ES2225887T3 - Sistema y metodos de procesamiento de sangre. - Google Patents

Sistema y metodos de procesamiento de sangre.

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ES2225887T3 ES96920496T ES96920496T ES2225887T3 ES 2225887 T3 ES2225887 T3 ES 2225887T3 ES 96920496 T ES96920496 T ES 96920496T ES 96920496 T ES96920496 T ES 96920496T ES 2225887 T3 ES2225887 T3 ES 2225887T3
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Abstract

SE PRESENTAN SISTEMAS PARA SEPARAR PLAQUETAS DE LA SANGRE EN UN DISPOSITIVO DE SEPARACION CENTRIFUGO (12) PARA DERIVAR LA PRODUCCION DE PLAQUETAS A TRAVES DE UN RAMAL DEL SISTEMA DE TUBOS (30) EN TIEMPO REAL A MEDIDA QUE SE REALIZA EL PROCESAMIENTO. LOS SISTEMAS DETERMINAN UN VOLUMEN DE SANGRE INCREMENTAL PROCESADO A PARTIR DEL RAMAL (20) DEL SISTEMA DE TUBOS DURANTE UNA SUCESION DE PERIODOS DE TIEMPO INCREMENTALES DURANTE UN PASO DE SEPARACION. LOS SISTEMAS TAMBIEN ESTIMAN UNA EFICIENCIA DE SEPARACION PARA EL DISPOSITIVO DE SEPARACION (12) DURANTE CADA PERIODO DE TIEMPO INCREMENTAL, MIENTRAS QUE TAMBIEN SE ESTIMA LA CUENTA ACTUAL DE PLAQUETAS DISPONIBLES DEL DONANTE A TRAVES DEL RAMAL (20) DURANTE CADA PERIODO DE TIEMPO INCREMENTAL. LOS SISTEMAS MULTIPLICAN EL VOLUMEN DE SANGRE INCREMENTAL PARA CADA PERIODO DE TIEMPO POR LA CUENTA ACTUAL ESTIMADA DE PLAQUETAS Y POR LA EFICIENCIA DE SEPARACION ESTIMADA, PARA DERIVAR EL RENDIMIENTO DE PLAQUETAS INCREMENTAL.

Description

Sistemas y métodos de procesamiento de sangre.
Campo y antecedentes de la invención
La presente invención se refiere en general a sistemas y métodos de procesamiento de sangre.
Actualmente y de manera rutinaria los profesionales separan la sangre completa, mediante centrifugación, en sus diferentes componentes terapéuticos, por ejemplo glóbulos rojos, plaquetas y plasma.
Algunas terapias transfunden grandes volúmenes de componentes sanguíneos. Por ejemplo, algunos pacientes que reciben quimioterapia necesitan la transfusión de grandes cantidades de plaquetas de manera rutinaria. Los sistemas de bolsa de sangre manuales no representan el modo más efectivo para recoger estas grandes cantidades de plaquetas de cada donante por separado.
Los sistemas de separación de sangre en línea se utilizan hoy en día para recoger gran cantidad de plaquetas con el fin de satisfacer esta demanda. Los sistemas en línea llevan a cabo las fases de separación necesarias para separar la concentración de plaquetas de la sangre completa en un proceso secuencial con el donante presente. Los sistemas en línea establecen un flujo de sangre completa del donante, separan las plaquetas deseadas del flujo y devuelven los glóbulos rojos y el plasma restantes al donante, todo en un bucle cerrado de flujo secuencial.
Se pueden procesar grandes volúmenes de sangre completa (por ejemplo 2,0 litros) usando un sistema en línea. Debido a los grandes volúmenes de procesamiento, se pueden recoger grandes producciones de plaquetas concentradas (por ejemplo, 4 x 10^{11} plaquetas suspendidas en 200 ml de fluido). Además, como los glóbulos rojos del donante se devuelven, el donante puede donar sangre completa para un procesamiento en línea más frecuentemente que los donantes que donan sangre para un procesamiento en sistemas de múltiples bolsas de sangre.
En cualquier caso, todavía existe la necesidad de conseguir sistemas y métodos mejorados para recoger concentrados ricos en células de los componentes de la sangre, de manera que se puedan usar en grandes volúmenes y en ambientes de recogida de sangre en línea donde se puedan realizar producciones mayores de componentes sanguíneos celulares tales como plaquetas, los cuales se necesitan de manera apremiante.
Como las demandas operativas y de funcionamiento de tales sistemas de procesamiento de fluido cada vez son más complejas y sofisticadas, existe la necesidad de conseguir controladores de proceso automáticos que puedan reunir y generar información más detallada y controlar las señales para ayudar al operador a aumentar la eficacia de procesamiento y separación.
Breve descripción de la invención
La invención proporciona sistemas y métodos para separar plaquetas de la sangre según las reivindicaciones 1 y 7. Los sistemas y métodos utilizan un dispositivo de separación para dividir la sangre en una producción de plasma y una producción de plaquetas. Los sistemas y métodos establecen, al menos en parte mientras que se está produciendo la separación en el dispositivo de separación, la producción de plaquetas. El sistema y los métodos generan una salida en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
Al establecerse la producción de plaquetas, los sistemas y métodos determinan un volumen de sangre incremental que se ha procesado durante una sucesión de periodos de tiempo incrementales durante la fase de separación. Los sistemas y métodos también calculan una eficacia de separación para el dispositivo de separación durante cada periodo de tiempo incremental, mientras que al mismo tiempo calculan un recuento actual de plaquetas que se pueden obtener del donante durante cada periodo de tiempo incremental. Los sistemas y métodos multiplican el volumen de sangre incremental determinado para cada periodo de tiempo incremental por el recuento actual calculado de plaquetas para cada periodo de tiempo incremental por la eficacia de separación calculada para cada periodo de tiempo incremental, con el fin de establecer una producción de plaquetas incremental para cada periodo de tiempo incremental. Los sistemas y métodos suman las producciones de plaquetas incrementales durante la sucesión de periodos de tiempo incrementales para obtener la producción establecida de plaquetas.
Al determinarse la producción de plaquetas de manera incremental, los sistemas y métodos tienen en cuenta los cambios sistémicos y fisiológicos que se producen de manera virtual y continua durante el proceso de recogida y separación de sangre.
Los diferentes aspectos de la invención son especialmente adecuados para procesos de separación de sangre en línea.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1, es una vista esquemática de un sistema de recogida de plaquetas de doble aguja que incluye un controlador que incorpora las características de la invención.
La figura 2, es un organigrama esquemático del controlador y de la aplicación de optimización del sistema asociado que incluye las características de la invención.
La figura 3, es una vista esquemática de los usos generales de las funciones incluidas en la aplicación de optimización del sistema que se muestra en la figura 2.
La figura 4, es un organigrama esquemático de la función de uso general que se encuentra en la aplicación de optimización del sistema que establece la producción de plaquetas durante una sesión de proceso dada.
La figura 5, es un organigrama esquemático de las funciones de uso general que se encuentran en la aplicación de optimización del sistema que proporcionan información del estado de procesamiento y los parámetros, generan variables de control para obtener eficacias de separación óptimas y generan variables de control que controlan la velocidad de infusión de citrato durante una sesión de proceso dada.
La figura 6, es un organigrama esquemático de la función de uso general que se encuentra en la aplicación de optimización del sistema que recomienda parámetros de almacenamiento óptimos en función de la producción de plaquetas durante una sesión de proceso dada.
La figura 7, es un organigrama esquemático de la función de uso general que se encuentra en la aplicación de optimización del sistema que calcula el tiempo de proceso antes de que comience una sesión de procesamiento.
La figura 8, es una representación gráfica de un algoritmo usado por la función de uso general que se muestra en la figura 4 que expresa la relación entre la eficacia de la separación de plaquetas en la cámara de la segunda fase y un parámetro adimensional que tiene en cuenta el tamaño de las plaquetas, la medida de caudal de plasma, el área de la cámara y la velocidad de rotación.
La figura 9, es un gráfico que muestra la relación entre la presión parcial del oxígeno y la permeabilidad del recipiente de almacenamiento particular que tiene en cuenta la función de uso general que se muestra en la figura 6 cuando recomienda parámetros de almacenamiento óptimos en lo que se refiere al número de recipientes de almacenamien-
to.
La figura 10, es un gráfico que muestra la relación entre el consumo de bicarbonato y el trombocitocrito de almacenamiento para un recipiente de almacenamiento particular, que tiene en cuenta la función de uso general que se muestra en la figura 6 cuando recomienda parámetros de almacenamiento óptimos en lo que se refiere al volumen del medio de almacenamiento de plasma.
La figura 11 y última, es un gráfico que muestra la eficacia de separación de plaquetas, expresado en términos de volumen medio de plaquetas, y en términos de hematocrito entrante, que tiene en cuenta la función de uso general que se muestra en la figura 5 cuando genera una variable de control que gobierna la recirculación de plasma durante el proceso.
Los diferentes aspectos de la invención pueden agruparse de diferentes formas sin alejarnos del objeto de la misma ni de sus características esenciales. El objeto de la invención se define en las reivindicaciones en anexo en vez de en la descripción específica que precede a las mismas. Se pretende que todas las realizaciones que estén dentro del significado y las equivalencias de las reivindicaciones queden incluidas en ellas.
Descripción de las realizaciones preferidas
La figura 1 muestra en forma de diagrama un sistema de procesamiento de sangre en línea 10 para realizar un proceso de recogida de plaquetas automático. El sistema 10 en muchos aspectos representa una red de recogida de sangre de dos agujas convencional, aunque también se puede utilizar una red con una sola aguja convencional. El sistema 10 incluye un controlador de proceso 18 que incluye las características de la invención.
