ES2256953T3 - Procedimiento de tipificacion del antigeno menor de histocompatibilidad ha-1. - Google Patents

Procedimiento de tipificacion del antigeno menor de histocompatibilidad ha-1.

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ES2256953T3 ES98942664T ES98942664T ES2256953T3 ES 2256953 T3 ES2256953 T3 ES 2256953T3 ES 98942664 T ES98942664 T ES 98942664T ES 98942664 T ES98942664 T ES 98942664T ES 2256953 T3 ES2256953 T3 ES 2256953T3
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Abstract

EN LA PRESENTE INVENCION SE PRESENTA UN PROCEDIMIENTO PARA TIPIFICAR LOS ALELOS DEL ANTIGENO MENOR DE HISTOCOMPATIBILIDAD HA - 1 EN UNA MUESTRA QUE CONSISTE EN: A) PONER EN CONTACTO LOS ACIDOS POLINUCLEICOS GENOMICOS DE LA MUESTRA CON AL MENOS UN PAR DE IMPRIMADORES, CON LO QUE EL IMPRIMADOR 5'' Y/O 3'' DE DICHO PAR COMO MINIMO DE IMPRIMADORES SE HIBRIDA ESPECIFICAMENTE A REGIONES CIBLAS QUE COMPRENDEN NUCLEOTIDOS POLIMORFICOS EN DICHOS ALELOS Y LLEVAR A CABO UNA REACCION DE AMPLIFICACION; B) PARA CADA UNO DE DICHO PAR DE IMPRIMADORES SE DETECTA SI EN EL PASO A) SE HA FORMADO O NO UN PRODUCTO DE AMPLIFICACION; C) SE DEDUCE DEL RESULTADO DEL PASO B) QUE ALELO HA - 1 SE ENCUENTRA PRESENTE EN DICHA MUESTRA. EN LA PRESENTE INVENCION TAMBIEN SE PRESENTA UN PROCEDIMIENTO PARA LA TIPIFICACION GENOMICA DE ALELOS DEL ANTIGENO MENOR DE HISTOCOMPATIBILIDAD HA - 1 EN UNA MUESTRA QUE CONSISTE EN: A) AMPLIFICAR UN FRAGMENTO DE DICHOS ALELOS, COMPRENDIENDO DICHO FRAGMENTO AL MENOS UN NUCLEOTIDO POLIMORFICO,MEDIANTE EL USO DE AL MENOS UN PAR DE IMPRIMADORES QUE SE HIBRIDEN ESPECIFICAMENTE A REGIONES CIBLAS CONSERVADAS DE DICHOS ALELOS; B) SE HIBRIDA EL PRODUCTO AMPLIFICADO DEL PASO A) CON AL MENOS UNA SONDA QUE SE HIBRIDE ESPECIFICAMENTE A UNA REGION CIBLA QUE COMPRENDE UNO O MAS NUCLEOTIDOS POLIMORFICOS EN DICHO ALELO; C) SE DEDUCE DEL RESULTADO DEL PASO B) QUE ALELO HA - 1 SE ENCUENTRA PRESENTE EN DICHA MUESTRA. ADEMAS, EN LA PRESENTE INVENCION SE PRESENTAN IMPRIMADORES Y SONDAS A UTILIZAR EN LOS PROCEDIMIENTOS MENCIONADOS. TAMBIEN SE PRESENTAN KITS DE DIAGNOSTICO PARA LA REALIZACION DE DICHOS PROCEDIMIENTOS.

Description

Procedimiento de tipificación del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1.
La presente invención se refiere al campo de la tipificación del Antígeno Menor de Histocompatibilidad.
El transplante de la médula ósea (BMT), una de las áreas que la invención trata y el área en la que se origina la presente invención, encuentra su aplicación en el tratamiento de, por ejemplo, diferentes enfermedades como anemia aplástica grave, leucemia y enfermedades de inmunodeficiencia.
En los primeros días de esta técnica muchos transplantes fracasaron debido al rechazo del injerto por el huésped. Los transplantes que tuvieron éxito, sin embargo, a menudo produjeron una respuesta inmune de los linfocitos presentes en el injerto frente a los diversos tejidos del huésped (Enfermedad de injerto frente e huésped (GvHD)). Se sabe en la actualidad que la respuesta GvHD se debe principalmente a la presencia de antígenos mayores de histocompatibilidad (H) que presentan una barrera al transplante. Por tanto, resulta en la actualidad una práctica rutinaria injertar únicamente materiales que emparejen HLA (tanto en familiares como en individuos relacionados) dando como resultado un índice muy mejorado de éxito en el transplante de la médula ósea. Sin embargo, a pesar de esta mejora, así como a la mejora de la quimioterapia o radioterapia pre-transplante y a la disponibilidad de fármacos inmunosupresores potentes, aproximadamente un 20-70% de los pacientes tratados padecen todavía de GvHD (el porcentaje es dependiente de la edad y del donante de médula ósea). Para evitar la GvHD se ha sugerido eliminar las células (células T maduras) que producen dicha reacción a partir del injerto. Esto sin embargo conduce a menudo a un fracaso del injerto o a la recurrencia de la enfermedad original. Las células responsables de la GvHD son también las células que reaccionan a menudo frente a las células aberrantes originales en, por ejemplo, la leucemia (respuesta injerto frente a leucemia).*
*Blasczyk y col (Tissue Antigens 1996; 47: 102-110) describen un procedimiento para la tipificación basado en el secuenciamiento de los alelos HLA-A. Los alelos HLA-A se secuencian utilizando cebadores de secuenciamiento que se emparejan con motivos de secuencia conservada.
Blasczyk y col (Tissue Antigens 1996; 47: 102-110) describen un procedimiento para la tipificación basado en el secuenciamiento de los alelos HLA-A. Los alelos HLA-A se secuencian utilizando cebadores de secuenciamiento que se emparejan con motivos de secuencia conservada.
Ya que el BMT se lleva a cabo en nuestros días principalmente con injertos emparejados en HLA, la GvHD que se sigue originando debe estar producida por otro grupo de antígenos. Es muy probable que el grupo de los así denominados antígenos H menores (mHag) que son antígenos de histocompatibilidad que no codifican MHC (a diferencia de los antígenos H mayores) son al menos responsables de manera parcial del resto de las incidencias de GvHD. Se descubrieron los mHag en un principio en cepas congénicas de ratón en estudios de rechazos tumorales y rechazo de la piel. En ratones, el uso de cepas engendradas por endogamia ha mostrado que los mHag se codifican por al menos 50 loci diferentes alélicamente polimorfos dispersos a lo largo del genoma. En los seres humanos, aunque complejos de identificar, se ha demostrado que existen los mHag, pero su número global y complejidad permanece incierta. Es probable que los antígenos H menores sean bastante diferentes entre sí y bastante diferentes de los antígenos H mayores, son de manera probable un grupo diverso y elusivo de fragmentos de moléculas que están participando en diversas funciones de mantenimiento celular. Su antigenicidad puede volverse muy incidental, tal como los fragmentos de proteínas polimórficas procesadas de manera natural que se asocian con productos MHC. Algunos de los antígenos mH parecen expresarse de manera amplia en diversos tejidos a lo largo del cuerpo mientras que otros muestran una distribución de tejido limitada.
Uno de los antígenos menores de histocompatibilidad mejor conocido es el antígeno H-Y. H-Y es un antígeno mH que puede conducir al rechazo de injertos de órganos y medula ósea procedentes de machos con emparejamiento HLA en pacientes hembra, y a una mayor incidencia de GvHD en injertos hembra a macho, de manera particular si la donante hembra ha estado previamente embarazada. El antígeno H-Y puede jugar también un papel en la espermatogénesis. El antígeno H-Y humano es un residuo de 11 péptidos derivado de SMCY, una proteína del cromosoma Y conservada desde el punto de vista evolutivo. Otro antígeno mH bien conocido que puede conducir a la GvHD es el antígeno HA-2. El antígeno HA-2 es un residuo de 9 péptidos que se deriva muy probablemente de una miosina de clase I. Sin embargo, la naturaleza del antígeno HA-1, responsable de la mayoría de los casos actuales de GvHD sigue siendo elusiva. Los transplantes de médula ósea humana llevados a cabo como tratamiento terapéutico de la anemia aplástica grave, leucemia y enfermedad inmuno deficiente fueron una realidad en los años setenta. En la actualidad, se han mejorado mucho los resultados a largo plazo del transplante de médula ósea alogénico (BMT) debido a la utilización de hermanos con HLA emparejados como donantes de médula, la quimioterapia pretransplante avanzada, el uso de potentes fármacos inmunosupresores como profilaxis de la enfermedad Injerto frente a huésped (GVHD), mejores antibióticos y procedimientos de aislamiento. Sin embargo, los resultados del BMT clínico revelan que la selección de donantes/pacientes idénticos en MHC no es una garantía para evitar la GVHD o la supervivencia libre de enfermedad incluso cuando el donante y el paciente están muy relacionados. El BMT alogénico, de manera especial en adultos, da como resultado, dependiendo de la cantidad de disminución de células T del injerto, hasta el 80% de los casos de GVHD. En la situación HLA genotípicamente idéntica, esto alcanza cantidades del 15-35%, mientras que en las combinaciones de paciente/donante emparejadas con HLA fenotípico la incidencia de GVHD es significativamente mayor, es decir, 50-80%. Las disparidades en los antígenos menores de histocompatibilidad (mHag) entre donante y paciente constituyen un riesgo potencial de GVHD o de fracaso del injerto, que necesita la inmunosupresión farmacológica a largo plazo en pacientes de transplantes de órganos y médula ósea. Se cree también que los mHag están implicados en el efecto secundario "beneficioso" de la GVHD, es decir, la actividad Injerto frente a Leucemia. Diversos informes demuestran la presencia de mHag anti huésped CTL específico en pacientes que padecen de GVHD tras BMT HLA genotípicamente idéntico. En nuestro laboratorio se trabajó mucho en la caracterización adicional de un (pequeño) número de mHag anti huésped CTL específicos. Para ello, se aislaron clones específicos para mHag huésped a partir de la sangre periférica (PBL) de pacientes que padecían de GvHD grave. Se obtuvieron originalmente clones CD8^{+} CTL mHag HA-1 específicos tras reestimulación in vivo de PBL cebados procedentes de tres pacientes que padecían de GvHD tras BMT con HLA idéntico pero con mHag no idéntico. Se clonaron las líneas post BMT CTL mediante dilución limitante, dando como resultado el aislamiento de un gran número de clones CTL mHag específicos. Los subsiguientes análisis inmunogenéticos revelaron que los clones CTL (tal como se han descrito anteriormente) identificaron cinco mHag no enlazados con el sexo, designados HA-1, -2, -3, -4, -5, que se reconocen en una forma clásica del MHC restringido. EL mHag HA-3 se reconoce en presencia de HLA-A1 y mHag HA-1, -2, -4 -5 requieren la presencia de HLA-A-2. Los estudios de segregación demostraron que cada mHag de HA-1 a HA-5 es el producto de un gen único que se segrega de forma mendeliana, y que HA-1 y HA-2 no se codifican dentro de la región HLA. Los mHag difieren uno respecto del otro en las frecuencias del fenotipo: mHag aparece con relativa frecuencia (es decir, un 69%) mientras que mHag HA-2 aparece con mucha frecuencia (es decir, un 95%) en la población sana HLA-A2 positiva. Un inventario en cinco pacientes de respuestas CTL específicas anti huésped mHag-1, -2, -3, -4 y -5 tras BMT demostró en 3 pacientes clones específicos para el mHag HA-1. Esta observación apunta al comportamiento inmunodominante del mHag HA-1. Con respecto al mHag expresado en diferentes tejidos, observamos una distribución ubicua frente a restringida en los tejidos del mHag analizado. La expresión del mHag HA-1 está restringida a las células de la línea celular hematopoiética, tales como timocitos, linfocitos de sangre periférica, células B y monocitos. Igualmente, de la médula ósea se derivan células que presentan el antígeno profesional: las células dendríticas y las células de Langerhans epidérmicas expresan el mHag Ha-1. El mHag Ha-1 se expresa también en células precursoras leucémicas clonogénicas así como en células leucémicas mieloides y linfoides aisladas de manera reciente, indicando que las CTL mHag específicas son capaces de la lisis antígeno específica restringida al HLA de clase I de las células leucémicas. Para sustanciar la importancia de los sistemas antigénicos mH humanos, investigamos si el mHag se conservaba en evolución entre los primates humanos y no humanos. Para ello, se transfectaron células procedentes de primates no humanos con el gen HLAA2.1 humano. El análisis siguiente con nuestro alo HLA-A-2.1 humano y cuatros clones mhAg A2.1 CTL restringidos reveló la presentación de un alo de mono antropomorfo y de mono y los péptidos mHag HY, HA-1 y HA-2 en el contexto de células diana de mono antropomorfo y mono transfectadas por la molécula HLAA2.1 humana. Esto implica que el péptido HA-1 se conservó durante al menos 35 millones de años. Se llevó a cabo un estudio prospectivo con el fin de documentar el efecto y la relevancia clínica del mHag en el BMT genotípicamente idéntico en HLA respecto de la incidencia de GVHD agudo (grado \geq 2). Los resultados de la tipificación de mHag utilizando clones CTL específicos para cinco mHag de Ha-1 a Ha-5, bien definidos demostró una correlación significativa entre los mHag HA-1, -2, -4 y -5 mal emparejados y la GVHD. Se observó una correlación significativa (P = 0,024) con el desarrollo de GVHD cuando se analizó para únicamente mHag HA-1. Para analizar la supuesta naturaleza peptídica del mHag HA-1, se analizó el requerimiento de los productos del gen TAP1 y TAP2 por MHC respecto de la presencia del péptido mhag sobre la superficie celular. Se necesitan los genes transportadores TAP1 y TAP2 asociados con la presencia del antígeno para la liberación de los péptidos desde el citosol con el retículo endoplásmico. La disponibilidad de una línea celular humana "T2" que carece de la subunidad génica de transporte como proteosoma nos permite estudiar el procesamiento y la presencia del mHag humano. Demostramos que se requerían los productos de los genes de transporte (rat) TAP1 y TAP2u para el procesamiento y presencia de los péptidos antigénicos de la proteína mH intracelular HA-1. La información acerca del repertorio de TCR post BMT en el hombre es extremadamente escasa. Hemos analizado la composición de la región V del receptor de la célula T (TCR) en los clones CD8+ CTL mHAG-1 específicos mediante secuenciamiento del ADN de las cadenas a y P. Observamos analizando la utilización del TCR en 12 clones derivados de 3 individuos no relacionados que todas las cadenas TcR\beta utilizaron el segmento del gen TCR\betaV6S9 y mostraron similaridades remarcables dentro de las regiones N-D-N.
