ES2265798A1 - Uso de flavonoides para disminuir la excrecion en leche de avermectinas y/o milbemicinas. - Google Patents
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Abstract
Uso de flavonoides para disminuir la excreción en leche de avermectinas y/o milbemicinas. La administración de los flavonoides a animales rumiantes productores de leche a los que se les administra un fármaco del grupo de las avermectinas y/o del grupo de las milbemicinas disminuye la concentración del fármaco excretada a leche, disminuyendo el riesgo para el consumidor de ingerir cantidades superiores a las consideradas tolerables según la legislación. En el caso concreto de la moxidectina, su coadministración con quercitina a ovejas disminuye claramente la cantidad total de moxidectina excretada a la leche, así como la relación entre la moxidectina excretada a leche y la moxidectina que circula en el plasma, sin que la concentración circulante en plasma aumente sustancialmente. Este efecto es extrapolable a otros animales rumiantes y a otros diversos flavonoides.
Description
Uso de flavonoides para disminuir la excreción
en leche de avermectinas y/o milbemicinas.
La invención se refiere a la utilización de
flavonoides, sustancias naturales presentes en multitud de
alimentos de origen vegetal, para disminuir la excreción en leche
de fármacos antiparasitarios del grupo de las avermectinas o del
grupo de las milbemicinas. Más concretamente, la invención se
refiere a la administración concomitante de algún flavonoide, con
el propósito de disminuir la excreción del fármaco en la leche. Por
ser los animales habitualmente utilizados como productores de
leche, la invención está especialmente dirigida a los animales
rumiantes. En cuanto al fármaco antiparasitario, la invención se
refiere especialmente a la milbemicina denominada moxidectina,
fármaco con un ratio leche/plasma superior a otros antiparasitarios
de estructura molecular estrechamente relacionados como puede ser la
ivermectina.
Las avermectinas y milbemicinas se consideran
como lactonas macrocíclicas estrechamente relacionadas entre sí
(Takiguchi y cols., 1980). Estructuralmente, son derivados
semisintéticos procedentes de productos de fermentación bacteriana
de Streptomyces, y presentan similar actividad biológica.
Estos macrólidos son compuestos endectocidas muy utilizados en
medicina veterinaria por su amplio espectro de actividad frente a
diversas parasitosis. Las milbemicinas, familia a la que pertenece
la moxidectina, se descubrieron en 1973; sin embargo, el verdadero
potencial de estos compuestos no se conoció hasta 1975, cuando
científicos de Merck descubrieron la actividad frente a ácaros,
insectos y nemátodos de las avermectinas (Egerton y cols., 1979).
La moxidectina, al igual que los fármacos del mismo grupo, es un
agonista del GABA, pero aún falta mucho por aclarar debido a que
este medicamento presenta efecto contra parásitos resistentes a
otras ivermectinas, lo que sugiere un diferente y desconocido
mecanismo de acción, Se ha descrito que la moxidectina es eficaz
frente a Otostrongylus circumlitus y Parafilaroides
gymnurus (Vercruysse y cols., 2003), Trichostrongylus
colubriformis (Williams y De Rosa, 2003), Haemonchus
contortus (Paiement y cols., 1999). También se ha demostrado la
eficacia de la moxidectina en ganado infestado naturalmente con
Chorioptes bovis y Sarcoptes scabiei (Losson y
Lonneux, 1993), agentes causantes de la sarna. Por otra parte, estos
compuestos tienen un efecto tóxico en los organismos acuáticos y en
los escarabajos coprófagos, aunque poco duradero por su depósito y
fotodegradación. Su toxicidad en mamíferos y aves es baja.
Los estudios desarrollados en lactonas
macrocíclicas, y entre ellas la moxidectina, demuestran que estos
fármacos son excretados hacia la leche en diferentes especies
animales, incluidas especies de interés ganadero para la producción
de leche. En el caso concreto de la moxidectina y de la avermectina
conocida como doramectina, Carceles y cols. (2001) estudiaron su
cinética en cabras, encontrando que la fracción total de la dosis
de moxidectina recuperada en la leche fue aproximadamente 7,7 veces
mayor que la de la doramectina. Otro estudio realizado en camellos
lactantes demostró que existen grandes diferencias entre los
perfiles plasmáticos y de leche de la moxidectina; en este caso,
tanto los valores de concentración máxima (Cmax) como de área bajo
la curva (AUC) fueron de tres a cuatro veces mayores en leche que en
plasma y los ratios leche/plasma en esta especie fueron casi cuatro
veces mayores en el caso de la moxidectina que en el caso de otra
avermectina, la ivermectina (4,01 vs. 1,26) (Oukessoy y cols.,
1999). Imperiale y cols. (2004) estudiaron los modelos de excreción
de leche de estos dos fármacos, comprobando que ambos fármacos se
distribuyen ampliamente desde la sangre hacia la leche, siendo
especialmente significativo el caso de la moxidectina, con un ratio
leche/plasma de 18,5 frente a un ratio de 2,5 en el caso de la
ivermectina.
Los mecanismos por los cuales las avermectinas,
milbemicinas y otros diversos fármacos pasan al tejido mamario,
siendo muchos de ellos secretados en la leche, suscitan un elevado
interés por su relación con la aparición de residuos en leche. Estos
residuos pueden constituir un peligro para la salud al poder ser
tóxicos para los seres humanos, provocarles alergias o
hipersensibilidad o incluso ser mutagénicos, teratogénicos o
carcinogénicos (McManaman y Neville, 2003).
En el caso de los animales, la presencia de
fármacos en leche esta regulada, de forma explícita, a través de
las agencias de control de medicamento. Así, la normativa legal
(EMEA/CVMP/187/00-FINAL, Council Regulation Nº
2377/90) exige la espera, por parte de los productores, de un tiempo
mínimo que garantice la eliminación del fármaco hasta niveles
inferiores a los límites máximos de residuos. Los tiempos de
supresión establecidos para los macrólidos, en comparación con otros
fármacos de uso común en Veterinaria, son muy elevados. Tras su
administración subcutánea, se difunden por todo el organismo y se
acumulan en el hígado y el tejido adiposo, siendo su eliminación
muy lenta. El tiempo de supresión en carne requerido para la
ivermectina son 21-28 días cuando es administrada
por vía subcutánea. El tiempo de supresión se asocia con pérdidas
económicas y existen referencias que demuestran que no siempre se
cumplen los tiempos de espera reglamentarios (Imperale y cols.,
2004), con lo que no sólo se incumplen las normas y directrices
adoptadas para la seguridad en el uso de medicamentos veterinarios,
sino que no queda garantizada para el consumidor la inocuidad de
los productos de origen animal a su disposición. Imperiale y cols.
(2002) señalan específicamente que la utilización de ivermectina y
moxidectina es generalizada en vacas, ovejas y cabras; estos
fármacos se usan a menudo con carácter preventivo, siendo
inoculados en el mismo momento a todos los animales de la
explotación, lo que hace muy costoso para el ganadero tener que
respetar los tiempos de espera hasta que los residuos presentes en
la leche han descendido hasta los niveles a partir de los cuales
está autorizado que la leche se utilice para el consumo humano. La
situación es especialmente problemática en el caso de la
moxidectina, cuya vida media en bovinos es de 9 a 11 días en
promedio, con un efecto residual de tres semanas. Lespine y cols.
