ES2246826T3 - Composicion y procedimiento para obtener inmunizacion especifica contra uno o mas antigenos usando diferentes vectores recombinantes. - Google Patents
Composicion y procedimiento para obtener inmunizacion especifica contra uno o mas antigenos usando diferentes vectores recombinantes.Info
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Abstract
Un kit de partes para vacunar un animal o un ser humano con el fin de obtener una respuesta inmune contra un antígeno de un lentivirus, comprendiendo dicho producto al menos tres composiciones de vacuna diferentes para administración secuencial a dicho animal o dicho ser humano, - en el que cada composición de vacuna comprende dicho antígeno o un precursor del mismo, - en el que al menos tres de dichas composiciones de vacunas difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector diferente de manera que se evita la amplificación de una respuesta inmune contra antígenos vectores, y - en la que al menos uno de dichos vectores o producto del mismo, funciona como un adyuvante.
Description
Composición y procedimiento para obtener
inmunización específica contra uno o más antígenos usando diferentes
vectores recombinantes.
La invención cae en el campo de la medicina. Más
particularmente la invención se refiere a vacunas, composiciones de
vacunas y estrategias de vacunación para obtener protección inmune
mejorada contra enfermedades infecciosas.
El último objetivo de desarrollo de vacunas
profilácticas y/o terapéuticas para un gran número de agentes
infecciosos ha sido difícil de lograr debido a la incapacidad de
inducir respuestas inmunes óptimas para el patógeno de una manera
segura y eficaz. Los planteamientos previamente ensayados y probados
de vacunación con virus muertos enteros o vivos atenuados son o bien
inseguros o ineficaces para el resto de enfermedades infecciosas de
interés importante para la salud pública. Para evitar posibles
problemas de salud ha sido posible desarrollar vacunas basadas en
proteínas constituidas por una o varias proteínas virales o epítopes
de las mismas. Éstas se derivan de genes virales individuales
expresados in vitro y purificados como subunidades
individuales en la proteína en ausencia de material genético. Los
planteamientos de vacunas de subunidades recombinantes tienen
eficacia probada para ciertos patógenos tales como hepatitis B. Sin
embargo, para muchas aplicaciones las subunidades de antígenos no
han sido exitosas debido a dificultades de expresión/producción,
alteración de epítopes inmunológicos relevantes de notable
variabilidad del patógeno requiriendo el desarrollo continuo,
fermentación y purificación de nuevos antígenos.
Se desarrollaron vectores de vacunas virales o
bacteriales vivos recombinantes como soluciones potenciales para
algunos de estos problemas. Un virus o bacteria vivo replicante que
no provoca enfermedad tiene el potencial de usarse como un vector.
Los virus atenuados tales como adenovirus, poxvirus (es decir,
vaccinia, MVA, canario, difteria aviar) o bacterias tales como E.
coli, se están desarrollando y evaluando como vectores vivos.
Debido a su capacidad de replicarse (en algunos casos de una manera
limitada) en un huésped sin graves efectos secundarios, los hace
candidatos a llevar y expresar genes foráneos como antígenos de
"vacuna". Las vacunas recombinantes tiene la ventaja de que se
replican en el huésped y por lo tanto inducen respuestas inmunes más
fuertes que los virus muertos enteros. Una ventaja adicional es que
una respuesta inmune a un antígeno codificado por dicho vector, se
puede mejorar mediante la estimulación del sistema inmune mediante
la presencia o la expresión de proteínas adicionales, por ejemplo
proteínas específicas del vector por ejemplo proporcionando función
adyuvante. Sin embargo, relativamente pocos sistemas de vectores
recombinantes solos han tenido éxito suficiente para ser aceptados
de manera amplia para uso clínico. Los principales problemas
distintos de seguridad han sido la inmunidad preexistente en el caso
de vectores derivados de agentes infecciosos comunes en poblaciones.
Además, las respuestas inmunes posteriores contra las proteínas de
vectores han creado ellas mismas una barrera inmunológica adicional
cuando más de una inmunización se requería para estimular respuestas
al (a los) antígeno(s) de vacunas recombinantes. Un problema
es que el sistema inmune puede armar una respuesta inmune contra
proteínas de vector o codificadas por vector junto con una respuesta
inmune contra el antígeno, denominado antígeno de vacunación, la
respuesta inmune se propuso que se dirigiera con el fin de
proporcionar la protección del huésped. La observación de que el
sistema inmune pueda armar una respuesta inmune contra una proteína
de vector o proteína codificada por vector crea un potencial para
la competición por recursos inmunes tal como la disponibilidad de
células inmunes y/o citoquinas, por lo tanto ralentizando la
respuesta deseada contra las proteínas de vacunación (véase por
ejemplo, la figura 1A). Otro problema es el potencial para más
antígenos inmunógenos presentes en proteínas de vector o proteínas
codificadas por vector que dirigen la respuesta inmune fuera de las
proteínas de vacunación. Adicionalmente, las respuestas inmunes
contra el vector limitan eventualmente la replicación del vector en
el huésped, reduciendo por lo tanto los vectores de propósito y
eficacia propuestos. Un problema que se incrementa específicamente
tras la estimulación de la respuesta inmune con el mismo o similar
vector o sistema de vector. Por ejemplo, el uso de diferentes
serotipos de adenovirus que comprende ácido nucleico que codifica
proteínas de vacunación similares como vacunas no es óptimo ya que
el sistema inmune todavía se reforzará contra antígenos comunes
presentes en las proteínas de vector y/o proteínas codificadas por
vector. Un procedimiento posible para evitar este problema es
estimular respuestas inmunes inducidas por los vectores
recombinantes con subunidades de proteínas. Varios estudios han
mostrado que las respuestas inmunes se pueden mejorar ligeramente
mediante este procedimiento pero no existe una mejora sustancial en
la capacidad de la vacuna para proteger de infección.
Shengqiang y col., (1993) describen la
preparación con virus de la gripe recombinante seguido de la
administración de virus vaccinia recombinantes para inducir
inmunidad protectora mediada por células T contra malaria. Se ha
descrito el uso de dos vectores recombinantes diferentes para
preparación y dosis de recuerdo para generar CTL en un planteamiento
de vacunación antitumoral (véase el documento WO 97/39771 e Irvine y
col., 1997).
La presente invención proporciona medios
novedosos y usos de los mismos para obtener una respuesta inmune
específica en un individuo o animal. La invención proporciona
adicionalmente medios y usos de los mismos para disminuir los
efectos negativos de las proteínas de vector y/o proteínas
codificadas por vector mientras que se dejan los efectos deseados,
tales como un efecto adyuvante de dichas proteínas al menos en parte
intactos (véase por ejemplo un ejemplo no limitante en el esquema
mostrado en la figura 1B).
