y expresar dichos "factores neurotróficos", los cuales son reconocibles por "sustancias de unión" que reconocen específicamente dichos "factores neurotróficos".
El término "factores neurotróficos" incluye también, además de los polipéptidos o proteínas, "secuencias de ácidos nucleicos" que codifican "factores neurotróficos y variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora".
El término "composición" o "producto médico" significa los ingredientes activos combinados, como mínimo, con un agente auxiliar farmacéuticamente aceptable, que es compatible con el ingrediente activo y la vía de administración. Entre los agentes auxiliares se incluyen transportadores líquidos o sólidos, así como otros aditivos líquidos o sólidos. Las composiciones se pueden incluir en un recipiente, envase o dispensador junto con una aguja de inyección e instrucciones para la utilización. Las secuencias de ácidos nucleicos de la presente invención son administrables en terapia génica mediante la introducción de secuencias de nucleótidos con células, vectores adecuados o mediante otros sistemas de liberación conocidos per se.
La respuesta provocada por los factores neurotróficos puede variar. La expresión del receptor y el transporte retrógrado de neurturina, GDNF, persefina artemina y/o neurotrofinas en nervios sensoriales que inervan el pene sugiere que estos factores del crecimiento se pueden utilizar para producir un producto médico para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
Descripción general de la invención
Tal como se ha descrito en los antecedentes de la presente invención, la erección es predominantemente un fenómeno vascular mediado por nervios. Los nervios pélvicos parasimpáticos tienen una importancia primordial en la relajación del músculo liso requerida para la tumescencia del pene aunque los nervios hipogástricos simpáticos también pueden desempeñar cierto papel. En el hombre los nervios parasimpáticos que inervan el pene salen de la médula espinal sacra y aportan la entrada a células ganglionares en el plexo pélvico. El plexo pélvico es una asociación de neuronas simpáticas y parasimpáticas implicadas en funciones eliminatorias y reproductivas (Dail, 1996). En la rata macho, el plexo pélvico se marca bilateralmente por un único ganglio grande, el ganglio pélvico mayor (MPG), el cual convierte a la rata en un excelente modelo animal en el estudio de la erección (Quinlan, 1989). La erección del pene normal en mamíferos depende de una inervación intacta, de suministro de sangre adecuado y de un tejido eréctil sano (Andersson, 1995). Por consiguiente, la interrupción de las vías neuronales o trastornos que afectan la unión neuromuscular es probable que produzca la disfunción eréctil (Batra, 1991).
Se sabe que la NTN tiene actividades promotoras de la supervivencia sobre, por ejemplo, neuronas sensoriales, simpáticas, entéricas, motoras y dopaminérgicas del cerebro medio (Kotzbauer, 1996; Heuckeroth, 1999; Klein, 1997; Horger, 1998). Las acciones biológicas de los miembros de la familia del GDNF están mediadas a través de un complejo de receptor multicomponente que consiste en un ligando unido a glicosilfosfatidilinositol (GPI) que se une a componentes "a", denominados receptores de la familia del GDNF, GFR\alpha:1-4, y se ha dado a conocer el receptor de la transducción de señal tirosina quinasa Ret (Airaksinen, 1999).
Los resultados de los ensayos in vitro muestran un emparejamiento preferencial de NTN con GFR\alpha2 y GDNF con GFR\alpha1, ARTN con GFR\alpha3 y PSPN con GFR\alpha4. Aunque existe todavía algo de promiscuidad en lo concerniente a las especificidades de ligando de los GFR\alpha:s, recientes estudios de supresión de genes han sugerido especificidad in vivo de las interacciones entre los correceptores unidos a GPI y los miembros de la familia del GDNF (Airaksinen, 1999).
La sorprendente semejanza fenotípica entre ratones con supresión de genes GFR\alpha2 o NTN apoya el concepto de que GFR\alpha2 es un correceptor fisiológico de NTN (Rossi, 1999; Heuckeroth, 1999). Los ratones descritos tienen varios defectos en el sistema nervioso parasimpático, lo que sugiere que la NTN se requiere para el desarrollo y/o mantenimiento de ciertas neuronas parasimpáticas postganglionares.
El GDNF puede interaccionar in vitro con múltiples complejos GFR\alpha/Ret, (Baloh, 1997; Jing, 1997; Sanicola, 1997; Suvanto, 1997), sin embargo, recientes estudios de supresión de genes que muestran defectos similares en ratones deficientes en GDNF o GFR\alpha1 (Cacalano, 1998; Enomoto, 1998; Moore, 1996; Pichel, 1996; Sanchez, 1996) revelan que el GDNF in vivo actúa principalmente a través de GFR\alpha1. Los ratones descritos no desarrollan riñones ni el sistema nervioso entérico, mueren pocos días después del nacimiento y muestran defectos similares tanto en el sistema nervioso central como en el periférico.
Se sabe que los nervios periféricos requieren continuamente factores neurotróficos producidos en el órgano diana de la inervación (Davies, 1994; Henderson, 1996). Los factores neurotróficos se han propuesto como fármacos prometedores para el tratamiento del sistema nervioso lesionado debido a sus potentes efectos farmacológicos en modelos animales de enfermedades neurodegenerativas (Hefti, 1997; Skaper, 1998). Los factores neurotróficos tienen la capacidad de evitar la atrofia y muerte durante el desarrollo y en el adulto. Aunque la impotencia neurogénica es un problema grave, se sabe muy poco acerca de los factores neurotróficos importantes para las neuronas que inducen la erección del pene. La identificación de los agentes neurotróficos del pene parece práctica ya que sus potenciales propiedades protectoras podrían tener valor terapéutico. El GDNF se aisló originariamente en base a su capacidad para la promoción de la supervivencia y diferenciación de neuronas dopaminérgicas ventrales del cerebro medio en ratas embrionarias (Lin, 1993). Es un miembro relacionado de forma lejana con la superfamilia del factor-b del crecimiento transformador (TGF-b) y comprende la familia del GDNF junto con neurturina (NTN), (Kotzbauer, 1996), persefina (PSPN), (Milbrandt, 1998) y artemina (ARTN) (Baloh, 1998). El GDNF mantiene las neuronas dopaminérgicas, noradrenérgicas y motoras del sistema nervioso central (Arenas, 1995; Henderson, 1995; Lin, 1993; Oppenheim, 1995; Tomac, 1995; Yan, 1995), así como diversas subpoblaciones de neuronas sensoriales periféricas y simpáticas (Buj-Bello, 1995; Ebendal, 1995; Trupp, 1995).
Además, los defectos en el ganglio cervical superior simpático en ratones que no tenían GDNF o GFR\alpha3 sugieren que algunos de los efectos biológicos del GDNF pueden estar mediados a través del GFR\alpha3, el receptor de unión a ligante preferente de la ARTN (Moore y otros, 1996; Sanchez y otros, 1996; Baloh y otros, 1998; Nishino y otros, 1999).
La observación de que el ARNm de GFR\alpha3 se expresa principalmente en las neuronas de tamaño grande del ganglio pélvico mayor (MPG) se ajusta a la hipótesis de que en ratas adultas la ARTN puede ser un factor de mantenimiento de ciertas neuronas adrenérgicas de la pelvis. En el MPG una subpoblación de neuronas que se proyectan al pene también expresaron ARNm de GFR\alpha3. De forma interesante, la distribución de GFR\alpha3 en el MPG de rata se parece a la descrita para el neuropéptido Y (NPY) (Keast y de Groat, 1989). Sin embargo, todavía no se ha resuelto si el correceptor GFR\alpha3 y NPY se expresan en las mismas neuronas. También es digno de atención el hecho de que el ARNm de GFR\alpha3 se exprese en casi la mitad de las neuronas sensoriales del pene y preferentemente en células de tamaño pequeño e intermedio. Esto sugiere que el GDNF y la ARTN, los ligandos principales del GFR\alpha1 y GFR\alpha3, pueden influenciar, como mínimo parcialmente, en distintas poblaciones de neuronas sensoriales del pene. Además, la expresión del ARNm de GFR\alpha3 en el MPG y el ganglio de la raíz dorsal (DRG) S1 insinúa la posibilidad de que la ARTN también puede servir como factor neurotrófico para algunas subpoblaciones de neuronas autónomas y sensoriales de la pelvis en rata adulta.
