EA021352B1 - Способ получения липосомальной формы кверцетина - Google Patents
Способ получения липосомальной формы кверцетина Download PDFInfo
- Publication number
- EA021352B1 EA021352B1 EA201201593A EA201201593A EA021352B1 EA 021352 B1 EA021352 B1 EA 021352B1 EA 201201593 A EA201201593 A EA 201201593A EA 201201593 A EA201201593 A EA 201201593A EA 021352 B1 EA021352 B1 EA 021352B1
- Authority
- EA
- Eurasian Patent Office
- Prior art keywords
- quercetin
- lactose
- emulsion
- phosphatidylcholine
- liposomes
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относится к фармацевтике. Способ включает смешивание этанольных растворов фосфатидилхолина и кверцетина, высушивание смеси в вакууме, её эмульгирование в водном растворе, гомогенизацию эмульсии с добавлением лактозы в виде водного раствора, поэтапную стерилизующую фильтрацию и лиофильное высушивание. Достигаемый результат состоит в стандартности и стабильности полученного препарата липосом (размер липосом представлен в узком диапазоне), содержащих кверцетин, высокой инкапсуляции кверцетина в липосомы, стабильности липосом в процессе хранения.
Description
Изобретение относится к фармацевтике и касается способа получения липосомального средства, содержащего в составе липосом физиологически активное вещество - кверцетин, который имеет широкий спектр действия: ранозаживляющее, ангиопротекторное, противовоспалительное, антиоксидантное.
Хорошо известно использование кверцетина [3] как кардиопротекторного средства, применяемого в комплексной терапии при остром нарушении коронарного кровообращения и инфаркте миокарда, для лечения и профилактики реперфузионного синдрома при хирургическом лечении больных с облитерирующим атеросклерозом брюшной аорты и периферических артерий. Кроме того, кверцетин применяют для профилактики и лечения местных лучевых поражений после рентген - и гамма-лучевой терапии; лечения пародонтоза и эрозивно-язвенных заболеваний слизистой оболочки ротовой полости. Высокая активность отличает кверцетин при приеме в офтальмологии.
Кверцетин представляет собой агликон многих растительных флавоноидных гликозидов следующей структурной формулы:
Вместе с тем, применение кверцетина в составе лекарственных препаратов ограничено свойствами кверцетина как продукта практически нерастворимого в водной среде, а, следовательно, и в физиологических жидкостях организма. Этот фактор обусловливает создание в основном пероральных форм выпуска кверцетина - порошков и гранул, что приводит к крайне низкой биодоступности препаратов на его основе.
Известны способы получения инъекционных препаратов кверцетина [5, 6]. В частности, известен способ получения, при котором кверцетин растворяют в водном растворе (при температуре 75-85°С), содержащем натрия тетроборат, трилон Б и поливинилпирролидон в соотношении 1:(0,7-1,0):(5,5-8,0):(0,010-0,015), охлаждают, фильтруют, разливают в ампулы и термически стерилизуют. Известен также способ получения кверцетина для парентерального введения, который предусматривает растворение кверцетина и поливинилпирролидона в этаноле при соотношении 9:1, нейтрализацию, стерилизацию, розлив во флаконы и лиофилизацию. Существенными недостатками этих методов является введение в состав препарата вспомогательных токсичных веществ - трилон Б и поливинилпирролидон, которые ограничено выводятся из организма человека, накапливаясь в печени и почках (поливинилпирролидон). Именно этот факт привел к запрету использования поливинилпирролидона во многих странах.
Указанные недостатки известных способов получения препаратов на основе кверцетина обусловливают снижение биодоступности и безвредности целевых продуктов.
Одним из приоритетных направлений развития современных фармацевтических технологий является разработка и создание терапевтических систем направленного действия. Для решения этой задачи с успехом применяются наносомальные носители лекарственных веществ, которые способны увеличивать нацеленность действия и обеспечивают увеличение биодоступности. За последние годы появились сообщения о включении кверцетина в наночастицы из различных полимерных носителей, пегилированные частицы и липосомы из природных и синтетических липидов [1, 2, 4, 8-10].
Перевести кверцетин в водорастворимое состояние возможно, включив его в мембрану липидов [12-14]. В литературе описаны методы преодоления лекарственными составами низкой растворимости фармацевтических субстанций в водных растворителях, в частности кверцетина. В частности, известен лекарственный препарат Липофлавон на основе липосомальной композиции, который представляет собой фосфатидилхолиновые ЛС с инкапсулированным в них биофлавоноидом - кверцетином, применяемый в виде инъекционной формы в кардиологии и в виде глазных капель [11].