I. Sistema separador
El sistema 10 incluye un conjunto de elementos de hardware duraderos cuyo funcionamiento es controlado por el controlador de proceso 18. Los elementos de hardware incluyen una centrifugadora 12 en la que se separa la sangre completa (WB) en sus diferentes componentes terapéuticos, por ejemplo plaquetas, plasma y glóbulos rojos (RBC). Los elementos de hardware también incluyen varias bombas que normalmente son peristálticas (denominadas P1 a P4); y varias presillas y válvulas en línea (denominadas V1 a V3). Como es natural, normalmente pueden estar presentes otros tipos de elementos de hardware que no muestra la figura 1, por ejemplo solenoides, monitores de presión y similares.
El sistema 10 también incluye normalmente alguna forma de conjunto de procesamiento de fluido desechable 14 usado en asociación con los elementos de hardware.
En el sistema de procesamiento de sangre 10 que se ilustra, el conjunto 14 incluye una cámara de procesamiento de dos fases 16. En uso, la centrifugadora 12 hace girar la cámara de procesamiento 16 para separar por centrífugación los componentes sanguíneos. Una centrifugadora ejemplar que se puede usar, se muestra en la US-A 5.360.542 de Williamson et al.
La construcción de la cámara de procesamiento de dos fases 16 puede variar. Por ejemplo, puede adoptar la forma de bolsas dobles, como las cámaras de procesamiento que se muestran en la US-A-4.146.172 de Cullis et al. De manera alternativa, la cámara de procesamiento 16 puede adoptar la forma de una bolsa integral de dos fases alargada, como la que se muestra en la US-A-5.370.802 de Brown.
En el sistema de procesamiento de sangre 10 que se ilustra, el conjunto de procesamiento 14 también incluye un conjunto de tubos flexibles que forman un circuito de fluido. El circuito de fluido transporta líquidos desde y hasta la cámara de procesamiento 16. Las bombas P1 a P4 y las válvulas V1 a V3 se acoplan en el tubo para controlar la corriente de fluido en modos establecidos. El circuito de fluido incluye además varios recipientes (denominados C1 a C3) para dispensar y recibir líquidos durante el procesamiento.
El controlador 18 controla el funcionamiento de los diferentes elementos de hardware para llevar a cabo una o más de las tareas de procesamiento usando el conjunto 14. El controlador 18 también realiza una evaluación en tiempo real de las condiciones de procesamiento y transfiere información para ayudar al operador a maximizar la separación y recogida de componentes sanguíneos. La invención se refiere específicamente a aspectos importantes del controlador 18.
El sistema 10 puede configurarse para que realice varios tipos de procesos de separación de sangre. La figura 1 muestra el sistema 10 configurado para que lleve a cabo un proceso de recogida de plaquetas automático con dos agujas.
En un modo de recogida, una primera derivación de tubo 20 y la bomba de admisión P2 administran WB (sangre completa) a través de una aguja de extracción 22 al primer compartimiento 24 de la cámara de procesamiento 16. Mientras tanto, una derivación de tubo auxiliar 26 mide el anticoagulante que va desde el recipiente C1 hasta el flujo de WB a través de la bomba de anticoagulante P1. Aunque la realización que se ilustra utiliza ACDA, que es el anticoagulante más utilizado para féresis, el tipo de anticoagulante puede variar.
El recipiente C2 contiene solución salina. Otra derivación de tubo auxiliar 28 transporta la solución salina hasta la primera derivación de tubo 20, a través de la válvula en línea V1, para cebar y purgar aire del sistema 10 antes de que empiece el procesamiento. La solución salina también se introduce después de que termina el procesamiento para limpiar componentes residuales del conjunto 14 y devolverlo al donante.
La WB anticoagulada entra en y llena el primer compartimento 24 de la cámara de procesamiento 24. Allí, las fuerzas centrífugas que se han generado durante la rotación de la centrifugadora 12 separan la WB en glóbulos rojos (RBC) y plasma rico en plaquetas (PRP).
La bomba PRP P4 funciona para extraer PRP del primer compartimento 24 de la cámara de procesamiento 16 y llevarlo a una segunda derivación de tubo 30 para transportarlo al segundo compartimento 32 de la cámara de procesamiento 16. Allí, el PRP se separa en concentrado de plaquetas PC y plasma pobre en plaquetas PPP.
De manera opcional, el PRP se puede transportar a través de un filtro F para retirar los leucocitos antes de la separación en el segundo compartimento 32. El filtro F puede emplear un medio de filtrado que contiene fibras del tipo que se describe en la US-A-4.936.998 de Nishimura et al. El medio de filtrado que contiene estas fibras lo vende Asahi Medical Company con el nombre comercial SEPACELL.
El sistema 10 incluye una derivación de tubo de recirculación 34 y una bomba de recirculación asociada P3. El controlador de proceso 18 acciona la bomba P3 para desviar una parte del PRP que se encuentra en el primer compartimento 24 de la cámara de procesamiento 16 para volverlo a mezclar con la WB que entra en el primer compartimento 24 de la cámara de procesamiento 16. La recirculación del PRP establece las condiciones deseadas en la zona de entrada del primer compartimento 24 para proporcionar una separación máxima de RBC y
PRP.
Como la WB es arrastrada hasta el primer compartimento 24 de la cámara para su separación, el sistema de dos agujas que se ilustra hace que vuelva RBC al mismo tiempo desde el primer compartimento 24 de la cámara, junto con una parte de PPP del segundo compartimento 24 de la cámara, al donante a través de una aguja de retorno 36 que atraviesa unas derivaciones de tubo 38 y 40 y una válvula en línea V2.
El sistema 10 también acumula PC (resuspendido en un volumen de PPP) en alguno de los recipientes C3 a través de las derivaciones de tubo 38 y 42 y de la válvula en línea V3 para dejarlo almacenado y para darle un uso útil. De manera preferible, el o los recipientes C3 que tienen la finalidad de almacenar PC son de materiales que, si se comparan con los materiales de cloruro de polivinilo plastificados DEHP, tienen una mayor permeabilidad al gas que es beneficiosa para el almacenamiento de plaquetas. Por ejemplo, se puede usar poliolefina (como se describe en la US-A-4.140.162 de Gajewski et al) o cloruro de polivinilo plastificado con trimelitato de tri-2-etilhexilo (TEHTM).
El sistema 10 también puede acumular PPP en alguno de los recipientes C3 a través de la misma vía de fluido. La retención continua de PPP sirve para varios fines tanto durante como después del proceso de separación de componentes.
La retención de PPP tiene una finalidad terapéutica durante el procesamiento. El PPP contiene la mayor parte del anticoagulante que se mide en la WB durante el proceso de separación de componentes. Si se retiene una parte de PPP en vez de devolverlo todo al donante, se reduce el volumen de anticoagulante que recibe el donante durante el proceso. Esta reducción es particularmente importante cuando se procesan grandes volúmenes de sangre. La retención de PPP durante el proceso también mantiene el recuento de plaquetas circulantes más alto y más uniforme durante el proceso.
El sistema 10 también puede hacer que el PPP retenido proporcione beneficios.
El sistema 10 puede, en un modo de recirculación alternativo, hacer recircular una parte del PPP retenido, en vez de PRP, para mezclarlo con la WB que entra en el primer compartimiento 24. O, si el flujo de WB se detiene de manera provisional durante el procesamiento, el sistema puede utilizar el volumen retenido de PPP como fluido "abierto" anticoagulado para mantener los tubos para líquidos transparentes. Además, al final del proceso de separación, el sistema 10 utiliza el volumen retenido de PPP como fluido "reaclarado", para resuspender y purgar RBC del compartimento 24 de la primera fase para retornarlo al donante a través de la derivación de retorno 40. Después del proceso de separación, el sistema 10 también funciona en un modo de resuspensión para utilizar una parte del PPP retenido para resuspender PC en el segundo compartimiento 24 con el fin de trasladarlo y almacenarlo en el o los recipientes de recogida C3.
II. Sistema controlador
El controlador 18 lleva a cabo todas las funciones de control de proceso y de monitorización para el sistema 10 como ya se ha descrito.
En la realización preferida que se ilustra (ver figura 2), el controlador comprende una unidad de proceso principal (MUP) 44. En la realización preferida, la MUP 44 comprende un microprocesador de tipo 68030 fabricado por Motorola aunque se pueden usar otros tipos de microprocesadores convencionales.
En la realización preferida, la MUP 44 emplea una multitarea a tiempo real convencional para asignar ciclos MUP a las tareas de procesamiento. Una interrupción periódica del temporizador (por ejemplo, cada 5 milisegundos) anticipa la tarea de ejecución y programa otra que está preparada para ser ejecutada. Si se solicita otra programación, se programa la tarea que tiene más prioridad en el estado disponible.
A. Control del hardware funcional
La MUP 44 incluye un administrador de control de aplicación 46. El administrador de control de aplicación 46 administra la activación de una librería 48 de aplicaciones de control (se indica como A1 a A3). Cada aplicación de control A1 a A3 establece procedimientos para llevar a cabo tareas funcionales dadas usando el hardware del sistema (por ejemplo, la centrifugadora 12, las bombas P1 a P4 y las válvulas V1 a V3) en un modo determinado. En la realización preferida que se ilustra, las aplicaciones A1 a A3 permanecen como software del sistema en el EPROM'S de la MUP 44.