Dado que para la erección del pene se requiere la inervación de los nervios parasimpáticos funcionales, se estudió la esencialidad de la NTN como factor neurotrófico para las neuronas parasimpáticas del pene. Se seleccionó la rata como animal experimental ya que tiene un ganglio pélvico mayor (MPG) compacto, que se localiza de forma bilateral respecto a la próstata y es la fuente principal de nervios eferentes NOérgicos del pene (Quinlan, 1989; Ding, 1993). Este ganglio también contiene una mezcla de neuronas simpáticas y parasimpáticas, que inervan los órganos internos reproductivos, el intestino inferior y el tracto urinario.
Se estudió la NTN como factor neurotrófico derivado de diana para las neuronas parasimpáticas del pene. Los datos dados a conocer sugieren que algunos miembros de la familia del GDNF pueden actuar conjuntamente para regular la función de las neuronas sensoriales y parasimpáticas del pene. Para evaluar el papel del GDNF y de la NTN para los nervios del pene se estudió su expresión en el cuerpo esponjoso del pene de rata adulta mediante hibridación in situ e hibridación Northern. Para caracterizar las células del pene que expresaban el ARNm de GDNF se utilizó inmunocitoquímica. Se inyectó ^{125}I-GDNF o ^{125}I-NTN de forma intracavernosa y se estudió su transporte retrógrado en nervios sensoriales y parasimpáticos del pene. Para averiguar si la síntesis del ARNm de NTN en el pene se encuentra bajo regulación hormonal, se estudió su expresión después de la axotomía del nervio cavernoso. En ratones GFR\alpha2^{-/-} se estudió la inervación del pene, a efectos de aclarar la importancia fisiológica de la señalización mediada por GFR\alpha2 para las neuronas que se proyectan al pene. Los resultados sugieren un papel para las neurotrofinas en la inervación/mantenimiento/regeneración de las neuronas sensoriales y las inductoras de la erección del pene.
La neurturina (NTN) y otros miembros de la familia de del factor neurotrófico derivado de la línea celular glial (GDNF) de los factores neurotróficos, entre los que se incluyen la artemina y persefina, aunque no se limitan a las mismas, promueven la supervivencia de varias poblaciones de neuronas en el sistema nervioso central y periférico, entre las que se incluyen neuronas dopaminérgicas del cerebro medio, sensoriales y motoras, en roedores en desarrollo y maduros. La NTN se identificó como un factor trófico endógeno para las neuronas parasimpáticas que se proyectan al pene. El ARNm de NTN se expresó en el músculo liso de los vasos sanguíneos del pene y el cuerpo cavernoso de pene de rata adulta, así como en otros órganos pélvicos. Los ARNm de los componentes del receptor de NTN GFR\alpha2 y Ret se expresaron de forma ubicua en neuronas parasimpáticas del pene. El transporte retrógrado de ^{125}I-NTN inyectado en pene en neuronas parasimpáticas y sensoriales confirmó la funcionalidad de la NTN en este sistema. Los niveles de ARNm de NTN en el pene permanecieron inalterados después de la axotomía del nervio cavernoso bilateral. La disminución significativa de fibras nerviosas que contenían óxido nítrico sintasa (NOS), tanto en los nervios dorsales del pene como en los cavernosos de ratones GFR\alpha2^{-/-}, indicó la importancia fisiológica de GFR\alpha2 en la inervación del pene.
Se mostró que los componentes de receptor de GDNF de Ret, GFR\alpha1 y GFR\alpha2 se expresaban en neuronas del pene del ganglio pélvico mayor (MPG) y del ganglio de la raíz dorsal (DRG) de rata adulta. El transporte axonal retrógrado se inhibió mediante un exceso de GDNF no marcado mientras que un exceso de citocromo c no tuvo efecto sobre el transporte, lo cual sugiere que el transporte está mediado por la unión a receptores específicos localizados en los axones terminales. La hibridación in situ mostró la producción de ARNm de GDNF en el cuerpo esponjoso del pene. La expresión de ARNm de GDNF se observó en las filas de células en el límite entre la túnica albugínea y el tejido eréctil. Estas células se reconocieron por anticuerpos a la vimentina y a S100beta, mientras que anticuerpos a la alfa actina del músculo liso y a PGP 9,5 no mostraron inmunorreactividad. En conjunto, estos datos sugieren que la NTN actúa como un factor de supervivencia y/o neuritogénico derivado de diana para la erección del pene que induce neuronas postganglionares. Los resultados indicaron que el GDNF puede actuar como un factor neurotrófico derivado de diana en pene de rata adulta.
La caracterización de las actividades dopaminotróficas nigro-estriatales del GDNF creó un interés y esfuerzo considerables para encontrar factores homólogos con actividades promotoras de la supervivencia similares. El descubrimiento de la NTN fue rápidamente seguido de la demostración de su capacidad para promover la supervivencia de varias poblaciones de neuronas en el sistema nervioso central y periférico. Sin embargo, no se ha estudiado el papel de la NTN en órganos pélvicos. En la presente descripción se demuestra que el ARNm de NTN se expresa en el músculo liso del pene, así como en otros órganos pélvicos, mientras que las neuronas del ganglio pélvico mayor (MPG) que inervan el pene expresan los ARNm de Ret y GFR\alpha2, y son capaces de capturar y transportar la NTN. De este modo, la NTN parece que desempeña un papel en el sistema de circuitos tróficos dentro del área pélvica. La coexpresión de GFR\alpha2 y GFR\alpha1 en muchas neuronas del MPG suscita la posibilidad de que también otros miembros de la familia del GDNF puedan regular la función de estas neuronas. En el sistema nervioso central se observa una expresión similar que coincide parcialmente de los ARNm de GFR\alpha2 y GFR\alpha1 (Trupp; 1998; Sanicola, 1997; Naveilhan, 1998; Widenfalk, 1997; Golden, 1998) y en ganglios sensoriales y simpáticos periféricos (Yu, 1998; Bennet, 1998; Baloh, 1997). Sin embargo, no se entiende bien el papel biológico de dicha coexpresión.
El transporte retrógrado desde los axones terminales distales hasta los cuerpos neuronales es un criterio importante para la funcionalidad de un factor neurotrófico para unas neuronas determinadas. La presente invención demuestra la unión, captura y transporte axonal retrógrado de la NTN en neuronas del ganglio pélvico mayor (MPG) que se proyectan al pene de rata adulta. Este hecho muestra claramente un papel de la NTN como factor trófico derivado de diana para estas neuronas. Se ha observado un circuito trófico similar, por ejemplo, en el sistema nigro-estriatal, en el que GDNF inyectado de forma intraestriatal se transporta de forma retrógrada mediante neuronas dopaminérgicas mesencefálicas (Tomac, 1995). El hecho de que ^{125}I-NTN, con una actividad de estimulación del crecimiento de neuritas comparable a la de la proteína parental no radioactiva, se transportara en presencia de un exceso de 100 veces de citocromo c pero no en presencia de un exceso similar de NTN, sugiere que el transporte retrógrado estaba mediado por la unión a receptores específicos en los terminales de los axones. La autorradiografía mostró que, además de al MPG, ^{125}I-NTN se transportó en cierta medida al DRG S1, el cual se sabe que proporciona nervios aferentes al pene (Dailey, 1989). Los niveles bajos de radioactividad en el DRG S1 se deben probablemente al hecho de que el ARNm de GFR\alpha2 se expresara en sólo el 6% de las neuronas que se proyectan al pene, mientras que GFR\alpha1 se expresó en el 57% de las mismas, dentro del DRG S1 (datos no mostrados). De hecho, los resultados preliminares con el transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF en neuronas del pene sugiere que el GDNF y la NTN se transportan en su mayor parte a diferentes poblaciones de neuronas de DGR. Esto confirma la opinión de que la señalización de la NTN in vivo está mediada por la unión a GFR\alpha2.
La coincidencia entre el contacto neurona-diana y la expresión del ARNm de NTN en el músculo liso del pene indica la posibilidad de que la inervación pueda regular la producción de NTN en la diana. Sin embargo, la axotomía bilateral de los nervios cavernosos no alteró marcadamente la cantidad de ARNm de NTN sugiriendo que la inervación parasimpática no regula la expresión de NTN en el músculo liso del pene. Esto es coherente con los resultados de diversos experimentos de denervación de nervios autónomos en animales neonatales y adultos. Por ejemplo, los niveles de ARNm de NGF permanecen inalterados después de una simpatectomía, tanto en el corazón de rata neonatal como en el iris de rata adulta (Shelton, 1986).
