DK175134B1 - Fremgangsmåde til at foröge chymosinindholdet af et mælkekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau - Google Patents

Fremgangsmåde til at foröge chymosinindholdet af et mælkekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau Download PDF

Info

Publication number
DK175134B1
DK175134B1 DK199600272A DK27296A DK175134B1 DK 175134 B1 DK175134 B1 DK 175134B1 DK 199600272 A DK199600272 A DK 199600272A DK 27296 A DK27296 A DK 27296A DK 175134 B1 DK175134 B1 DK 175134B1
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
chymosin
approx
exchange medium
enzyme
pepsin
Prior art date
Application number
DK199600272A
Other languages
English (en)
Other versions
DK27296A (da
Inventor
Peter Birschbach
Original Assignee
Sanofi Bio Ingredients Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sanofi Bio Ingredients Inc filed Critical Sanofi Bio Ingredients Inc
Publication of DK27296A publication Critical patent/DK27296A/da
Application granted granted Critical
Publication of DK175134B1 publication Critical patent/DK175134B1/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6478Aspartic endopeptidases (3.4.23)
    • C12N9/6481Pepsins (3.4.23.1; 3.4.23.2; 3.4.23.3)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23CDAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
    • A23C19/00Cheese; Cheese preparations; Making thereof
    • A23C19/02Making cheese curd
    • A23C19/04Making cheese curd characterised by the use of specific enzymes of vegetable or animal origin

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Dairy Products (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Separation By Low-Temperature Treatments (AREA)
  • Electrical Discharge Machining, Electrochemical Machining, And Combined Machining (AREA)

