EA026659B1 - Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent - Google Patents
Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent Download PDFInfo
- Publication number
- EA026659B1 EA026659B1 EA201600105A EA201600105A EA026659B1 EA 026659 B1 EA026659 B1 EA 026659B1 EA 201600105 A EA201600105 A EA 201600105A EA 201600105 A EA201600105 A EA 201600105A EA 026659 B1 EA026659 B1 EA 026659B1
- Authority
- EA
- Eurasian Patent Office
- Prior art keywords
- sorbent
- precipitate
- tartaric acid
- solution
- supernatant
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу получения сорбента для выделения и очистки генно-инженерного препарата рекомбинантного интерферона (ИФН).The invention relates to the field of biotechnology, and in particular to a method for producing a sorbent for the isolation and purification of a genetically engineered preparation of recombinant interferon (IFN).
ИФН обладает широким спектром биологического действия: проявляет антивирусную и противоопухолевую активность, ингибирует рост клеток, оказывает иммунорегулирующее действие. Рекомбинантные интерфероны относятся к белкам, с молекулярной массой 15-25 кДа. Основными этапами при выделении рекомбинантного ИФН являются культивирование клеток микроорганизмов, их механическое разрушение, осветление клеточного гомогената. Дальнейшее выделение и очистка ИФН осуществляется различными способами, в частности с помощью хроматографии на различных сорбентах.IFN has a wide spectrum of biological effects: it exhibits antiviral and antitumor activity, inhibits cell growth, and has an immunoregulatory effect. Recombinant interferons are proteins with a molecular weight of 15-25 kDa. The main stages in the isolation of recombinant IFN are the cultivation of microorganism cells, their mechanical destruction, clarification of the cell homogenate. Further isolation and purification of IFN is carried out in various ways, in particular by chromatography on various sorbents.
Так, известен способ дальнейшего выделения и очистки ИФН из белкового материала [1], включающий хроматографию на ΟΛΕ-γ-геле и две последующие хроматографии на СМ-целлюлозе.Thus, a method is known for further isolation and purification of IFN from protein material [1], including chromatography on ΟΛΟ-γ gel and two subsequent chromatography on CM-cellulose.
Известен также способ очистки ИФН [2], включающий хроматографию на сорбенте Сйе1айпд 8ерйатоке Раз! Р1о\у с иммобилизованными ионами Си2+, ионообменную хроматографию на СМ-8ерЬато5е и гель-фильтрацию на сорбенте типа 8ирегЛех 75.There is also a method of purification of IFN [2], including chromatography on a sorbent Sje1aypd 8ryatok Time! P1o \ y with immobilized Cu 2+ ions , ion-exchange chromatography on CM-8perOate5e and gel filtration on a sorbent of type 8regLex 75.
Для очистки ИФН может быть использована хроматография на СМ-Тоуореаг1, ИЕАЕ-Тоуореат1, гель-фильтрация на Тоуореаг1 Н\У-55 и концентрирование белка с помощью ПЭГ 3000 (из 1 г биомассы выделяют примерно 6,5 мг белка) [3].For purification of IFN, chromatography on SM-Touoreag1, IEAE-Touoreat1, gel filtration on Touoreag1 H \ U-55 and protein concentration using PEG 3000 can be used (approximately 6.5 mg of protein is isolated from 1 g of biomass) [3].
Известен также способ получения рекомбинантного ИФН человека [4], включающий обработку клеток после их разрушения полиэтиленимином, отделение нуклеиновых кислот, высаливание белков сернокислым аммонием, трёхстадийную хроматографию на катион-гидрофобном сорбенте Солоза КГ, на анионите Сфероцелл-ОАЕ и на гидрофобном сорбенте Сфероцелл ЛП-М, концентрирование методом ультрафильтрации и гель-фильтрацию на 8ерЬаЛех 0-100.There is also a method for producing recombinant human IFN [4], which includes treating cells after their destruction with polyethyleneimine, separating nucleic acids, salting out proteins with ammonium sulfate, three-stage chromatography on a cation-hydrophobic sorbent of Solosa KG, on anion exchanger Spherocell-OAE and on hydrophobic sorbent Lent Sorbent M, concentration by ultrafiltration and gel filtration on 8pLaLex 0-100.
