DE2344528A1 - Verfahren und vorrichtung zur analyse unter verwendung von farb-algebra und von bild-verarbeitungsverfahren - Google Patents
Verfahren und vorrichtung zur analyse unter verwendung von farb-algebra und von bild-verarbeitungsverfahrenInfo
- Publication number
- DE2344528A1 DE2344528A1 DE19732344528 DE2344528A DE2344528A1 DE 2344528 A1 DE2344528 A1 DE 2344528A1 DE 19732344528 DE19732344528 DE 19732344528 DE 2344528 A DE2344528 A DE 2344528A DE 2344528 A1 DE2344528 A1 DE 2344528A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- signals
- sample
- cell
- signal
- compared
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 54
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 title description 22
- 238000012545 processing Methods 0.000 title description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 161
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 claims description 79
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 claims description 70
- 210000000805 cytoplasm Anatomy 0.000 claims description 64
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 claims description 38
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 claims description 31
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 27
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 27
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 14
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 claims description 8
- 230000004044 response Effects 0.000 claims description 8
- 210000003651 basophil Anatomy 0.000 claims description 7
- 238000011835 investigation Methods 0.000 claims description 7
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 claims description 6
- 238000005070 sampling Methods 0.000 claims description 5
- 210000003979 eosinophil Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000000440 neutrophil Anatomy 0.000 claims description 3
- 210000001616 monocyte Anatomy 0.000 claims description 2
- 101000860173 Myxococcus xanthus C-factor Proteins 0.000 claims 1
- 230000015654 memory Effects 0.000 description 26
- 210000004940 nucleus Anatomy 0.000 description 20
- 230000008859 change Effects 0.000 description 19
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 16
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 10
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 9
- 210000003855 cell nucleus Anatomy 0.000 description 9
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 9
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 9
- 230000001934 delay Effects 0.000 description 8
- 238000004159 blood analysis Methods 0.000 description 7
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 7
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 7
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 7
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 7
- 230000009977 dual effect Effects 0.000 description 6
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 6
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 description 6
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 5
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 5
- 102000001554 Hemoglobins Human genes 0.000 description 4
- 108010054147 Hemoglobins Proteins 0.000 description 4
- 101000836173 Homo sapiens Tumor protein p53-inducible nuclear protein 2 Proteins 0.000 description 4
- 102100027218 Tumor protein p53-inducible nuclear protein 2 Human genes 0.000 description 4
- 230000002159 abnormal effect Effects 0.000 description 4
- 238000004820 blood count Methods 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 4
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- 238000004040 coloring Methods 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 2
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 2
- 210000001772 blood platelet Anatomy 0.000 description 2
- 238000004422 calculation algorithm Methods 0.000 description 2
- 239000003086 colorant Substances 0.000 description 2
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 2
- 230000001086 cytosolic effect Effects 0.000 description 2
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 2
- 230000006870 function Effects 0.000 description 2
- 238000007429 general method Methods 0.000 description 2
- 238000000691 measurement method Methods 0.000 description 2
- 239000013618 particulate matter Substances 0.000 description 2
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 2
- 238000007781 pre-processing Methods 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 2
- RBTBFTRPCNLSDE-UHFFFAOYSA-N 3,7-bis(dimethylamino)phenothiazin-5-ium Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC2=[S+]C3=CC(N(C)C)=CC=C3N=C21 RBTBFTRPCNLSDE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MCSXGCZMEPXKIW-UHFFFAOYSA-N 3-hydroxy-4-[(4-methyl-2-nitrophenyl)diazenyl]-N-(3-nitrophenyl)naphthalene-2-carboxamide Chemical compound Cc1ccc(N=Nc2c(O)c(cc3ccccc23)C(=O)Nc2cccc(c2)[N+]([O-])=O)c(c1)[N+]([O-])=O MCSXGCZMEPXKIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000035943 Aphagia Diseases 0.000 description 1
- 238000012935 Averaging Methods 0.000 description 1
- 244000153665 Ficus glomerata Species 0.000 description 1
- 235000012571 Ficus glomerata Nutrition 0.000 description 1
- 235000015125 Sterculia urens Nutrition 0.000 description 1
- 235000005811 Viola adunca Nutrition 0.000 description 1
- 240000009038 Viola odorata Species 0.000 description 1
- 235000013487 Viola odorata Nutrition 0.000 description 1
- 235000002254 Viola papilionacea Nutrition 0.000 description 1
- 230000005856 abnormality Effects 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- 238000009534 blood test Methods 0.000 description 1
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 125000003636 chemical group Chemical group 0.000 description 1
- 230000004456 color vision Effects 0.000 description 1
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- SEACYXSIPDVVMV-UHFFFAOYSA-L eosin Y Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C([O-])=C(Br)C=C21 SEACYXSIPDVVMV-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 230000002327 eosinophilic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 238000010230 functional analysis Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 1
- 210000003041 ligament Anatomy 0.000 description 1
- 230000004807 localization Effects 0.000 description 1
- 229960000907 methylthioninium chloride Drugs 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000008722 morphological abnormality Effects 0.000 description 1
- 239000005445 natural material Substances 0.000 description 1
- 230000003448 neutrophilic effect Effects 0.000 description 1
- 208000015124 ovarian disease Diseases 0.000 description 1
- 238000003672 processing method Methods 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 239000001044 red dye Substances 0.000 description 1
- 238000009877 rendering Methods 0.000 description 1
- 238000007447 staining method Methods 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000007487 urography Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G06—COMPUTING; CALCULATING OR COUNTING
- G06V—IMAGE OR VIDEO RECOGNITION OR UNDERSTANDING
- G06V20/00—Scenes; Scene-specific elements
- G06V20/60—Type of objects
- G06V20/69—Microscopic objects, e.g. biological cells or cellular parts
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1429—Signal processing
- G01N15/1433—Signal processing using image recognition
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
- G01N15/10—Investigating individual particles
- G01N15/14—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry
- G01N15/1468—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry with spatial resolution of the texture or inner structure of the particle
- G01N2015/1472—Optical investigation techniques, e.g. flow cytometry with spatial resolution of the texture or inner structure of the particle with colour
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/17—Systems in which incident light is modified in accordance with the properties of the material investigated
- G01N21/25—Colour; Spectral properties, i.e. comparison of effect of material on the light at two or more different wavelengths or wavelength bands
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Multimedia (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Processing Or Creating Images (AREA)
- Image Processing (AREA)
- Image Analysis (AREA)
Description
h. September 1973 3057
JAMES EDMOND GREEN
317 Rosemont Drive, S.E. Huntsville, Alabama,
V.St.A.
Verfahren und Vorrichtung zur Analyse unter Verwendung von Farb-Algebra und von Bild-Verarbeitungsverfahren
Die vorliegende Erfindung betrifft allgemein Analysierverfahren und -systeme und insbesondere ein Verfahren und eine
Vorrichtung zur Teilchenanalyse unter Verwendung von Farb-Algebra und von BiId-Verarbeitungsverfahren.
Der Bedarf für ein genaues, schnelles und relativ kostengünstiges System zur Analyse eines teilchenförmigen Stoffes,
der in einem Gas oder einer Flüssigkeit enthalten ist, besteht auf vielen Gebieten der gegenwärtigen Technologie.
Seit kurzem unternommene Anstrengungen auf dem Gebiet der Untersuchung und Überwachung von Verunreinigungen haben
das Bedürfnis nach einem Mittel zui· Teilchenidentifikation,
-klassifikation und -morphologleanalyse betont. Ein ähn-
4 0 931 1/0975
licher Bedarf besteht auch auf dem Gebiet der meaizmischen
Technologie zur Automatisierung von arbeitsintensiven, medizinischen
Laborbestimmungen, wie z. B. von Blutanalysen.
Der kürzliche Anstieg der medizinischen Heilkosten hat die Hoffnung geweckt, diese Kosten senken zu können durch die
Anwendung der Automatisierungstechnologie auf arbeitsintensive, medizinische Bestimmungen. Eine der grundlegendsten
Untersuchungen, die in der grösstenteils kursorischen Untersuchung
oder Behandlung eines Patienten durchgeführt werden, ist die Blutanalyse. Blut besteht aus drei Hauptkomponenten
von Teilchen: rote Blutkörperchen (RBC), weisse Blutkörperchen (WBC) und Blutpiattchen, die in einem Fluid (Plasma)
schweben. Eine Analyse der relativen und absoluten Mengen dieser Teilchen und zusätzliche Information bezüglich ihrer
Morphologie (Form und Struktur) bieten bedeutende Einsicht in den Gesundheitszustand des Patienten.
Verschiedene Unternehmen haben gegenwärtig Instrumente zur automatisierten Blutanalyse erfolgreich entwickelt und in
den Verkehr gebracht. Technions's SMA-Systeni zur Plasmauntersuchung
und das Hemalog-System zur Blutkörperchenanalyse und Coulter Electronics' Model ß Blutkörperchenzähler
sind allgemein bekannte Beispiele. Unter Verwendung verschiedlicher Technologien stellen das Hemalog- und Coulter
S-System eine kostengünstige Möglichkeit für die Zählung der verschiedenen teilchenförmigen Bestandteile einer Blutprobe
dar. Der beiden Technologien zugrundeliegende Gedanke besteht darin, eine dünne Säule verdünnten Blutes an einem
Sensor vorbeiströmen zu lassen, der erkennt, ob ein Blutkörperchen in dem flüssigen Medium vorhanden ist. Dieses
sogenannte "Durchfluss"-Prinzip ermöglicht eine Zählung
der vorhandenen Teilchen, bieten Jedoch keine qualitative Information bezüglich der Teilchenart und der Morphologie
der Teilchen.
- 2 40981 1 /0975
Es ist daher notwendig, die Probe vorher aufzuspalten, um festzulegen, ob das Instrument ein RBG oder ein VBC zählt.
Diese beiden Arten von Blutkörperchen haben deutlich unterschiedliche chemische Eigenschaften, so dass sie relativ
leicht getrennt werden können. Es ist jedoch nicht möglich, diese Blutkörperchen mit der augenblicklich zur Verfügung
stehenden Technologie entsprechend ihren individuellen morphologischen Unterschieden darüberhinaus automatisch zu
differenzieren.
Eine solche Differenzierung ist jedoch bei etwa 25 % aller Krankenhauspatienten ausserordentlich wichtig und bei etwa
50 % der Patienten sehr wünschenswert. Dies trifft vor allem
auf die zahlreichen Typen von WBCs zu, deren realtive Konzentration
und individuelle Morphologie äusserst wichtig sind. Von geringerer Bedeutung, aber immer noch wichtig, ist
der Nachweis anormaler Morphologie der roten Blutkörperchen. Diese allgemein als "Differential"-Zählung oder Differentialblutbild
bezeichneten Messungen werden gegenwärtig von Hand durchgeführt.
Es bestehen zwei grundsätzliche Methoden zum morphologischen Differenzieren eines einzelnen Blutkörperchens: Eine direkte
oder Strukturerkennungs-Methode und eine indirekte Methode. Letztere beruht auf dem Vorhandensein indirekter Kenn"
zeichen chemischer Unterschiede, die einen hohen Grad von Korrelation mit den direkten Kennzeichen morphologischer
Unterschiede der Grundtypen von VBCs aufweisen. Technion's
Hemalog-D, das einzige kommerziell bekannte System für Differential-Messungen
j arbeitet nach dieser Methode unter Verwendung von Enzymfarbstoffen als chemisches Kennzeichen
zur Trennung von fünf Grundtypen der VBCs.
Vie bei allen indirekten Messmethoden bestehen theoretische und praktische Fehlerquellen. Anormale Abweichungen innerhalb
jeder der fünf VBC-Grundgruppen z. B. können nicht er-
40981 1 /0975
kannt werden. Bei hochgradigen Eisikopatienten können 10
bis 20 % der Patienten eine relativ normale Verteilung bezüglich der fünf chemischen Gruppen besitzen und dennoch
morphologische Abnormitäten aufweisen, die eine Krankheit anzeigen. Die morphologisch-chemische Korrelation ist also
unvollständig, was zu falschen Negativ-Befunden führt der schwersten Art von Fehlern. Ein Teil der gesunden Bevölkerung
hat ausserdem ungewöhnlich niedrige Enzymwerte ohne begleitende morphologische Abnormitäten oder klinische
Symptome, was zu unwirtschaftlichen, falschen Positiv-Befunden führt. Durch die indirekte Methode wird ausserdem
die wichtige KBC-Morphologie nicht ermöglicht.
Bei der direkten Methode wird die Morphologie der Teilchen oder Zellen unmittelbar unter Verwendung von Computer-Verfahren
für die Strukturerkennung geprüft. Die Herstellung eines Differential-Blutbildes unter Verwendung von Strukturerkennung
sverfahren ist der Fachwelt bekannt. Bis jetzt bestand
das Problem in der Wirtschaftlichkeit. Vor allem die bei der augenblicklichen Technologie verwendeten Instrumente
erforderten eine Hochleistungs-Datenverarbeitungsanlage, die
für diese in erster Linie kommerzielle Anwendung zu kostspielig war. Das gleiche allgemeine Problem besteht auf
anderen technologischen Gebieten, bei denen Teilchen-Analysierverfahren
angewandt werden.
Eine allgemeine Aufgabe der Erfindung besteht dementsprechend in einem verbesserten System zur Analyse eines Gegenstandes.
Eine besondere Aufgabe der Erfindung besteht in einem System zur Teilchenanalyse unter Verwendung von Färb-Algebra und in
einer bevorzugten Ausführungsform - unter Verwendung der Farb-Algebra in Verbindung mit Bild-Verarbeitungsverfahren.
Eine weitere spezielle Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht als eine ihrer Ausführungsformen in einem gewerblich
verwendbaren System zur automatisierten Blut-Differential-Untersuchung.
Eine weitere spezielle Aufgabe der Erfindung besteht in
einem. System zur automatisierten Blut-Differential-Untersuchung
unter Verwendung von Strukturerkennungsverfahren in Verbindung mit chemisch/optischen Kennzeichen, um ein gewerblich
verwendbares System zu erhalten.
Eine weitere Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht in der Anwendung von Farb-Algebra-Verfahren, die die Verwendung
eines vereinfachten Algorithmus ermöglichen.
Eine weitere Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht in einem System zur automatisierten Blut-Differential-Untersuchung
unter Verwendung von Abtast- und Datenverarbeitungseinheiten, die in Verbindung mit den Farb-Algebra-Verfahren
die Anforderung an die Leistungsfähigkeit des Computers und die Auswertungszeit bedeutend reduzieren.
Ein Vorteil der Erfindung besteht in der erhöhten Genauigkeit der Ausführungsform des Systems zur automatisierten Blut-Differential-Untersuchung
gegenüber bestehenden Systemen infolge der'einer direkten Messmethode innewohnenden Überlegenheit
über eine indirekte Hessmethode zusammen mit der zusätzlichen Fähigkeit der feineren Unterscheidung zv/ischen
WBCs einer der fünf Grundtypen, der Fähigkeit, anormale
im Gegensatz zu normaler Morphologie zu erkennen, und der Fähigkeit zu EBC-Messungen.
Ein weiterer Vorteil der erfindungsgemässen Ausführungsform
zur Blutanalyse besteht darin, dass zusammen mit den erfindungsgemässen Farb-Algebra-Verfahren herkömmliche Blut-Anfärbemethoden
verwendet werden können.
Diese und weitere Vorteile der Erfindung ergeben sich aus
40981 1/0975
der nachfolgenden Beschreibung einer bevorzugten, zur Darstellung ausgewählten und in den beiliegenden Zeichnungen
dargestellten Ausführungsform. Es zeigen:
Fig. 1A ein funktionelles Blockschema der erfindungsgemässen
Ausführungsform zur Blutanalyse,
Fig. 1B ein detaillierteres funktionelles Blockschema der Erfindung unter Darstellung des Datenflusses,
Fig. 2A bis 2G ein Beispiel eines Hämogramms einer Blutprobe und
Fig. J bis 9 zum Teil als Blockschaltbild und zum Teil in
schematischer Form eine erfindungsgemässe Ausführungsform
zur Blutanalyse.
Das erfindungsgemässe Analysensystem für teilchenförmige
Stoffe kann zur Untersuchung vieler verschiedener Arten von teilchenförmigen Stoffen verwendet werden. Zum Zwecke der
Darstellung und zur Erleichterung der Beschreibung befasst sich die folgende Erläuterung mit einer zur Blutuntersuchung
dienenden Ausführungεform des Analysiersystems für teilchenförmige,
Stoffe , wie sie in dem funktioneilen Blockschema von Fig. 1 gezeigt ist.
Die vorliegende Erfindung verwendet Methoden der Farb-Algebra zur Reduzierung der Anforderung an die Leistungsfähigkeit
des Computers und der Auswertungszeit. Bevor mit der detaillierten Beschreibung der vorliegenden Erfindung
fortgefahren wird, ist es sinnvoll, kurz einige Grundinformationen
bezüglich "Farben" zu geben.
Die Farben-Wahrnehmung ist eine komplexe physiologische
Erscheinung, die unter Ansprechen auf Änderungen der spektralen Komponenten des sichtbaren, auf die Netzhaut treffen-
- 6 4C981 1/0975
5057
den Lichts auftritt. Die quantitative Beschreibung der Farbe wird durch den Umstand erschwert, dass die gleiche wahrgenommene
Farbe durch zahlreiche Kombinationen unterschiedlicher Spektralkomponenten erzeugt werden kann.