Aunque el ARNm de NTN no se incrementa como respuesta a la axotomía, es posible que la proteína NTN se acumule en el órgano diana debido a la falta de transporte retrógrado, tal como se indica para el NGF en el corazón e iris después de una simpatectomía o en la piel después de una axotomía de los nervios sensoriales (Shelton, 1986; Harper, 1999). Hipotéticamente, el incremento de la NTN local puede promover la reinervación del pene, tal como se ha indicado que ocurre después de la axotomía del nervio cavernoso unilateral, en la que se sugiere que los axones intactos se expanden hacia el lado denervado contralateral (Jung, 1998; Carrier, 1995). Sin embargo, la confirmación de esta hipótesis requiere experimentos adicionales.
La reciente observación de que existen defectos en algunas neuronas parasimpáticas, aunque no en todas, en ratones GFR\alpha2^{-/-} (Rossi, 1996) dio lugar al estudio de si la inervación NOenérgica del pene se altera por la supresión de este gen. Se encontró que los ratones deficientes en GFR\alpha2 tenían un número significativamente reducido de fibras que contenían NOS, tanto en los nervios dorsales como en los pilares del pene. Estudios futuros mostrarán si la densidad de fibras NOérgicas disminuida en el pene se debe a la pérdida de neuronas o a la arborización axonal reducida. Sea cual sea la razón o razones, los presentes datos muestran evidencia de un papel funcional de la señalización mediada por GFR\alpha2 para las neuronas parasimpáticas del pene. A la vista de esto, podría parecer de algún modo sorprendente que los ratones GFR\alpha2^{-/-} sean fértiles (Rossi, 1999). Sin embargo, los presentes resultados no excluyen deficiencias sutiles en su función reproductiva. Por otra parte, es común que en ratones con supresión de genes asuman la función mecanismos compensatorios, que se cree que dependen en gran medida del gen suprimido. Por ejemplo, ratones con una supresión dirigida del gen NOS neuronal muestran una expresión aumentada del NOS endotelial del pene (Burnett, 1996). La acción compensatoria de otros miembros de la familia del GDNF es otra posible explicación de la presencia parcial de la inervación NOérgica del pene en ratones GFR\alpha2^{-/-}. Los presentes resultados sugieren un papel compensatorio especialmente para el GDNF, dado que su correceptor preferente GFR\alpha1 se expresa en más de la mitad de las neuronas del MPG del pene. La ayuda mediada por otros factores neurotróficos también es una posibilidad razonable.
Mostrando la expresión del ARNm de NTN en el músculo liso del pene y el transporte específico de ^{125}I-NTN desde los terminales nerviosos al soma de las neuronas del ganglio pélvico mayor (MPG), se muestra un papel para la NTN como factor trófico para las neuronas del pene parasimpáticas. Además, los resultados muestran que la expresión del ARNm de NTN en el pene no se altera después de la axotomía del nervio cavernoso. La reducción de fibras nerviosas que contienen NOS en ratones GFR\alpha2^{-/-} indica un papel fisiológico de la señalización mediada por GFR\alpha2 para las neuronas del pene parasimpáticas in vivo.
La expresión del ARNm de GDNF en pene de rata adulta se confirmó mediante dos métodos independientes. La hibridación in situ mostró la expresión marcada del ARNm de GDNF en una capa celular subtunical y la hibridación Northern detectó un transcrito cuyo tamaño se corresponde al indicado previamente. En la hibridación Northern el ARNm de GDNF se observó solamente en el cuerpo esponjoso del pene de rata adulta, mientras que otros órganos pélvicos estudiados no mostraron hibridación. Esto se opone a la amplia expresión de ARNm de NTN en órganos pélvicos de rata adulta. Estos resultados sugieren que el papel del GDNF como factor neurotrófico derivado de diana en el área pélvica puede estar restringido solamente al pene. Sin embargo, debido a que los factores neurotróficos habitualmente se producen en pequeñas cantidades, no se puede excluir la posibilidad de que el ARNm de GDNF se exprese en algunos órganos pélvicos en cantidades por debajo del límite de detección para la sensibilidad. Esta posibilidad se sustenta por la amplia expresión de los componentes del receptor de GDNF en neuronas parasimpáticas y sensoriales que inervan los órganos pélvicos.
Para aclarar la función de las células subtunicales que expresan ARNm de GDNF se utilizaron varios anticuerpos. No había inmunorreactividad en el área subtunical si las secciones se teñían con anticuerpos a la alfa actina del músculo liso o a PGP 9,5. El anticuerpo a la alfa actina del músculo liso debería reconocer células del músculo liso (Skalli, 1986) mientras que el anticuerpo a PGP 9,5 es un excelente marcador paneuronal (Ermisch, 1995; Thompson, 1983). La ausencia de tinción sugiere que las células que expresan el ARNm de GDNF no son ni del músculo liso ni neuronas. Sin embargo, se obtuvo una señal clara con anticuerpos vimentina y S100beta. El anticuerpo vimentina se considera un marcador de células mesenquimales, (Leader, 1987) mientras que los anticuerpos a S100beta se ha indicado que reconocen células de varios tipos, por ejemplo, células gliales, condrocitos y adipocitos (Griffin, 1995; Haimoto, 1987). La inmunorreactividad a la vimentina sugiere que las células que expresan el ARNm de GDNF son de origen mesenquimal. Previamente, Dail y otros (1995) dieron a conocer que en el pene de rata el límite entre la túnica albugínea y los tejidos eréctiles está marcado por pequeñas células con un núcleo prominente, teñidas moderadamente por la NADPH-diaforasa. (Dail, 1995). En base a la localización y morfología similares de las células observadas se sugiere que estas células son iguales que las que expresan el ARNm de GDNF.
Queda por demostrar el papel fisiológico del GDNF producido endógenamente en el cuerpo esponjoso de pene de rata adulta. Sin embargo, la expresión de receptores funcionales en subpoblaciones de nervios sensoriales y parasimpáticos favorece la idea de que el GDNF es un factor neurotrófico derivado de diana para estas neuronas del pene. Otra posibilidad es que el GDNF tenga un papel local en el cuerpo esponjoso del pene. Sin embargo esta idea es menos probable ya que la hibridación in situ no reveló ARNm de Ret detectable en el cuerpo esponjoso del pene. No se puede excluir la posibilidad de que existan otros receptores de señalización desconocidos para el GDFN en el
pene.
El transporte retrógrado es un mecanismo común mediante el cual los factores neurotróficos derivados de diana median sus efectos biológicos en el soma neuronal. Los presentes descubrimientos demuestran que el GDNF recombinante de rata biológicamente activo se transporta retrógradamente mediante neuronas sensoriales y parasimpáticas después de la inyección intracavernosa. El contaje-\gamma y la autorradiografía mostraron radioactividad tanto en las neuronas del DRG S1 como del MPG. El hecho de que el transporte de ^{125}I-GDNF se bloqueara por un exceso de GDNF no marcado, pero no con exceso de citocromo c sugiere que el transporte está mediado por la unión a receptores específicos localizados en los axones terminales.
Se demostró que el ARNm de GFR\alpha1 se expresaba en el 54% de las neuronas del MPG del pene, mientras que GFR\alpha2 se expresaba en el 98% de las mismas. De forma equivalente, GFR\alpha1 se expresaba en el 57% de las neuronas sensoriales del pene dentro del DRG S1, mientras que GFR\alpha2 se expresaba sólo en el 6% de las mismas. Los resultados referentes al transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF en nervios del pene se correlacionan bien con la distribución del receptor. El transporte de ^{125}I-GDNF en nervios sensoriales parece ser más eficaz si se compara al de ^{125}I-NTN (perfiles de células más marcados después de la autorradiografía), mientras que se detectó menos radioactividad en el MPG después de la inyección de ^{125}I-GDNF. Estos resultados apoyan la idea de que el transporte de ^{125}I-GDNF en neuronas del pene está mediado por GFR\alpha1, y de este modo sugiere que sólo una subpoblación de neuronas del pene puede ser responsable de las influencias tróficas del DGNF.
El transporte retrógrado es significativo en la administración farmacológica de factores neurotróficos. Estos resultados sugieren que la inyección intracavernosa de GDNF en el hombre puede conducir al transporte retrógrado y, de este modo, ejercer una influencia trófica sobre las neuronas sensoriales y parasimpáticas.
La presente invención muestra que el ARNm de GDNF se expresa en el pene de rata adulta y los terminales nerviosos sensoriales y parasimpáticos del pene son capaces de unir, capturar y transportar ^{125}I-GDNF inyectado en el cuerpo esponjoso del pene. De este modo, en base a los presentes resultados, parece práctica la utilización de GDNF como terapia para la impotencia neurogénica.