En un aspecto la invención proporciona un
producto para vacunar un animal o un ser humano para obtener en él
una respuesta inmune contra al menos un antígeno, que comprende al
menos tres composiciones de vacuna diferentes para la administración
secuencial a dicho animal o dicho ser humano, conteniendo cada una
al menos dicho antígeno o un precursor del mismo, en el que al menos
tres de dichas composiciones de vacuna difieren entre sí por la
presencia en ellas de un vector diferente.
En otro aspecto la invención proporciona el uso
de un producto de la invención para vacunar un animal o ser humano
con el fin de obtener en él una respuesta inmune contra al menos un
antígeno de un virus que provoca una alteración temporal, o de larga
duración inmune, en la que dicha vacunación comprende la
administración secuencial a dicho animal, de al menos tres
composiciones de vacunas diferentes, conteniendo cada una al menos
dicho antígeno o un precursor del mismo y en el que al menos tres de
dichas composiciones de vacuna difieren entre sí por la presencia en
ellas de un vector diferente.
Todavía en otro aspecto la invención proporciona
un uso de un antígeno, o un precursor del mismo, para fabricar una
composición de vacuna para vacunar un animal o un ser humano con el
fin de obtener en él una respuesta inmune contra dicho antígeno, en
la que dicha composición de vacuna se administra secuencialmente con
al menos otras dos composiciones de vacuna que contiene al menos una
parte inmunógena, derivado y/o análogo de dicho antígeno o precursor
de antígeno, y un vector diferente.
En un aspecto la invención proporciona una
solución para evitar los efectos negativos asociados con la
exposición repetida de las proteínas de vector o proteínas
codificadas por vector en un procedimiento de vacunación o una
composición de vacuna. Para estudiar los problemas asociados a la
amplificación de una respuesta inmune contra proteínas de vector y/o
proteínas codificadas por vector se desarrolló una estrategia en la
que se evaluó el uso de sistemas de vectores diferentes, para
distribuir consecutivamente el (los) mismo(s)
antígeno(s). El potencial existía no solamente para estimular
sustancialmente respuestas para el antígeno recombinante, sino para
confeccionar la naturaleza de las respuestas inmunes preparando y
después distribuyendo dosis de recuerdo posteriores con
combinaciones de vectores diferentes o distribuyendo los vectores de
vacuna en sitios inmunológicos diferentes y/o poblaciones de células
que presentan antígeno. De hecho, la capacidad de inducir respuestas
de auxiliares T de tipo 1 o tipo 2 preferidas o generar
adicionalmente respuestas específicas en sitios mucosales y/o
sistémicos se puede prever con tal planteamiento.
En un aspecto la invención proporciona medios y
usos de los mismos para vacunar un animal o un ser humano con el fin
de obtener en él una respuesta inmune contra al menos un antígeno de
un virus que provoca una alteración inmune temporal, o de larga
duración, que comprende al menos tres composiciones diferentes de
vacuna para administración secuencial a dicho animal o ser humano,
conteniendo cada una al menos dicho antígeno o un precursor del
mismo, en el que al menos tres de dichas composiciones de vacuna
difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector diferente.
Una vacunación 10 veces mucho mejor para tales virus se obtiene con
al menos tres composiciones diferentes de vacuna en las que al menos
tres dichas composiciones de vacunas difieren entre sí por la
presencia en ellas de un vector diferente.
En otro aspecto la invención proporciona un
producto para 15 vacunaciones de un animal o un ser humano con el
fin de obtener en él una respuesta inmune contra un antígeno que
comprende al menos tres composiciones de vacuna diferentes para
administración secuencial a dicho mamífero o dicho ser humano,
conteniendo cada una al menos dicho antígeno o un precursor del
mismo, en las que al menos tres de dichas 20 composiciones de
vacunas difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector
diferente. Se obtiene una vacunación mejorada con al menos tres
composiciones diferentes de vacuna en las que al menos tres de
dichas composiciones de vacuna difieren entre sí por la presencia en
ellas de un vector diferente. En un procedimiento de 25
vacunaciones que comprende una administración en serie a dicho
animal de al menos dicho antígeno o un precursor del mismo y en el
que al menos dos de dichas composiciones de vacuna difieren entre sí
por la presencia en ellas de un vector diferente, una amplificación
por 30 de de una respuesta inmune contra antígenos de vector que
pueden estar presentes en una o más de dichas composiciones de
vacuna que pueden estar codificadas por ácido nucleico presente en
una o más de dichas composiciones de vacuna o ambas, se evita al
menos en parte en dicho animal. Evitando al menos en parte dicha
amplificación de una respuesta inmune contra antígenos de vector en
dicho animal, se evita al menos en parte el potencial
enmascaramiento de una respuesta inmune contra dicho antígeno. Un
procedimiento para evitar al menos en parte una amplificación de una
respuesta inmune contra antígenos de vector en dicho animal es
evitar al menos en parte la presencia de antígenos de vector en
dicho animal durante dicho procedimiento de vacunación. Esto se
puede lograr por ejemplo evitando la presencia de antígenos de
vector en al menos una de dichas composiciones de vacuna o evitando
al menos en parte la expresión de antígenos de vector codificados
por un ácido nucleico en una composición de vacuna o ambos.
Preferiblemente, la amplificación de una respuesta inmune en dicho
animal o ser humano contra antígenos de vector se evita al menos en
parte usando para dicha administración en serie de composiciones de
vacuna, las composiciones de vacuna que comprenden diferentes
vectores. Otro procedimiento preferido de evitar la amplificación de
una respuesta inmune contra antígenos de vector en dicho
procedimiento de vacunación es usar al menos una composición de
vacuna útil para evitar la presencia de antígenos de vector en dicho
animal y al menos una composición de vacuna que comprende un vector.
Preferiblemente, cuando se usa más de una composición de vacuna que
comprende un vector, dicho vector en dicha composición de vacuna es
esencialmente
diferente.
diferente.
Un procedimiento para la vacunación de un animal
o ser humano puede ser un procedimiento de vacunación con tal que
dicho procedimiento utilice la administración en serie de
composiciones de vacuna que contienen al menos un antígeno o un
precursor del mismo, contra el que dicho animal o ser humano al
menos en parte se vacuna. Las composiciones de vacuna se administran
preferiblemente a dicho animal o ser humano en una cantidad eficaz
para provocar una respuesta inmune en dicho animal o ser humano.