Um die Beschreibung von Farben in der Wissenschaft zu standardisieren,
ist von der C.I.E. (Commission Internationale de L'Eclairage) im Jahre 1931 ein. System von Farbton-Messungen
entwickelt worden. Farbton-Messungen werden durch Faltung der spektralen Komponenten des Lichts mit drei spezifischen
SpektralVerteilungen zur Erzeugung der Rot-, Grün- und Blau-Intensitäten erhalten. Der Anteil jeder dieser Intensitäten
wird durch X-, Y- bzw. Z-Koordinaten ausgedrückt, wobei:
R + G + B
G
R + G + B
B
R + G + B
Die drei Spektralverteilungen wurden so eingerichtet, dass jede Vellenlängenkombination, die die gleiche subjektive
Farbe erzeugt, auch die gleichen Farbton-Koordinaten erzeugt.
Die drei Komponenten X, Y und Z, die in allgemeiner Form dem Rot-, Grün- und Blau-Anteil des Lichts entsprechen,
können in einem zweidimensionalen Kurvenbild aufgetragen werden.
Die Farbton-Koordinaten sind in der Vergangenheit als eine oder mehrere Eigenschaften eines vieldimensionalen
- 7 -40981 1/0975
g 23U528
Eigenschaftenraums in einem System zur Strukturerkennung
verwendet worden, um u.a. Blutkörperchen zu erkennen und zu klassifizieren.
Biologische Proben werden angefärbt, um den Kontrast von normalerweise durchsichtigen Geweben zu verbessern und verschiedene
Strukturen leichter erkennen zu können. Blutzellen werden normalerweise mit einer Romanovsky-Farbe angefärbt,
wie z. B, der Wright-Farbe, einem Zwei-Komponenten-Farbsystem,
das eine rote und blaue Farbe enthält. Die blaue Farbkomponente färbt die Zellkerne an, das Zytoplasma der
Lymphozyten und bestimmte Körnchen im Zytoplasma anderer
Zellen, insbesondere die basophilen Granulozyten der basophilen Zellen. Die rote Färbstoffkomponente wird von den
roten Blutkörperchen absorbiert, etwas von dem Zytoplasma der meisten weissen Blutkörperchen, von eosinophilen Granulozyten
und zu einem gewissen Ausmass von den Zellkernen. Diese Anfärbungsmuster sind nicht absolut oder sich gegenseitig
ausschliessend, da fast Jeder Zellteil beide Farbkomponenten
etwas absorbiert. Gewöhnlich herrscht jedoch die eine oder andere Farbkomponente vor und dies bildet
die Grundlage eines funktioneilen Analysiersystems unter Verwendung der Farbunterschiede. Das Zytoplasma der meisten
Zellen mit Ausnahme der Lymphozyten, wird so hellviolett bis rot-organge gefärbt, das Zytoplasma der Lymphozyten wird
blass-blau angefärbt, der Zellkern wird tief-purpurrot angefärbt,
die eosinophilen Grenulozyten werden tief-rot bis
orange angefärbt und die basophilen Granulozyten werden tief-blau angefärbt.
Für Blutkörperchen, die mit der Wright-Farbe angefärbt wurden, liegt die Rot-Absorptionsspitze der Eosin-Y-Farbkbmponente
bei etwa 570 bis 500 nm, die Blau-Absorptionsspitze
des Methylenblau und dessen Derivate liegt bei etwa 500 bis 530 nm und die natürliche Blau-Violett- Absorptions-
- 8 409811/0975
spitze des Hämoglobins liegt bei etwa 400 bis 420 nm.
Die vorliegende Erfindung nützt diese Farbinformation dazu aus, eine Information bezüglich des Differential-Kontrastes
zu erzeugen, der zwischen verschiedenen Punkten oder Bereichen in der Zelle besteht. Durch Beleuchten der Probe
mit weissem Licht und anschliessende Filtration durch schmalbandige Filter wird die Farbinformation in eine Differentialkontrast-Information
verwandelt. Eine andere Möglichkeit zum Erhalten der Differential-Kontrastinformation
besteht im Beleuchten der Blutprobe mit Licht aus- * gewählter, schmaler Vellenlängenbänder.
Jeder Punkt oder Bereich in der Zelle verändert das Licht entsprechend seinen Absorptions-, transmissions- und Reflektionseigenschaften.
Die Bezeichnung "Kontrast" bezieht sich auf einen wesentlichen Unterschied in der Änderung des
Lichts durch zwei oder mehr Punkte oder Bereiche der Zelle bei einem Vellenlängenband. Die Bezeichnung "Differential-Kontrast"
bezieht sich auf ein unterschiedliches Muster des Kontrastes bei zwei oder mehr WeHenlängenbändern.
Die geeigneten Wellenlängenbänder werden unter Berücksichtigung des spektralen Umfangs der Eigenschaften der Lichtabänderung
durch den Farbstoff und/oder unter Berücksichtigung der Lichtabänderungseigenschaften des natürlichen Materials,
wie z. B. des Hämoglobins, ausgewählt. Mit passend ausgewählten Wellenlängenbändern wird der gewünschte Differential-Kontrast
der verschiedenen, zu erfassenden Zellenpunkte oder -bereiche durch deren sichtbar gemachte Dichte-
und/oder Reflexions-Unterschiede erreicht. Wenn die Wellenlängenbänder in geeigneter Weise ausgewählt sind, ist ein
bestimmter Zellenbereich, wie z. B. das WBC-Zytoplasma bei
einem Wellcnlängenband sehr dicht und bei einem anderen relativ durchsichtig. Ein anderer. Bereich, wie z. B. das
RBC-Zytoplasma zeigt bei den gleichen Wellenlängenbändern
- 9 -A 09811/0975
23U528
ein unterschiedliches Kontrastmuster. Der durch die Auswahl der verschiedenen Wellenlangenbänder eingestellte Differential-Kontrast
der Zellenteile erlaubt die Identifikation und Klassifikation der Zellenteile oder -bereiche mittels
einer nachstehend erläuterten Farb-Algebra.
Die Farb-Algebra kann durch Abtasten und Digitalisieren des Signals, das die durch die Probe abgeänderte Beleuchtung
bei jedem der Wellenlangenbänder darstellt, um eine digitalisierte
Datenfolge zu erzeugen, und ansc<thliessendes Aufzeichnen der digitalisierten Werte in Form eines Hämogramms,
wie es in Fig; 2 gezeigt wird, durchgeführt werden. Die Hämogramme der Punkte in der abgetasteten Blutprobe
zeigen in charakteristischer Weise zwei oder mehr Punktgruppen oder Spitzen bei unterschiedlichen Dichtewerten.
Wie in Fig. 2 zu sehen ist, können die Spitzen z. B. einer Gruppe von Hintergrundpunkten bei etwa der gleichen Dichte
oder einer anderen Gruppe etwas dichterer Zell-Zytoplasmapunkte
oder möglicherweise einer dritten Gruppe sehr dichter Zellkernpunkte entsprechen. Mehrere Typen von Zellkomponenten
können in einer Spitze bei einer Wellenlänge vereinigt sein, v/erden Jedoch bei einer anderen Wellenlänge
getrennt. In Fig. 2 sind z. B. die WBG- und BBC-Kerne, die basophilen Granulozyten und das Lymphozyten-Zytoplasma in
der Spitze 3 des Hämogramms A vereinigt, werden jedoch in
den Spitzen 5, 6 und 7 des Hämogramms B getrennt.
In der Praxis hat sich das Darstellen in einem Hämogramm als ein brauchbares Verfahren zum Festlegen von Schwellenwerten
erwiesen. Dies soll jedoch so verstanden werden, dass die Farb-Algebra auch durch beliebiges Festlegen der
Schwellenwerte ohne Abtasten, Digitalisieren oder Aufzeichnen in einem Hämogramm durchgeführt werden kann. Eine passende
Farb-Algebra kann z. B. zum Nachweis von Probenbereichen von Blutkörperchen verwendet werden, die in einem
flüssigen Strahl an einem Sensor vorbeiströmen. In diesem
- 10 40981 1/0975
44 23U528
Fall findet kein Abtasten, Prüfen, Digitalisieren oder Aufzeichnen in einem H*inogramm statt,
Die Schwellenwerte werden zum Trennen der Spitzen des Hämogramms festgelegt. Die Schwellenwerte sind als T^,
Tg und Tc dargestellt, wobei T'B die Verwendung mehrfacher
Schwellenwerte erläutert. Jeder Funkt der digitalisierten Datenfolge kann dann als ein mit dem Schwellenwert verglichenes
Signal in binärer Form charakterisiert werden, das die verschiedenen Schwellenwerte entweder übersteigt oder
nicht übersteigt.
Die mit Schwellenwerten verglichenen Signale können kombiniert werden, um die folgende Farb-Algebra zu bilden:
| A | B1 | B | C | |
| Hintergrund | 0 | 0 | 0 | 0 |
| RBC-Zytoplasma | 0 | 0 | 1 | 1 |
| RBC-Zellkerne | 1 | 1 | 1 | 1 |
| WBG-Zellkerne | 1 | 1 | 1 | 0 |
| Monozyten | 0 | 0 | 1 | • ο |
| Neutrophiles Zytoplasma | 0 | 0 | 1 | 0 |
| Eosinophile Granulozyten | 0 | 1 | 1 | 0 |
| Basophile Granulozyten | 1 | 0 | 1 | 0 |
| Lymphozyten-Zytoplasma | 1 | 0 | 0 | 0 |
Diese Farb-Algebra kann für das oben genannte Beispiel
einer Blutprobe, die mit einem Wright-Farbstoff angefärbt
ist, und die oben genannten Wellenlängenbänder verwendet werden, Andere Arten der Farb-Algebra können zur Klassifizierung
von Zellteilen verwendet werden, die mit einem anderen I'arbsystem
angefärbt wurden oder bei Verwendung der charakteristischen Absorption anderer natürlicher Zellbestandteile,
wobei die Wellenlängenbänder wieder in der Weise ausgewählt werden, dass sich zumindest zwischen zwei verschiedenen
Bereichen der Probe ein Differentialkontrast einstellt.
- 11 409811/0975
Aus der Tabelle kann man ersehen, dass durch die Farb-Algebra
ein bestimmter Punkt oder Bereich in der Weise gekennzeichnet wird, dass er einer von mehreren Klassifikationen der Zellbestandteile
angehört. Die Farb-Algebra ermöglicht ausserdem eine Unterscheidung zwischen den Zellkomponenten und dem
Hintergrund in der Blutprobe. Die mit Schwellenwerten verglichenen Signale können auf diese Weise algebraisch kombiniert
werden, um Signale zur Klassifizierung der Probenbereiche zu erzeugen.
Das obige Beispiel einer Farb-Algebra erläutert die Klassifizierung
der Zellbestandteile und des Hintergrunds durch algebraische Kombination der mit Schwellenwerten verglichen
Signale. Eine andere Möglichkeit besteht darin, die Signale algebraisch zu kombinieren und dann mit Schwellenwerten zu
vergleichen unter weiterer oder ohne weitere algebraische Kombination, um Klassifizierungssignale für die Probenbereiche
zu erzeugen.
Aus der vorausgehenden Beschreibung sieht man, dass die Verwendung
der Färb-Algebra für die vorliegende Erfindung das
Auftrennen eines Bildes in eine Anzahl von Kategorien der Zellbestandteile oder des Hintergrunds ermöglicht, ohne die
herkömmlichen Rechenverfahren für die Farbton-Koordinaten
und die anschliessende schwierige Strukturerkennungs-Datenverarbeitung
zu erfordern. Man sieht auch, dass es nicht notwendig ist, für die Anwendung des Differentialkontrastes
und der Merkmale der ITarb-Algebra entsprechend der vorliegenden
Erfindung die Zellen anzufärben. Alternativ können auch die natürlichen Bestandteile der Zellen zur Erzeugung
der notwendigen Kontrastmuster verwendet werden. Zusätzlich zur natürlichen Absorption des Hämoglobins bei 400 nm kann
z. B. die Absorptionsspitze des DNA (findet sich normalerweise in den Zellkernen) bei 2^8 nm und die Absorptionsspitze der Proteine (sind normalerweise vor allem im ZeIl-Zytoplasma
anzutreffen).bei 280 nm als die Wellenlängen-
- 12 409811/0975
bänder verwendet werden. Wegen der teilweisen Überlappung der Absorptionskurven dieser beiden Zellbestandteile und dem
Vorhandensein einiger anderer Bestandteile, die ebenfalls bei diesen Wellenlängen absorbieren, ist die sich ergebende
Färb-Algebra etwas komplizierter als die sich bei Verwendung
des Wright-Farbstoffes ergebende. Bei Verwendung dieser drei Wellenlängenbänder würde ausserdem die lange Erfahrung der
medizinischen Fachwelt mit dem Wright-Blutfarbstoff verloren gehen. Aus diesem Grund wird das Wright-Farbensystem verwendet.
Das erfindungsgemässe Merkmal der Farb-Algebra ist ausserdem
nicht auf drei Wellenlängenbänder wie bei der bevorzugten Ausführungsform beschränkt. Jeder Satz von zwei oder mehr
Wellenlängenbändern, die einen Differentialkontrast zwischen wenigstens zwei Bereichen des Untersuchungsobjekts erzeugen,
kann für eine geeignete Färb-Algebra verwendet werden.
Nach der Beschreibung der die vorliegende Erfindung betreffenden Prinzipien des Differentialkontrasts und der Farb-Algebra
wird nun mit einer Beschreibung der grundsätzlichen Merkmale der bevorzugten Ausführungsform fortgefahren.
Die Fig. 1A und 1B, zu denen nun zurückgekehrt wird, zeigen
in Blockform das Grundkonzept, das Arbeitsprinzip und den Datenfluss der zur Blutanalyse dienenden Ausführungsform.
Die Blutprobe wird in Fig. 1A für die Analyse vorbereitet, indem sie in einer dünnen Schicht auf einem Objektträger
oder einer anderen geeigneten Oberfläche verteilt und mit einem geeigneten Blutfarbstoff angefärbt wird. Normalerweise
wird der präparierte Objektträger durch ein optisches System (Mikroskop) vergrö'ssert und ein Teil des vergrösserten Bildes
wird abgetastet und bei mehreren Wellenlängenbändern digitalisiert. Die Einzelheiten dieses Verfahrensschrittes werden
in Fig. J dargestellt. Das vergrösserte Bild ist dann in zwei
- 13 40981 1/0975
V 23U528
oder mehr Datenfolgen (den digitalisierten Serien von Datensignalen)
enthalten, die die Transmission oder Dichte des Bildes über das Punktraster hin darstellen.
In dem Analysierverfahren des abgetasteten und digitalisierten Bildes bestehen drei Grundstufen: (1) die Zellen werden
lokalisiert, (2) quantitative Merkmale, die die Zellen in der gewünschten Weise charakterisieren, werden aus den
Bildern der lokalisierten Zellen gewonnen und (3) unter Verwendung dieser Merkmale werden die Zellen als normal, anormal,
neutrophil, Lymphozyten usw. klassifiziert.
Das dem Stande der Technik entsprechende Verfahren zur Durchführung dieser Aufgaben bestand darin, die Folge von
Daten, die die Dichte des Bildes an verschiedenen Punkten darstellt, in einem Computer zu speichern. Ein in dem Computer
gespeicherter Algorhythmus lokalisierte dann die Zellen, leitete die Merkmale her und klassifizierte die Zellen. Da ein
Bild eine grosse Anzahl von Punkten enthält, war ein grosser Speicher zur Speicherung notwendig. Da alle drei Analysenstufen
durch den Computer durchgeführt wurden, musste er notwendigerweise schnell und leistungsfähig sein. Diese
beiden Umstände erforderten die Verwendung eines derart teueren Computers, dass in der Praxis die Analyse von aufgetragenem
Blut auf diese Weise zu teuer gekommen wäre.
Die bevorzugte Ausführungsform verwendet nicht das Speichern
einer Folge digitalisierter Bildpunkte in einem Computer. Sie verwendet vielmehr eine Kombination von Farb-Algebra und
einfacher Vorverarbeitungs-Schaltung, um die Anforderungen an den Computerspeicher so weit zu verringern, dass es
genügt, wenn dieser nur die zusammengestellten Eigenschaften der Zellen in dem Bild speichert. Gleichzeitig wird die von
dem Computer durchzuführende Aufgabe auf das Klassifizieren
äer Zellen unter Verwendung der zusammengestellten Eigenschaften reduziert. Diese beiden Merkmale erlauben die Ver-
11/0975
/* 23U528
wendung eines relativ einfachen und kostengünstigen Computers.
Dadurch, dass dem Computer das langwierige Lokalisieren und das Herausarbeiten der Eigenschaften abgenommen wird, ist
die vorliegende Ausführungsform sogar in der Lage, mit einem
kleinen, billigen Computer wesentlich schneller zu arbeiten als ein dem Stand der Technik entsprechendes System, das
einen grossen teueren Computer verwendet.
