ES2248645T3 - Lactobacillus para la preservacion de productos comestibles. - Google Patents
Lactobacillus para la preservacion de productos comestibles.Info
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-
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Abstract
Un microorganismo de la clase de bacterias Gram- positivas microaerofílicas no formadoras de esporas, del género Lactobacillus, especie casei, tipo de cepa LMG P- 21007 para conservar productos vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales, mezclas suyas y derivados de productos vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas.
Description
Lactobacillus para la preservación de
productos comestibles.
La presente invención hace referencia al
microorganismo natural Lactobacillus casei LMG
P-21007 y a su uso para la conservación de productos
vegetales, productos de pescado, y productos derivados de animales,
mezclas suyas, derivados de productos vegetales, productos de
pescado, y productos derivados de animales y mezclas suyas, y
particularmente pero no exclusivamente, a la conservación de
ensaladas y pescado, tales como salmón, controlando la carga
bacteriana patógena y decadente.
Los productos vegetales de la Categoría IV están
teniendo una difusión cada vez mayor. Es conocido que la carga
bacteriana presente en estos productos depende de su origen, de las
condiciones en las que son recogidos o cultivados, etcétera. Las
condiciones de almacenamiento (humedad, hojas cortadas) también
facilitan el aumento de la carga bacteriana. Durante el
almacenamiento y la refrigeración, los muchos cortes en la
superficie de los productos, la elevada humedad y la atmósfera
gaseosa que es generada dentro de los envases facilita el desarrollo
de microorganismos Gram-negativos, que causan el
deterioro de los productos y la proliferación de patógenos. Para
productos vegetales, con el fin de contrastar el desarrollo de la
carga bacteriana, se utiliza el cloro en el lavado de dichos
productos. El uso de cloro, aparte de no estar permitido en todos
los países, puede alterar las propiedades organolépticas de los
productos vegetales. Finalmente, algunos patógenos son capaces de
proliferar incluso después de lavar los vegetales con cloro y
después de conservarlos a baja temperatura.
El uso de una atmósfera modificada es un medio
alternativo para conservar las cualidades organolépticas y
comerciales de los productos vegetales, productos de pescado y
productos derivados de animales, y para asegurar su conservación más
duradera. Sin embargo, el uso de una atmósfera modificada, que es
considerado un medio eficaz para extender el tiempo de conservación
de productos alimenticios, incluyendo vegetales de la categoría IV,
y para mantener sus cualidades organolépticas y comerciales,
conlleva riesgos en cuanto a la seguridad microbiológica, puesto que
algunos patógenos pueden desarrollarse o incluso ser estimulados en
ciertas atmósferas modificadas y a baja temperatura.
El uso de microorganismos de la especia
Lactobacillus casei para controlar la carga bacteriana
patógena y decadente ha sido descrito en los siguientes
artículos:
- VESCOVO M ET AL: "Aplicación de
antimicrobianas productoras de ácido láctico bacterias para
controlar patógenos en verduras listas para su uso". JOURNAL
OF APPLIED BACTERIOLOGY, vol. 81, nº 2, 1996, páginas
113-119, XP009007306 ISSN;
0021-8847
- VESCOVO MARISA ET AL: "Efectos
combinados de inóculo de Lactobacillus casei, atmósfera
modificada de envasado y temperatura de almacenamiento en el control
de Aeromomas hidrófila en verduras listas para su uso".
INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD SCIENCE & TECHNOLOGY, vol.
32, nº 5, octubre 1997 (1997-10), páginas
411-419, XP009007365 ISSN:
0950-5423.
- SCOLARI G ET AL:
"Caracterización parcial y enlace plásmido de un compuesto
antimicrobiano no proteínico en una cepa de Lactobacillus
casei de origen vegetal". JOURNAL OF APPLIED
MICROBIOLOGY, vol. 86, nº, 4, abril 1999
(1999-04), páginas 682-688,
XP002234316 ISSN: 1364-5072.
- VIGNOLO G ET AL: "Control de
Listeria monocitogenes en ternera picada por ``Lactocin 705''
una bacteriocina producida por Lactobacillus casei CRL
705" INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD MICROBIOLOGY, vol. 29,
nº. 2-3, 1996, páginas
397-402, XP002234317 ISSN:
0168-1605.
- RODGERS S: "Conservación de alimentos
refrigerados no fermentados con cultivos
microbianos-una reseña" TRENDS IN FOOD SCIENCE
AND TECHNOLOGY, ELSEVIER SCIENCE PUBLISHERS, Reino Unido, vol.
12, nº 8, agosto de 2001 (2001-08), páginas
276-284, XP004357930 ISSN:
0924-2244.
La expresión "productos vegetales Categoría
IV" es utilizada para designar, en este contexto, fruta,
verduras, hortalizas, y otros productos vegetales comestibles,
listos para su uso que no pueden definirse como fruta, verduras y
hortalizas, mientras que la expresión "productos de pescado y
productos derivados de animales" es utilizada para designar, en
este contexto, pescado, marisco, moluscos, aves de corral, cerdos,
bovinos, ovinos, equinos y cualquier otro animal comestible.
La expresión "derivados de productos vegetales,
productos de pescado, y productos derivados de animales" designa
preferiblemente pero no exclusivamente productos derivados de su
procesamiento, tales como zumos, concentrados, salsas, conservas,
etcétera.
El objetivo de la presente invención es permitir
una conservación más duradera de productos vegetales, productos de
pescado y productos derivados de animales, de mezclas suyas, de
derivados de productos vegetales, productos de pescado y productos
derivados de animales y de mezclas suyas, sin perder sus cualidades
organolépticas y comerciales (aspecto, color, sabor, etcétera).
Un objeto de la presente invención es controlar
la carga bacteriana patógena y decadente, que es la principal causa
de la pérdida de las cualidades.