Недостатками этих способов является длительность процесса, многостадийность и невозможность масштабирования, что во многом определяется свойствами используемых при хроматографии сорбентов.The disadvantages of these methods are the duration of the process, multi-stage and the inability to scale, which is largely determined by the properties of the sorbents used in chromatography.
В то же время известно, что аффинная хроматография отличается чрезвычайно высокой избирательностью, присущей биологическим взаимодействиям. Нередко одна хроматографическая процедура позволяет очистить нужный белок в тысячи раз. Однако осуществление такой хроматографии возможно только на аффинных сорбентах, что не всегда оказывается лёгкой задачей ввиду опасности утраты биологическими молекулами способности к специфическому взаимодействию в ходе их ковалентного присоединения к матрице. Кроме того, все известные из уровня техники сорбенты для очистки и выделения ИФН не пригодны для использования в качестве аффинных сорбентов.At the same time, affinity chromatography is known to be characterized by the extremely high selectivity inherent in biological interactions. Often, one chromatographic procedure allows you to purify the desired protein thousands of times. However, the implementation of such chromatography is possible only on affinity sorbents, which is not always an easy task because of the danger of biological molecules losing the ability to interact specifically during their covalent attachment to the matrix. In addition, all sorbents known from the prior art for purification and isolation of IFN are not suitable for use as affinity sorbents.
Из уровня техники известно использование кальция винно-кислого для получения специфических сорбентов. Так, известен способ получения сорбента на основе кальция винно-кислого и гепарина, который используется для очистки плазмы крови от липопротеинов методом колоночной хроматографии [5]. В данном способе смешивают равные объёмы водного раствора, содержащего 6,85 мас.% хлорида кальция, и водного раствора, содержащего 8,98 мас.% калий-натрия или натрия винно-кислого и 0,09 мас.% гепарина, перемешивают и отмывают образовавшиеся кристаллы сорбента физиологическим раствором. Однако данный сорбент используется только в качестве липосорбента, имеет сложный (комплексный) состав и, кроме того, не обладает свойствами аффинного сорбента.The prior art use of calcium tartaric acid to obtain specific sorbents. So, there is a known method of producing a sorbent based on calcium tartaric acid and heparin, which is used to purify blood plasma from lipoproteins by column chromatography [5]. In this method, equal volumes of an aqueous solution containing 6.85 wt.% Calcium chloride and an aqueous solution containing 8.98 wt.% Potassium sodium or tartaric acid sodium and 0.09 wt.% Heparin are mixed, mixed and washed formed sorbent crystals with saline. However, this sorbent is used only as a liposorbent, has a complex (complex) composition and, in addition, does not have the properties of an affinity sorbent.
Таким образом, из уровня техники не известны простые по составу сорбенты для очистки и выделения ИФН, которые бы обеспечивали существенное упрощение технологии очистки и выделения. С учётом этого прототип для заявляемого способа не выявлен.Thus, the sorbents for the purification and isolation of IFN, which would provide a significant simplification of the technology of purification and isolation, are not known from the prior art. Given this prototype for the proposed method is not identified.
Задачей изобретения является разработка способа получения нового аффинного сорбента для выделения и очистки рекомбинантного ИФН. Сорбент должен иметь максимально простой состав и обеспечивать при этом существенное упрощение процесса выделения и очистки ИФН посредством одностадийной хроматографии и, соответственно, сокращение времени получения ИФН в существенных количествах.The objective of the invention is to develop a method for producing a new affinity sorbent for the isolation and purification of recombinant IFN. The sorbent should have the simplest possible composition and at the same time provide a significant simplification of the process of isolation and purification of IFN by means of single-stage chromatography and, accordingly, a reduction in the time required to obtain IFN in significant quantities.
Настоящее изобретение базируется на получении сорбента для хроматографии на основе нерастворимой соли винной кислоты (кальций виннокислый, КВ).The present invention is based on the preparation of a sorbent for chromatography based on an insoluble salt of tartaric acid (calcium tartrate, KB).