Dicho antígeno puede ser una proteína completa o
una parte de una proteína. Dicho antígeno también puede ser una
molécula proteinácea, derivada natural o sintetizada
químicamente.
En una realización de la invención dicho animal
es un ser humano.
En una realización la invención proporciona un
producto para la vacunación de un animal o un ser humano con el fin
de obtener en él una respuesta inmune contra al menos un antígeno,
que comprende al menos tres composiciones de vacuna diferentes para
una administración secuencial a dicho animal o dicho ser humano,
conteniendo cada una al menos dicho antígeno o un precursor del
mismo, en la que al menos tres de dichas composiciones de vacuna
difieren entre sí por la presencia en ella de un vector diferente.
Preferiblemente dicho producto comprende al menos tres de dichas
composiciones y en las que al menos tres de dichas composiciones de
vacuna difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector
diferente.
En una realización al menos parte de, dicho
vector o producto del mismo, funciona como un adyuvante. Un
adyuvante en el contexto de la presente invención es cualquier
molécula o combinación de moléculas capaces de modular una respuesta
inmune contra dicho antígeno. En un ejemplo un adyuvante tiene la
capacidad de estimular el sistema inmune en dicho animal para
provocar una respuesta inmune en la que dicha estimulación también
estimula el inicio de la amplificación de una respuesta inmune
contra dicho antígeno. En un ejemplo, un adyuvante es un adyuvante
clásico tal como adyuvante de Freund completo o incompleto. En otro
ejemplo, dicho adyuvante es una molécula proteinácea
inmunológicamente diferente de dicho antígeno, capaz de provocar una
respuesta inmune en dicho animal o ser humano.
Preferiblemente dicha molécula proteinácea
comprende al menos una parte funcional de una molécula co -
estimuladora tal como CD80, CD86, CD28, CD152, CD40 o ligando CD40;
de una proteína de adhesión a células; de una proteína inhibidora de
respuesta inmune; de una interleuquina; de una proteína del complejo
principal de histocompatibilidad o de las otras proteínas capaces
de la modulación de una respuesta inmune. Una respuesta inmune se
puede modular a través al menos en parte inhibiendo o evitando una
respuesta inmune y/o al menos en parte incluyendo o potenciando una
respuesta inmune.
La vacunación se puede realizar junto con un
procedimiento para influenciar al menos en parte un sistema inmune,
por ejemplo en la dirección de un tipo T auxiliar 1 de una respuesta
inmune o un tipo T auxiliar 2 de respuesta inmune. Ahora se acepta
ampliamente que las respuestas inmunes dependientes de células T se
pueden clasificar en base de activación y proliferación preferencial
de dos subconjuntos distintos de células T CD4^{+} denominados
T_{H}1 y T_{H}2. Estos subconjuntos se pueden distinguir entre
sí mediante perfiles de secreción de citoquinas restringidos. El
subconjunto T_{H}1 es un alto productor de
IFN-\gamma con producción limitada o sin
producción de la IL - 4, mientras que el fenotipo T_{H}2 muestra
típicamente alto nivel de producción de tanto la IL - 4 como de la
IL - 5 sin producción sustancial de IFN-\gamma.
Ambos fenotipos se pueden desarrollar a partir de células CD4^{+}
inactivas y actualmente existe mucha evidencia que indica que la IL
- 12 y el IFN-\gamma por una parte y la IL - 4
por otra son citoquinas estimuladoras clave en el procedimiento de
diferenciación de células precursoras pluripotentes T_{H}0 en
células efectoras T_{H}1 o T_{H}2, respectivamente, in
vitro, e in vivo. Ya que el IFN-\gamma
inhibe la expansión y función de las células efectoras T_{H}2 y
la IL - 4 tiene el efecto opuesto, la expansión preferencial de o
bien las células que producen el IFN-\gamma (pc) o
la IL - 4 pc es indicativo de si una respuesta inmune se produce en
una dirección T_{H}1 o T_{H}2. Sin embargo, el entorno de
citoquinas, no es el único factor que conduce a la diferenciación
del linaje T_{H}. Los antecedentes genéticos, dosis de antígeno,
vía de administración de antígenos, tipo de células que presentan
antígeno (APC) y señalización mediante TCR y moléculas accesorias
sobre células T.
En un aspecto preferido de la invención el
sistema inmune se dirige hacia una o más tipos 1 ó 2 de auxiliares T
de respuesta inmune a través del uso de vectores con la propiedad de
modular una respuesta inmune en una dirección u otra. En un aspecto
preferido de la invención al menos parte de dicha función adyuvante
comprende medios para dirigir el sistema inmune hacia uno o más
tipos 1 ó 2 de auxiliares T de respuesta inmune.
Preferiblemente mediante el uso de vectores con
la propiedad de modular una respuesta inmune en una dirección u
otra. Los ejemplos de vectores con la capacidad de estimular o bien
un tipo 1 de auxiliar T o tipo 2 de auxiliar T más de respuesta
inmune o de vías de distribución tales como distribución
intramuscular o epidérmica se puede encontrar en Robinson 1997,
Vaccine 15: 785 - 787; Sjolander y col., 1997, Cell. Immunol. 177:
69 - 75; Doc y col., 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93: 8578 -
8583; Feltquate y col 1997, J. Immunol 158: 2278 - 2284; Pertmer y
col., 1996, J. Virol 70: 6119 - 6125; Prayaga y col., Vaccine 15:
1349 - 1352; Raz y col., 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93: 5141 -
5145.
En un aspecto preferido de la invención el
sistema inmune se induce para producir respuestas inmunes innatas
con potencial adyuvante en la capacidad de inducir respuestas
inflamatorias locales. Estas respuestas incluyen interferones,
quimoquinas, y quimoquinas en general, capaces de atraer
procesamiento de antígenos y presentar células así como ciertas
poblaciones de linfocitos para la producción de respuestas inmunes
específicas adicionales. Estas respuestas de tipo innato tienen
diferentes características dependiendo del vector de ADN usado y sus
características inmunomoduladoras específicas, incluyendo tales como
las codificadas por motivos CpG, y como tal, el sitio de
inmunización. Mediante el uso en una secuencia específica vectores
diferentes que codifican al menos un antígeno de vacuna específico
común, se pueden generar y optimizar diferentes tipos de respuestas
protectoras deseadas para amparo de un agente infeccioso particular.
Combinando diferentes sistemas de vectores y distribuyéndolos en
sitios diferentes o iguales específicos el efecto de vacuna deseado
en un sitio particular de entrada (es decir, oral, nasal, entérica o
urogenital) del agente infeccioso específico.