Известно, что препараты кверцетина существенно уменьшают как гемодинамические нарушения, так и объем некротического повреждения при острой ишемии и реперфузии миокарда. Этот эффект обусловлен мембраностабилизирующим действием кверцетина, о чем свидетельствует резкое торможение деградации мембранных ферментов в ишемизированном миокарде, а также торможение активности липоксигеназ и неферментных прооксидантных реакций. Существует мнение, что важным фактором, определяющим кардиопротекторные свойства кверцетина, является его способность повышать уровень оксида азота в тканях и эндотелии миокарда. Этот эффект был экспериментально доказан в опытах на культуре эндотелиоцитов пупочной вены человека и в экспериментах ίη νίνο с прямым определением уровня оксида азота в миокарде и стенке сосудов кролика и при моделировании процессов ишемии/реперфузии миокарда у собак. Сложность использования кверцетина в клинике прежде всего связана с его гидрофобностью. Создание Липофлавона как липосомальной формы кверцетина позволило решить эту проблему. Эффективность Липофлавона была показана при лечении острого инфаркта, нестабильной стенокардии, а также реперфузионных нарушений при тромболитической терапии. У экспериментальных животных на модели острого инфаркта внутривенное введение Липофлавона приводило к стабилизации
- 1 021352 электрической активности сердца, улучшению коронарного кровообращения и уменьшению зоны некроза в два раза. Препарат производил выраженный противоаритмический эффект. По-видимому, терапевтический эффект Липофлавона обусловлен комплексным действием компонентов препарата и его липосомальной структурой: блокадой липооксигеназного пути метаболизма арахидоновой кислоты за счет присутствия в препарате кверцетина, а также антигипоксическим, антиоксидантным и мембранопротекторным действием фосфатадилхолиновых липосом. Установлена безопасность и отсутствие побочных реакций (аллергических, иммунотоксичных, местно-раздражающего действия) при введении препарата. При исследовании ишемической болезни сердца установлено, что терапия Липофлавоном больных в течение 7 дней приводит к клиническому улучшению течения заболевания: уменьшению тяжести частоты приступов стенокардии, уменьшению объема необходимой поддерживающей терапии, в том числе антигипертензивных препаратов. Липофлавон обладает антиагрегатными, эндотелиопротекторными свойствами, улучшает реологические свойства крови и кровоток в микрососудах. Проведены исследования эффективности Липофлавона в комбинации с другим известным антигипоксантом - ацелизином в условиях экспериментальной хронической сердечной недостаточности. Предметом исследования было изучение влияния приведенной комбинации на состояние энергетических ресурсов, активности ферментов энергетического метаболизма - лактатдегидрогеназы и креатинфосфокиназы. Было показано, что использование липосомальной формы кверцетина в комбинации с ацелизином позволяет на 7 сутки наблюдения существенно снизить в сыворотке крови и миокарде интенсивность свободнорадикального окисления. Лечение позволяет предупредить снижение активности ферментов, таких как супероксидисмутаза и каталаза. Было установлено, что Липофлавон обладает антирадикальными и антиоксидантными свойствами.
На основании проведенных исследований в клинике было рекомендовано применение Липофлавона : в комплексной терапии при остром инфаркте миокарда без патологического зубца О и нестабильной стенокардии приводит к более быстрой положительной динамике активности МВ-фракции креатинфосфокиназы в сыворотке крови, препятствует повышению уровня противовоспалительного цитокина интерлейкина-8, способствует электрической стабильности миокарда; при лечении стабильной стенокардии способствует уменьшению тяжести приступов стенокардии, снижению агрегации тромбоцитов, улучшению реологических показателей крови (снижению вязкости крови и агрегации эритроцитов) и микроциркуляции.
Известен способ [7] получения липосомальной композиции на основе природного фосфатидилхолина и кверцетина, который обладает фармакологической активностью. Способ [7] выбран наиболее близким аналогом по сумме признаков, а именно: сутью и последовательностью выполнения основных операций и приемов, химической природой фосфофолипида и кверцетина, липосомальной организацией целевого продукта и близостью его фармакотерапевтических проявлений.
Известный способ [7] предусматривает смешивание фосфатидилхолина в этиловом спирте и этанольного раствора кверцетина, который растворяют при температуре 47-53°С, высушивание смеси проводят при температуре 42-50°С, эмульгирование в водной среде, диспергирование эмульсии с добавлением лактозы, поэтапную стерилизующую фильтрацию и лиофильное высушивание при массовом соотношении кверцетин:лактоза 1:24-30.