El número de aplicaciones A1 a A3 puede variar. En la realización preferida que se ilustra, la librería 48 incluye al menos una aplicación de procedimiento clínico A1. La aplicación de procedimiento A1 contiene las fases de llevar a cabo un procedimiento de proceso clínico establecido. A modo de ejemplo, en la realización que se ilustra, la librería 48 incluye una aplicación de procedimiento A1 para realizar el proceso de recogida de plaquetas de doble aguja, como ya se ha descrito en relación con la figura 1. Naturalmente, se pueden incluir, y normalmente se incluyen, aplicaciones de procedimiento adicionales. Por ejemplo, la librería 48 puede incluir una aplicación de procedimiento para realizar un proceso convencional de recogida de plaquetas de aguja única.
En la realización preferida que se ilustra, la librería 48 también incluye una aplicación de optimización de sistema A2. La aplicación de optimización de sistema A2 contiene funciones de uso general especializadas e interrelacionadas que procesan información en función de unas condiciones de procesamiento a tiempo real y de unas estimaciones empíricas para obtener información y variables de control que optimizan el funcionamiento del sistema. Más adelante, se describen más detalles de la aplicación de optimización A2.
La librería 48 también incluye una aplicación de menú principal A3 que controla el operador para coordinar la selección de las diferentes aplicaciones A1 a A3, como se describe después con más detalle.
Naturalmente, se pueden incluir, y normalmente se incluyen, aplicaciones de proceso no clínicas adicionales. Por ejemplo, la librería 48 puede incluir una aplicación de configuración que contiene los procedimientos para permitir al operador configurar los parámetros de funcionamiento por defecto del sistema 10. En otro ejemplo, la librería 48 puede incluir una aplicación de diagnóstico que contiene los procedimientos de ayuda al personal de servicio para diagnosticar y eliminar averías de la unidad funcional del sistema y una aplicación de reanudación del sistema que realiza una reanudación completa del sistema si el sistema no puede administrar o recuperarse de una condición de error.
Un controlador de instrumentos 50 también reside como software de proceso en el EPROM'S de la MUP 44. El controlador de instrumentos 50 se comunica con el administrador de control de aplicación 46. El controlador de instrumentos 50 también se comunica con unos controladores periféricos de bajo nivel 52 para las bombas, solenoides, válvulas y otro hardware funcional del sistema.
Como muestra la figura 2, el administrador de control de aplicación 46 envía órdenes de función específicas al controlador de instrumentos 50, como ya hemos citado, mediante la aplicación activada A1 a A3. El controlador de instrumentos 50 identifica el controlador o controladores periféricos 52 para llevar a cabo la función y recopila órdenes específicas de hardware. Los controladores periféricos 52 se comunican directamente con el hardware para aplicar las órdenes específicas del hardware, haciendo que el hardware funcione en un modo específico. Un controlador de comunicaciones 54 administra el protocolo de bajo nivel y las comunicaciones entre el controlador de instrumentos 50 y los controladores periféricos 52.
Según muestra la figura 2, el controlador de instrumentos 50 también transfiere de nuevo al administrador de control de aplicación 46 datos del estado de las condiciones funcionales y operacionales del procedimiento del proceso. Los datos de estado se expresan en términos de, por ejemplo, medidas de caudal del fluido, presiones detectadas y volúmenes de fluido medidos.
El administrador de control de aplicación 46 transmite datos de estado seleccionados para mostrarlos visualmente al operador. El administrador de control de aplicación 46 transmite condiciones operacionales y funcionales a la aplicación de procedimiento A1 y a la aplicación de monitorización de funcionamiento A2.
B. Control de interfaz del usuario
En la realización que se ilustra, el MPU 44 también incluye una interfaz de usuario interactiva 58. La interfaz 58 permite al operador ver y comprender la información que se refiere al funcionamiento del sistema 10. La interfaz 58 también permite al operador seleccionar aplicaciones que residen en el administrador de control de aplicación 46, y cambiar determinados criterios de funcionamiento y rendimiento del sistema 10.
La interfaz 58 incluye una pantalla de interfaz 60 y, preferiblemente, un dispositivo de audio 62. La pantalla de interfaz 60 muestra visualmente información para que la vea el usuario en formato alfanumérico y como imágenes gráficas. El dispositivo de audio 62 proporciona avisos audibles para llamar la atención del operador o para conocer las acciones del operador.
En la realización preferida que se ilustra, la pantalla de interfaz 60 también sirve como dispositivo de entrada. Éste recibe información del operador mediante activación por tacto. De manera alternativa o en combinación con la activación por tacto, se podría usar un ratón o teclado como dispositivos de entrada.
Un controlador de interfaz 64 se comunica con la pantalla de interfaz 60 y con el dispositivo de audio 62. El controlador de interfaz 64, a su vez, se comunica con un controlador de interfaz 66, que a su vez se comunica con el administrador de control de aplicación 46. El controlador de interfaz 64 y el controlador de interfaz 66 residen como software de proceso en el EPROM'S de la MUP 44.
C. Aplicación de optimización de sistema
En la realización que se ilustra (como muestra la figura 3), la aplicación de optimización de sistema A2 contiene seis funciones de uso general ya interrelacionadas especializadas denominadas F1 a F6. Naturalmente, el número y tipo de funciones de uso general puede variar.
En la realización que se ilustra, una función de utilidad F1 obtiene el rendimiento del sistema 10 para el componente celular particular fijado para ser recogido. Para la aplicación de procedimiento de recogida de plaquetas A1, la función de utilidad F1 determina la condición física instantánea del sistema 10 en lo que se refiere a su eficacia de separación y a la condición fisiológica instantánea del donante en lo que se refiere al número de plaquetas circulantes disponibles para ser recogidas. A partir de esto, la función de utilidad F1 obtiene la producción instantánea de plaquetas de manera continua durante el periodo de procesamiento.
Otra función de uso general F2 depende de la producción de plaquetas calculada y de otras condiciones de procesamiento para generar valores y parámetros del estado de información seleccionado. Estos valores y parámetros se muestran visualmente en la interfaz 58 para ayudar al operador a establecer y mantener unas condiciones de funcionamiento óptimas. Los valores y parámetros del estado que derivan de la función de uso general F2 pueden variar. Por ejemplo, en la realización que se ilustra, la función de uso general F2 informa sobre los volúmenes que quedan para ser procesados, sobre los tiempos de procesamiento que quedan y sobre los volúmenes y velocidades de recogida de componente.
Otra función de uso general F3 calcula y recomienda, en función de la producción de las plaquetas que deriva de la función de uso general F1, los parámetros de almacenamiento óptimos en lo que se refiere al número de recipientes de almacenamiento y al volumen de medios de almacenamiento de PPP para usar.
Otras funciones de uso general generan variables de control en función de las condiciones de procesamiento que estén en curso para ser usadas por el administrador de control de aplicación 46 con el fin de establecer y mantener unas condiciones de procesamiento óptimas. Por ejemplo, una función de uso general F4 genera variables de control para optimizar las condiciones de separación de plaquetas en la primera fase 24. Otra función de uso general F5 genera variables de control para controlar la velocidad con la que el anticoagulante de citrato vuelve con el PPP al donante para evitar las posibles reacciones de toxicidad de citrato.
Aún otra función de uso general F6 obtiene un tiempo de procedimiento estimado que pronostica el tiempo de recogida antes de conectar al donante.
A continuación se describen otros detalles de estas funciones de uso general F1 a F6.
III. Obtención de la producción de plaquetas
La función de utilidad F1 (ver figura 4) hace cálculos continuos de la eficacia de separación de plaquetas (\eta_{plt}) del sistema 10. La función de utilidad F1 trata la eficacia de separación de plaquetas (\eta_{plt}) que es igual a la relación del volumen de plasma separado de la sangre completa del donante en relación al volumen de plasma total disponible en la sangre completa. La función de utilidad F1 asume así que cada plaqueta del volumen del plasma que se ha separado de la sangre completa del donante será recogida.
El hematocrito del donante cambia debido a los efectos de dilución del anticoagulante y a la reducción de plasma durante el proceso, con lo cual la eficacia de separación (\eta_{plt}) no permanece en un valor constante sino que cambia a lo largo del procedimiento. La función de utilidad F1 compite con estos cambios dependientes del proceso monitorizando las producciones de manera gradual. Estas producciones, denominadas volúmenes purificados graduales (\DeltaClrVol), se calculan multiplicando la eficacia de separación actual por el volumen incremental de la sangre completa del donante, diluida con anticoagulante, que se está procesando, del siguiente modo:
Ec.(1)\Delta ClrVol = ACDil \ x \ \eta_{plt} \ x \ \Delta VOL_{proc}
donde:
\DeltaVoL_{proc} es el volumen incremental de sangre completa que se está procesando, y
ACDil es un factor de dilución de anticoagulante para el volumen incremental de sangre completa, calculado de la siguiente manera:
Ec. (2)ACDil = AC / (AC+1)
donde:
AC es la relación entre el volumen de sangre completa y el volumen de anticoagulante (por ejemplo 10:1 ó "10"). AC puede comprender un valor fijo durante el periodo de procesamiento. De manera alternativa, AC puede variar gradualmente dependiendo de un criterio establecido durante el periodo de procesamiento. Por ejemplo, AC se puede fijar al comienzo del proceso con una relación menor para un periodo de tiempo inicial establecido y después aumentarla en fases después de transcurridos periodos de tiempo posteriores; por ejemplo, AC se puede fijar en 6:1 para el primer minuto de procesamiento, luego se puede elevar a 8:1 para los 2,5 a 3 minutos posteriores; y finalmente elevar al nivel de procesamiento de 10:1.