En un aspecto al menos uno de dichos vectores
comprende células que presentan antígenos, preferiblemente
engarzados in vivo pero también in vitro de dicho
animal. Preferiblemente dichas células que presentan antígenos son
células dendríticas. Preferiblemente dichas células que presentan
antígenos presentan dicho antígeno, o una parte inmunógena, tal como
un péptido, o derivado y/o análogo de los mismos, en el contexto de
complejo I o complejo II de histocompatibilidad principal.
En una realización preferida al menos una de
dichas composiciones comprende como antígeno precursor un ácido
nucleico que codifica al menos una molécula proteinácea para intuir
y/o estimular una respuesta inmune contra dicho antígeno. En una
realización preferida dicho ácido nucleico es capaz de replicarse en
una célula del animal o ser humano que se está vacunando. Con el
término refuerzo en este respecto se pretende amplificar una
respuesta inmune, de manera que cuando dicho animal se expone a
dicho antígeno después de la amplificación, la respuesta inmune a
dicho antígeno se incrementa en magnitud comparado a antes de dicha
amplificación. Dicha molécula proteinácea para inducir y/o reforzar
una respuesta inmune contra dicho antígeno puede ser dicho antígeno
o una parte inmunógena, derivado o análogo del mismo. Como
alternativa, el antígeno o una parte inmunógena, derivado o análogo
del mismo puede estar codificado por un ácido nucleico presente en
dicha composición de vacuna.
En una realización dicho antígeno es un antígeno
codificado por un ácido nucleico de un lentivirus. En una
realización particularmente preferida dicho antígeno es un antígeno
codificado por un lentivirus. Para tales virus no ha sido posible
diseñar una estrategia de vacunación satisfactoria para proteger
completamente de infección. Sin embargo, la presente invención,
sorprendentemente se aprovecha para proporcionar una vacunación
satisfactoria para virus que provocan grados calidades de alteración
inmune. Se obtiene alguna vacunación usando un producto que
comprende al menos dos composiciones de vacuna diferentes para la
administración secuencial a dicho animal o dicho ser humano,
conteniendo cada una al menos dicho antígeno o un precursor del
mismo, en el que al menos dos de dichas composiciones difieren entre
sí por la presencia en las mismas de un vector diferente. Sin
embargo, la vacunación se mejora sustancialmente para proporcionar
protección sustancial cuando al menos tres composiciones de vacuna
diferentes se usan para la administración secuencial a dicho animal
o dicho ser humano, conteniendo cada una al menos dicho antígeno o
precursor del mismo, en el que al menos tres de dichas composiciones
de vacuna difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector
diferente.
Para el mantenimiento eficaz y posterior refuerzo
de la vacunación se prefiere que la capacidad inmune del individuo
vacunado se estimule a intervalos con una vacuna que comprende no
obstante otro adyuvante. En una realización preferida dicho antígeno
comprende al menos una parte inmunógena, derivado y/o análogo de una
proteína gag, pol, rev, tat, nef o env de lentivirus
o una combinación de las mismas.
En una realización preferida al menos parte de
dicha función adyuvante de un vector se proporciona por un ácido
nucleico que codifica al menos una molécula proteinácea capaz de
modular una respuesta inmune. Preferiblemente dicho ácido nucleico
es capaz de replicarse en una célula del animal del animal o del ser
humano que se está vacunando. Preferiblemente dicha molécula
proteinácea capaz de modular una respuesta inmune comprende una
parte funcional de una molécula co - estimuladora tal como CD80,
CD86, CD28, CD152, CD40 o ligando CD40; de una proteína de adhesión
a células; de una proteína inhibidora de respuesta inmune; de una
interleuquina; de una proteína compleja de histocompatibilidad
principal o de otras proteínas capaces de modulación de una
respuesta inmune.
En una realización la invención proporciona
composiciones de vacuna en las que dicho vector es vehículo de
distribución de ácido nucleico que comprende dicho ácido nucleico.
En una realización preferida dicho ácido nucleico es capaz de
replicarse en una célula de un animal o ser humano que se está
vacunando. En una realización preferida dicho ácido nucleico
replicado tiene al menos una capacidad limitada de extenderse a
otras células del huésped y comenzar un nuevo ciclo de replicación y
presentación de antígenos y/o presentar función adyuvante. En una
realización preferida dicho ácido nucleico comprende ácido nucleico
de un virus del bosque Semiliki, un virus de sífilis, un virus
herpes y/o un adenovirus En una realización preferida dicho
vehículo de distribución de ácido nucleico es una partícula del
virus del bosque Semiliki, una partícula del pox virus, una
partícula de virus herpes o una partícula de adenovirus.
En otra realización la invención proporciona un
uso de un producto de la invención para vacunar un animal con el fin
de obtener en él una respuesta inmune contra la menos un antígeno,
en la que dicha vacunación comprende la administración
secuencialmente a dicho animal, al menos tres composiciones de
vacuna diferentes, conteniendo cada una al menos dicho antígeno o un
precursor del mismo y en la que al menos tres de dichas
composiciones de vacuna difieren entre sí por la presencia en ellas
de un vector diferente. Preferiblemente dicho animal es un ser
humano.
Todavía en otra realización la presente invención
proporciona un uso de una composición de vacuna en un procedimiento
o un producto de la invención.
Todavía en otra realización la presente invención
proporciona un uso de un antígeno, o un precursor del mismo, para
fabricar una composición de vacuna para vacunar un animal o un ser
humano con el fin de obtener en él una respuesta inmune contra dicho
antígeno, en la que dicha composición de vacuna se administra
secuencialmente con al menos otras dos composiciones de vacuna que
contienen al menos una parte inmunógena, derivado o análogo de dicho
antígeno o precursor de antígeno, y un vector diferente.
Como prueba de principio, los inventores
abordaron un estudio de eficacia de vacunas comparando un sistema de
vector solo, dos combinaciones diferentes de dos sistemas de
vectores diferentes, y el uso de tres vectores diferentes
administrados secuencialmente. Todos los vectores usados para
inmunizar animales expresaban antígenos SIV_{mac} similares. Dos
meses después de la última inmunización los animales se expusieron
por vía intravenosa con un inóculo de SIV_{mac}._{1XC} altamente
patogénico y seguido para la evidencia de protección.