Description

i DK 175134 B1
Opfindelsen angår en særlig fremgangsmåde til at forøge chymosinindholdet af mælkekoagulerende enzymholdige materialer afledt af chymosinholdige væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau.
5 Løbe afledt af dyrevæv, såsom den fjerde mave (kallunet) af okser, indeholder to mælkekoagulerende enzymer chymosin og oksepepsin. Den relative koncentration af disse to enzymer varierer meget afhængende først og fremmest af dyrets alder på slagtningstidspunktet og/eller dets kost. Løbe afledt af 10 unge kalve, der er mindre end 60 dage gamle, er f.eks. typisk sammensat hovedsagelig af chymosin, medens den, der er afledt af et voksent dyr, er sammensat først og fremmest af oksepepsin .
Anvendt til fremstilling af ost giver løber, der har højt 15 chymosinindhold, i almindelighed højere udbytter og bedre aroma og tekstur. Variationer i chymosinindholdet kræver ændringer i den anvendte mængde l'øbe for at opretholde samme udbytte og ostekvalitet. Tilgængeligheden af løbe med højt chymosinindhold bliver mere begrænset på grund af en reduk-20 tion i antallet af slagtede kalve.
(International Dairy Federation) IDF-standard 110:1982 beskriver en kromatografisk metode til at bestemme chymosinindhold og oksepepsinindhold i løbeékstrakter. Chymosin og pepsin påføres først på en diethylaminoethyl (DEAE) cellu-25 loseharpiks. Natriumchloridopløsninger af forskellige koncentrationer ledes så i rækkefølge gennem søjlen for at opnå en første fraktion indeholdende chymosin og en anden fraktion indeholdende pepsin.
Formålet med opfindelsen er at angive en fremgangsmåde til at 30 forøge chymosinindholdet af mælkekoagulerende enzymholdige materialer afledt af chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau.
DK 175134 B1 2
Dette opnås ved en fremgangsmåde af den angivne art, som er ejendommelig ved, at det enzymholdige materiale måles for at bestemme chymosinindholdet deraf, og der til det enzymholdige materiale sættes en tilstrækkelig mængde chymosin fremstillet 5 fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin, hvor den enzymholdige væske indstilles til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2 og til en ledningsevne på ca. 2 x 103 til ca. 19 x 103 jiS, et anionbyttermedium bringes i ligevægt til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2 og 10 til en ledningsevne på ca. 2 x 103 til ca. 10 x ΙΟ3 /zS, det ligevægtsindstillede ombytningsmedium bringes i kontakt med den indstillede enzymholdige væske til binding af pepsin til ombytningsmediet, chymosin udvindes af den væske, der fremkommer efter kontakt med lejet af ombytningsmedium, og ombyt-15 ningsmediet periodisk bringes i kontakt med en opløsning til fjernelse af bundet pepsin derfra, til at forøge det samlede chymosinindhold til et forudbestemt niveau.
Fremgangsmåden til adskillelse af chymosin fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin, 20 såsom en løbeekstrakt, er genstand for kravene i DK nr. 2860/88. Ved denne fremgangsmåde bringes et anionbyttermedium, som selektivt binder pepsin, i kontakt med væsken. Chymosin udvindes af væsken, der fremkommer efter kontakt med ionbytningsmediet, og ionbytningsmediet bringes periodisk i 25 kontakt med en opløsning til fjernelse^af pepsin. Før adskillelsestrinnet bliver løbeekstrakten eller anden væske indeholdende mælkekoagulerende enzymer indstillet til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2, fortrinsvis ca. 4,0 til ca. 5,0, og mest foretrukket ca. 4,4 til ca. 4,6, og til en ledningsevne 30 på ca. 2 x 103 til ca. 19 x 103, fortrinsvis ca. 5 x 103 til ca. 15 x 103 og mest foretrukket 8 x 103 til ca. 10 x 103 /zS. Ionbyttermediet bringes i ligevægt til ca. samme pH-værdi og ledningsevne. Da løbeekstrakter i reglen indeholder væsentligt mindre mængder pepsin end chymosin, kan forholdsvis 35 store mængder chymosin fraskilles, før det bundne pepsin må fjernes fra ionbyttermediet.
DK 175134 B1 3
Fremgangsmåden til adskillelse af chymosin fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin kan i en udførelsesform ske ved, at ombytningsmediet pakkes i en væskekromatografisk søjle, den indstillede enzymholdige 5 væske ledes gennem lejet af ombygningsmedium, chymosin udvindes af væskeafløbet fra søjlen, og den pepsinfjernende opløsning er en eluant, som ledes gennem lejet af ombytningsmedium.
Lejet kan være i hovedsagen statisk, og den indstillede 10 enzymholdige væske kan ledes kontinuerligt derigennem.
Fremgangsmåden kan også udføres ved, at en portion af den indstillede enzymholdige væske indføres i søjlen, lejet omrøres i tilstrækkelig tid til, at ombytningsmediet bringes i intim kontakt med enzymet og binder pepsin dertil, og der 15 udtages en væskeekstrakt indeholdende chymosin af søjlen.
Fremgangsmåden kan desuden omfatte et trin til skylning af ombytningsmediumlejet med en væske, såsom den væske, der anvendes til ækvilibrering af ombytningsmediet, efter at en forudbestemt mængde af den enzymholdige væske er blevet ført 2 0 derigennem.