(2004), quienes realizaron estudios en ovejas, señalan niveles de
moxidectina en el plasma de estos animales hasta 11 días tras dosis
subcutánea (0,2 mg/kg) y de 8 días en administración oral. En
estudios farmacocinéticos en cabras, Carceles y cols., (2001)
señalan valores de MRT (tiempo medio de residencia del fármaco) de
15 días para la moxidectina administrada a una dosis de 0,2 mg/kg
por vía subcutánea, la más habitual. Esta problemática ha hecho que
la European Agency for the Evaluation of Medicinal Products (EMEA)
contemple la presencia de los residuos de moxidectina en leche de
vacas y de ovejas y, recientemente (en el año 2001 en el caso de
bovino y en el 2004 en el caso de ovino) se han incluido enmiendas
que fijan niveles máximos legales residuales en leche para la
moxidectina de 44 \mug/kg de leche, tanto si la leche es de oveja
como de vaca. Los niveles que se alcanzan en la leche dependen de la
vía de administración, que en general es subcutánea. En el informe
de la EMEA incluido en la enmienda se señala que, en el caso de las
ovejas, los valores legales admisibles para la moxidectina en leche
se alcanzan al quinto ordeño (aproximadamente 3 días) tras
administración oral, sin indicar la dosis. En el trabajo de
Imperiale y cols. (2004), cuando se administra una dosis subcutánea
de 0,2 mg/kg, los niveles legales se alcanzan tras
5-6 días.
Todo ello indica que, en general, modular el
transporte de fármacos a la leche es importante para controlar los
niveles de residuos y acortar los tiempos de supresión, siendo esta
necesidad de particular importancia en el caso de fármacos como la
moxidectina, que son de uso generalizado en rumiantes y que
presentan un elevado tiempo medio de residencia en el animal, lo
que da lugar a la aparición de elevadas concentraciones de dicho
fármaco en la leche de vacas, ovejas y otros productores de leche
durante tiempo prolongado. El hallazgo de algún método que
propiciara una disminución de la aparición de residuos de estos
fármacos en leche, permitiría su utilización en productores de
leche. Para ello, sin embargo, sería interesante conocer cuál es el
mecanismo mediante el cual estos fármacos pasan a leche.
Se sabe que la transferencia de fármacos a leche
está determinada por factores como la ionización, el grado de unión
a las proteínas del plasma, el peso molecular y la lipofilicidad
del fármaco. Las características bioquímicas de la leche,
relacionadas con su bajo pH y el elevado contenido lipídico,
también contribuyen a este fenómeno (Ito y Lee, 2003). En el caso
concreto de la ivermectina y la moxidectina, el elevado ratio
leche/plasma (uno de los factores de predicción para el
establecimiento de la secreción activa de fármacos hacia la leche)
obtenido tras estudios farmacocinéticos induce a pensar que podría
haber algún mecanismo de transporte activo implicado en el paso de
estos fármacos desde la sangre hacia la leche, es decir, alguna
proteína transportadora, presente en la glándula mamaria, que
participara en la secreción activa de la moxidectina y la
ivermectina hacia la leche, pero esta hipótesis aún no ha sido
demostrada. A veces, esta predicción se realiza con distintos
modelos, contemplando factores de naturaleza
físico-química (Agatonovic-Kustrin y
cols., 2002) y estableciéndose la correlación con los estudios
farmacocinéticos, pero en la actualidad se desconoce cuál es el
ratio leche/plasma esperado para estos fármacos según los modelos
matemáticos. Con todo ello, la posible implicación de alguna
proteína transportadora en la secreción de la moxidectina hacia la
leche y el grado de contribución que el mecanismo de transporte
activo mediado por dicha proteína transportadora pudiera tener
están aún por establecer.
El uso de nuevas tecnologías en biología
molecular ha permitido profundizar en el estudio de los mecanismos
a través de los cuales fármacos y metabolitos de los mismos pasan
al tejido mamario, siendo muchos de ellos excretados a la leche.
Así, existen algunas evidencias que señalan a los macrólidos como
sustratos y/o inhibidores de los transportadores de tipo ABC
(ATP-Binding-Casette), que
son un numeroso grupo de proteínas "exportadoras" dependientes
de ATP, y que juegan un importante papel en la biodisponibilidad de
muchos fármacos. Entre ellos, la glicoproteína P/MDR1
(P-gp), que es el transportador ABC mejor
caracterizado hasta el momento. Schinkel y cols., (1994), en un
estudio realizado en ratones, demostraron que la ivermectina,
macrólido perteneciente a la familia de las avermectinas, es un
excelente sustrato del Mdr1, homólogo de la P-gp en
esta especie. Dos años después, Didier y Loor, (1996) estudiaron en
ratones el efecto de un potente inhibidor de la
P-gp, el PSC 833, y observaron una fuerte
inhibición de la P-gp en la barrera hematoencefálica
asociada a una disfunción del sistema nervioso central provocada
por la presencia de ivermectina en dicho sistema. Otro estudio
realizado por estos autores demostró que la ivermectina, actuando
como inhibidor de la P-gp, es capaz de revertir
algunas situaciones de multirresistencia frente a antitumorales,
asociadas a este transportador. El estudio realizado en líneas
celulares resistentes mostró que la ivermectina era 4 y 9 veces más
potente que la ciclosporina A y el verapamilo, respectivamente
(Didier y Loor; 1995), ambos compuestos son considerados como
buenos sustratos de la P-gp. Recientemente,
Korystov y cols., (2004) mediante citometría de flujo, observaron
que en células tumorales (líneas Hep2 y P388), las avermectinas
inhibían el transporte de la rodamina 123, conocido sustrato de la
P-gp. Los estudios in vivo, realizados por
Molento y cols. (2004) en ovejas, confirman la interacción entre el
verapamilo y la ivermectina. Los autores observaron que la
administración de verapamilo incrementa significativamente la
biodisponibilidad plasmática de ivermectina cuando se comparó con el
tratamiento control.
Griffin y cols., (2005) estudiaron el transporte
in vitro de la ivermectina, selamectina y moxidectina en dos
modelos celulares que expresan P-gp; células
epiteliales de intestino (Caco-2) y linfocitos
caninos. Los autores observaron que la ivermectina, selamectina y
moxidectina son sustratos de la P-gp con ratios
absorción/secreción de 7,5; 4,7; y 2,6, pero el verapamilo,
inhibidor de la P-gp, solamente inhibió el
transporte de la ivermectina y la selamectina.