Se llevó el estudio a cabo en monos rhesus
(Macaca mulatta) no consanguíneos. Se estudiaron cuatro
grupos de 4 animales y 1 grupo de 3 animales (19 monos rhesus en
total). Cada animal se identificó por un único número en el animal
tatuado en el pecho. Los animales se derivaron de las existencias
genéticas indias y propósito de cría en cautividad o bien en los
Estados Unidos (grupos A, B, C, D, E) o en Holanda (grupo F). Su
edad variaba entre 2,5 y 3 años (grupos A, B, C, D, E) o 10 a 11
años (grupo F). Sus pesos variaban entre 2,7 y 3,9 kg (grupos A, B,
C, D, E) o 5,2 a 9,1 kg (grupo F). Los animales eran negativos para
SIV, STLV, SRV y no tenían ningún tratamiento previo inmunosupresor.
Durante el experimento todos los animales se alojaron separadamente
en jaulas individuales.
Se utilizaron tres sistemas de vectores
diferentes, conteniendo cada uno la misma información genética para
SIV gag/pol, rev, tat, nef, y env. Los
vectores constaban de un vector de expresión de ADN basado en
plásmido bacteriano, virus Ankara de vaccinia modificado (MVA) y
virus del bosque de Semliki (SFV). El primer grupo (A) consistía en
cuatro animales inmunizados solo con quiméricos SIV - MVA. En
segundo lugar, las respuestas inmunes obtenidas después de
inmunización con vectores de expresión de ADN y dos dosis de
recuerdo con o bien vectores MVA - SIV (grupo B) o SFV - SIV (grupo
C) se compararon con los obtenidos con una estrategia de vector
triple; preparando mediante inmunización primero con vectores de
expresión de ADN, la 1ª dosis de recuerdo con las construcciones MVA
- SIV, después la 2ª dosis de recuerdo con las construcciones SFV -
SIV (grupo D). Las cargas de virus (por PCR de ARN cuantitativa) se
estudiaron antes y después de la exposición de SIV virulenta. Los
animales se expusieron por vía intravenosa con una existencia de
exposición de SIV asociada a células (1XC).
Además de los animales vacunados de novo,
3 monos protegidos de un estudio de vacuna SIV previo sirvió como
grupo de dosis de recuerdo de vector iprotein primedi (grupo F). Los
primeros recibieron una dosis de recuerdo con MVA - SIV, seguido de
construcciones SFV - SIV.
Grupo A: Un grupo de 4 animales inmunizados tres
veces con vectores de MVA que expresan SIV gag/pol, rev,
tat, nef, y env administrados por vía intramuscular.
Grupo B: Un grupo de 4 animales inmunizados
primero por vía intradérmica con los vectores de ADN que expresan
gag/pol, rev, tat, nef, y env de SIV, después
se les administró dosis de refuerzo dos veces por vía intramuscular
con quiméricos MVA que expresan genes SIV similares.
Grupo C: Un grupo de 4 animales inmunizados con
los vectores de ADN que expresan gag/pol, rev, tat,
nef, y env de SIV y estimulados dos veces por vía
intravenosa con vectores recombinantes SFV - SIV que expresan genes
SIV similares.
Grupo D: Un grupo de 4 animales vacunados con los
vectores de expresión de ADN, estimulados primero con quiméricos MVA
- SIV y después con las construcciones SFV - SIV.
Grupo E: Un grupo de 4 animales control
inyectados con ADN vacío, y con los vectores MVA y SFV vacíos como
controles de infección.
Grupo F: Un grupo de 3 animales que habían
probado estar protegidos de exposición en un estudio previo con una
vacuna de proteína, después de administras dosis de refuerzo primero
con los quiméricos MVA - SIV, después con las construcciones SFV -
SIV.
Los vectores pTH UbgagPk, pTH UbpolPk, pTH
UbnefPk, pTH tat, y pTH rev expresan los genes gag, pol,
nef,tat y rev de SIV _{macJ5} (Rud y col., 1994)
bajo el control de potenciador/promotor inmediato - temprano (hCMV
IE) de citomegalovirus humano (Hanke y col., 1998a). El vector pTH y
sitios de clonación se han descrito previamente (Hanke y col.,
1198a, 19998b) en los que el potenciador/promotor/intrón A de hCMV
se clona en los sitios Mlul y HindIII y los genes SIV macJ5
individuales tat y se clonaron entre HindIII y Xbal. Dos
vectores pTH.tat y pTH.rev contienen los genes rev
respectivos en el sitio BamHI sin Ub-R cadena
arriba. El clon molecular SIV _{macJ5} se usó como la fuente de
estos genes como se ha descrito previamente (Rud y col, 1994;
Rhodes, A. D. y col, 1994; y Hanke y col., 1994). El vector
pND14-G1 expresa la secuencia que codifica gp 120
envuelta de SIV _{mac239} bajo control de potenciador/promotor de
Ie de hCMV y la secuencia cis (SRV-1) de retrovirus
1 de tipo D de simio se clonó entre el gen gp 120 y la región BHG
poli A/terminadora (Rhodes, G. H. y col., 1994; Indraccolo y col.,
1998). Todas las construcciones contienen la secuencia 5I del intrón
A de hCMV de los genes expresados, con el fin de incrementar la
expresión de la secuencia del potenciador/promotor de hCMV, y llevan
la secuencia de señal/terminadora de poli A de la hormona de
crecimiento bovina (BHG). Cada construcción de SIV del vector de ADN
diferente se administró separadamente a una dosis de 50 \mug de
ADN en 200 \mul de solución salina con la ½ del volumen inyectado
en dos sitios separados por vía intradérmica.
Las vacunas basadas en SFV usadas en este estudio
expresan las proteínas gag/pol, nef, tat, rev, y
env de
SIV _{mac32H \ J5}. Las secuencias que codifican gag/pol, env y nef y los ADN de tat y rev del clon molecular pJ5 del genoma proviralk SIV _{mac32H} (Rud y col, 1994; Rhodes, A. D. y col., 1994) se subclonaron en el vector pSFV1 (Lilestrom y Garoff, 1991). Las secuencias que codifican gag/pol se obtuvieron mediante amplificación de PCR para flanquear estos genes mediante BamHI adecuado para subclonar en el vector pSFV1 (Zhang y col., 1997). Para empaquetamiento de existencias virales de SFV recombinante (rSFV) se usó un sistema de dos auxiliares (Smerdou y Lijestrom, 1999). Las valoraciones de virus se determinaron mediante infección de células BHK en diluciones limitantes seguido de inmunofluorescencia indirecta usando anticuerpos dirigidos contra proteínas de SIV relevantes. La expresión de los antígenos de SIV en células BHK infectadas también se demostró mediante transferencia de Western y análisis de inmunoprecipitación de células BHK21 marcadas metabólicamente.