Однако способ [7] предусматривает операции и методы, которые затрудняют реализацию способа и способствуют снижению качества липосомального продукта. Во-первых, это связано с недостатком в препарате криопротектора - лактозы (при массовом соотношении кверцетин:лактоза 1:24-30), что приводит к завышенным размерам липосом после лиофилизации. Во-вторых, проведение процесса гомогенизации эмульсии при 60 МПа ухудшает стабильность системы и может изменять образующуюся систему липосом, что затрудняет стерилизующую фильтрацию и требует поэтапной и стерилизующей фильтрации. В-третьих, предлагаемая в [7] система добавления лактозы (только по окончании гомогенизации) в липосомы не позволяет криопротектору находиться как внутри липосомы, так и в окружающем водном пространстве, что приводит к нестабильности продукта после лиофилизации.
Все это снижает эффективность способа-прототипа в процессе его воспроизводства, а также стабильность целевого продукта как химиотерапевтического средства.
Задачей заявленного способа является упрощение процесса получения, повышение качества липосомального препарата по показателям стабильности липосомальной структуры после лиофилизации продукта и преимущественное накопление кверцетина в сердечной мышце, что, в свою очередь, обеспечивает фармакологическую активность. При этом результат, полученный при решении поставленной задачи, состоит в стандартности и стабильности полученного препарата липосом (размер липосом представлен в узком диапазоне), содержащих кверцетин, высокой инкапсуляции кверцетина в липосомы, стабильности липосом в процессе хранения, возможности стерилизующей фильтрации без поэтапной фильтрации.
Для достижения поставленного результата предлагается способ получения липосомальной композиции на основе фосфатидилхолина и кверцетина, предполагающий смешивание этанольных растворов фосфатидилхолина и кверцетина, высушивание полученной смеси в вакууме, её эмульгирование в водном растворе, гомогенизацию эмульсии с добавлением лактозы (криопротектора) в виде водного раствора, поэтапную стерилизующую фильтрацию и лиофильное высушивание, при этом гомогенизацию про- 2 021352 водят в два этапа: первоначальный при давлении 500 атм, последующий при давлении 800 атм, лактозу добавляют дробно в два этапа: в начале и в процессе гомогенизации, при этом массовое соотношение компонентов в полученном препарате составляет кверцетин:лактоза 1:(31-76) соответственно.
Практические аспекты реализации способа предусматривают использование яичного фосфатидилхолина и кверцетина в органических растворителях, удаление растворителя упариванием в вакууме, диспергирование полученной массы в водной среде, гомогенизацию многослойных липосом при возрастающем давлении, добавление криопротектора как в начале гомогенизации, так и при достижении размера липосом 150-200 нм, получение липосом размером 80-140 нм, стерилизующую фильтрацию полученной липосомальной эмульсии, розлив во флаконы, лиофилизацию и герметизацию в атмосфере инертного газа (или азота).
Способ иллюстрируется графиками фармакокинетических профилей кверцетина в печени, мозге, почках и сердце крыс (фиг. 1-4 соответственно).
Эффективность заявляемого способа по качественной и количественной идентификации в готовом продукте липидного компонента - фосфатидилхолина оценивали методом тонкослойной хроматографии на пластинках по хроматограмме раствора целевого продукта в метанол:хлороформ:метанол - 65:25:4, на которой основное пятно желтого цвета находится на уровне основного пятна раствора стандартного образца фосфатидилхолина; индекс окисленности липидов оценивали УФ-спектроскопией при длинах волн 233 и 215 нм.
Эффективность заявляемого способа по качественной и количественной идентификации в готовом продукте кверцетина оценивали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии, которую проводили для количественного определения посторонних примесей и содержания кверцетина в образцах препарата. Использовали хроматограф δΐιίιηαάζιι Ыехега, колонка хроматографическая размером С18 4,6x250 мм, с размером частиц 5 мкм аналогичная, подвижная фаза: 1% раствор уксусной кислоты и раствор метанол:ацетонитрил; скорость подвижной фазы 1 мл/мин; детектирование при длине волны 71 нм; температура колонки 30°С.
Физико-химические свойства полученного липосомального препарата оценивали определением величины частиц липосом на наносайзере 2е1а^ег Ναηο Ζδ методом фотонной корреляционной спектроскопии. Размер частиц измеряли при помощи полупроводникового лазера при длине волны 375 нм.
Нижеследующие конкретные примеры иллюстрируют процесс получения липосомальной композиции согласно заявленному способу (примеры 1-7) и способу согласно прототипу (пример 8)
Пример 1.