Este objetivo y estos y otros objetos son
conseguidos por el microorganismo LMG P-21007, el
microorganismo estando caracterizado por el hecho de que pertenece a
la clase de bacterias Gram-positivo microaerofílicas
no formadoras de esporas, al género Lactobacillus, y a la
especie casei, tipo de cepa LMG P-21007. El
lactobacilo según la invención es capaz de conservar productos
vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales,
mezclas suyas y derivados de productos vegetales, productos de
pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas
controlando el desarrollo de la carga bacteriana patógena y
decadente, y es capaz de realizar la función inhibitoria a lo largo
de una amplia gama de temperatura.
La temperatura de desarrollo de LMG
P-21007 está preferiblemente entre 20ºC y 44ºC, más
entre 25ºC y 44ºC, incluso más preferiblemente entre 36ºC y 38ºC, y
de un modo particularmente preferido es específicamente 37ºC.
Otro aspecto de la invención hace referencia al
uso del microorganismo LMG P-21007 para conservar
productos vegetales, productos de pescado y productos derivados de
animales, mezclas suyas, derivados de productos vegetales, productos
de pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas para
controlar el desarrollo de la carga bacteriana decadente y para
controlar el desarrollo de la carga bacteriana patógena.
El microorganismo puede utilizarse en una
atmósfera ambiente y una atmósfera protectora, preferiblemente una
atmósfera protectora. La atmósfera protectora preferiblemente
comprende entre 10% y 20% de CO_{2} y N_{2} para la fracción
restante.
Preferiblemente, el microorganismo es utilizado
fresco, congelado o criodesecado, más preferiblemente fresco. El uso
de una forma en lugar de la otra depende de las condiciones
contingentes, tales como tiempo de producción, tiempo de transporte
y tiempo de utilización, que la persona experta en la técnica será
capaz de evaluar en cada instancia.
La temperatura para la actividad inhibitoria del
microorganismo puede variar entre 4ºC y 44ºC, preferiblemente entre
4ºC y 12ºC, más preferiblemente entre 4ºC y 8ºC.
La invención hace referencia al uso del
microorganismo LMG P-21007 en relación a productos
vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales,
mezclas suyas, derivados de productos vegetales, productos de
pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas.
La invención hace referencia a productos de
horticultura, preferiblemente verduras, particularmente ensaladas.
Otras verduras particularmente consideradas son los brotes de
soja.
La invención hace referencia a productos de
pescado y productos derivados de animales, preferiblemente carne de
pescado, particularmente salmones, marisco, moluscos y la carne de
aves de corral, particularmente pavos, bovinos, cerdos, equinos y
ovinos.
La invención hace referencia al control de la
carga bacteriana patógena y decadente particularmente en relación al
grupo de Enterococci, bacterias coliformes, Pseudomona
Daceae, Listeria, Staphylococcus.
Otro aspecto de la invención hace referencia a un
producto alimenticio comprendiendo LMG P-21007 y uno
o más productos vegetales, productos de pescado y productos
derivados de animales, derivados de productos vegetales, productos
de pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas.
Productos vegetales de la Categoría IV son particularmente productos
de horticultura, preferiblemente hortalizas, particularmente
ensaladas y mezclas suyas. Además, una verdura es preferiblemente el
brote de soja.
Los productos de pescado y productos derivados de
animales son preferiblemente carne de pescado, particularmente
salmones, marisco y moluscos, y la carne de aves de corral,
particularmente pavo, carne bovina, carne de cerdo, carne equina y
carne ovina.
La Figura 1 es una fotografía de LMG
P-21007 vista con un microscopio electrónico de
exploración con un aumento de 8000 X.
La Figura 2 muestra la movilidad electroforética
de Pep X en las cepas Lactobacillus casei ATCC 334 y LMG
P-21007.
La Figura 3 muestra la actividad inhibitoria de
LMG P-21007 respecto a Staphylococcus aureus
IMPC SA4.
La Figura 4 muestra el peso molecular de las
bandas individuales del marcador Supercoiled DNA ladder
(GIBCO-BRL).
La Figura 5 muestra el perfil plásmido de LMG
P-21007.
La Figura 6 muestra el perfil plásmido de varias
cepas de Lactobacilos de diferentes especies.
La Figura 7 muestra el perfil del ADN genómico de
LMG P-21007.
Los inventores aislaron el microorganismo LMG
P-21007 de verduras frescas de Categoría IV. El
aislamiento se realizó con medio MRS agarizado (Difco), específico
para bacterias lácticas. El microorganismo LMG
P-21007 obtenido de este modo es conservado
congelado (-20ºC) o criodesecado. La cepa se caracterizó por ensayos
de genotipo y genéticos normales. La morfología de la cepa se
observó bajo un microscopio óptico con dispositivo para contraste de
fase y bajo un microscopio electrónico de exploración (SEM Mod.
HITACHI S2300) y es la morfología típica de la especia
Lactobacillus casei. Las imágenes obtenidas bajo el SEM con
un aumento de 8000 X se muestran en la Figura 1.
También se determinó lo siguiente: las
condiciones de fermentación de los carbohidratos, el tipo de isómero
del ácido láctico (L-ácido láctico) y la movilidad electroforética
de la encima intracelular
X-prolil-dipeptidil aminopeptidasa
Pep X. Esta última es mostrada en la Figura 2, que compara la
movilidad electroforética de Pep X de LMG P-21007
con la movilidad de Lactobacillus casei ATCC 334.
La resistencia a los antibióticos de la cepa LMG
P-21007 y la gama de la actividad inhibitoria in
vitro de LMG P-21007 contra microorganismos
indicadores Gram + y Gram- también se determinó. La Figura 3 muestra
la actividad inhibitoria de LMG P-21007 contra
Staphylococcus aureus IMPC SA4, que puede evaluarse a partir
del halo de inhibición claramente visible en la Figura.