Diese Kombination aus Farb-Algebra und Vorverarbeitung der
Folge von abgetasteten und digitalisierten Punkten wird in Fig. 1A und 1B in Blockform weiter erläutert. Die Punkte
jeder Farbwiedergabe des digitalisierten Bildes (die digitalisierte Folge von Datensignalen) werden in Form eines Hämogramms
aufgezeichnet und zu einer Erzeugung entsprechender Signale mit Schwellenwerten verglichen. Die Hintergrunddichte
wird von der Bilddichte abgezogen, um ein Datensignal zu erzeugen. Unter Verwendung der Farb-Algebra wird jeder Bildpunkt
dann entweder als Hintergrund, Zellkern, WBC-Zytoplasma oder RBC klassifiziert, um Klassifizierungssignale
der Probenbereiche zu erzeugen. In einer bevorzugten Ausführungsform wird eine Zeilenverzögerung verwendet, um die
vertikale Verbindung zweier benachbarter Bildpunkte' wieder
herzustellen. Die Klassifizierungssignale für die Probenbereiche werden dann dazu verwendet, Steuersignale zur Identifizierung
aller Abschnitte auf jeder Abtastzeile zu gewinnen und die Zelleneigenschaften jedes Zellensegments Zeile für
Zeile zusammenzustellen. Die Einzelheiten dieser Steuersignale werden in Fig. 5 erläutert und ausgearbeitet.
Um die Eigenschaften jeder angetroffenen Zelle getrennt
zu halten, wird jeder Zelle des Feldes eine Zellennummer oder "Erkennungsmarke" zugeteilt. Die Schaltung für die Zuteilung
dieser Nummern und für das Korrigieren möglicherweise auftretender Fehler werden in den Fig. 6 und 7 erläutert und
ausgearbeitet.
Die tatsächliche, Zeile für Zeile erfolgende Zusammenstellung
- 15 A 0 9 8 1 1 /0975
u 23U528
der partiellen Eigenschaften jedes Zellensegments wird durch die in den Pig. 8 und 9 gezeigte Spezialschaltung durchgeführt.
Unter Verwendung der Steuersignale von Fig. 5 wirkt diese Schaltung auf die Datensignale ein und erzeugt die
geeigneten Messwerte für die Grosse, Form, Dichte und Farbe der einzelnen Zellen. Die vollständigen Zelleneigenschaften
werden in einem Abschnitt des Datenspeichers, der für jede
Zellennummer reserviert ist, gespeichert.
Am Ende der Bildabtastung hat der Datenvorverarbeiter die
Zusammenstellung der vollständigen Zelleneigenschaften für jede auf dem Bild angetroffene Zelle vollendet und diese
Merkmale werden unter den entsprechenden Zellennummern oder "Erkennungsmarken" in dem Hauptspeicher gespeichert. Zur
Erzeugung der Datenausgabe der Differentialzählung muss der Computer nur noch die Zellen klassifizieren, dies geschieht
gewöhnlich mittels der bekannten Analyse eines mehrdimensionalen Eigenschaftenraums. Die Befehle zur Durchführung
dieser Klassifikation und zur überwachung des Gesamtsystems sind gemäss den Fig. 1A und 1B in einem getrennten
Steuer-Speicher angeordnet. Die Systemüberwachung s-Funktionen schliessen das Überwachen des Hämogramms
und der zusammengestellten Eigenschaften ein, um sicherzustellen, dass die Probe in geeigneter Weise angefärbt wurde
und das System innerhalb vorgegebener Betriebsparameter arbeitet, das Mitführen der Personalien des Patienten, das
Überwachen der Fokussteuerung, das Aufsummieren der Daten
über eine grosse Anzahl von Zellen und das Mittelwert-Bilden
und Ausgeben der aufsummierten Daten.
Aus der vorausgehenden und nachfolgenden Beschreibung erkennt man, dass die bevorzugte Ausführungsform ein spezielles
Beispiel eines allgemeineren Verfahrens und einer allgemeineren Vorrichtung zur Analyse eines Untersuehungsobjekts
ist, die sich kennzeichnet durch das Zusammenstellen der partiellen Zelleneigenschaften aus einem die Probe dar-
- 16 40981 1/0975
23U528
stellenden Abtastsignal. Die bevorzugte Ausführungsform enthält
ein hochentwickeltes Analysiersystem, das jede der vielen auf dem Bild vorhandenen Blutzellen isoliert und analysiert.
Zur Durchführung dieser hochentwickelten Analyse eines komplexen Vorgangs wird eine Anzahl von Steuersignalen
aus normalen und verzögexten Signalen erzeugt, werden die partiellen Eigenschaften der Zelle aus den identifizierten
Zellenabschnitten jeder Abtastzeile zusammengesetzt und dann die vollständigen Eigenschaften der Zelle aus den partiellen
Eigenschaften zusammengesetzt, wobei die Zellen-Erkennungsnummer verwendet wird, die jeder vorhandenen Zelle zugeteilt
worden ist. Eine weniger komplizierte Version der Erfindung kann jedoch zur Analyse eines Bildes verwendet
werden, das nur eine vollständige Zelle (oder eine Zelle einer bestimmten Art, wie z. B. ein WBC) enthält. Im diesem
Fall wird ein einziger Typ von Steuersignalen aus unverzögerten Signalen abgeleitet und zum Zusammensetzen der
partiellen und vollständigen Zellenmerkmale der einzigen Zelle ohne Verwendung von Zellen-Erkennungsnummern benützt.
Nachdem das Grundprinzip der Systeme und die allgemeinen Arbeitsprinzipien
der bevorzugten Ausführungsform beschrieben wurden, soll nun die spezielle Schaltung der Ausführungsform
im einzelnen erläutert werden.
In Fig. 3 wird teilweise in schematischer '-Form und teilweise
in einem Blockschaltbild eine optisch-elektrische Eingangsstufe des Analysiersystems für Blutzellen gezeigt, das allgemein
mit der Bezugsziffer 10 bezeichnet ist. Ein optischer Abtaster 12 tastet rasterartig ein Bildfeld 14 ab, das eine
Blutzellenprobe 16 enthält. Die Probe 16 enthält eine dünne Blutschicht, die aus roten und weissen Blutkörperchen und
Blutplättchen zusammengesetzt ist, die in einer monosellulären
Schicht 18 auf einem gewöhnlichen Glasobjektträger 20 ausgebreitet sind.
- 17 40981 1/0975
It 23AA528
Die Blutschicht 18 ist mit einem geeigneten Farbstoff angefärbt, der die morphologischen Komponenten der Blutzellen
hervorhebt. Ein typisches Beispiel für jsolch einen Farbstoff
ist der oben erwähnte Wright-Farbstoff. Die angefärbte Blutschicht 18 wird innerhalb des Bildfeldes 14 mittels
eines optischen Abtasters 12 abgetastet. Für die Darstellung wurde der Abstand zwischen den Abtastzeilen in Fig. 3 stark
übertrieben und die Relativbewegung des Bildfeldes 14 über die Blutprobe 16 hin wird durch Pfeile 22 für die Eelativbewegung
angezeigt. Der optische Teil innerhalb des Abtasters 12 ist ausserdem in allgemeiner Form dargestellt.
Selbstverständlich können geeignete Vergrösserungsstufen
und Fokus-Steuersysteme, wie z. B. ein Mikroskopeingang für
den Abtaster 12 in der erfindungsgemässen Ausführungsform für die Blutanalyse verwendet werden und werden es normalerweise
auch.
Die Blutprobe 16 wird durch Licht einer Quelle 11 beleuchtet. Die Probe kann direkt beleuchtet werden, um eine Änderung
des Lichts durch die Blutprobe infolge Reflexion zu erhalten, oder von unten, um eine Änderung des Lichts infolge Transmission
zu erhalten. Selbstverständlich kann ein Fluoreszenz-Farbstoff verwendet werden, um die gewünschte Änderung des
Lichts zu erhalten.
Der Austrittsstrahl 24 des Abtasters 12 wird durch ein Strahlenteilungsprisma 26 geführt, das den Austrittsstrahl 24
in drei getrennte Strahle 28a, 28b und 28c teilt.Jeder Strahl 28 tritt durch oben erwähnte Farbfilter 50a, 30b
und 30c hindurch und trifft auf Photoröhren 32a, 32b und 32c.
Alternativ können dichroitische Schichten auf dem Strahlenteilungsprisma
26 für die gewünschte Farbentrennung verwendet werden. Das elektrische Signal der Photoröhre 32 auf
den Ausgangsleitungen 3^a, 3^b und 3^c stellt in elektrischer
Form die optische Transmission jedes Abschnitts des abgetasteten Bildfeldes 14 dar. Die optische Transmission (linear)
- 18 40981 1 /0975
5057 23U528
wird mittels lop-Konverter 36a, 36b und 36c in die optische
Dichte (logarithmisch) umgesetzt. Das analoge Ausgangssignal
der log-Konverter 36 wird mittels A/D (Analog-Digital)-Konverter 38a, 38b und 38c in einem eigenen Prüfintenvall in
eine Reihe digitalisierter Datensignale umgesetzt. Die Ausgangssignale der A/D-Konverter 38a, 38b und 38c sind in
Fig. 1 als digitalisierte Seriendatensignale A1, B1 und C
gezeichnet.
In Fig. 4 werden die drei Kanal daten A', B1 und C zum
Eingang eines Hämogrammzeichners 40 und zu entsprechenden Signalwertkomparatoren 42a, 42b und 42c ge führt .Während des
ersten Durchganges des Abtasters 12 durch das Bildfeld 14 sammelt der Hämogrammzeichner 40 die harnographisehe Information
innerhalb des Feldes für jedes Signal, d. h. die Dichteverteilung der Punkte innerhalb des Bildfeldes 14.
Die drei Hämogramme werden mit Schwellenwerten verglichen und während der nächsten Abtastung des Bildfeldes werden die
Schwellenwertausgangssignale T^, T-g und Tq als zweite Eingangssignale
der entsprechenden Komperatoren 42a, 42b und 42c auf die Ausgangsleitungen 44a, 44b und 44c gegeben. Die
Grosse der Daten A1, B1 und C1 für die optische Dichte wird
auf diese Weise mit den Schwellenwerten T^, Tß und Tq verglichen,
um mit Schwellenwerten verglichene Signale zu erzeugen. Die Möglichkeit, ein Datensignal mehr als einmal
mit einem Schwellenwert zu vergleichen, ist in Fig. 2 durch T'q und den Komparator 42c1 dargestellt.
• Das Ausgangssignal jedes der Komparatoren 42a, 42b und 42c
ist eine Eins, wenn das entsprechende Eingangssignal gleich oder grosser ist als der vorgegebene Schwellenwert T. , TB
oder Tq ("Über-Schwellenwert"-Signal) und ist eine Null,
wenn es kleiner ist als der Schwellenwert ("Unter-Schwellenwert "-Signal). Das mit einem Schwellenwert verglichene Ausgangssignal
jedes der drei Kanal-Komparatoren auf den Ausgangsleitungen
46a, 46b und 46c ist eine Ein-Bit-Date, die
- 19 409811/Q975
3057
das Vorhandensein oder Nicht-Vorhandensein eines Über-Schwellenwertsignals
anzeigt.
Aus Gründen der Übersichtlichkeit der Zeichnungen sind die Eingangs- und Ausgangsleitungen unterschiedlich stark ausgezogen,
um die auf ihnen vorhandene Signalart kundzutun. In Fig. 4 ist eine mehrfache Bitzahl durch eine dicke Linie
angezeigt, wie z. B. die Ausgangsleitungen 44 des Hämogrammzeiehners
44, währeiid eine Ein-Bit-Datenleitung durch eine relativ dünne Linie angezeigt wird, wie z. B. die Leitungen
46a, 46b und 46c.
Das mit einem Schwellenwert verglichene Signal auf der Komparator-
Ausgangsleitung 46a wird zu einem 3 χ 3-Schieberegisterfeld
48a geführt.Ausgewählte Ausgangssignale des 3 x 3-Feldes werden den Zeilenverzögerungen 50a und 52a
zugeführt. Me Zeilenverzögerungen können auf verschiedene Weise ausgeführt werden, einschliesslich Verzögerungsleitungen,
Schieberegister usw. Die Ausgangssignale der Zeilenverzögerungen 50a und 52a werden auf das 3 x 3-Schieberegisterfeld
48 rückgekoppelt. Die getrennten Abschnitte innerhalb des 5 χ 3-Feldes werden durch den Buchstaben "A" mit geeigneten
Indizes 1 bis 9 bezeichnet.Die Steuerung des 3*3-JFeldes
und der Seilenverzögerungen 50a und 52a ist in der Weise konstruiert, dass sie eine Sesamtverzögerung von zwei
Abtastzeilen des Bildfeldes 14 plus die Zeitverzögerung liefert, die durch das Verschieben eines Ein-Bit-Datensignals
durch drei Blöcke des 3 χ 3-Feldes 48a dargestellt wird.
Eine Ein-Zeilenverzögerung für das Bildfeld 14 entspricht
so der Verzögerung, die durch Aq, Ag, Ar7 und die Zeilenverzögerung
50a verursacht wird.
Bei dieser Form der Verzögerung des 3 χ 3-Feldes 48a und
der entsprechenden Zeilenverzögerungen 50a und 52a ergibt
sich, dass das 3 χ 3-Peld 48a durch Verzögerung von zwei
Zeilen die vertikale Verbindung von Punkten in drei anein-
- 20 4 0 9 8 1 1 /0975
3057
J4 234A528
ander grenzenden Zeilen innerhalb des abgetasteten Feldes wiederherstellt. Die Signale der Blöcke Ax. bis Aq des
3 x 3-Feldes werden auf entsprechende Eingangsleitungen gegeben,
die zusammen mit der Bezugsziffer 54-a bezeichnet sind
und zu einem Logikschaltkreis führen, der in Figi 4 in Blockform dargestellt ist und mit der Bezugsziffer 56a bezeichnet
wird. Der Logikschaltkreis 56a vollführt eine
räumliche FiIterungsfunktion bezüglich des mittleren Elements
Ar in dem 3 x 3-^eId. Normalerweise ist das Ausgangssignal
A des Logikschaltkreises 56a das gleiche wie das des mittleren Elementes A1- in dem 3 x 3-Feld 48a. Wenn
jedoch das mittlere Element An- Null ist und alle oder die
meisten der darum herum angeordneten Elemente A. bis A^ und
Ag bis Aq Eins sind, ändert der Logikschaltkreis 56a das
Ausgangssignal A in eine Eins. Wenn alle oder die meisten
der ein mittleres Element mit dem Wert Eins umgebenden Elemente Null sind, dann wird umgekehrt der Wert der mittleren
Elemente A^ für das Ausgangssignal A des Logikschal tkreises 56a in eine Null abgeändert. Die gleiche
Filterung wird für die Signale auf den Eingangsleitungen 46b und 46c durchgeführt. Aus Gründen der Übersichtlichkeit
wurden in Fig. 4 die gleichen Bezugsziffern verwendet, mit entsprechenden Indizes für die "B"- und "C"-Kanäle. Es folgt
ein Beispiel für eine solche Filterung:
| 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| 1 | 1 | 1 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 |
| 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 0 | 0 | 0 |
Wert des
Elements 5
Elements 5
Die Ausgangssignale A, B und C der entsprechenden Schaltkreise
56a, 56b und 56c sind gefilterte Versionen dar Daten in den Feldblöcken A1-, B,- und C1-.
- 21 409811/0975
5057 23AA528
Die durch das 3 χ 3-Feld geschaffene räumliche Filterung,
die entsprechenden Zeilenverzögerungen 50a und 52a und der
Logikschaltkreis 56a sind bei der vorliegenden Erfindung wahlweise vorhanden. Wenn ein sehr sauberes Signal ohne
Rauschen zur Verfugung steht, ist die Filterung nicht notwendig. Da die meisten verwendeten elektronischen Systeme
jedoch ein Rauschen aufweisen, enthält die bevorzugte Ausführungsform der vorliegenden Erfindung die eben beschriebene
Filterungsschaltung.
Gemäss Fig. 5 werden die mit Schwellenwerten verglichenen
und räumlich gefilterten Signale A, B und C der drei in Fig. 4 gezeigten Logikschaltkreise als Eingangssignale zu
den als Blockschaltbild in Fig. 5 gezeigten Farb-Logikschaltkreisen
58 geführt. Der Farb-Logikschaltkreis 58 verarbeitet
die Signale A, B und C zur Erzeugung von Klassifizierungssignalen der Probenbereiche. In der bevorzugten Ausführungsförm
stellen diese Signale Punkte in den Zellkernen, im Zytoplasma der weissen Blutkörperchen und in den roten
Blutkörperchen des abgetasteten Bildes dar.
Die von dem Farb-Logikschaltkreis 58 ausgeführte Farb-Algebra
ist nicht so kompliziert wie die vorausgehend beschriebene verallgemeinerte Farb-Algebra. Der Logikschaltkreis
58 führt folgende Farb-Algebra sus:
Zellenbestandteile ABC
Kern (N) 110
WBC-Zytoplasma (WC) 10 0
0 10
RBC-Zytoplasma (R) 0 0 1
0 = ohne Bedeutung
Der Farb-Logikschaltkreis 58 erzeugt drei Ausgangs- oder
- 22 -40981 1/0975
Klassifizierungssignale der Probenbereiche, die anzeigen, ob ein Punkt Teil eines Zellkerns, des Zytoplasmas eines
weissen Blutkörperchens oder eines roten EIutkörperchens ist.