Los resultados sugieren que la NTN o el GDNF se pueden utilizar para producir un producto médico para el tratamiento de la impotencia debida a una disfunción de los nervios cavernosos. El producto médico es administrable localmente a los órganos pélvicos (por ejemplo, el pene), cuando se administra de forma sistémica NTN o GDNF puede aumentar la regeneración y supervivencia de las neuronas del plexo pélvico en humanos sanos y enfermos.
La NTN o el GDNF pueden aumentar la regeneración y apoyo a la supervivencia de las neuronas del plexo pélvico y de este modo pueden utilizarse para producir un producto médico para el tratamiento de la disfunción eréctil en humanos.
La expresión del receptor y el transporte retrógrado de NTN o GDNF hacia los nervios aferentes (sensoriales) del pene sugiere que estos factores del crecimiento se pueden utilizar para producir un producto médico para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
Como consecuencia, se han acumulado muchas pruebas en base a las cuales se puede concluir que la presente invención se refiere al tratamiento de la disfunción de nervios periféricos en el área pélvica. En base a dichas pruebas, se desarrollaron métodos para el estudio, incluso en humanos, de la disfunción eréctil, estos métodos a su vez facilitaron la producción de productos médicos para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
La presente invención se refiere a la utilización de un factor neurotrófico, que es neurturina (NTN), un factor neurotrófico derivado de células gliales (GDNF), o variantes sustituidas de forma conservadora de los mismos, solos o en cualquier combinación, o secuencias de nucleótidos que codifican dichos factores neurotróficos para la fabricación de un producto médico para el tratamiento de las disfunciones eréctiles del pene. La disfunción eréctil del pene está causada por traumatismo peneano agudo, cirugía del pene, cirugía prostática, cirugía de la vejiga u otras cirugías pélvicas. El producto médico de la presente invención es administrable, preferentemente, de forma intracavernosa. El producto médico de la presente invención comprende además del factor neurotrófico, como mínimo un agente auxiliar opcional farmacéuticamente aceptable que es compatible con la vía de administración.
Las disfunciones, especialmente la disfunción en el área pélvica asociada con la expresión del receptor y/o la represión y el transporte retrógrado de NTN o GDNF a los nervios (sensoriales) aferentes del pene sugirieron que estos factores del crecimiento son útiles para el tratamiento de neuronas sensoriales que inervan el pene y otros órganos pélvicos. La neuropatía sensorial también se puede tratar según la presente invención mediante la administración al individuo que tiene el trastorno de una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un factor neurotrófico o una parte del mismo, de modo que tiene lugar el tratamiento, por ejemplo, mediante la estimulación de forma funcional del correspondiente gen genómico.
Una secuencia de ácidos nucleicos que codifica un factor neurotrófico funcional, tal como NTN o GDNF o variantes sustituidas de forma conservadora de los mismos, se puede utilizar para preparar un producto médico que es capaz de integrarse en el gen genómico que codifica un factor neurotrófico funcional, o funcionalmente capaz de inactivarse o condicionalmente capaz de inactivarse, y que se puede insertar en una construcción diana con una secuencia de ácidos nucleicos adecuada, que se puede seleccionar, y que actúa como marcador. La construcción o vector diana se puede insertar y transformar dentro de un individuo que sufre disfunciones eréctiles del pene.
Ejemplo 1
Animales
Se obtuvieron ratas macho Wistar (n=16, de diez a doce semanas de edad), y ratones GFR\alpha2^{-/-} o de tipo salvaje adultos del animalario del Biocentro de Viikki, Universidad de Helsinki. Se mantuvieron en un ciclo normal de día y noche y se les dio acceso libre a comida y bebida. Se hizo lo posible para minimizar el sufrimiento de los animales y para reducir el número de animales utilizado.
Ejemplo 2
Rastreo retrógrado y preparación del tejido para la hibridación in situ
Se anestesiaron las ratas con una combinación de midazolam (0,8 mg/kg), citrato de fentanilo (0,25 mg/kg) y fluanisona (8 mg/kg), a las que se inyectaron después 10 \mul de una solución acuosa al 4% de Fluoro-Gold (FG; Fluorocromo) en el cuerpo cavernoso. Después de 10 días las ratas se sacrificaron con anestesia mediante perfusión transcardiaca con tampón fosfato salino (PBS; fosfato sódico 0,1 M/NaCl 0,14 M/KCl 2,6 mM, pH 7,5) (50 ml) seguido de paraformaldehído fresco al 4% (PFA) (200 ml) en PBS. El MPG y el ganglio de la raíz dorsal (DRG) del nivel S1 se diseccionaron y posfijaron durante 1,5-2 horas a temperatura ambiente. Los cuerpos esponjosos de los penes se extirparon de los animales no tratados, se fijaron con PFA al 4% en PBS a 4ºC durante 18-36 horas. Después de la fijación todas las muestras se lavaron en PBS y se procesaron para la sección a 7 \mum en parafina sobre portaobjetos silanizados.
Ejemplo 3
Hibridación in situ
Se llevó a cabo la hibridación in situ de las secciones de acuerdo con Wilkinson y Green (1990) con algunas modificaciones. Brevemente, las secciones se desparafinizaron en xileno, se rehidrataron, se fijaron en PFA al 4% in PBS (peso/volumen), se lavaron en PBS y se trataron con proteinasa K (20 \mug/ml, Sigma) durante 5-15 minutos, se posfijaron con PFA al 4% in PBS (peso/volumen), se acetilaron, se deshidrataron, se secaron con aire y se hibridaron con una sonda de ARNc durante toda la noche a 52ºC. Se llevó a cabo la prehibridación (1-1,5 horas a 52ºC) con una mezcla de hibridación que no contenía la sonda. Después de la hibridación, las secciones se lavaron en condiciones de alta astringencia durante 30 minutos, se trataron con ARNasa A (Boehringer Mannheim), se deshidrataron y se secaron con aire. Las secciones se sumergieron en emulsión (Kodak NTB-2), y se dejaron expuestas durante 5 semanas. Posteriormente se revelaron los portaobjetos (revelador Kodak D19), se contratiñeron con hematoxilina de Harris y se montaron en Permount (Fisher Chemical). La hibridación de las secciones adyacentes con sondas con orientación en sentido se utilizó como control negativo.
Ejemplo 4
Análisis por imagen y preparación de las ilustraciones
Se digitalizaron imágenes de campo oscuro y brillante mediante un microscopio Olympus AX70 Provis (Olympus Optical Co), equipado con una cámara Photometrics SenSys CCD (Photometrics) y software Image ProPlus 3.0 (Media Cybernetics). Las ilustraciones finales se prepararon con software Adobe Photoshop 4.0 (Adobe Systems).
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Ejemplo 5
Análisis cuantitativo de la expresión del ARNm de receptor en neuronas marcadas con FG
Entre la hibridación in situ y la autorradiografía en emulsión se visualizaron y digitalizaron bajo iluminación UV neuronas marcadas con FG en el MPG y el DRG S1. El marcado con FG se comparó con la señal de la hibridación in situ mediante imágenes digitales. Sólo se contaron perfiles neuronales con fluorescencia brillante que contenían un núcleo claramente visible en cada cuarto de sección en todo un ganglio. La señal de hibridación in situ se consideró positiva si la densidad de grano en la proximidad del núcleo era dos veces más alta que el nivel de base. Se cuantificó la expresión del ARNm de receptor en neuronas marcadas con FG unilateralmente en cuatro ratas.
Ejemplo 6
Preparación de ARN e hibridación Northern
Se aisló el ARN total a partir de muestras congeladas mediante el método de extracción del tiocianato-fenolcloroformo guanidinio ácido. (Chomczynski, 1987). Se purificó ARNm (Poli-A) con el kit Oligotex mRNA Midi (Qiagen). Después de la purificación el ARNm (poli-A) se fraccionó en un gel de agarosa-formaldehído al 1,2% y se transfirió a una membrana de nailon (Magna, MSI). Después de la transferencia las membranas se fijaron mediante irradiación UV, se prehibridaron e hibridaron con sondas de ADNc marcadas con ^{32}P a 65ºC en NaCl 1 M, sodio dodecil sulfato al 1%, sulfato de dextrano al 10% y 100 \mug/ml de ADN de esperma de arenque sonicado. Después de dos lavados con elevada astringencia (0,1 x citrato sódico salino (SSC), sodio dodecil sulfato al 0,5% a 55-60ºC, 15 min) se analizó la membrana de transferencia mediante un fosfoimager (Fuji BAS 1500) o a -70ºC se expuso a películas de rayos X durante de 1 a 7 días a -70ºC. Para comparar los niveles relativos de ARNm en diferentes carriles, el filtro se rehibridó con una sonda de gliceraldehído 3-fosfato deshidrogenasa (GAPDH).