SIV _{mac32H \ J5}. Las secuencias que codifican gag/pol, env y nef y los ADN de tat y rev del clon molecular pJ5 del genoma proviralk SIV _{mac32H} (Rud y col, 1994; Rhodes, A. D. y col., 1994) se subclonaron en el vector pSFV1 (Lilestrom y Garoff, 1991). Las secuencias que codifican gag/pol se obtuvieron mediante amplificación de PCR para flanquear estos genes mediante BamHI adecuado para subclonar en el vector pSFV1 (Zhang y col., 1997). Para empaquetamiento de existencias virales de SFV recombinante (rSFV) se usó un sistema de dos auxiliares (Smerdou y Lijestrom, 1999). Las valoraciones de virus se determinaron mediante infección de células BHK en diluciones limitantes seguido de inmunofluorescencia indirecta usando anticuerpos dirigidos contra proteínas de SIV relevantes. La expresión de los antígenos de SIV en células BHK infectadas también se demostró mediante transferencia de Western y análisis de inmunoprecipitación de células BHK21 marcadas metabólicamente.
Recombinantes de Vaccinia Ankara modificados
(MVA) (Sutter y Moss, 1995) en este estudio expresan los genes
gag/pol, nef, tat, rev, y env de SIV
_{macJ5} (Rud y col., 1994; Rhodes, A. D. y col, 1994) bajo
control transcripcional del promotor temprano/tardío de virus de
vaccinia P7 5 (Sutter y col., 1994). En resumen, las secuencias que
codifican gag/pol, env y nef y los ADNc de
tat y ref del clon molecular SIV _{macJ5} (Rud y col, 1994;
Rhodes, A. D. y col, 1994) se subclonaron en el plásmido del vector
de MVA pllLz P75 en el sitio SmaI (Sutter y Moss, 1995; Sutter y
col., 1994; y Seth y col, 1998) con la excepción de env que
se situó bajo control de un fuerte promotor de vector de vaccinia
(Sutter y col., 1994). Todos estos reactivos se almacenan y son
accesibles a través del almacén de reactivos NIBSC AIDS, Potters
Bar, Reino Unido.
Las existencias de SIV asociadas a células,
patogénicas (SIV _{mac32H \ 1XC}) de PBMD de monos rhesus no
cultivadas, primarias "1XC", descritas previamente (Niphuis y
col., 1994) se usaron como el virus de exposición también descrito
en un estudio de vacunas previo (Heeney y col, 1994).
Se sedaron monos rhesus con ketamina (10 mg/kg),
antes de la administración de vacunas y se extrajo sangre. Las
vacunas se administraron o bien por vía intradérmica (vectores de
ADN) o por vía intramuscular (MVA) o por vía intravenosa (SFV). En
particular, se administraron 50 \mug de cada vector de expresión
de ADN en 200 \mul de solución salina por mono, la mitad del
volumen inyectado en dos sitios separados. Todas las inmunizaciones
con ADN se proporcionaron dos veces a intervalos de 12 semanas
seguidas de o bien MVA y/o SFV (véase el diseño experimental) a
intervalos de 12 semanas adicionales.
Todos los animales se expusieron 2 meses después
de la última inmunización con 50 MID_{50} de las existencias de
SIV asociado a células patogénicas "1XC" administrado por vía
intravenosa (volumen: 1 ml/mono) (Niphuis y col., 1994). Las
lecturas después de exposición incluían cuantificación de ARN viral
en plasma como se ha descrito previamente) (Ten Haaft y col., 1998),
y las determinaciones de números de células T CD4 en sangre
periférica.
Para determinar si se obtenía la inmunidad
protectora todos los animales se expusieron con una existencia de
PBMC de rhesus subcultivado in vivo altamente patogénico de
SIV _{mac32H \ 1XC}. Como se observa en la figura 2E todos los
animales control se llegaban a infectar fácilmente (grupo E) con
cargas de virus máximas alcanzando a las dos semanas 5 x 10^{6} y
5 x 10^{7} Eq/ml de ARN y permaneciendo mayores que 1 x 10^{4}
Eq/ml de ARN 12 semanas después de la infección. Todos los animales
del grupo A, que recibían construcciones MVA - SIV solas, también se
llegaban a infectar (tabla 1), aunque un animal tenía cargas de
virus máximas menores y una carga menor que 1 x 10^{4} Eq/ml de
ARN 6 semanas después de la infección (figura 2A). Todos los
animales del grupo B que recibían preparación ADN - SIV y dosis de
recuerdo MVA - SIV también se llegaban a infectar (tabla 1),
persistiendo cargas altas de virus por encima de los niveles
umbrales patógenos (> 1 x 10^{5} de eq/ml de ARN viral) después
de exposición. En el grupo C uno de cuatro animales estaba
protegido (tabla 1) de infección, aunque aquellos que se llegaban a
infectase no se protegían de la carga de virus (figura 2C).
Se observó protección satisfactoria en animales
que recibían tres vectores de vacuna diferentes (tabla 1) (figura 2)
con la que se obtenía protección de exposición de SIV en el 50% de
los animales. De hecho, cuando una subunidad de proteína vacunaba
animales que estaban previamente protegidos de la exposición se
reforzaron 5 años más tarde con una combinación de dos vectores
(grupo F, tabla 1), la protección de vacuna se observó todavía en
uno de tres animales. Los datos después de la infección revelaron
que la inmunización no protegía suficientemente de la carga de virus
(figura 2).
Se obtuvo protección mejorada contra infección de
SIV cuando se usaban tres sistemas de vectores (grupos D, y F, tabla
1). En el grupo D, inmunizado con tres sistemas de vectores
diferentes, la protección contra infección se encontró en 2 de 4
animales inmunizados (tabla 1, figura 2 D). Claramente, el uso de un
sistema de vector solo para inmunizaciones múltiples era
insuficiente para proteger de infección en el caso de MVA/SIV (grupo
A) en este estudio (tabla 1>). Este fallo de protección de la
infección se ha observado en otros estudios con SFV - SIV usados
solos para inmunizaciones múltiples (Mossman y col., 1996), aunque
se sugería protección de síntomas agudos (pero no enfermedad
crónica). Una estrategia de vacunación que usa preparación de ADN y
refuerzo de MVA no protegía a los monos inmunizados de infección
(grupo B, tabla 1)El uso de ADN más SFV para inmunizar mostró
una promesa limitada en la que un animal (grupo C, tabla 1, figura
2C) se protegía de infección.
El mejor resultado contra tales exposiciones
potentes como la SIV _{mac32H\text{.}1XC} usadas en esta memoria
descriptiva se lograban con el uso de tres vectores diferentes
(grupo D, tabla 1, figura 2D). Se observó una prueba adicional
cuando se examinaron los números de células T CD4^{+} de sangre
periférica (figura 3). El SIV _{mac32H\text{.}1XC} usado en este
estudio provoca una notable disminución en números de células T
CD4^{+} con el tiempo como se observaba en el grupo control (E)
(figura 3 E) así como en otros animales infectados en este estudio.