La moxidectina también ha sido estudiada para
conocer su posible relación con los transportadores ABC,
específicamente la P-gp. En este sentido, se ha
estudiado, en cultivos de hepatocitos de rata, la influencia del
verapamilo sobre la moxidectina, observándose que la cantidad de
moxidectina en las células se incrementa después de 24, 48, y 72
horas de cultivo, resultado que hizo pensar que la
P-gp podría estar implicada en el transporte de la
moxidectina (Dupuy y cols., 2001). Posteriormente, estos autores
investigaron, utilizando estos mismos cultivos primarios y
farmacocinéticas realizadas en corderos, la interacción de la
moxidectina con distintos sustratos e inhibidores de la
P-gp: la ivermectina, el ketoconazol y la
quercitina, un flavonoide ampliamente presente en productos
naturales, varios de ellos utilizados en alimentación de rumiantes,
del que se conoce, como de otros flavonoides, que puede ser
sustrato e inhibidor de las proteínas transportadoras de tipo ABC
(Imai y cols., 2004). Los resultados mostraron únicamente cierta
correspondencia entre los estudios in vivo e in vitro
en el caso de la quercitina, que aumentó la acumulación de
moxidectina en los cultivos e incrementó significativamente la
biodisponiblidad plasmática del fármaco en los corderos, mientras
que la ivermectina, que es muy buen sustrato de la
P-gp, no modificó los niveles plasmáticos de la
moxidectina (Dupuy y cols., 2003). En el ensayo, realizado con
ratones macho, no se determinó la posible influencia que la
quercitina pudiera tener en el secreción de la moxidectina a leche,
ni sus autores sugirieron que tal relación pudiera existir. En
cuanto a la posible implicación de la P-gp en el
transporte activo de la moxidectina en glándula mamaria, si bien es
cierto que, mediante técnicas de inmunohistoquímica y utilizando el
anticuerpo MRK-16, se ha detectado la presencia de
la proteína P-gp en el epitelio mamario humano (van
der Valk y cols., 1990; Scala y cols., 1995), llaman la atención
las evidencias que demuestran una supresión de la expresión de la
P-gp en el epitelio mamario en lactación (Alcorn y
cols., 2002). El mecanismo involucrado en este fenómeno aún se
desconoce; sin embargo, se sabe que citoquinas
pro-inflamatorias suprimen la expresión de la
P-gp (Sukhai y cols., 2001), lo que hace pensar que
estas moléculas podrían estar implicadas en este fenómeno. También
se ha demostrado la expresión del gen por RT-PCR y
la proteína (detectada por el anticuerpo MRK16) en las células
epiteliales mamarias humanas (línea celular MCF12A); sin embargo,
los niveles de expresión de la proteína son demasiado bajos para
mostrar actividad transportadora de los compuestos hidrofóbicos
cargados positivamente, considerados sustratos de esta proteína
(Ito y Alcorn., 2003). La ausencia de la P-gp en
glándula mamaria de vacas y ratones fue confirmada por el equipo del
Dr. Schinkel (Jonker y cols., 2005). Estos resultados excluyen la
presencia de la glicoproteína P como un transportador mayoritario
presente en el epitelio mamario de rumiantes, hecho que descarta
que esta proteína pueda estar implicada en el transporte activo de
la moxidectina a leche.
A diferencia de la P-gp, si se
ha demostrado la expresión de otros transportadores de tipo ABC en
glándula mamaria durante el período de lactación. Los estudios de
Alcorn y cols. (2002) demostraron la expresión de los
transportadores MRP1, MRP2, y MRP5 en células epiteliales de
glándula mamaria en lactación, aunque la localización celular y la
función exacta de estos transportadores en el epitelio mamario no
ha sido aún estudiada. Estudios más recientes realizados por Jonker
y cols., (2005), han demostrado que la glándula mamaria de ratones
en lactación (2 semanas) no expresa ni P-gp, ni
Mrp1 y ni Mrp2. En relación a ABCG2/BCRP, estudios
inmunohistoquímicos y por western blot, realizados en
diferentes estados de desarrollo del epitelio mamario, han revelado
que la Bcrp1, homólogo de la BCRP en ratón, no se expresa en
vírgenes de 8 ó 14 semanas de edad, pero durante la preñez y
especialmente en la lactación aumenta considerablemente,
disminuyendo rápidamente su expresión durante la involución. Estos
estudios además demostraron que la Bcrp1 se localiza principalmente
en la membrana apical de las células epiteliales alveolares
mamarias, no detectándose en los conductos principales. Este patrón
de expresión de la BCRP también fue observado en vacas y humanos
(Jonker y cols., 2005). En esta misma publicación se indica que la
BCRP es responsable de la secreción activa de diversas sustancias
con importancia clínica y toxicológica, entre las que se encuentran
tanto carcinógenos como el PhIP como fármacos tales como el
topotecán y la cimetidina, por lo que todos aquellos fármacos que
se apliquen durante la lactación de seres humanos y animales
productores de leche, que sean buenos sustratos de la BCRP y cuya
concentración en leche no sea deseable, deberían evitarse durante la
lactación, sugiriéndose también la inhibición farmacológica de
dicho transportador como una posibilidad para evitar la
concentración de sustancias indeseadas en leche. En una reciente
revisión elaborada por miembros del mismo grupo (Van Herwaarden AE y
Schinkel AH, 2006) se sugiere también que la aplicación de un
inhibidor de la BCRP podría ser interesante cuando se desea modular
la concentración en leche de fármacos suministrados a animales
productores de leche, aunque se especifica claramente que lo más
preferible sería que el inhibidor elegido no pasará a la leche. En
ninguno de estos dos trabajos, sin embargo, se menciona que entre
los posibles fármacos candidatos a sustratos de la BCRP se
encuentre la moxidectina ni se indica qué compuestos podrían ser
adecuados para disminuir la concentración en leche de este
antiparasitario o de lactonas macrocíclicas del grupo de las
avermectinas. Una posible interacción de la moxidectina con la BCRP
está por demostrar. Es más, Dupuy y cols., trabajando con
hepatocitos, han excluido la interacción de la BCRP con moxidectina,
aunque la interpretación de este estudio in vitro es
compleja, porque en el hepatocito se expresan multitud de
transportadores y enzimas que pueden influir en el metabolismo de
la
moxidectina.
moxidectina.
En conclusión, los mecanismos por los cuales la
moxidectina y otras lactonas macrocíclicas aparecen en la leche
están todavía por dilucidar. Aunque existen evidencias que parecen
indicar que podría existir un transporte activo implicado en dicha
secreción, no se ha dilucidado el grado de importancia que este
transporte activo pueda tener en la aparición de moxidectina en
leche con respecto al transporte pasivo por difusión ni qué
proteína o proteínas podrían ser los transportadores responsables de
dicho transporte. Aunque se ha demostrado la expresión en glándula
mamaria en lactación de algunos transportadores tipo ABC, como por
ejemplo la BCRP, no se ha demostrado que esta proteína esté
implicada en el transporte activo de moxidectina a leche. La falta
de conocimientos sobre los factores específicos que determinan la
aparición de la moxidectina en leche y el mecanismo por el que es
transferida desde la sangre al alveolo mamario ha dificultado que
alguien se plantee modular su aparición en leche, idea que no
aparece específicamente mencionada en ninguno de los documentos
citados y para la que no existen estudios previos en los que se
desarrolle. Sin embargo, teniendo en cuenta que su utilización es
generalizada en vacas, ovejas y cabras, que aparece en leche en
concentraciones elevadas presentando un ratio leche/plasma altísimo
(18,5) y que el tiempo medio de residencia del fármaco en los
animales es también elevado, sería interesante encontrar la forma de
disminuir la concentración de aparición de este fármaco en leche.