Diese drei Auεgangssignale erscheinen auf den entsprechenden
Ausgangsieitungen 60, 62 und 64 und sind die Eingangssignale
der entsprechenden aus fünf Blöcken bestehenden Felder 66, 68 und 70. Jedes Feld ist mit einer Ein-Zeilenverzögerung
72 ausgerüstet. Die Aufgabe der Zeilenverzögerung besteht darin, das Signal zu verzögern und dadurch die vertikale
Verbindung der Punkte innerhalb des Feldes wiederherzustellen. Es ist zu beachten, dass der Signaldurchgang in dem in
Fig. 4 gezeigten 3 x 3-Feld 48a beim Fortschreiten des Signals
vom Block Aq zu Block A1- eine Verzögerung von einer
einzigen Zeile erzeugt.Die in Fig. 5 gezeigte Zeilenverzögerung
72 erzeugt dann eine weitere, einer einzigen Zeile entsprechende Verzögerung. Es wird auch darauf hingewiesen,
dass der Punkt Ar in dem 3 χ 3-^eId der Fig. 4 und der
Punkt Nr in dem aus fünf Blöcken bestehenden Feld der
Fig. 5 dem gleichen Punkt des abgetasteten Bildfeldes 14 entsprechen.
Die Ausgangssignale der vier Feldblöcke N,. ,Np, I2, und Nrwerden als Eingangssignale zu einem Steuerungs-Logikschaltkreis
76 für die Kernperipherie gegeben, und zwar auf Leitungen,
die zusammengefasst durch die Bezugsziffer 7^ bezeichnet
sind.
Der Steuerungs-Logikschaltkreis 76 ist dazu konstruiert,
Steuersignale für das System im Hinblick auf die Peripherie jedes erfassten Kerns zu liefern. Der Steuerschaltkreis
erzeugt vier Steuersignale: gerade Peripherie, Kern (SPN); diagonale Peripherie, Kern (DPN); vorausgehende Zeile Peripherie,
Kern (PEN); und Speichern vorausgehende Zeile, Kern (SPRN). Es folgt die Wertetabelle zur Erzeugung dieser
vier Steuersignale:
- 23 -
40981 1/0975
3057
1I Eingangselemente der Schaltkreise 76, 82 und 8U
(Feld 66 als Beispiel
|
N
2 |
Inhalte von fr Elementen eines 5-Block-Feldes
0 12
| 0 | 0 |
| 0 | 0 |
| 0 | 0 |
| 0 | 1 |
| 0 | 0 |
| 1 | 0 |
| 0 | 0 |
| 1 | 1 |
| 0 | 1 |
| 0 | 0 |
| 5 | 0 | 1 | ( | 0 | 1 | 7 | 0 | 1 | 8 | 1 | 0 | 9 | 1 | 0 |
| 0 | 1 | 1 | 0 | 1 | 0 | 0 | 0 | 1 | ||||||
| 1 | 0 |
| 1 | 0 |
11
12
13
| 1 | 1 |
| 0 | 1 |
14
| 1 | 1 |
| 1 | 1 |
Ausgangssignale der Schaltkreise 76, 82 u. 84:
O: O, l, 2, i», 8, 15, (6, ausser Schaltkreis 76)
gerade Peripherie: 3, 5, 10
diagonale Peripherie: 7, 11, 13, 11, (6, 9, nur Schaltkreis 76)
Peripheriewechsel: 12
Speichern Peripheriewechsel: 8, (9, ausser Schaltkreis 76)
- 23a -
0 9 8 1 1 /0975
Eine ähnliche Logik wird auch für die Ausgangssignale des aus fünf Blöcken bestehenden Feldes 68 für das Zytoplasma
der weissen Blutkörperchen und das aus fünf Blöcken bestehende Feld 70 für die roten Blutkörperchen angewendet. Die
entsprechenden Ausgangssignale dieser Felder werden über Eingangsleitungen 78 und 80 zu den entsprechenden Steuer-Logikschaltkreisen
82 und 84 geführt. Der Steuerungs-Logikschaltkreis
82 für das Zytoplasma der weissen Blutkörperchen erzeugt vier Ausgangssignale: gerade Peripherie,
Zytoplasma der weissen Blutkörperchen (SIWC); diagonale Peripherie, Zyotplasma der weissen Blutkörperchen (DPWC);
vorausgehende Zeile, Zytoplasma der weissen Blutkörperchen (PEWC); und Speichern vorausgehende Zeile, Zytoplasma der
weissen Blutkörperchen (SPEWC). In ähnlicher Weise erzeugt der Steuerungs-Logikschaltkreis 84 für die roten Blutkörperchen
vier Ausgangssignale, nämlich: gerade Peripherie, rotes Blutkörperchen'(SPE); diagonale Peripherie, rotes
Blutkörperchen (DPE); vorausgehende Zeile, rotes Blutkörperchen (PEE); und Speichern vorausgehende Zeile, rotes
Blutkörperchen (SOEE).
Ein zusätzlicher Steuer-Logikschaltkreis 86 entwickelt Steuerungssignale, die auf den Eingangssignalen aus den
entsprechenden, aus fünf Blöcken bestehenden Feldern 66, 68 und 70 für den Kern, das Zytoplasma der weissen Blutkörperchen
und die roten Blutkörperchen basieren. Die Eingangssignale des Logikfeldes 86 auf der Eingangsleitung 88
enthalten die Signale von den Blöcken B1^ und N1- des Kernfeldes
66, die Signale von den Blöcken WC^, und WC,- des ·
Feldes 68 für das Zytoplasma der weissen Blutkörperchen und schliesslich die Signale von den Blöcken E^ und E^
des Feldes 70 für die roten Blutkörperchen. Der Steuerungs-Logikschaltkreis
86 erzeugt entsprechend der folgenden Werttabelle sieben Ausgangssignale:
- 24 409811/0975
3057
Zwischen-Klassifizierung
Eingangssignal
23AA528
WBC-Kern (WN)
WBC-Zytoplasma (WC) RBC-Kern (RN)
RBC-Zytoplasma (RC)
WBC-Zytoplasma (WC) RBC-Kern (RN)
RBC-Zytoplasma (RC)
1 0 1 0
0 0 1
Übergang von Zwischen-Klassifisierungen in den Elementen k und
der Felder 66, 68 und 70
| übergang | 5 | Zählen (CNT» | wc | R | Speichern (ST-) | R | Verbinden (LINK) |
PIMH |
| H | O | N | O | O | W | O | O | O |
| 0 | WN | O | O | |||||
| WN | WC | 1 | 1 | |||||
| WC | RN | |||||||
| RN | RC ■ | 1 | 1 | |||||
| RC | WN | |||||||
| 0 | WC | 1 | 1 | |||||
| 0 | RN | 1 | ||||||
| 0 | RC | 1 | 1 | |||||
| 0 | 0 | |||||||
| WN | 0 | 1 | ||||||
| WC | 0 | 1 | ||||||
| RN | 0 | 1 | 1 | |||||
| RC | RC | 1 | ||||||
| WC | WC | 1 | 1 | 1 | ||||
| RC | WC | 1 | 1 | |||||
| WN | WN | 1 | ||||||
| WC | RN | 1 | 1 | 1 | ||||
| RC | RC | 1 | 1 | 1 | ||||
| RN | WN | 1 | ||||||
| RC | RC | 1 | 1 | 1 | ||||
| WM | V/N | |||||||
| RN | RM | 1 | ||||||
| WN | 1 |
/»098 1 1/097S
| übergang | 5 | Zählen (CNT-) | WC | R | Speichern (ST-) | R | Verbinden (LINK) |
PINH |
| U | WC RN |
N | 1 | "W | 1 | |||
| RII WC |
1 |
- 24b -
40981 1 /0975
Das Ausgangssteuerungssignal "Zählen" (oder "Zusammenstellen partielle Merkmale") des Logiksteuerkreises 86 für die Kerne,
das Zytoplasma und die roten Blutkörperchen werden in Fig. 5
durch entsprechende Abkürzungen "CNTN", "CNTG" und "CNTR"
bezeichnet.
Zwei Steuersignale "Speichern" werden erzeugt, um das Speichern der Daten für die partiellen Merkmale der weissen Blutkörperchen
(STW) und die Speicherung der Daten für die partiellen Merkmale der roten Blutkörperchen (STR) zu steuern.
Die letzten beiden Ausgangssignale des Steuerungs-Logikschaltkreises
86 sind ein "Verbinden"-Signal (LINK) und ein Signal
(PINH) zur Unterdrückung der Peripherie. Der Zweck dieser beiden Signale wird später erklärt. Das Signal zum Zählen
der Kerne (CNTN) und das Signal zum Zählen des Zytoplasmas (CNTC) werden zu einem ODER-Glied 90 geführt, das für die
Anzeige, dass partielle Eigenschaften der weissen Blutkörperchen zusammengestellt werden (CNTW), ein Ausgangssignal
erzeugt.
Aus Fig. 5 kann man sehen, dass die Peripherie-Steuersignale der Logikschaltkreise 76, 82 und 84 u.a. von Signalen hergeleitet
werden, die mittels Zeilenverzögerungen 72 verzögert
werden. In einer einfacheren Ausführungsform der Erfindung können die Zeilenverzögerungen 72 jedoch weggelassen werden,
wenn die Analysierung der Probe keine Information über die Peripherie und keine mitwirkende Verwendung von Steuerungssignalen für die Peripherie erfordert. In solch einer einfacheren
Ausführungsform ist auch die Logik für die Zellen-Numerierung,
die unten in Verbindung mit den Fig. 6 und 7 erläutert wird, nicht so kompliziert.
Die durch die in Fig. 5 gezeigten Logikschaltkreise erzeugten
Steuersignale werden dazu verwendet, ein erfasstes Zellensegment zu identifizieren und das Zusammenstellen der partiellen
und vollständigen Eigenschaften der verschiedenen
- 25 -4 0 9 8 11/0 97 Ö
Zellenkomponenten zu steuern. Die partiellen Zelleneigensehaften,
wie die Grosse, die Dichte, die Form,die Peripherie,
die Länge usw. werden Zeile für Zeile für jedes identifiziertes Zellensegment zusammengestellt. Jeder Zelle
wird eine geeignete Nummer oder "Erkennungsmarke" zugeteilt, um das Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften aus
den partiellen Eigenschaften für ein einzelnes Zellensegment in geeigneter Weise zu steuern. Die Identifizierungsnummer der Zelle oder die "Erkennungsmarke" werden von einer
Zeile zur nächsten weitergegeben, wenn in einer Zelle vertikal verbundene Punkte vorhanden sind.
Die in den Fig. 6 und 7 dargestellte Schaltung wird dazu verwendet, die geeignete Zellennummer zu erzeugen und der
Zelle zuzuweisen. Funktionell betrachtet, muss die Schaltung der Zelle eine neue Zellennummer zuweisen, wenn bei der Abtastung
des Bildfeldes 14 auf diese Zelle zuvor noch nicht gestossen wurde. Umgekehrt muss die Schaltung die entsprechende
alte Zellennummer zuweisen, wenn auf die Zelle schon zuvor gestossen wurde. In einigen Fällen können die anfänglichen
Daten anzeigen, dass auf ein Zellensegment einer neuen Zelle gestossen wurde, während das Zellensegment in
Wirklichkeit Teil einer Zelle ist, auf die zuvor gestossen wurde und die bereits identifiziert wurde. Wenn diese Situation
erkannt wird, muss die neue Zellennummer von dem Zellensegment entfernt werden und das Segment mit der geeigneten
alten Zellennummer "markiert" werden.
•Die Schaltung, die die Zellennumerierung oder "-markierung" ausführt, ist zum Teil als Blockschaltbild und zum Teil als
Schaltschema in Fig. 6 und als Blockschaltbild in Fig. 7 gezeigt. In Fig. 6 wird ein aus fünf Blöcken bestehendes
Numerierungsfeld 92 und eine Zeilenverzögerung 94· gezeigt.
Die fünf Blöcke des Numerierungsfeldes werden als T^ bis T,-bezeichnet.
Diese Blöcke entsprechen dem gleichen Teil des abgetasteten Bildes wie A. bis Ar, B^ bis B^ und O^ bis C^
- 26 4 09811/0975
5057
in Fig. 4. Funktionell betrachtet besteht die Aufgabe des
Numerierungsfeldes 92 und der zugeordneten Schaltung darin, festzustellen, ob in den abgetasteten Bild irgendein Punkt
derselben Zellenart wie Punkt T1- vorhanden ist, dem zuvor
eine Zellenzahl zugeteilt wurde und der den Punkt Tc- berührt.
Wenn, dies der Fall ist, dann soll dem Punkt in T1- die gleiche
Zellennummer zugeteilt werden.
Die Nummern oder "Erkennungsmarken" für die roten und weissen
Blutkörperchen werden von entsprechenden Aufwärts-Abwärts-Zählern
95 und 97 für die weissen und roten Blutkörperchen erhalten. Das Arbeiten dieser Zähler wird unten erläutert.
In den Fig. 5 und 6 werden die Ausgangssignale von N^, WC,
und B, der Felder 66, 68 und 70 als Eingangssignale zu einem
Logikschaltkreis 96 geführt, der in Fig. 6 auch mit "SJ" bezeichnet
ist. Die in S3 gezeigte Logikschaltung wird in den Logikkreisen 98» 100 und 102 wiederholt, die entsprechend
als "S1", "S2" und "S4-" bezeichnet sind. Diese vier Logikkreise
S1 bis S4 bestimmen, ob jeder der durch T. bis T.
dargestellten Punkte von der gleichen Zellenart ist wie der durch Tr dargestellte Punkt. Die Eingangεsignale der Logikschaltkreise
S1 bis S4 entsprechen den in gleicher Weise bezifferten Blöcken in den Feldern 66, 68 und 70 für den
Kern, das Zytoplasraa der weissen Blutkörperchen und die roten Blutkörperchen in Fig. 5· Die Eingangssignale für den Logikschaltkreis
S3 umfassen so die Signale von den Blöcken N,,
WC, und E, der entsprechenden Felder und die Signale zum
Zählen der roten Blutkörperchen (CNTR) und zum Zählen der weissen Blutkörperchen (CNTW). Aus Gründen der Übersichtlichkeit
sind die Eingangsleitungen für die Signale CNTR und CNTW bei S1, S2 und S4 weggelassen.
In jedem der Logikschaltkreise S1 bis S4 werden entsprechend
der detaillierten Darstellung in S3 die Signale für die Kerne und das Zytoplasma der weissen Blutkörperchen durch ein
- 27 409811/097S
ODER-Glied 104 zuεammengeODERt, um ein Ausgangssignal für
ein weisses Blutkörperchen zu erzeugen. Das Ausgangssignal
des ODER-Gliedes 104 wird mit dem Signal CNlV von Fig. 5
durch ein UND-Glied 106 geUNDet, um anzuzeigen, dass T,- und T, Punkte weisser Blutkörperchen sind. R7 und Signal
CNTR von Fig. 5 sind ebenfalls durch ein UND-Glied 108 geUNDet, um anzuzeigen, dass Tr und T, Punkte eines roten
Blutkörperchens sind. Wenn entweder zwei Punkte entsprechend einem roten Blutkörperchen oder zwei Punkte entsprechend
einem weissen Blutkörperchen angezeigt werden, erzeugt das ODER-Glied 110 ein hohes Ausgangssignal.
Die gleiche grundlegende Logik wird durch die Logikschaltkreise S1, S2 und S4 ausgeführt. Ein hohes Ausgangssignal
irgendeines der Logikschaltkreise S1 bis S4 zeigt an, dass der entsprechende Punkt in dem Numerierungsfeld 92, d. h. die
Punkte Tx. bis T^, von der gleichen Zellenart sind wie Tn-.
Unter der Annahme, dass einer oder mehrere der Punkte T-1 bis
T^ von der gleichen Art ist wie Tn-, muss die Rangordnung
des oder der Punkte festgelegt werden. Eine Rangordnungsschaltung, die in Fig. 6 strichliert dargestellt ist und
mit der Bezugsziffer 112 bezeichnet ist, bestimmt auf folgende Weise die Rangordnung der Punkte in dem Numerierungsfeld:
T^ (von dem vorliegenden Zellensegment), Tx.,
Tp und T, (von dem vorausgehenden Zellensegment).
Die innerhalb des Blocks 112 gezeigte Rangordnungsschaltung wird dazu verwendet, die spezielle Situation zu handhaben,
in der mehr als eines der Ausgangssignale der Logikschaltkreise S1 bis S4 einen hohen Wert hat. In diesem Fall ist
es notwendig, festzulegen, welches in der Rangordnung vorgeht.
Das Ausgangεsignal der Vorrangs-Logikschaltung 112 auf der
Ausgangsleitung 114 ist Eins (hoch), wenn kein Punkt in
- 28 -409811/097S
T^, Tx., T2 oder T^, vorhanden ist, der von der gleichen Zellenart
ist wie Tc, und ist Null (niedrig), wenn ein Punkt vorhanden
ist, der von der gleichen Art wie Tc ist. Venn T^
der erste Punkt ist, der von der gleichen Art ist wie T1-,
erzeugt die Vorrangsschaltung 112 einEINS-Ausgangssignal
auf der Ausgangsleitung 116, die ein entsprechendes Tor
erregt. Bei Erregung des Tors 118 wird die einzelne Numerierung oder Zahl in T1, auf die Mehrfachleitung 120 und
zurück in den Punkt T^ des Numerierungsfeldes geschaltet.