Sin embargo, hasta la presente invención nadie ha tenido éxito en la identificación de secuencias de aminoácidos de los péptidos antigénicos relevantes para el antígeno mHag Ha-1, ni tampoco nadie ha tenido éxito en la identificación de las proteínas de las cuales se deriva este antígeno.
Es por tanto un objetivo de la presente invención derivar la secuencia de aminoácidos del antígeno HA-1.
Es también un objetivo de la presente invención derivar la secuencia de ácido nucleico del antígeno HA-1, de manera más particular el ADNc y las secuencias genómicas que codifican los antígenos HA-1.
Es también un objetivo de la presente invención proporcionar cebadores y sondas que permitan la tipificación de los antígenos HA-1.
Es también un objetivo de la presente invención proporcionar conjuntos que permitan la tipificación de los antígenos HA-1.
Los presentes inventores han identificado ahora por primera vez un péptido que es una parte relevante de mHag HA-1. Los presentes inventores han identificado también la secuencia del ADNc así como las secuencias genómicas de dos alelos HA-1.
Los presentes inventores describen por primera vez un (poli) péptido que comprende un epítopo de célula T que se obtiene a partir del antígeno menor de histocompatibilidad HA-1 que comprende la secuencia VLXDDLLEA, o un derivado de la misma, que tiene propiedades funcionales o inmunológicas similares, en la que X representa una histidina (H) o un residuo de arginina (R).
Las aplicaciones diagnósticas que se proponen en esta invención incluyen, pero no se limitan a la tipificación de HA-1, la detección de las aberraciones genéticas y similares.
Sobre la base del péptido descrito en el presente documento se produjeron sondas o cebadores genéticos que se pueden usar para seleccionar el gen que codifica la proteína. Sobre la base del péptido descrito en el presente documento se pueden producir células B y/o células T y anticuerpos antiidiotípicos. Se pueden utilizar diversas técnicas para permitir la detección de donantes o pacientes adecuados, basándose en la amplificación de las secuencias de ácido nucleico relacionadas con HA-1 o sobre la detección inmunológica de las secuencias con las de péptidos relacionados con HA-1 como se establecerá de forma adicional.
De acuerdo con una forma de realización, la presente invención se refiere a un procedimiento para tipificar los alelos del antígeno menor de histocompatibilidad HA-1 en una muestra que comprende la detección de nucleótidos polimórficos, en el ADNc o los ácidos nucleicos genómicos de dichos alelos, de manera más particular los alelos H y R de HA-1 como se establecerá en la Figura 5.
En una forma de realización preferente dicho procedimiento de tipificación será un procedimiento de tipificación del ADN genómico. De manera alternativa, dicho procedimiento puede ser también un procedimiento de tipificación del ADNc.
Otra forma de realización de la presente invención se refiere a la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 en una muestra, comprendiendo dicho procedimiento:
a)
poner en contacto los ácidos polinucleicos genómicos en la muestra con al menos un par de cebadores, en los que los cebadores 5'- y/o 3' de al menos un par de cebadores se hibridan de manera específica con las regiones diana que comprenden nucleótidos polimórficos en dichos alelos, y llevan a cabo una reacción de amplificación;
b)
para cada uno de al menos dicho par de cebadores que detectan o no si en la etapa a) se forma un producto de amplificación;
c)
inferir a partir del resultado de la etapa b) que el alelo HA-1 está presente en dicha muestra.
De acuerdo con una forma de realización preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha descrito anteriormente, caracterizado de manera adicional por que dichos alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 son el alelo H y el alelo R tal como se muestra en la Figura 5.
La presente invención enseña que, de manera inesperada, los cebadores usados en el procedimiento RT-PCR, no conducen a la amplificación de un fragmento de ácido polinucleico específico cuando se utiliza ADN genómico como molde. Para resolver este problema, la presente invención describe también la estructura genómica del locus HA-1. Tal como se detalla en el Ejemplo 3, el análisis de la estructura genómica muestra que el péptido HA-1 se codifica mediante dos exones (figura 5). Se localiza un emplazamiento donante de empalme cuatro nucleótidos después del codón polimórfico en la secuencia de codificación HA-1. Por tanto, el establecimiento de un procedimiento para la tipificación genómica del antígeno HA-1 requiere información de la secuencia del intrón que interrumpe la secuencia de codificación de HA-1. Esta secuencia de información se proporciona por la presente invención y se muestra a continuación como SEC ID Nº 1.
1
\newpage
Esta secuencia representa parte del intrón de interrupción (indicado como intrón a en la figura 5), siendo el primer nucleótido de esta secuencia el primer nucleótido del intrón a. La presente invención puede utilizar también de esta manera un ácido polinucleico aislado identificado mediante la SEC ID Nº 1, o un ácido polinucleico aislado que presenta al menos un 80%, o al menos un 90%, o al menos un 95%, o al menos un 99% de homología de secuencia con la SEC ID Nº 1, o cualquier fragmento de dichos ácidos polinucleicos como cebador o como sonda.
Se ha descrito en la base de datos EMBL la secuencia de información que corresponde a otra parte del intrón a, de manera particular la parte que se sitúa enfrente del exón b (figura 5) bajo número de acceso AC004151. Sin embargo esta secuencia no es adecuada para el diseño de cebadores para el procedimiento anteriormente mencionado, debido a que la longitud del fragmento amplificado podría disminuir la eficacia de la reacción de amplificación.
La presente invención se refiere también al ácido polinucleicco aislado identificado mediante la SEC ID Nº 17 (alelo HA-1 R) o un ácido polinucleico aislado que presenta al menos un 80%, o al menos un 90%, o al menos un 95%, o al menos un 99% de homología de secuencia con la SEC ID Nº 17, o cualquier fragmento de dicho ácido polinucleico que se pueda utilizar como cebador o como sonda.
La presente invención se refiere también al ácido polinucleico aislado identificado mediante la SEC ID Nº 19 (alelo HA-1 H), o un ácido polinucleico aislado que presenta al menos un 80%, o al menos un 90%, o al menos un 95%, o al menos un 99% de homología de secuencia con la SEC ID Nº 19, o cualquier fragmento de dicho ácido polinucleico que se pueda utilizar como cebador o como sonda.
Para la detección del producto de amplificación mencionado en la etapa b anterior, se pueden utilizar diferentes procedimientos conocidos en la técnica. Un procedimiento consiste en someter la mezcla obtenida tras la reacción de amplificación a electroforesis en gel y detectar de manera visual el producto de amplificación tras la tinción del ácido nucleico. De manera alternativa se puede marcar el producto de la amplificación utilizando por ejemplo cebadores marcados, y se puede capturar sobre el soporte sólido, por ejemplo mediante hibridación, y se puede detectar sobre un soporte sólido. Está claro, sin embargo, que quedan dentro del alcance de la presente invención otros procedimientos de detección.
De acuerdo con una forma de realización más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente, caracterizado de manera adicional porque:
al menos un par de dichos cebadores comprenden un cebador 5' que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en la posición 4 o en las posiciones 4 y 8 en el alelo HA-1, o
al menos un par de dichos cebadores comprenden un cebador 3' que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en la posición 8 o en las posiciones 4 y 8 en el alelo HA-1, siendo indicadas dichas posiciones en la figura 5.
De acuerdo con una forma de realización incluso más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente, caracterizado de manera adicional porque:
se combina dicho cebador 5'- con un cebador 3'- que se hibrida de manera específica con una región diana en el intrón a, y/o
se combina dicho cebador 3'- con un cebador 5'- que se hibrida de manera específica con una región diana en el exón a,
indicándose el intrón a y el exón a en la figura 5.
De acuerdo con esta forma de realización, dicha región diana en el intrón se localiza de manera ideal en la secuencia identificada mediante la SEC ID Nº 1, como se ha detallado anteriormente. También la región diana de dicho cebador 3'- que se combina con un cebador 5'- se hibrida de manera específica con una región diana en el exón a se solapará necesariamente con la secuencia identificada mediante SEC ID Nº 1.
De acuerdo con una forma de realización incluso más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente caracterizado de manera adicional porque los cebadores se escogen de la
Tabla 1:
TABLA 1 Secuencia de los cebadores utilizados para la tipificación genómica de los alelos HA-1 mediante amplificación de secuencia específica
Nombre Secuencia (5' a 3') SEC ID Nº
Conjunto 1
C-hacia delante GTGCTGCCTCCTGGACACTG 2
H-hacia atrás TGGCTCTCACCGTCATGCAG 3
R-hacia atrás TGGCTCYCACCGTCACGCAA 4
Conjunto 2
C-hacia atrás GCATTCTCTGTTTCCGTGTT 5
H-hacia delante CTTAAGGAGTGTGTGCTGCA 6
R-hacia atrás CTTAAGGAGTGTGTGTTGCG 7
El conjunto 1 está constituido por un cebador 5'- común (hacia delante) y dos cebadores 3'- diferentes (hacia atrás), uno para el alelo H y uno para el alelo R. La región diana del cebador 5'- común se localiza en el exón a. La región diana de los cebadores 3'- comprende los nucleótidos polimórficos en las posiciones 4 y 8 en la secuencia de codificación HA-1 (figura 5) y se solapa de forma parcial con la secuencia identeficada mediante SEC ID Nº 1. El conjunto 2 está constituido por un cebador 3'- común y dos cebadores 5'- diferentes. La región diana del cebador común se localiza en la ausencia identificada mediante la SEC ID Nº 1, mientras que las regiones diana de los cebadores 5' se localizan en el exón a y comprende los nucleótidos polimórficos en las posiciones 4 y 8. El ejemplo 6 muestra un experimento de tipificación genómica que hace uso de estos conjuntos de cebadores.