Ello permitiría plantearse la autorización de su uso para el
tratamiento de animales productores de leche, una disminución de los
tiempos de espera necesarios para autorizar el consumo por parte de
seres humanos de leche procedente de dichos animales y una
disminución del riesgo de ingestión de moxidectina o de lactonas
macrocíclicas de grupos de las avermectinas junto con la leche
consumida. La presente invención proporciona una solución a este
problema.
Para ello se recurre a los flavonoides, un grupo
de compuestos ampliamente presentes en los productos naturales.
Constituyen una de las clases más características de compuestos de
las plantas superiores, en las que aparecen, por ejemplo, tanto como
pigmentos de las flores en la mayor parte de las familias de las
angiospermas como en cualquier otra parte de la planta. Los
flavonoides se encuentran en una amplia gama de alimentos de origen
vegetal, como los cítricos, la soja, las manzanas, el té, las uvas o
los arándanos.
La definición genérica de "flavonoides" se
aplica a un grupo de compuestos polifenólicos, en general solubles
en agua, que poseen 15 átomos de carbono, dispuestos de tal manera
que forman 2 anillos de benceno unidos por tres átomos de carbono,
átomos de carbono que pueden formar un brazo lineal o formar parte a
su vez de un tercer ciclo que incluye también un átomo de O. La
estructura química de los flavonoides puede considerarse basada en
un esqueleto de 15 átomos de carbono con un anillo de cromano (C)
que soporta un segundo anillo aromático B en la posición 2, 3 ó 4,
tal como se muestra a continuación en la Fórmula I:
aunque, en algunos casos, el anillo
heterocíclico C, en lugar de constar de seis miembros, consta de
cinco miembros (caso de las auronas, cuya estructura general se
muestra en la Fórmula II) o se presenta en una forma abierta (como
es el caso, por ejemplo, de las chalconas, grupo al que corresponde
el compuesto representado en la Fórmula III, que es precisamente el
compuesto que da nombre al subgrupo, la
chalcona):
Los flavonoides se dividen en distintos
subgrupos siguiendo distintos criterios, lo que da lugar a
distintas clasificaciones según los autores. Atendiendo a criterios
como los patrones de sustitución de los carbonos que pueden
conformar el ciclo C de la Fórmula I, el estado de oxidación de
dicho anillo heterocíclico, la posición del anillo B y la
sustitución del anillo heterocíclico C por una forma abierta, pueden
distinguirse siete subgrupos principales, que son los de:
isoflavonoides o isoflavonas (en los que, a diferencia de los demás
subgrupos, el anillo B se une al anillo C en la posición 3 en lugar
de en la posición 2), flavonas, flavonoles, flavanonas,
flavonololes, antocianinas y chalconas. Entre los flavonoides más
conocidos se incluyen genisteína, daidzeína, quercitina, rutina,
hesperetina o los flavonoides de los cítricos.
Al estar ampliamente extendidos entre los
alimentos de origen vegetal, los flavonoides forman parte de la
dieta habitual tanto de los seres humanos como de los animales.
Pueden encontrarse cantidades considerables de isoflavonas y de sus
metabolitos en productos animales tales como la leche y los huevos,
a los que se transfieren de forma natural, lo que no supone ningún
problema dada su inocuidad. En la leche de vaca se encuentran
daidzeína y genisteína, así como el metabolito de esta última
conocido como equol, en concentraciones del rango de \mug/litro
(Antignac y cols., 2003).
Aunque no están considerados nutrientes
esenciales, algunos flavonoides parecen tener efectos beneficiosos
sobre la salud como el reforzamiento de los capilares y otros
tejidos conectivos, la protección de los vasos sanguíneos, o efectos
antiinflamatorios, antihistamínicos, antivirales o antioxidantes.
Para algunos de ellos, se ha sugerido incluso una capacidad
antitumoral (Moon y cols., 2006). Entre ellos se encuentra la
llamada quercitina o quercetina, que pertenece a la familia de los
flavonoles y es una 3,5,7,3',4'-pentahidroxiflavona
(2-(3,4-dihidroxifenil)-3,5,7-trihidroxi-4H-1-benzopiran-4-ona),
compuesto al que muchas plantas medicinales parece deber gran parte
de su actividad. Junto con la rhamnosa, forma el glicósido
quercitrina. Los alimentos ricos en quercitina incluyen manzanas,
té, cebolla, uvas tintas, cítricos, hortalizas de hoja verde y
cerezas. Su fórmula estructural es la que se muestra a
continuación:
Se sabe que los flavonoides pueden ser sustratos
e inhibidores de las proteínas transportadoras de tipo ABC (Imai y
cols, 2004), incluidos la glicoproteína P y la BCRP. Zhang y cols.
(2005), realizando ensayos con 25 flavonoides pertenecientes a los
subgrupos de las flavonas, isoflavonas, chalconas, flavonoles y
flavanonas, encontraron que todos los flavonoides ensayados eran
capaces de incrementar la acumulación de un sustrato de la BCRP, la
mitoxantrona, en más de un 300% con respecto a células que no
expresaban BCRP, aunque existen sensibles diferencias en la
capacidad inhibitoria de la BCRP que presenta cada flavonoide,
dependiendo de características estructurales tales como la
presencia del doble enlace entre los carbonos de las posiciones 2 y
3 del anillo C y la posición de un unión del ciclo B, que es
preferiblemente la posición 2. En esta publicación y en trabajos
previos (Zhang y cols., 2004b), se muestra como tanto la genisteína
como la daidzeína, ambos compuestos flavonoides presentes en la
soja, son potentes inhibidores del transportador de tipo ABC,
ABCG2/BCRP con valores EC_{50} (\muM) de 14,9 \pm 2,69 y
57,3 \pm 15,8. El grupo de estos mismos autores (Zhang y cols.,
2004a) ha demostrado también que la quercitina es capaz de inhibir a
diversos transportadores de tipo ABC. En ninguna de estas tres
publicaciones, sin embargo, se demuestra que la quercitina tenga
capacidad de inhibir la BCRP in vivo. Tampoco se menciona
una posible relación entre la administración de quercitina o
cualquier otro flavonoide a animales y una posible disminución de
la transferencia de fármacos a la leche.
En la presente invención sí se establece esa
relación, proporcionando con ello un modo de disminuir los tiempos
de espera necesarios para que las concentraciones en leche de
fármacos como la moxidectina y la ivermectina desciendan hasta
niveles que hagan aceptable su consumo por el ser humano.