Notablemente, los animales que se protegieron de infección mediante
el uso de de una estrategia de vector triple (animales BJV y CTC,
grupo D) mantenían niveles normales de células T CD4^{+} mientras
que los de los animales infectados disminuían. Esto también se
observó en el animal protegido (8645) en el grupo F (figura 3F) que
ha recibido una triple combinación de una inmunización de proteína
seguido de MVA y SFV, que soporta adicionalmente este concepto.
Mediante un refinamiento adicional de esta
estrategia, usando combinaciones de vectores quiméricos divergentes,
son probables niveles mejorados de protección de vacuna. Además, la
optimización de diferentes combinaciones de sistemas de vectores
distribuidos a sitios y poblaciones diferentes de células que
presentan antígenos prestará esta aplicación a estrategias de
vacunas mucosales y/o mucosales/sistémicas combinadas. Se prevé que
una adición de modulación diferencial de respuestas inmunes (es
decir, innata y específica tal como respuestas T_{H} de tipo 1
frente tipo 2) y la inducción de potente memoria inmunológica será
posible usando combinaciones de diferentes sistemas de vectores de
vacuna.
\vskip1.000000\baselineskip
Grupo | "principal" | 1ª dosis de recuerdo | 2ª dosis de recuerdo | protegido |
A | MVA – SIV | MVA – SIV | MVA – SIV | 0/4 |
B | ADN – SIV | MVA – SIV | MVA – SIV | 0/4 |
C | ADN – SIV | SFV – SIV | SFV – SIV | 1/4 |
D | ADN – SIV | MVA -- SIV | SFV -- SIV | 2/4 |
E | ADN | MVA | SFV | 0/4 |
F | W. Proteína de virus | MVA – SIV | SFV – SIV | 1/3 |
"protegida" |
Un diagrama que compara; (A) estrategias de
inmunización existentes con un sistema de distribución (es decir,
vector); (B) la combinación propuesta de sistemas de distribución
(es decir, vectores múltiples) Respuestas inmunes al antígeno
deseado se optimizan e intensifican con la dosis de recuerdo
posterior con la estrategia de combinación (B) cuando se compara con
sistemas únicos de distribución convencional (A).
Una comparación de cargas de virus de ARN en
plasma en animales inmunizados y control que se llegan a infectar
después de exposición con SIV. La figura 2A muestra las cargas de
virus en animales que se han inmunizado repetidamente con el mismo
vector (3X MVA). La figura 2 E muestra las cargas de virus en plasma
en los animales control que no se inmunizaron con ningún antígeno de
SIV. Las cargas de virus después de exposición para cada una de los
otros grupos de combinaciones; B (ADN 2 X MVA), C (ADN, 2 X SFV), D
(ADN, MVA, SFV) y F (proteína, MVA, SFV) respectivamente.
Comparación de niveles de células T CD4^{+}
después de exposición por grupo. Las células T CD4+ de animales
infectados decaían como era especialmente evidente en los animales
control (E). Los niveles de células T CD4+ se pueden observar que
permanecen a niveles normales, especialmente BJV y CTC en el grupo D
(D) que recibía el protocolo de inmunización de combinación. Grupos
mostrados; A (3X MVA), B (ADN 2 X MVA), C (ADN, 2 X SFV), D (ADN,
MVA, SFV), E (controles), F (proteína, MVA, SFV)
respectivamente.
Berglund, P.,
Quesada-Rolander, M., Putkonen, P.,
Biberfeld, G., Thorstensson, R., Liljestrom,
P. Outcome of immunisation of cynomolgus monkeys with recombinant
Semliki Forest virus encoding human immunodeficiency virus type 1
envelope protein and challenge with a high dose of
SHIV-4 virus. AIDS Res Hum Retroviruses 1997, 13 (17): 1487-1495.
Haaft, P. ten, Verstrepen, B.,
Uberla, K., Rosenwirth, B., Heeney, J.L. A
pathogenic threshold of virus load defined in Simian
Immunodeficiency Virus- or Simian-Human
Immunodeficiency Virus-infected macaques. J.
Virology, 1998, 72:
10281-10285.
Hanke, T. et al., Expression and
purification of nonglycosylated SIV proteins, and their use in
induction and detection of SIV-specific immune
responses. AIDS Res. Hum. Retroviruses 1994,
10(6): 665-674.
Hanke, T., Blanchard, T.J.,
Schneider, J., Hannan, C.M., Becker, M.,
Gilbert, S.C., Hill, A.V., Smith, G.L.,
McMichael, A. Enhancement of MHC class
I-restricted peptide-specific T cell
induction by a DNA prime/MVA boost vaccination regime.
Vaccine 1998a, 16(5):
439-445b.
Hanke, T., Schneider, J.,
Gilbert, S.C., Hill, A.V., McMichael, A. DNA
multi-CTL epitope vaccines for HIV and Plasmodium
falciparum: immunogenicity in mice. Vaccine 1998b,
16(4): 426-435.
Heeney, J.L., Els, C. van,
Vries, P. de, Haaft, P. ten, Otting, N.,
Koornstra, W., Boes, J., Dubbes, R.,
Niphuis, H., Dings, M., Cranage, M.,
Norley, S., Jonker, M., Bontrop, R.E.,
Osterhaus, A. MHC class I associated vaccine protection from
SIV infected peripheral blood cells. J Exp Med, 1994,
180: 769-774.
Indraccolo, S., Feroli, F.,
Minuzzo, S., Mion, M., Rosato, A.,
Zamarchi, R., Titti, F., Verani, P.,
Amadori, A., Chieco-Bianchi, L. DNA
immunisation of mice against SIVmac239 Gag and Env using
Rev-independent expression plasmids. AIDS Res.
Hum. Retroviruses 1998, 14(1):
83-90.
Liljestrom, P., Garoff, H. A new
generation of animal cell expression vectors based on the semliki
forest virus replicon. BioTech. 1991, 9:
1356-1361.
Mossman, S.P., Bex, F.,
Berglund, P., Arthos, J., OíNeil, S.P.,
Riley, D., Maul, D.H., Bruck, C., Momin,
P., Burny, A., Fultz, P.N., Mullins, J.I.,
Liljestrom, P., Hoover, E.A. Protection against
lethal simian immunodeficiency virus SIVsmmPBj14 disease by a
recombinant Semliki Forest virus gp160 vaccine and by a gp120
subunit vaccine. J. Virol. 1996, 70 (3):
1953-1960.