De acuerdo con otra forma de realización preferida, la presente invención se refiere a un equipo diagnóstico para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con cualquiera de los procedimientos indicados anteriormente, comprendiendo dicho conjunto:
a) al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con las regiones diana que comprenden los nucleótidos polimórficos en dichos alelos, en los que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de di-
cho alelo que se corresponde con la SEC ID Nº 17 o 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
b) de manera opcional, un enzima y/o los reactivos que permiten la reacción de amplificación;
c) de manera opcional, los medios que permiten la detección de los productos amplificados.
De acuerdo con otra forma de realización preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 en una muestra, comprendiendo dicho procedimiento:
a)
amplificar un fragmento de dichos alelos, dicho fragmento comprende al menos un nucleótido polimórfico, mediante el uso de al menos un par de cebadores que se hibridan de manera específica con las regiones dianas conservadas en dichos alelos;
b)
hibridar el producto amplificado de la etapa a) con al menos una sonda que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo;
c)
inferir a partir del resultado de la etapa b) que el alelo HA-1 está presente en dicha muestra.
De acuerdo con una forma de realización más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente caracterizado de manera adicional porque dichos alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 son el alelo H y el alelo R.
De acuerdo con una forma de realización incluso más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente caracterizado de manera adicional porque al menos uno de dicho par de cebadores comprende un cebador 5'- que se hibrida de manera específica con una región diana conservada en el exón a y/o un cebador 3' que se hibrida de manera específica con una región diana conservada en el intrón a, estando indicados el exón a y el intrón a en la figura 5.
De manera ideal, la región diana de dicho cebador 3'- se localiza en la secuencia identificada como SEC ID Nº 1. De manera obvia, la región diana de dicho cebador 3'- se puede localizar también corriente abajo de esta secuencia, es decir, en el intrón a, intrón b, exón b, o incluso corriente abajo del exón b, pero la eficacia de la reacción de amplificación es probable que sea menor a medida que el fragmento amplificado se hace más largo. De acuerdo con una forma de realización incluso más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente caracterizado de manera adicional porque al menos una de dicha sonda se hibrida de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en la posición 4 y/u 8 en el alelo HA-1, estando indicadas dichas posiciones en la figura 5.
De acuerdo con una forma de realización incluso más preferida, la presente invención se refiere a un procedimiento tal como se ha indicado anteriormente caracterizado de manera adicional porque dichos cebadores y/o dichas sondas se escogen de la Tabla 2.
TABLA 2 Secuencia de cebadores y sondas utilizados para la tipificación genómica de los alelos HA-1 mediante amplificación e hibridación de secuencia específica
Nombre Secuencia (5' a 3') SEC ID Nº
Cebadores
5P1 (0 C-hacia delante) GTGCTGCCTCCTGGACACTG 2
3P1 GCTCTCATGGCCTCTTCCAC 8
3P2 GCATTCTCTGTTTCCGTGTT 9
3P3 GGCAGAGAGCCCTCGCAGCC 10
Sondas
HA1-R1(1) GTGTGTTGCGTGACGGTG 11
HA1-R1(2) GTGTGTTGCGTGACG 12
HA1-R1(3) TGTGTGTTGCGTGACG 13
HA1-H1(1) TGTGTGCTGCATGACGGTG 14
HA1-H1(2) TGTGTGCTGCATGACGGT 15
HA1-H1(3) GTGTGCTGCATGACGGTG 16
Los cebadores 3P1 y 3P2 se hibridan de manera específica con las regiones diana en la SEC ID Nº 1. La región diana del cebador 3P3 se localiza corriente abajo del exón b. Todas las sondas de la Tabla 2 se hibridan de manera específica con regiones diana que se solapan con la frontera exón a-intrón a. Se han optimizado las sondas con las SEC ID Nº 11 a 16 para funcionar en combinación en las mismas condiciones en un ensayo LIPA (véase a continuación). La persona experta reconocerá que las sondas y cebadores con las SEC ID Nº 2 a 16 se pueden adaptar mediante la adición o supresión de uno o más nucleótidos en sus extremidades. Se pueden requerir dichas adaptaciones si se cambian las condiciones de amplificación o hibridación, o si el material amplificado es ARN en lugar de ADN, como es el caso en el sistema NASBA. Se pueden aplicar diferentes técnicas para llevar a cabo los procedimientos de hibridación de secuencia específica de la presente invención. Estas técnicas pueden comprender inmovilizar los ácidos polinucleicos HA-1 amplificados sobre un soporte sólido y llevar a cabo la hibridación con sondas de oligonucleótidos marcados. Pueden inmovilizarse también los ácidos polinucleicos genómicos sobre un soporte sólido sin mayor amplificación y someterse a hibridación. De manera alternativa, se pueden inmovilizar las sondas sobre un soporte sólido y se puede llevar a cabo la hibridación con ácidos polinucleicos HA-1 marcados, de manera preferible tras la amplificación. Esta técnica se denomina hibridación inversa. Una técnica de hibridación inversa conveniente es el ensayo de la sonda en línea (LiPA). Este ensayo utiliza sondas de oligonucleótidos inmovilizados en forma de líneas paralelas sobre una banda de soporte sólido (Stuyver y col., 1993). Se entiende que cualquier otra técnica para la tipificación genómica de los alelos HA-1 está también cubierta por la presente invención.
Está claro que la presente invención se refiere también a cualquiera de los cebadores con las SEC ID Nº 2 a 10 y a cualquiera de las sondas con las SEC ID Nº 11 a 16, siendo dichos cebadores y dichas sondas para uso en un procedimiento para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1.
De acuerdo con otra forma de realización preferida, la presente invención se refiere a un equipo diagnóstico para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con cualquiera de los procedimientos de hibridación de secuencia específica indicados anteriormente, comprendiendo dicho equipo:
a)
al menos un cebador que se hibrida de manera específica con las regiones diana sin nucleótidos polimórficos en dichos alelos;
b)
al menos una sonda que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo, en la que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que corresponde a la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
c)
de manera opcional, un enzima y/o reactivos que permitan la reacción de amplificación, y/o reactivos que permiten la reacción de hibridación.
De acuerdo con otra forma de realización preferida, la presente invención se refiere a un equipo diagnóstico para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con cualquiera de los procedimientos de hibridación de secuencia específica indicados anteriormente, comprendiendo dicho equipo:
a)
al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con las regiones diana sin nucleótidos polimórficos en dichos alelos;
b)
al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo, en la que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
c)
de manera opcional, un enzima y/o reactivos que permitan la reacción de amplificación, y/o los reactivos que permitan la reacción de hibridación.
De acuerdo con otra forma de realización, la presente invención se refiere también a un procedimiento para la tipificación de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 por medio del secuenciamiento de dicho alelo.
De acuerdo con otra forma de realización, la presente invención se refiere también a los equipos para llevar a cabo dicho procedimiento de secuenciación.
De acuerdo con otra forma de realización, la presente invención se refiere también a un procedimiento para la tipificación de los alelos HA-1 que comprende la utilización de anticuerpos que detectan de manera específica los alelos HA-1 que se muestran en la Figura 5. Dichos anticuerpos serán de manera preferible anticuerpos monoclonales y se pueden producir por cualquier procedimiento conocido en la técnica.
De acuerdo con otra forma de realización, la presente invención se refiere también a un equipo diagnóstico para la tipificación de los alelos HA-1 que comprende la utilización de anticuerpos que detectan de manera específica los alelos HA-1 que se muestran en la Figura 5.
Definiciones
Las siguientes definiciones y explicaciones permitirán una mejor comprensión de la presente invención.
El material diana en las muestras que se van a analizar será el ADN genómico o las versiones amplificadas del mismo. Estas moléculas se denominan también en esta aplicación "ácidos polinucleicos". Están disponibles procedimientos de extracción y purificación bien conocidos para el aislamiento del ARN o el ADN de una muestra (por ejemplo en Sambrook y col., 1989).
Un "nucleótido polimórfico" se refiere a un nucleótido de la secuencia de un alelo HA-1 dado que difiere en al menos uno de los nucleótidos que se encuentran en la posición correspondiente en otros alelos HA-1.
El término "tipificación" de un alelo HA-1 se refiere a la identificación del alelo, es decir, la detección del alelo y la discriminación del alelo de otros alelos HA-1.
El término "sonda" de acuerdo con la presente invención se refiere a un oligonucleótido de cadena única que se diseña para hibridarse de manera específica con los ácidos polinucleicos HA-1. De manera preferible, las sondas de la invención son de aproximadamente 5 a 50 nucleótidos de longitud, de manera más preferible de aproximadamente 10 a 30 nucleótidos. Las longitudes particularmente preferidas de las sondas incluyen, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29 ó 30 nucleótidos. Los nucleótidos, tal como se utilizan en la presente invención pueden ser ribonucleótidos, desoxirribonucleótidos, y nucleótidos modificados tales como inosina o nucleótidos que contienen grupos modificados que no alteran de manera esencial sus características de hibridación.
El término "cebador" se refiere a una secuencia de oligonucleótido de cadena única capaz de actuar como un punto de iniciación para la síntesis de un producto de extensión del cebador que es complementario de la cadena de ácido nucleico que se va a copiar. La longitud y la secuencia del cebador deben ser tales que permitan cebar la síntesis de los productos de extensión. De manera preferible el cebador tiene aproximadamente 5-50 nucleótidos de longitud. La longitud y secuencia específica dependerán de la complejidad del ADN o ARN dianas requeridos, así como de las condiciones en las cuales se utiliza el cebador, tales como la temperatura y la fuerza iónica. Se entiende que los cebadores de la presente invención que se pueden utilizar como sondas y viceversa, siempre que se adapten las condiciones experimentales.
La expresión "pareja de cebadores adecuada" en esta invención se refiere a una pareja de cebadores que permiten la amplificación específica de un fragmento de ácido polinucleico HA-1.
El término "región diana" de una sonda o un cebador de acuerdo con la presente invención es una secuencia en el interior de los ácidos polinucleicos HA-1 de los que la sonda o el cebador son completamente complementarios o parcialmente complementarios (es decir, con algún grado de mal emparejamiento). Se entiende que el complemento de dicha secuencia diana es también una secuencia diana adecuada en algunos casos.
La "Hibridación específica" de una sonda con una región diana de los ácidos polinucleicos HA-1 significa que dicha sonda forma un dúplex con parte de esta región o con la región completa bajo las condiciones experimentales utilizadas, y que bajo aquellas condiciones dicha sonda no forma un dúplex con otras regiones de los ácidos polinucleicos presentes en la muestra que se va a analizar. La "Hibridación específica" de un cebador con una región diana de los ácidos polinucleicos HA-1 significa que, durante la etapa de amplificación, dicho cebador forma un dúplex con parte de esta región o con la región completa bajo las condiciones experimentales utilizadas, y que bajo aquellas condiciones dicho cebador no forma un dúplex con otras regiones de los ácidos polinucleicos presentes en la muestra que se va a analizar. Se comprende que "dúplex", tal como se usa por la presente, significa un dúplex que conducirá a la amplificación específica.
La "Amplificación específica" de un fragmento de ácidos polinucleicos HA-1 significa la amplificación del fragmento para el cual se designaron los cebadores, y no de cualquier otro fragmento de los ácidos polinucleicos que esté presente en una muestra.