La temperatura para el desarrollo satisfactorio
de LMG P-21007 está entre 20ºC y 44ºC, está entre
25ºC y 44ºC para un desarrollo mejor, está entre 36ºC y 38ºC para el
desarrollo óptimo, y está específicamente en 37ºC.
Las características genéticas de LMG
P-21007 también se evaluaron; en particular, el
análisis del ADN plásmido se realizó y el perfil del ADN genómico se
determinó (para LMG P-21007). La Figura 4 presenta
el peso molecular de las bandas individuales del marcador
Supercoiled DNA ladder /GIBCO-BRL). La Figura 5
muestra en su lugar el perfil del ADN plásmido de LMG
P-21007. En particular, el pozo 1 muestra el perfil
del marcador II molecular ADN (ROCHE), el pozo 2 muestra el perfil
del Supercoiled DNA ladder (GIBCO-BRL), y el pozo 3
muestra el perfil del ADN plásmido de LMG P-21007.
La Figura 6 muestra el perfil plásmido de varias cepas de
lactobacilos de diferentes especies. Cada perfil corresponde a una
única cepa de lactobacilo:
- 1.
- Marcador
- 2.
- Lactobacillus plantarun MV3
- 3.
- Lactobacillus casei AT4
- 4.
- Lactobacillus sake L2S
- 5.
- Lactobacillus curvatus L3S
- 6.
- LMG P-21007
El perfil del ADN genómico de LMG
P-21007 se determinó después de la digestión
enzimática de ADN cromosómico con enzima Sfi I. El primer pozo de la
Figura 7 indica el perfil del marcador utilizado: \lambda ladder
PFGE (Roche), mientras que el segundo pozo muestra el perfil del ADN
cromosómico de LMG P-21007.
También se realizaron tests para evaluar la
actividad de LMG P-21007 contra Pseudomonas,
bacterias coliformes fecales y totales en ensaladas de Categoría IV
y en brotes de soja. Una suspensión bacteriana acuosa con una
concentración adecuada se nebulizó sobre las verduras. Un gramo de
biomasa teniendo un contenido de células de 1x10^{11} CFU/g (CFU =
unidades que forman colonias) puede resuspenderse en H_{2}O para
obtener una suspensión suficiente para tratar 100 Kg de producto de
hoja entera u hoja cortada.
El producto nebulizado es parcialmente secado
antes de su envasado con el fin de eliminar el exceso de humedad
añadida con el proceso de nebulización. Para realizar la comparación
entre la carga microbiana del producto tratado con biomasa
criodesecada o congelada y la carga del producto tratado con cloro,
las concentraciones de coliformes fecales y totales y
Pseudomonas se determinaron en el tiempo de t_{o}
(directamente después de la nebulización) y al final de su vida útil
que es igual a 5+1 días después de la fecha de envasado. Los
resultados indican un control significativo de la carga bacteriana
en las verduras tratadas con LMG P-21007 respecto de
verduras lavadas con cloro. Resultados particularmente
significativos se consiguieron en el caso de la oruga, en la que los
coliformes totales se encontraron que disminuían respecto a t_{o},
y para brotes de soja, porque 5+1 días después de la fecha de
envasado la carga bacteriana para coliformes fecales y totales es
menor de 10^{4}.
Los siguientes ejemplos ilustran meramente la
presente invención y no deben entenderse en un sentido restrictivo
para la presente invención.
\newpage
Ejemplo
1
La cepa de LMG P-21007 es
cultivada en medio MRS (Difco) específico para bacterias lácticas,
utilizando un inóculo de 1% de un precultivo en el mismo medio
preparado recientemente. Después de 14 horas de fermentación a 37ºC,
la densidad celular alcanza valores de 1 a 4 x 10^{9} CFU/ml.
La biomasa es separada del medio de cultivo
después de corregir el pH a neutralidad.
Las células resultantes pueden conservarse:
- -
- congeladas a -20ºC
- -
- criodesecadas después de añadir un agente protector compuesto de 5% de dextrina, 10% de peptona de soja, 0,2% de extracto de levadura.
Ejemplo
2
Las condiciones de fermentación de carbohidratos
se determinaron mediante el sistema API 50 CHL (Biomerieux,
Francia). Los resultados se leyeron después de 48 horas de
incubación de los túneles a 37ºC en condiciones anaeróbicas. Los
resultados se ofrecen en la Tabla 1. Las condiciones de fermentación
de carbohidratos también se determinaron en un medio mínimo con la
adición de cada carbohidrato individual con el fin de confirmar la
fermentación mediante el sistema API.
\vskip1.000000\baselineskip
Azúcares | LMG P-21007 |
Control | - |
Glicerol | \pm |
Eritriol | - |
D-arabinosa | - |
L-arabinosa | - |
Ribosa | + |
D-xilosa | - |
L-xilosa | - |
Adonitol | - |
\beta-metilxilosida | - |
Galactosa | + |
D-glucosa | + |
D-fructosa | + |
D-manosa | + |
L-sorbosa | + |
Ramnosa | - |
Dulcitol | - |
Inositol | \pm |
Manitol | + |
Sorbitol | + |
Alfa-metil-D-manosida | - |
Alfa-metil-D-glucosida | + |
N-acetilglucosamida | + |
Amigdalina | + |
Arbutina | + |
Azúcares | LMG P-21007 |
Control | - |
Esculina | + |
Salicina | + |
Celobiosa | + |
Maltosa | + |
Lactosa | + |
Melibiosa | - |
Sacarosa | \pm |
Trealosa | + |
Inulina | - |
Melicitosa | + |
D-rafinosa | - |
Almidón | - |
Glicógeno | - |
Xilitol | - |
\beta-gentiobiosa | \pm |
D-turanosa | + |
D-lixosa | - |
D-tagatosa | + |
D-fucosa | - |
L-fucosa | - |
D-arabitol | - |
L-arabitol | - |
Gluconato | \pm |
2-ketogluconato | - |
5-ketogluconato | - |
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
Con el fin de confirmar la posición taxonómica de
la cepa, se analizó la movilidad electroforética de la enzima
intracelular X-prolil-dipeptidil
aminopeptidasa PepX. La enzima se extrajo mediante ruptura mecánica
de las células con ultrasonidos (Labsonic Brown mod. 1510 generador
de ultrasonidos). La fracción citoplásmica conteniendo la enzima se
sometió a separación en gel poliacrilamida en condiciones no
desnaturalizadoras. Después de la electroforesis, la movilidad de la
enzima se determinó mediante manchado histoquímico, obtenido
mediante un sustrato cromogénico adecuado específico para actividad
Pep X. Después del manchado la movilidad de Pep X de la cepa LMG
P-21007 se comparó con la movilidad de las cepas de
Lactobacillus casei recogidas. La Figura 2 muestra el gel de
compara-
ción.