La introducción de anticoagulante también se puede llevar a cabo monitorizando la presión de admisión de PRP que entra en la segunda fase de procesamiento 32. Por ejemplo, la AC se puede fijar en 6:1 hasta que descienda la presión inicial (por ejemplo de 500 mmHg) hasta un nivel umbral establecido (por ejemplo, entre 200 mmHg y 300 mmHg). Después se puede elevar la AC en fases hasta el nivel de procesamiento de 10:1 mientras que se está monitorizando la presión para asegurar que permanece en el nivel deseado.
La función de utilidad F1 también hace estimaciones continuas del recuento actual de plaquetas circulantes del donante (Plt_{circ}), expresado en términos de 1.000 plaquetas por microlitro (\mul) de volumen de plasma (o K/\mul). Al igual que \eta_{plt}, Plt_{circ}cambia durante el proceso debido a los efectos de dilución y reducción. La función de utilidad F1 monitoriza también la producción de las plaquetas por incrementos, multiplicando cada volumen de plasma purificado incremental \DeltaClrVol (en función de un cálculo instantáneo de \eta_{plt}) por una estimación instantánea del recuento de plaquetas circulantes Plt_{circ}. El producto es una producción de plaquetas incremental (\Deltaprod), expresado normalmente en e^{n} plaquetas, donde e^{n} = 0,5 x 10^{n} plaquetas (e^{11} = 0,5 x 10^{11} plaquetas).
En un momento dado, la suma de las producciones de las plaquetas incrementales \Deltaprod constituye la producción de plaquetas actual Prod_{actual}, que puede expresarse también de la siguiente manera:
Ec. (3)Prod_{actual}=Prod_{anterior}+\frac{\Delta ClrVol \ x \ Plt_{actual}}{\text{100.000}}
donde:
Prod_{anterior} es la última Prod_{actual} calculada, y
Ec. (4)\Delta Prod = \frac{\Delta ClrVol \ x \ Plt_{actual}}{\text{100.000}}
donde:
Plt_{actual} es el cálculo actual (instantáneo) del recuento de plaquetas circulantes del donante.
\DeltaProd se divide por 100.000 en la Ec. (4) para equilibrar las unidades.
Lo que se describe a continuación proporciona más detalles de la obtención de las variables de procesamiento descritas mediante la función utilidad F1.
A. Obtención de la eficacia de separación completa \eta_{plt}
La eficacia de todo el sistema \eta_{plt} es el producto de las eficacias individuales de las partes del sistema, expresado de la siguiente manera:
Ec. (5)\eta_{plt}= \eta_{1^{a} fase} \ x \ \eta_{2^{a} fase} \ x \ \eta_{Anc}
donde:
\eta_{1^{a} fase} es la eficacia de la separación de PRP de WB en la primera fase de separación.
\eta_{2^{a} fase} es la eficacia de separación de PC de PRP en la segunda fase de separación.
\eta_{Anc} es elproducto de las eficacias de otras fases de proceso secundarias del sistema.
1. Eficacia de separación de la primera fase \eta_{1^{a} fase}
La función de utilidad F1 (ver figura 4) establece \eta_{1^{a} fase} de manera continua durante el proceso en función de los valores de procesamiento medidos y empíricos, usando la siguiente expresión:
Ec. (6)\eta_{sep}=\frac{Q_{p}}{(1-H_{b})Q_{p}}
donde:
Q_{b} es la medida de caudal de sangre completa medida (en ml/minuto).
Q_{p} es la medida de caudal de PRP medido (en ml/minuto).
H_{b} es el hematocrito claro de la sangre completa anticoagulada que entra en el compartimento de separación de la primera fase. H_{b} es un valor que deriva de la utilidad en función de las condiciones de circulación detectadas y las consideraciones teóricas. La función de utilidad F1 no necesita por tanto un sensor de hematocrito en línea para medir el hematocrito WB real.
La función de utilidad F1 establece H_{b} en función de la siguiente relación:
Ec. (7)H_{b}=\frac{H_{rbc}(Q_{b}-Q_{p})}{Q_{b}}
donde:
H_{rbc} es el hematocrito evidente del lecho de RBC dentro de la cámara de separación de la primera fase, en función de las condiciones de funcionamiento detectadas y las dimensiones físicas de la cámara de separación de la primera fase. Al igual que con H_{b}, la función de utilidad F1 no necesita un sensor físico para determinar H_{rbc}, que deriva de la función de uso general según la siguiente expresión:
Ec. (8)H_{rbc}=1-\left(\frac{\beta}{gA\kappa S_{\gamma}}(q_{b}-q_{p})\right)^{\tfrac{1}{K+1}}
donde:
q_{b} es la medida de caudal de sangre entrante (cm^{3}/s) que es una cantidad conocida que, cuando se transforma a ml/minuto, corresponde a Q_{b} en Ec. (6).
q_{p} es la medida de caudal de PRP medido (en cm^{3}/s) que es una cantidad conocida que cuando se transforma a ml/minuto) corresponde a Q_{p} en Ec. (6).
\beta es un término que depende de la velocidad de corte, y S_{\gamma} es el coeficiente de sedimentación de glóbulos rojos (s). En base a datos empíricos, Ec. (8) supone que \beta/S_{\gamma} = 15,8 X 10^{6} s^{-1}.
A es el área de la cámara de separación (cm^{2}) que es una dimensión conocida.
g es la aceleración centrífuga (cm/s^{2}) que es el radio de la primera cámara de separación (una dimensión conocida) multiplicado por la velocidad de rotación al cuadrado \Omega^{2} (rad/s^{2}) (otra cantidad conocida).
K es una constante de viscosidad = 0,625 y \kappa es una constante de viscosidad en función de K y otra constante de viscosidad \alpha = 4,5, donde:
Ec. (9)\kappa =\frac{K+2}{\alpha}\left[\frac{K+2}{K+1}\right]^{K+1} = \text{1,272}
Ec. (8) deriva de las relaciones que se expresan en la siguiente Ec. (10):
Ec. (10)H_{rbc}(1-H_{rbc})^{(K+1)}=\frac{\beta H_{b}q_{b}}{gA\kappa A_{\gamma}}
que se describe en The Physics of Continuous Flow Centrifugal Cell Separation, "Artificial Organs" 1989; 13(1): 4-20)) de Brown. Ec. (8) resuelve Ec. (10) para H_{rbc}.
2. Eficacia de separación de la segunda fase \eta_{2^{a} fase}
La función de utilidad F1 (ver figura 4) también establece \eta_{2^{a} fase}de manera continua durante un proceso en función de un algoritmo que deriva de un modelo informático, que calcula qué fracción de plaquetas distribuidas logarítmicamente normal se recogen en la segunda fase de separación 32 en función de su tamaño (volumen de plaqueta medio o MPV), la medida de caudal (Q_{p}), el área (A) de la fase de separación 32 y la aceleración centrífuga (g, que es el radio de rotación de la segunda fase multiplicado por la velocidad de rotación al cuadrado \Omega^{2}).
El algoritmo se puede expresar en términos de una función que se muestra gráficamente en la figura 8. El gráfico traza \eta_{2^{a} fase} en términos de un único parámetro adimensional gAS_{p}/Q_{p},
donde:
S_{p} = \text{1,8} x 10^{-9} MPV^{2/3}
\hskip0.5cm
(s), y
MPV es el volumen de plaqueta medio (femtólitros, fl o micrómetros cúbicos) que se puede medir con técnicas convencionales a partir de una muestra de la sangre del donante recogida antes del proceso. Puede haber variaciones en el MPV debido al uso de diferentes contadores. La función de utilidad puede incluir por tanto una tabla de consulta para estandarizar el MPV y que lo use la función según el tipo de contador utilizado. De manera alternativa, se puede determinar el MPV en base a una función que deriva de la evaluación estadística de datos clínicos de recuento de plaquetas Plt_{pre}, que puede usar la función de utilidad general. El inventor cree, en base a esta evaluación de datos clínicos, que la función del MPV puede expresarse como:
MPV (fl) \approx \text{11,5} - \text{0,009}Plt_{pre} (K/\mu l)
3. Eficacias de separación secundaria \eta_{ANC}
\eta_{Anc} tiene en cuenta la eficacia (en términos de pérdida de plaquetas) de otras partes del sistema de procesamiento. \eta_{Anc} tiene en cuenta la eficacia de transporte de plaquetas (en PRP) desde la cámara de la primera fase a la cámara de la segunda fase; la eficacia de transporte de plaquetas (también en PRP) a través del filtro de separación de leucocitos; la eficacia de resuspensión y el traspaso de plaquetas (en PC) desde la cámara de la segunda fase después del proceso y la eficacia de reprocesamiento de sangre ya procesada en una configuración de aguja única o de aguja
doble.
Las eficacias de estas fases de proceso secundarias se pueden determinar en función de datos clínicos o se pueden calcular en base a un modelo informático. En base a estas consideraciones, se puede asignar un valor ya determinado para \eta_{Anc}que Ec. (5) trata como una constante durante el transcurso de un proceso dado.