El hecho de que los cebadores de amplificación no tengan que emparejarse de manera exacta con la correspondiente secuencia diana en el molde para garantizar una amplificación apropiada está ampliamente documentado en la bibliografía (Kwok y col., 1990). Sin embargo, cuando los cebadores no son completamente complementarios con su secuencia diana, deberá tenerse en cuenta que los fragmentos amplificados tendrán la secuencia de los cebadores y no la de la secuencia diana. Se pueden marcar los cebadores con un marca de elección (por ejemplo, biotina). El procedimiento de amplificación utilizado puede ser bien la reacción en cadena de la polimerasa (PCR; Saiki y col., 1988), la reacción en cadena de la ligasa (LCR; Langren y col., 1988; Wu & Wallace, 1989; Barany, 1991), la amplificación basada en la secuencia del ácido nucleico (NASBA; Guatelli y col., 1990; Compton, 1991), el sistema de amplificación basado en la transcripción (TAS; Kwoh y col., 1989), la amplificación del desplazamiento de cadena (SDA; Duck, 1990) o la amplificación por medio de la Qb replicasa (Lomeli y col., 1989) o cualquier otro procedimiento adecuado para amplificar las moléculas de ácido nucleico conocido en la técnica.
Se representan a lo largo de la memoria las secuencias de la sonda y el cebador en forma de oligonucleótidos de ADN de cadena única desde el extremo 5' al 3'. Es obvio para una persona experta en la técnica que cualquiera de las sondas especificadas a continuación puede ser utilizada como tal, o en su forma complementaria, o en su forma de ARN (en la que T se sustituye por U).
Las sondas de acuerdo con la invención se pueden preparar mediante clonación de los plásmidos recombinantes que contienen insertos que incluyen las secuencias de nucleótidos correspondientes, si se necesita mediante excisión de la última a partir de los plásmidos clonados mediante la utilización de las nucleasas adecuadas y recuperando éstas, por ejemplo, mediante fraccionamiento de acuerdo con el peso molecular. Se pueden sintetizar también químicamente las sondas de acuerdo con la presente invención, por ejemplo, mediante el procedimiento convencional del fosfo-triéster.
Los oligonucleótidos utilizados como cebadores o sondas pueden comprender también análogos de nucleótidos tales como fósforotiatos (Matsukura y col., 1987), alcilfósforotiatos (Miller y col., 1979) o péptidos de ácidos nucleicos (Nielsen y col., 1991; Nielsen y col., 1993) o pueden contener agentes intercalantes (Asseline y col., 1984). Como la mayoría de las diferentes variaciones o modificaciones introducidas en las secuencias de ADN originales de la invención, estas variaciones necesitarán adaptaciones con respecto a las condiciones bajo las cuales se van a utilizar los oligonucleótidos para obtener la especificidad y la sensibilidad requerida. Sin embargo, los resultados eventuales de la hibridación serán esencialmente los mismos que aquellos obtenidos con los oligonucleótidos sin modificar. Puede ser ventajosa la introducción de estas modificaciones con el fin de influenciar de manera positiva características tales como la cinética de hibridación, la reversibilidad de la formación del híbrido, la estabilidad biológica de las moléculas de oligonucleótidos, etc.
El término "soporte sólido" puede referirse a cualquier sustrato al cual se puede acoplar una sonda de oligonucleótido, siempre que esta retenga sus características de hibridación y siempre que el nivel de fondo de la hibridación permanezca bajo. Usualmente el sustrato sólido será una placa de microvaloración, una membrana (por ejemplo de nylon o nitrocelulosa) o una microesfera (perla) o una oblea. Antes de la aplicación a la membrana o la fijación puede ser conveniente modificar la sonda de ácido nucleico con el fin de facilitar la fijación o mejorar la eficiencia de la hibridación. Dichas modificaciones pueden abarcar la cola del homopolímero, acoplándose con diferentes grupos reactivos tales como grupos alifáticos, grupos NH_{2}, grupos SH, grupos carboxílicos, o acoplándose con biotina, haptenos o proteínas.
El término "marcado" se refiere al uso de ácidos nucleicos marcados. La marcación se puede llevar a cabo mediante la utilización de nucleótidos marcados incorporados durante la etapa de la polimerasa de la amplificación, tal como se ilustra por Saiki y col. (1988) o Bej y col. (1990), o cebadores marcados, o por cualquier otro procedimiento conocido por las personas expertas en la técnica. La naturaleza de la marca puede ser isotópica (^{32}P, ^{35}S, etc), o no isotópica (biotina, digoxigenina, etc).
La "muestra biológica" puede ser por ejemplo sangre, hisopos de algodón de la boca o cualquier otra muestra que comprenda ADN genómico.
Para diseñar sondas con características deseadas se pueden aplicar las siguientes directrices útiles conocidas por las personas expertas en la técnica.
Debido a que la extensión y especificidad de las reacciones de hibridación tales como descritas en el presente documento se ven afectadas por numerosos factores, la manipulación de uno o más de estos factores determinará la sensibilidad y especificidad exactas de una sonda particular, ya sea perfectamente complementaria con su diana o no. Se explican de manera adicional en el presente documento la importancia y el efecto de diversas condiciones de ensayo.
**Deberá escogerse la estabilidad del híbrido de ácido nucleico [sonda : diana] para que sea compatible con las condiciones de ensayo. Esto puede llevarse a cabo evitando las secuencias ricas en AT largo, terminando los híbridos con pares de bases G:C, y diseñando la sonda con una Tm apropiada. Deberán escogerse los puntos de comienzo y fin de la sonda de tal manera que la longitud y el % de GC den como resultado una Tm aproximadamente 2-10ºC mayor que la temperatura a la cual se llevará a cabo el ensayo final. Es significativa la composición de bases de la sonda debido a que los pares de bases G-C presentan mayor estabilidad térmica en comparación a los pares de bases A-T debido al enlace de hidrógeno adicional. De esta manera, la hibridación que implica ácidos nucleicos complementarios de mayor contenido en G-C será más estables a temperaturas más altas.
**Deberán tenerse también en cuenta condiciones tales como la fuerza iónica y la temperatura de incubación bajo la cual se utilizará la sonda cuando se diseña una sonda. Se sabe que el grado de hibridación aumentará tanto como aumente la fuerza iónica de la mezcla de reacción, y que la estabilidad térmica de los híbridos aumentará con el incremento de la fuerza iónica. Por otra parte, los reactivos químicos, tales como la formamida, urea, DMSO y alcoholes, que interrumpen los enlaces de hidrógeno, aumentarán el rigor de la hibridación. La desestabilización de los enlaces de hidrógeno por dichos reactivos puede reducir mucho la Tm. De manera general, la hibridación óptima en sondas de oligonucleótidos sintéticos de aproximadamente 10-50 bases de longitud se produce aproximadamente 5ºC por debajo de la temperatura de fusión para un dúplex dado. La incubación a temperaturas por debajo de la óptima puede permitir un mal emparejamiento de las secuencias de bases a hibridar y puede por tanto dar como resultado una especificidad reducida.
**Es deseable tener sondas que se hibriden únicamente bajo condiciones de rigor alto. Bajo condiciones de rigor alto únicamente se formarán híbridos de ácidos nucleicos complementarios; no se formarán híbridos sin un grado suficiente de complementariedad. De acuerdo con esto, el rigor de las condiciones de ensayo determina la cantidad de complementariedad necesaria entre dos cadenas de ácido nucleico que forman un híbrido. El grado de rigor se escoge de manera que maximice la diferencia de estabilidad entre el híbrido formado con la diana y el ácido nucleico sin diana.
**Son menos preferidas las regiones en el ADN o ARN diana que se sabe que forman estructuras internas fuertes inhibitorias de la hibridación. Asimismo deberán evitarse las sondas con autocomplemetariedad extensiva. Tal como se ha detallado anteriormente la hibridación es la asociación de dos cadenas únicas de ácidos nucleicos complementarios para formar una doble cadena con enlaces de hidrógeno. Es implícito que si una de las dos cadena está completa o parcialmente implicada en un híbrido será menos capaz de participar en la formación de un nuevo híbrido. Pueden existir híbridos intramoleculares e intermoleculares formados en el interior de las moléculas de un tipo de sonda si existe suficiente autocomplementariedad. Se pueden evitar dichas estructuras mediante un diseño cuidadoso de la sonda. Diseñando una sonda de tal manera que una porción sustancial de la secuencia de interés sea una cadena única, se puede aumentar mucho la velocidad y extensión de la hibridación. Están disponibles programas de ordenador para investigar este tipo de interacción. Sin embargo, en ciertos ejemplos, no puede ser posible evitar este tipo de interacción.
Se describen en la sección de Materiales y Procedimientos de los Ejemplos las condiciones de hibridación estándar y de lavado. Otras condiciones son por ejemplo 3 X SSC (Solución Salina de Citrato de Sodio), FA (Formamida) desionizada al 20% a 50ºC. Se pueden utilizar también otras soluciones (SSPE (Solución salina de fosfato de sodio EDTA), TMAC (Cloruro de Tetrametilamonio), etc.) y temperaturas siempre que se mantengan la especificidad y la sensibilidad de las sondas. Cuando se necesite, se tienen que llevar a cabo modificaciones ligeras en longitud o en secuencia de las sondas para mantener la especificidad y la sensibilidad requerida bajo las circunstancias dadas.
El término "tampón de hibridación" significa un tampón que permite una reacción de hibridación entre las sondas y los ácidos polinucleicos presentes en la muestra, o los productos amplificados, bajo las condiciones de rigor apropiadas.
El término "solución de lavado" significa una solución que permite el lavado de los híbridos formados bajo las condiciones de rigor apropiadas.
Breve descripción de los dibujos y las tablas
Tabla 1
Secuencia de cebadores utilizados para la tipificación genómica de los alelos HA-1 mediante amplificación de la secuencia específica.
Tabla 2
Secuencia de cebadores y sondas utilizados para la tipificación genómica de los alelos HA-1 mediante amplificación e hibridación de la secuencia específica.
Tabla 3
Tipificación celular y genómica para HA-1 en tres familias HLA-A*0201 positivas.
Tabla 4
Comparación de la tipificación celular y genómica mediante PCR o LiPA de HA-1 en la familia 1.
Tabla 5
Polimorfismo de la secuencia KIAA0223 en individuos mH HA-1 positivo y HA-1 negativo. El secuenciamiento de la región HA-1 en el gen KIAA0223 en individuos homocigóticos HA-1 +/+ y HA-1 -/- y KG-1 reveló dos alelos que diferían en dos nucleótidos, dando como resultado una diferencia en un aminoácido (de H a R) y se designó HA-1^{H} y HA-1^{R}. Se secuenciaron productos PCR independientes para DH y vR6. Se secuenciaron los productos PCR para KG-1 8.
Figura 1
Reconstitución de HA-1 con péptidos fraccionados mediante HPLC eluidos de moléculas HLA-A2.1 en un ensayo de liberación de ^{51}Cr con mH HA-1 específico del clon de células T 3HA15.
a. Se eluyeron los péptidos a partir de 90.10^{9} células Rp positivas HA-1 y HLA-A2.1 y se separaron utilizando HPLC en fase reversa con HFBA como modificador orgánico.
b. Se fraccionó de manera adicional la fracción 24 de la primera dimensión del HPLC que contenía la actividad de HA-1 mediante HPLC en fase reversa con TFA como modificador orgánico
c. Se cromatografió de manera adicional la fracción 27 que contenía HA-1 del segundo gradiente con un tercer gradiente somero constituido por acetonitrilo al 0.1%/min La lisis de fondo de T2 mediante el CTL en ausencia de cualquier péptido fue en a de un 3%, en b y en c del 0%. El control positivo de la lisis fue en a de un 99%, 74% en b y 66% en c.
d. determinación de los péptidos HA-1 candidatos. Se cromatografió mediante HPLC la fracción 33 a partir de la separación en la Fig. 1c con un divisor en línea del efluente de la columna microcapilar en línea y se analizó mediante espectrometría de masas con ionización de electro spray y un ensayo de liberación de ^{51}Cr. Se comparó la actividad reconstituyente de HA-1 como porcentaje específico de liberación con la abundancia de los péptidos candidatos medido en forma de corriente de iones.