ción.
Ejemplo
4
La determinación de la resistencia a antibióticos
de la cepa LMG P-21007 se realizó mediante el método
de difusión de placa, siguiendo las indicaciones de
Kirby-Bauer para la evaluación cuantitativa. Los
resultados se ofrecen en la Tabla 2.
Antibiótico | Dosis (I.U.) | Diámetro | Sensibilidad |
\beta-lactaminas | |||
\hskip0.5cm Penicilina G | 10 | 15 | S |
\hskip0.5cm Ampicilina | 10 | 12 | R |
\hskip0.5cm Cloxacilina | 5 | 0 | R |
\hskip0.5cm Cefaloridina | 30 | 0 | R |
Aminosidas | |||
\hskip0.5cm Streptomicina | 10 | 0 | R |
\hskip0.5cm Neomicina | 30 | 0 | R |
\hskip0.5cm Kanamicina | 30 | 0 | R |
\hskip0.5cm Gentamicina | 10 | 0 | R |
Tetraciclinas | |||
\hskip0.5cm Tetraciclina | 30 | 15 | R |
\hskip0.5cm Oxitetraciclina | 30 | 18 | R |
Macrolidas | |||
\hskip0.5cm Spiramicina | 100 | 15 | S |
\hskip0.5cm Lincomicina | 2 | 8 | R |
Fenicoles | |||
\hskip0.5cm Cloranfenicol | 30 | 22 | S |
Riframicinas | |||
\hskip0.5cm Riframicina | 30 | 23 | S |
Otros | |||
\hskip0.5cm Novobiocina | 20 | 0 | S |
\hskip0.5cm Vancomicina | 30 | 0 | R |
Polipéptidos | |||
\hskip0.5cm Colistina | 10 | 0 | R |
\hskip0.5cm Bacitracina | 10 | 0 | R |
S = Sensible | |||
R = Resistente |
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
5
Para determinar la temperatura óptima de
desarrollo, LMG P-21007 se incubó durante 24 horas
en un medio MRS líquido a diferentes temperaturas en una disposición
multitermostato. La intensidad del desarrollo se determinó mediante
lectura espectrofotométrica con la longitud de onda de 560 nm. Los
valores encontrados se ofrecen en la Tabla 3. Los valores muestran
un desarrollo satisfactorio de la cepa a temperaturas de entre 20ºC
y 44ºC y un desarrollo óptimo a temperaturas de entre 25ºC y
44ºC.
Temperatura de desarrollo (ºC) | \hskip0.75cm Intensidad de desarrollo (OD560 nm) | |
T0 | T2 | |
4 | 0.057 | 0.070 |
8 | 0.059 | 0.269 |
12 | 0.083 | 0.410 |
20 | 0.047 | 1.280 |
25 | 0.059 | 1.487 |
30 | 0.077 | 1.600 |
37 | 0.075 | 1.616 |
44 | 0.071 | 1.430 |
50 | 0.060 | 0.199 |
Ejemplo
6
El espectro de la actividad inhibitoria in
vitro de LMG P-21007 contra microorganismos
indicadores de Gram+ y Gram- se obtuvo mediante pruebas de difusión
de placa. El ensayo se realizó a 8ºC y a 37ºC. Las cepas indicadoras
y los resultados son ofrecidos en la Tabla 4. La Figura 3 presenta
la actividad inhibitoria de LMG P-21007 contra
Staphylococcus aureus IMPC SA4.
Microorganismos | Halo \diameter | Inhibición |
Indicadores | mm | |
8ºC | 37ºC | |
Microorganismos Gram+ | ||
\hskip0.5cm Lactobacillus helveticus ATCC 15009 | - | - |
\hskip0.5cm Lactobacillus reuteri DSM 20016 | - | - |
\hskip0.5cm Lactobacillus plantarum NCDO 1193 | 10 | 9 |
\hskip0.5cm Lactobacillus casei ATCC 334 | 8 | 12 |
\hskip0.5cm Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 | 9 | 10 |
\hskip0.5cm Leoconostoc spp. | - | - |
\hskip0.5cm Staphylococcus aureus IMPC SA4 | 23 | 21 |
\hskip0.5cm Listeria monocytogenes EG | 8 | 12 |
Microorganismos Gram- | ||
\hskip0.5cm Aeromonas hydrophila 2 | 10 | 14 |
\hskip0.5cm Salmonella typhimurium G | 2 | 7 |
\hskip0.5cm Citrobacter freundii IMPC CF2 | 8 | 12 |
\hskip0.5cm Enterobacter cloacae IMPC CF3 | 10 | 15 |
\hskip0.5cm Escherichia coli IMPC CT4 | 6 | 10 |
Ejemplo
7
El análisis del ADN plásmido de la cepa de LMG
P-21007 se realizó utilizando el método lisis
descrito por Andreson y Mc Key; Supercoiled DNA Ladder
(GIBCO-BRL) se utilizó como marcador de referencia
para pesos moleculares. Figura 4.