La presente invención proporciona un medio de
disminuir los tiempos de espera necesarios para que se alcancen en
la leche de animales rumiantes los niveles aceptables para el
consumo humano de fármacos de uso común en rumiantes como las
avermectinas y las milbemicinas, que son transferidos a la leche
producida por estos animales y que requieren tiempos de espera
prolongados hasta que su concentración en la leche desciende hasta
los niveles máximos admitidos para que esa leche pueda ser
destinada al consumo humano. La solución aportada por la presente
invención es administrar al animal, junto con el fármaco, uno o más
compuestos del grupo de los flavonoides, sustancias que forman
parte de la dieta natural tanto de los animales como de los seres
humanos.
Por tanto, la presente invención se refiere al
uso de flavonoides para disminuir la excreción de un fármaco del
grupo de las avermectinas o del grupo de las milbemicinas, en leche
de animales rumiantes, mediante la administración al animal de uno o
más compuestos flavonoides de forma concomitante a la
administración del fármaco. En una realización particularmente
preferida de la invención, el fármaco cuya excreción en la leche se
desea disminuir es la moxidectina, que pertenece al grupo de las
milbemicinas. En una realización preferida de la invención, el
flavonoide que se administra al animal se elige entre la
quercitina, la genisteína o la daidzeína.
En cuanto a la vía de administración de los
flavonoides, se prefiere una vía que permita la interacción del
flavonoide con el fármaco cuando éste último alcance elevados
niveles plasmáticos, como puede ser la vía intramuscular,
intravenosa o subcutánea.
La Fig. 1a muestra un gráfico en el que se
representan las concentraciones plasmáticas de moxidectina, en
microgramos por mililitro, frente al tiempo, medido en horas, tras
la administración intravenosa de moxidectina (0,2 mg/kg) sin
administración de flavonoides (grupo control MOXI, datos
representados mediante cuadrados rellenos, 100 ) y
tras su coadministración con quercitina subcutánea a una dosis de 10
mg/kg (grupo MOXI+QUER, datos representados mediante
circunferencias sin relleno, 101 ) en ovejas
merinas.
La Fig. 1b muestra un gráfico en el que se
representan las concentraciones en leche de moxidectina, en
microgramos por mililitro, frente al tiempo, medido en horas, tras
la administración intravenosa de moxidectina (0,2 mg/kg) sin
administración de flavonoides (grupo control MOXI, datos
representados mediante cuadrados rellenos, 100 ) y
tras su coadministración con quercitina subucutánea a una dosis de
10 mg/kg (grupo MOXI+QUER, datos representados mediante
circunferencias sin relleno, 101 ) en ovejas
merinas.
La invención se basa en la hipótesis
anteriormente expuesta de que el paso de la moxidectina a la leche
podría estar mediado por un transporte activo, en el que podrían
estar implicadas proteínas transportadoras del tipo ABC,
probablemente la BCRP. De acuerdo con ello, el grupo de los
inventores pensó que la secreción láctea de moxidectina podría ser
modulada en rumiantes mediante la administración de flavonoides,
compuestos presentes de forma natural tanto en la alimentación de
los animales como de los seres humanos, que tienen la ventaja
adicional de que están ampliamente reconocidos como inocuos y que
para muchos de ellos se conocen, incluso, efectos beneficiosos para
la salud. Presentan la particularidad de que pueden ellos mismos
aparecer en la leche, lo cual incumple la propiedad que van
Herwaarden AE y Schinkel mencionaban como obviamente preferible
para cualquier compuesto inhibidor de la BCRP que se pretendiera
utilizar para modular la transferencia no deseada de fármacos a
leche, es decir, que el propio inhibidor no resultara él mismo
transferido a leche, pero las características de inocuidad de los
flavonoides han permitido dar un giro al abordaje propuesto por
dicho autores y plantearse la inhibición del transporte del fármaco
moxidectina a la leche mediante compuestos que pueden a su vez ser
transferidos a la propia leche, pues su presencia en la misma no
supone ningún riesgo potencial para sus posibles consumidores.
Tal como se demuestra en el ejemplo que se
describen más adelante, los estudios realizados concretamente con
el flavonoide quercitina, coadministrada con moxidectina, muestran
una clara interacción entre la moxidectina y la quercitina. Al
administrar a ovejas merinas en período de lactación moxidectina
junto con quercitina, los resultados mostraron que la excreción a
leche de moxidectina en los animales tratados con quercitina fue
significativamente menor al compararla con el grupo control. La
quercitina, flavonoide presente comúnmente en el forraje de
rumiantes, disminuye la excreción de moxidectina a leche.
Si, como parecen indicar los datos, hay uno o
más transportadores de tipo ABC, probablemente la BCRP, implicadas
en el transporte activo de la moxidectina, cualquier otro
flavonoide que tenga capacidad de interaccionar con esta proteína
debería ser capaz de modular también la excreción a leche de la
moxidectina. Así, es esperable que la genisteína y la daidzeína,
conocidos inhibidores de la BCRP, funcionen también en el mismo
senti-
do.
do.
También es de esperar que, si el efecto
observado se debe a una inhibición del transporte activo mediado
por dicha proteína, no sea necesario que la administración del
fármaco y del flavonoide sean estrictamente simultáneas, sino que
podría producirse en cualquier momento comprendido dentro del
tiempo de espera necesario para que la concentración en leche del
fármaco o de sus residuos disminuya hasta alcanzar los límites
admisibles por la legislación para el consumo humano de dicha leche.
Cualquiera que fuera el momento en el que el flavonoide se
administrara, tendría un efecto de disminuir la transferencia hacia
la leche del fármaco aún presente en el plasma del animal,
facilitando la disminución de los tiempos de espera. Por ello, el
término "administración concomitante" debe entenderse que
abarca no sólo la administración del flavonoide de forma simultánea
con el fármaco o inmediatamente antes o después de la administración
de éste, sino que abarca también su acepción de "aquello que actúa
conjuntamente con otra cosa", de manera que la administración
del flavonoide horas después de la administración del fármaco
estaría incluida también dentro de la definición de la
"administración concomitante", especialmente cuando se produzca
dentro del período comprendido entre la administración del fármaco
y el momento en el que se alcanza la concentración máxima del mismo
en la leche, Tmax.
Tal como se utilizan en la presente memoria, los
términos "excreción", "secreción" y "transferencia",
en relación con la moxidectina y la leche, hacen todos ellos
referencia al paso de la moxidectina a la leche, es decir, al
conjunto de procesos por los que la moxidectina presente en el
plasma pasa a la leche, independientemente de si se están
implicados un transporte activo, pasivo o ambos. Por
"modulación" de dicha excreción, secreción o transferencia
debe entenderse la disminución de las mismas, con el resultado de
que la concentración del fármaco en la leche es
menor.
menor.
Tal como sucede con las ovejas, la excreción de
moxidectina en leche de vaca también es alta, lo que hace sospechar
igualmente que también hay un transporte activo implicado en dicha
excreción. Los datos que demuestran que hay abundante expresión de
BCRP en glándula mamaria de vaca sugieren que esta proteína podría
estar también implicada en el transporte de la moxidectina a leche
en estos animales. Ello hace pensar que los resultados obtenidos en
ovejas son extrapolables a los que se obtendrían en vacas, por lo
que la presente invención, en la que se proporciona el uso de
flavonoides para la modular la excreción de moxidectina en leche,
sería también aplicable a estos animales y, probablemente, a
cualquier rumiante.