Figura 2
Secuenciamiento del péptido mH HA-1 mediante espectrometría de masas en tandem.
a. Espectro de masa de disociación mediante activación de la colisión del péptido candidato con m/z de 513.
b. Ensayo de reconstitución con diferentes concentraciones del péptido mH HA-1 sintético con tres clones de células T HA-1 específicos, 3HA15, clon 15 y 5W38. La lisis de fondo de T2 mediante el CTL en ausencia de cualquier péptido fue del 4% para 3HA15, del 10% para el clon 15 y del 2% para 5W38. El control de lisis positiva fue del 46% para 3HA15, del 47% para el clon 15 y del 48% para 5W38.
Figura 3
El polimorfismo KIAA0223 se correlaciona exactamente con el fenotipo mH del antígeno RA-1.
a. Se secuenció la región HA-1 de KIAA0223 en la familia tipificada del antígeno HA-1 mH. Se secuenciaron 6 productos PCR de cada miembro de la familia. Los miembros 00, 07 y 09 de la familia expresaron el HA-1^{R} en los 6 productos PCR. El miembro 01 de la familia expresó el alelo HA-1^{H} en 2 productos PCR y el alelo HA-1^{R} en 4 productos PCR. El miembro 02 de la familia expresó el alelo HA-1^{H} en 3 productos PCR y el alelo Ha-1^{R} en 3 productos PCR. El miembro 08 de la familia expresó el alelo HA-1^{H} en 4 productos PCR y el alelo HA-1^{R} en 2 productos PCR.
b. El alelo HA-1 específico de la reacción PCR en la familia tipificada del antígeno HA-1 mH se correlacionó de manera exacta con el fenotipo HA-1. Los tamaños de los productos PCR resultantes fueron consistentes con los tamaños esperados deducidos de la secuencia de ADNc.
c. La transfección del alelo HA-1^{H} de K1AA0223 conduce al reconocimiento mediante las células T mH HA-1 específicas. Las secuencias de codificación de HA-1^{H} y HA-1^{R} de KIAA0223 fueron transfectados de manera conjunta con HLA-A2.1 en células Hela. Después de 3 días, se añadieron los clones CTL HA-1 específicos de 5W38 y 3HA15, y después de 24 horas se midió la liberación de TNF\alpha en el sobrenadante. El clon Q66.9 es específico para los péptidos 58-66 de la matriz de la gripe. No se observó producción de TNF\alpha después de la transfección del vector pcDNA3.I (+) en solitario (no se muestran los resultados).
Figura 4
a. Enlace de los péptidos HA-1^{H} y HA-1^{R} con HLA-A2.1. Se ensayó el enlace de los péptidos HA-1^{H} y HA-1^{R} con respecto de su capacidad para inhibir el enlace del péptido fluorescente FLPSDCFPSV con el HLA-A2.1 recombinante y la microglobulina \beta2 en un ensayo de enlace con células libres de péptido. Se muestra un experimento representativo. Se determinó el CI50 sobre los resultados de 4 experimentos y fue de 30 nM para VLHDDLLEA y 365 nM para VLRDDLLEA.
b. Ensayo de reconstitución con diferentes concentraciones del péptido HA-1^{R} sintético con células T HA-1 específicas. Se valoró el péptido HA-1^{R} y se preincubó con células T2. Se añadieron tres clones de células T HA-1 específicas, 5W38, 3HA15 y el clon 15, y se llevó a cabo un ensayo de liberación con ^{51}Cr durante 4 horas. La lisis de fondo de T2 mediante el CTL en ausencia de cualquier péptido fue del 4% para 3HA15, del 10% para el clon 15, y del 2% para 5W38. El control positivo de la lisis fue del 46% para 3HA15, del 47% para el clon 15 y del 48% para 5W38.
Figura 5
Secuencias y estructura geonómica del locus HA-1. Figura 1a, secuencias de codificación de los alelos H y R de HA-1. Los caracteres en negrita indican los nucleótidos polimórficos. Figura 1b, fronteras exón-intrón del locus HA-1. Se muestran las secuencias exón en mayúscula y las secuencias intrón en minúscula.
Figura 6
Tipificación genómica de los alelos HA-1 en muestras clínicas. Se llevó a cabo la tipificación genómica mediante amplificación de secuencia específica, mediante el uso de los dos conjuntos de cebadores de la Tabla 1. Los dos fragmentos superiores del gel se originaron a partir del alelo H, los dos fragmentos inferiores a partir del alelo R.
Ejemplos
1. Ejemplo 1
Preparación de ADNc de HA-1 1.1 Resultados
La enfermedad injerto frente a huésped (GvHD) es una complicación frecuente y con riesgo para la vida tras un transplante de médula ósea alogénico (BMT) HLA-idéntico. Los receptores de médula ósea HLA-idéntica desarrollan la enfermedad injerto frente a huésped aguda o crónica en un 36% y 49% respectivamente^{1,2}. Las diferencias en los genes distintas de las del MHC denominadas como Antígenos Menores de Histocompatibilidad (mH), están claramente implicadas en el desarrollo de GvHD tras BMT HLA-idéntico. Un análisis retrospectivo reciente reveló la asociación significativa entre el error de emparejamiento del antígeno mH HA-1 y la inducción de GvHD tras BMT HLA-idéntico^{3}. Los Antígenos Menores de Histocompatibilidad se reconocen por las células T restringidas con MHC, y se demostró que eran péptidos derivados de proteínas intracelulares que presentan las moléculas MHC^{4-6}. Aquí informamos de la identificación por primera vez de un gen polimórfico que codifica un antígeno mH humano. El antígeno mH HA-1 asociado con GvHD es un nonapéptido derivado del gen dialélico KIAA0223. La contraparte alélica HA-1 codificada por el gen KIAA0223 se diferencia únicamente en un aminoácido del antígeno mH HA-1. Los estudios familiares demuestran una correlación exacta entre el polimorfismo del gen KIAA0223 y el fenotipo HA-1 tal como se determinó anteriormente por reconocimiento de los clones CTL HA-1 específicos. La elucidación del gen que codifica HA-1 permite la perspectiva de tipificar el ADN del HA-1 de donantes y receptores de BMT para mejorar la selección de donantes y la prevención de GvHD.
Se han aislado los clones de células T citotóxicas específicas del antígeno mH HA-1 procedentes de tres pacientes diferentes con GvHD grave^{7}. El antígeno mH HA-1 se presenta en e contexto de HLA-A2.1, y está presente en el 69% de la población HLA-A2.1 positiva^{7}. Se demostró que la expresión de HA-1 es específica del tejido y está limitada a las células de origen hematopoiético, que incluyen células dendríticas, células de Langerhans y células leucémicas^{8-10}. El análisis familiar indicó un modo mendeliano de herencia para HA-1 y la segregación independiente del complejo MHC^{11}. La comparación de las secuencias del receptor de las células T (TCR) de diferentes clones de células T HA-1 específicos derivados de individuos diferentes reveló la utilización conservada del TCR V\beta6.9 y los aminoácidos conservados en la región CDR3^{12}. En un estudio retrospectivo, se evaluó el mal emparejamiento de numerosos antígenos mH con respecto a la asociación con GvHD tras BMT HLA-idéntico. Un mal emparejamiento HA-1 único entre el donante y el receptor estuvo significativamente correlacionado con la inducción de GvHD tras BMT HLA-idéntico^{3}.
Para identificar el antígeno mH de HA-1, se purificaron moléculas de HLA-A2.1 procedentes de dos HA-1 que expresaban líneas celulares de linfoblastoide B transformado por EBV (EBV-BLCL) Rp y Blk. Se aislaron los péptidos de enlace de HLA-A2.1 mediante tratamiento ácido, y se llevó a cabo el fraccionamiento de los péptidos mediante múltiples vueltas de HPLC en fase reversa. Se analizaron las fracciones por su capacidad de inducir la lisis HA-1 específica usando células T2 como células diana y un clon CTL HA-1 específico como célula efectora en un ensayo de liberación con ^{51}Cr (Fig 1a). La fracción 24 contenía la actividad de HA-1, y se fraccionó dos veces de manera adicional con HPLC en fase reversa utilizando un modificador orgánico diferente (Fig 1b.c.). Las fracciones 33 y 34 del tercer fraccionamiento HPLC mostraron la actividad de HA-1 en el ensayo de liberación con ^{51}Cr y se analizaron mediante espectroscopia de masas en tandem. Debido a que estuvieron presentes unos 100 péptidos diferentes en estas fracciones, se cromatografíó alrededor del 40% de las fracciones 33 y 34 con una columna microcapilar con divisor del efluente en línea. Se analizaron de manera simultánea las fracciones mediante espectroscopia de masas en tandem y el ensayo de liberación con ^{51}Cr (Fig 1d). Cinco especies de péptidos (a m/z 550, 520, 513, 585 y 502) estuvieron presentes de manera específica en las fracciones activas y ausentes en fracciones sin actividad en el ensayo CML. El análisis de disociación activada mediante colisión del péptido candidato a m/z 550 reveló la secuencia YXTDRVMTV. X significa isoleucina o leucina que no pueden ser discriminadas con este tipo de espectrometría de masas. Sin embargo, un péptido sintético con esta secuencia no fue capaz de reconstituir el epitopo HA-1 (no se muestran los resultados). Para determinar cuál de los cuatro candidatos restantes era el péptido HA-1 se evaluó la purificación del segundo HA-1 del EBV-BLCL Blk. Se cromatografió de manera adicional la fracción 33 del péptido HA-1 positivo del segundo fraccionamiento mediante HPLC en fase reversa mediante HPLC microcapilar con un tercer modificador orgánico. Se observó un pico único de actividad reconstituyente en un ensayo de liberación con ^{51}Cr (no se muestran los resultados). El análisis espectral de masas de estas fracciones reveló que estuvo presente el único péptido candidato a m/z 513. Se analizó este péptido con el análisis de disociación activada mediante colisión y se secuenció como VXHDDXXEA (Fig 2a). Se sintetizaron las variantes de isoleucina y leucina del péptido y se hicieron circular sobre la columna de HPLC microcapilar. Únicamente el péptido VLHDDLLEA se coeluyó con el péptido 513 procesado de manera natural (no se muestran los resultados). A continuación se añadió VLHDDLLEA sintético en una concentración diferente a un ensayo CML con tres diferentes clones CTL HA-1 específicos que revelaron el reconocimiento por parte de los tres clones del péptido con una actividad semimáxima a 150-200 pM para los tres clones (Fig 2b). Esto demostró que el antígeno mH de Ha-1 está representado por el nonapéptido
VLHDDLLEA.
Las búsquedas en la base de datos realizadas para identificar el gen que codifica HA-1 revelaron que el péptido HA-1 VLHDLLEA era idéntico a excepción de 8 ó 9 aminoácidos al péptido VLRDDLLEA procedente de la secuencia complementaria parcial del ADN (ADNc) KIAA0223, derivado de la línea celular KG-1 de la leucemia mielogénica aguda (Nº de acceso GENBANK D86986). Puesto que HA-1 tiene una frecuencia en la población del 69%, razonamos que la secuencia del péptido VLRDDLLEA podría representar la contraparte alélica HA-1 presente en el resto del 31% de la población. Para elaborar esta asunción realizamos el análisis de secuencia del ADNc de la supuesta región que codifica el HA-1 del KIAA0223 en EBV-BLCL derivado de un supuesto homozigótico HA-1 positivo (vR), de un presunto individuo HA-1 negativo (DH) y de la línea celular KG-1 (Tabla 5). La región que codifica el HA-1 del KIAA0223 del individuo HA-1 +/+ (vR) presentó dos nucleótidos diferentes respecto de la secuencia de KIAA0223 de la base de datos, llevando a la secuencia de aminoácidos VLHDDLLEA (designada como HA-1^{H}). La región que codifica HA-1 del KIAA0223 del individuo HA-1 -/- (DH) demostró una homología del 100% con la secuencia informada del KIAA0223 (designada como HA-1^{R}). La línea celular KG-1 expresó ambos alelos KIAA0223. Puesto que KG-1 no expresa la molécula de restricción HLA-A2.1 necesaria para el reconocimiento de las células T, transfectamos KG-1 con HLA-A2.1, y se usaron estas células como células diana en un ensayo de liberación con ^{51}Cr con el clon de célula T HA-1 específico como células efectoras. De acuerdo con los resultados del análisis de secuencias del ADNc, las células KG-1 fueron reconocidas por el clon de célula T HA-1 específico (no se muestran los datos). Este resultado sugiere que el gen KIAA0223 forma un sistema dialélico, del cual el alelo HA-1^{H} conduce al reconocimiento por el antígeno mH de los clones de células T HA-1 específico.