I en udførelsesform bliver ionbyttermediet, der fortrinsvis er en DEAE-celluloseharpiks, jjakketT som et leje i en væskekromatografisk søjle, løbeekstrakten eller lignende ledes gennem lejet af ionbyttermedium, chymosin udvindes af 25 væsken, der løber fra søjlen, og en eluant ledes periodisk • gennem lejet af ionbyttermedium for at fjerne det bundne pep sin. Pepsin kan udvindes af den udløbende eluant.
I en anden udførelsesform omrøres lejet af ionbyttermedium, og løbeekstrakten tilsættes portionsvis. 1
Chymosinindholdet af løbeekstrakter afledt af maver af dårlig kvalitet kan således ifølge den foreliggende fremgangsmåde DK 175134 B1 4 forøges til et forudbestemt niveau ved at sætte en passende mængde af det udvundne chymosin dertil.
Udgangsmaterialet er en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin. Disse to mælkekoagulerende 5 enzymer kan fås af en række forskellige kendte kilder, herunder løbe afledt af dyrevæv eller eksisterende i produkter bestående af blandinger af enzymer, såsom en blanding af svinepepsin, oksepepsin og oksechymosin. Fremgangsmåden er særligt effektiv til løber ekstraheret af den fjerde mave 10 (kallunet) af okser, og fremgangsmåden vil blive beskrevet i forbindelse med en sådan løbeekstrakt. Den kan også anvendes til materiale indeholdende chymosin og pepsiner (andre end oksepepsin), som bindes til et anionbyttermedium ved de nedenfor beskrevne betingelser.
15 Løben kan ekstraheres af dyrevæv på enhver sædvanlig metode.
For at bringe ombytningsmediet til selektivt at binde oksepepsin bliver den flydende løbeekstrakt først indstillet til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2 og til en ledningsevne på ca. 2 x 103 til ca. 19 x ΙΟ3 μΞ. Der er ingen tendens hos 20 hverken chymosin eller oksepepsin til at bindes til et anionbyttermedium, når pH-værdien af løbeekstrakten er under ca.
3,8, og begge er tilbøjelige til at bindes til et anionbyttermedium, når pH-værdien er over ca. 5,2. Mere fuldstændige adskillelser af chymosin fra oksepepsin kan opnås ved en pH-25 værdi i intervallet fra ca. 4,0 til ca. 5,0, og endnu mere fuldstændige adskillelser kan i reglen fås ved en pH-værdi i intervallet ca. 4,4 til ca. 4,6.
Hvis ledningsevnen af løbeekstrakten er under ca. 2 x ΙΟ3 μΞ, er oksepepsinet og andre bundne molekyler, såsom pigment, 30 tilbøjelige til at blive irreversibelt bundet til et anionbyttermedium. Hvis ledningsevnen er over ca. 19 x 103 μΞ, er der en tendens til, at hverken oksepepsin eller chymosin bindes til et anionbyttermedium. Mere fuldstændige adskillelser af chymosin fra oksepepsin kan opnås med en led- DK 175134 B1 5 ningsevne i intervallet fra ca. 5 x 103 til ca. 15 x 103, og endnu mere fuldstændige adskillelser kan i reglen fås med en ledningsevne i intervallet fra ca. 8 x 103 til ca. 10 x 103 /iS. For tiden ser det ud til, at den optimale pH-værdi og 5 ledningsevne er henholdsvis ca. 4,5 og 9 x ΙΟ3 μΞ.
pH-værdien af løbeekstrakten kan indstilles til det ønskede niveau ved tilsætning af en passende mængde af en egnet syre af fødevarekvalitet, såsom fortyndet svovlsyre (hvis den oprindelige pH-værdi er over det ønskede niveau) eller en egnet 10 base af fødevarekvalitet, såsom ammoniumhydroxid (hvis pH-værdien er under det ønskede niveau). Ledningsevnen af løbeekstrakten målt ved en ledningsevnebro eller lignende kan indstilles til et ønsket niveau ved tilsætning af en passende mængde af et egnet salt af fødevarekvalitet, såsom natrium-15 chlorid (hvis den oprindelige ledningsevne er under det ønskede niveau) eller ved at fortynde med afioniseret vand (hvis ledningsevnen er over det ønskede niveau).
Anionbyttermediet kan være enhver type, der er i stand til at blive bragt i ligevægt til selektiv binding af oksepepsin og 20 derefter frigøre det bundne oksepepsin efter at være bragt i kontakt med en eluant, der er uskadelig i fødevarer. Egnede ionbytningsmedier indbefatter de, der har en indifferent uopløselig grundmasse, såsom cellulose, acrylpolymerer og lignende, og hvori der er indført—anioniske funktionelle 25 grupper, såsom amino, alkylamino, guanidino og kvaternære ammoniumgrupper. Grundmassen skal have en struktur, der er tilstrækkelig åben eller løs, således at den ikke bliver tilstoppet med partikler i løbeekstrakten, og som muliggør et rimeligt gennemløb, når den anvendes i en væskekromatografisk 30 søjle som nedenfor beskrevet.
Celluloseharpikser, der har en åben fibrøs grundmasse, foretrækkes. Repræsentative egnede celluloseharpikser er beskrevet i US patent nr. 3.573.277, hvortil der henvises. DEAE-celluloseharpikser har vist sig at være særligt effektive.
DK 175134 B1 6 Når der anvendes en DEAE-celluloseharpiks som ombytningsmedium, bliver den forudcirkuleret på sædvanlig måde før brugen. F.eks. omrøres harpiksen i 0,5 N saltsyre i 30 minutter, og den overliggende væske dekanteres. Harpiksen skylles så 5 med afioniseret vand, indtil den overliggende væske har en pH-værdi på 4,0. Harpiksen omrøres så i 0,5 N natriumhydroxid i 30 minutter, og den overliggende væske dekanteres. Harpiksen skylles så med afioniseret vand, indtil den overliggende væske har en pH-værdi på 8,0.