Поставленная задача решается заявленным способом получения сорбента на основе кальция виннокислого для выделения и очистки рекомбинантного интерферона, при котором смешивают равные объёмы водного 0,3-0,7 М раствора соли винной кислоты, выбранной из группы, включающей калий-натрий винно-кислый и натрий винно-кислый, и водного 0,5-0,9 М раствора хлористого кальция, перемешивают при температуре 20-22°С, образовавшимся кристаллам дают осесть, после чего супернатант декантируют и осадок подвергают термической обработке с последующими, по меньшей мере, однократными промыванием и уравновешиванием буферным раствором до получения целевого сорбента.The problem is solved by the claimed method of producing a sorbent based on calcium tartrate for the isolation and purification of recombinant interferon, in which equal volumes of an aqueous 0.3-0.7 M solution of tartaric acid salt selected from the group consisting of potassium tartaric acid and sodium are mixed tartaric acid, and an aqueous 0.5-0.9 M calcium chloride solution, stirred at a temperature of 20-22 ° C, the crystals formed were allowed to settle, after which the supernatant was decanted and the precipitate was subjected to heat treatment, followed by at least m with a single wash and equilibration with a buffer solution until the desired sorbent is obtained.
В предпочтительных формах реализации заявляемого способа для термической обработки к осадку приливают ранее декантированный и нагретый до 80-90°С супернатант и перемешивают в течение 20-30 мин с последующими осаждением осадка и декантированием супернатанта.In preferred embodiments of the inventive method for heat treatment, the supernatant previously decanted and heated to 80-90 ° C is poured into the precipitate and stirred for 20-30 minutes, followed by precipitation of the precipitate and decantation of the supernatant.
Также предпочтительными являются формы реализации, в которых для уравновешивания и промывания к прошедшему термическую обработку осадку добавляют 0,75 М раствора хлористого натрия, приготовленного на буфере на основе трис-НС1, рН 8,0-8,3, перемешивают в течение 10-15 мин и дают осадку осесть, полученный осадок промывают и добавляют (1,05 М трис-НС1, рН 8,0-8,3, содержащимAlso preferred are implementation forms in which, to balance and rinse, a 0.75 M sodium chloride solution prepared on a Tris-HC1 buffer, pH 8.0-8.3, is added to the heat-treated precipitate, and mixed for 10-15 min and let the precipitate settle, the resulting precipitate is washed and added (1.05 M Tris-HCl, pH 8.0-8.3, containing
- 1 026659- 1,026,659
0,03 М Ναί'Ί. с получением целевого сорбента.0.03 M Ναί'Ί. to obtain the target sorbent.
Поставленная задача решается также заявляемым сорбентом на основе кальция виннокислого для выделения и очистки рекомбинантного интерферона, полученным описанным выше способом.The problem is also solved by the claimed sorbent based on calcium tartrate for the isolation and purification of recombinant interferon obtained by the above method.
Проведенные исследования и эксперименты показали, что полученный заявляемым способом сорбент специфически взаимодействует с ИФН и проявляет при этом свойства аффинного сорбента. Сорбционная ёмкость сорбента составляет 2,0-2,5 мг/мл. Заявленный способ при своей простоте позволяет в короткий срок и в препаративных количествах получать сорбент, который, в свою очередь, практически за 1 цикл хроматографии позволяет получать очищенный биологически активный белок (активность не менее 1,6х 107 МЕ/мг) - рекомбинантный ИФН.Studies and experiments showed that the sorbent obtained by the claimed method specifically interacts with IFN and exhibits the properties of an affinity sorbent. The sorption capacity of the sorbent is 2.0-2.5 mg / ml. The claimed method with its simplicity allows for a short time and in preparative quantities to obtain a sorbent, which, in turn, for almost 1 chromatography cycle allows you to get purified biologically active protein (activity of at least 1.6 x 10 7 IU / mg) - recombinant IFN.
