EP1290020A1 - Substrat peptidique reconnu par la toxine botulique de type bont/b et son utilisation pour doser et/ou detecter ladite toxine ou des inhibiteurs correspondants - Google Patents

Substrat peptidique reconnu par la toxine botulique de type bont/b et son utilisation pour doser et/ou detecter ladite toxine ou des inhibiteurs correspondants

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EP1290020A1
EP1290020A1 EP01940658A EP01940658A EP1290020A1 EP 1290020 A1 EP1290020 A1 EP 1290020A1 EP 01940658 A EP01940658 A EP 01940658A EP 01940658 A EP01940658 A EP 01940658A EP 1290020 A1 EP1290020 A1 EP 1290020A1
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leu
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lys
bont
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EP01940658A
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Inventor
Bernard Pierre Roques
Christine Anne
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Centre National de la Recherche Scientifique
Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale
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Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale
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Definitions

  • a first aspect of the invention therefore relates to a peptide substrate recognized by the botulinum toxin of the BoNT / B type, characterized in that it incorporates into its peptide structure a fragment of formula

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Abstract

La présente invention a pour objet un substrat peptidique reconnu par la toxine botulique de type BoNT/B, caractérisé en ce qu'il incorpore dans sa structure peptidique un fragment de formule PyA-(Z)-pNF dans laquelle Z représente un ou plusieurs acides aminés, ledit fragment étant clivable par ladite toxine.

Description

SUBSTRAT PEPTIDIQUE RECONNU PAR LA TOXINE BOTULIQUE DE TYPE BoNT/B
ET SON UTILISATION POUR DOSER ET/OU DETECTER LADITE TOXINE OU DES
INHIBITEURS CORRESPONDANTS.
La présente invention a pour objet un procédé pour détecter, identifier et/ou caractériser la toxine botulique de type B ou des inhibiteurs et/ou activateurs de ladite toxine.
La neurotoxine botulique de type B (BoNT/B) fait partie d'une famille de sept protéines structurellement apparentées (toxines botuliques A à G) produites par diverses souches du bacille anaerobie «clostridium botuliniu ». Les deux formes les plus fréquemment rencontrées sont les toxines botuliques de type A et B. Les neurotoxines botuliques sont les toxines les plus puissantes connues avec des doses létales 50 chez la souris de l'ordre de 0,1 à 0,3 ng/kg. Elles agissent au niveau du système nerveux périphérique de l'homme et de diverses espèces animales en induisant le « botulisme » qui est caractérisé par une paralysie flasque des muscles du squelette entraînant la mort.
La forme majeure d'intoxication par ces toxines est due à l'ingestion de nourriture contaminée. Ces protéines peuvent constituer une arme biologique potentielle dans la mesure où elles sont faciles à produire. Enfin, depuis plusieurs années, les toxines botuliques de type A et également de type B sont également utilisées pour des applications thérapeutiques, dans le cadre de dystonies, d'hyperactivité mononeuronale, telle que strabisme, blepharosphasme.
Les neurotoxines botuliques sont constituées de deux sous- unités : une chaîne lourde (~ 100 KDA) associée à une chaîne légère (~ 50 KDA) par un pont disulfure. La chaîne lourde intervient dans la liaison de la toxine à la terminaison nerveuse, dans l'internalisation puis dans la translocation de la chaîne légère dans le cytosol. La chaîne légère est responsable de la toxicité de la protéine par inhibition de la libération, Ca2+ dépendante, de l'acétylcholine. La chaîne légère ne peut manifester sa toxicité que lorsqu'elle est séparée (réduction du pont disulfure) de la chaîne lourde, mais elle n'est pas capable de pénétrer seule à l'intérieur des terminaisons nerveuses (Montecucco et al. (1994) FEBS Lett. 346, 92-98). La toxicité de la chaîne légère de ces toxines est due à son activité peptidasique. En effet, les toxines botuliques appartiennent à la famille des métallopeptidases à zinc et plus particulièrement à la sous- famille des zincines qui contiennent la séquence consensus HExxH (Schiavo et al. (1992) J. Biol. Chem. 267(33), 23479-23483). Elles clivent de façon très spécifique les protéines neuronales impliquées dans l'exocytose des neurotransmetteurs. Ainsi, la syntaxine et la SNAP 25 sont dégradées par les toxines botuliques A, C et E, alors que la synaptobrevine (VAMP) est clivée par la toxine tétanique et les toxines botuliques B, D, F et G. Il est important de noter que le site de clivage de ces protéines par les toxines est différent, sauf pour la BoNT/B et la toxine tétanique qui clivent la synaptobrevine au niveau de la liaison Q76-F77.