Ejemplo 7
Sondas de ADNc y ARNc
Para la hibridación in situ se generaron sondas de ARNc de cadena simple antisentido y sentido y se marcaron con ^{35}S-UTP (Amersham) utilizando ARN polimerasas adecuadas (SP6, T7, Promega). Los patrones de ADN fueron GFR\alpha1 de rata (nucleótidos 294-1039 de U59486) GFR\alpha2 de rata (nucleótidos 85-257 de AF003825) NTN de ratón (nucleótidos 349-936 de U78109), un obsequio del Dr. Carlos F. Ibáñez, y Ret de rata (nucleótidos 21-200 de U22514). Para la hibridación Northern se marcaron sondas de ADNc con ^{32}P-dCTP mediante el Sistema de Marcaje Prime-a-Gene (Promega). Los patrones de ADN para la preparación de sondas de ADNc marcadas con ^{32}P-dCTP fueron NTN de ratón (los mismos nucleótidos que para la hibridación in situ), y GAPDH de rata (nucleótidos 137-949 de X02231). Se clonaron los ADNc de GFR\alpha2, Ret y GAPDH de rata mediante PCR. La identidad de los fragmentos clonados se verificó mediante secuenciación directa utilizando un secuenciador automático de ADN Pharmacia A.L.F.
Ejemplo 8
Preparación y ensayo de bioactividad de NTN marcada con ^{125}I (^{125}I-NTN)
Se radioyodó NTN recombinante humana producida en E. coli (PeproTech) mediante el método de la lactoperoxidasa (Marchalonis, 1969). Se mezclaron los siguientes ingredientes y se mantuvieron a temperatura ambiente durante 18 minutos en un volumen final de 50 \mul: Na^{125}I de 1 mCi (1Ci=37GBq), 10 \mug de proteína NTN, 0,5 U de lactoperoxidasa, 2 \mul de H_{2}O_{2} al 0,03% y tampón fosfato sódico 0,1 M, pH 6,0. Después de los primeros 9 minutos de incubación, se añadieron 2 \mul adicionales de H_{2}O_{2}. La reacción se terminó mediante la adición de 3 volúmenes de tampón que contenía NaCl 0,42 M, NaI 0,1 M y tampón fosfato sódico 0,1 M, pH 7,5, y 22 \mul de BSA al 2,5% en tampón fosfato sódico 0,1 M, pH 7,5. Se calcularon las actividades específicas y las eficiencias de marcaje después de la precipitación con ácido tricloroacético de una solución alícuota de la mezcla de reacción. Se separó el yodo libre y se concentró la ^{125}I-NTN mediante la utilización de columnas NanoSpin Plus (4000 MWCO, Gelman Sciences). La radioactividad se midió con un contador 1271 Riagamma (Wallac). La ^{125}I-NTN tuvo una actividad específica de 44,7 \muCi/\mug. Se bioensayó la estimulación por la NTN marcada del crecimiento de neuritas de ganglios trigeminales de ratón explantados el día 13,5 embrionario en una matriz de colágeno y teñidos con anticuerpos de neurofilamento (Arumae, 1993; Ebendahl, 1989).
Ejemplo 9
Inyecciones de ^{125}I-NTN y transporte retrógrado
Las ratas se anestesiaron tal como se ha descrito en el Ejemplo 2, a las cuales después se inyectaron en los dos cuerpos cavernosos soluciones que contenían 200 ng de ^{125}I-NTN sola o combinada con 20 \mug de NTN no marcada o citocromo c en un volumen de 5 \mul mediante una jeringa Hamilton de 10 \mul (1701N). Las ratas se sacrificaron 24 horas más tarde bajo una anestesia profunda mediante perfusión transcardiaca con PBS (50 ml) seguido de PFA en PBS al 4% (250 ml). Después de la perfusión los MPG y DRG (niveles L4-S2) se diseccionaron y se posfijaron durante 1,5-2 horas. La radioactividad de los ganglios se midió mediante contaje-\gamma. Después de la fijación se prepararon secciones de criostato (10 \mum), se deshidrataron, se sumergieron en emulsión, y se dejaron expuestas durante 2-3 semanas. A continuación los portaobjetos se revelaron, se contratiñeron con hematoxilina y se montaron.
Ejemplo 10
Axotomía del nervio cavernoso
Se anestesiaron ratas adultas con una combinación de quetamina (105 mg/kg) y xilacina (6 mg/kg). Los nervios cavernosos se expusieron y cortaron bilateralmente justo en la zona distal del MPG. Para minimizar la reunión de los segmentos del nervio, se desviaron los dos extremos transectados. En las ratas intervenidas de forma simulada se identificaron los nervios cavernosos pero no se cortaron. Las ratas se sacrificaron en los días 1, 3, 7 y 14 después de la axotomía. Los cuerpos esponjosos de los penes se diseccionaron, se congelaron en nitrógeno líquido y se almacenaron a -70ºC. Se aisló el ARNm y se preparó la transferencia Northern, tal como se ha descrito en el Ejemplo 6.
Ejemplo 11
Tinción de la NADPH diaforasa
Los cuerpos esponjosos de los penes de ratones se fijaron durante 5 horas en PFA al 4% en PBS frío. Los tejidos se criptoprotegieron toda la noche en sacarosa al 30% en PBS. Se embebieron en compuesto O.C.T. para Tissue-Tek (Sakura), se congelaron en hielo seco y se almacenaron a -70ºC. Se prepararon las secciones de criostato (10 \mum) y se adhirieron en portaobjetos Super Frost Plus (Menzel-Gläser). Después de un secado breve con aire se incubaron con NADPH 0,1 mM, nitroazul de tetrazolio 0,2 mM, y Tritón X-100 al 0,2% en tampón fosfato sódico 0,1 M, pH 8,0, durante 90 minutos a temperatura ambiente. La reacción se terminó mediante un lavado con agua. Las secciones se cubrieron con un medio de montaje basado en Mowiol. Se evaluó el patrón de tinción mediante el contaje unilateral del número de fibras nerviosas positivas a NADPH presentes en 3 campos aleatorios (400x) de cuerpo cavernoso y en el nervio dorsal entero.
Ejemplo 12
Sondas de ADNc y ARNc
Para la hibridación in situ se generaron sondas de ARNc antisentido y sentido de cadena simple y se marcaron con ^{35}S-UTP (Amersham) mediante ARN polimerasas adecuadas (SP6, T7, Promega). El patrón de ADN utilizado fue GDNF de rata (nucleótidos 52-688 de L15305). Para la hibridación Northern las sondas de ADNc se marcaron con ^{32}P-dCTP utilizando el Sistema de Marcaje Prime-a-Gene (Promega). Los patrones de ADN utilizados para la preparación de sondas de ADNc marcadas con ^{32}P-dCTP fueron GDNF de rata (los mismos nucleótidos que para la hibridación in situ), y GAPDH de rata (nucleótidos 137-949 de X02231).
Ejemplo 13
Preparación y bioactividad de GDNF marcado con ^{125}I (^{125}I-GDNF)
Se radioyodó GDNF recombinante de rata producido mediante la expresión del gen en células de insecto infectadas con rbaculovirus con reactivo de Bolton & Hunter. (Bolton, 1973). La proteína GDNF (10 \mug) en 20 \mul de tampón borato 0,1 M, pH 8,5 se colocó en 2 mCi (1Ci=37GBq) de reactivo Bolton-Hunter seco marcado con ^{125}I, y la mezcla de reacción se incubó a 4ºC durante 15 minutos. La reacción se paró mediante la adición de 0,5 ml de una solución que contenía glicina 0,2 M en tampón borato 0,1 M, pH 8,5. Se separaron el yodo libre y el conjugado de glicina y se concentró el ^{125}I-GDNF mediante columnas NanoSpin Plus (4000 MWCO, Gelman Sciences). Se midió la radioactividad con un contador gamma Wallac 1271 Riagamma (Wallac). El ^{125}I-GDNF marcado obtuvo una actividad específica de 61,3 \muCi/\mug. Se bioensayó la estimulación por el GDNF marcado del crecimiento de neuritas de ganglios trigeminales de ratón explantados el E13-E13,5 en una matriz de colágeno, tal como se ha descrito. (Arumäe, 1993; Ebendal, 1989).