\global\parskip0.990000\baselineskip
Adicionalmente, la estrecha similitud entre las
milbemicinas, entre las que se incluye la moxidectina, y las
lactonas macrocíclicas del grupo de las avermectinas (entre las que
merece destacar la ivermectina, la selamectina y la doramectina),
hace esperable que el uso de los flavonoides para disminuir la
excreción de fármacos a leche sea igualmente aplicable a fármacos
del grupo de las avermectinas. Es por ello que el uso de
flavonoides para disminuir la excreción de avermectinas están
incluido también dentro del alcance de la invención.
La invención se explicará ahora con más detalle
mediante los Ejemplos y Figuras que aparecen a continuación.
Ejemplo
- Ejemplo
1
El planteamiento experimental detallado tuvo
como objetivo estudiar en ovejas de raza merina la secreción láctea
de moxidectina utilizando el flavonoide quercitina como modulador
de la secreción láctea.
- Animales: Los animales estaban alojados
en las instalaciones del Consejo Superior de Investigaciones
Científicas de Marzanas (Torneros, León). Los animales fueron
ovejas merinas lactantes que comenzaban la etapa de secado y no
comieron ni bebieron durante las 72 horas que duró el estudio. El
peso de los animales, en el momento de realizar el ensayo, fue de
70,3 \pm 8,72 kg.
- Diseño experimental: El diseño
experimental seguido para este estudio fue el siguiente:
- MOXI:
- Grupo control que recibió moxidectina a una dosis de 0,2 mg/kg, a partir de una formulación comercial (Cydectin®), por vía intravenosa.
- MOXI-QUER:
- moxidectina 0,2 mg/kg, a partir de una formulación comercial (Cydectin®), por vía intravenosa administrada simultáneamente con quercitina (10 mg/kg), administrada por vía subcutánea.
Se utilizaron 4 animales en cada uno de los
grupos experimentales.
La determinación de los pesos y la
identificación de cada animal se realizó de forma similar a lo
descrito en los tratamientos anteriores. Las formulaciones se
administraron, a cada animal, vía intravenosa a través de la vena
yugular, excepto las que contenían quercitina, que se administraron
por vía subcutánea.
Las muestras de sangre se obtuvieron mediante
una punción en la vena yugular opuesta al lado de la
administración, recogiéndose en tubos latinizadores. Los tiempos de
muestreos fueron 0,5; 1; 2; 4; 6; 8; 10; 12; 24; 36; 48; 60; y 72
horas tras la administración. La sangre se centrifugó
inmediatamente a 1000g durante 10 minutos y el plasma se congeló a
-20ºC hasta el momento de su análisis por cromatografía de alta
resolución (HPLC).
Las muestras de leche se obtuvieron mediante
ordeño manual, recogiéndose en tubos de polipropileno y vaciando la
glándula mamaria en cada tiempo de muestreo mediante ordeño manual.
Las muestras se congelaron a -20ºC hasta el momento del análisis,
que al igual que en las muestras plasmáticas se realizo por HPLC.
Los tiempos de muestreos fueron 0,5; 1; 2; 4; 6; 8; 10; 12; 24; 36;
48; 60; y 72 horas tras la administración.
Con los datos obtenidos en plasma y leche se
elaboraron las Figs. 1a y 1b, que muestran los perfiles
farmacocinéticos en plasma (Fig.1a) y leche (Fig.1b) de los grupos
tratados sólo con moxidectina (grupo control, MOXI) y del grupo
tratado con moxidectina y quercitina (MOXI+QUER).
A continuación, en la Tabla 1, pueden
encontrarse los parámetros farmacocinéticos de interés detectados
calculados a partir de los datos obtenidos en plasma y leche:
- el área bajo la curva (AUC), que es el área
total obtenida en la representación de la concentración del fármaco
frente al tiempo y que se considera como el mejor parámetro para
evaluar la "exposición" a un fármaco, pues se entiende como la
cantidad de fármaco que se encuentra en un tejido o fluido
procedente de un organismo (plasma, leche, orina...) en un tiempo
tras la administración del mismo;
- Cmax, que es la concentración máxima detectada
en el tejido o fluido biológico analizado en el tiempo de
estudio;
- Tmax, que es el tiempo en el que se detecta la
concentración máxima, en este caso de fármaco, parámetro que da una
idea de la cinética de aparición, es decir, si los procesos que
llevan a acumular la cantidad máxima de fármaco en leche son más o
menos lentos;
\global\parskip0.990000\baselineskip
- t1/2, que es el tiempo medio de eliminación
(también llamado vida media de eliminación) y que se relaciona con
la velocidad de desaparición del fármaco de un medio determinado,
en este caso plasma o leche;
- MRT, o tiempo medio de residencia del
fármaco;
- AUC_{leche}/AUC_{plasma}, que es la
relación entre las áreas bajo la curva correspondientes a las
determinaciones en leche y las determinaciones en plasma.
Los datos obtenidos fueron los siguientes:
\vskip1.000000\baselineskip
Plasma | ||
Parámetros Farmacocinéticos | MOXI | MOXI+QUER |
AUC_{0-t} (ng.d/ml) | 95,8 \pm 21,6 | 97,2 \pm 17,2 |
Cmax (ng/ml) | 250 \pm 60 | 200 \pm 71 |
t_{1/2} (d) | 1,44 \pm 0,87 | 2,54 \pm 2,19 |
MRT (d) | 2,36 \pm 1,45 | 2,04 \pm 0,18 |
Leche | ||
Parámetros Farmacocinéticos | MOXI | MOXI+QUER |
AUC_{(0-t)} (ng.d/ml) | 1808 \pm 187 | 1333 \pm 303* |
Cmax (ng/ml) | 1020 \pm 220 | 650 \pm 210 |
Tmax (d) | 0,45 \pm 0,15 | 0,86 \pm 0,24 |
t_{1/2} (d) | 1,4 \pm 0,8 | 1,44 \pm 0,73 |
MRT(d) | 2,71 \pm 0,81 | 2,88 \pm 0,38 |
AUC_{leche}/AUC_{plasma} | 18,9 \pm 2,7 | 13,3 \pm 3,44* |
\vskip1.000000\baselineskip
Todos estos datos demuestran que la excreción a
leche de moxidectina en los animales tratados con quercitina es
significativamente menor al compararla con el grupo control. Los
valores de Tmax en leche de 0,45 días (\sim10 horas) para los
controles y de 0,86 días (\sim22 horas) muestra que es en este
intervalo cuando puede verse claramente la influencia de los
flavonoides. Posteriormente los residuos persisten, pero el efecto
ya no es tan importante.
Los estudios realizados con quercitina
coadministrada con moxidectina mostraron diferencias significativas
entre los valores de AUC en leche del grupo tratado con quercitina
(1333 \pm 303,3 ng.d/ml) respecto al control (1808 \pm 187,5
ng.d/ml). En este caso, los resultados muestran una clara
interacción entre la moxidectina y la quercitina, observándose una
disminución significativa de los ratios AUC_{leche}/AUC_{plasma}
(13,3 \pm 3,45) en este grupo experimental respecto al control
(18,9 \pm 2,7) (véase la Tabla 1).