L'approche la plus efficace pour combattre les effets néfastes de la BoNT/B, soit au cours d'un botulisme déclaré, soit au cours de contre- indications thérapeutiques, est le développement d'inhibiteurs sélectifs et de haute affinité pour son activité métallopeptidasique, responsable de sa toxicité. Toutefois, l'identification de tels inhibiteurs exige un test simple et robotisable de mise en évidence de l'activité BoNT/B permettant un grand nombre d'essais.
Or, les tests actuellement disponibles ne sont pas totalement satisfaisants. Ils sont soit longs, soit peu sensibles et/ou inappropriés à une mise en œuvre comme méthode de criblage à haut débit.
Actuellement, la méthode de détection la plus sensible des toxines botuliques repose sur un essai in vivo chez la souris (Kautter & Salomon (1976) J. Assoc. Anal. Chem. 60, 541-545). Cet essai permet de détecter de 5 à 10 pg de toxine, mais le temps de réponse est beaucoup trop long (3-4 jours), le sérotype de la toxine n'est pas connu et enfin l'expérimentation sur animal est très controversée. Des essais sur lignées cellulaires ont été tentés (DeWaart et al. (1972) Zentralblatt fur Bactériologie 222, 96-114), mais leur sensibilité est trop faible. Des dosages immunologiques ont également été proposés mais aucun ne présente une sensibilité suffisante, même après amplification de la réponse (Stanley et al. (1985) J. Immunol. Methods 83, 89-95 ; Doellgast et al. (1993) J. Clin. Microbiol. 31, 2402-2409). Un test colorimétrique relativement sensible a été proposé (Szilaggi et al. (2000) Toxicon 35 381- 389) pour la BoNT/B, mais il met en jeu une succession d'étapes qui le rend non robotisable.
D'autres essais actuellement développés reposent sur l'utilisation de l'activité endopeptidasique de ces toxines (Hallis et al. (1996) J. Clin. Microbiol. 34, 1934-1938). Ceci implique le clivage par la BoNT/B d'un fragment de synaptobrevine immobilisée sur support solide et détection par un anticorps spécifique de l'extrémité N-terminale nouvellement créée par clivage et qui demeure sur la résine. Un dernier protocole consiste à immobiliser la toxine sur une colonne d'affinité. Par passage sur cette colonne, le substrat est clivé et le fragment est reconnu par un anticorps [Witcome et al. (1999) Applied and environmental microbiology 65 3787- 3792]. Toutefois, ces essais ne sont pas encore optimisés et sont très difficilement robotisables.
La présente invention a précisément pour objet de proposer un nouveau test de détection permettant de s'affranchir des inconvénients évoqués précédemment. En particulier, la présente invention repose sur la mise en évidence par les inventeurs que l'utilisation de la pyrenylalanine (PyA) associée à l'acide modifié L-paranitrophénylalanine (pNF) est particulièrement intéressante à la fois en terme de diagnostic et de détermination des pouvoirs inhibiteurs de l'activité enzymatique adaptable à des méthodes à haut débit. La pyrenylalanine est un acide aminé synthétique qui possède une capacité de fluorescence importante. Avantageusement, cette fluorescence du reste P A est quasi totalement éteinte lorsque PyA est placé à proximité du reste pNF. En conséquence, cette fluorescence naturelle du PyA ne peut se manifester qu'à partir du moment où ce reste n'est plus soumis à l'effet répresseur du reste pNF, par exemple lorsqu'il en est physiquement séparé de ce dernier, notamment par clivage de la séquence les séparant.
Ce couple apparaît donc comme un outil particulièrement intéressant lorsqu'il est présent au niveau d'un substrat peptidique reconnu par la BoNT/B sous la forme d'un fragment clivable par cette dernière.
Un premier aspect de l'invention concerne donc un substrat peptidique reconnu par la toxine botulique de type BoNT/B, caractérisé en ce qu'il incorpore dans sa structure peptidique un fragment de formule
PyA-(Z)-pNF dans laquelle Z représente un ou plusieurs acides aminés, ledit fragment étant clivable par ladite toxine.
La présente invention repose donc sur la détection d'une fluorescence provoquée par la séparation de PyA et pNF, cette séparation étant induite par . le clivage d'une des liaisons établies entre eux. Le clivage par la BoNT/B produit une très intense augmentation de fluorescence. La figure 1 illustre ce phénomène.