Niphuis, H., Dubbes, R.,
Haaft, P.J.F. ten, Koornstra, W.H., Bontrop,
R.E., Cranage, M.P., Heeney, J.L. Infectivity and
virulence of cell-associated SIVmac after single
passage in vivo. AIDS, 1994, 8:
1730-1731.
Rhodes, A.D. et al., Expression,
characterization and purification of simian immunodeficiency virus
soluble, oligomerized gp160 from mammalian cells. J. Gen.
Virol. 1994, 75: 207-213.
Rhodes, G.H., Abai, A.M.,
Margalith, M., Kuwahara-Rundell, A.,
Morrow, J., Parker, S.E., Dwarki, V.J.
Characterization of humoral immunity after DNA injection. Dev.
Biol. Stand. 1994, 82:
229-236.
Rud, E.W. et al., Molecular and
biological characterization of simian immunodeficiency virus
macaque strain 32H proviral clones containing nef size variants.
J. Gen. Virol. 1994, 75:
529-543.
Schneider, J., Gilbert, S.C.,
Blanchard, T.J., Hanke, T., Robson, K.J.,
Hannan, C.M., Becker, M., Sinden, R.,
Smith, G.L., Hill, A.V. Enhanced immunogenicity for
CD8^{+} T cell induction and complete protective efficacy of
malaria DNA vaccination by boosting with modified vaccinia virus
Ankara. Nat. Med. 1998, 4(4):
397-402.
Seth, A., Ourmanov, I.,
Kuroda, M.J., Schmitz, J.E., Carroll, M.W.,
Wyatt, L.S., Moss, B., Forman, M.A.,
Hirsch, V.M., Letvin, N.L. Recombinant modified
vaccinia virus Ankara-simian immunodeficiency virus
gag pol elicits cytotoxic T lymphocytes in rhesus monkeys detected
by a major histocompatibility complex class I/peptide tetramer.
Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1998,
95(17): 10112-10116.
Smerdou, C., Liljestrom, P.
Two-helper RNA system for production of recombinant
semliki forest virus particles. J. Virol. 1999,
73 (2): 1092-1098.
Sutter, G., Moss, B. Novel vaccinia
vector derived from the host range restricted and highly attenuated
MVA strain of vaccinia virus. Dev. Biol. Stand 1995,
84: 195-200.
Sutter, G., Wyatt, L.S.,
Foley, P.L., Bennink, J.R., Moss, B. A
recombinant vector derived from the host
range-restricted and highly attenuated MVA strain
of vaccinia virus stimulates protective immunity in mice to
influenza virus. Vaccine 1994, 12(11):
1032-1040.
Zhang, J.,
Asselin-Paturel, C., Bex, F.,
Bernard, J., Chehimi, J., Willems, F.,
Caignard, A., Berglund, P., Liljestrom, P.,
Burny, A., Chouaib, S. Cloning of human
IL-12 p40 and p35 DNA into the Semliki Forest virus
vector: expression of IL-12 in human tumor cells.
Gene Ther. 1997, 4 (4):
367-374.
Claims (12)
1. Un kit de partes para vacunar un animal o un
ser humano con el fin de obtener una respuesta inmune contra un
antígeno de un lentivirus, comprendiendo dicho producto al menos
tres composiciones de vacuna diferentes para administración
secuencial a dicho animal o dicho ser humano,
- -
- en el que cada composición de vacuna comprende dicho antígeno o un precursor del mismo,
- -
- en el que al menos tres de dichas composiciones de vacunas difieren entre sí por la presencia en ellas de un vector diferente de manera que se evita la amplificación de una respuesta inmune contra antígenos vectores, y
- -
- en la que al menos uno de dichos vectores o producto del mismo, funciona como un adyuvante.
2. Un kit de partes de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que dicha función adyuvante dirige la
respuesta inmunitaria hacia un tipo T auxiliar 1 o un tipo T
auxiliar 2 de respuesta o ambos.
3. Un kit de partes de acuerdo con la
reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que al menos una de
dichas composiciones comprende, como un precursor de antígeno, un
ácido que codifica al menos una molécula proteinácea para inducir
y/o reforzar una respuesta inmune contra dicho antígeno.
4. Un kit de partes de acuerdo con la
reivindicación 3, en el que dicha molécula proteinácea comprende
dicho antígeno, o una parte inmunógena, derivado o análogo del
mismo.
5. Un kit de partes de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1 - 4, en el que dicho antígeno comprende
al menos una parte inmunógena, derivado y/o análogo de una proteína
gag, pol, rev, tat, nef o env de lentivirus o una combinación de las
mismas.
6. Un kit de partes de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 3 - 5, en el que un vector comprende un
ácido nucleico que codifica al menos una molécula proteinácea capaz
de modular una respuesta inmune.
7. Un kit de partes de acuerdo con la
reivindicación 6, en el que dicha molécula proteinácea capaz de
modular una respuesta inmune es una proteína co - estimuladora, una
proteína inhibidora de respuesta inmune, una interleuquina, una
proteína del complejo principal de histocompatibilidad o una parte
funcional, derivado y/o análogo de la misma.
8. Un kit de partes de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 3 - 7, en el que dicho vector es un
vehículo de distribución de ácido nucleico que comprende dicho ácido
nucleico.
9. Un kit de partes de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 3 - 8, en el que dicho ácido nucleico
comprende ácido nucleico de un virus del bosque de Semliki, un
poxvirus, un virus herpes y/o un adenovirus.
10. Un kit de partes de acuerdo con la
reivindicación 8 o la reivindicación 9, en el que dicho vehículo de
distribución de ácido nucleico es un virus del bosque de Semliki,
una partícula de poxvirus, una partícula de virus herpes o una
partícula de adenovirus.
11. Uso de un kit de partes de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 - 10, para la preparación de
una vacuna.
12. Uso de un antígeno, o un precursor del mismo
para fabricar una composición de vacuna para vacunar un animal o un
ser humano con el fin de obtener en él una respuesta inmune contra
un antígeno de un lentivirus, en la que dicha composición de vacuna
se administra secuencialmente con al menos otras dos composiciones
de vacuna que contienen al menos una parte inmunógena, un derivado
y/o análogo de dicho antígeno o precursor de antígeno, y en el que
al menos tres de dichas composiciones de vacuna difieren entre sí
por la presencia en ellas de un vector diferente de manera que se
evite la amplificación de una respuesta inmune contra antígenos
vectores.
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EP99200256 | 1999-01-28 | ||
EP99200256 | 1999-01-28 | ||
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