B. Establecimiento de un recuento de plaquetas del donante (Plt_{circ})
La función de utilidad F1 (ver figura 4) depende de un modelo dinámico para predecir el recuento de plaquetas circulantes del flujo sanguíneo del donante Plt_{circ} durante el proceso. El modelo calcula el volumen de sangre del donante y después calcula los efectos de dilución y reducción durante el proceso para establecer Plt_{circ} de acuerdo con las siguientes relaciones:
Ec. (11)Plt_{circ}= [(dilución) \ x \ Plt_{pre}] - (reducción)
donde:
Plt_{pre} es el recuento de plaquetas circulantes del donante antes de que empiece el proceso (K/\mul) que se puede medir con técnicas convencionales a partir de una muestra de sangre completa tomada del donante antes del proceso. Puede haber variaciones en el Plt_{pre} debido al uso de diferentes contadores (ver, por ejemplo, Peoples et al., "A multi-Site Study of Variables Affecting Platelet Counting for Blood Component Quality Control", Transfusion (Special Abstract Supplemet, 47^{th} Annual Meeting), V. 34, No. 10S, Octubre 1994 Supplement). La función de utilidad puede por tanto incluir una tabla de consulta para estandarizar todos los recuentos de plaquetas (por ejemplo, Plt_{pre} y Plt_{post}, que se describen después) para que los use la función según el tipo de recuento usado.
La dilución es un factor que reduce el recuento de plaquetas circulantes de preprocesamiento del donate Plt_{pre} debido a aumentos evidentes del volumen de sangre circulante del donante producidos por el volumen de cebadura del sistema y el transporte de anticoagulante. La dilución también tiene en cuenta la retirada continua de fluido del espacio vascular mediante los riñones durante el proceso.
La reducción es un factor que tiene en cuenta la reducción del reservorio de plaquetas circulantes disponibles de donante mediante procesamiento. La reducción también tiene en cuenta la movilización de recuento del índice esplénico para recuperar plaquetas en el volumen de sangre circulante durante el proceso.
1. Cálculo de la dilución
La función de utilidad F1 calcula el factor de dilución en función de la siguiente expresión:
Ec.(12)Dilución = 1-\frac{Cebadura+\frac{2ACD}{3}-PPP}{DonVol}
donde:
Cebadura es el volumen de cebadura del sistema (ml).
ACD es el volumen de anticoagulante utilizado (actual o a punto final, dependiendo del tiempo en el que se hace la derivación) (ml).
PPP es el volumen de PPP recogido (actual o propuesto) (ml).
DonVol (ml) es el volumen de sangre del donante basado en modelos que tienen en cuenta la altura, peso y sexo del donante. Estos modelos se simplifican también usando datos empíricos para trazar el volumen de sangre según el peso del donante linealizado volviendo a la siguiente expresión más racionaliza- da:
Ec. (13)DonVol = 1.024 + 51 Wgt (r^{2} = 0,87)
donde:
Wgt es el peso del donante (kg).
2. Cálculo de la reducción
La recogida continua de plaquetas reduce el reservorio de plaquetas circulantes disponibles. Un modelo de primera clase predice que el recuento de plaquetas del donante se reduce debido a la producción de plaquetas (Prod) (actual o propuesto) dividido entre el volumen de sangre circulante del donante (DonVol), expresado de la siguiente manera:
Ec. (14)Reducción = 100.000 Prod / DonVol
donde:
Prod es la producción de plaquetas actual instantánea o propuesta (K/\mul). En la Ec. (14), Prod se multiplica por 100.000 para equilibrar unidades.
La Ec. (14) no tiene en cuenta la movilización esplénica de la sustitución de plaquetas que se denomina factor de movilización esplénica (o Índice esplénico). El índice esplénico indica que los donantes con pocas plaquetas tienen en cualquier caso una gran reserva de plaquetas en el índice esplénico. Durante el proceso, como las plaquetas circulantes se retiran de la sangre del donante, el índice esplénico libera plaquetas que mantiene en reserva en la sangre, compensando por tanto el descenso de plaquetas circulantes. El inventor ha descubierto que, incluso aunque varíen los recuentos de plaquetas sustancialmente entre los donantes, el volumen total de plaquetas disponibles permanece sustancialmente constante entre los donantes. Para un donante medio, el volumen de plaquetas es de 3,10 \pm 0,25 ml de plaquetas por litro de sangre. El coeficiente de variación es de 8,1%, sólo un poco mayor que el coeficiente de variación en el hematocrito de los donantes normales.
El inventor ha obtenido el factor de movilización del Índice esplénico de la comparación entre la reducción real medida y la reducción de la Ec. (14), que se ha trazado y linealizado como una función de Plt_{pre}. El índice esplénico (que se limita a menos de 1) se muestra de la siguiente manera:
Ec. (15)Índice esplénico = [\text{2,25} - \text{0,004} \ Plt_{pre}] \geq 1
En función de las Ecs. (14) y (15), la función de utilidad establece la Reducción de la siguiente manera:
Ec. (16)Reducción = \frac{\text{100.000}Prod}{Ind.esplénico \ x \ DonVol}
C. Modificaciones de proceso en tiempo real
El operador no siempre tiene un prerrecuento de plaquetas actualizado Plt_{pre} para cada donante al principio del proceso. La función de utilidad F1 permite al sistema crear parámetros o valores por defecto a partir de un proceso anterior. La función de utilidad F1 permite al operador introducir el prerrecuento de plaquetas actual Plt_{pre}después, durante el proceso. La función de utilidad F1 vuelve a calcular la producción de plaquetas siguiendo unas condiciones determinadas para reflejar los nuevos valores que se han introducido. La función de utilidad F1 utiliza la producción actual para calcular un volumen depurado efectivo y después usa ese volumen para calcular la nueva producción actual, preservando el prerrecuento de plaquetas de la naturaleza dependiente de la movilización esplénica.
La función de utilidad F1 utiliza la producción actual para calcular un volumen depurado efectivo de la siguiente manera:
1
donde:
ClrVol es el volumen de plasma depurado.
DonVol es el volumen de sangre circulante, calculado según la Ec. (13).
Prod_{actual} es la producción de plaquetas actual calculada según la Ec. (3) en base a las condiciones de procesamiento actual.
Cebadura es el volumen de cebadura secundaria de sangre (ml).
ACD es el volumen de anticoagulante usado (ml).
PPP es el volumen de plasma pobre en plaquetas recogido (ml).
Pre_{anterior} es el recuento de plaquetas antes del proceso introducido antes de que empiece el proceso (K/\mul).
Ind.esplénico_{anterior} es el factor de movilización esplénico que se calcula usando la Ec. (16) en función del Pre_{anterior}.
La función de utilidad F1 utiliza ClrVol calculado usando la Ec. (17) para calcular la nueva producción en ese momento de la siguiente manera:
2
donde:
Pre_{nuevo} es el prerrecuento de plaquetas del donante revisado introducido durante el proceso (K/\mul).
Prod_{nueva} es la nueva producción de plaquetas que tiene en cuenta el prerrecuento nuevo de plaquetas del donante Pre_{nuevo}.
ClrVol es el volumen de plasma depurado, calculado según la Ec. (17).
DonVol es el volumen de sangre circulante del donante, calculado según la Ec. (13), igual que en la Ec. (17).
Cebadura es el volumen de cebadura secundaria de sangre (ml), igual que en la Ec. (17).
ACD es el volumen de anticoagulante usado (ml), igual que en la Ec. (17).
PPP es el volumen de plasma pobre el plaquetas recogido (ml), igual que en la Ec. (17).
Ind. esplénico_{nuevo} es el factor de movilización esplénica que se ha calculado usando la Ec. (15) en base al Pre_{nuevo}.
IV. Establecimiento de otra información de procesamiento
La función de utilidad F2 (ver figura 5) depende del cálculo de la producción mediante la primera función de utilidad F1 para obtener otros valores y parámetros de información para ayudar al operador a determinar las condiciones de funcionamiento óptimas para el proceso. Los siguientes valores de proceso ejemplifican deducciones que puede proporcionar la función de uso general F2.
A. Volumen restante para procesar
La función de utilidad F2 calcula el volumen procesado adicional necesario para conseguir una producción de plaquetas deseada Vb_{rem}(en ml) dividiendo la producción restante que se va a recoger entre el recuento de plaquetas medio esperado en lo que queda de proceso, con correcciones para reflejar la eficacia de funcionamiento actual \eta_{plt}. La función de utilidad F2 establece este valor usando la siguiente expresión:
3
donde:
Prod_{propuesta} es la producción de plaquetas deseada (K/\mul),
donde:
Vb_{rem} es el volumen de procesamiento adicional (ml) necesario para conseguir Prod_{propuesta}.
Prod_{actual} es la producción de plaquetas actual ((K/\mul), que se ha calculado usando la Ec. (3) en función de los valores de procesamiento actuales.
\eta_{plt} es la eficacia de recogida de plaquetas (instantánea), que se ha calculado usando la Ec. (5) en función de los valores de procesamiento actuales.
ACDil es el factor de dilución de anticoagulante (Ec.(2)).
Plt_{actual} es el recuento actual de plaquetas circulantes del donante (instantáneo), que se ha calculado usando la Ec. (11) en función de los valores de procesamiento actuales.
Plt_{posterior} es el recuento esperado de plaquetas del donante después del proceso, también calculado usando la Ec. (11) en función de todos los valores de procesamiento.
B. Tiempo de procesamiento restante
La función de utilidad F2 también calcula el tiempo de recogida restante (t_{rem}) (en minutos) de la siguiente manera:
Ec. (20)T_{rem} = Vb_{rem} / Q_{b}
donde:
Vb_{rem} es el volumen restante que se va a procesar, calculado según la Ec. (19) en función de las condiciones de procesamiento actuales.
