DE679194T1 - Verfahren zur voraussage des bakterienzuwachses auf einer oberfläche. - Google Patents
Verfahren zur voraussage des bakterienzuwachses auf einer oberfläche.Info
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Claims (55)
1. Verfahren zur Vorhersage des Zeitpunkts des aktiven Wachstums von Bakterien, die an einer Oberfläche haften, wobei das Verfahren
&iacgr;&ogr; die folgenden Stufen umfaßt:
(a) Bestimmen einer ersten Populationsdichte von lebensfähigen Bakterien auf der Oberfläche,
is (b) Vergleichen der ersten Populationsdichte mit einer zweiten
Populationsdichte mit einem stimulierten oder erhöhten Anteil von aktiv wachsenden Bakterien zu lebensfähigen Bakterien in
der zweiten Population und
(c) Vorhersagen des aktiven Bakterienwachstums, sobald die erste Populationsdichte größer als die zweite Populationsdichte ist.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Dichte in (b) zwischen etwa
400,000 Bakterien/mm2 bis etwa 6,300,000 Bakterien/mm2 liegt.
3. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Bakterienwachstum auf einer
Oberfläche erfolgt, die für Bakterienbefall empfänglich ist.
4. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Bakterienwachstum auf der Oberfläche eines Zahnimplantats erfolgt.
5. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Bakterienwachstum auf implantiertem Biomaterial erfolgt.
6. Verfahren zur Vorhersage des aktiven Wachstums von Bakterien auf
einer Oberfläche, wobei das Verfahren die folgenden Stufen umfaßt:
(a) Bestimmen einer Populationsdichte von lebensfähigen wachsenden
Bakterien auf der Oberfläche,
&iacgr;&ogr; (b) Bestimmen einer Population von aktiv wachsenden Bakterien auf
der Oberfläche,
(c) Berechnen des Verhältnisses von aktiv wachsenden Bakterien zu lebensfähigen Bakterien auf der Oberfläche und
(d) Vorhersagen des aktiven Bakterienwachstums auf der Oberfläche,
sobald das Verhältnis in Stufe (c) im Bereich von etwa 5 &khgr; 10" 4: 1 bis 20 &khgr; 10'2:l liegt.
7. Verfahren nach Anspruch 6, wobei die Population von aktiv wachsenden
Bakterien bestimmt wird durch Zugeben eines Überschusses an markiertem Nucleosid zu den Bakterien für eine Zeit, die kürzer
ist als die minimale Zellteilungszeit der Bakterien, Wachsenlassen der Bakterien für eine Zeitdauer, die ausreichend ist, um eine
Einverleibung des markierten Nucleotids in die Bakterien zu erlauben, und Identifizieren der" Menge an der DNA der Bakterien
einverleibtem, markiertem Nucleotid.
8. Verfahren nach Anspruch 7, wobei das markierte Nucleosid aus der
Gruppe bestehend aus radioaktiv markierten Purinen und Pyrimidinen ausgewählt wird.
9. Verfahren nach Anspruch 7, wobei das markierte Nucleosid aus der
Gruppe bestehend aus [Methyl-3H]-thymidin und [C14]-Adenin und
Gemischen davon ausgewählt wird.
10. Verfahren nach Anspruch 6, wobei das Verhältnis in Stufe (c) im
&iacgr;&ogr; Bereich zwischen etwa 10 &khgr; 10"4:l bis 40 &khgr; 10"4:l liegt.
11. Verfahren zur Inhibierung von Bakterienwachstum auf einer Oberfläche,
wobei das Verfahren die folgende Stufe umfaßt:
is (a) Steuern der Bakterienpopulation auf der Oberfläche durch Aufrechterhalten
der Populationsdichte der Bakterien unterhalb einer Populationsdichte, die mit einer Erhöhung oder Stimulation
des Anteils von wachsenden Zellen zu lebensfähigen Zellen in der Population zusammenhängt oder damit verbunden ist.
12. Verfahren nach Anspruch 11, wobei die Populationsdichte der Bakterien
auf der Oberfläche gesteuert wird, indem man den Kontakt von das Anhaften fördernden Mitteln mit den Bakterien beschränkt.