Достоинства и преимущества заявляемых способа получения сорбента на основе кальция виннокислого для выделения и очистки рекомбинантного интерферона, а также полученного указанным способом сорбента будут ниже проиллюстрированы с помощью поясняющих материалов, на которых представлены полученные по результатам экспериментов данные.The advantages and advantages of the proposed method for producing a sorbent based on calcium tartrate for the isolation and purification of recombinant interferon, as well as the sorbent obtained by the specified method, will be illustrated below with the help of explanatory materials, on which data obtained from experimental results are presented.
На фиг. 1 приведена микрофотография кристаллов кальция винно-кислого; на фиг. 2 приведены результаты δΌδ-электрофореза в полиакриламидном геле (ПААГ) выделенного белка - очищенного γИФН; на фиг. 3 приведены масс-спектры выделенного γ-ИФН.In FIG. 1 shows a micrograph of calcium crystals of tartaric acid; in FIG. 2 shows the results of δΌδ-polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) of the isolated protein - purified γ IFN; in FIG. 3 shows the mass spectra of the selected γ-IFN.
Масс-спектрометрия осуществлялась на МАЛДИ масс-спектрометрической системе серии Мюгойех ЬЕР (Вгикег Ωαΐΐοηίοδ СшЬН, Германия) в линейном режиме.Mass spectrometry was carried out on a MALDI mass spectrometric system of the Mühoyeh LEP series (Vgikeg Ωαΐΐοηίοδ СшЬН, Germany) in a linear mode.
Достоинства и преимущества заявляемых способа получения сорбента на основе кальция виннокислого для выделения и очистки рекомбинантного интерферона, а также полученного указанным способом сорбента подтверждаются также некоторыми примерами получения и использования сорбента.The advantages and advantages of the proposed method for producing a sorbent based on calcium tartrate for the isolation and purification of recombinant interferon, as well as the sorbent obtained by the specified method are also confirmed by some examples of the preparation and use of the sorbent.
Пример 1. Получение сорбента на основе кальция винно-кислого (КВ).Example 1. Obtaining a sorbent based on calcium tartaric acid (KB).
К 500 мл 0,3 М раствора калий-натрия винно-кислого приливают 500 мл 0,5 М раствора хлористого кальция и перемешивают в течение 5 мин с использованием механического перемешивающего устройства при температуре 20°С. Образовавшимся шаровидным кристаллам КВ дают осесть (время оседания частиц 15 мин). Супернатант декантируют, нагревают до 80 °С и приливают к осадку КВ. После перемешивания осадку дают осесть и тщательно декантируют супериатант. К осадку добавляют 150 мл 0,75 М хлористого натрия в буферном растворе трис-НС1, рН 8,2, перемешивают в течение 10 мин. В результате получают 125 мл суспензии сорбента. Полученный сорбент промывают и уравновешивают раствором, содержащим 0,05 М трис-НС1, рН 8,0-8,3 и 0,03 М №С1.500 ml of a 0.5 M solution of potassium-tartaric acid are added to 500 ml of a 0.5 M solution of calcium chloride and stirred for 5 minutes using a mechanical stirring device at a temperature of 20 ° C. The KB spherical crystals formed are allowed to settle (particle settling time 15 min). The supernatant is decanted, heated to 80 ° C and poured to a precipitate KV. After stirring, the precipitate is allowed to settle and the superiatant is carefully decanted. To the precipitate was added 150 ml of 0.75 M sodium chloride in Tris-HCl buffer solution, pH 8.2, and stirred for 10 minutes. The result is 125 ml of a suspension of sorbent. The resulting sorbent is washed and equilibrated with a solution containing 0.05 M Tris-HCl, pH 8.0-8.3 and 0.03 M No. C1.
Пример 2. Получение сорбента на основе КВ.Example 2. Obtaining a sorbent based on KB.