Q_{b} es el volumen de caudal de sangre completa, que fija o calcula el usuario como Qb_{opt} usando la Ec. (31) que se describe después.
C. Recogida de plasma
La función de utilidad F2 añade los diferentes requerimientos de recogida de plasma para establecer el volumen de recogida de plasma (PPP_{propuesto}) (en ml) de la siguiente manera:
Ec. (21)PPP_{propuesto} = PPP_{pc} + PPP_{original} + PPP_{reinfunsión} + PPP_{de \ desecho}+ PPP_{cam. \ de \ rec.}
donde:
PPP_{pc} es el volumen seleccionado de plasma pobre en plaquetas para el producto PC, que puede tener un valor por defecto típico de 250 ml, o puede calcularse como un valor óptimo Plt_{Med} de acuerdo con la Ec. (28), como se describe después.
PPP_{original} es el volumen seleccionado de plasma pobre en plaquetas para recoger como plasma original.
PPP_{de \ desecho} es el volumen de plasma pobre en plaquetas que se va a mantener en reserva para diferentes propósitos de procesamiento (por defecto = 30 ml).
PPP_{cam. \ de \ rec.} es el volumen de la cámara de recogida de plasma (por defecto = 40 ml).
PPP_{reinfusión} es el volumen de plasma pobre en plaquetas que se reinfunde durante el proceso.
D. Velocidad de recogida de plasma
La función de utilidad F2 calcula la velocidad de recogida de plasma (Q_{ppp}) (en ml / minuto) de la siguiente manera:
Ec. (22)Q_{ppp}= (PPP_{propuesto} - PPP_{actual}) / t_{rem}
donde:
PPP_{propuesto} es el volumen deseado de recogida de plasma pobre en plaquetas (ml).
PPP_{actual} es el volumen actual de plasma pobre en plaquetas recogida (ml).
t_{rem} es el tiempo restante de recogida, que se calcula usando la Ec. (20) en función de las condiciones de procesamiento actuales.
E. Uso de AC anticipado total
La función de utilidad F2 puede calcular también el volumen total de anticoagulante que se espera usar durante el proceso (ACD_{final}) (en ml) de la siguiente manera:
Ec. (23)ACD_{final} = ACD_{actual} + \frac{Q_{b} \ x \ t_{rem}}{1+AC}
donde:
ACD_{actual} es el volumen actual de anticoagulante usado (ml).
AC es la proporción de anticoagulante seleccionado.
Q_{b} es la medida de caudal de sangre completa, que fija o calcula el usuario usando la Ec. (31) como Qb_{opcional} en función de las condiciones de procesamiento actuales.
t_{rem} es el tiempo que queda para la recogida que se calcula usando la Ec. (20) en función de las condiciones de procesamiento actuales.
V. Recomendación de los parámetros de almacenamiento de plaquetas óptimos
La función de utilidad F3 (ver figura 6) depende del cálculo de producción mediante la función de utilidad F1 para ayudar al operador a determinar las condiciones de almacenamiento óptimas de plaquetas recogidas durante el procesamiento.
La función de utilidad F3 establece las condiciones de almacenamiento óptimas para mantener las plaquetas durante el periodo de almacenamiento esperado en lo que se refiere al número de recipientes de almacenamiento preseleccionados necesarios para las plaquetas Plt_{Bag} y el volumen de plasma (PPP) Plt_{Med} (en ml) para permanecer como medio de almacenamiento con las plaquetas.
Las condiciones de almacenamiento óptimas para las plaquetas dependen del volumen que se almacene Plt_{vol}, expresado de la siguiente manera:
Ec. (24)Plt_{vol} = Prod x MPV
donde:
Prod es el número de plaquetas recogidas, y
MPV es el volumen medio de plaquetas.
A medida que aumenta el Plt_{vol}, también aumenta la demanda de oxígeno de las plaquetas durante el periodo de almacenaje. A medida que aumentan el Plt_{vol}, también aumenta el consumo de glucosa para tolerar el metabolismo y la generación de dióxido de carbono y lactato como resultado del metabolismo. Las características de los recipientes de almacenaje en lo que se refiere a superficie, grosor y material se seleccionan para proporcionar un grado de permeabilidad al gas deseado para permitir que entre oxígeno y salga dióxido de carbono del recipiente durante el periodo de almacenamiento.
El medio de almacenaje de plasma contiene bicarbonato HCO_{3} que neutraliza el lactato que genera el metabolismo de las plaquetas, manteniendo el pH en un nivel en el que mantiene la viabilidad de las plaquetas. A medida que aumenta el Plt_{vol}, también aumenta la demanda del efecto neutralizante de HCO_{3} y por tanto el volumen de plasma durante el almacenamiento.
A. Establecimiento de Plt_{Bag}
La presión parcial del oxígeno pO_{2} (mmHg) de las plaquetas almacenadas dentro del recipiente de almacenamiento que tiene una permeabilidad dada disminuye en relación al volumen total de plaquetas Plt_{vol} que contiene el recipiente. La figura 9 es un gráfico que se basa en los datos de la prueba que muestran la relación entre la pO_{2} medida después de transcurrido un día de almacenamiento para un recipiente de almacenamiento con una permeabilidad dada. El recipiente de almacenamiento en el que se basa la figura 9 tiene una superficie de 54,458 pulgadas^{2} y una capacidad de 1.000 ml. El recipiente de almacenamiento tiene una permeabilidad al O_{2} de 194cc/100pulgadas^{2}/día y una permeabilidad al CO_{2} 1282cc/100 pulgadas^{2}/día.
Cuando desciende la presión parcial pO_{2} por debajo de 20 mmHg, se observa que las plaquetas se convierten en anaeróbicas y el volumen del producto derivado de lactato aumenta sustancialmente. La figura 9 muestra que el recipiente de almacenamiento seleccionado puede mantener la pO_{2} de 40 mmHg (bien por encima de la zona aeróbica) a Plt_{vol} \leq 4,0 ml. Según esta base conservadora, el volumen 4,0 ml se selecciona como el volumen objeto Plt_{tvol} para este recipiente. Los volúmenes objeto Plt_{Tvol} para otros recipientes se pueden determinar usando la misma metodo-
logía.
La función de utilidad F3 utiliza el volumen de plaquetas objeto Plt_{Tvol} para calcular Plt_{Bag} de la siguiente manera:
Ec. (25)BAG = Plt_{vol} / Plt_{Tvol}
y:
Plt_{Bag} = 1 cuando BAG \leq 1,0, de lo contrario
Plt_{Bag} = [BAG + 1], donde [BAg + 1] es la parte entera del contenido de la cantidad BAG + 1
Por ejemplo, con un donante particular MPV de 9,5 fl y un Producto de 4 x 10^{11} plaquetas (Plt_{vol} = 3,8 ml) y con un Plt_{Tvol} = 4,0 ml, BAG = 0,95 y Plt_{Bag} = 1. Si el MPV del donante es 11,0 fl y la producción Prod y Plt_{Tvol} permanecen igual (Plt_{vol} = 4,4 ml), BAG= 1,1 y Plt_{Bag} = 2.
Cuando Plt_{Bag} >1, Plt_{vol} se divide igualmente entre el número de recipientes necesarios.
B. Establecimiento de Plt_{Med}
La cantidad de bicarbonato usado cada día es una función del trombocitocrito de almacenamiento Tct (%) que se puede expresar de la siguiente manera:
Ec. (26)Tct = Plt_{vol} / Plt_{Med}
La relación entre el consumo de bicarbonato HCO_{3} por día y Tct se puede determinar empíricamente para el recipiente de almacenamiento seleccionado. La figura 10 presenta un gráfico que muestra esta relación para el mismo recipiente en el que se basa el gráfico de la figura 9. El eje Y de la figura 10 muestra el consumo medido empírico de bicarbonato por día (en Meq./L) en función del Tct para ese recipiente. La función de utilidad F3 incluye los datos que se expresan en la figura 10 en una tabla de consulta.
La función de utilidad F3 establece la descomposición de bicarbonato por día durante el periodo de almacenamiento \DeltaHCO_{3} de la siguiente manera:
Ec. (27)\Delta HCO_{3}=\frac{Don_{HCO_{3}}}{Stor}
donde:
Don_{HCO_{3}} es el nivel de bicarbonato medido en la sangre del donante (Meq/L) o de manera alternativa, es el nivel de bicarbonato para un donante típico que se cree que es de 19,0 Meq/L \pm 1,3, y
Stor es el intervalo de almacenamiento en días (normalmente entre 3 y 6 días).
Dado \DeltaHCO_{3}, la función de utilidad F3 establece Tct a partir de la tabla de consulta para un recipiente de almacenamiento seleccionado. Para el recipiente de almacenamiento en el que se basa la figura 10, se cree que un Tct que oscila aproximadamente entre 1,35% y 1,5% es razonablemente adecuado en la mayoría de los casos para un intervalo de almacenamiento de seis días.
Conociéndose Tct y Plt_{vol}, la función de utilidad calcula Plt_{Med} en función de la Ec. (25), de la siguiente manera:
Ec. (28)Plt_{Med} =Plt_{vol} / (Tct/100)
Cuando Plt_{Bag} > 1, Plt_{Med} se divide igualmente entre el número de recipientes requeridos. PPP_{PC} se fija en Plt_{Med} en la Ec. (21).
VI. Establecimiento de variables de control
Las funciones de utilidad F4 y F5 dependen de la matriz descrita de relaciones físicas y fisiológicas para establecer variables de control de proceso que utiliza el administrador de control de aplicaciones 46 para optimizar el funcionamiento del sistema. Las siguientes variables de control ejemplifican deducciones que pueden proporcionar las funciones de utilidad F4 y F5 para este fin.