13. Verfahren nach Anspruch 12, wobei das Anhaften fördernde Mittel
aus der Gruppe bestehend aus Polypeptiden, Glycoproteinen und Kohlenhydraten ausgewählt wird.
"·
14. Verfahren nach Anspruch 11, wobei die Populationsdichte der Bakterien
auf der Oberfläche gesteuert wird, indem man die Hydrophobi-
zität der Oberfläche mit einem das Anhaften unterdrückenden Mittel
modifiziert.
15. Verfahren nach Anspruch 14, wobei das das Anhaften unterdrückende
Mittel Natriumoctadecylsulfat ist.
16. Verfahren nach Anspruch 11, wobei die Populationsdichte der Bakterien
auf der Oberfläche gesteuert wird, indem man ein Material mit einem mittleren dynamischen Kontaktwinkel beim Ausbreiten größer
&iacgr;&ogr; als etwa 60 Grad und einem mittleren dynamischen Kontaktwinkel
beim Zurückweichen größer als etwa 20 Grad auswählt.
17. Verfahren nach Anspruch 16, wobei der mittlere dynamische Kontaktwinkel
beim Ausbreiten größer als etwa 90 Grad ist.
18. Verfahren nach Anspruch 11, wobei das Bakterienwachstum in Gegenwart eines wäßrigen Fluids ausgewählt aus der Gruppe bestehend
aus Körperflüssigkeiten, Seren, Kohlenhydrat-haltigen Fluiden, Polypeptid-haltigen Fluiden, Glycoprotein-haltigen Fluiden oder Wasser
erfolgt.
19. Zusammensetzung aufweisend einen mikrobiellen Start- oder Ausgangsreplikationsfaktor,
wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor durch Bakterien erzeugt worden ist und ein Molekulargewicht von
weniger als etwa 3000 gemessen durch Größenausschlußmembranfiltration besitzt.
20. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
beständig'gegen Autoklavieren ist.
21. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
aus Streptococcus sanguis isoliert ist.
22. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
aus S. gordonii Challis Stamm, ATCC Hinterlegungsnummer 35105 isoliert ist.
23. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
aus E. coli 149, Stamm ATCC Hinterlegungsnummer
55535 isoliert ist.
24. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
das Wachstum von Bakterien stimuliert.
is 25. Zusammensetzung nach Anspruch 19, weiter umfassend Komponenten
ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Kationen, Anionen, Enzymen,
Transportpolypeptiden, Coenzymen, Cofaktoren und Polypeptiden.
26. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
das Wachstum von Bakterien bei einer Populationsdichte stimuliert, die unterhalb einer Dichte liegt, die mit einer
Erhöhung oder Stimulation des Anteils von aktiv wachsenden Zellen zu lebensfähigen Zellen in einer Population verbunden ist oder
damit zusammenhängt.
27. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
das Wachstum von Bakterienzellen in einer Population stimuliert oder erhöht, um ein Verhältnis von wachsenden
Zellen zu lebensfähigen Zellen in der Population von etwa 5 &khgr; 10"
4:1 bis 20 &khgr; 10"2:l zu erreichen.
28. Zusammensetzung nach Anspruch 19, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
aus auf einer Oberfläche wachsenden Bakterien isoliert ist.
29. Zusammensetzung nach Anspruch 20, wobei der mikrobielle Startreplikationsfaktor
aus in Suspension wachsenden Bakterien isoliert ist.
30. Verfahren zur Erhöhung der Wirksamkeit eines antimikrobiellen Mittels, aufweisend die Stufe des Kontaktierens von Bakterien mit
dem antimikrobiellen Mittel in Gegenwart des mikrobiellen Startreplikationsfaktors
nach Anspruch 19, um aktives Wachstum der Bakterien einzuleiten.
31. Verfahren nach Anspruch 30, wobei das mikrobielle Mittel für die
Bakterien spezifisch ist.