Z peut ainsi comprendre jusqu'à 4 acides aminés et de préférence représente 2 acides aminés identiques ou différents. Cet ajustement est lié à la nécessité de préserver la spécificité et l'efficacité de BoNT/B pour cliver le substrat incluant PyA-(Z)-pNF. Le choix de Z est par conséquent effectué en prenant en compte ces deux critères.
Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le reste peptidylë PyA-Z-pNF est présent, dans la séquence peptidique du substrat cellulaire reconnu par la BoNT/B, au niveau de son site de clivage auquel il se substitue.
De préférence, le reste PyA-(Z)-pNF répond à la définition PyA- Ser-GIn-pNF (SEQ ID N°1). Ce fragment est clivable par la toxine BoNT/B au niveau de la liaison Gln-pNF.
De préférence, le substrat correspond au fragment 60-94 de la synaptobrevine modifiée à partir de la position 74 et de formule 1s (SEQ ID N°2):
60 Leu-Ser-Glu-Leu-Asp-Asp-Arg-Ala-Asp-Ala-Leu-Gln-Ala-
74 Gly-Pya-(Z)— pNF-Gtu-Ser-Ala-Ala-Lys-Leu-Lys-Tyr- (1S)
Trp-Trp-Lys-Asn-Leu-Lys
avec Z étant tel que défini précédemment.
Le clivage a pour effet de générer le métabolite de formule 1 m (SEQ ID N°3) :
60
Leu-S er- Glu-Leu- Asp- Asp- Arg- Ala- Asp- Ala-Leu- Gin- A - . 74 (1 m)
Gly-Pya-(Z') avec 71 représentant un ou plusieurs acides aminés présent(s) dans Z.
Ce métabolite constitue également un des objets de la présente invention.
Plus préférentiellement, le substrat peptidique est le substrat 2s (SEQ ID N°4) suivant : Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
74 À 77
Gly ya)- Ser - Gin J(@)- Glu - Ser - Ala - Ala - Lys - Leu - Lys - Tyr -
T 94
Trp - Trp - Lys - Asn - Leu - Lys
(2s) Son clivage sélectif au niveau de la liaison Gln76-pNF77 par la BoNT libère le métabolite fluorescent de formule 2m (SEQ ID N°5) :
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
(2m) Les composés revendiqués peuvent être obtenus par les méthodes usuelles de synthèse en phase solide selon la méthode de Merrifield sur un synthétiseur automatique comme par exemple l'appareil 431 A de Applied Biosystems. La chimie utilisée correspond à la technologie Fmoc et la protection des chaînes latérales permettant leur clivage par l'acide trifluoroacétique tel que décrit par E. Atherton et R.C. Sheppard (1989) dans "Solid Phase Peptide Synthesis : a practical approach, IRL Press, Oxford".
La L-pyrenylalanine est obtenue selon un procédé de synthèse asymétrique décrit dans la publication Soleilhac, J.M. et al. Anal. Biochem. (7996J 241, 120-127. La pureté des peptides finaux est estimée supérieure à 99% par HPLC en phase inverse et l'identification de ceux-ci est effectuée par spectrométrie de masse electrospray.
Les couplages sont effectués selon des techniques conventionnelles à l'aide d'agent de couplage comme HATU, PyBrop et de préférence en utilisant dicyclohexylcarbodiimide / hydroxybenzotriazole.
Un substrat conforme à la présente invention est intéressant à plusieurs titres.
Il peut permettre de détecter rapidement au sein d'une substance la présence éventuelle de la toxine botulique de type B. Les substrats 1s et 2s présentent en particulier une très haute sélectivité vis à vis des autres toxines botuliques car seule la BoNT/B clive la synaptobrevine au niveau de la liaison Q76-F77. Il est également très sélectif vis à vis de la toxine tétanique (Soleilhac et al. (1996) Anal. Biochem. 241, 120-127). II rend également possible le criblage à haut débit d'inhibiteurs potentiels de la toxine botulique de type B.
En conséquence, la présente invention concerne l'utilisation d'un substrat tel que défini précédemment pour détecter, identifier et/ou doser la BoNT/B ou un composé capable d'inhiber ou d'activer la BoNT/B. Selon une variante préférée de l'invention, le composé à doser est un composé capable d'inhiber la BoNT/B.