A. Estimulación de las grandes eficacias de separación de plaquetas mediante recirculación
Un valor medio alto de plaqueta MPV para las plaquetas recogidas es deseable ya que denota una gran eficacia de separación para la primera fase de separación y para todo el sistema. La mayor parte de las plaquetas tienen como media entre 8 y 10 femtólitros, medidos con la máquina Symex K-1000 (los glóbulos rojos más pequeños empiezan en alrededor de 30 femtólitros). La minoría restante de población de plaquetas constituye las plaquetas que son físicamente más grandes. Estas plaquetas más grandes ocupan normalmente unos 15 x 10^{-15} litros por plaqueta, y algunas son mayores de 30 femtólitros.
Estas plaquetas más grandes se asientan en la interfaz RBC de la primera cámara de separación más rápidamente que la mayoría de las plaquetas. Es probable que estas plaquetas más grandes queden atrapadas en la interfaz RBC y no entren en el PRP para ser recogidas. La separación eficaz de plaquetas en la primera cámara de separación eleva las plaquetas más grandes de la interfaz para ser recogidas en el PRP. Esto a su vez da como resultado una población mayor de plaquetas más grandes en el PRP, y por tanto un mayor MPV.
La figura 11, que deriva de datos clínicos, muestra que la eficacia de separación de plaquetas, expresada en términos de MPV, es altamente dependiente del hematocrito entrante de WB que entra en la cámara de procesamiento de la primera fase. Esto es particularmente cierto en hematocritos del 30% e inferiores, donde se pueden obtener aumentos sustanciales en las eficacias de separación.
En base a este análisis, la función de utilidad F4 establece una cantidad para recircular PRP de vuelta a la entrada de la primera fase de separación Q_{recic} para conseguir un hematocrito entrante deseado H_{i} seleccionado para obtener un MPV alto. La función de uso general F4 selecciona H_{i} en función de la siguiente Ec. de equilibrio de glóbulos rojos:
Ec. (29)Q_{recirc} = [ ( H_{b}/H_{i} ) - 1] \ x \ Q_{b}
En una aplicación preferida, H_{i} no es mayor de aproximadamente el 40% y, más preferiblemente, oscila alrededor del 23%.
B. Velocidad de infusión de citrato
El citrato que está en el anticoagulante se metaboliza rápidamente en el cuerpo, permitiendo así su continua infusión en el PPP de retorno durante el proceso. Sin embargo, en un nivel de la infusión de citrato, los donantes sufren una toxicidad de citrato. Estas reacciones varían en resistencia y en naturaleza y los diferentes donantes tienen niveles de umbral diferentes. En base a datos empíricos, se cree que una velocidad de infusión de citrato asintomática nominal (CIR) es de aproximadamente 1,25 mg/kg/minuto. Esto se basa en datos empíricos que muestran de manera virtual que todos los donantes pueden tolerar aféresis cómodamente con medidas de caudal de sangre anticoagulada de 45 ml/minuto con una relación de anticoagulante (ACD-A anticoagulante) de 10:1.
Teniendo en cuenta que el citrato no entra en los glóbulos rojos, la cantidad administrada al donante puede reducirse recogiendo de manera continua porciones de plasma durante el proceso, que lleva a cabo el sistema. Al hacer esto, al donante se le puede administrar una medida de caudal mayor que la que se esperaba. La medida de caudal de sangre equivalente asintomática máxima (EqQb_{cir}) (en ml/minuto) en estas condiciones se cree que es:
Ec. (30)EqQb_{CIR} = [ CIR x (AC + 1) x Wgt ] / Conc.Citrato
donde:
CIR es la velocidad de infusión de citrato asintomático nominal, ó 125 mg/kg/minuto.
AC es la proporción de anticoagulante seleccionado, ó 10:1.
Wgt es el peso del donante (kg).
Conc.Citrato es la concentración de citrato en el anticoagulante seleccionado, que es de 21,4 mg/ml para el anticoagulante ACD-A.
C. Caudal óptimo de sangre anticoagulada
El volumen restante de plasma que vuelve al donante es igual a la cantidad total disponible menos la cantidad que todavía tiene que recogerse. Esta proporción la utiliza la función F5 (ver figura 5) para determinar la medida de caudal de sangre asintomática máxima u óptima (Qb_{opt}) (en ml/minuto) que puede sacarse del donante, de la siguiente manera:
Qb_{opt}=\frac{(1-H_{b}) \ x \ Vb_{rem}}{(1-H_{b}) \ x \ Vb_{rem}-(PPP_{propuesto}-PPP_{actual})} \ x \ EqQ_{CIR}
donde:
H_{b} es el hematocrito anticoagulado que se ha calculado usando la Ec. (7) en función de las condiciones de procesamiento actuales.
Vb_{rem} es el volumen restante que se va a procesar, que se ha calculado usando la Ec. (19) en función de la condiciones de procesamiento actuales.
EqQB_{CIR} es la medida de caudal de sangre equivalente de citrato que se ha calculado usando la Ec. (30) en función de las condiciones de procesamiento actuales.
PPP_{propuesto} es el volumen de plasma total que se va a recoger (ml).
PPP_{actual} es el volumen de plasma actual recogido (ml).
VII. Tiempo de proceso estimado
La función de utilidad F6 (ver figura 7) establece un tiempo de proceso estimado (t) (en minutos) que predice el tiempo de recogida antes de conectar al donante. Para establecer el tiempo de proceso estimado t, la función de utilidad F6 necesita que el operador introduzca la producción deseada Prod_{propuesta} y el volumen de recogida de plasma deseado PPP_{propuesto}, y también necesita el peso del donante Wgt, el prerrecuento de plaquetas Plt_{pre} y el hematocrito H_{b} o un número por defecto estimado. Si el operador necesita parámetros de almacenamiento de plaquetas recomendados, la función de utilidad necesita la introducción de MPV.
La función de utilidad F6 establece el tiempo de proceso estimado t de la siguiente manera:
Ec. (32)t=\frac{-b+\sqrt{b^{2}-4ac}}{2a}
donde:
Ec. (33)a=\frac{H_{aq}-H_{b}}{(1-H_{b})}EqQb_{CIR}
Ec. (34)b=\frac{(H_{eq}-H_{b}-\lambda H_{b}EqQb_{CIR})PPP}{(1-H_{b})^{2}}-H_{Eq}PV
Ec. (35)c=\left[PV-\frac{PPP}{(1-H_{b})^{2}}\right]\frac{\lambda H_{b}PPP}{(1-H_{b})}
y donde:
H_{Eq} es una expresión linealizada del hematocrito RBC H_{RBC}, de la siguiente manera:
Ec. (36)H_{Eq} = \text{0,9489} - \lambda H_{b}EqQb_{CIR}
donde:
H_{b} es una estimación real o por defecto del hematocrito anticoagulado del donante.
EqQb_{CIR} es la máxima medida de caudal de sangre equivalente asintomática calculada según la Ec. (30)
y
Ec. (37)\lambda = \text{61,463} / \Omega^{2}
donde:
\Omega es la velocidad de rotación de la cámara de procesamiento (rpm).
y donde:
PPP es el volumen deseado de plasma que se va a recoger (ml).
PV es el volumen parcial procesado que es el volumen que necesitaría ser procesado si la eficacia de separación global \eta_{plt} fuese del 100%, de la siguiente manera:
Ec. (38)PV=\frac{ClrVol}{\eta_{Anc} \ x \ \eta_{2^{a}fase} \ x \ ACDil}
donde:
ACDil es el factor de dilución de anticoagulante (Ec. (2)).
ClrVol es el volumen purificado, establecido como:
4
\vskip1.000000\baselineskip
donde:
Prod es la producción deseada de plaquetas.
DonVol es el volumen de sangre del donante = 1.024 + 51Wgt (ml)
Cebadura es el volumen de cebadura secundaria de sangre del sistema (ml).
ACD_{EST} es el volumen de anticoagulante estimado que se va a usar (ml).
Plt_{Pre} es el recuento de plaquetas del donante antes del procesamiento, o una estimación por defecto del mismo.
Ind.esplénico es el factor de movilización esplénica que se ha calculado usando Ec. (16) en función de Plt_{Pre}.
La función F6 también establece el volumen de sangre completa que se necesita procesar para obtener la Prod_{propuesta} deseada. Este volumen de procesamiento, WBVol se expresa de la siguiente manera:
WBVol=t \ x \ EqQb_{CIR} \ x \ \frac{PPP_{Propuesto}}{(1-H_{b})}+WB_{RES}
\newpage
donde:
t es el tiempo estimado de proceso que se establece según la Ec. (32).
H_{b} es el hematocrito anticoagulado del donante o una estimación por defecto del mismo.
EqQb_{CIR} es la máxima medida de caudal de sangre equivalente asintomática que se ha calculado según la Ec. (30).
PPP_{Propuesto} es el volumen de recogida de plasma deseado.
WB_{RES} es el volumen residual de sangre completa que queda en el sistema después del procesamiento, que es una variable conocida del sistema y depende del volumen de cebadura del sistema.
En las siguientes reivindicaciones se describen varias características de la invención.