10 Det forudcirkulerede ombytningsmedium bringes i ligevægt til en pH-værdi og en ledningsevne inden for de ovennævnte intervaller, således at oksepepsin tiltrækkes selektivt til ombytningsmediet. Ligevægtsindstillingen kan opnås ved at vaske ombytningsmediet med en stødpudeopløsning, der har den 15 ønskede pH-værdi og ledningsevne. F.eks. kan en typisk ligevægt sopløsning bestå af en vandig opløsning, der indeholder 0,5% (vægt/rumfang) natriumbenzoat og en tilstrækkelig mængde natriumchlorid til at give en ledningsevne på 9 x 10·3 μβ, hvortil der sættes fortyndet svovlsyre for at indstille pH-20 værdien til 4,5. Ligevægtsindstilling fortsættes, indtil den dekanterede overliggende væske har den ønskede pH-værdi og ledningsevne.
Det forudcirkulerede og i ligevægt bragte ionbytningsmedium kan pakkes i en sædvanlig kromatografisk søjle indeholdende 25 en porøs bærer, såsom en sigte for et leje af ombytningsmediet og en ventil til at regulere en kontinuerlig strøm af løbeekstrakten gennem søjlen.
Den indstillede løbeekstrakt indføres i søjlen, passerer gennem det statiske harpiksleje og strømmen af det chymosin-30 holdige afløb indstilles med en reguleringsventil, således at der muliggøres tilstrækkelig kontakt mellem løbeekstrakten og harpiksen til at oksepepsinet kan bindes på harpiksen. Denne tid kan bestemmes ved at analysere afløbet på sædvanlig måde for chymosin og oksepepsin. Hvis den mængde ekstrakt, som DK 175134 B1 7 indføres i søjlen, eller hastigheden, hvormed den passerer gennem harpikslejet er for høj, vil en del af oksepepsinet ikke bindes på harpiksen (dvs. at der er en ufuldstændig adskillelse mellem oksepepsin og chymosin), og dette vil af-5 spejles i tilstedeværelse af større mængder oksepepsin i afløbet .
Rumfanget af og hastigheden, hvormed løbeekstrakten indføres i søjlen, kan bestemmes ved rutineforsøg og afhænger af rumfanget af anionbyttermediet i søjlen, enzymbindingskapacite-10 ten af det særligt anvendte ombytningsmedium, koncentrationen af oksepepsin i løbeekstrakten og koncentrationen af forureninger som ikke er enzym i løbeekstrakten (f.eks. pigment), der bliver bundet til ombytningsmediet. Til formål, hvor mindre end i hovedsagen fuldstændig adskillelse af chy-15 mosin er acceptabel, kan strømningshastigheden af løbeekstrakten gennem søjlen forøges. Dette nedsætter kontakttiden og resulterer i en mindre fuldstændig adskillelse.
En sådan fremgangsmåde med et statisk leje kan have mangler, når den anvendes til nogle rå løbeekstrakter. Det kan være 20 vanskeligt at opretholde en acceptabel strømningshastighed gennem søjlen, især når der anvendes en viskos ekstrakt. Det øvre lag af ombytningsmediet kan blive mættet med uopløselige materialer,' såsom fedtstoffer, muciner osv., hvilket forårsager en reduktion i strømningshastighed. Kanaldannelse i 25 ombytningsmediet kan forekomme, hvilket resulterer i en reduktion af kontakt mellem ombytningsmedium og enzymerne og et fald i bindingen af oksepepsin.
Disse mangler kan formindskes ved anvendelse af en søjle med omrørt leje. En sådan søjle ligner en søjle med statisk leje 30 med undtagelse af, at lejet af ombytningsmedium omrøres, ekstrakten tilsættes portionsvis, og den indre diameter af søjlen i reglen er noget større til samme rumfang ombytningsmedium.
DK 175134 B1 8 Når der anvendes en kromatografisk søjle med omrørt leje, indføres det forud cirkulerede og i ligevægt bragte ombytningsmedium i en søjle, der har en porøs bærer og en egnet omrører, såsom en luftdreven rørepind. Et rumfang 5 indstillet løbeekstrakt indføres i søjlen, og blandingen af ekstrakt og ombytningsmedium omrøres i tilstrækkelig tid til at opnå intim kontakt derimellem og binde oksepepsin til ombytningsmediet. Den nødvendige kontakttid til gode adskillelser er i reglen kortere med en søjle med omrørt leje end med 10 en søjle med statisk leje. Omrøring standses efter den ønskede kontakttid, væskefasen bliver enten aftappet eller dekanteret fra søjlen, og et andet rumfang løbeekstrakt indføres i søjlen. Denne cyklus kan gentages, indtil bindingskapaciteten af ombytningsmediet er blevet opbrugt, eller 15 hele rumfanget af løbeekstrakt er blevet indført i søjlen.
I hovedsagen rent chymosin kan udvindes af afløbet eller væskeekstrakten fra søjlen ved en passende rensningsteknik.
F.eks. kan afløbet indstilles til en pH-værdi på ca. 5,6 og derpå indføres i en kromatografisk søjle, hvori chymosin 20 bindes til ombytningsmediet og derpå fjernes med en eluant, der er uskadelig i fødevarer.
Dette chymosin kan ifølge fremgangsmåden sættes til løbe-ekstrakter for at forøge chymosinindholdet til et forudbestemt niveau. Løbeekstrakter åf' lav kvalitet kan således 25 forbedres, og chymosinindholdet af løbeekstrakter af enten høj eller lav kvalitet kan indstilles til en standardværdi, således at man dermed eliminerer virkningsvariationer ved fremstilling af ost. Fremgangsmåden ifølge opfindelsen kan f.eks. anvendes til efter adskillelse af chymosin fra løbe-3 0 ekstrakter indeholdende så lidt som ca. 15% chymosin (beregnet på samlet mælkekoaguleringsevne) og op til ca. 85% at sættes dette til ekstrakter, der har samme interval af chymo-sinkoncentrationer for at forøge chymosinindholdet til et ønsket niveau.
DK 175134 B1 9