La Figura 5 muestra el perfil del ADN plásmido de
LMG P-21007 y la Figura 6 muestra los perfiles del
ADN plásmido de LMG P-21007 en comparación con las
cepas que pertenecen a otras especies mesófílas.
Ejemplo
8
El perfil del ADN genómico de la cepa de LMG
P-21007 se obtuvo mediante digestión enzimática del
ADN cromosómico con enzima Sfi I según las indicaciones de Ferrero
et al. y se analizó mediante electroforesis en campo pulsado
(PFGE). \lambda Ladder PFGE (Roche) se utilizó como marcador.
Las condiciones electrofóreticas fueron:
gradiente | 4.5 V/cm |
tiempo de proceso | 24 horas |
tiempo de conmutación | 1\rightarrow20 segundos |
factor ramping | lineal |
ángulo incluido | 120º |
agarosa | 1% |
TBE | 0.5 x |
Temperatura | 14ºC |
La Figura 7 muestra el perfil del ADN genómico
del LMG P-21007.
Ejemplo
9
Se utilizó LMG P-21007 congelado
y criodesecado (véase Ejemplo 1).
La cantidad de LMG P-21007 a ser
añadida al producto a ser tratado se programó para obtener una
concentración celular de 10^{6} CFU/ml en el producto. Este
resultado se consiguió dispersando la biomasa en una cantidad de
agua proporcional al rendimiento de fermentación. El rendimiento de
fermentación se calculó a partir del conteo microbiano de la biomasa
de LMG P-21007.
La suspensión bacteriana acuosa resultante se
nebulizó sobre las ensaladas.
Antes del envasado, se eliminó el exceso de
humedad añadida con el proceso de nebulización para que las
condiciones de conservación en los varios tests fueran
comparables.
Para realizar la comparación entre la carga
microbiana del producto tratado con la biomasa criodesecada o
congelada y la carga del producto tratado con cloro, las
concentraciones de coliformes y Pseudomonas se determinaron
en el tiempo t_{o} (directamente después de la nebulización) y a
la finalización de la vida útil, que es igual a 5+1 días después de
la fecha de envasado.
La composición de la atmósfera protectora se
estableció durante el envasado:
- -
- CO_{2}: 10%-20%
- -
- N_{2}: la fracción restante.
Los valores de las muestras a t_{o} se refieren
al producto lavado sólo con agua potable, sin hipoclorito de sodio,
para evaluar si el tratamiento con lactobacilos es equivalente al
tratamiento con cloro.
Los resultados obtenidos para las ensaladas
individuales se ofrecen en las siguientes tablas:
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=8.0x10^{2}) | (t_{o}=1.5x10^{4}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 7.9x10^{5} | 2.2x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 3.4x10^{2} | 1.7x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 3.3x10^{2} | 4.3x10^{3} |
(Continuación)
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=8.0x10^{2}) | (t_{o}=1.5x10^{4}) | |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 3.0x10^{5} | 5.0x10^{6} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 5.8x10^{2} | 2.3x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 2.8x10^{3} | 3.4x10^{3} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=2.4x10^{4}) | (t_{o}=7.0x10^{5}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.3x10^{6} | 2.5x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 6.1x10^{5} | 3.6x 10^{6} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 8.0x10^{5} | 3.9x10^{6} |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.4x10^{6} | 6.0x10^{6} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 9.0x10^{4} | 7.0x10^{5} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 9.2x10^{4} | 1.3x10^{5} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=4.2x10^{2}) | (t_{o}=6.5x10^{4}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 4.2x10^{6} | 2.7x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 1.8x10^{4} | 7.5x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 1.7x10^{4} | 4.2x10^{4} |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.7x10^{6} | 2.0x 10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 1.0x10^{3} | 4.0x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 7.3x10^{3} | 6.0x10^{3} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=3.3x10^{4}) | (t_{o}=8.7x10^{5}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 8.3x10^{6} | 7.6x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 5.0x10^{3} | 4.2x10^{4} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 4.6x10^{3} | 6.3x10^{4} |
(Continuación)
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=3.3x10^{4}) | (t_{o}=8.7x10^{5}) | |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.4x10^{6} | 5.2x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 1.3x10^{3} | 2.1x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 2.5x10^{3} | 3.1x10^{3} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes | Pseudomonas | |
(t_{o}=3.1x10^{3}) | (t_{o}=6.5x10^{5}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.3x10^{6} | 8.2x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 2.9x 10^{4} | 5.3x10^{4} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 4.6x10^{4} | 6.7x10^{4} |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 2.5x10^{7} | 4.8x10^{7} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 2.2x10^{3} | 2.2x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos criodesecados | 6.2x10^{3} | 3.6x10^{3} |
Ejemplo
10
LMG P-21007 congelado y
criodesecado se utilizó (véase Ejemplo 1).
La cantidad de LMG P-21007 a ser
añadida al producto a ser tratado se programó para obtener una
concentración celular de 10^{6} CFU/ml en el producto. Este
resultado se consiguió dispersando la biomasa en una cantidad de
agua proporcional al rendimiento de la fermentación. El rendimiento
de fermentación se calculó a partir del conteo microbiano de la
biomasa de LMG P-21007.
La suspensión bacteriana acuosa resultante se
nebulizó en las ensaladas.
Las ensaladas entonces se sometieron a secado
parcial antes de envasado, con el fin de eliminar el exceso de
humedad añadido con el proceso de nebulización y de modo que las
condiciones de conservación en los varios tests fueran
comparables.
Con el fin de comparar la carga microbiana del
producto tratado con biomasa criodesecada o congelada y la carga del
producto tratado con cloro, las concentraciones de coliformes
fecales y totales se determinaron en tiempo t_{o} (directamente
después de la nebulización) y a la finalización de la vida útil,
igual a 5+1 días después de la fecha de envasado.