32. Verfahren zur Bestimmung, ob ein Mittel die Aktivität eines mikrobiellen
Startreplikationsfaktors inhibiert oder erhöht, wobei das Verfahren umfaßt:
(a) Kontaktieren einer Population von Bakterien mit einem Mittel, von dem man vermutet, daß es einen mikrobiellen Startreplikationsfaktor
verstärkt oder inhibiert, und dem mikrobiellen Startreplikationsfaktor nach Anspruch 19, um eine behandelte Population
zu bilden,
(b) Bestimmen eines Anteils von wachsenden Bakterien in der behandelten
Population; und
(c) Bestimmen einer Erhöhung oder Inhibierung von mikrobiellem Startreplikationsfaktor durch Vergleichen des Anteils an wachsenden
Bakterien in der behandelten Population zu dem Anteil an wachsenden Zellen in einer Bakterienpopulation, die mit
dem mikrobiellen Startreplikationsfaktor kontaktiert worden ist.
&iacgr;&ogr;
33. Verfahren nach Anspruch 32, wobei das Ausmaß des Wachstums
durch Messen der Menge an pro Bakterium einverleibtem, radioaktiv markierten Nucleotid bestimmt wird.
34. Verfahren nach Anspruch 32, wobei das Bakterium S, gordonii
is Challis, ATCC Hinterlegungsnummer 35105 ist.
35. Verfahren nach Anspruch 32, wobei die Bakterien an eine Oberfläche
gebunden werden.
36. Verfahren nach Anspruch 32, wobei das Mittel, von dem man vermutet, daß es einen mikrowellen Startreplikationsfaktor inhibiert
oder verstärkt, an eine Oberfläche gebunden wird.
37. Verfahren zur Messung der Aktivität eines mikrowellen Startreplikationsfaktors
auf Bakterien, umfassend:
(a) Kontaktieren einer Bakterienpopulation mit dem mikrowellen Startreplikationsfaktor nach Anspruch 19, um eine behandelte
Population zu bilden; und
(c) Bestimmen des Ausmasses an Stimulation des mikrobiellen
Wachstums durch Vergleichen des mikrobiellen Wachstums in der behandelten Population zum mikrobiellen Wachstum in einer
unbehandelten Bakterienpopulation.
38. Verfahren nach Anspruch 37, wobei das mikrobielle Wachstum durch
Messen der Menge an pro Bakterium einverleibtem, radioaktiv markiertem Nucleotid bestimmt wird.
&iacgr;&ogr; 39. Verfahren nach Anspruch 37, wobei die Bakterienpopulation eine
biologisch reine Population von S. gordonii Challis, ATCC Hinterlegungsnummer
35105 ist.
40. Verfahren nach Anspruch 37, wobei die Bakterienpopulation an eine
Oberfläche gebunden wird.
41. Verfahren zur Stimulierung mikrobiellen Wachstums, umfassend: Kontaktieren einer Population mit einer Menge an mikrobiellem
Startreplikationsfaktor nach Anspruch 19, die wirksam ist, um den Anteil von aktiv wachsenden Zellen zu lebensfähigen Zellen in der
Bakterienpopulation zu erhöhen.
42. Verfahren nach Anspruch 41, wobei der Anteil an aktiv wachsenden
Zellen zu lebensfähigen Zellen in der Population auf ein Verhältnis
von etwa 5 &khgr; 10"4:l bis 20 &khgr; 10"2:l erhöht wird.
43. Verfahren nach Anspruch 40, wobei die Bakterienpopulation an eine
Oberfläche gebunden wird.
44. Verfahren nach Anspruch 41, wobei die Bakterienpopulation in Suspension vorliegt.
45. Genetische Kassette, aufweisend:
(a) eine erste, für ein bakterielles Reportergen codierende DNA-Sequenz,
die verbunden ist mit den 3'-Ende
(b) einer zweiten DNA-Sequenz, die an ein Gen oder einen Abschnitt
davon hybridisiert, dessen Expression koordinativ durch
Zellwachstum reguliert wird und das bzw. der in dem Bakterienchromosom
angeordnet ist, um die genetische Kassette zu bilden, wobei die zweite DNA-Sequenz für die Rekombination und
Integration der genetischen Kassette oder eines Abschnitts davon is in das Gen im Bakterienchromosom sorgt.