Harpikslejet bliver fortrinsvis skyllet periodisk for at fjerne ubundne fremmede materialer. Harpikslejet omrøres fortrinsvis under skylleperioden for at forøge fjernelse af disse fremmedstoffer. Afløbet fra skylleperioden opsamles 5 fortrinsvis i en særskilt beholder.
En eluant indføres periodisk i søjlen for at fjerne det bundne oksepepsin fra harpiksen, og afløbet opsamles i en særskilt beholder. Strømning af eluanten gennem harpikslejet fortsættes indtil der ikke spores nogen eller kun ringe 10 mælkekoagulerende aktivitet i afløbet. Oksepepsin kan koncentreres af afløbet ved ultrafiltrering, omvendt osmose eller anden egnet koncentrationsteknik.
Elutionsopløsningen er fortrinsvis baseret på vand og indeholder et til fødevarer uskadeligt vandopløseligt salt, 15 der har rimelige dissociationsegenskaber. Egnede salte indbefatter natriumchlorid, natriumphosphat og natriumacetat.
En særligt effektiv eluant til DEAE-celluloseharpikser er en 10% natriumchloridopløsning, indstillet til en pH-værdi på ca. 4,4 til ca. 4,6. Eluering skal udføres, før det tids-20 punkt, hvor harpiksen bliver ladet med oksepepsin til det punkt, hvor den ikke længere er i stand til at binde oksepepsin.
Efter eluering kan harpikslejet bringes i ligevægt som ovenfor beskrevet og derved gøres parat til næste adskillelses-25 cyklus.
De følgende eksempler anføres for at eksemplificere foretrukne udførelsesformer for opfindelsen. I eksemplerne blev enzymsammensætningerne bestemt ved fremgangsmåden beskrevet i Collin et al., "A Determination of Chymosin and Bovine Pepsin 30 A in Commercial Rennets and Pepsin", Milchwissenschaft 36(1) 1981.
DK 175134 B1 10
Eksempel 1
En løbeekstrakt fremkommet af den fjerde mave af slagtekalve blev indstillet til en pH-værdi på 4,5 og en ledningsevne på 7,8 x 103 /zS og blev undersøgt for mælkekoagulerende ak-5 tivitet og enzymsammensaetning. 100 g DEAE-celluloseharpiks blev forcirkuleret ved den almene fremgangsmåde, der er beskrevet ovenfor, og derefter bragt i ligevægt med en opløsning indeholdende 0,5% (vægt/rumfang) natriumbenzoat, hvortil der blev sat natriumchlorid for at indstille ledningsevnen 10 til 8,0 x 103 μΞ, og fortyndet svovlsyre blev tilsat for at indstille pH-værdien til 4,5.
Harpiksen, der var bragt i ligevægt, blev pakket i en kromatografisk søjle af glas indeholdende en porøs lejebærer og en hane til regulering af udstrømningen. Den indstillede løbe-15 ekstrakt blev indført i søjlen med en strømningshastighed på ca. 10 ml/min, og afløbet blev opsamlet og undersøgt for enzymsammensætning. Harpiksen blev skyllet med 200 ml ligevægt sopløsning, efter at 1000 ml løbeekstrakt var blevet adskilt. Skylleafløbet blev opsamlet og undersøgt for 20 mælkekoagulerende aktivitet.
Efter denne skylning blev søjlen elueret med en 10% natrium-chloridopløsning indstillet til én' pH^ærdi på 4,5. Eluerin-gen blev fortsat, indtil der blev påvist en mælkekoagulerende aktivitet på mindre end 1,0 enhed/ml i elutionsafløbet.
25 Elutionsafløbet blev opsamlet og undersøgt for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning.
DK 175134 B1 11
Resultaterne af denne prøve er opsummeret i tabel I.
Tabel I
Undersøgelse af løbe og afløb.
Mælkekoagule- Enzymsammen- 5 rende aktivitet, sætning, akt. (1) enheder_ Chvmosin Pepsin (2) Løbeekstrakt 18.500 85,6 14,4
Adskillelsesafløb 15.630 >99 < 1
Skylleafløb 213 10 Elutionsafløb 2.678 11,3 88,7
Noter: (1) % af total mælkekoaguleringsaktivitet (2) Oksepepsin
Eksempel 2
En løbeekstrakt fra den fjerde mave af slagtekalve blev ind-15 stillet til en pH-værdi på 4,5 og en ledningsevne på 9,0 x 103 /xS og undersøgt for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning. 200 kg af en DEAE-celluloseharpiks blev forcirkuleret ved den almene fremgangsmåde, der er beskrevet ovenfor, og derefter bragt i ligevægt med en opløsning inde-20 holdende natriumbenzoat, hvortil der var sat natriumchlorid til at give en ledningsevne på 9,0_x ΙΟ3 μβ, og fortyndet svovlsyre blev tilsat for at indstille pH-værdien til 4,5.
Den i ligevægt bragte harpiks blev pakket i en kromatografisk søjle af fiberglas med en indre diameter på 122 cm og en 25 højde på 183 cm og indeholdende en motordrevet omrører, en porøs harpikslejebærer og en reguleringsventil. Den indstillede løbe blev indført'i søjlen med en strømningshastighed på ca. 25 1/min, og afløbet blev opsamlet. Efter at 23.000 1 løbeekstrakt var strømmet gennem søjlen, blev ca. 1900 1 af 30 ligevægtsopløsningen indført i søjlen, medens omrøreren var i drift for at vaske harpiksen. Indføring af løbeekstrakten blev fortsat efter afslutning af denne vaskecyklus. En anden DK 175134 B1 12 vaskecyklus blev udført, efter at andre 19.300 1 af løbe-ekstrakten var blevet indført og en tredje vaskecyklus blev udført, efter at yderligere 19.840 1 af ekstrakten var blevet indført. Vaskeafløbet blev opsamlet og forenet med adskillel-5 sesafløbet. Disse forenede afløb blev undersøgt for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning.
Efter afslutning af den tredje vaskecyklus blev søjlen elu-eret med en 10% natriumchloridopløsning indstillet til en pH-værdi på 5,6. Eluering blev fortsat, indtil der blev påvist 10 en mælkekoagulerende aktivitet mindre end 1,0 enhed/ml i elu-tionsafløbet, og elutionsafløbet blev undersøgt for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning.