К 500 мл 0,7 М раствора натрия виннокислого приливают 500 мл 0,9 М раствора хлористого кальция и перемешивают в течение 10 мин с использованием механического перемешивающего устройства при температуре 22°С. Образовавшимся шаровидным кристаллам КВ дают осесть (время оседания частиц 15 мин). Супернатант декантируют, нагревают до 90 °С и приливают к осадку КВ. После перемешивания осадку дают осесть и тщательно декантируют супернатант. К осацку добавляют 200 мл 0,75 М хлористого натрия в буферном растворе трис-НС1, рН 8,3, перемешивают в течение 15 мин. В результате получают 130 мл суспензии сорбента. Полученный сорбент промывают и уравновешивают раствором, содержащим 0,05 М Трис-НС1, рН 8,0-8,3 и 0,03 М №С1.500 ml of a 0.9 M solution of calcium chloride are added to 500 ml of a 0.7 M sodium tartaric acid solution and stirred for 10 minutes using a mechanical stirring device at a temperature of 22 ° C. The KB spherical crystals formed are allowed to settle (particle settling time 15 min). The supernatant is decanted, heated to 90 ° C and poured to a precipitate KV. After stirring, the precipitate was allowed to settle and the supernatant was carefully decanted. 200 ml of 0.75 M sodium chloride in Tris-HCl buffer solution, pH 8.3, is added to Osaska, stirred for 15 minutes. The result is 130 ml of a suspension of sorbent. The resulting sorbent is washed and equilibrated with a solution containing 0.05 M Tris-HCl, pH 8.0-8.3 and 0.03 M No. C1.
Микрофотография полученных кристаллов сорбента на основе кальция виннокислого приведена на фиг. 1.A micrograph of the obtained crystals of a sorbent based on calcium tartrate is shown in FIG. one.
Пример 3. Выделение и очистка рекомбинантного ИФН.Example 3. Isolation and purification of recombinant IFN.
Выделение и очистку рекомбинантного ИНФ проводили на примере рекомбинантного бычьего γИНФ с предварительным получением белкового материала следующим образом.Isolation and purification of recombinant INF was carried out using the example of recombinant bovine γINF with preliminary preparation of protein material as follows.
Получение биомассы клеток Е. сой, накапливающих рекомбинантный ИФНObtaining biomass of E. soy cells accumulating recombinant IFN
Биомассу бактериальных клеток, накапливающих бычий ИФН-у, получают в ходе регулируемого культивирования в ферментере с рабочим объёмом 10 л. Посевную культуру объёмом 500 мл предварительно выращивают на качалке при 37 °С, 180 об/мин в течение 12 часов.The biomass of bacterial cells accumulating bovine IFN-y is obtained during controlled cultivation in a fermenter with a working volume of 10 l. A 500 ml seed crop is pre-grown on a shaker at 37 ° C, 180 rpm for 12 hours.
Среда для культивирования имеет следующий состав (г/л): пептон бактериологический - 10; дрожжевой экстракт - 5; Ναί'Ί - 10; ΝΉ4Ο - 1; глюкоза - 1; глицерин - 10; лактоза - 10; антибиотики: канамицин - 30 МЕ/мл, хлорамфеникол - 15 МЕ/мл.The culture medium has the following composition (g / l): bacteriological peptone - 10; yeast extract - 5; Ναί'Ί - 10; ΝΉ 4 Ο - 1; glucose - 1; glycerin - 10; lactose - 10; antibiotics: kanamycin - 30 IU / ml, chloramphenicol - 15 IU / ml.