Лактозу в количестве 54,25 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого, ДПФХ и др.) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (27,125 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) - 0,83 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,8%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (3 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (27,125 г). Объем эмульсии 2205 мл. Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,783 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации 138,2 нм - 87,1%, 57,8 нм - 12,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 98,88%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 165 нм - 87%; 75 нм - 13%; рН - 6,75. Включение кверцетина в липосомы не менее 96,2%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:31).
Пример 2.
Лактозу в количестве 93,625 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина ди- 3 021352 гидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого, ДПФХ и др.) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (46,81 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) - 0,83 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,8%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (3 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (46,81 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,8 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров, с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
148.2 нм - 93,1%; 70,8 нм - 6,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 96,88%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 154,3 нм - 100%; рН - 6,82. Включение кверцетина в липосомы не менее 97,2%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:51,3).
Пример 3.
Лактозу в количестве 133,0 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (66,5 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) - 0,825 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,8%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (3 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (66,5 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,787 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров, с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
138.2 нм - 87,1%; 57,8 нм - 12,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 96,88%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 148 нм - 87,8%; 57,8 нм - 12,2%; рН - 6,6. Включение кверцетина в липосомы не менее 95,12%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:26:76).
Пример 4.
Лактозу в количестве 54,25 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количест- 4 021352 венно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (27,125 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) - 0,827 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,8%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (4 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (27,125 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,784 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
148.2 нм - 92,1%; 67,8 нм - 7,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 98,85%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,4%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 139,6 нм - 94,8%; 42 нм - 5,2%; рН - 6,75. Включение кверцетина в липосомы не менее 93,9%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:31). В данном примере диспергирование при 500 атм - проводится 4 цикла.
Пример 5.
Лактозу в количестве 54,25 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (27,125 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) - 0,828 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,6%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (2 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (27,125 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,809 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров, с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
138.2 нм - 87,1%; 57,8 нм - 10,9%; 36,7 нм - 2% Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 96,88%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; Размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 143,0 нм - 85,4%; 61 нм - 11%; 42 нм -4,6%; рН - 6,55. Включение кверцетина в липосомы не менее 91,2%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:31). В данном примере проведено диспергирование при 500 атм - 2 цикла.
Пример 6.
Лактозу в количестве 35,0 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 105 мл стерильного раствора лактозы (17,5 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до
- 5 021352 полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) 0,825 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,6%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (3 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (17,5 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,787 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров, с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
148,2 нм - 88,1%; 67,8 нм - 11,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,775 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) 96,88%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 198 нм - 85,8%; 117,8 нм - 10,2%; 547 нм - 4%; рН - 6,6. Включение кверцетина в липосомы не менее 95,12%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:20). В данном примере проведено использование лактозы с уменьшенным количеством.
Пример 7.
Лактозу в количестве 93,625 г растворяли в фосфатной буферной смеси (рН 6,5-6,8) в объеме 210 мл. Раствор фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1750 мг растворяли в 150 мл этилового спирта. 47,25 г фосфатидилхолина (яичного, соевого, ДПФХ и др.) растворяли в 150 мл этилового спирта и перемешивали. Растворы кверцетина и фосфатидилхолина объединяли и фильтровали через мембраны с размером пор 0,22 мкм. Стерильные растворы переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при 41-45°С до получения тонкой пленки. Пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 15-20 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали смесью растворов: 1995 мл стерильного фосфатного буферного раствора (рН 6,5-6,8) и 210 мл стерильного раствора лактозы (93,625 г лактозы). Колбу с раствором перемешивали в течение 2 ч до полного растворения пленки. Проводили контроль эмульсии: концентрация кверцетина в эмульсии (определение методом ВЭЖХ) 0,783 мг/мл. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,8%.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 38-44°С. Первоначально создавали давление (3 цикла) 500 атм. Затем продолжали гомогенизацию при 800 атм до размера частиц не более 200 нм. При достижении указанного размера частиц в эмульсию добавляли оставшийся стерильный раствор лактозы 105 мл (46,81 г). Гомогенизацию проводили до размера частиц не более 130-150 нм. Концентрация кверцетина до стерилизующей фильтрации 0,780 мг/мл. Эмульсию фильтровали через каскад фильтров, с финишным фильтром размером пор 0,2 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1830 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации
148,2 нм - 93,1%; 70,8 нм - 6,9%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,700 мг/мл. Включение кверцетина в липосомы после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) 89,74%. Количество примесей на уровне исходной субстанции кверцетина не превышало 2,62%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц сохранен в нанодиапазоне - 134,3 нм - 92,4; 67 нм - 7,6%; рН - 6,82. Включение кверцетина в липосомы не менее 87,2%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:27:51,3). В данном примере добавление лактозы проводили в начале процесса диспергирования.