Resultaterne af denne prøve er opsummeret i tabel II.
Tabel II
15 Undersøgelse af løbe og afløb Mælkekoagule- Enzymsammenrende aktivitet, sætning, akt. (1) enheder_ Chvmosin Pepsin (2) Løbe 6,11 x 108 87,1 12,9 20 Adskillelse og vaske- afløb 5,247 x 108 >99 < 1
Elutionsafløb 0,819 x Ϊ08 8,8 91,2
Noter: (1) % af total mælkekoagulerende aktivitet (2) Oksepepsin 1 2 3 4
Af disse resultater kan det ses, at en fraktion indeholdende 2 i hovedsagen kun chymosin og en uanselig mængde oksepepsin 3 kan fås af en løbeekstrakt med ringe eller intet tab i mælke 4 koagulerende aktivitet.
DK 175134 B1 13
Eksempel 3
To rækker prøver blev udført for at bestemme effektiviteten af adskillelsen mellem chymosin og oksepepsin i en løbe-ekstrakt med variationer i pH-værdi og ledningsevne af en 5 ligevægtsindstillet harpiks og en indstillet løbeekstrakt.
Ledningsevnen blev holdt på 9 x ΙΟ3 μΞ og pH-værdien blev varieret i den ene serie, og pH-værdien blev holdt på 4,5 og ledningsevnen blev varieret i den anden. .
Til hver prøve blev 25 g af DEAE-celluloseharpiks for-10 cirkuleret ved den almene fremgangsmåde, der er beskrevet ovenfor, og derefter bragt i ligevægt til den ønskede pH-værdi og ledningsevne. Den ligevægtsindstillede harpiks blev pakket i en kromatografisk søjle af glas indeholdende en porøs lejebærer og en hane til at regulere strømmen. En 15 løbeekstrakt fremkommet af den fjerde mave af slagtekalve blev indstillet til samme pH-værdi og ledningsevne som den ligevægtsindstillede harpiks og undersøgt for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning. 1000 ml af den indstillede ekstrakt blev indført i søjlen og strømmede gennem 20 harpikslejet med en hastighed af ca. 4 ml/min og afløbet blev opsamlet. Søjlen blev skyllet med 100 ml af opløsningen anvendt til at ligevægtsindstille harpiksen, og skylleafløbet blev opsamlet og forenet med adskillelsesafløbet.
Efter denne skylning blev søjlen elueret med 250 ml af en 10% 25 natriumchloridopløsning indstillet til en pH-værdi på 5,6 og elutionsafløbet blev opsamlet. De forenede afløb fra adskil-> lelse og skylning og elutionsafløbet blev undersøgt hver for sig for mælkekoagulerende aktivitet og enzymsammensætning, og rumfangene af begge blev målt. 1
Resultaterne af disse prøver er opsummeret i tabel III. Af resultaterne kan det ses, at der ikke blev opnået nogen betydelig adskillelse mellem chymosin og oksepepsin ved en pH-værdi på 3,7, medens der var en betydelig stigning i chy- DK 175134 B1 14 mosinindholdet i adskillelsesafløb og skylleafløb, når pH-værdien blev hævet til 4,0. Der var ingen betydelig adskillelse mellem chymosin og oksepepsin, og begge blev bundet til harpiksen ved en pH-værdi på 5,3, medens der var en betydelig 5 stigning i chymosinindholdet af adskillelsesafløb og skylleafløb, når pH-værdien blev hævet til 5,0. Ved en ledningsevne på 2 x ΙΟ3 με var der en stigning i chymosinindholdet i adskillelsesaf løbet og skylleafløbet, men den totale enzymudvinding var mindre end 60%, hvilket viser at en 10 betydelig mængde af enzymet var irreversibelt bundet til harpiksen. Der var ingen betydelig adskillelse mellem chymosin og oksepepsin ved en ledningsevne på 20 x 103 /zS, medens der var gode adskillelser ved ledningsevner på 5 x 103 og 15 x 103 /xS.
15 DK 175134 B1 n — \ Q CNJ i u >— — οι α> o oo {jd η ® o o' tf *- <£TJ·- ' <0 O C 0) Ε Π ri r-l ro CM σι 'β· ΟΙ W Σ II Γ π (Μ c _ _________ Ο - •·~ ι σ>
μ c c ο ο. CJ CL
3 ε <υ -·- · · · > ε c ο. α α ae ae ο. ae ae ο. α
LU Ν Ε -Μ . * . Ο Ο CM CO
* cm« c c c co cm c cn c c LU (/) (/) • ^
. o ID ID ID O ID ID O
— ^iccoroo»»o»Dio
O i— CJCJCJCJCJCJCJCJ
<u > ε c________[___ > 0) \ W ΐ- οι σι ~ αι c o cj ό o
•I- —· 4) rrcooouio - DJ
C <u<jC '
XI W OC— r— ID CO O O Π π CO
<1) <— Σ <v ε ι— α» _________ιοί i o —
0 -r- CC O CL ro O CL O CL O CL
jc ε ai — o cl o cl — x w > e c <*> <*> · ^> <#> o. æ æ <K> CL XI N E -*-> d? d? »? d? O O Q. 00 CJ 00 N Η σι <0 c (0 ft) is η ό ie o o c σ> n c
H~ UJ (/) V) t- CM O i-* C
(0 <0 S- CT__ 1______I__ C- **- c i—i φ *»- »-* C J3 C -
t-o O Q I— · OOOOOOOO
-f- <— > r— TTCJCDOCJCJOO
I— *J O- V η Γ— iririOnn»—iri
01 ^ {/) > E rJ »—I i—I i—4 tJ rJ rJ rJ
J3 *r*__._______ m i_ " -m I— Λ N 41 > C- +* oi XI CJ Ό C > oj — <u <o cm co co ^ σ> ***ι® ·ψ- ·<-
E < .c - -- -- -- - U) *J
0 c <— o c- o id cj ro id ro q_j£ L. Σ 1) E 4-1 ri π 0110 01 ___________cl tn in ’ οι σι ι— — wc αι π ι σ> cc >- i— — c c --- o o-
I— E 0) ·“ 00.00-00-00-00-00-00-00- 41+J
r- -M >> E C II — C_
^ CC MEJ-’ 3 S
w <0 C (O ty cocjrooicocjT-iaicMCDCJcocJcocMco O ou-
Ό L. UJWW t— CJ CO ri C— CJ CO rICJf—CJC— ® c N C <0 "O
, (0 JJ -- O 3
E W _________C JC
> JC -.-4)0)
N 0) W JC JC
C 0) O — ) LU ·— OOOOOOOO s sy -r- q Or— oooooooo >. ε
—I > E OOOOOOOO JCII
1 I (H <! i I t-J 1—* < * ' . D II
_ II < CL
o · W O X c o C — ^ — I X E ri CJ o w 3. —
1 CT 0) O O
XI C CCo o o o o o o --
d) -r- > o - - - - ' - ID o IL
_j C 0j η σι <j> σ* cn CJ m π cj oj
___JJ
‘ o z C-OOrOlDlDlDlO X.....--.
Q.ri-^lOlDJi'»·'»·'!