La composición de la atmósfera protectora se
estableció durante el envasado:
- -
- CO_{2}: 10%-20%
- -
- N_{2}: la fracción restante.
Los valores de las muestras a t_{o} hacen
referencia al producto lavado sólo con agua potable, sin hipoclorito
de sodio, con el fin de evaluar si el tratamiento con lactobacilos
es equivalente al tratamiento con cloro.
Los resultados obtenidos para las ensaladas
individuales se ofrecen en las siguientes tablas:
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{o}=1.5x10^{4}) | (t_{0}=<10) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 3.5x10^{5} | (2.4x10^{3}) |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 4.0x10^{6} | (7.0x10^{1}) |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{o}=8.3x10^{4}) | (t_{0}=5.0x10^{3}) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 5.2x10^{6} | 4.1x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 7.8x10^{4} | 6.3x10^{3} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{0}=incontable) | (t_{0}=<10) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 6.0x10^{6} | incontable |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 3.4x10^{6} | incontable |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 2.0x10^{6} | <10 |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{o}=3.2x10^{4}) | (t_{0}=1.0x10^{4}) | |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 1.7x10^{5} | 7.7x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 3.0x10^{6} | 5.0x10^{3} |
\vskip1.000000\baselineskip
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{o}= incontable) | (t_{0}=1.4x10^{2}) | |
Atmósfera protectora | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 3.0x10^{5} | 2.3x10^{3} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | 1.7x10^{6} | 2.1x10^{3} |
Coliformes totales | Coliformes fecales | |
(t_{o}= incontable) | (t_{0}= incontable) | |
Atmósfera ambiente | ||
\hskip0.5cm lavados con cloro | 4.1x10^{6} | 5.2x10^{6} |
\hskip0.5cm lactobacilos frescos | <10^{4} | <10^{4} |
Ejemplo
11
Una muestra de salmón Noruego ahumado se dividió
en tres porciones: una porción de referencia (Test), una porción que
recibió la adición de Listeria spp. en la cantidad de
10^{5} CFU/g, y una porción que recibió la adición de Listeria
spp. en la cantidad de 10^{5} CFG/g y Lactobacillus LMG
P-21007 en la cantidad de 10^{6} CFU/g.
El control de los grupos microbianos (bacterias
coliformes, Listeria y Staphylococcus) se realizó cada
dos semanas por un periodo de 30 días.
Los resultados se ofrecen en la siguiente
tabla.
\vskip1.000000\baselineskip
Grupos | Salmón Test | Salmón + Listeria spp. | Salmón + Listeria spp. | ||||||
microbianos | + LMG P-21007 | ||||||||
t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | |
Conteo microbiano | 4.3x10^{6} | 6.0x10^{6} | 4.0x10^{6} | 4.3x10^{6} | 2.0x10^{7} | 4.6x10^{7} | 4.3x10^{6} | 3.0x10^{7} | 1.2x10^{7} |
aeróbico total | |||||||||
Coliformes totales | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 |
Coliformes fecales | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 |
Psicrófilos totales | 3.7x10^{6} | 2.0x10^{6} | 2.5x10^{6} | 3.7x10^{6} | 1.3x10^{7} | 2.2x10^{7} | 3.7x10^{6} | 1.0x10^{7} | 9.7x10^{6} |
Staphylococcus spp. | 3.2x10^{5} | 6.7x10^{5} | 9.0x10^{5} | 3.2x10^{5} | 7.0x10^{5} | 5.0x10^{5} | 3.2x10^{5} | 3.0x10^{5} | 2.0x10^{5} |
Bacterias lácticas | 2.4x10^{5} | 3.0x10^{6} | 3.7x10^{7} | 2.4x10^{5} | 1.3x10^{7} | 4.5x10^{7} | 2.0x10^{6} | 3.6x10^{7} | 5.8x10^{7} |
Listeria spp. | ausente | ausente | ausente | 3.4x10^{5} | 9.0x10^{5} | 2.0x10^{6} | 3.5x10^{5} | 1.0x10^{5} | 3.0x10^{5} |
\vskip1.000000\baselineskip
Los datos experimentales muestran que la adición
de Lactobacillus LMG P-21007 produce una
inhibición del desarrollo de Listeria; durante el periodo de
conservación controlado, para la porción de muestra inoculada sólo
con Listeria hay un aumento suyo de 1 log (de 10^{5} a
10^{6}), mientras que para la porción inoculada con
Listeria y con Lactobacillus LMG
P-21007 el nivel de Listeria es mantenido en
valores del orden de 10^{5} CFU/g.
Ejemplo
12
Una muestra de salmón escocés ahumado se dividió
en tres porciones: una porción de referencia (Test), una porción que
recibió la adición de Listeria spp. en la cantidad de
10^{5} CFU/g y una porción que recibió la adición de Listeria
spp. en la cantidad de 10^{5} CFU/g y Lactobacillus LMG
P-21007 en la cantidad de 10^{6} CFU/g.
El control de los grupos bacterianos (bacterias
coliformes, Listeria y Staphylococcus) se realizó cada
dos semanas durante un periodo de 30 días.
Los resultados se presentan en la siguiente
tabla.