Пример 8 (по способу прототипа).
Точную навеску кверцетина дигидрата в количестве 1000 мг растворяли в 100 мл этилового спирта при температуре 50°С, прибавляли к раствору 40,0 г фосфатидилхолина, растворенного в 100 мл этилового спирта, и перемешивали. Раствор переносили в колбу ротационного испарителя. Этанол упаривали при температуре 42°С до получения тонкой пленки. После окончания процесса высушивания липидную пленку обрабатывали газообразным азотом в течение 5 мин. Полученную пленку со стенок колбы количественно снимали 1380 мл воды для инъекций. Колбу с эмульсией перемешивали в течение 2 ч.
Эмульсию переносили в гомогенизатор высокого давления и проводили гомогенизацию при температуре 40-45°С при давлении 600 атм. При достижении оптической плотности 0,15 (длина волны - 540 нм; толщина слоя поглощения - 0,5 см) к полученной эмульсии прибавляли стерильный раствор лактозы 24 г в 120 мл раствора. Продолжали гомогенизацию при тех же параметрах процесса до оптической плотности не более 0,15 (длина волны - 540 нм; толщина слоя поглощения - 0,5 см). Концентрация
- 6 021352 кверцетина после гомогенизации 0,65 мг/мл. Включение после гомогенизации (определение методом ВЭЖХ) 97%. Полученную эмульсию последовательно фильтровали через фильтры 0,45 и 0,22 мкм, а далее проводили еще одну фильтрацию через 0,22 мкм. Объем после стерилизующей фильтрации 1380 мл. Размер частиц после стерилизующей фильтрации 153 нм - 89,7%; 56,8 нм - 10,3%. Концентрация после стерилизующей фильтрации 0,615 мг/мл. Включение после стерилизующей фильтрации (определение методом ВЭЖХ) - 94,61%. Эмульсию разливали во флаконы, лиофилизировали и герметизировали в атмосфере инертного газа (азота). По результатам контроля продукта, полученного по предлагаемому способу после лиофилизации, установлено, что препарат представлен в виде легкой аморфной массы желтоватого цвета с характерным запахом; размер частиц - 168,5 нм - 82,3%; 56,6 нм - 11,7%; 653 нм - 6%. Включение не менее 93,2%. Соотношение компонентов в препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - (1:40:24).
Пример 9.
При исследовании фармакокинетики липосомального и нелипосомального кверцетина при однократном инъекционном введении крысам наблюдается его быстрое выведение из плазмы крови с максимальной концентрацией около 40-70 мкг/мл, что согласуется с данными инструкции по медицинскому применению оригинального препарата кверцетина. Уровни концентраций в плазме липосомального и нелипосомального кверцетина существенно не различались. Наблюдались различия при определении кверцетина в печени крыс. Стах для липосомальной формы составляла около 5,9 мкг/г (Ттах - 1 мин), для нелипосомальной - около 15,8 мкг/г (Ттах - 90 мин). Липосомальный кверцетин практически полностью выводился из печени к 18 ч, в отличие от нелипосомального, который сохраняется в печени к 18 ч после введения на уровне 13 мкг/г.
Также различия наблюдались для мозга - липосомальный кверцетин практически не проникал через ГЭБ и обнаруживался в небольших дозах (до 500 нг/г) не позднее 10 мин после введения. Нелипосомальный кверцетин обнаруживался в мозге крыс даже спустя 18 ч после введения в диапазоне концентраций 120-550 нг/г.
Схожие фармакокинетические профили наблюдались для почек: для липосомального кверцетина Стах составила около 9 мкг/г, для нелипосомального - 7 мкг/г (Ттах - 1 мин в обоих случаях).
Аналогичная, как и для почек, картина наблюдалась и для сердца. Для липосомального кверцетина Стах составила около 4,2 мкг/г, для нелипосомального - 2,5 мкг/г (Ттах - 1 мин в обоих случаях).