Claims (2)

1. Fremgangsmåde til at forøge chymosinindholdet af et mæl-kekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosin- 5 holdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau, kendetegnet ved, at det enzymholdige materiale måles for at bestemme chymosinindholdet deraf, og der til det enzymholdige materiale sættes en tilstrækkelig mængde chymo- sin fremstillet fra en væske indeholdende de mælkekoaguleren- 10 de enzymer chymosin og pepsin, hvor den enzymholdige væske indstilles til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2 og til en “3 o ledningsevne på ca. 2 x 10 til ca. 19 x 10 /xS, et anion-byttermedium bringes i ligevægt til en pH-værdi på ca. 3,8 til ca. 5,2 og til en ledningsevne på ca. 2 x 101 til ca. 19 15 x 101 /xS, det ligevægtsindstillede ombytningsmedium bringes i kontakt med den indstillede enzymholdige væske til binding af pepsin til ombytningsmediet, chymosin udvindes af den væske, der fremkommer efter kontakt med lejet af ombytningsmedium, og ombytningsmediet periodisk bringes i kontakt med en opløs-20 ning til fjernelse af bundet pepsin derfra, til at forøge det samlede chymosinindhold til et forudbestemt niveau.
2. Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet ved, at det enzymholdige materiale er en løbeekstrakt. Fremgangsmåde ifølge krav 2, kendetegnet ved, 25 at løbeekstrakten hidrører fra bovint kallun.
DK199600272A 1986-10-01 1996-03-08 Fremgangsmåde til at foröge chymosinindholdet af et mælkekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau DK175134B1 (da)