Wenn der einzelne Punkt von T^ nicht von der gleichen Art
war wie Tc, prüft die Vorrangs-Logikschaltung 112 als nächstes
die Zellenart des Punktes in T.. Ein entsprechender
Schaltkreis ist für den Punkt T,. in dem Numerierungsfeld
vorgesehen, wobei das Tor 122 durch das Ausgangssignal der
Vorrangs-Schaltung 112 auf der Ausgangsleitung 124 erregt wird. Wenn so die Punkte T^ und T,- von der gleichen Art sind
und T^ und T. nicht von der gleichen Art sind, wird auf
diese Weise die Zellenzahl der betreffenden Numerierung in T. über das Tor 122 auf die Mehrfachleitung 120 und dann zu
Tr geschaltet. Eine ähnliche Anordnung ist für den Punkt T^
des Numerierungsfeldes über eine Ausgangsleitung 126 und ein
Tor 128 und für den Punkt T, des Numerierungsfeldes über
eine Ausgangsleitung 13Ο und ein Tor 132 vorgesehen.
Wenn in dem Numerierungsfeld kein Punkt vorh-anden ist, der von der gleichen Art ist wie Tr, dann ist das Ausgangssignal
auf der Leitung 114 der Vorrangs-ßchaltung hoch und dieses
Ausgangssignal wird zu den UND-Gliedern 134 und I36 der
Zähler für die roten und weissen Blutkörperchen geführt.
Das zweite Eingangssignal für jedes UND-Glied ist das entsprechende CNTE oder CNTW-Signal, das von der in Fig. 5 gezeigten
Schaltung erhalten wird. Wenn das GNTE-Signal anliegt,
erzeugt das UND-Glied 134 auf der Leitung I38 ein
EINS-Ausgangssignal, das zur Erhöhung des Zählers für die
roten Blutkörperchen auf die nächste Zahl verwendet wird.
- 29 40981 1 /097S
Das Ausgangssignal des UND-Gliedes 134 wird auch dazu verwendet,
ein Tor 140 zu erregen, das diese nächste Nummer für die roten Blutkörperchen vom Zähler 97 auf die Mehrfachleitung
120 und so auf den Punkt Tr des Numerierungsfeldes schaltet. Eine ähnliche Anordnung ist über die Ausgangsleitung
142 des UND-rGliedes und das Tor 144 für den Zähler 95 der
weissen Blutkörperchen vorgesehen,
Das Ausgangssignal der Vorrangs-ßchaltung 112 auf der Leitung
114 wird auch an die in Fig. 6 strichliert gezeichnete Schaltung 146 für neue Nummern gelegt. Die Schaltung 146 behält
eine Aufzeichnung der Zuweisung einer neuen Nummer an eine Reihe von Punkten der augenblicklichen Zeile der Analyse.
Die augenblickliche Zeile wird zum Teil innerhalb des Numerierungsfeldes durch die Punkte T,- und T^ dargestellt,
während die vorausgehende Zeile zum Teil in den Punkten T.,, To und T- des Numerierungsfeldes erscheint.
Die Schaltung 146 wird dazu verwendet, zwischen zwei Fälle zu unterscheiden, in denen Punkten des gleichen Untersuchungsobjekts
verschiedene Nummern zugewiesen wurden. Die beiden Fälle kann man sich allgemein als den Fall "schräge Zeile"
und den Fall "U-förmig" vorstellen.
Im ersten Fall steigt ein Bereich des einzelnen Untersuehungsobjekts
allmählich in Richtung der Abtastung an. Der Anstieg erfolgt so allmählich, dass drei oder mehr Punkte
angetroffen werden, die nicht mit irgendeinem Punkt in der vorausgehenden Abtastungszeile in Berührung stehen. Da die
Punkte der augenblicklichen Zeile (wenigstens drei oder mehr Punkte) nicht in Berührung mit den Punkten der vorausgehenden
Zeile stehen, weisen die Vorrangs-Logik, das Numerierungsfeld und die betreffenden Zähler für die roten
oder weissen Blutkörperchen den Punkten der augenblicklichen Zeile eine neue Nummer zu. Die Punkte der augenblicklichen
Zeile sind jedoch ein Teil des gleichen Untersuchungsgegen-
- 30 -40981 1 /097 S
Standes wie die Punkte der vorausgehenden Zeile. Es liegt daher eine Situation vor, in der den Punkten der voraussehenden
Zeile eine Nummer zugewiesen wurde, während den Punkten der augenblicklichen Zeile eine andere Nummer zugewiesen
wurde, obwohl alle Punkte in Wirklichkeit Teil des gleichen Untersuchungsobjektes sind.
Im zweiten oder "XJ-förmigen" Fall wird dem ersten erfassten,
geradlinig herausragenden Teil der U-förmigen Zelle oder des U-förmigen Untersuchnngsobjekts eine Nummer zugewiesen und
dem zweiten erfassten, geradlinig herausragenden Teil des U-förniigen Untersuchungsobjektes eine andere Nummer zugewiesen.
Bei der anschliessenden Abtastung erkennt das System, dass die beiden geradlinigen Schenkel, denen eigene Nummern
zugewiesen wurden, in Wirklichkeit Teil eines bestimmten Untersuchungsobjektes sind.
Beide Fälle werden erkannt, wenn Punkte der gleichen Zellenart
aber mit unterschiedlichen Nummern in den Punkten T5. und
T1- des Numerierungsfeldes 92 auftauchen. Obwohl die Fälle
"schräge Zeile" und "U-förmig" dem Numerierungsfeld 92 gleich erscheinen, müssen sie unterschieden und unterschiedlich behandelt
werden. Im Fall eines "schräge-Zeile"-Objekts wird
mittels der in Fig. 7 gezeigten Schaltung die "Erkennungsmarke" oder Nummer der augenblicklichen Zeile in die Nummer
der vorausgehenden Zeile geändert und der entsprechende Zähler für die roten oder weissen Blutkörperchen wird erniedrigt.
Im Falle des U-förmigen Objektes werden die beiden Zellen-.Nummern
einander zugeordnet für die anschliessende Identifizierung und Verbindung der Eigenschaften, die unter jeder
"Erkennungsmarke" oder Zellennummer gespeichert sind.
Diese beiden Fälle werden durch die Schaltung 146 unterschieden, die ODER-Glieder 148 und 150, UND-Glieder 152, 154 und
156 und ein Flip-Flop 158 enthält. Die Eingangssignale für die
Schaltung 146 bestehen aus deni CNTR-Signal auf Leitung 160,
- 31 £09811/0975
dem CNTW-Signal auf der Eingangsleitung 162, dem Ausgangssignal
der Vorrangs-Schaltung auf der Leitung 114, das ein Signal "Zuweisen-Neue-Numraer" darstellt, und schliesslich
einen "Andern"-Signal (CHG) auf der Leitung 164. Das "Andern"-Signal
wird aus der in Fig. 7 gezeigten Schaltung 166 entsprechend der folgenden Wertetabelle abgeleitet:
| 1 | Gleiche | Eingangssignale | Flip- | Ausgangssignale | HJSH | DCNT | |
| Gleiche | 1 | Zahl | Flop 158 | CHG | |||
| Art | 1 | 0 | 0 | 1 | 0 | ||
| 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 0 | ||
| 0 | 1 | 1 | 1 | 0 | 1 | ||
| $ | 1 |
Das Flip-Flop 158 wird gesetzt, immer wenn das Signal "Zuweisen-Neue-Nummer"
auf der Ausgangsleitung 114 der Vorrangsschaltung 1 ist. Das Signal "Zuweisen-Neue-Nummer"
wird als das eine Eingangssignal an das UND-Glied 152 geführt. Das zweite Eingangssignal des UND-Gliedes 152 ist
das Ausgangssignal des ODER-Gliedes 148. Dieses Eingangssignal
ist Eins, immer wenn eine neue Nummer zugei\desen wird,
da entweder das Signal für das Zählen der roten Blutkörperchen oder das Signal für das Zählen der weissen Blutkörperchen
auf den Eingangsleitungen 160 und 162 des ODER-Gliedes 1 liegt. Das Ausgangssignal des UND-Gliedes 152 wird als
das eine Eingangssignal an das ODER-Glied 150 gelegt. Wenn
das Ausgangssignal des UND-Gliedes 152 Eins ist, ist auf
diese Weise auch das Ausgangssignal des ODER-Gliedes 150 Eins. Die Ausgangssignale des ODER-Gliedes 148 und 150 werden
durch das UND-Glied 154- geUNDet, wodurch ein Ausgangssignal
Eins auf der Leitung 168 erzeugt wird, das das Flip-Flop 158 setzt.
Das Flip-Flop 158 hält sich selbst in dem gesetzten Zustand
so lange wie entweder.ein Signal zum Zählen der roten oder
- 32 409811/0975
It 23U528
der weissen Blutkörperchen auf den Leitungen 160 und 162 anliegt.
Wenn ein Objekt-Hintergrund-Übergang (oder Zellen-Hintergrund) auftritt, sind die Signale zum Zählen der roten
und weissen Blutkörperchen auf den Eingangsleitungen 160 und 162 des ODER-Gliedes Null, wodurch das Rücksetzen des Flip-Flops
158 ermöglicht wird. Das Flip-Flop 158 kann auch durch
ein CHG-Signal auf der leitung 164 rückgesetzt werden.
Fig. 7 ist ein Blockschaltbild einer zusätzlichen Schaltung,
die in Verbindung mit dem Numerierungsfeld 92 und der Zeilenverzögerung
94- arbeitet. Aus Gründen der Übersichtlichkeit
wurde diese Schaltung aus der Fig. 6 weggelassen und wird in Fig. 7 gezeigt. Es ist zu beachten, dass das Numerierungsfeld
92 und die Zeilenverzögerung 94 in Fig. 7 wiederholt wurden.
Für den Fall "schräge Zeile" führt die in Fig. 7 gezeigte
Schaltung (einschl-iesslich der oben genannten Schaltung 166)
folgende Operationen aus: (1) Abändern der in Tc vorhandenen
Erkennungs- oder Zellennummer in die in T, vorhandene Erkennungs- oder Zellennummer, (2) Erniedrigen des betreffenden
Zählers für die weissen oder roten Blutkörperchen und (3)
Abändern der in T^ und in der Zeilenverzögerung 94- vorhandene
Erkennungs- oder Zellennummer in die in T5. vorhandene Erkennungs-
oder Zellennummer, wenn dies zweckmässig ist.
Im Fall einer U-förmigen Zelle oder eines U-förmigen Objektes
erzeugt die Schaltung 166 ein Signal "Aufzeichnen der Nummer im Kellerspeicher", das in Fig. 7 mit "PUSH" bezeichnet ist,
und ändert, wenn dies zweckmässig ist, die in Tr, T^ und der
Zeilenverzögerung 94 vorhandene Zellennummer in die in T.,
vorhandene Zellennummer. Das HJSH-Signal veranlasst, dass
die in T, und Tr vorhandene Zellennummer in einem nichtgezeigten
Kellerspeicher des Hauptspeichers (Fig. 9) aufgezeichnet wird. Das GHG-Signal der Schaltung 166 auf der
Leitung 170 schaltet die Zellennummer von T,, auf der Vielfachleitung
172 über ein Tor 176 zu Tr,. Die Zellennummer
— 33 —
409811/097S
409811/097S
}* 23U528
von T, auf der Vielfachleitüng 172 wird über ein Tor 178
auch zu T^ geschaltet. Die Arbeitsweise des Tors 178 wird
durch eine Schaltung 180 gesteuert. Für die Schaltung 180 besteht folgende Wertetabelle:
Eingangssignale Ausgangssignal
| h - T4 | CHG | 1 |
| 1 | 1 | O |
| O | 1 | O |
| SSt | O | |
Aus der Wertetabelle kann man sehen, dass bei T,- gleich T^
die auf der Vielfachleitung 172 vorhandene T^-Nummer über
das Tor 178 zu T^ geschaltet wird. Eine ähnliche Schaltung
182 steuert ein weiteres Tor 184, das die auf der Vielfachleitung 172 vorhandene T,-Nummer in das erste Element der
Zeilenverzögerung 94- schaltet. Da die Zeilenverzögerung 94
ein Schieberegister mit einer bestimmten Anzahl von Speicherelementen enthält, werden die Schaltung 182 und das Tor
184 für eine bestimmte Anzahl benachbarter Speicherelemente in dem Schieberegister 94 wiederholt. Diese zusätzliche
Schaltung ist in Fig. 7 durch die drei Fortsetzungspunkte angedeutet. Der Zweck der der Schieberegister-Zeilenverzögerung
94 zugeordneten Logik besteht darin, die in T,-,
T^ und der Zeilenverzögerung 94 vorhandenen, unzutreffend
numerierten Punkte der augenblicklichen Zeile zu korrigieren. Es ist dabei zu beachten, dass diese augenblicklichen
Punkte in Wirklichkeit die gleiche Kummer haben sollen
wie der in T, vorhandene Punkt der vorausgehenden Zeile.
Entsprechend der oben angegebenen Wertetabelle erzeugt die Schaltung 166 auch ein "Abwärts-Zählen"-Signal (DCNT). Das
DCNT-Signal wird als der eine Eingang an die beiden UND-Glieder 186 und 188 von Fig. 6 geelgt. Das UND-Glied 186
- 34 409811/097S
3057
23U528
steuert den Zähler 97 der roten Blutkörperchen. Das zweite Eingangssignal des UND-Gliedes 186 besteht in dem CNTIt-Signal.
Das UND-Glied 188 verringert auf ähnliche Weise den Zähler 95 für die weissen Blutkörperchen.
Es bleibt der spezielle FaIl übrig, wenn eine oder mehrere
Zellen einen Rand des Bildfeldes berühren oder überlappen. Eine Zelle, die den Rand des Bildfeldes überlappt, ist unvollständig
und folglich für die Analyse nicht geeignet. Dieser Fall wird in der Weise behandelt, dass die Abtast-
und Digitalisier-Schaltung während der horizontalen und vertikalen Rücklaufintervalle veranlasst wird, schwarze
Punkte auszugeben. Diese Punkte sind die ersten, die zu Beginn einer Abtastung des Feldes erfasst werden, und sehen
wie ein Objekt aus, da sie schwarz sind. Diesen Punkten wird die Nummer 0 gegeben. Jede Zelle, die den Feldrand berührt,
erscheint als Teil des gleichen Objekts und erhält folglich die Nummer O. Zur Vereinfachung der Datenbehandlung verhindert
eine spezielle nicht gezeigte Schaltung die Speicherung jeder Date der Nummer 0 im Hauptspeicher. Auf diese Weise
werden alle Objekte, die den Feldrand überlappen, nicht beachtet.
Nach der detaillierten Beschreibung der Arbeitsweise der Schaltung, die jedem identifizierten Zellensogment unter Ansprechen
auf die Steuersignale und die Klassifizierungssignale der Probenbereiche gemäss den Fig. 6 und 7 eine Zellennuminer
zuweist, soll nun die Verwertung dieser Identifizierungsnumaern
im Hinblick auf die Daten des abgetasteten Bildes erläutert werden. Gemäss Fig. 4 werden die digitalisierten
Serien-Datensignale A', B1 und C an entsprechende Speicher-Schieberegister
190a, 190b und 190c gelegt. Jedes Schieberegister besitzt eine entsprechende Zeilenverzögerung 192a,
192b und 192c. Das Ausgangssignal jeder Verzögerung wird auf das entsprechende Schieberegister rückgekoppelt. Die infolge
- 35 409811/0975
3057
des Durchgangs durch den unteren Teil - mit Bezug auf die Darstellung des Schieberegisters 190 und die Zeilenverzögerung
192 - hervorgerufene Verzögerung entspricht der Länge einer Zeile des abgetasteten Bildes 14. Diese Verzögerung
dient zur Synchronisierung des Bild-Datensignals mit den vorausgehend erläuterten Steuersignalen.
Das Ausgangssignal jedes Schieberegisters auf den Leitungen
194a, 194b und 194c wird als das eine Eingangssignal an eine Hintergrundsubtrahierungs-Schaltung 196a, 196b und 196c
gelegt. Das zweite Eingangssignal der Hintergrundsubstrahierungs-Schaltung
ist das zugeordnete Hintergrunddichte-Ausgangssignal des Hämogramm-Zeichners 40. Das Ausgangssignal
jeder Hintergrundsubstrahierungs-Schaltung 196 ist ein digitalisiertes
6-Bit-Signal, das die Daten des abgetasteten Bildes,
von denen die Hintergrunddichte subtrahiert ist, darstellt.
Diese Ausgangssignale werden mit DATA-A, DATA-B und DATA-G bezeichnet.