Таким образом, результаты физико-химических исследований свидетельствуют, что продукт, полученный согласно заявленному способу, - гомогенизация проводится в два этапа: первоначальный при 500 атм и последующий при 800 атм до указанного размера; соотношение компонентов в итоговом препарате: кверцетин:фосфатидилхолин:лактоза - 1:27:31-76 (см. примеры 1-3) обеспечивают стабильность композиции липосом с включенным в них кверцетином. Воспроизведение заявленного способа при изменении параметров (см. примеры 4-6), а также способ согласно прототипу (пример 8) влечет трудности в реализации собственно способа и снижение качества целевого продукта, а именно:
увеличение размера и неоднородность дисперсионного состава липосом (примеры 5, 6, 8); уменьшение включения кверцетина в липосомы и нестабильность размеров липосом (примеры 5, 7). Как видно из примеров 1-3, оптимальным является первоначальное проведение гомогенизации при
500 атм (3 цикла) - гомогенность выше 90%. При проведении диспергирования при 500 атм (2 цикла) обнаруживается гетерогенность размеров липосом, т.е. диаметр липосом находится в широком диапазоне и представлен тремя фракциями (пример 5); при проведении диспергирования при 500 атм (4 цикла) результаты не отличаются от использования трех циклов диспергирования (пример 4).
Оптимальным является содержание лактозы при соотношении кверцетин:лактоза 1:31 - 1:76. Использование меньшего количества лактозы приводит к нестабильности липосом после лиофилизации, что, в свою очередь, приводит к гетерогенности размеров липосом и их увеличению до фракции с размером 547 нм (пример 6)
Лактозу добавляют дробно: '/2 первоначально, а затем после достижения размера липосом 200 нм вторую порцию. В случае добавления всей лактозы одновременно после лиофилизации (недостаток криопротекторного действия) увеличиваются размеры липосом и появляется фракция около более 500 нм (прототип, пример 8). При добавлении всего количества лактозы на начальной стадии обнаруживается снижение включения кверцетина в липосомы (пример 7).
- 7 021352
Список литературы
1. Антипова С.В., Шепилов А.В., Рябцева О.Д. Опыт применения Липофлавона для предупреждения развития кардиологических осложнений у больных операбельным раком молочной железы, получавших лечение антрациклинами. Проблеми сучасно1 медично1 науки та осв1ти. 2009. № 2. С. 44-46.
2. Кириченко С.В., Тишкж С.М., Соловьйов АЛ. Кверцетин-вм1СН1 лшосоми В1дновляють функщональну активжсть канал1в у гладеньких мюцитах аорти опромжених щур1в. Фармаколопя та Л1карська токсиколопя. 2008. № 1-3. С. 48 - 52.
3. Ковалев В.Б., Ковган В.В., Колчина Е.Ю. Механизмы лечебного действия биофлавоноида кверцетина (обзор литературы). Украшський медичний альманах. 1999. Т. 2. № 4. С. 176-184.
4. Манухина Е.Б., Лямина Н.П., Долотовская П.В. Роль оксида азота и кислородных радикалов в патогенезе артериальной гипертензии. Кардиология. 2002. № 11. С. 73-84.
5. Патент РФ № 2181051, МПК7 Ф61КЗЗ/22, А61К9/08, А61К31/79, А61КЗ1/198, 2002.
6. Патент Украины №38504, МПК7 А61К9/14, А61КЗ/79,
А61К31/455,2001.
7. Стефанов О.В., Григорьева Г.С., Соловйов АЛ. Пасечшкова Н.В., Хромов О.С., Конахович Н.Ф., Краснопольський Ю.М. Спошб отримання лшосомального засобу, що м1стить кверцетин. Патент У кражи № 76393. А61К 9/217, А61К 31/353, А61К 47/44, А61Р 31/00, А61Р 35/00, А61Р 39/06 2006. Прототип.
8. Чекман 1.С., Савченкова Л.В., Горчакова Н.О. и др. Лшосомальш форми л1карських засоб1в: в1д експерименту до клжики. Журнал АМН Укражи. 2006. Т.12. № 5. С. 653-667.
9. А1ехоро1ои Е., Оеог§орои1оз А., Ка§ка<Лз К.А., ОетеСгоз С. РгерагаЛоп апс! СНагас1ег12аЛоп οί 1уорНФ2еЛ Прозотез \νίΦ тсогрогаЮЛ Оиегсйт. 1. оГЫро-зоте КезеагсН. 2006. V. 16. N. 1-2. Р. 17-25.
10. ОопюХакл М., НаЩаШотои Н., Оппаз К., \Уа§пег М., Оете1гоз С. Епсарзи1аН-оп οί паШгаПу осситп§ Лауопо1Лез ΐηίο Прозотез: РНуз1сосНепнса1 ргорегНез апЛ Ыо1о§1са1 асПуку а§атз! Нитап сапсег се11 Нпез. 1. РНагтасок 2004. V. 56. N. 10. Р. 1217-1224.