Se estudiaron dos familias que se habían tipificado previamente respecto de HA-1 con CTL HA-1 específico acerca del nivel del ADNc de su polimorfismo KIAA0223. Se seleccionaron los miembros familiares de la familia 1 por su polimorfismo de la secuencia KIAA0223 secuenciando la región de la secuencia que codifica HA-1. Todos los miembros HA-1 negativos presentaron la secuencia HA-1^{R}, mientras que todos los miembros HA-1 positivos resultaron ser heterocigóticos, portando de esta manera ambos alelos HA-1 (Fig 3a). Diseñamos de manera siguiente los cebadores PCR específicos del alelo HA-1 para seleccionar otra familia que previamente se había tipificado para HA-1. Se determinó que ambos padres y un hijo eran heterocigóticos para HA-1, dos hijos HA-1 negativos eran homocigóticos para el alelo HA-1^{R} y un hijo homozigótico para el alelo HA-1^{H} (Fig. 3b). La selección de ambas familias mostró una correlación exacta del fenotipo HA-1 tal como se determina mediante el reconocimiento por los clones de células T HA-1 específicos y el polimorfismo del gen KIAA0223.
Para probar de manera definitiva que el gen KIAA0223 codifica el antígeno mH de HA-1 se clonaron los alelos HA-1^{H} y HA-1^{R} de la región de la secuencia que codifica el HA-1 de KIAA0223 en un vector de expresión eucariota, y se transfectó de manera no estacionaria en células Hela HA-1 negativas en combinación con HLA-A2.1. Se ensayó el reconocimiento de la célula T HA-1 específico de estas células Hela transfectadas utilizando un ensayo de liberación de TNF\alpha. Se reconocieron las células Hela transfectadas con la secuencia HA-1^{H} que contenía el vector mediante dos clones de células T HA-1 específicos (Fig. 3C). Por el contrario, la transfección de la secuencia HA-1^{R} que contenía el vector no condujo al reconocimiento. En conclusión, nuestros resultados demuestran claramente que el antígeno mH de HA-1 se codifica mediante el alelo HA-1^{H} del gen KIAA0223.
Se llevaron a cabo ensayos de reconstitución y enlace del HLA-A2.1 para determinar la capacidad del péptido VLRDDLLEA de HA-1^{R} para enlazar con HLA-A2.1 y ser reconocido por los clones de células T HA-1 específicos. La concentración del péptido HA-1^{R} que inhibió el enlace de un péptido estándar fluorescente y el HLA-A2.1 en un 50% (CI50) fue de 365 nM, que cae entre los ligantes intermedios, mientras que el CI50 del péptido HA-1^{H} fue de 30 nM, que está en el intervalo de ligantes de afinidad alta (Fig. 4a)^{13,14}. Se ensayaron diferentes concentraciones de VLRDDLLEA en un ensayo de liberación con ^{51}Cr con tres clones de células T HA-1 específicos. Uno de tres clones ensayados (3HA15) mostró reconocimiento del péptido HA-1^{R}, pero únicamente a una concentración de péptido 1000 veces mayor que la necesaria para el reconocimiento del péptido HA-1^{H} (Fig 4b). Como la afinidad del enlace de los dos péptidos con HLA-A2.1 difiere únicamente en un factor de 10, se puede concluir que todos los clones de células T reconocen de manera específica el péptido HA-1^{H}.
El clon de la célula T 3HA15, que reconoce el péptido HA-1^{R} a altas concentraciones, no reconoce los individuos homocigóticos HA-1^{R}. Esto sugiere que el péptido VLRDDLLEA no se presentó por HLA-A2.1 o se presentó por debajo del límite de detección de la célula T. Para determinar si el péptido VLRDDLLEA de HA-1^{R} se presentó por HLA-A2.1, se eluyeron los péptidos de enlace de HLA-A2.1 a partir de EBV-BLCL homozigótico de HA-1^{R} y se fraccionaron con HPLC en fase reversa. Se sometió el péptido VLRDDLLEA de HA-1 sintético a HPLC reversa para determinar a cuál fracción se eluyó este péptido. Se analizaron las fracciones HPLC correspondientes derivadas de EBV-BLCL que expresaba HA-1^{R} utilizando espectrometría de masas. No se pudo detectar la presencia del péptido VLRDDLLEA (no se muestran los resultados), indicando que este péptido no está presente o está en muy bajas cantidades en HLA-A2.1 sobre la superficie celular. Esto es más posible debido a que la afinidad del enlace es 10 veces menor que la del péptido para HLA-A2.1. La ausencia supuesta del péptido HA-1^{R} en HLA-A2.1 indica que este alelo debe considerarse como un alelo nulo con respecto a la reactividad de la célula T. Esto implica que solo el BMT procedente de un donante HA-1^{R/R} (HA-1-) en la dirección de un receptor HA-1^{H/H} ó HA-1^{R/H} (HA-1 +), y no al revés, estarían asociados de manera significativa con el GvHD. Esto se ha observado sin duda en un estudio retrospectivo en el que se tipificaron pares BMT HLA-2.1 positivo respecto de HA-1^{3}. Sin embargo, los péptidos HA-1^{R} derivados pueden enlazarse con otros alelos HLA y posiblemente ser reconocidos por las células T. Si estos últimos péptidos no se generan y presentan por el alelo HA-1^{H}, entonces, se puede suponer la reactividad de las células T respecto del alelo HA-1^{R}, y se puede producir la GvHD en dicha dirección.
Únicamente se han identificado una pequeña cantidad de los antígenos mH humanos y murina en el nivel del péptido y gen. Se codifican dos antígenos mH de murina por la proteínas mitocondriales llevando en, de manera respectiva, cuatro y dos alelos^{15-17}. De manera adicional, se ha demostrado que dos antígenos mH H-Y de murina eran péptidos codificados por genes localizados en el cromosoma Y^{18-21}. El gen SMCY humano, localizado sobre el cromosoma Y, codifica los antígenos mH HY restringidos de HLA-B7 y HLA-A2^{5,6}. De los antígenos mH humanos no relacionados con el sexo sólo se ha secuenciado el antígeno mH de HA-2 en el nivel del péptido, pero el gen que codifica HA-2 permanece desconocido^{4}. La identificación del gen que codifica el antígeno mH de HA-1 es la primera demostración de que los antígenos mH humanos se derivan de genes polimórficos. El gen KIAA0223 que codifica HA-1 tiene dos alelos que difieren en dos nucleótidos que conducen a una diferencia de un único
aminoácido.
Debido a que el antígeno HA-1 mH es el único antígeno mH humano conocido que está correlacionado con el desarrollo de GvHD tras BMT, los resultados de nuestro estudio son de relevancia clínica significativa^{3}. Aunque el número de los diferentes antígenos mH humanos es probablemente alto, se cree que únicamente una pequeña cantidad de antígenos mH inmunodominantes pueden tenerse en cuenta para el riesgo de GvHD^{22}. La identificación de estos antígenos mH inmunodominantes humanos, y la selección de estos antígenos pueden dar como resultado una disminución significativa en la GvHD tras BMT. Describimos aquí la primera elucidación de un gen polimórfico que codifica el antígeno mH inmunodominante de HA-1. Esto permite el uso para diseñar cebadores PCR específicos del alelo HA-1 para la tipificación del pretransplante en donantes y receptores para mejorar la selección de donantes y la prevención por tanto del desarrollo de GvHD inducido por HA-1.
1.2 Procedimientos 1.2.1 Cultivo celular
Se derivaron los clones 3HA-15, clon 15 y 5W38 de células T citotóxicas HA-1 específicas restringidas con CD8+ HLA-A2.1 a partir de PBMC de dos pacientes que habían experimentado transplante de médula ósea HLA-idéntico^{7,23}. Se cultivaron los clones con estimulación semanal con PBMC y BLCL alogénico irradiado en medio RPMI-1640 que contenía suero humano al 15%, 1-glutamina 3 mM, leucoaglutinina-A al 1% y 20 U/ml de rIL-2. Las líneas celulares Rp y Blk de EBV B transformadas que expresan HA-1 HLA-A2.1 positivas (BLCL) se mantuvieron en IMDM que contenía FCS al 5%. Las líneas celulares KG-1 y T2 se cultivaron en medio 1640 que contenía 1-glutamina 3 mM y FCS al 10%.
1.2.2 Ensayo de liberación con ^{51}Cr
Se ensayaron las fracciones de HPLC y los péptidos sintéticos en un ensayo de liberación con ^{51}Cr tal como se ha descrito ^{24}. Se marcaron con ^{51}Cr 2500 células T en 25 \mul, se incubaron con 25 \mul de péptido disuelto en Hepes 50 mM de Hanks durante 30 minutos a 37ºC. Se añadieron células T citotóxicas en un volumen final de 150 \mul. Cuando se ensayaron por HPLC las fracciones del péptido, se incubó T2 con 2 \mug/ml de MA2.1 durante el marcado con ^{51}Cr. Tras 4 horas a 37ºC se cosecharon los sobrenadantes.
1.2.3 Purificación del péptido.
Se separaron por elución los péptidos de las moléculas de HLA-A2.1 purificadas tal como se ha descrito anterior-
mente^{24}. De forma breve, se purificaron las moléculas HLA-A2.1 dos veces a partir de 90.10^{9} EBV-BLCL de HLA-A2.1 positivas mediante cromatografía de afinidad con BB7.2 acoplado con perlas de sefarosa 4B activadas con CNBR (Pharmacia LKB) y se lavaron de manera extensiva. Se eluyeron los péptidos a partir de HLA-A2.1 con tratamiento con ácido acético al 10%, acidificado de manera adicional por TFA al 1% y separado de la cadena pesada de HLA-A2.1 y de la \beta2-microglobulina mediante filtración con un filtro 10 kD Centricon (Amicon). Se fraccionaron los péptidos utilizando micro HPLC en fase reversa (Smart Sistema, Pharmacia). Para la primera purificación se utilizaron tres rondas de fraccionamiento mediante HPLC para purificar las fracciones del péptido activo HA-1 restringido con HLA-A2.1 a partir de 90.10^{9} células Rp. El primer fraccionamiento estuvo constituido por el tampón A: HFBA al 0,1% en H_{2}O, tampón B: HFBA al 0,1% en acetonitrilo. El gradiente fue 100% de tampón A (0 a 20 min), 0 a 15% de tampón B (20 a 25 min) y 15 a 70% de tampón B (25 a 80 min) a un caudal de 100 \mul/min Se recogieron las fracciones de 100 \mul. Se fraccionó de manera adicional la fracción 24 del primer gradiente. El segundo fraccionamiento estuvo constituido por el tampón A: TFA al 0,1% en H_{2}O, tampón B: TFA al 0,1% en acetonitrilo. El gradiente fue 100% de tampón A (0 a 20 min), 0 a 12% de tampón B (20 a 25 min), y 12 a 50% de tampón B (25 a 80 min) a un caudal de 100 \mul/min. Se recogieron fracciones de 100 \mul. Se utilizó un tercer gradiente somero para purificar de manera adicional la fracción 27 que contenía la actividad de HA-1. el gradiente fue de 100% de tampón A (0 a 29 min), 0 a 18% de tampón B (29 a 34 min), 18% de tampón B (34 a 39 min), 18 a 23,9% de tampón B (39 a 98 min) a un caudal de 100 \mul/min Se utilizó de 1/180 a 1/45 de material de partida para el ensayo de las fracciones positivas en el ensayo de liberación con ^{51}Cr. Se utilizaron fraccionamientos HPLC comparables para la segunda purificación de las fracciones de péptido activo HA-1 restringidas con HLA-A2.1 a partir de 90.10^{9} Blk. Se utilizó el 40% de la fracción 33 que contenía el HA-1 de la segunda purificación de HA-1 para un fraccionamiento adicional mediante HPLC microcapilar en fase reversa. El tampón A fue trietil amina al 0,1% (TEA) en agua tamponada a pH 6,0 con ácido acético y el tampón B fue TEA al 0,085% en acetonitrilo al 60% tamponado a pH 6,0 con ácido acético. El gradiente fue del 100% de tampón A (0 a 5 min), 0 a 100% de B (5 a 45 min) a un caudal de 0,5 \mul/min Se recogieron las fracciones en 50 \mul de ácido acético al 0,1% cada minuto durante 5 a 15 minutos, cada 30 segundos de 15 a 20 minutos, cada 20 segundos de 20 a 40 minutos, y cada 30 segundos de 40 a 45 minutos. De cada fracción recogida se utilizó un 20% para el ensayo de la actividad de HA-1 y se utilizó un 80% para obtener los datos del espectro de masas.