Ejemplo 14
Inyecciones de ^{125}I-GDNF y autorradiografía en emulsión
Las ratas se anestesiaron tal como se ha descrito en el Ejemplo 2 y se inyectaron en los dos cuerpos cavernosos del pene las soluciones que contenían 200 ng de ^{125}I-GDNF solo o combinado con 20 \mug de GDNF no marcado o citocromo c en un volumen de 5 \mul mediante una jeringa Hamilton equipada con una aguja 26G. Los animales se sacrificaron 24 horas más tarde mediante perfusión transcardiaca bajo anestesia profunda con PBS (50 ml) seguido de PFA al 4% en PBS (250 ml). Después de la perfusión se recolectaron el ganglio pélvico mayor y el ganglio de la raíz dorsal (niveles L4-S2) y se posfijaron durante 1,5-2 horas. Durante el periodo de posfijación los ganglios se utilizaron para el contaje-\gamma. Después de la fijación se prepararon las secciones de criostato (10 \mum), se deshidrataron, se sumergieron en emulsión (Kodak NTB-2), y se dejaron expuestas durante 2-3 semanas. A continuación, los portaobjetos se revelaron (revelador Kodak D19), se contratiñeron con hematoxilina de Harris y se montaron en Permount (Fischer Chemical).
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Ejemplo 15
Inmunocitoquímica
Los cuerpos esponjosos de los penes de rata estuvieron fijados en inmersión durante 17-18 horas en PFA frío al 4% en PBS (peso/volumen), acabado de preparar. Después de la fijación las muestras se lavaron con PBS y se procesaron para el seccionado en parafina a 10 \mum sobre portaobjetos Super Frost Plus (Menzel-Gläser). Las secciones se desparafinaron en xileno, se rehidrataron y se incubaron durante 1 hora a temperatura ambiente en PBS al 4% con BSA y Tritón-X 100 al 0,4%, a continuación durante 18 horas con anticuerpos policlonales primarios contra S100beta (1:5000, Swant), PGP 9,5 (1:2000, Affinity) o anticuerpos monoclonales de ratón contra Vimentina (1:20, Amersham) o alfa actina de músculo liso (1:200, Progen). La tinción se visualizó con un sistema avidina-biotina-peroxidasa (Vector Laboratories) con diaminobencidina como cromogen. Finalmente las secciones se deshidrataron y montaron en Permount (Fischer Chemical).
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Ejemplo 16
Sondas de ADNc y ARNc
Para la hibridación in situ se generaron sondas de ARNc antisentido y sentido de cadena simple y se marcaron con ^{35}S-UTP (Amersham Pharmacia Biotech) mediante ARN polimerasas adecuadas (SP6, T7, Promega, Madison, WI, USA). El patrón de ADN fue GFR\alpha3 (nucleótidos 81-489 de AF184920).
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Ejemplo 17
Sondas de ADNc y ARNc
Para la hibridación in situ se generaron sondas de ARNc antisentido y sentido de cadena simple y se marcaron con ^{35}S-UTP (Amersham) mediante ARN polimerasas adecuadas (SP6, T7, Promega). Las sondas para NGF, BDNF, NT-3, trkA, trkB.TK+, trkC.TK+ y p75 de rata se han descrito previamente. (Arumae y otros, 1993; Pirvola y otros, 1992: Pirvola y otros, 1994; Ylikoski y otros, 1993; Hiltunen y otros, 1996). La sonda trk.TK+ reconoce todas las isoformas que contienen los 4 dominios TK y corresponde a la secuencia de nucleótidos 2308-2552 del ADNc de trkC de rata. (Merlio y otros, 1992). El fragmento BDNF atraviesa los nucleótidos 517-882 de la secuencia de ADNc de BDNF de rata (Maisonpierre y otros, 1991) y se localiza en el ARNm de BDNF maduro excepto en los dos primeros nucleótidos que pertenecen al ARNm de proBDNF. Los patrones de ADN para la preparación de sondas de ADNc marcadas con ^{32}Pd-dCTP fueron los mismos que para la hibridación in situ, y para GAPDH de rata (nucleótidos 137-949 de X02231).
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Ejemplo 18
Preparación y bioactividad de NTFs marcados con ^{125}I (^{125}I-NTFs)
Se radioyodaron proteínas recombinantes con el método de la lactoperoxidasa (Marchalonis, 1969). Se calcularon las actividades específicas y las eficiencias de marcaje después de la precipitación con ácido tricloroacético de una alícuota de la mezcla de reacción. Se separó yodo libre y se concentraron los ^{125}I-NTFs mediante columnas NanoSpin Plus (4000 MWCO, Gelman Sciences). Se midió la radioactividad con un contador 1271 Riagramma (Wallac). Los ^{125}I-NTFs (NGF, NT-3 y BDNF) tuvieron una actividad específica de 30-100 \muCi/\mug. Se bioensayó la estimulación por los NTFs marcados del crecimiento de neuritas de los DRGs de polluelo explantados en los días embrionarios 9-10 en una matriz de colágeno tal como se ha descrito (Arumäe, 1993; Ebendal, 1989).
Ejemplo 19
Inyecciones de ^{125}I-NTFs y transporte retrógrado
Las ratas se anestesiaron tal como se ha descrito en el Ejemplo 2, a las cuales se les inyectaron soluciones que contenían 200 ng de ^{125}I-NTFs (NGF, NT-3 o BDNF) solos o combinados con 20 \mug de NTFs no marcados o citocromo c en un volumen de 5 \mul en los cuerpos cavernosos mediante una jeringa Hamilton (1701N). Las ratas se sacrificaron 24 horas más tarde bajo anestesia profunda mediante perfusión transcardiaca con PBS (50 ml) seguido de PFA al 4% en PBS (250 ml). Después de la perfusión el ganglio pélvico mayor y el ganglio de la raíz dorsal (niveles L4-S2) se diseccionaron y se posfijaron durante 1,5-2 horas. La radioactividad de los ganglios se midió mediante contaje-\gamma. Después de la fijación se prepararon las secciones de criostato (10 \mum), se deshidrataron, se sumergieron en emulsión y se dejaron expuestas durante 2-3 semanas. A continuación, se revelaron los portaobjetos, se contratiñeron con hematoxilina y se montaron.
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Resultados 1
Expresión de NTN en el pene, y de GFR\alpha2, GFR\alpha1, y Ret en el MPG y DRG de rata adulta
Los resultados presentados en la figura 1 muestran que el ARNm de NTN se expresa ampliamente en el músculo liso de los vasos sanguíneos y el cuerpo cavernoso del pene. Se observó hibridación en arterias y en venas y hasta cierto punto en el epitelio de la uretra. La hibridación in situ no mostró expresión detectable de Ret o GFR\alpha2 en el cuerpo esponjoso del pene y sólo se observó una expresión débil y difusa de GFR\alpha1 en el cuerpo cavernoso. Sin embargo, la hibridación Northern mostró una expresión débil de todos los ARNm de receptores en el cuerpo esponjoso del pene (datos no mostrados).
Los ARNm de Ret y GFR\alpha2 se expresaron en la mayor parte de las neuronas del MPG (figuras 2A y B). La expresión en neuronas del MPG que se proyectan al pene, es decir, positivas a FG, se observó en todas y en el 98%, respectivamente (figuras 2D y E). El ARNm de GFR\alpha1 se expresó en el 54% de las neuronas del MPG del pene. En el área de neuronas marcadas con FG había neuronas pequeñas que no expresaron el ARNm de GFR\alpha1. Por otra parte, GFR\alpha1 pareció expresarse de forma igual en todo el MPG (figura 2C). Dentro del DRG S1 de rata adulta, los ARNm de Ret, GFR\alpha1 y GFR\alpha2 se expresaron en el 62%, el 57% y el 6% de las neuronas del pene, respectivamente (datos no mostrados). La expresión del ARNm de Ret dentro del DRG S1 se observó en células de todos los tamaños, mientras que el ARNm de GFR\alpha1 se expresó preferentemente en células de tamaño intermedio y grande, y el ARNm de GFR\alpha2 en células de tamaño pequeño e intermedio. En el MPG o el DRG S1 no hubo expresión detectable de ARNm de NTN.
Resultados 2
Expresión de NTN en otros órganos pélvicos
Se detectó un solo transcrito de NTN de 0,9 kb en todos los órganos pélvicos estudiados (figura 3). La expresión más alta se observó en el pene, la vejiga urinaria y los vasos deferentes, mientras que la señal en el colon, la próstata y las vesículas seminales fue más débil.