11. Оп§огуеуа О.8., 81е1апоу О.У., КопакНоусЬ Ν.Ρ., Кгазпоро1зку Υ.Μ. РазесНт-коуа Ν.ν. РНуз1са1-сНегтса1 §гоипЛз οί Фе тетЬгапе 1гор1с ГасГОгз ίη тесНатзт οί Фе Нрозота1 теЛютез асПоп. 1тегпаПопа1 Нрозоте зос1е!у: Рго^гезз ίη Лги§ апб уассте ЛеПуегу. 2005. ЬопЛоп. Р. 50-54.
12. ЕгЛеп Μ.Ι., КаНгатап А., Ко§кеп Т. ВепеПс!а1 ейес1з οί циегсеПп оп охФаНуе зЧезз тЛисеЛ Ьу икгауЫеГ СПп. Е[р. Оегтаю1. 2001. V. 26. N 5. Р. 536-539.
13. МаСзио М., 8азак1 Ν., 5а§а К., Капеко Т. Су1о1охюку οί ЯауошнЛз ЮхуагЛ си1-ШгеЛ погта1 Нитап се11з. ΒίοΙ. РНагт. Ви11. 2005. V. 28. N. 3. Р. 253259.
- 8 021352
Claims (1)
- ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯСпособ получения липосомального препарата, содержащего биофлавоноид кверцетин, путем смешивания этанольных растворов фосфатидилхолина и кверцетина, высушивания смеси в вакууме, ее эмульгирования в водном растворе, гомогенизации эмульсии с добавлением лактозы в виде водного раствора, поэтапной стерилизующей фильтрации и лиофильного высушивания, отличающийся тем, что гомогенизацию проводят по меньшей мере в два этапа: первоначальный при давлении 500 атм, последующий при давлении 800 атм, лактозу добавляют дробно в два этапа в начале и в процессе гомогенизации при массовом соотношении компонентов в полученном препарате кверцетин:лактоза 1:(31-76) соответственно.Усредненные фармакокинетические профили кверцетина в печени крыс
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EA201201593A EA021352B1 (ru) | 2012-12-24 | 2012-12-24 | Способ получения липосомальной формы кверцетина |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EA201201593A EA021352B1 (ru) | 2012-12-24 | 2012-12-24 | Способ получения липосомальной формы кверцетина |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
EA201201593A1 EA201201593A1 (ru) | 2014-06-30 |
EA021352B1 true EA021352B1 (ru) | 2015-05-29 |
Family
ID=51013731
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
EA201201593A EA021352B1 (ru) | 2012-12-24 | 2012-12-24 | Способ получения липосомальной формы кверцетина |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
EA (1) | EA021352B1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2021167580A1 (en) | 2020-02-18 | 2021-08-26 | "Scientific Industrial Centre" Borshchahivskiy Chemical Pharmaceutical Plant" Public Joint Stock Company | Water-soluble solid dispersion of quercetin, forms thereof, a method of obtaining thereof, use of alkaline agent, and a kit |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
UA111762C2 (uk) * | 2014-07-08 | 2016-06-10 | ТОВАРИСТВО З ОБМЕЖЕНОЮ ВІДПОВІДАЛЬНІСТЮ "НаноМедТраст" | Спосіб отримання фармакологічно активного ліпосомального засобу, що містить кверцетин |
US20200197355A1 (en) * | 2018-12-20 | 2020-06-25 | Public Joint Stock Company "Scientific Industrial Centre "Borshchahivskiy Chemical-Pharmaceutical Pl | Methods, compositions and containers for reducing solid form quercetin degradation and 2-(3,4-dihydroxybenzoyloxy)-4,6-dihydroxybenzoic acid toxic byproducts thereof |
US20200197354A1 (en) * | 2018-12-20 | 2020-06-25 | Public Joint Stock Company "Scientific Industrial Centre "Borshchahivskiy Chemical- Pharmaceutical P | Methods, compositions and containers for reducing solid form quercetin degradation and 2,4,6-trihydroxybenzoic acid toxic byproduct thereof |
US11156623B2 (en) | 2018-12-20 | 2021-10-26 | Public Joint Stock Company “Scientific Industrial Centre Borshchahivskiy Chemical-Pharmaceutical Plant” | Methods of monitoring safety of quercetin compositions |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030152617A1 (en) * | 2002-01-09 | 2003-08-14 | Milton Yatvin | Liposome drug delivery of polycyclic, aromatic, antioxidant or anti-inflammatory compounds |
UA76393C2 (en) * | 2006-04-27 | 2006-07-17 | Inst Pharm & Toxicology Amms | Method for producing liposomal pharmacologic composition containing quercetine |
-
2012
- 2012-12-24 EA EA201201593A patent/EA021352B1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20030152617A1 (en) * | 2002-01-09 | 2003-08-14 | Milton Yatvin | Liposome drug delivery of polycyclic, aromatic, antioxidant or anti-inflammatory compounds |