Gemäss Fig. 8 werden die partiellen Zelleneigenschaften für
jedes der identifizierten und mit einer Erkennungsnummer versehenen Zellensegmente zusammengestellt. Die vollen Datensignale
DATA-A, DATA-B und DATA-C bilden die Eingangssignale
der Dichte-Summierungs-Schaltungen für die weissen und roten
Blutkörperchen. Gemäss Fig. 8 ist ein eigener Akkumulator 198a, 198b und 198c für jeden Datenkanal zum Auf summieren
der Dichten der Signale DATA-A, DATA-B und DATA-C hinsichtlich der Kerne der weissen Blutkörperchen vorgesehen. Entsprechende
Akkumulatoren 200a, 200b und 200c sind für die Daten des Zytoplasmas der weissen Blutkörperchens vorgesehen.
Für die Datenkanäle A und C ist eine Summierung der Dichte der roten Blutkörperchen mittels der Akkumulatoren 202a und
202c vorgesehen. Die Information der Signale DATA-A, DATA-B und DATA-C wird entsprechend den Tor-Steuersignalen
"Zählen Kerne" (CKTN), "Zählen- Zytoplasma" (CNTC) und "Zählen rote Blutkörperchen" (CNTR) zu den entsprechenden
- 36 409811'/09
7 5
Akkumulatoren geschaltet. Diese Signale werden aus der in Fig. 5 gezeigten Steuerschaltung 86 abgeleitet.
Die Steuersignale werden auch dazu verwendet, die passenden Erkennungsnummern des Blockes T1- des Numerierungsfeldes
entweder in das Register 204- für die Zellennummer der weissen Blutkörperchen oder in das Register 206 für die Zellennummer
der roten Blutkörperchen zu schalten. Diese Steuersignale werden auch zusätzlich dazu verwendet, die Zähler
208, 210 und 212 für die Grosse entweder der Kerne, des Zytoplasmas oder der roten Blutkörperchen zu erhöhen.
Im unteren Teil von Fig. 8 sind drei duale Peripheriezähler
214, 216 und 218 gezeigt für die Peripherie der Kerne der weissen Blutkörperchen, die Peripherie des Zytoplasmas der
weissen Blutkörperchen und die Peripherie der roten Blutkörperchen.
Jeder Zähler summiert die Anzahl der geraden und diagonalen Peripheriesignale bei Jeder Art von Zellenkomponenten
auf. Der duale Zähler 214 für die Peripherie der Kerne
der weissen Blutkörperchen wird durch das Steuersignal (STI1T)
für die gerade Peripherie und durch das Steuersignal (DPB) für die diagonale Peripherie des Kerns erhöht, die von der
in Fig. 5 gezeigten Steuerschaltung 76 erhalten werden.
Der Dualzähler 216 für die Zytoplasmaperipherxe wird durch das Ausgangssignal der beiden UND-Glieder 218 und 220 erhöht.
Das Eingangssignal des UND-Gliedes 218 ist das Signal (STWO) für die gerade Peripherie des Zytoplasmas der weissen Blutkörperchen,
wobei dieses Signal aus der in Fig. 5 gezeigten Steuerschaltung 82 abgeleitet wird und das invertierte
Signal PINH zur Unterdrückung der Peripherie, das von der in Fig. 5 gezeigten Steuerschaltung 86 abgeleitet wird.
Aus der Wertetabelle für die Steuerschaltung 86 sieht man, dass das UND-Glied 218 ein Ausgangssignal erzeugt, das den
Zählbereich für ein gerades Peripheriesegment des dualen
- 37 4 0 9 8 1 1 /0975
Zählers 216 für die Zytoplasma-Peripherie erhöht, wenn das
Signal PINH Null ist und das Signal für die gerade Peripherie des Zytoplasmas der weissen Blutkörperchen vorhanden
ist. Das UND-Glied 220 verwendet ebenfalls das Signal PIlTH zusammen mit dem Signal DPWC für die diagonale Peripherie
des Zytoplasmas der weissen Blutkörperchen, das aus der Steuerschaltung 82 von Fig. 5 abgeleitet wird. Über die
UND-Glieder 222 und 224 wird eine ähnliche Schaltung auch für den dualen Zähler 218 für die Peripherie der roten Blutkörperchen
verwendet. Die entsprechenden Steuersignale "gerade Peripherie der roten Blutkörperchen" (SPE) und "diagonale
Peripherie der roten Blutkörperchen" (DPR) werden von der in Pig.. 5 gezeigten Schaltung 84 erhalten.
Wenn in den Blöcken T^ und T1- (Fig. 6 und 7) des Numerierungsfeldes
keine Zellenpunkte angetroffen werden (einschliesslich einer Hintergrundsituation) und in den Blöcken
T^ und Tp des Numerierungsfeldes Zellenpunkte vorhanden sind,
so deutet diese Konfiguration auf das Vorhandensein eines Peripherieabschnittes einer vorausgehenden Zelle auf einer
vorausgehenden Zeile hin, die von dem System nicht erkannt wurde. Diese Situation wird durch die in Fig. 8 ganz unten
gezeigte Schaltung behandelt. Die Zellennummer des Blockes Tp des Numerierungsfeldes 92 wird in geeigneter Weise auf
ein Register 226 zur Abänderung der Nummer des Kerns, ein Register 228 zur Abänderung der Nummer des Zytoplasmas oder
ein Register 2JO zur Abänderung der Nummer der roten Blutkörperchen
geschaltet. Die Schaltsignale für die Register und 228 zur Abänderung der Nummer des Kerns oder des Zytoplasmas
enthalten die Steuersignale PRTT (vorausgehende Zeile Peripherie, Kern) und PEWC (vorausgehende Zeile, Zytoplasma
eines weissen Blutkörperchens), die von den in Fig. 5 gezeigten Schaltungen 76 und 82 erhalten werden.
Das Register 2JO zur Abänderung der Zahl der roten Blutkörperchen
wird durch die Steuersignale PRR (vorausgehende Zeile,
- 38 409811/0975
3057
rotes Blutkörperchen) gesteuert, das von der in Fig. 5 gezeigten
Schaltung 84 abgeleitet wird. Diese Steuersignale werden auch dazu verwendet, die Zähler 232, 234 und 236
für einen Peripheriewechsel zu erhöhen.
In Fig. 9 sind die Zähler für den Kernanteil und das Zytoplasma
der weissen Blutkörperchen, die Akkumulatoren und Register mit den gleichen Bezugsziffern, die zur Bezeichnung
der gleichen Komponenten verwendet werden, wiederholt. Fig. zeigt die Ausgangssignale jeder dieser ßchaltkreiskomponenten.
Es ist zu beachten, dass die in Fig. 8 gezeigten Eingangssignale in Fig. 9 weggelassen sind. Ausserdem wurde der
ganze die roten Blutkörperchen betreffende Teil in Fig. 9 weggelassen. Für die Behandlung der Daten der roten Blutkörperchen
wird jedoch selbstverständlich die gleiche Grundschaltung verwendet.
Fig. 9 zeigt die Verwendung der Zellennummer zum aufeinanderfolgenden
Zusammenstellen der vollständigen Zelleneigenschaften aus den partiellen Zelleneigenschaften Jedes identifizierten
Zellensegments mit gleichen Zellennummer. Die Ausgangssignale des Zählers 208 für die Kerngrösse der
weissen Blutkörperchen, des Zählers 210 für die Grosse des Zytoplasmas, die Dichte-Akkumulatoren 198a bis 198c und
200a bis 200c und der Zähler 214 und 216 für die Peripherie der Kerne und des Zytoplasmas werden als Eeaktion auf das
Signal STV/ (Speichern weisse Blutkörperchen) in einen Puffer-Speicher
238 geschoben. Gleichzeitig wird die entsprechende Zellennumner aus dem Register 204 für die weissen Blutkörperchen
in den Puffer-Speicher geschoben. Die Inhalte des Puffer-Speichers werden in einen Hauptspeicher 240 gegeben,
der eine Steuerung enthält, und zwar an Stellen, die durch die Zellennummer festgelegt sind. Auf diese Weise werden
alle partiellen Eigenschaften mit der gleichen Zellennucraer
an die gleichen Stellen gegeben, um die vollständigen Eigenschaften für die numerierte Zelle zusammenzustellen. Die
- 39 409811/0975
^ 23U528
Hauptspeicher-Steuerung steuert das Schalten der Daten des Puffer-Speichers in den Hauptspeicher und fügt den Inhalt
des Puffer-Speichers zu dem vorausgehenden Inhalt des Hauptspeichers
hinzu,. Nach einer kurzen Verzögerungszeit werden die W3C-Zähler und Akkumulatoren durch ein Signal "Clear",
das von der Verzogerungsschaltung 242 erzeugt wird, gelöscht.
Es wird an dieser Stelle darauf hingewiesen, dass die Information für die roten Blutkörperchen in der gleichen Weise
durch einen nicht gezeigten Puffer-Speicher in den Hauptspeicher und die Steuerung 240 weitergegeben und verarbeitet
wird.
Die Inhalte der Zähler 232 und 234 für einen Peripheriewechsel
des Kernes und des Zytoplasmas werden in gleicher Weise in einen anderen Puffer-Speicher 244 geschoben. In
ähnlicher Weise werden die in den Registern 226 und 228 für einen Nummernwechsel enthaltenen Zellennummern in einen
Puffer-Speicher 244 geschoben. Als Reaktion auf das Signal SPRN (Speichern vorausgehende Zeile, Kern) und das Signal
SRVC (Speichern vorausgehende Zeile, Zytoplasma eines weissen
Blutkörperchens), die von den in Pig. 3 gezeigten Schaltungen 76 und 28 erhalten werden, v/erden die Daten für den Peripheriewechsel
und den Nummernwechsel in den Puffer-Speicher 244 geschoben. Diese beiden Signale werden als das eine Eingangssignal
an das UND-Glied 246 gelegt, dessen Ausgangssignal die Verschiebung der Daten den Peripheriewechsel und den
Nummernwechsel in den Puffer-Speicher 244 steuert. Das zweite Eingangssignal für das UND-Glied 246 wird durch das
Ausgangssignal eines ODER-Gliedes 248 gebildet, dessen Eingangssignale die Ausgangssignale des Registers 226 für den
Nummernwechsel des Kerns und des Registers 228 für den Nummernwechsel des Zytoplasmas enthält.
Die Arbeitsweise der in Pig. 9 unten gezeigten Schaltung für einen Peripherieviechsei lässt sich am besten durch Be-
- 40 -A 0981 1 /097B
opa<3
zugnahme auf die Fig. 5 und 6 verstehen. Es wird angenommen,
dass die aus fünf Blöcken "bestehenden Verzögerungsfelder 66,
68 und 70 in Fig. 5 und das Numerierungsfeld 92 in Fig. 6
in den Blöcken 4 und 5, z. B. T^ und T1-, Punkte von Kernen
enthalten, während die Blöcke 1, 2 und 3 keine Punkte von Kernen enthalten. Aus dieser Situation ergibt sich,
dass ein Peripheriesegment angetroffen wurde. Es wird nun angenommen, dass alle fünf Blöcke Punkte von Kernen enthalten,
die Punkte des abgetasteten Bildes unmittelbar unter den Punkten 4 und 5 jedoch Hintergrundpunkte enthalten (dies
wird bei der Abtastung der nächsten Zeile erkannt). Das Peri pheriesegment wird erst erkannt, wenn die in Tr und T^ enthaltenen
Punkte durch die Blöcke T,, T~ un^ T^. des Erken- ·
nungsfeldes hindurchgeschoben sind und die Hintergrundpunkte unmittelbar unterhalb der Punkte Tj- und T^ in die Blöcke
T1- und T^ gelangt sind. Man erkennt sofort, dass es in diesem
Zeitpunkt zu spät ist, um diesen speziellen Fall eines Peripheriesegments mittels der regulären Schaltung zu erkennen.
Die zusätzliche in den Fig. 8 und 9 gezeigte Schaltung für den Peripheriewechsel wird dazu verwendet, die in dieser
speziellen Situation entstehenden Peripherie-Zusatzsegmente zu bestimmen und zusammenzustellen.
In Fig. 9 werden die Inhalte der Puffer-Speicher unter Ansprechen
auf die Hauptspeichersteuerung in den Hauptspeicher gegeben. Nach einer geeigneten, durch die Verzögerungsschaltung 25O hervorgerufenen Verzögerung werden die Zähler
für den Peripheriewechsel durch ein Signal "clear A" gelöscht.
Es muss nun noch die Arbeitsweise des 1-Bit-Registers 2^2
"Verbinden" in Fig. 8 beschrieben werden. Das Signal "Verbinden" wird durch die Schaltung 86 in Fig. 5 gesetzt, wenn
es auftritt, dass ein einen Kern bildendes rotes Blutkörperchen angetroffen wurde oder es nicht möglich ißt, auszusagen,
- 41 40981 1/0975
ob ein einen Kern bildendes rotes Blutkörperchen oder ein weisses Blutkörperchen, das ein rotes Blutkörperchen berührt,
angetroffen wurde. Einen Kern bildende rote Blutkörperchen haben die Eigenschaft, einen Kern und Hämoglobin in ihrem
Zytoplasma zu enthalten. Teile der Zelle werden daher von dem RBC-Teil der in Fig. 8 gezeigten Hardware analysiert und
Teile davon durch die WBC-Hardware. Wenn die Daten für diesen
Zellentyp gespeichert werden, müssen die WBC- und RBC-Anteile der Daten gespeichert werden. Eine Eins in dem Verbindungsregister
252 erzeugt ein STW- und STIi-Signal, wenn
eines von beiden vorhanden ist, wodurch die gewünschte duale
Speicherung erreicht wird.
Am Ende der Feldabtastung sind im Hauptspeicher an Stellen, die den Zellen-Nummern entsprechen, die vollständigen Eigenschaften
jeder Zelle des Feldes enthalten. Diese Zellen werden dann unter der Verwendung der zusammengesetzten Eigenschaften
klassifiziert. Unter Verwendung von Befehlen des Steuerspeichers wird diese Klassifikation von dem Computer
CHJ (Fig. 1) durchgeführt, während der Abtaster zu einem neuen Feld der Probe bewegt wird. Nach der Beendigung der
Klassifikation wird der Bereich des Hauptspeichers, der für die vollständige Eigenschaften vorgesehen ist, gelöscht,
um für die Eigenschaften der Zellen in dem nächsten untersuchten Feld bereit zu sein. Dieses Verfahren wird wiederholt,
bis genügend Zellen untersucht worden sind, zu welchem Zeitpunkt dann eine Zusammenfassung der Daten auf
einem Datenausgabegerät ausgegeben wird.
Aus der vorausgehenden Beschreibung ergibt sich, dass die bevorzugte Ausführungsform ein spezielles Beispiel eines
allgemeineren Verfahrens und einer allgemeineren Vorrichtung zur Analyse eines Untersuchungsobjekts ist, gekennzeichnet
durch das Zusammenstellen der partiellen Eigenschaften aus einem oder mehreren die Probe darstellenden Signalen. In
der bevorzugten Ausführungsform werden die partiellen Eigen-
- 42 40981 1/0975
3057 t,i 23U528
schäften aus rasterartigen, die Probe darstellenden Abtastsignalen
unter Verwendung von Steuersignalen, die mittels der oben erwähnten Farb-Algebra gewonnen wurden, zusammengestellt.
Eine erfindungsgemässe Alternative kann jedoch verwendet werden, um die Eigenschaften der verschiedenen
Bereiche der Probe aus einem Signal zusammenzustellen, das eine Probe darstellt, die in einem an einem feststehenden
Sensor vorbeiströmenden Gas oder einer Flüssigkeit enthalten,
wobei Steuersignale verwendet werden, die aus diesem Signal oder mittels der Farb-Algebra gewonnen wurden.
Die bevorzugte Ausführungsform enthält ausserdem das Zusammenstellen
der vollständigen Eigenschaften aus den partiellen Eigenschaften, die die Grosse, die Peripherie und die
Dichte der Zelle bei den verschiedenen Wellenlängenbändern darstellen. Aus diesen Messungen können Eigenschaften abgeleitet
werden, die die mittlere Farbe und Form der verschiedenen Zellenbereiche darstellen. Diese Eigenschaften
sind jedoch nur einige wenige von vielen Eigenschaften, die die Form, Farbe und Dichte darstellen, die erfindungsgemäss
zusammengestellt werden können. Bei Bedarf können gemäss der vorliegenden Erfindung auch Eigenschaften, die
andere Merkmale als die Grosse, Form, Peripherielänge, Dichte und Farbe darstellen, zusammengestellt v/erden. Der
besondere, in Verbindung mit der bevorzugten Ausführungsform
beschriebene Satz von Eigenschaften wurde für die Erläuterung gewählt und soll nicht als Einschränkung der Erfindung
betrachtet werden.
Es wurde eine bevorzugte Ausführungsform im Detail beschrieben,
wobei jedoch innerhalb der nachfolgenden Ansprüche zahlreiche Modifikationen bestehen, ohne vom Grundgedanken der
vorliegenden Erfindung abzuweichen.