Resultados 3
Transporte retrógrado de ^{125}I-NTN en neuronas que se proyectan al pene
La ^{125}I-NTN (20 ng/ml) indujo un crecimiento de neuritas fuerte en ganglios trigeminales embrionarios de ratón (figura 4E), mientras que no hubieron neuritas en los ganglios de control cultivados en ausencia de factores neurotróficos (figura 4F). La ^{125}I-NTN y la NTN no radioactiva mostraron una eficacia neuritogénica similar a todas las concentraciones ensayadas (5-20 ng/ml, datos no mostrados). 24 horas después de la inyección de 200 ng de ^{125}I-NTN en los dos cuerpos cavernosos, la autorradiografía mostró marcaje en el MPG y el DRG S1 (figuras 4A y C). Aunque la resolución de la autorradiografía es limitada los granos de plata agrupados sugieren que el marcador está presente exclusivamente en los cuerpos de las células nerviosas. Para mostrar la especificidad del transporte se inyectó la misma cantidad de ^{125}I-NTN junto con un exceso de NTN no marcada. Esto bloqueó el transporte retrógrado dado que la radioactividad en el MPG y el DRG se volvió apenas detectable, si es que la había (figuras 4B, D y G). La figura 4G muestra que después de la inyección de ^{125}I-NTN se detectaron cantidades significativas de radioactividad sólo en los ganglios que inervan el pene, es decir, el MPG y el DRG S1. Para excluir el efecto bloqueador del exceso de proteína, se inyectó también ^{125}I-NTN con exceso de citocromo c. Esto aumentó el transporte retrógrado de ^{125}I-NTN, indicando posiblemente que el exceso de citocromo c puede inhibir la unión no específica de ^{125}I-NTN a la jeringa y
tejidos.
Resultados 4
Expresión del ARNm de NTN en el pene después de la axotomía del nervio cavernoso bilateral
La figura 5 muestra que la expresión del ARNm de NTN en el pene permanece relativamente inalterada después de la axotomía del nervio cavernoso bilateral.
Resultados 5
Pérdida de tinción de NADPH diaforasa en los nervios del pene de ratones GFR\alpha2^{-/-}
Durante el examen histoquímico de la parte proximal del cuerpo esponjoso y de los pilares del pene ("crura penis") de ratones de tipo salvaje y GFR\alpha2^{-/-}, se notó un patrón claramente diferente de fibras nerviosas positivas a NADPH. Los ratones GFR\alpha2^{-/-} presentaron muy pocas fibras positivas a NADPH en los nervios dorsales, mientras que la densidad de fibras en ratones de tipo salvaje fue similar a la descrita en ratas (Jung, 1998) (figuras 6A, B y E). No hubo una clara diferencia en el patrón de tinción de los nervios que inervan los vasos cavernosos en los pilares del pene (figuras 6C y D). Sin embargo, en los pilares del pene las fibras positivas a NADPH se redujeron significativamente en la parte exterior del área perivascular (figuras 6C, D y E).
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Resultados 6
Expresión del ARNm de GDNF en el cuerpo esponjoso del pene de rata adulta
En la figura 7A se observa el autorradiograma de la sección de tejido obtenida después de la hibridación con una ribosonda de GDNF marcada conS. Se observa una señal fuerte en la capa de células localizada en el límite entre la túnica albugínea y el tejido eréctil (figura 7A, C), mientras que no hubo señal detectable en las secciones hibridadas con una sonda sentido (figura 7B). Las células que expresan el ARNm de GDNF tienen núcleos prominentes, tal como muestra la tinción con hematoxilina (figura 7C). La tinción de las secciones adyacentes con anticuerpos a la vimentina o a S100beta mostraron inmunorreactividad en estas células (figuras 7D, E). Por otra parte, la tinción con anticuerpos a PGP 9,5 y a la alfa actina del músculo liso no mostró inmunorreactividad en estas células (datos no mostrados).
Resultados 7
Expresión del ARNm de GDNF en otros órganos pélvicos
Se observó un solo transcrito de GDNF de 4,4 kb en el pene (figura 8). Por otra parte, no hubo ninguna señal detectable en vejiga urinaria, vasos deferentes, colon, próstata o vesículas seminales. Transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF en las neuronas que se proyectan al pene, 24 horas después de la inyección de 200 ng de ^{125}I-GDNF en los dos cuerpos cavernosos, la autorradiografía mostró marcaje en el MPG y el DRG S1 (figura 10A, C). En los ganglios sensoriales el marcaje se observó en una proporción más elevada en neuronas de tamaño intermedio y grande. A pesar de la resolución limitada de la autorradiografía, los granos de plata agrupados sugieren que el marcador está presente exclusivamente en los cuerpos de las células nerviosas. Para mostrar la especificidad del transporte se inyectó la misma cantidad de ^{125}I-GDNF junto con un exceso de GDNF no marcado. Esto bloqueó el transporte retrógrado al MPG y DRG (figuras 10B y D y figura 9). La figura 9 muestra que después de la inyección intracavernosa de ^{125}I-GDNF se detectaron cantidades significativas de radioactividad sólo en neuronas que inervan el pene, es decir, en el MPG y el DRG S1. Para excluir el efecto bloqueador del exceso de proteína, se inyectó también ^{125}I-GDNF con un exceso de citocromo c. Esto no afectó el transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF.
Resultados 8
Actividad biológica de GDNF radiomarcado
El ^{125}I-GDNF y el GDNF parental (1 ng/ml) indujeron un crecimiento de neuritas comparable en ganglios trigeminales embrionarios de ratón (figuras 11A y B), mientras que no hubieron neuritas en los ganglios de control cultivados en ausencia de GDNF (figura 11C). La actividad de estimulación del crecimiento de neuritas fue similar entre el ^{125}I-GDNF y el GDNF no radioactivo a todas las concentraciones ensayadas (1-20 ng/ml, datos no mostrados).
Resultados 9
Expresión de los ARNm de NT-3, NGF y BDNF en el cuerpo esponjoso del pene de rata adulta
La expresión del ARNm de NT-3 y NGF en el pene de rata adulta se observó en el cuerpo esponjoso del pene de rata adulta mediante hibridación in situ (datos no mostrados) y en la transferencia Northern (Fig. 13).
Resultados 10
Transporte retrógrado de NGF, BDNF y NT-3 en las neuronas del pene
Todas las proteínas estudiadas se transportaron a los ganglios sensoriales que inervan el pene de rata adulta después de la inyección al cuerpo esponjoso del pene, indicando la existencia de receptores funcionales. Sólo el NT-3 se transportó al ganglio pélvico mayor (figuras 14A-C).
Resultados 11
Expresión del ARNm de GFR\alpha3 en el MPG y el DRG S1
En el MPG de rata adulta se expresó el ARNm de GFR\alpha3 en la mayor parte de las neuronas de tamaño grande, es decir, las adrenérgicas cortas que no se proyectan al pene (Dail 1996), pero sólo en algunas de las neuronas de tamaño pequeño, es decir, las colinérgicas (figura 12A), mientras que las expresión del ARNm de Ret se observó en todo el ganglio (Fig. 12B). Por consiguiente, el ARNm de GFR\alpha3 se expresó en el 5,3 \pm 2,6% de las neuronas del MPG que se proyectan al pene, es decir, positivas a FG (media \pm S.D., las neuronas marcadas con FG se cuantificaron unilateralmente en tres ratas, n = 414). Dentro del DRG S1, la expresión de ARNm de GFR\alpha3 se observó preferentemente en células de tamaño pequeño e intermedio (figura 12C) y se detectó en el 45,6 \pm 6,3% de las neuronas que se proyectan al pene (figuras 12D, E) (media \pm S.D., las neuronas marcadas con FG se cuantificaron unilateralmente en tres ratas, n = 505).
Descripción detallada de los dibujos
Figura 1. Expresión del ARNm de NTN en el cuerpo esponjoso del pene. Se puede observar hibridación en las arterias dorsales (flecha pequeña), vena dorsal (flecha grande) y en los vasos sanguíneos y el músculo liso del cuerpo cavernoso (cc), tal como ilustran las imágenes de campo oscuro de los autorradiogramas. El asterisco indica la uretra, la punta de la flecha apunta al nervio dorsal y el inserto representa la hibridación en los vasos sanguíneos intracavernosales. [Barras de escala: 1 mm; inserto, 20 \mum].
Figura 2. Expresión de los ARNm de los componentes del receptor de NTN en el MPG. (A-C) Las imágenes de campo oscuro de secciones adyacentes muestran señales casi ubicuas para los ARNm de Ret, GFR\alpha2 y GFR\alpha1. (C) El círculo punteado indica un área rica en neuronas que se proyectan al pene. En este área la señal de GFR\alpha1 es más débil. (D y E) Las flechas apuntan las neuronas del MPG comarcadas con FG (D) y sonda de GFR\alpha2 (E). [Barras de escala: A-C, 150 \mum; D y E, 50 \mum].