La présente invention a également pour objet un procédé pour détecter, identifier et/ou doser un composé capable d'inhiber la BoNT/B, caractérisé en ce qu'il comprend : - la mise en présence en solution d'un substrat conforme à l'invention avec ladite BoNT/B, et au moins un composé susceptible d'inhiber la BoNT/B,
- la mesure de la fluorescence émise en présence, et/ou en absence, du composé à détecter, identifier et/ou doser, avec l'absence ou une diminution de fluorescence indiquant la présence d'un composé inhibiteur de la BoNT/B.
Un composé auquel on applique le test défini ci-dessus pour déterminer son activité inhibitrice de la BoNT/B peut être de nature diverse, sans limitation, et par exemple, peut être choisi parmi des inhibiteurs récemment publiés [L. Martin (1999) J. Med. Chem. 42 515-
525].
Le composé à tester peut se présenter sous une forme isolée, être connu ou non et/ou être présent dans une banque de composés, un extrait biologique. Selon une variante préférée, le substrat est : 60 Leu-Ser-Glu-Leu-Asp-Asp-Arg-Ala-Asp-Ala-Leu-Gln-Ala-
74 Gly-Pya-(Z) — pNF-Glu-Ser-Ala-Ala-Lys-Leu-Lys-Tyr-
Trp-Trp-Lys-Asn-Leu-Lys
(1s)
et plus préférentiellement
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
74 À 77
Gly §})- Ser - Gin -(@)- Glu - Ser - Ala - Ala - Lys - Leu - Lys - Tyr -
T 94
Trp - Trp - Lys - Asn - Leu - Lys
(2s)
L'addition de doses croissantes d'un composé capable d'inhiber l'activité enzymatique de la BoNT/B vis-à-vis d'un substrat conforme à la présente invention, se traduira par une diminution de l'intensité de la fluorescence due à la diminution de la quantité de métabolite, formé par la BoNT/B. La mesure de cette intensité rapportée à une courbe étalon établie par mélanges du substrat et du métabolite fluorescent formé permet donc soit d'évaluer le pouvoir inhibiteur en pourcentage d'inhibition à une concentration donnée fixe du produit P, soit de déterminer précisément son IC50 puis son K] à l'aide du Km du substrat et de plusieurs concentrations du produit P.
L'extrême sensibilité du dosage permet d'opérer dans des volumes très faibles (50 ou 100 μl) avec des concentrations de l'ordre de 20 μM du substrat 2s. Le test est donc très facilement utilisable en plaques à 96 puits ou plus, permettant sa robotisation avec détermination automatique des K| lorsque le fluorimetre de lecture est relié à un ordinateur possédant un logiciel commercial approprié. La présente invention propose donc un test d'identification d'inhibiteurs de la BoNT/B ainsi que la détermination de leur pouvoirs inhibiteurs par un essai fluorimétrique, très rapide, reproductible et permettant des tests robotisables et très nombreux pouvant donc s'adapter à une sélection à haut débit de molécules inhibitrices.
La présente invention propose également la production de produits industriels nouveaux, éventuellement utilisables sous forme de kits comprenant des plaques de 96, 192 et 384 puits prêts à l'emploi et contenant soit la BoNT/B lyophilisée, soit un substrat tel que défini selon l'invention et illustré dans le cas de 1s et 2s, auxquels on ajoute, éventuellement par utilisation d'un robot, les réactifs nécessaires à la détermination des pouvoirs inhibiteurs de séries de molécules.
Un autre aspect de l'invention concerne une méthode de diagnostic de la présence de BoNT/B en particulier dans des aliments éventuellement contaminés, caractérisée en ce qu'elle met en œuvre un substrat conforme à l'invention et de préférence de type 1s ou plus préférentiellement 2s.
Les figures et exemples ci-après sont présentés à titre illustratif et non limitatif de la présente invention.
Figures :
Figure 1 : Fluorescence des métabolites et substrat en émission (excitation à 343 nm). Figure 2 : Mesure des constantes cinétiques du substrat.
Figure 3 : Fluorescence en fonction de la quantité d'enzyme.
Figure 4 : Détermination du Ki du composé 2s dans L. Martin et al. (1999) J. Med. Chem. 42, 515-525) sur la BoNT/B. Ki(BoNT/B)=5.6 10"6M EXEMPLES
EXEMPLE 1
PREPARATION DES PEPTIDES.