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US91396586A 1986-10-01 1986-10-01
US91396586 1986-10-01
US8649987 1987-08-17
US07/086,499 US4745063A (en) 1986-10-01 1987-08-17 Method for separating rennet components
DK286088A DK171381B1 (da) 1986-10-01 1988-05-25 Fremgangsmåde til adskillelse af chymosin fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin
DK286088 1988-05-25

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DK27296A DK27296A (da) 1996-03-08
DK175134B1 true DK175134B1 (da) 2004-06-14

Family

ID=26774815

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK286088A DK171381B1 (da) 1986-10-01 1988-05-25 Fremgangsmåde til adskillelse af chymosin fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin
DK199600272A DK175134B1 (da) 1986-10-01 1996-03-08 Fremgangsmåde til at foröge chymosinindholdet af et mælkekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK286088A DK171381B1 (da) 1986-10-01 1988-05-25 Fremgangsmåde til adskillelse af chymosin fra en væske indeholdende de mælkekoagulerende enzymer chymosin og pepsin

Country Status (10)

Country Link
US (1) US4745063A (da)
EP (1) EP0288554B1 (da)
AT (1) ATE78660T1 (da)
AU (1) AU605221B2 (da)
CA (1) CA1286620C (da)
DE (2) DE3780809T2 (da)
DK (2) DK171381B1 (da)
IE (1) IE60464B1 (da)
NZ (1) NZ221993A (da)
WO (1) WO1988002220A1 (da)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8825183D0 (en) * 1988-10-27 1988-11-30 Atomic Energy Authority Uk Recovery of substances
CA2058453C (en) * 1989-06-13 1999-06-01 Henry G. Heinsohn Chymosin recovery and purification
US5139943A (en) * 1989-06-13 1992-08-18 Genencor International, Inc. Processes for the recovery of microbially produced chymosin
EP0477284B1 (en) * 1989-06-13 1995-08-16 Genencor International, Inc. Processes for the recovery of naturally produced chymosin
US5151358A (en) * 1989-06-13 1992-09-29 Genencor International, Inc. Processes for the recovery of naturally produced chymosin
US5215908A (en) * 1989-06-13 1993-06-01 Genencor International, Inc. Process for recovery and purification of chymosin
US5310565A (en) * 1992-04-10 1994-05-10 Dairy Technology, Ltd. Method of removing antibiotics from milk
ATE288482T1 (de) * 1994-05-03 2005-02-15 Hansens Lab Verfahren zur trennung milchgerinnender enzyme
SE0004808D0 (sv) 2000-12-20 2000-12-20 Apbiotech Ab Method for the purification of an enzyme
US20080131487A1 (en) * 2006-11-30 2008-06-05 Dag Ommundsen Chymosin for the prevention and treatment of gastrointestinal disorders
EP2619568A4 (en) 2010-09-23 2014-06-25 Ge Healthcare Bio Sciences SUSPENSION FOR SINGLE USE AND CHROMATOGRAPHY SYSTEMS

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US344433A (en) * 1886-06-29 Moeitz blumenthal
US3281332A (en) * 1964-01-23 1966-10-25 Canada Packers Ltd Method for the manufacture of rennin
US4136201A (en) * 1967-12-06 1979-01-23 Gb Fermentation Industries, Inc. Microbial rennin
US3573277A (en) * 1968-07-15 1971-03-30 Tasman Vaccine Labor Ltd Cellulosic ion exchange materials and method of making
US3766015A (en) * 1972-03-02 1973-10-16 Pfizer Preservation of bovine stomachs for rennet extraction
CA1178223A (en) * 1981-10-22 1984-11-20 Kazi M. Shasuzzaman Milk coagulating enzyme for cheese making

Also Published As

Publication number Publication date
NZ221993A (en) 1989-09-27
DE3780809D1 (de) 1992-09-03
AU605221B2 (en) 1991-01-10
DE288554T1 (de) 1989-07-13
DE3780809T2 (de) 1993-03-11
ATE78660T1 (de) 1992-08-15
DK286088D0 (da) 1988-05-25
IE872629L (en) 1988-04-01
WO1988002220A1 (en) 1988-04-07
US4745063A (en) 1988-05-17
DK27296A (da) 1996-03-08
AU8278387A (en) 1988-04-21
EP0288554B1 (en) 1992-07-29
CA1286620C (en) 1991-07-23
EP0288554A4 (en) 1990-02-22
EP0288554A1 (en) 1988-11-02
DK286088A (da) 1988-05-25
DK171381B1 (da) 1996-10-07
IE60464B1 (en) 1994-07-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK175134B1 (da) Fremgangsmåde til at foröge chymosinindholdet af et mælkekoaguleringsenzymholdigt materiale afledt af et chymosinholdigt væv af lav kvalitet til et forudbestemt niveau
EP0038732B1 (fr) Lait décationisé, procédé de traitement du lait par une résine échangeuse de cations pour la fabrication du lait décationisé, et utilisation du lait décationisé pour la fabrication de la caséine du caillé de lait pour fromages et du lactosérum
EP0226035B1 (en) A process for the specific separation of lactose from milk
Dixon et al. On the further purification of the xanthine oxidase
AU684162B2 (en) A process for separating milk clotting enzymes, and stable rennet compositions
FI98643C (fi) Menetelmä luonnollisesti tuotetun kymosiinin talteenottamiseksi
JPH0131865B2 (da)
CN106701722A (zh) 一种提高尿激酶纯度的方法
Inoue et al. Preparation of cross-linked pectate and its application to the purification of endopolygalacturonase of Kluyveromyces fragilis
OSMUNDSVAG et al. Cellulases from Sporocytophaga myxococcoides: Purification and properties
CA2553733C (en) Process for producing lactoperoxidase
US4666843A (en) Method for the purification of calf rennet
EP0091664A2 (en) Process for producing microbial rennet having increased milk coagulating activity
Murakami et al. High molecular weight renin in stroke-prone spontaneously hypertensive rats
US4330464A (en) Isolation of microbial protein with reduced nucleic acid content
Ito et al. Isozymes of bovine milk catalase
US3269918A (en) Process for the production of purified glucose oxidase
CN108676784A (zh) 一种牛乳中乳过氧化物酶的纯化方法
Heesche-Wagner et al. Purification of unstable proteins from Halobacterium salinarium crude cell extracts: combined cell disruption and desalting by a hollow-fiber membrane module as an access to perform ion-exchange chromatography
JPH0244515B2 (da)
JPS6031478B2 (ja) 純コンドロイチナ−ゼbの製造法
CN100390276C (zh) 一种从动物肝脏中提取酯酶的方法
SU1147030A1 (ru) Способ получени ДНК-полимеразы бактериофага Т4 в клетках ЕSснеRIснIа coLI
JPS6023645B2 (ja) ヒト尿性カリクレインの製法
CN106957834A (zh) 一种牛凝血酶的制备方法和牛凝血酶

Legal Events

Date Code Title Description
PUP Patent expired