Grupos | Salmón Test | Salmón + Listeria spp. | Salmón + Listeria spp. | ||||||
microbianos | + LMG P-21007 | ||||||||
t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | |
Conteo microbiano | 1.0x10^{5} | 1.4x10^{8} | 8.0x10^{8} | 3.0x10^{5} | 1.3x10^{8} | 4.0x10^{8} | 3.0x10^{5} | 1.3x10^{8} | 2.0x10^{8} |
aeróbico total | |||||||||
Coliformes totales | <10 | 1.1x10^{2} | <10 | <10 | 9.0x10^{1} | <10 | <10 | 2.0x10^{1} | <10 |
Coliformes fecales | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 |
Psicrófilos totales | 9.0x10^{4} | 1.0x10^{8} | 4.0x10^{8} | 9.0x10^{4} | 9.0x10^{7} | 1.0x10^{8} | 9.0x10^{4} | 8.0x10^{7} | 1.2x10^{8} |
Staphylococcus spp. | 2.0x10^{3} | 2.2x10^{6} | 4.6x10^{7} | 2.0x10^{3} | 2.4x10^{5} | 7.0x10^{5} | 2.0x10^{3} | 4.0x10^{4} | 17.3x10^{4} |
Bacterias lácticas | 3.0x10^{5} | 5.0x10^{7} | 6.7x10^{7} | 3.0x10^{5} | 8.0x10^{7} | 9.3x10^{7} | 4.8x10^{6} | 1.3x10^{8} | 1.6x10^{8} |
Listeria spp. | ausente | ausente | ausente | 2.0x10^{5} | 4.0x10^{5} | 8.7x10^{5} | 2.0x10^{5} | 2.3x10^{4} | 4.2x10^{4} |
Los datos experimentales muestran que la adición
de Lactobacillus LMG P-21007 produce una
inhibición del desarrollo de Listeria y Staphylococcus;
durante el periodo de conservación controlado, para la porción de
muestra inoculada sólo con Listeria, la población permanece a
niveles del orden de 10^{5} CFU/g, mientras que la porción
inoculada con Listeria y con Lactobacillus LMG
P-21007 el nivel de Listeria disminuye,
pasando de valores del orden de 10^{5} CFU/g a valores del orden
de 10^{4} CFU/g y el nivel de Staphylococcus es menor que
el nivel observado en todas las otras muestras (del orden de
10^{4} CFU/g, versus 10^{6} CFU/g de la porción test y 10^{5}
CFU/g de la porción inoculada con Listeria).
Ejemplo
13
Una muestra de salmón Escocés ahumado se dividió
en tres porciones: una porción de referencia (Test), una porción que
recibió la adición de Listeria spp. en la cantidad de
10^{5} CFU/g y una porción que recibió la adición de
Listeria spp. en la cantidad de 10^{5} CFU/g y
Lactobacillus LMG P-21007 en la cantidad de
10^{6} CFU/g.
El control de los grupos bacterianos (bacteria
coliforme, Listeria y Staphylococcus) se realizó cada
dos semanas durante un periodo de 30 días.
Los resultados se presentan en la siguiente
tabla.
Grupos | Salmón Test | Salmón + Listeria spp. | Salmón + Listeria spp. | ||||||
microbianos | + LMG P-21007 | ||||||||
t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | t_{0} | t_{15} | t_{30} | |
Conteo microbiano | 1.2x10^{4} | 1.0x10^{6} | 7.0x10^{6} | 1.2x10^{4} | 8.7x10^{7} | 1.7x10^{8} | 1.2x10^{4} | 3.8x10^{7} | 4.6x10^{7} |
aeróbico total | |||||||||
Coliformes totales | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 |
Coliformes fecales | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 | <10 |
Enterococcus spp. | 6.1x10^{1} | 5.3x10^{3} | 6.3x10^{5} | 6.1x10^{1} | 6.2x10^{3} | 5.8x10^{5} | 6.1x10^{1} | 4.5x10^{3} | 1.8x10^{4} |
Pseudomonas spp. | 2.3x10^{3} | 3.0x10^{4} | 2.5x10^{4} | 2.3x10^{3} | 6.0x10^{4} | 5.0x10^{4} | 2.3x10^{3} | 6.4x10^{4} | 6.2x10^{4} |
Staphylococcus spp. | 2.0x10^{4} | 2.6x10^{6} | 3.5x10^{6} | 2.0x10^{4} | 5.4x10^{5} | 1.2x10^{6} | 2.0x10^{4} | 2.7x10^{4} | 1.9x10^{5} |
Bacterias lácticas | 6.2x10^{3} | 3.5x10^{5} | 7.3x10^{5} | 6.2x10^{3} | 6.3x10^{5} | 8.5x10^{5} | 8.2x10^{6} | 7.0x10^{6} | 9.1x10^{6} |
Listeria spp. | ausente | ausente | ausente | 2.5x10^{5} | 1.9x10^{6} | 5.1x10^{6} | 2.5x10^{5} | 3.0x10^{5} | 1.2x10^{5} |
Los datos experimentales muestran que la adición
de Lactobacillus LMG P-21007 produce una
inhibición del desarrollo de Listeria y de
Staphylococcus; durante el periodo de conservación
controlado; para la porción de muestra inoculada sólo con
Listeria, la población de hecho aumenta desde niveles del
orden de 10^{5} CFU/g a niveles del orden de 10^{6} CFU/g,
mientras que para la porción inoculada con Listeria y con
Lactobacillus LMG P-21007 el nivel de
Listeria permanece en valores del orden de 10^{5} CFU/g y
el nivel de Staphylococcus, mientras que aumenta, aún
permanece por debajo del nivel observado en todas las demás
muestras.