1.2.4. Espectrometría de masas
Se analizaron las fracciones de la separación mediante HPLC tridimensional de la purificación de Rp que contenían la actividad HA-1 mediante HPLC microcapilar - espectrometría de masas por ionización de electrospray ^{25}. Se cargaron los péptidos en una columna microcapilar C18 (75 \mum d. i. x 10 cm) y se eluyeron 34 minutos con un gradiente de 0 a 60% de B, en el que el solvente A fue ácido acético 0,1 M en agua y el solvente B fue acetonitrilo a un caudal de 0,5 \mul/min Un quinto del efluyente se depositó en los pocillos de una placa de 96 pocillos que contenían 100 \mul de medio de cultivo en cada pocillo (fracciones de 10 segundos), mientras que los cuatro quintos restantes se dirigieron a la fuente de electrospray TSQ-70U. Se registraron el espectro de masas y el espectro de masas CAD en un espectrómetro de masas de triple cuadripolo Finnigan-MAT TSQ-7000 (San José, California), equipado con una fuente iónica de electrospray.
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1.2.5. Ensayo de enlace del péptido HLA-A2.1
Se utilizó un ensayo cuantitativo para los péptidos de enlace HLA-A2.1 basado en la inhibición del enlace del péptido estándar marcado fluorescente Hbc 18-27 F con C6 (FLPSDCFPSV) para la proteína recombinante HLA-A2.1 y la \beta2-microglobulina^{26,27}. En breve, se utilizaron concentraciones de HLA-A2.1que daban aproximadamente un 40-60% de enlace con el péptido estándar fluorescente con 15 pmol/pocillo (150 nM) de \beta2-microglobulina (Sigma). Se incubaron conjuntamente varias dosis de los péptidos de ensayo con 100 fmol/pocillo (1nM) de péptido estándar fluorescente HLA-A2.1 y \beta2-microglobulina durante 1 día a temperatura ambiente en la oscuridad en un volumen de 100 \mul en tampón de ensayo. Se determinó el porcentaje de fluorescencia por enlace con MHC mediante filtración en gel y se dedujo la dosis inhibitoria al 50% para cada péptido usando análisis por regresión no lineal de competición en un emplazamiento con el software prismgraph. Los péptidos sintéticos se fabricaron en un sintetizador de péptido múltiple Abimed 422 (Abimed, Langenfeld, Alemania) y tuvieron una pureza superior al 90%, según se comprobó mediante HPLC en fase reversa.
1.2.6. Amplificación RT-PCR y secuenciamiento de la región de KIAA0223 que codifica HA-1
Se preparó el total o el ARNm a partir de BLCL utilizando el procedimiento RNAzol (Laboratorios Cinaa/Biotecx, Houston, TX) o de acuerdo con las instrucciones del fabricante (Equipo de purificación de ARNm QuickPrep, Pharmacia Biotech) Se sintetizó ADNc con 1 \mug de ARN como molde y con KIAA0223 basado en el cebador inverso 5'-GCTCCTGCATGACGCTCTGTCT-GCA-3'. Para amplificar la región HA-1 de KIAA0223 se utilizaron los siguientes cebadores: Cebador hacia delante 5'-GACGTCGTCGAGGACATCTCCCAT-3'y el cebador inverso 5'-GAAGGCCACAGCAATCGTCTCCAGG-3'. Los parámetros de ciclo utilizados fueron desnaturalización a 95ºC, 1 min, templado a 58ºC, 1 min y extensión a 72ºC, 1 min (25 ciclos). Los productos PCR se purificaron utilizando el sistema de purificación Magic PCR-Preps DNA (Promega) y se clonaron de manera directa utilizando el equipo pMosBlue T-vector (Amersham LIFE SCIENCE). Se secuenciaron seis colonias independiente de cada individuo utilizando el equipo de secuenciamiento T7 (Pharmacia Biotech).
1.2.7. Amplificación PCR del alelo específico HA-1
En el caso de la amplificación PCR del alelo específico HA-1, se sintetizó ADNc tal como se ha descrito anteriormente. Se llevó a cabo una amplificación PCR con cebadores hacia delante específicos del alelo: para el alelo HA-1^{H} el cebador H1: 5'-CCT-TGA-GAA-ACT-TAA-GGA-GTG-TGT-GCT-GCA-3', para el alelo HA-1^{R} el cebador R1: 5'-CCT-TGA-GAA-ACT-TAA-GGA-GTG-TGT-GTT-GCG-3' y para ambos se utilizó la reacción con el cebador inverso tal como se ha descrito anteriormente. Los parámetros de ciclo utilizados fueron desnaturalización a 95ºC, 1 min, templado a 67ºC, 1 min y la extensión a 72ºC, 1 min (25 ciclos).
1.2.8. Clonación y expresión de la región alélica de HA-1^{H} y HA-1^{R} de KIAA0223
Se diseñaron un cebador PCR hacia delante basado en KIAA0223 hacia delante que contiene un codón de comienzo ATG (5´-CCG-GCA-TGG-ACG-TCG-TCG-AGG-ACA-TCT-CCC-ATC-3') y un cebador PCR basado en un KIAA0223 inverso que contiene una señal de parada de traducción (5'-CTA-CTT-CAG-GCC-ACA-GCA-ATC-GTC-TCC-AGG-3'), y se utilizaron en una reacción RT-PCR con ADNc derivado de BLCL HA-1^{H} homocigótico y HA-1^{R} homocigótico. Los parámetros de ciclo utilizados fueron desnaturalización a 95ºC, 1 min, templado a 60ºC, 1 min y extensión a 72ºC, 1 min (25 ciclos). Los productos PCR deseados se purificaron utilizando el sistema de purificación del ADN Magic PCR-Preps (Promega). El ADN purificado se clonó directamente utilizando el equipo pMosBlue T-vector (Amersham LIFESCIENCE) y se volvió a clonar en el vector pCDNA3.1 (+) eucariota bajo el control de un promotor CMV. Se llevaron a cabo cotransfecciones no estacionarias con HLA-A2.1 en células Hela utilizando coprecipitación DEAE-Dextrano. Tras 3 días de cultivo se añadieron células T HA-1 específico y después de 24 horas se midió la liberación de TNF\alpha en el sobrenadante utilizando células WEHI ^{28}.
2. Ejemplo 2
Materiales y procedimientos para el aislamiento de los alelos HA-1 Cultivo celular y aislamiento del ADN genómico
Se aisló ADN genómico a partir de linfocitos de sangre periférica congelada (PBL) con el High Pure Template Purification Kit de Boehringer Mannheim de acuerdo con la descripción de los fabricantes. Se cultivaron células LCL transformadas con EBV en RPMI-1640 que contenía L-glutamina 3 mM y FCS al 10%. Se cosecharon las células para el aislamiento del ADN, se lavaron dos veces con una solución salina tamponada de fosfato (PBS) se volvieron a suspender en 200 \mul y se mantuvieron a -20ºC hasta uso. Para cada aislamiento de ADN se utilizaron 2 x 10^{6} células.
PCR genómico
Para cada reacción PCR se utilizaron 100-200 ng de ADN genómico. Se llevaron a cabo las amplificaciones con 20 pmol de cada cebador en 100 \mul de tampón Tris/HCl 10 mM (pH 8,4), que contenía KCl 50 mM, MgCl_{2} 4 mM, 0,06 mg/ml de BSA, dNTP 0,5 mM y 2,5 unidades de polimerasa Taq (Roche molecular Systems, Brancheburg, New Jersey). Todas las reacciones comenzaron con una etapa de desnaturalización de 5 min a 95ºC. Las condiciones de ciclación para todas las combinaciones de cebadores fueron 95ºC durante 1 min y 65ºC durante 1 min para 10 ciclos. Seguido por 20 ciclos a 95ºC durante 1 min, 62ºC durante 1 min, 72ºC durante 1 min, y una extensión de la última etapa durante 5 min a 72ºC.
Aislamiento del cósmido de ADN
Para el aislamiento a gran escala del cósmido de ADN se inocularon 11 de medio LB (20 \mug/ml de Ampicilina) y se hicieron crecer durante la noche a 37ºC con agitación vigorosa (300 rpm). Se aisló el cósmido de ADN utilizando el protocolo de aislamiento del plásmido de bajo número de copias del Quiagen Plasmid Purification Kit de acuerdo con la descripción de los fabricantes. Este procedimiento de aislamiento dio como resultado un promedio de 500 \mug de cósmido de ADN purificado.
Secuenciamiento del cósmido de ADN
Para cada reacción de secuenciamiento se utilizaron 10 \mug de cósmido de ADN. Se llevaron a cabo las reacciones de secuenciamiento con el T7 Secuencing kit (Pharmacia Biotech).
CTL mHag HA-1 específico
Se ensayaron LCL transformadas con EBV con CTL HA-1 específico. Se determinó la reactividad mediante un ensayo de liberación con cromo. Las células diana (3 x 10^{3}) marcadas con ^{51}Cr, se coincubaron con diluciones en serie de células T efectoras en placas de microvaloración con 96 pocillos de fondo redondo (Costar 3799). Tras 4 horas a 37ºC se cosecharon los sobrenadantes libres de células para el conteo gamma. Se calculó el porcentaje específico de lisis como sigue: 5 lisis específicas = (liberación experimental - liberación espontánea)/(liberación máxima - liberación espontánea) x 100%. La liberación espontánea y la liberación máxima son la liberación de cromo de las células diana en el medio de cultivo solo y en el medio de cultivo que contiene Tritón-X 100 al 1%, de manera respectiva.
3. Ejemplo 3
El péptido HA-1 se codifica por dos exones
Para la determinación de la estructura genómica que rodea el péptido HA-1 se seleccionó una biblioteca de cósmidos derivada de PBL masculino humano. Se utilizó el fragmento de ADNc de 312 pb que codifica el péptido HA-1 como sonda para la selección. Se aislaron tres cósmidos solapantes. Se secuenció parcialmente el cósmido pTCF-HA-1 que contenía el alelo R. La secuencia de reacción reveló un emplazamiento donante de empalme cuatro nucleótidos después del codón polimórfico de HA-1. Podría identificarse un emplazamiento aceptor de empalme al frente del segundo exón que codifica el péptido HA-1 (Fig 5). De esta manera, la secuencia del péptido HA-1 está codificada por dos exones.
4. Ejemplo 4
PCR específico del alelo sobre ADN genómico
Para la tipificación específica del alelo genómico se diseñaron dos conjuntos diferentes de cebadores. Ambos conjuntos contienen un cebador común y uno específico para ambos HA-1, alelo H o alelo R (tabla 1). El cebador común del conjunto 1 se deriva del exón que codifica los primeros cuatro aminoácidos del péptido HA-1. Los cebadores H/R contienen secuencias intrónicas, el emplazamiento donante de empalme y la parte específica del alelo de la secuencia del exón. El conjunto 2 está constituido por un cebador común derivado del intrón identificado en pTCF-HA-1 y los cebadores derivados del exón que cubren el alelo H- y el R-. La amplificación con el cebador del conjunto 1 dio como resultado un fragmento de 190 pb, el cebador del conjunto 2 dio un fragmento de 331 pb. Ambos conjuntos de cebadores mostraron la longitud esperada de fragmentos, y son adecuados para la tipificación genómica. Debido a que los cebadores se escogen de forma que amplificarían el ADN bajo condiciones PCR idénticas, se puede utilizar una combinación de ambos conjuntos de cebadores en la misma reacción PCR. En este caso se observó un tercer fragmento de 535 pb debido a la amplificación del ADN entre los dos cebadores comunes diferentes (no se muestran los datos).