Cuando se comparan los valores obtenidos con los
publicados por otros autores; en relación a los valores
plasmáticos, se observa que los valores de t_{1/2} (1,44 \pm
0,87 d) y MRT (2,36 \pm 1,45 d) son similares a los citados por
Lifschitz y cols., (2002) (2,97 \pm 0,71 d y 2,93 \pm 1,20
d, respectivamente), aunque el valor de AUC (95,8 \pm 21,6
ng.d/ml) obtenido en el presente estudio es más bajo que el
observado por estos autores (195 \pm 58,6 ng\cdotd/ml)
posiblemente debido a que el estudio farmacocinético descrito en la
presente memoria sólo se realizó durante 3 días y estos autores
ampliaron el estudio hasta los 40 días.
En el caso de niveles de moxidectina en leche,
(Tabla 1) se observa que los valores de Tmax (0,45 \pm 0,15 d)
y t_{1/2} (1,4 \pm 0,8 d) obtenidos en el presente ensayo son
más bajos que los obtenidos por Imperiale y cols., (2004) (3,75
\pm 2,28 d y 21,7 \pm 4,25 d, respectivamente), por el
contrario, los valores de AUC (1808 \pm 187,5 ng\cdotd/ml) y
Cmax (1020 \pm 220 ng/ml) observados en el presente estudio son
mayores que los obtenidos por estos autores (1426 \pm 115,5
ng\cdotd/ml y 183,5 \pm 58,9 ng/ml, respectivamente). Entre
ambos diseños experimentales existen diferencias: así, la vía de
administración utilizada en cada estudio, para la administración de
la moxidectina, es la vía intravenosa, con una farmacocinética
mucho más rápida y mayores niveles, en comparación con la
administración subcutánea, vía utilizada por estos autores. Sin
embargo, el presente estudio sí confirma la tendencia demostrada en
la bibliografía sobre la alta penetración de la moxidectina en la
leche con un ratio AUC_{leche}/AUC_{plasma} de 18,9 \pm 2,7,
prácticamente igual al obtenido por Imperiale y cols., (2004) que
es 18,5 \pm 1,19.
Existen diferencia significativas con respecto
al trabajo de Dupuy y cols. (2003), en el que se observaba la
posible influencia de la quercitina en la biodisponiblidad
plasmática de moxidectina, trabajo en el que se mostraba como la
quercitina aumentaba los niveles plasmáticos de moxidectina. La
gráfica de la Fig. 1 permite apreciar que hay pocas variaciones
entre los niveles plasmáticos de moxidectina observados en cada
toma de muestra entre el grupo control y el grupo al que se le
administró quercitina. Este hecho es llamativo pues, si realmente
el efecto de la quercitina es la inhibición del transporte mediado
por transportadores como la glicoproteína P y la BCRP (que operan
de forma similar en los muchos tejidos en los que se expresan,
"exportan activamente", es decir, impiden la penetración hacia
las células, actuando como protectores celulares), cabría esperar
unos resultados similares a los obtenidos por ellos. Este hecho, sin
embargo, puede quizás atribuirse a diferencias en el procedimiento
experimental: si bien la dosis de quercitina suministrada es la
misma, como también lo es la vía de administración (a partir de una
solución de 300 mg/ml se administran por vía subcutánea 10 mg/kg),
no es la misma la vía de administración de moxidectina, que ha sido
endovenosa en el presente experimento para que se alcanzaran mayores
niveles en plasma y asegurar una cantidad importante de moxidectina
en el epitelio mamario, como tampoco es el mismo el sexo de los
animales utilizados en el experimento, que eran machos en el
estudio de Dupuy y cols., género que muestra una expresión del
transportador BCRP significativamente mayor en el hígado de ratón
macho en comparación con las hembras, hecho que condiciona los
niveles plasmáticos.
Agatonovic-Kustrin S,
Ling LH, Tham, SY, Alany RG. (2002)
J. Pharm Biomed Anal 29:103-119.
Alcorn J., Lu X., Moscow
J.A., McNamara P.J. (2002). J. Pharmacol. Exp.
Ther. 303(2): 487-496.
Alvarez AI, Merino G,
Pulido MM, Molina AJ, Prieto JG. (2005)
Biomedical Transporters Conference St Gallen, Suiza.
Antignac J.P., Cariou R., Le
Bizec B.,Cravedi J.P., Andre F. (2003).
Rapid Commun Mass Spectrom. 17:
1256-1264.
Carceles CM, Diaz MS,
Vicente MS, Sutra JF, Alvinerie M,
Escudero E. (2001). Res. Vet. Sci.
70(3): 227-31.
Cerkvenik V, Grabnar I,
Skubic V, Doganoc DZ, Beek WMJ, Keukens
HJ, Drobni\check{c} Ko\check{s}orok M,
Paga\check{c}nik M. (2002). Vet. Parasitol
104: 175-85.
Didier A. Loor F. (1995).
Int JCancer. 63(2):
263-267.
Didier A. Loor F. (1996).
Anticancer Drugs 7(7):
745-751.
Dupuy J., Larrieu G., Sutra
J.F., Eeckhoutte C., Alvinerie M. (2001). J
Vet Pharmacol Ther. 24(3):
171-177.
Dupuy J., Larrieu G., Sutra
J.F., Lespine A., Alvinerie M. (2003). Vet
Parasitol. 112(4): 337-347.
Dupuy J., Lespine A., Sutra
J.F., Alvinerie M. (2006) J Vet Pharmacol Ther;
29:107-111.
Egerton J.R., Ostlind D.A.,
Blair L.S., Eary C.H., Suhayda D.,
Cifelli S., Riek R.F. Campbell W.C.
(1979). Antimicrob Agents Chemother.
15(3): 372-378.
Griffin J, Fletcher,N,
Clemence R, Blanchflower S, Brayden DJ.
(2005). J Vet. Pharmacol. Therap. 28:
257-265.
Imai Y, Tsukahara S, Asada
S, Sugimoto Y (2004) Cancer Res. 64:
4346-4352.
Imperiale F, Busetti MR,
Suárez VH, Lanusse C (2004). J. Agric. Food
Chem. 52: 6205-6211.
Imperiale F, Sallovitz J,
Lifschitz A, Lanusse C (2002). Food Addit
Contam. 19: 810-8.
Ito S, y Lee A. (2003).
Adv Drug Deliv Rev. 55: 617-627.
Ito S., Alcorn J. (2003).
Adv Drug Deliv Rev. 55(5):
653-665.
Jonker JW, Merino G,
Musters S, van Herwaarden AE, Bolscher E,
Wagenaar E, Mesman E, Dale TC, Schinkel
AH (2005) Nature Med. 11:
127-129.