Le peptide 2s et son métabolite 2m sont préparés en phase solide par la méthode de Merrifield sur un synthétiseur automatique en utilisant la stratégie Fmoc et la protection des chaînes latérales sous forme de groupements t.butyl, trityl ou Boc comme décrit dans "Solid Phase Peptide Synthesis : a practical approach, IRL Press, Oxford (1989)". La L-pyrénylalanine est obtenu selon un procédé de synthèse asymétrique précédemment mis au point (Soleilhac et al. (1996) Anal. Biochem. 241, 120-127). Les couplages sont effectués principalement par utilisation de dicyclohexylcarbodiimide/hydroxy-benzotriazole dans le N-méthyl- pyrrolidone. On peut avantageusement utiliser le HATU en présence de diisopropyléthylamine pour l'introduction de la pyrenylalanine dans la séquence peptidique. Le peptide final est obtenu après clivage de la résine et déprotection des chaînes latérales par l'acide trifluoroacétique. La solution est évaporée sous vide et le peptide est précipité dans l'éther à -20°C et purifié par HPLC sur une colonne nucléosyl C8. Les peptides sont analysés par spectromètre de masse et RMN 1 H (600 MHz).
Composé 2s :
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
Gly Pya)- Ser - Gin çNF)- Glu - Ser - Ala - Ala - Lys - Leu - Lys - Tyr -
T 94
Trp - Trp - Lys - Asn - Leu - Lys H+ (exp) 4269.04 MH o) 4269.20 Composé 2m :
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
Gly -@)- Ser - Gin
MH+ (eXp) 1959.83 MH+ (theo) 1958.06
La toxine botulique de type B utilisée pour des tests à haut débit correspond à la chaîne légère de la BoNT/B, accessible commercialement
(Sigma, France Biochem). Elle peut également être isolée par clivage de la protéine entière (chaînes légères et lourdes) produite par des souches de clostridium botulinum de type B.
EXEMPLE 2
ESSAI FLUORIMETRIQUE.
On incube le substrat 2s (18 μm) pendant 30 minutes avec 0.35 ng de chaîne légère de BoNT/B à 37°C dans 100 μl de tampon HEPES 20 mM, pH 7.4 et 0.1 mM de DTT. On arrête l'hydrolyse enzymatique par addition de 100 μl HCl 0.2 N, et on lie directement la fluorescence émise sur un fluorimetre (λex 343 nm, λΘm 377 nm). Dans ces conditions, on obtient moins de 10% de clivage de substrat, (figure 2)
Identification du site de clivage par HPLC.
Les solutions du substrat 2s avant et après incubation avec l'enzyme dans les conditions standard décrites ci-dessus, sont analysées par HPLC sur une colonne nucléosyl C8 7 μm/300 A (4.6 x 70 mm) avec comme éluant un gradient 10-90% de solvant B en 30 minutes (solvant A, 0.05% d'acide trifluoacétique dans l'eau ; solvant B 0.038% d'acide trifluoroacétique dans CH3CN/H2O 90/10). Détection UV ou fluorimétrique, temps de rétention du substrat S : 15.90 mn ; métabolite M : 12.76 mn.
Mesure des constantes cinétiques du substrat. Dans 100 μl de tampon HEPES 20 mM pH 7.4 et 0.1 mM DTT, on incube pendant 30 minutes à 37CC, 0.23 ng de chaîne légère de BoNT/B et des concentrations variables (de 3.9 à 500 μM) de substrat S. La réaction est arrêtée comme décrit ci-dessus. Pour chaque concentration de substrat, une courbe de calibration représentant 5, 10, 15 et 20% de clivage est établie par mélange du substrat S et de son métabolite fluorescent M (Figure 2).
Le pourcentage de clivage doit toujours être inférieur à 10%.
A partir de ces courbes de calibration, les quantités de métabolites formées pour chaque essai sont déterminées et les valeurs de Km calculées à partir du programme Enzfitter (Biosoft) Km = 47 μM ; kcat = 45 s"1.
EXEMPLE 3 DOSAGE DES QUANTITES MINIMALES DE BoNT/B DANS UN
ECHANTILLON.
On incube pendant 4 h à 37°C dans le tampon HEPES 20 mM pH 7.4 et 0.1 mM DTT le substrat 2s (18 μM) et des quantités croissantes (3.5 pg, 10 pg et 35 pg) de chaîne légère de BoNT/B. L'analyse de la fluorescence, due à la dégradation du substrat en présence de 3.5 pg de toxine, est reproductible et significativement différente (p = 0.01) de celle du témoin contenant uniquement le substrat 2s (Figure 3).
EXEMPLE 4 DETERMINATION DU Kl D'INHIBITEURS DE LA BoNT/B.