Figura 3. Análisis por transferencia Northern de la expresión del ARNm de NTN en órganos pélvicos de rata adulta. Una sonda de NTN marcada con ^{32}P se hibridó a la membrana de transferencia con ARNm de los tejidos indicados (3 \mug/carril). El cerebro sirvió de control positivo. La hibridación de la sonda de GAPDH indica carga.
Figura 4. Transporte axonal retrógrado de ^{125}I-NTN desde el cuerpo esponjoso de pene al MPG y al DRG. (A y C) La autorradiografía muestra señales punteadas sobre los cuerpos de las células neuronales en el MPG (A) y el DRG S1 (C) 24 horas después de la inyección de ^{125}I-NTN (400 ng) en el cuerpo cavernoso. (B y D) El exceso de NTN no marcada suprimió el transporte retrógrado de ^{125}I-NTN al MPG (B) y al DRG S1 (D). (E y F) Crecimiento de neuritas en el ganglio trigeminal de ratón en el día embrionario 13, después de 3 días en gel de colágeno en presencia de 20 ng/ml de ^{125}I-NTN (E) y en su ausencia (F). Las neuritas se visualizaron mediante tinción con antineurofilamento. (G) Cuantificación y especificidad del transporte retrógrado de ^{125}I-NTN dentro del MPG y diferentes DRGs de rata adulta. Se inyectó ^{125}I-NTN en el pene sola o con un exceso de 100 veces de NTN no marcada o de citocromo c. Los resultados se expresan como media \pm SEM de 4 animales en cada grupo. *, P<0,05; **, P<0,01 (ANOVA con corrección de Scheffe). [Barras de escala: A-D, 100 \mum; E y F, 250 \mum].
Figura 5. Niveles de ARNm de NTN en pene de rata adulta después de la axotomía del nervio cavernoso bilateral (ax) o de la operación fingida. La hibridación Northern muestra que la expresión del ARNm de NTN no se ve afectada significativamente. El control representa el ARNm de ratas no tratadas. Cada carril corresponde al ARNm agrupado de cinco ratas. Con la hibridación de GAPDH se verifica una carga igual.
Figura 6. Histoquímica de la NADPH diaforasa en penes de ratones GFR\alpha2^{-/-} y de tipo salvaje. Secciones transversales de la parte proximal del cuerpo esponjoso del pene de ratones de tipo salvaje (A) y de GFR\alpha2^{-/-} (B). La tinción de los nervios del pene dorsales (flecha) disminuye radicalmente en ratones GFR\alpha2^{-/-}. (C y D) En los pilares del pene la tinción de las fibras nerviosas se reduce claramente aunque la tinción perivascular parece que se ve menos afectada. (E) Cuantificación de las fibras positivas a NADPH diaforasa en nervios dorsales y en el cuerpo cavernoso de los pilares del pene. Los resultados se expresan como media \pm SEM de 4 ratones de tipo salvaje y 4 GFR\alpha2^{-/-}. **, P<0,01 (Prueba t-Student de dos colas suponiendo varianzas diferentes). [Barras de escala: A-D, 100 \mum].
Figura 7. Expresión del ARNm de GDNF en el cuerpo esponjoso del pene (A, C). Se puede observar hibridación en el límite entre la túnica albugínea y el cuerpo cavernoso. (C) Un aumento superior muestra que las células subtunicales que expresan el ARNm de GDNF tienen núcleos prominentes, tal como muestra la tinción con hematoxilina. (B) La imagen de campo oscuro de la sección incubada con una sonda sentido no muestra hibridación. (D y E) Las secciones adyacentes teñidas con anticuerpos a la vimentina (D) o a S100beta (E) mostraron inmunorreactividad en células subtunicales. El asterisco indica la uretra, la punta de la flecha apunta al nervio dorsal. cc, cuerpo cavernoso; ta, túnica albugínea. [Barras de escala: A y B, 1 mm; C-E, 50 \mum].
Figura 8. Análisis por transferencia Northern de la expresión del ARNm de GDNF en órganos pélvicos de rata adulta. La sonda de GDNF marcada con ^{32}P se hibridó a la membrana de transferencia con ARNm de los tejidos indicados (3 \mug/carril).
Figura 9. Cuantificación y especificidad del transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF en el MPG y diferentes DRGs de rata adulta. Se inyectó ^{125}I-GDNF en el pene solo o con un exceso de 100 veces de NTN no marcada o citocromo c. Los resultados se expresan como media \pm SEM de 4 animales en cada grupo. *, P < 0,05; **, P < 0,01 (ANOVA con corrección de Scheffe).
Figura 10. Transporte axonal retrógrado de ^{125}I-GDNF desde el cuerpo esponjoso del pene al MPG y al DRG. (A y C) La autorradiografía muestra señal puntuada sobre los cuerpos de las células neuronales en el MPG (A) y el DRG S1 (C) 24 horas después de la inyección de ^{125}I-GDNF (400 ng) en el cuerpo cavernoso. (B y D) El exceso de GDNF no marcado suprimió el transporte retrógrado de ^{125}I-GDNF hasta el MPG (B) y el DRG S1 (D). [Barras de escala: A-D, 100 \mum].
Figura 11. (A y B) Crecimiento de neuritas en ganglios trigeminales de ratón en el día embrionario 13 después de 3 días en gel de colágeno en presencia de 1 ng/ml de ^{125}I-GDNF (A), GDNF (B) o en ausencia de factores neurotróficos (C). Las neuritas se visualizaron mediante tinción con antineurofilamento. [Barras de escala: A-C, 500 \mum].
Figura 12. Expresión de los ARNm de GFR\alpha3 y Ret en el MPG de rata adulta, y de ARNm de GFR\alpha3 en el DRG S1. (A, B) Las imágenes de campo oscuro de secciones adyacentes muestran señales prominentes para GFR\alpha3 y Ret en el MPG. La señal de GFR\alpha3 se observa principalmente en neuronas de tamaño grande (A), mientras que la señal de Ret se observa en todo el ganglio (B). El inserto en A representa la imagen de campo brillante de la sección del MPG hibridada con la sonda de GFR\alpha3. Las puntas de las flechas apuntan a neuronas de tamaño pequeño que no expresan el ARNm de GFR\alpha3. (C) Imagen de campo oscuro que muestra la señal de GFR\alpha3 sobre neuronas en el DRG S1. (D, E) Las flechas pequeñas indican las neuronas del DRG S1 comarcadas con FG (D) y la sonda de GFR\alpha3 (E). La punta de la flecha apunta a una neurona marcada con FG (D), que no expresa ARNm de GFR\alpha3 (E). [Barras de escala, (A-C) 250 \mum; (D, E) 50 \mum].
Figura 13. Análisis por transferencia Northern de la expresión de los ARNm de NGF, BDNF y NT-3 en órganos pélvicos de rata adulta. Las sondas marcadas con ^{32}P se hibridaron a las membranas de transferencia con ARNm de los tejidos indicados. (3 \mug/carril). El cerebro sirve de control positivo. La hibridación de la sonda de GAPDH indica carga.
Figura 14. Cuantificación y especificidad del transporte retrógrado de ^{125}I-NGF, ^{125}I-BDNF e ^{125}I-NT-3 dentro del MPG y diferentes DRGs de rata adulta. Las neurotrofinas yodinadas se inyectaron solas en el pene, con un exceso de 100 veces de neurotrofina no marcada o citocromo.
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Claims (6)

1. Utilización de un factor neurotrófico, que es una neurturina (NTN), un factor neurotrófico derivado de células gliales (GDNF), o variantes de los mismos sustituidas de forma conservadora, solos o en cualquier combinación, o secuencias de nucleótidos que codifican dichos factores neurotróficos para la fabricación de un producto médico para el tratamiento de disfunciones eréctiles del pene.
2. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque el factor neurotrófico es NTN.
3. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque el factor neurotrófico es GDNF.
4. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque la disfunción eréctil del pene está causada por traumatismo peneano agudo, cirugía del pene, cirugía prostática, cirugía de la vejiga u otras cirugías pélvicas.
5. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque el producto médico se puede administrar por vía intracavernosa.
6. Utilización, según la reivindicación 1, caracterizada porque el producto médico, además del factor neurotrófico, comprende, como mínimo, un agente auxiliar opcional farmacéuticamente aceptable que es compatible con la vía de administración.
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