5. Ejemplo 5
Estudios de familia
Se llevó a cabo la factibilidad de la tipificación genómica sobre 24 miembro que pertenecen a tres familias HLA-A*0201 positivo. Se compararon los resultados de la tipificación del ADN con la tipificación de CTL de mHag HA-1 (tabla 3) y mostraron una correlación exacta. La Figura 6 muestra el análisis del ADN genómico del locus HA-1 en una familia representativa. El donante de médula ósea (06) y el receptor (02) fueron HLA-idénticos. El donante fue homocigótico para el alelo R. El receptor fue heterocigótico (H/R) y presentaba por tanto el antígeno HA-1 en la superficie de la célula. Este mal emparejamiento dio como resultado una GvHD, de esta manera, las células T del donante reaccionaron frente al mHag del receptor. En esta familia, el donante y el paciente fueron HLA-idénticos, pero tenían un mal emparejamiento en la secuencia HA-1. Se pueden observar las mismas disparidades para HA-1 en la familia 2. Nuevamente el donante (07) fue homocigótico para el alelo R y el paciente (02) fue heterozigótico (H/R), dando como resultado una GvHD. La familia 3 representa la segregación del alelo HA-1 H en tres generaciones de una familia sana. El alelo H se deriva del abuelo (01) y se hereda por dos generaciones. La abuela (00) aunque HLA-A*0201 positiva es homocigótica para el alelo R. Sus hijos (03, 04 y 05) son todos heterocigóticos para el locus HA-1. El hijo 04 se casó con el individuo 34 que es HLA-A*0201 positivo, pero homozigótico para el alelo R. De todos sus descendiente, únicamente 84 hereda el alelo HA-1 H del abuelo. Los otros hijos mayores (82, 83 y 85) son HA-1 R homocigóticos.
TABLA 3 Tipificación celular y genómica para HA-1 en tres familias HLA-A*0201 positivo
Familia 1 Análisis CML Análisis PCR
00 + H/R
01 + H/R
02* +. H/R
03 - R/R
05 + H/H
06* - R/R
Familia 2
00 - R/R
01 + H/R
02* + H/R
04 + H/R
06 + H/R
07* - R/R
09 - R/R
10 + H/R
Familia 3
00 - R/R
01 + H/R
03 + H/R
04 + H/R
05 + H/R
34 - R/R
82 - R/R
83 - R/R
84 + H/R
85 - R/R
6. Ejemplo 6
Tipificación de los alelos HA-1 mediante el procedimiento LiPA
El siguiente procedimiento para la tipificación de los alelos HA-1 H y R en una muestra se basa en la tecnología LiPA (Stuyver y col, 1993). Para cada reacción PCR se utilizan 100-200 ng de ADN genómico. Se llevaron a cabo las amplificaciones con 20 pmol de cada cebador en 100 \mul de tampón Tris/HCl 10 mM (pH 8,4), que contenía KCl 50 mM, MgCl_{2} 4 mM, 0,06 mg/ml de BSA, dNTP 0,5 mM y 2,5 unidades de polimerasa Taq (Roche Molecular Systems, Brancheburg, New Jersey). Todas las reacciones comienzan con una etapa de desnaturalización de 5 min a 95ºC. Las condiciones de ciclación para todas las combinaciones de cebadores son de 95ºC durante 1 min y 65ºC durante 1 min durante diez ciclos. Seguido por 20 ciclos a 95ºC durante 1 min, 62ºC durante 1 min, 72ºC durante 1 min, y una extensión de la última etapa durante 5 min a 72ºC. Subsiguientemente se tipifican los alelos HA-1 mediante una etapa de hibridación inversa con sondas de oligonucleótidos que se inmovilizan sobre una tira de nitrocelulosa. Las sondas que se hibridan de manera específica con el alelo R son, por ejemplo, HA1-R1(1) (SEC ID Nº 11), HA1-R1 (2) (SEC ID Nº 12) y HA1-R1(3) (SEC ID Nº 13). Las sondas que se hibridan de manera específica con el alelo H son, por ejemplo, HA1-H1(1) (SEC ID Nº 14), HA1-H1(2) (SEC ID Nº 15) y HA1-H1(3) (SEC ID Nº 16). La hibridación se lleva a cabo en 5x SSPE, SDS al 0,5% a 56ºC durante 30 min Se lleva a cabo una etapa de lavado riguroso en 2x SSPEm SDS al 0,1% a 56ºC durante 10 min.
Se ensayó la factibilidad de un LiPA que contenía las sondas específicas HA1-H1(1) (SEC ID Nº 14), HA-1-R1(3) (SEC ID Nº 13) y una sonda para controlar la reacción colorimétrica (CC) con las 6 muestras de la familia 1. Los resultados obtenidos mediante LiPA confirmaron los resultados de tipificación genómica mediante PCR y la tipificación CTL (tabla 4)
TABLA 4 comparación de la tipificación celular y genómica mediante PCR o LiPA de HA-1 en la familia 1
Familia 1 Análisis CML Análisis PCR Análisis LiPA
00 + H/R H/R
01 + H/R H/R
02 + H/R H/R
03 - R/R R/R
05 + H/H H/H
06 - R/R R/R
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2

Claims (18)

1. Un procedimiento para la tipiificación de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 en una muestra, comprendiendo dicho procedimiento la detección de nucleótidos polimórficos en el ADNc o los ácidos nucleicos genómicos de dichos alelos, en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que se corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H.
2. Un procedimiento de acuerdo con la reivindicación 1, caracterizado de manera adicional porque dichos alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 son el alelo H y el alelo R identificados por la SEC ID Nº 17 y la SEC ID Nº 19.
3. Un procedimiento para la tipificación genómica de acuerdo con la reivindicación 1 a 2 comprendiendo dicho procedimiento:
a)
poner en contacto los ácidos polinucleicos genómicos en la muestra con al menos un par de cebadores en los que el cebador 5'- y/o el 3' de al menos uno de dicho par de cebadores es capaz de hibridarse de manera específica con las regiones diana que comprenden los nucleótidos polimórficos en dichos alelos, en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H, y llevando a cabo una reacción de amplificación;
b)
para cada uno de al menos dicho par de cebadores detectar si se forma o no un producto de amplificación en la etapa a);
c)
inferir a partir del resultado de la etapa b) qué alelo HA-1 está presente en dicha muestra.
4. Un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado de manera adicional porque:
al menos uno de dicho par de cebadores comprende un cebador 5'- que es capaz de hibridarse de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en posición 4 o en las posiciones 4 y 8 en el alelo HA-1, o,
al menos uno de dicho par de cebadores comprende un cebador 3' que es capaz de hibridarse de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en posición 8 o en las posiciones 4 y 8 en el alelo HA-1,
en el que la posición 1 es la posición del primer nucleótido de la SEC ID Nº 17 ó 19.
5. Un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizado de manera adicional porque se escogen los cebadores a partir de la siguiente lista:
SEC ID Nº 2, SEC ID Nº 3, SEC ID Nº 4, SEC ID Nº 5, SEC ID Nº 6, SEC ID Nº 7.
6. Un procedimiento para la tipificación genómica de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, comprendiendo dicho procedimiento:
a)
amplificar un fragmento de dichos alelos, comprendiendo dicho fragmento al menos un nucleótido polimórfico en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H, mediante el uso de al menos un par de cebadores que se hibridan de manera específica con las regiones diana en dichos alelos sin nucleótidos polimórficos;
b)
hibridar el producto amplificado de la etapa a) con al menos una sonda que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo;
c)
inferir a partir del resultado de la etapa b qué alelo HA-1 está presente está presente en dicha muestra.
7. Un procedimiento de acuerdo con la reivindicación 6, caracterizado de manera adicional porque al menos uno de dicho par de cebadores comprende un cebador 5'- que se hibrida de manera específica con una región diana sin nucleótidos polimórficos que se corresponde con la secuencia GTGTTGCGTGACG de dicho alelo HA-1 y/o un cebador 3' que se hibrida de manera específica con una región diana sin nucleótidos polimórficos en una región que se corresponde con la SEC ID Nº 1 de dicho alelo HA-1.
8. Un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 6 ó 7 caracterizado de manera adicional porque al menos una sonda se hibrida de manera específica con una región diana que comprende los nucleótidos en posición 4 y/u 8 en el alelo HA-1, en el que la posición 1 es la posición del primer nucleótido de la SEC ID Nº 17 ó 19.
9. Un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reividicaciones 6 a 8, caracterizado de manera adicional porque:
dichos cebadores se escogen de la siguiente lista:
SEC ID Nº 2, SEC ID Nº 8, SEC ID Nº 9, SEC ID Nº 10, y/o dichas sondas se escogen a partir de la siguiente lista:
SEC ID Nº 11, SEC ID Nº 12, SEC ID Nº 13, SEC ID Nº 14, SEC ID Nº 15, SEC ID Nº 16.
10. Un cebador para uso en un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9 para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1, que presenta al menos un 80% de homología en la secuencia con la SEC ID Nº 17 o la SEC ID Nº 19.
11. Una sonda para uso en un procedimiento de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 6 a 9 para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1, que presenta al menos un 80% de homología en la secuencia con la SEC ID Nº 17 o la SEC ID Nº 19.
12. Un ácido polinucleico aislado identificado por la SEC ID Nº 17 o la SEC ID Nº 19 o un ácido polinucleico aislado que presenta al menos un 80% de homología en la secuencia con dichos ácidos polinucleicos.
13. Un procedimiento para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con las reivindicaciones 1 ó 2 por medio del secuenciamiento de dicho alelo.
14. Un equipo diagnóstico para la tipificación de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 3 a 6, comprendiendo dicho equipo:
a)
al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con las regiones diana que comprenden los nucleótidos polimórficos en dichos alelos, en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que se corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
b)
de manera opcional, un enzima y/o los reactivos que permiten la reacción de amplificación;
c)
de manera opcional, los medios que permiten la detección de los productos amplificados.
15. Un equipo diagnóstico para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 6 a 9, comprendiendo dicho equipo:
a)
al menos un cebador que se hibrida de manera específica con las regiones diana sin nucleótidos polimórficos en dichos alelos;
b)
al menos una sonda que se hibrida de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo, en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que se corresponde con la SEC ID Nº 17 o 18 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
c)
de manera opcional, un enzima y/o los reactivos que permiten la reacción de amplificación, y/o los reactivos que permiten la reacción de hibridación.
16. Un equipo diagnóstico para la tipificación genómica de los alelos del Antígeno Menor de Histocompatibilidad HA-1 de acuerdo con la reivindicación 13, comprendiendo dicho equipo:
a)
al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con las regiones diana sin nucleótidos polimórficos en dichos alelos;
b)
al menos un cebador capaz de hibridarse de manera específica con una región diana que comprende uno o más nucleótidos polimórficos en dicho alelo, en el que dichos nucleótidos polimórficos se detectan en una región de dicho alelo que corresponde con la SEC ID Nº 17 ó 19 en, de manera respectiva, el alelo HA-1 R o el alelo HA-1 H;
c)
de manera opcional, un enzima y/o los reactivos que permiten la reacción de amplificación, y/o los reactivos que permiten la reacción de secuenciamiento.
17. Un procedimiento para la tipificación de los alelos HA-1 que comprende la utilización de anticuerpos que detectan de manera específica los alelos HA-1 identificados mediante la SEC ID Nº 18 y la SEC ID Nº 20.
18. Un equipo diagnóstico para la tipificación de los alelos HA-1 que comprende los anticuerpos que detectan de manera específica los alelos HA-1 identificados mediante la SEC ID Nº 18 y la SEC ID Nº 20.
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