Korystov Y.N., Ermakova N.V.,
Kublik L.N., Levitman M.Kh., Shapashnikova
V.V., Mosin V.A., Drinyaev V.A., Kruglyak E.B.,
Novik T.S., Sterlina T.S. (2004) Eur J
Pharmacol. 493(1-3):
57-64.
Lespine A, Sutra JF, Dupy
J, Alvineria M, Aumont G. (2004) Parasitol.
Res. 93: 121-126.
\newpage
Lifschitz A., Virkel G.,
Sallovitz J., Imperiale F., Pis A.,
Lanusse C. (2002). J Vet Pharmacol Therap.
25: 111-120.
Losson B., Lonneux J.
(1993). Vet Parasitol.
51(1-2): 113-121.
Maliepaard M, Scheffer GL,
Faneyte IF, van Gastelen MA, Pijnenborg ACLM,
Schinkel AH, van de Vijver MJ., Scheper RJ,
Schellens JHM. (2001). Cancer Res. 61:
3458-3464.
McManaman JL y Neville MC.
(2003). Advanced Drug Delivery Reviews 55:
629-641.
Merino G, Jonker JW,
Wagenaar E, van Herwaarden AE, Schinkel AH
(2005) Mol. Pharmacol
67:1758-64.
Molento M.B., Lifschitz A.,
Sallovitz J., Lanusse C., Prichard R.
(2004). Parasitol Res. 92(2):
121-127.
Moon Y.J., Wang X., Morris
M.E. (2006). Toxicol In Vitro
20:187-210.
Oukessou M, Berrag B,
Alvinerie M (1999). Vet. Parasitol.
83(2): 151-9.
Paiement J-P.,
Leger C., Ribeiro P., Prichard P.K.
(1999). Exp Parasitol. 92(3):
193-198.
Scala S., Toshiaki S.,
Lynch A., Salomon D., Merino M.J., Bates
S.E. (1995). Diagn Mol Pathol 4(2):
136-142.
Schinkel A.H., Smith J.J.M., van
Tellingen O., Beijnen J.H., Wanenaar E.E., van
Deemter E., Mol C.A.A.M., van der Valk M.A.,
Robanus-Maandag E.C., te Riele
H.P.J., Berns A.J.M., Borst P. (1994).
Cell. 77(4): 491-502.
Sukhai M.,Yong A., Pak A.,
Piquette-Miller M. (2001). Inflamm
Res. 50(7): 362- 370.
Takiguchi Y, Mishima H,
Okuda M, Terao M. (1980). J. Antibiot.
33: 1120-1127.
van der Valk P., van Kalken C.K.,
Ketelaars H., Broxterman H.J., Meijer C.J.,
Pinedo H.M. (1990). Ann Oncol. 1:
56-64.
Van Herwaarden AE, Schinkel AH.
(2006) Trends Pharmacol Sci.
27:10-16.
Vercruysse J., Salomez A.,
Ulloa A., Alvinerie M., Osterhaus A.,
Kuiken T. (2003). Vet Res.
152(5): 130-134.
Williams J.C., De Rosa A.
(2003). Vet Parasitol. 114(4):
295-303.
Zhang S, Yang X, Morris ME
(2004a). Mol. Pharmacol. 65:
1208-1216.
Zhang S., Yang X., Morris
M.E. (2004b). Pharm Res. 21:
1263-1273.
Zhang S., Yang X., Coburn
R.A., Morris M.E. (2005). Biochem Pharmacol.
70: 627-639
Claims (7)
1. Uso de flavonoides para disminuir la
excreción de un fármaco del grupo de las avermectinas o del grupo
de las milbemicinas en la leche de un animal rumiante, mediante la
administración al animal de uno o más compuestos flavonoides
concomitantemente con la administración del fármaco.
2. Uso según la reivindicación 1, en el que el
fármaco cuya excreción en leche se desea disminuir es la
moxidectina.
3. Uso según la reivindicación 2, en el que el
flavonoide administrado al animal es la quercitina.
4. Uso según la reivindicación 3, en el que la
quercitina se administra simultáneamente a la administración de la
moxidectina.
5. Uso según la reivindicación 4, en el que la
quercitina se administra por vía subcutánea.
6. Uso según la reivindicación 5, en el que la
dosis de quercitina administrada es de 10 mg/kg.
7. Uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, en el que el animal rumiante es una
oveja.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES200602073A ES2265798B1 (es) | 2006-07-31 | 2006-07-31 | Uso de flavonoides para disminuir la excrecion en leche de avermectinas y/o milbemicinas. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES200602073A ES2265798B1 (es) | 2006-07-31 | 2006-07-31 | Uso de flavonoides para disminuir la excrecion en leche de avermectinas y/o milbemicinas. |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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ALVAREZ, A.I. et al. Role of ABC transporters in veterinary drug research and parasite resistance. Current Drug Delivery, 2006, vol. 3, pàginas 199-206. * |
ALVAREZ, A.I. et al. Role of ABC transporters in veterinary drug research and parasite resistance. Current Drug Delivery, 2006, vol. 3, páginas 199-206. \\ Y 2-7 * |
DUPUY, J. et al. Enhancement of moxidectin bioavailability in lamb by a natural flavonoid:quercetin. Veterinary Parasitology, 2004, vol. 112, páginas 337-347. * |
DUPUY, J. et al. Enhancement of moxidectin bioavailability in lamb by a natural flavonoid:quercetin. Veterinary Parasitology, 2004, vol. 112, pàginas 337-347. * |
MERINO, G. et al. Intestinal elimination of albendazole sulfoxide:pharmacokinetic effects of inhibitors. International Journal of Pharmaceutics, 2003, vol. 263, páginas 123-132. * |
MERINO, G. et al. Intestinal elimination of albendazole sulfoxide:pharmacokinetic effects of inhibitors. International Journal of Pharmaceutics, 2003, vol. 263, pàginas 123-132. * |
MOLENTO, M.B. et al. Influence of verapamil on the pharmokinetics of the antiparasitic drug ivermectin and moxidectin in sheep. 21.11.2003 [en línea] Recuperado de Internet.[recuperado el 16.01.2007] <URL:http://parasitology. informatik.uni-wuerzburg.de/login/n/h/j\_436\_003-1022-3.html> * |
MOLENTO, M.B. et al. Influence of verapamil on the pharmokinetics of the antiparasitic drug ivermectin and moxidectin in sheep. 21.11.2003 [en lInea] Recuperado de Internet.[recuperado el 16.01.2007] <URL:http://parasitology. informatik.uni-wuerzburg.de/login/n/h/j_436_003-1022-3.html> * |
VAN HERWAARDEN, A.E. y SHINKEL, A.H. The funcion of breast cancer resistance protein in epithelial barriers, stem cells and milk secretion of drugs and xenotoxins. Trends in Pharmalogical Sciences, 2006, vol. 27 (1), páginas 10-16. * |
VAN HERWAARDEN, A.E. y SHINKEL, A.H. The funcion of breast cancer resistance protein in epithelial barriers, stem cells and milk secretion of drugs and xenotoxins. Trends in Pharmalogical Sciences, 2006, vol. 27 (1), pàginas 10-16. * |
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