UA76393C2 (en) * | 2006-04-27 | 2006-07-17 | Inst Pharm & Toxicology Amms | Method for producing liposomal pharmacologic composition containing quercetine |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
LANDI-LIBRANDI AP et al. Study of quercetin-loaded liposomes as potential drug carriers: in vitro evaluation of human complement activation. J. Liposome Res. 2012 June; 22(2): 89-99 (реферат) [он-лайн]. Найдено в PubMed, PMID: 22011316 * |
PRIPREM A. et al. Anxiety and cognitive effects of quercetin liposomes in rats. Nanomedicine. 2008 Mar; 4(1): 70-8 (реферат) [он-лайн]. Найдено в PubMed, PMID: 18249157 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2021167580A1 (en) | 2020-02-18 | 2021-08-26 | "Scientific Industrial Centre" Borshchahivskiy Chemical Pharmaceutical Plant" Public Joint Stock Company | Water-soluble solid dispersion of quercetin, forms thereof, a method of obtaining thereof, use of alkaline agent, and a kit |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EA201201593A1 (ru) | 2014-06-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mao et al. | Thermosensitive hydrogel system with paclitaxel liposomes used in localized drug delivery system for in situ treatment of tumor: better antitumor efficacy and lower toxicity | |
RU2491917C2 (ru) | Наноэмульсия | |
Sun et al. | Synergistic amplification of oxidative Stress–Mediated antitumor activity via liposomal dichloroacetic acid and MOF‐Fe2+ | |
Jing et al. | A novel polyethylene glycol mediated lipid nanoemulsion as drug delivery carrier for paclitaxel | |
Das et al. | Ethosomes as novel vesicular carrier: An overview of the principle, preparation and its applications | |
EA021352B1 (ru) | Способ получения липосомальной формы кверцетина | |
Naseroleslami et al. | Simvastatin-loaded nano-niosomes confer cardioprotection against myocardial ischemia/reperfusion injury | |
Yang et al. | Bioavailability improvement strategies for poorly water-soluble drugs based on the supersaturation mechanism: an update | |
Chettupalli et al. | Design, formulation, in-vitro and ex-vivo evaluation of atazanavir loaded cubosomal gel | |
Yang et al. | Cyclic dipeptide nanoribbons formed by dye-mediated hydrophobic self-assembly for cancer chemotherapy | |
Supraja et al. | An updated review on pharmacosomes, a vesicular drug delivery system | |
WO2021196659A1 (zh) | 糖基聚醚类化合物脂质体及其制备方法和药物 | |
Ma et al. | A highly stable norcantharidin loaded lipid microspheres: preparation, biodistribution and targeting evaluation | |
JP6884783B2 (ja) | リポソームの製造方法 | |
TWI564291B (zh) | 一氧化氮生成調節劑 | |
Wang et al. | Nano-porous silica aerogels as promising biomaterials for oral drug delivery of paclitaxel | |
EP2902399B1 (en) | Water-soluble derivatives and prodrugs of acacetin and methods of making and using thereof | |
Zheng et al. | Self-delivery nanomedicine to overcome drug resistance for synergistic chemotherapy | |
CN117750943A (zh) | 靶向动脉粥样硬化脂质体纳米载体递送系统及其制备方法 | |
Sangeetha | Ethosomes: A novel drug delivery system and their therapeutic applications-A review | |
CN113975249B (zh) | Tris-BNP纳米颗粒的制备及其在皮肤疾病治疗中的应用 | |
Razavi et al. | Nanolipid-loaded Preyssler polyoxometalate: Synthesis, characterization and invitro inhibitory effects on HepG2 tumor cells | |
Ahn et al. | Intracorneal melatonin delivery using 2-hydroxypropyl-β-cyclodextrin ophthalmic solution for granular corneal dystrophy type 2 | |
Zhi et al. | Retracted Article: A self-assembled supramolecular natural product gel from liquidambaric acid in traditional Chinese medicine with inherent anti-inflammatory activity for drug delivery | |
UA111762C2 (uk) | Спосіб отримання фармакологічно активного ліпосомального засобу, що містить кверцетин |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): AM AZ KG TJ TM |
|
MM4A | Lapse of a eurasian patent due to non-payment of renewal fees within the time limit in the following designated state(s) |
Designated state(s): BY KZ |