- 43 Λ 0 9 811/0975
Claims (1)
- *·· September ISp. j-2Patentansprüche1. Ein Verfahren zum Analysieren eines beleuchteten Untersuchungsobjekt, dadurch gekennzeichnet, dassein erstes Signal erzeugt wird, das ein erstes vorgegebenes Wellenlängenband des Lichtes darstellt, das in einem Bereich des Untersuchungsobjekts von dem Untersuchungsobjekt verändert wurde,ein zweites Signal erzeugt wird, das ein zweites vorgegebenes Wellenlängenband des Lichtes darstellt, das
von dem Untersuchungsobjekt in diesem Bereich verändert wurde, wobei das erste und zweite Wellenlängenband
so gewählt sind, dass wenigstens zwischen zwei verschiedenen Bereichen des Untersuchungsobjekts ein Differentialkontrast erzeugt wird unddie ersten und zweiten Signale algebraisch kombiniert und mit Schwellenwerten verglichen werden, um den Bereich des Untersuchungsobjekts wenigstens in eine von einer vorgegebenen Anzahl von Kategorien zu klassifizieren.2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Untersuchungsobjekt ein Teilchen ist, dadurch gekennzeichnet, dass eineein Teilchen enthaltende Probe mit Licht beleuchtet
wird, das durch das Teilchen verändert wird.3. Verfahren nach Anspruch 2, wobei das Teilchen eine
Blutzelle ist.4. Verfahren nach Anspruch 3j dadurch gekennzeichnet, dass vor der Beleuchtung der Blutzellen enthaltenden Probe die Probe angefärbt wird.5. Verfahren nach Anspruch 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet,- 44 40981 1 /09755057dass die ersten und zweiten Signale algebraisch kombiniert und mit Schwellenwerten verglichen werden, um den Bereich als Hintergrund, als rotes Blutkörperchen oder als weisses Blutkörperchen zu klassifizieren.6. Verfahren nach Anspruch 5j dadurch gekennzeichnet, dassjedes der ersten und zweiten Signale zur Erzeugung entsprechender Signale mit mindestens einem Schwellenwert verglichen tfird, unddie ersten und zweiten mit Schwellenwerten verglichenen Signale algebraisch kombiniert werden, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen oder ein weisses Blutkörperchen zu klassifizieren.7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dasseine Blutzellen enthaltende Probe mit einem Eomanovsky-Farbstoff angefärbt wird,ein drittes Signal erzeugt wird, das ein drittes vorgegebenes Wellenlängenband des Lichtes darstellt, das durch den Bereich der Blutzellen enthaltenden Probe verändert wird, wobei das erste, zweite und dritte Wellenlängenband so gewählt sind, dass wenigstens zwischen zwei Bereichen der Blutzellen enthaltenden Probe ein Differentialkontrast hergestellt wird,jedes der ersten, zweiten und dritten Signale zur Erzeugung entsprechender Signale wenigstens mit einem Schwellenwert verglichen wird, unddie ersten, zweiten und dritten mit Schwellenwerten verglichenen Signale algebraisch kombiniert v/erden, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen oder ein weisses Blutkörperchen zu klassifizieren.- 45 40981 1 /097530578. Verfahren nach Anspruch 7> dadurch gekennzeichnet, dass das erste, zweite und dritte mit Schwellenwerten ver^ glichene Signal algebraisch kombiniert wird, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen, einen Kern eines weissen Blutkörperchens oder ein Zytoplasma eines weissen Blutkörperchens zu klassifizieren.9. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, dasseine Blutzellen enthaltende Probe mit einer Romanovsky-Farbe angefärbt wird,das erste Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 500 bis 550 nm besitzt,das zweite Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 400 bis 420 nm besitzt,das erste und zweite Signal zur Erzeugung entsprechender erster und zweiter, binärer Signale mit Schwellenwerten verglichen wird, unddie ersten und zweiten mit Schwellenwerten verglichenen Signale algebraisch kombiniert werden, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen, oder ein weisses Blutkörperchen zu klassifizieren, wobei die mit Schwellenwerten verglichenen binären Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:Erstes Signal Zweites SignalHintergrund 0 0EBC ■ 1 1WBC 1 010. Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, dassdas erste Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 570 bis 600 nm besitzt,- 46 -£09811/09753057das zweite Vellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 500 bis 53O nm besitzt,das dritte Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 400 bis 420 nm besitzt,jedes der ersten, zweiten und dritten Signale zur Erzeugung entsprechender binärer Signale mit wenigstens einem Schwellenwert verglichen wird, unddie binären ersten, zweiten und dritten mit Schwellenwerten verglichenen Signale algebraisch kombiniert werden, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen,^ippnKern eines weissen Blutkörperchens oder ein Zytoplasma eines wei^sen Blutkörperchens zu klassifizieren, wobei die binären, mit Schwellenwerten verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:Erstes Zweites Drittes Signal Signal SignalHintergrund EBCWBC-Kern WBC-Zytoplasma11. Verfahren nach Anspruch 10, wobei das erste Signal als Α-Signal, das zweite Signal als B-Signal und das dritte Signal als C-Signal bezeichnet werden, dadurch gekennzeichnet, dasseine Blutzellen enthaltende Probe mit einem Wright-Farbstoff angefärbt wird,das Α-Signal und das B-Signal zur Erzeugung entsprechender Signale mit einem Schwellenwert verglichen werden,dae B-Signale mit zwei verschiedenen Schwellenwerten- 47 -40981 1/09750 0 0 0 1 1 1 1 0 O 1 0 1 0 0 verglichen werden, um entsprechende, "binäre B- und B'-Signale zu erzeugen, unddie mit Schwellenwerten verglichenen, binären A-, B-, B'- und C-Signale algebraisch kombiniert werden, um den Bereich in eine vorgegebene Kategorie zu klas-Bifizieren, wobei die binären, mit Schwellenwerten verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:A B1 B CHintergrund 0 0 0 0 BBC-Zytoplasma 0 0 1 1 EBC-Kern 1 1 1 1 VBC-Kern 1 1 1 0 Monozyten- Zytoplasma 0 0 1 0 Neutrophiles Eosinophile Granulozyten 0 1 1 0 Basophile Granulozyten 1 0 1 0 Lymphozyten Zytoplasma 1 0 0 0 12. Verfahren nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, dass die binären, mit Schwellenwerten verglichenen ersten, zweiten und dritten Signale algebraisch kombiniert werden, um den Bereich als einen Hintergrund, einen Kern eines roten Blutkörperchens, ein Zytoplasma eines roten Blutkörperchens, einen Kern eines weissen Blutkörperchens oder ein Zytoplasma eines weissen Blutkörperchens zu klassifizieren, wobei die mit Schwellenwerten verglichenen, binären Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:- 48 /.09811/09755* Zweites
Signal2344528 Erstes
Signal0 Drittes
SignalHintergrund 0 1 0 RBC-Zytoplasma 0 1 1 EBC-Kern 1 1
01 WBC-Zytoplasma 0
11 0
0VBC-Kern 1 0 13. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dassein Abtastsignal erzeugt wird, das das durch das Untersuchung sob je kt veränderte Licht darstellt,das Abtastsignal mit Schwellenwerten verglichen wird,, um ein Steuersignal zu erzeugen,das Steuersignal zur Identifizierung von Segmenten des Untersuchungsobjekts in dem Abtastsignal verwendet wird,das Steuersignal dazu verwendet wird, Zeile für Zeile für jedes identifizierte Segment des Untersuchungsobjekts partielle Eigenschaften des Untersuchungsobjekts aus dem Abtastsignal zusammenzustellen, unddie vollständigen Eigenschaften des Untersuchungsobjekts aus den partiellen Eigenschaften zusammengestellt werden.14. Verfahren nach Anspruch 13j dadurch gekennzeichnet, dass für das Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften des UntersuchungsobjektsObjekt-Nummern erzeugt werden,jeden der identifizierten Segmente des Untersuehungsobjekts eine Objekt-Nummer zugewiesen wird, undjede Objekt-Nummer dazu verwendet wird, aus den partiellen Eigenschaften jedes identifizierten Segments- 49 -4 0 9 8 11/0975des Untersuchungsobjekts mit der gleichen Objekt-Nummer nacheinander die vollständigen Eigenschaften des Untersuchungsobjekts zusammenzustellen.15· Verfahren nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, dassein Untersuchungsobjekt mit Licht beleuchtet wird, das durch das Untersuchungsobjekt verändert wird, unddas Steuersignal zur Wiederherstellung $Qr vertikalen Verbindung verzögert wird.16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, dasserste und zweite Abtastsignale erzeugt werden, die entsprechende erste und zweite vorgegebene Wellenlängenbänder des Lichts darstellen, das durch das Untersuchungsobjekt verändert wurde, wobei die ersten und zweiten Wellenlängenbänder so gewählt wurden, dass wenigstens zwischen zwei unterschiedlichen Regionen des Objekts ein Differentialkontrast hergestellt wird,die ersten und zweiten Abtastsignale algebraisch kombiniert und mit Schwellenwerten verglichen werden, um Klassifizierungsignale für Objekt-Bereiche zu erzeugen,die Klassifizierungssignale zur Identifizierung von Segmenten des Untersuchungsobjekts in den Abtast-Signalen verwendet werden,die Klassifizierungssignale dazu verwendet werden, für jedes identifizierte Segment des Untersuchungsobjekts aus den Abtast-Signalen die partiellen Eigenschaften des Untersuchungsobjekts zusammenzustellen, unddie vollständigen Eigenschaften des Untersuchungsobjekts aus den partiellen Eigenschaften zusammengestellt werden.- 50 -409811/097523U52817· Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, dass die Abtast-Signale durch rasterförmiges Abtasten erzeugt werden .18. Verfahren nach Anspruch 17> wobei das Untersuchungsobjekt eine Blutzellen enthaltende Probe ist, dadurch gekennzeichnet, dassdie ersten und zweiten rasterartigen Abtastsignale zur Erzeugung entsprechender Signale mit Schwellenwerten verglichen werden,die ersten und zweiten mit Schwellenwerten verglichenen Signale zur Erzeugung von Klassifizierungsignalen der Probenbereiche algebraisch kombiniert werden, unddie Klassifizierungssignale zur Erzeugung von Steuersignalen algebraisch kombiniert werden.19· Verfahren nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, dass unter Ansprechen auf die Steuersignale und die Klassifizierungssignale jedem identifizierten Zellensegment eine Zellennummer zugewiesen wird.20. Verfahren nach Anspruch 19 5 dadurch gekennzeichnet, dass erste, zweite und dritte rasterartige Abtastsignale erzeugt werden, die entsprechende erste, zweite und dritte vorgegebene Wellenlängenbänder des Lichts darstellen, das durch die Probe verändert wird, wobei die ersten, zweiten und dritten Vellenlängenbänder so ausgewählt sind, dass wenigstens zwischen zwei unterschiedlichen Bereichen der Probe ein Differentialkontrast erzeugt wird,die ersten, zweiten und dritten rasterartigen Abtastsignale zur Erzeugung entsprechender Signale mit Schwellenwerten verglichen werden,die ersten, zweiten und dritten mit Schwellenwerten ver-- 51 -4 098 11/0975glichenen Signale zur Erzeugung von Klassifizierungssignalen für die Probenbereiche algebraisch kombiniert werden, unddie Klassifizierungssignale zur Wiederherstellung ihrer vertikalen Verbindung verzögert werden.21. Verfahren nach Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, dassdie vertikal verbundenen Klassifizierungssignale zur Erzeugung zweiter Steuersignale algebraisch kombiniert werden, undunter Ansprechen auf die Steuersignale und die Klassifizierungssignale und abhängig von dem Vorhandensein einer zuvor zugewiesenen Zellennummer jedem identifizierten Zellensegment eine Zellennummer zugewiesen wird, wobei die zuvor zugewiesene Zellennummer zur Wiederherstellung ihrer vertikalen Verbindung mit dem identifizierten Zellensegment verzögert wird.22. Verfahren nach Anspruch 21, dadurch gekennzeichnet, dass die Blutzellen enthaltende Probe angefärbt wird.23. Verfahren nach Anspruch 22, dadurch gekennzeichnet, dassdie ersten, zweiten und dritten rasterartigen Abtastsignale zur Erzeugung entsprechender Signale digitalisiert werden, unddie ersten, zweiten und dritten digitalisierten Serien-Datensignale zur Erzeugung entsprechender Signale mit Schwellenwerten verglichen werden, und die ersten Steuersignale zur Identifizierung von Zellensegmenten in den digitalisierten Serien-Datensignalen verwendet werden, und- 52 -/,09811/0975die ersten und zweiten Steuersignale dazu verwendet werden, für Jedes identifizierte Zellensegment aus den digitalisierten Serien-Latensignale die partiellen Zellen-Eigenschaften zusammenzustellen.24-. Verfahren nach Anspruch 23, dadurch .gekennzeichnet, dassdie ersten, zweiten und dritten digitalisierten Serien-Datensignale in Form eines Hämogramms aufgezeichnet werden, um wenigstens einen Schwellenwert für jedes der digitalisierten Serien-Datensignale zu erzeugen, unddie ersten, zweiten und dritten digitalisierten Serien-Datensignale zur Erzeugung entsprechender Signale mit diesen Schwellenwerten verglichen werden.25· Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Untersuchungsobjekt eine Probe ist, dadurch gekennzeichnet, dassdie Probe mit Licht beleuchtet wird, das durch die Probe verändert wird,die ersten und zweiten Signale zur Erzeugung von Klassifizierungssignalen für die Probenbereiche algebraisch kombiniert und mit Schwellenwerten verglichen werden,die Klassifizierungssignale dazu verwendet werden, für jeden identifizierten Prob enb'e reich aus den ersten und zweiten Signalen die partiellen Probeneigenschaften zusammenzustellen, unddie vollständigen Eigenschaften der Probe aus den partiellen Eigenschaften zusammengestellt werden.26. Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens nach Anspruch 1, gekennzeichnet durcheine Einrichtung zur Erzeugung eines ersten Signals,-53-09811/0975das ein erstes vorgegebenes Wellenlängenband des Lichts darstellt, das in einem Bereich des Untersuchungsobjekts von diesem verändert wird,eine Einrichtung zur Erzeugung eines zweiten Signals, das ein zweites vorgegebenes Wellenlängenband des Lichts darstellt, das von dem Untersuchungsohjekt ir einem Bereich verändert wird, wobei das erste und zweite Wellenlängenband so ausgewählt ist, dass wenigstens zwei unterschiedlichen Bereichen des Untersuchungsobjekts ein Differentialkontrast erzeugt wird, undeine Einrichtung zum algebraischen Kombinieren der ersten und zweiten Signale und vergleichen dieser Signale mit Schwellenwerten, um den Bereich des Untersuchungsobjekts wenigstens in eine einer vorgegebenen Anzahl von Kategorien zu klassifizieren.27· Vorrichtung nach Anspruch 26, wobei das Untersuchungsobjekt in einer Blutzellen enthaltenden Probe besteht, gekennzeichnet durch eine Einrichtung zur Beleuchtung einer Blutzellen enthaltenden Probe mit Licht, das durch die Blutzellen enthaltende Probe verändert wird.28. Vorric htung nach Anspruch 27, dadurch gekennzeichnet, dassdie Blutprobe mit einem Romanovsky-Farbstoff angefärbt wird,das erste vorgegebene Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 500 bis 530 nm besitzt,das zweite vorgegebene Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 400 bis 420 nm besitzt,eine Einrichtung (40, 42) zum Vergleichender ersten und zweiten Signale mit Schwellenwerten vorhanden ist, um entsprechende Signale zu' erzeugen, undA0981 1 /0975sz 23U528eine Einrichtung (58) zum algebraischen Kombinieren der ersten und zweiten binären, mit Schwellenwerten verglichenen Signale vorhanden ist, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen oder ein weisses Blutkörperchen zu klassifizieren, wobei die binären, mit Schwellenwerten verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:Erstes Signal Zweites SignalHintergrund 0 0RBC 1 1WBC 1 029· Vorrichtung nach Anspruch 271 gekennzeichnet'durcheine Einrichtung zur Erzeugung eines dritten Signals, das ein drittes' vorgegebenes Wellenlängenband des Lichts darstellt, das in dem Bereich von der angefärbten Blutprobe verändert wird, wobei das erste, zweite und dritte Wellenlängenband in der V/eise ausgewählt ist, dass wenigstens zwischen zwei Bereichen der Blutprobe ein Differentialkontrast erzeugt wird,eine Einrichtung zum Vergleichen der ersten, zweiten und dritten Signale mit Schwellenwert, um entsprechende Signale zu erzeugen, undeine Einrichtung zum algebraischen Kombinieren der ersten, zweiten und dritten mit Schwellenwerten verglichenen Signale, um den Bereich als einen Hintergrund, ein rotes Blutkörperchen oder ein weisses Blutkörperchen zu klassifizieren.50. Vorrichtung nach Anspruch 29j dadurch gekennzeichnet, dassdie Blutzellen enthaltende Probe mit einem Eomanovsky-Farbstoff angefärbt wird,- 55 40981 1 /0975das erste vorgegebene Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 570 bis 600 nm besitzt,das zweite vorgegebene Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 500 bis 550 nm besitzt,das dritte vorgegebene Wellenlängenband eine Wellenlänge von etwa 400 bis 420 nm besitzt,die ersten, zweiten und dritten Signale zur Erzeugung entsprechender Signale mit Schwellenwerten verglichen werden, unddie binären mit Schwellenwerten verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:Erstes Zweites Zweites Signal Signal SignalHintergrund 0 0 0 RBC 0 1 Λ WBC-Kern 1 1 0 WBC-Zytoplasma 0 1 0 1 0 0 51· Vorrichtung nach Anspruch 30, dadurch gekennzeichnet, dassdas zweite Signal mit zwei verschiedenen Schwellenwerten verglichen wird, um ein binäres zweites und ein binäres ursprüngliches zweites mit Schwellenwerten verglichenes Signal zu erzeugen, unddie binären, mit Schwellenwerte verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:409811/09755057Erstes,