Claims (21)

1. Sistema para separar plaquetas de la sangre que comprende:
un dispositivo de separación para dividir sangre en plasma y plaquetas,
una entrada en el dispositivo de separación para transportar sangre anticoagulada que contiene plasma y plaquetas procedentes del donante al dispositivo de separación para dividirla en producción de plasma y producción de plaquetas, y
un procesador acoplado en el dispositivo de separación que incluye
medios para determinar un volumen de sangre incremental procesado durante una sucesión de periodos de tiempo incrementales durante la fase de separación,
medios para calcular una eficacia de separación del dispositivo de separación durante cada periodo de tiempo incremental,
medios para calcular un recuento actual de plaquetas que se puede obtener del donante durante cada periodo de tiempo incremental,
medios para multiplicar el volumen de sangre incremental determinado durante cada periodo de tiempo incremental por el recuento de plaquetas actual calculado para cada periodo de tiempo incremental y por la eficacia de separación calculada para cada periodo de tiempo incremental, para establecer una producción de plaquetas incremental para cada periodo de tiempo incremental,
medios para sumar las producciones incrementales de plaquetas durante la sucesión de periodos de tiempo incrementales para obtener la producción establecida de plaquetas, y
medios para generar una salida en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
2. Sistema para separar plaquetas de la sangre que comprende
un dispositivo de separación para dividir sangre en plasma y plaquetas,
una entrada en el dispositivo de separación para transportar sangre anticoagulada que contiene plasma y plaquetas procedentes del donante al dispositivo de separación para dividirla en producción de plasma y producción de plaquetas, y
un procesador acoplado en el dispositivo de separación que incluye
medios para determinar un volumen purificado incremental que comprende un volumen incremental de sangre del que se han recogido todas las plaquetas durante una sucesión de periodos de tiempo incrementales durante la fase de separación,
medios para calcular un recuento actual de plaquetas que se pueden obtener del donante durante cada periodo de tiempo incremental,
medios para multiplicar el volumen purificado incremental determinado para cada periodo de tiempo incremental por el recuento de plaquetas actual calculado para cada periodo de tiempo incremental para establecer una producción de plaquetas incremental para cada periodo de tiempo incremental,
medios para sumar las producciones incrementales de plaquetas durante la sucesión de periodos de tiempo incrementales para obtener la producción establecida de plaquetas, y
medios para generar una salida teniendo en cuenta, al menos en parte, la producción establecida de plaquetas.
3. Sistema según la reivindicación 1 ó 2, en donde los medios para generar una salida proporcionan un valor que representa un volumen de sangre adicional que es necesario procesar con el fin de obtener una producción deseada de plaquetas en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
4. Sistema según la reivindicación 1 ó 2, en donde los medios para generar una salida, proporcionan un valor que representa el tiempo restante de procesamiento en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
5. Sistema según la reivindicación 1 ó 2,
que incluye además una salida en el dispositivo de separación para recoger una parte de la producción de plasma, y
en donde los medios para generar una salida, proporcionan un valor que representa la velocidad con la que se recoge el plasma en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
6. Sistema según la reivindicación 1 ó 2, en donde los medios para generar una salida, proporcionan un valor que representa el volumen total de anticoagulante que se espera usar en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
7. Método para separar plaquetas de la sangre que comprende las fases de:
transportar continuamente sangre anticoagulada que contiene plasma y plaquetas desde el donante hasta la cámara de separación, y al mismo tiempo
dividir de manera sustancialmente continua la sangre en una producción de plasma y una producción de plaquetas,
establecer, al menos en parte mientras que se está produciendo la fase de separación, la producción de plaquetas
determinando un volumen de sangre incremental procesado durante una sucesión de periodos de tiempo incrementales durante la fase de separación,
calculando una eficacia de separación para el dispositivo de separación durante cada periodo de tiempo incremental,
calculando un recuento actual de plaquetas que se puede obtener del donante durante cada periodo de tiempo incremental,
multiplicando el volumen de sangre incremental determinado para cada periodo de tiempo incremental por el recuento actual calculado de plaquetas para cada periodo de tiempo incremental y por la eficacia de separación calculada para cada periodo de tiempo incremental para establecer una producción de plaquetas incremental para cada periodo de tiempo incremental, y
sumando de manera continua las producciones de plaquetas incrementales durante la sucesión de periodos de tiempo incrementales para obtener la producción establecida de plaquetas, y
generar una salida teniendo en cuenta, al menos en parte, la producción establecida de plaquetas.
8. Método para separar plaquetas de la sangre que comprende las fases de:
transportar continuamente sangre anticoagulada que contiene plasma y plaquetas desde el donante hasta la cámara de separación, y al mismo tiempo
dividir de manera sustancialmente continua la sangre en una producción de plasma y una producción de plaquetas,
establecer, al menos en parte, mientras que se está produciendo la fase de separación, la producción de plaquetas,
determinando un volumen depurado incremental que comprende un volumen de sangre incremental del que se han recogido todas las plaquetas durante una sucesión de periodos de tiempo incrementales durante la fase de separación,
calculando un recuento actual de plaquetas que se pueden obtener del donante durante cada periodo de tiempo incremental,
multiplicando el volumen depurado incremental determinado para cada periodo de tiempo incremental por el recuento actual calculado de plaquetas para cada periodo de tiempo incremental para establecer una producción de plaquetas incremental para cada periodo de tiempo incremental, y
sumando de manera continua las producciones de plaquetas incrementales durante la sucesión de periodos de tiempo incrementales para obtener la producción establecida de plaquetas, y
generar una salida teniendo en cuenta, al menos en parte, la producción establecida de plaquetas.
9. Método según la reivindicación 8, en donde la fase que consiste en determinar el volumen purificado incremental incluye, para cada periodo de tiempo incremental, tener en cuenta un factor de eficacia para la fase de separación (\eta_{plt}), un volumen incremental de sangre que se procesa durante cada periodo de tiempo incremental (\DeltaVOL_{Proc}) y un factor de dilución de anticoagulante (ACDil) según la siguiente expresión:
Volumen Depurado Incremental = ACDil x \eta_{plt} \ x \ \Delta VOL_{Proc}
10. Método según la reivindicación 9, en donde ACDil se establece de la siguiente manera:
ACDil = AC / (AC + 1)
donde:
AC es la relación seleccionada entre volumen de sangre completa y volumen de anticoagulante.
11. Método según la reivindicación 7 u 8, en donde la fase que consiste en calcular el recuento actual de plaquetas (Plt_{Circ}) tiene en cuenta el recuento de plaquetas del donante antes de la fase de transporte (Plt_{pre}), el cálculo del factor de dilución producido por la adición de anticoagulante (Dilución) y una estimación de un factor de reducción (Reducción) producido por la retirada de plaquetas disponibles mediante la fase de separación, según la siguiente expresión:
Plt_{circ} = [(Dilución) \ x \ Plt_{pre}] - (Reducción)
12. Método según la reivindicación 11, en donde en la fase en la que se calcula un recuento actual de plaquetas (Plt_{Circ}), el factor de dilución (Dilución) se calcula en base a la siguiente expresión:
Dilución=1-\frac{Cebadura+Kid-PPP}{DonVol}
donde:
Cebadura es un volumen de fluido de cebadura (ml).
ACD es un volumen de anticoagulante (ml).
PPP es el volumen de producción de plasma que no vuelve al donante (ml).
Kid es una constante determinada empíricamente que representa la eliminación que hace el riñón de cristaloides.
DonVol (ml) es el volumen total de sangre del donante.
13. Método según la reivindicación 12, en donde DonVol se establece como:
DonVol = 1.024 + 51Wgt (r^{2} = 0,87)
donde:
Wgt es el peso del donante (kg).
14. Método según la reivindicación 11, en donde en la fase en la que se calcula el recuento actual de plaquetas (Plt_{Circ}), el factor de reducción (Reducción) se calcula de la siguiente manera:
Reducción = \frac{\text{100.000}Prod}{Ind.esplénico \ x \ DonVol}
donde:
Prod es la producción establecida de plaquetas (k/\mul) en el momento en el que se calcula la Reducción.
DonVol es el volumen total de sangre del donante (ml).
Ind.esplénico es el factor de movilización esplénica (Índice esplénico).
15. Método según la reivindicación 14, en donde el índice esplénico es una función del recuento de plaquetas circulantes del donante.
16. Método según la reivindicación 15, en donde el índice esplénico se expresa de la siguiente manera:
Ind.esplénico = a-b(Plt_{Pre})
donde:
a es la ordenada en el origen de una curva de la función del índice esplénico,
b es la pendiente de la curva de la función del índice esplénico,
Plt_{Pre} es el recuento de las plaquetas circulantes del donante.
17. Método según la reivindicación 15, en donde el índice esplénico se expresa de la siguiente manera:
Ind.esplénico = [\text{2,25} - \text{0,004} \ Plt_{pre}] \geq 1
donde:
Plt_{pre} es el recuento de plaquetas circulantes del donante.
18. Método según la reivindicación 7 u 8, en donde la fase que consiste en generar una salida incluye establecer un valor que represente un volumen de sangre adicional necesario para procesarlo con el fin de obtener una producción deseada de plaquetas en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
19. Método según la reivindicación 7 u 8, en donde la fase que consiste en generar una salida incluye establecer un valor que represente el tiempo restante de procesamiento en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
20. Método según la reivindicación 7 u 8,
y que incluye además la fase de recoger al menos una parte de la producción de plasma, y
en donde la fase que consiste en generar una salida incluye establecer un valor que represente la velocidad con la que se recoge la parte de plasma en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
21. Método según la reivindicación 7 u 8, en donde la fase que consiste en generar una salida incluye establecer un valor que represente el volumen total de anticoagulante que se espera usar en función, al menos en parte, de la producción establecida de plaquetas.
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