46. Genetische Kassette nach Anspruch 45, wobei die erste DNA-Sequenz
für eine bakterielle Amylase codiert.
47. Genetische Kassette nach Anspruch 45, wobei die zweite DNA-Sequenz
für einen Abschnitt eines streptogenen 16S ribosomalen RNA-Gens codiert.
48. Genetische Kassette nach Anspruch 45, weiter umfassend ein auswählbares
Markergen, das mit der ersten und zweiten DNA-Sequenz verbunden ist.
49. Plasmid mit einer genetischen Kassette nach Anspruch 45.
50. Bakterienstamm mit einer genetischen Kassette oder einem Abschnitt
davon nach Anspruch 45, stabil integriert in das Bakterienchromosom an einer Stelle unter der Steuerung eines Promotors,, dessen Expression
koordinativ durch Zellwachstum reguliert wird.
51. Bakterienstamm nach Anspruch 50, wobei die bakterielle Wirtszelle
S. gordonii Challis, Stamm MSP818, ATCC Nr. 69529 ist.
52. Bakterienstamm gemäß Anspruch 50, wobei die Wirtszelle S. gordonü
Challis, Stamm MSP812, ATCC Nr. 69528 ist.
53. Bakterienstamm mit einer genetischen Kassette oder einem Abschnitt
davon nach Anspruch 45, wobei der Bakterienstamm keine endogene, für das bakterielle Reportergenprodukt codierende DNA-Sequenz besitzt.
54. Verfahren zur Messung der Aktivität eines mikrobiellen Startreplikationsfaktors,
umfassend:
(a) Bereitstellen einer Bakterienpopulation, wobei die Bakterienpopulation
eine stabil integrierte genetische Kassette oder einen Abschnitt davon unter der Steuerung eines Promotors besitzt,
dessen Expression koordinativ durch Zellwachstum reguliert wird, wobei die Kassette aufweist:
(i) eine erste, für ein bakterielles Reportergenprodukt codierende
DNA-Sequenz, die verbunden ist mit dem 3'-Ende
(ii) einer zweiten DNA-Sequenz, die an ein Gen oder einen Abschnitt davon hybridisiert, dessen Expression koordinativ
durch Zellwachstum reguliert wird und das bzw. der im Bakterienchromosom angeordnet ist, um die genetische
Kassette zu bilden, wobei die zweite DNA-Sequenz aus
reichend Sequenzidentität zu dem Gen oder dem Abschnitt davon besitzt, um für eine Rekombination und Integration
der genetischen Kassette oder eines Abschnitts davon in das Gen im Bakterienchromosom zu sorgen,
(b) Kontaktieren der Bakterienpopulation mit einem mikrobiellen Startreplikationsfaktor, um eine behandelte Population zu bilden;
und
(c) Bestimmen der Menge an mikrobiellem Wachstum durch Messen der Menge an Reportergenprodukt, das pro Zeiteinheit pro
Zelle in der behandelten Population erzeugt wird, verglichen mit der Menge an Reportergenprodukt pro Zeiteinheit pro Zelle in
einer unbehandelten Population.
55. Verfahren zur Messung mikrobiellen Wachstums, umfassend:
(a) Bereitstellen einer Bakterienpopulation, wobei die Bakterienpopulation
eine stabil integrierte genetische Kassette oder einen Abschnitt davon unter der Steuerung eines Promotors besitzt,
dessen Expression koordinativ durch die Rate an Zellwachstum reguliert wird, wobei die Kassette umfaßt:
(i) eine erste, für ein bakterielles Reportergenprodukt codierende
DNA-Sequenz, die verbunden ist mit dem 3'-Ende
(ii) einer zweiten DNA-Sequenz, die an ein Gen oder einen
Abschnitt davon hybridisiert, dessen Expression koordinativ durch Zellwachstum reguliert wird und das bzw. der im
Bakterienchromosom angeordnet ist, um die genetische Kassette zu bilden, wobei die zweite DNA-Sequenz für
&iacgr;&ogr; Rekombination und Integration der genetischen Kassette
oder eines Abschnitts davon in das Gen im Bakterienchromosom sorgt; und
(b) Bestimmen der Menge an Reportergenprodukt in der Population.
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