Ejemplo
14
Tipo de salmón | Concentración de Listeria | Concentración de Listeria spp. en | Variación en log después de |
spp. en la porción Test | la muestra inoculada con Listeria | conservación a 4ºC en | |
spp y Lactobacillus LMG P-21007 | vacío durante 30 días. | ||
Escocés | 2.9x10^{6} | 3.4x10^{4} | - 2 log |
Escocés | 7x10^{7} | 2.8x10^{4} | - 3 log |
Escocés | 3.4x10^{7} | 1.2x10^{5} | - 2 log |
Escocés | 3.4x10^{7} | 4x10^{4} | - 3 log |
Irlandés | 6.7x10^{5} | 8x10^{4} | - 1 log |
Irlandés | 4.6x10^{6} | 3x10^{4} | - 2 log |
Irlandés | 1.2x10^{6} | 2.4x10^{4} | - 2 log |
Irlandés | 1x10^{5} | 3x10^{3} | - 2 log |
Noruego | 3.2x10^{6} | 6.1x10^{5} | - 1 log |
Noruego | 2.4x10^{5} | 1.2x10^{4} | - 1 log |
Irlandés | 3x10^{5} | 1.7x10^{4} | - 1 log |
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
15
Tipo de salmón | Concentración de | Concentración de Staphylococcus | Variación en log después de |
Staphylococcus spp. | spp. en la muestra inoculada con | conservación a 4ºC en vacío | |
en la porción Test | Lactobacillus LMG P-21007 | durante 30 días. | |
Escocés | 4.2x10^{7} | 2.1x10^{6} | - 1 log |
Escocés | 5.2x10^{6} | 8.3x10^{3} | - 3 log |
Escocés | 3.1x10^{7} | 7.2x10^{4} | - 3 log |
Escocés | 2.7x10^{6} | 7x10^{4} | - 2 log |
Irlandés | 4.5x10^{6} | 3x10^{5} | - 1 log |
Irlandés | 6.2x10^{5} | 3.2x10^{5} | \hskip0.135cm 0 log |
Irlandés | 7.1x10^{6} | 3.2x10^{5} | - 1 log |
Ejemplo 15
(continuación)
Tipo de salmón | Concentración de | Concentración de Staphylococcus | Variación en log después de |
Staphylococcus spp. | spp. en la muestra inoculada con | conservación a 4ºC en vacío | |
en la porción Test | Lactobacillus LMG P-21007 | durante 30 días. | |
Irlandés | 3.5x10^{5} | 1.6x10^{6} | + 1 log |
Noruego | 2.2x10^{7} | 8x10^{5} | - 2 log |
Noruego | 2x10^{5} | 7x10^{5} | \hskip0.135cm 0 log |
Irlandés | 3x10^{5} | 1.7x10^{4} | - 1 log |
Claims (27)
1. Un microorganismo de la clase de bacterias
Gram-positivas microaerofílicas no formadoras de
esporas, del género Lactobacillus, especie casei, tipo
de cepa LMG P-21007 para conservar productos
vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales,
mezclas suyas y derivados de productos vegetales, productos de
pescado y productos derivados de animales y mezclas suyas.
2. El microorganismo según la reivindicación 1,
caracterizado por una temperatura de desarrollo entre 20ºC y
44ºC.
3. El microorganismo según la reivindicación 2,
caracterizado por una temperatura de desarrollo entre 25ºC y
44ºC.
4. El microorganismo según la reivindicación 3,
caracterizado por una temperatura de desarrollo de 37ºC.
5. Uso de un microorganismo según la
reivindicación 1 para conservar productos vegetales, productos de
pescado y productos derivados de animales, mezclas suyas y derivados
de productos vegetales, productos de pescado y productos derivados
de animales y mezclas suyas.
6. Uso de microorganismos según la reivindicación
1 para controlar la carga bacteriana decadente.
7. Uso del microorganismo según la reivindicación
1 para controlar la carga bacteriana patógena.
8. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7 en atmósfera ambiente o atmósfera
protectora.
9. Uso del microorganismo según la reivindicación
8, en el que la atmósfera protectora tiene la siguiente
composición:
- CO_{2}: 10%-20%
- N_{2}: la fracción restante.
10. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7 en el que la temperatura de actividad está
entre 4ºC y 44ºC.
11. Uso del microorganismo según la
reivindicación 10, en el que la temperatura de actividad está entre
4ºC y 12ºC.
12. Uso del microorganismo según la
reivindicación 10, en el que la temperatura de actividad está entre
4ºC y 8ºC.
13. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7, en el que el microorganismo es fresco,
congelado o criodesecado.
14. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6, o 7, en el que los productos vegetales
pertenecen a las categorías I, IV o V.
15. Uso del microorganismo según la
reivindicación 14, en el que los productos vegetales de categorías
I, IV y V y mezclas suyas son productos de horticultura.
16. Uso del microorganismo según la
reivindicación 15, en el que los productos de horticultura son
ensaladas o mezclas de ensaladas.
17. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7, en el que los productos de pescado y
productos derivados de animales son carne de pescado, marisco,
moluscos, carne de aves de corral, bovinos, cerdos, equinos y
ovinos.
18. Uso del microorganismo según la
reivindicación 17, en el que la carne de pescado es carne de
salmón.
19. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7, en el que los derivados de los productos
vegetales, productos de pescado y productos derivados de animales
son zumos, concentrados, salsas y conservas suyas.
20. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6 o 7 para controlar la carga bacteriana de
bacterias coliformes.
21. Uso del microorganismo según las
reivindicaciones 5, 6, o 7 para controlar la carga bacteriana de
bacterias del grupo de Enterococci, Pseudomonas Daceae,
Staphylococcus y Listeria.
\newpage
22. Un producto alimenticio comprendiendo el
microorganismo según la reivindicación 1 y al menos un producto
vegetal, producto de pescado o producto derivado de animales, o al
menos un derivado de al menos un producto vegetal, producto de
pescado o producto derivado de animales.
23. El producto alimenticio según la
reivindicación 22, en el que los productos vegetales y sus mezclas
pertenecen a las categorías I, IV y V.
24. El producto según la reivindicación 23, en el
que los productos vegetales y sus mezclas son productos de
horticultura.
25. El producto alimenticio según la
reivindicación 24, en el que los productos de horticultura son
ensaladas o mezclas de ensaladas.
26. El producto alimenticio según la
reivindicación 22, en el que los productos de pescado o productos
derivados de animales y sus mezclas son carne de pescado, marisco,
moluscos, carne de aves de corral, cerdos, equinos, bovinos y
ovinos.
27. El producto alimenticio según la
reivindicación 26, en el que la carne de pescado es carne de
salmón.
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