Cet essai peut être robotisé sur plaque de 96 puits. On préincube dans 100 μl final de tampon HEPES 20 mM et 0.1 mM DTT, des quantités croissantes d'inhibiteurs choisis dans L. Martin et al. (1999) J. Med. Chem.
42 515-525 et 0.35 ng de chaîne légère de BoNT/B pendant 30 minutes. On ajoute alors 18 μM de substrat 2s et l'incubation est poursuivie pendant 30 minutes à 37°C. La réaction est stoppée par addition de HCl 0.2 M et la lecture de la plaque se fait directement sur un fluorimetre.
La quantité de métabolite formé dans chaque essai est déterminée à partir des courbes étalon. Le Ki de l'inhibiteur est déterminé à partir de la relation de Cheug
Prussoff : K, = IC50/(1 + [S]/KM) (Figure 4).

Claims

REVENDICATIONS
1. Substrat peptidique reconnu par la toxine botulique de type BoNT/B, caractérisé en ce qu'il incorpore dans sa structure peptidique un fragment de formule PyA-(Z)-pNF dans laquelle Z représente un ou plusieurs acides aminés, ledit reste étant clivable par ladite toxine.
2. Substrat selon la revendication 1 , caractérisé en ce que Z comprend jusqu'à 3 acides aminés, et de préférence 1 ou 2 acides aminés, identiques ou différents.
3. Substrat selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que le substrat répond à la formule 1 s :
60
Leu-Ser-Glu-Leu-Asp-Asp-Arg-Ala-Asp-Ala-Leu-Gln-Ala-
74 ,Λ
Gly-Pya-(Z)— pNF-Glu-Ser-Ala-Ala-Lys-Leu-Lys-Tyr- S
Trp-Trp-Lys-Asn-Leu-Lys
avec Z étant tel que défini en revendication 1 ou 2.
4. Substrat selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le fragment PyA-(Z)- pNF répond à la définition PyA-Ser-GIn-pNF.
5. Substrat selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il s'agit du substrat 2s, de formule : 60 - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala - Ser - Ala - Ala - Lys - Leu - Lys - Tyr -
(2s)
6. Composé caractérisé en ce qu'il répond à la formule 1 m :
60 Leu-Ser-Glu-Leu-Asp-Asp-Arg-Ala-Asp-Ala-Leu-Gln-Ala-
74 (1 m)
Gly-Pya-(Z') avec Z' représentant un ou plusieurs acides aminés présent(s) dans Z tel que défini en revendications 1 à 4.
7. Composé selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il répond à la formule 2m :
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
(2m)
8. Utilisation d'un substrat selon l'une des revendications 1 à 5, pour détecter, identifier et/ou doser la BoNT/B ou un composé capable d'inhiber la BoNT/B.
9. Procédé pour détecter, identifier et/ou doser un composé capable d'inhiber la BoNT/B, caractérisé en ce qu'il comprend :
- la mise en présence en solution d'un substrat selon l'une des revendications 1 à 5, avec la BoNT/B et au moins un composé susceptible d'inhiber ou d'activer la BoNT/B ; - la mesure de la fluorescence émise en présence et/ou en absence du composé à détecter, identifier et/ou doser avec l'absence ou une diminution de fluorescence indiquant la présence d'un composé inhibiteur de la BoNT/B.
10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que le composé à tester est connu ou non et/ou est présent dans une banque de composés ou un extrait biologique.
11. Procédé selon la revendication 9 ou 10, caractérisé en ce que le substrat est le substrat 1s :
60 Leu-Ser-Glu-Leu-Asp-Asp-Arg-Ala-Asp-Ala-Leu-Gln-Ala-
74 Gly-Pya-(Z) — pNF-Glu-Ser-Ala-Ala-Lys-Leu-Lys-Tyr-
Trp-Trp-Lys-Asn-Leu-Lys
avec Z tel que défini en revendication 1.
12. Procédé selon la revendication 9 ou 10, caractérisé en ce que le substrat est le substrat 2s :
60
Leu - Ser - Glu - Leu - Asp - Asp - Arg - Ala - Asp - Ala - Leu - Gin - Ala
74 k 77
Gly Pya)- Ser - Gin J(JDNF)- Glu - Ser - Ala - Ala - Lys - Leu - Lys - Tyr -
T 94
Trp - Trp - Lys - Asn - Leu - Lys
(2s)
13. Méthode de diagnostic de la présence de BoNT/B, caractérisée en ce qu'elle met en œuvre un substrat selon l'une des revendications 1 à 5.
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