Условия культивирования: температура 37°С; рН 6,5-7,3; концентрация растворенного кислорода не менее 60%; обороты мешалки - 500 об/мин в начале культивирования и 1000 об/мин в конце; давление 0 бар в начале и 2 бара в конце культивирования; продолжительность культивирования составляет 9 ч.Cultivation conditions: temperature 37 ° C; pH 6.5-7.3; the concentration of dissolved oxygen is not less than 60%; mixer revolutions - 500 rpm at the beginning of cultivation and 1000 rpm at the end; pressure 0 bar at the beginning and 2 bar at the end of cultivation; cultivation time is 9 hours
Получение белкового материалаObtaining protein material
Биомассу собирают центрифугированием на проточной центрифуге при 35000 об/мин. Собранную биомассу (8 г) ресуспендируют в 250 мл буфера следующего состава: 50 ммоль/л трис-НС1, рН 10,2, 30 ммоль/л №С1, коктейль ингибиторов протеаз, и разрушают на гомогенизаторе высокого давления при 1000-1200 бар. Полученный гомогенат клеток центрифугируют при 20000 д 30 мин при 4°С, супернатант пропускают через фильтр с диаметром пор 0,45 мкм и используют для выделения рекомбинантного бычьего γ-ИФН.Biomass is collected by centrifugation in a flow centrifuge at 35,000 rpm. The collected biomass (8 g) was resuspended in 250 ml of buffer of the following composition: 50 mmol / L Tris-HCl, pH 10.2, 30 mmol / L No. C1, a cocktail of protease inhibitors, and destroyed on a high pressure homogenizer at 1000-1200 bar. The resulting cell homogenate is centrifuged at 20,000 d for 30 min at 4 ° C, the supernatant is passed through a filter with a pore diameter of 0.45 μm and used to isolate recombinant bovine γ-IFN.
- 2 026659- 2 026659
Выделение и очистка бычьего у-ИФНIsolation and purification of bovine y-IFN
К 30 мл КВ по примеру 1, суспендированного в 50 ммоль/л трис-НС1, рН 8,0, содержащем 30 ммоль/л хлористого натрия, приливают 250 мл полученного описанным выше способом белкового материала, перемешивают 20 мин, дают осадку осесть, супернатант декантируют. Суспензию сорбента переносят в хроматографическую колонку, промывают 0,1 М раствором хлористого натрия, рН 8,0 и адсорбированный белок элюируют 0,75 М раствором хлористого натрия, рН 8,0.To 30 ml of CV in Example 1 suspended in 50 mmol / L Tris-HCl, pH 8.0, containing 30 mmol / L sodium chloride, 250 ml of the protein material obtained by the above method are added, stirred for 20 minutes, the precipitate is allowed to settle, supernatant decanted. The sorbent suspension is transferred to a chromatographic column, washed with 0.1 M sodium chloride solution, pH 8.0, and the adsorbed protein is eluted with a 0.75 M sodium chloride solution, pH 8.0.
Результаты δΌδ-электрофореза в полиакриламидном геле (ПААГ) выделенного белка - очищенного γ-ИФН приведены на фиг. 2.The results of δΌδ-polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) of the isolated protein — purified γ-IFN are shown in FIG. 2.
Характеристики полученного γ-ИФН определяли также посредством масс-спектрометрии на МАЛДИ масс-спектрометрической системе серии Мютойех ЬКЕ (Вгикег Эа11оп1С5 СтЬН, Германия) в линейном режиме. Масс-спектры выделенного γ-ИФН приведены на фиг. 3.The characteristics of the obtained γ-IFN were also determined by mass spectrometry on a MALDI mass spectrometric system of the Mutoyeh LKE series (Vgikeg Ea11op1C5 STN, Germany) in a linear mode. The mass spectra of the isolated γ-IFN are shown in FIG. 3.
Аналогичные результаты получены для рекомбинантных ИНФ овцы, свиньи, человека.Similar results were obtained for recombinant INF of sheep, pig, and human.
Источники информацииInformation sources
1. Методы получения рекомбинантных белков-цитокинов. П. Эффективный метод выделения, очистки и ренатурации рекомбинантного γ-интерферона человека А.Н. Вульфсон, Р.В. Тихонов, С.Е. Печенов, В.Е. Клюшниченко, А.И. Мирошников. Биоорганическая химия, т. 23, №9, 1997 г., с. 721-7261. Methods for the production of recombinant cytokine proteins. P. An effective method for the isolation, purification, and renaturation of recombinant human γ-interferon A.N. Wulfson, R.V. Tikhonov, S.E. Pechenov, V.E. Klyushnichenko, A.I. Miroshnikov. Bioorganic chemistry, v. 23, No. 9, 1997, p. 721-726
2. Патент КИ 2242516, С1, опубл. 20.12.20042. Patent KI 2242516, C1, publ. 12/20/2004
3. Микробиологический журнал (ИА) т. 24, №3, 2012 г.3. Microbiological journal (IA) t. 24, No. 3, 2012
4. Патент КИ 2225722, С1, опубл. 20.03.20044. Patent KI 2225722, C1, publ. 03/20/2004
5. Патент ΒΥ № 17337 С1, опубл. 30.08.20135. Patent No. 17337 C1, publ. 08/30/2013
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EA201600105A EA026659B1 (en) | 2015-11-25 | 2015-11-25 | Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EA201600105A EA026659B1 (en) | 2015-11-25 | 2015-11-25 | Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
EA201600105A1 EA201600105A1 (en) | 2017-03-31 |
EA026659B1 true EA026659B1 (en) | 2017-05-31 |
Family
ID=58408286
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
EA201600105A EA026659B1 (en) | 2015-11-25 | 2015-11-25 | Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
EA (1) | EA026659B1 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1197725A1 (en) * | 1984-04-09 | 1985-12-15 | Институт биоорганической химии АН БССР | Method of obtaining inorganic sorbent for chromatography of biopolymers |
RU1770896C (en) * | 1991-01-03 | 1992-10-23 | Институт биоорганической химии АН БССР | Method of obtaining sorbent for liquid column chromatography |
-
2015
- 2015-11-25 EA EA201600105A patent/EA026659B1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU1197725A1 (en) * | 1984-04-09 | 1985-12-15 | Институт биоорганической химии АН БССР | Method of obtaining inorganic sorbent for chromatography of biopolymers |
RU1770896C (en) * | 1991-01-03 | 1992-10-23 | Институт биоорганической химии АН БССР | Method of obtaining sorbent for liquid column chromatography |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EA201600105A1 (en) | 2017-03-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2526391C2 (en) | Lipopeptide purification method | |
KR101831300B1 (en) | Method of purifying human granulocyte-colony stimulating factor from recombinant e. coli | |
JP2008536878A (en) | Method for isolating and purifying immunomodulatory polypeptides from bovine placenta | |
Caprioli et al. | A cell division-active protein from E. coli | |
US4508833A (en) | Separation of interleukin-2 from phytohemagglutinin by dye matrix chromatography | |
BG65748B1 (en) | Method for purification of interferon | |
US20060024689A1 (en) | Process for the purification of recombinant proteins from complex media and purified proteins obtained thereby | |
KR102186997B1 (en) | Novel method of protein purification | |
Jimat et al. | PURIFICATION AND PARTIAL CHARACTERIZATION OF L-ASPARAGINASE ENZYME PRODUCED BY NEWLY ISOLATE BACILLUS SP. | |
US4485038A (en) | Method for the production and purification of human leukocyte interferon | |
CA2553733C (en) | Process for producing lactoperoxidase | |
CN111676261A (en) | Preparation process of high-purity recombinant interleukin-2 | |
EA026659B1 (en) | Method for producing affinity sorbent, and affinity sorbent | |
CN114409756B (en) | Application of flounder complement component C3 (PoC 3) | |
CN113789319B (en) | Method for separating maggot kinase from fly maggots and application thereof | |
RU2230325C2 (en) | Method for preparing purified preparation of botulinic toxin type a | |
CN1250567C (en) | Method of purifying calcium ion-binding protein | |
JP4841749B2 (en) | Method for producing purified antigen | |
CN117886918B (en) | Recombinant BMP2 protein renaturation solution and preparation method of recombinant BMP2 protein | |
DE102004010928B4 (en) | Protein for binding prokaryotic DNA and methods for the separation and accumulation of prokaryotic DNA | |
RU2225441C1 (en) | Method for preparing collagenase preparation | |
JPH0779709B2 (en) | Purification of GM-CSF | |
JPS63132898A (en) | Separation and purification of protein | |
RU2237719C2 (en) | Method for preparing lipopolysaccharides | |
WO2024036275A1 (en) | Methods for producing cyclic dinucleotides |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): AM AZ KG TJ TM |
|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): KZ |