binäres
SignalZweites,
ursprüng
liches
binäres
SignalZweites,
binäres
SignalDrittes,
binäres
SignalHintergrund 0 0 0 0 BBC-Zytoplasma Q 0 1 1 EBC-Kern 1 1 1 1 WBC-Kern 1 1 1 0 Μ ono zyti se he s
Zytoplasma
Neutrophiles0 O 1 O Eosinophile*
Granu1ο zy t en0 1 1 0 Basophile
Granulozyten1 0 1 0 Lympho zyt en-
Zytoplasma1 0 O O 32. Vorrichtung nach Anspruch 30, dadurch gekennzeichnet, dass die binären mit Schwellenwerten verglichenen Signale in folgender Weise algebraisch kombiniert werden:Erstes Zweites Drittes Signal Signal Signal Hintergrund 0 0 0 EBC-Zytoplasma 0 1 1 RBC-Kern Λ 1 1 WBC-Zytoplasma 0 1 0 1 0 0 WBC-Kern 1 1 0 33· Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens nach Anspruch 13» gekennzeichnet durcheine Einrichtung (10) zur Erzeugung eines Abtastsignals, das das durch die Probe veränderte Licht darstellt,- 57 -40981 1 /097Seine Einrichtung (40, 42) zum Vergleichen der Abtastsignale mit Schwellenwerten, um Steuersignale zu erzeugen,eine Einrichtung (58)» die zur Identifizierung von Probensegmenten in dem Abtastsignal auf die Steuersignale anspricht,eine Einrichtung (Fig. 5)» die auf diese Steuersignale anspricht, um für jedes identifizierte Probensegment aus dem Abtastsignal Zeile für Zeile die partiellen Eigenschaften der Probe zusammenzustellen, und eine Einrichtung (Fig. 9) zum Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften der Probe aus den partiellen Eigenschaften.34. Vorrichtung nach Anspruch 33» dadurch gekennzeichnet, dass die Einrichtung zum Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften eine Einrichtung zur Erzeugung von Objektnummern, eine Einrichtung zum Zuweisen einer Objektnummer an jede der identifizierten Probensegmente und eine Einrichtung aufweist, die jede Objektnummer dazu verwendet, aus den partiellen Eigenschaften jedes identifizierten Probensegments mit der gleichen Objektnummer die vollständigen Eigenschaften der Probe zusammenzustellen.35· Vorrichtung nach Anspruch 33 oder 34, gekennzeichnet durcheine Einrichtung (11) zur Beleuchtung der Probe mit Licht, das durch die Probe verändert wird, eine Einrichtung (10) zur Erzeugung erster und zweiter Abtastsignale, die entsprechende erste und zweite vorgegebene Wellenlängenbänder des Lichts darstellen, das durch die Probe verändert wird, wobei die ersten und zweiten Wellenlängenbänder so gewählt sind, dass- 58 -4098 11/097SClwenigstens zwischen zwei Bereichen der Probe ein Di— ferentialkontrast erzeugt wird,eine Einrichtung (40, 42, 58) zum algebraischen Kombinieren der ersten und zweiten Abtastsignale und Vergleichen dieser Signale mit Schwellenwerten, um Klassifizierungssignale für die Probenbereiche zu erzeugen,eine Einrichtung (Fig. 5)» die zur Identifizierung der Probensegmente in den Abtastsignalen auf die Klassifizierungssignale anspricht,eine Einrichtung, die auf die Klassifizierungssignale anspricht, um für jedes identifizierte Probensegment Zeile für Zeile aus den Abtastsignalen die partiellen Eigenschaften der Probe zusammenstellt, undeine Einrichtung (Fig. 9) zum Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften der Probe aus den partiellen Eigenschaften.36. Vorrichtung nach Anspruch 35, wobei die Probe Blutzellen enthält, gekennzeichnet durcheine Einrichtung, die die ersten und zweiten Abtastsignale auf rasterartige Weise erzeugt,eine Einrichtung zum algebraischen Kombinieren der Klassifizierungssignale, um Steuersignale zu erzeugen,eine Einrichtung, die auf diese Steuersignale anspricht, um die Zellensegmente in den rasterartigen Abtastsignalen zu identifizieren,eine Einrichtung, die auf diese Steuersignale anspricht, für jedes identifizierte Zellensegment Zeile für Zeile aus den rasterartigen AbtastSignalen die partiellen Zelleneigenschaften zusammenzustellen,eine Einrichtung zur Erzeugung von Zellennumniern, eine Einrichtung, die unter Ansprechen auf die Steuer-- 59 -40981 1 /097S23U528ti'signale und die Klassifizierungsignale jedem identifizierten Zellensegment eine Zellnnummer zuweist, undeine Einrichtung, die jede Zellennummer dazu verwendet, aus den partiellen Eigenschaften jedes identifizierten Zellensegments mit der gleichen Zellennummer aufeinanderfolgend die vollständigen Eigenschaften der Zelle zusammenzustellen.37. Vorrichtung nach Anspruch 36, gekennzeichnet durch eine Einrichtung (1O) zur Erzeugung eines ersten, zweiten und dritten rasterartigen Abtastsignals, die entsprechende erste, zweite und dritte vorgegebene Wellenlängenbänder des durch die Probe veränderten Lichts darstellen, wobei die ersten, zweiten und dritten WeI-lenlängenbänder so ausgewählt sind, dass wenigstens zwischen zwei unterschiedlichen Bereichen der Probe ein Differentialkontrast erzeugt wird,eine Einrichtung (40, 42) zum Vergleichen der ersten, zweiten und dritten rasterartigen Abtastsignale-mit Schwellenwerten, um entsprechende Signale zu erzeugen,eine Einrichtung (58) zum algebraischen Kombinieren der ersten, zweiten und dritten mit Schwellenwerten verglichenen Signale, um Klassifizierungssignale der Probenbereiche zu erzeugen,eine Einrichtung zum algebraischen Kombinieren der Klassifizierungssignale, um erste Steuerssignale zu erzeugen,eine Einrichtung (72) zum Verzögern der Klassifizierungssignale, um&ren vertikale Verbindung wieder herzustellen,eine Einrichtung (Fig. 5) zum algebraischen Kombinieren der vertikal verbundenen Klassifizierungssignale, um zweite Steuersignale zu erzeugen,- 60 /♦09811/0975CHeine Einrichtung (Fig. 5), die zur Identifizierung der Zellensegmente in den rasterartigen Abtastsignalen auf die ersten Steuersignale anspricht,eine Einrichtung, die auf die ersten und zweiten Steuersignale anspricht,. um für jedes identifizierte Zellenßegment Zeile für Zeile aus den rasterartigen Abtastsignalen die partiellen Eigenschaften der Zelle zusammenzustellen ,eine Einrichtung (Fig. 6, 7) zur Erzeugung von Zellennummern,eine Einrichtung, die unter Ansprechen auf die Steuersignale und die Klassifizierungssignale und entsprechend dem Vorhandensein einer vorausgehend zugewiesenen Zellennummer Jeden der identifizierten Zellensegmente eine Zellennummer zu v/eist, wobei die vorausgehend zugewiesene Zellennummer verzögert wird, um deren vertikale Verbindung mit dem identifizierten Zellensegment wieder herzustellen, und eine Einrichtung (Fig. 9)> die jede Zellennummer dazu verwendet, um aus den partiellen Eigenschaften jedes identifizierten Zellensegments mit der gleichen Zellennummer die vollständigen Eigenschaften der Zelle zusammenzustellen .J8. Vorrichtung nach Anspruch 26, wobei das Untersuchungsobjekt eine Probe ist gekennzeichnet durch eine Einrichtung (11) zur Beleuchtung der Probe mit Licht, das durch die Probe verändert wird, eine Einrichtung (58) zum algebraischen Kombinieren der mit Schwellenwerten verglichenen ersten und zweiten Signale, um Klassifizierungssignale für die Probenbereiche zu erzeugen,eine Einrichtung (Fig. 5)> die auf die Klassifizierungb-- 61 -40981 1 /097Ssignale anspricht, um für jeden identifizierten Probenbereich aus den ersten und zweiten Signalen die partiellen Eigenschaften der Probe zusammenzustellen, undeine Einrichtung (Fig. 9) zum Zusammenstellen der vollständigen Eigenschaften der Probe aus den partiellen Eigenschaften.- 62 -40981 1 /0975Leerseite
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US00286043A US3851156A (en) | 1972-09-05 | 1972-09-05 | Analysis method and apparatus utilizing color algebra and image processing techniques |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2344528A1 true DE2344528A1 (de) | 1974-03-14 |
Family
ID=23096811
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE19732344528 Withdrawn DE2344528A1 (de) | 1972-09-05 | 1973-09-04 | Verfahren und vorrichtung zur analyse unter verwendung von farb-algebra und von bild-verarbeitungsverfahren |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US3851156A (de) |
| JP (1) | JPS4993095A (de) |
| CA (1) | CA1002193A (de) |
| DE (1) | DE2344528A1 (de) |
| FR (1) | FR2198634A5 (de) |
| GB (1) | GB1449501A (de) |
| SE (2) | SE403657B (de) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4404896A1 (de) * | 1993-02-16 | 1994-08-18 | Hitachi Ltd | Verfahren und Vorrichtung zum Analysieren angefärbter Partikel |
| DE19645306A1 (de) * | 1996-05-08 | 1997-11-13 | Neuhaus Neotec Maschinen Und A | Verfahren und Vorrichtung zur Steuerung des Röstvorganges zum Rösten von Kaffee |
| CN118549301A (zh) * | 2024-07-26 | 2024-08-27 | 成都华西海圻医药科技有限公司 | 一种实验动物淋巴结窦内红细胞识别与评估方法 |
Families Citing this family (40)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4125828A (en) * | 1972-08-04 | 1978-11-14 | Med-El Inc. | Method and apparatus for automated classification and analysis of cells |
| JPS541606B2 (de) * | 1973-04-06 | 1979-01-26 | ||
| JPS5424680B2 (de) * | 1973-11-13 | 1979-08-22 | ||
| GB1490070A (en) * | 1974-01-31 | 1977-10-26 | Metals Res Ltd | Electrical circuit and apparatus and method of operating same for making measurements on differently coloured features |
| JPS5513305B2 (de) * | 1974-08-14 | 1980-04-08 | ||
| JPS51102696A (de) * | 1975-03-07 | 1976-09-10 | Hitachi Ltd | |
| HU171629B (hu) * | 1975-06-30 | 1978-02-28 | Medicor Muevek | Elektroskhema dlja opredelenija kraskorastvorennykh krivykh in vivo i in vitro, dlja rascheta minyty-ob ema serdca |
| JPS5212517A (en) * | 1975-07-21 | 1977-01-31 | Hitachi Ltd | Binalizing device of video signal |
| US4080653A (en) * | 1976-01-30 | 1978-03-21 | Barnes Jr Ralph W | Intracranial pressure data processor |
| JPS594058B2 (ja) * | 1976-07-23 | 1984-01-27 | 株式会社日立製作所 | 白血球像処理方法 |
| US4129854A (en) * | 1976-10-25 | 1978-12-12 | Hitachi, Ltd. | Cell classification method |
| US4199748A (en) * | 1976-11-01 | 1980-04-22 | Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center | Automated method and apparatus for classification of cells with application to the diagnosis of anemia |
| US4097845A (en) * | 1976-11-01 | 1978-06-27 | Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center | Method of and an apparatus for automatic classification of red blood cells |
| GB1591441A (en) * | 1976-12-09 | 1981-06-24 | Smithkline Corp | Pattern recognition system for generating a blood cell maturity index |
| DE2903625A1 (de) * | 1978-02-03 | 1979-08-09 | Rush Presbyterian St Luke | Vorrichtung zur automatischen blutanalyse |
| US4220850A (en) * | 1978-09-29 | 1980-09-02 | Abbott Laboratories | Bimodal autofocusing apparatus |
| US4247162A (en) * | 1978-09-29 | 1981-01-27 | Abbott Laboratories | Rectilinear drive apparatus |
| FR2465220A1 (fr) * | 1979-09-12 | 1981-03-20 | Commissariat Energie Atomique | Dispositif d'identification d'objets situes sur une surface et de determination de parametres desdits objets |
| US4453266A (en) * | 1980-04-21 | 1984-06-05 | Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center | Method and apparatus for measuring mean cell volume of red blood cells |
| JPS5856588A (ja) * | 1981-09-29 | 1983-04-04 | Toa Medical Electronics Co Ltd | 画像分析分法およびその装置 |
| FR2599205B1 (fr) * | 1981-11-27 | 1990-08-24 | Thomson Csf | Procede recursif de caracterisation de zones isotropes dans une image video; dispositif detecteur de mouvement et detecteur de bruit dans une sequence d'images |
| DE3208737A1 (de) * | 1982-03-11 | 1983-09-22 | Drägerwerk AG, 2400 Lübeck | Optisches mehrstrahl-gasmessgeraet |
| JPS58211272A (ja) * | 1982-06-02 | 1983-12-08 | Hitachi Ltd | 閾値決定法 |
| GB2129545B (en) * | 1982-11-02 | 1986-07-16 | Industry The Secretary Of Stat | Parallel digital signal processing |
| JPS5987081A (ja) * | 1982-11-09 | 1984-05-19 | 池上通信機株式会社 | 外観品位検査方式 |
| US4616134A (en) * | 1984-07-17 | 1986-10-07 | Chevron Research Company | High resolution geologic sample scanning apparatus and process of scanning geologic samples |
| US4998284A (en) * | 1987-11-17 | 1991-03-05 | Cell Analysis Systems, Inc. | Dual color camera microscope and methodology for cell staining and analysis |
| US5086476A (en) * | 1985-11-04 | 1992-02-04 | Cell Analysis Systems, Inc. | Method and apparatus for determining a proliferation index of a cell sample |
| US5134662A (en) * | 1985-11-04 | 1992-07-28 | Cell Analysis Systems, Inc. | Dual color camera microscope and methodology for cell staining and analysis |
| US5281517A (en) * | 1985-11-04 | 1994-01-25 | Cell Analysis Systems, Inc. | Methods for immunoploidy analysis |
| US4884221A (en) * | 1986-04-14 | 1989-11-28 | Minolta Camera Kabushiki Kaisha | Color measuring apparatus |
| US4987539A (en) * | 1987-08-05 | 1991-01-22 | Stanford University | Apparatus and method for multidimensional characterization of objects in real time |
| JP2686274B2 (ja) * | 1988-03-24 | 1997-12-08 | 東亜医用電子株式会社 | 細胞画像処理方法および装置 |
| US5123055A (en) * | 1989-08-10 | 1992-06-16 | International Remote Imaging Systems, Inc. | Method and an apparatus for differentiating a sample of biological cells |
| WO1991014180A1 (en) * | 1990-03-14 | 1991-09-19 | Meat Research Corporation | Evaluating carcasses by image analysis and object definition |
| US6384847B1 (en) | 1992-03-20 | 2002-05-07 | International Business Machines Corporation | Interactive graphical method for analyzing many-dimensional data sets |
| US5343538A (en) * | 1992-10-02 | 1994-08-30 | International Remote Imaging Systems, Inc. | Method and an apparatus for identifying an object using quantile partitions |
| US5642433A (en) * | 1995-07-31 | 1997-06-24 | Neopath, Inc. | Method and apparatus for image contrast quality evaluation |
| US9602777B2 (en) | 2008-04-25 | 2017-03-21 | Roche Diagnostics Hematology, Inc. | Systems and methods for analyzing body fluids |
| EP3171178A1 (de) | 2015-11-23 | 2017-05-24 | F. Hoffmann-La Roche AG | System und verfahren zur vorbereitung einer biologischen probe zur analyse |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3315229A (en) * | 1963-12-31 | 1967-04-18 | Ibm | Blood cell recognizer |
| DE1917628A1 (de) * | 1969-04-05 | 1970-10-08 | Frieseke & Hoepfner Gmbh | Verfahren zur beruehrungslosen Messung der Konzentration von Substanzen in bewegten Messgutbahnen |
| DE1938854A1 (de) * | 1969-07-31 | 1971-04-29 | Leitz Ernst Gmbh | Verfahren zur Analyse eines Bildmusters und Einrichtungen zur Durchfuehrung des Verfahrens |
Family Cites Families (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3214574A (en) * | 1952-07-16 | 1965-10-26 | Perkin Elmer Corp | Apparatus for counting bi-nucleate lymphocytes in blood |
| US3327117A (en) * | 1963-08-12 | 1967-06-20 | Ibm | Cancer cell detector using two wavelengths for comparison |
| US3520316A (en) * | 1963-12-12 | 1970-07-14 | Bowles Eng Corp | Pressure-to-pressure transducer |
| US3327119A (en) * | 1964-03-26 | 1967-06-20 | Ibm | Method and apparatus for detecting cancer cells |
| US3408485A (en) * | 1965-02-24 | 1968-10-29 | Perkin Elmer Corp | Apparatus for counting irregularly shaped objects |
| US3413464A (en) * | 1965-04-29 | 1968-11-26 | Ibm | Method for measuring the nucleic acid in biological cells after enhancement in an acidic solution |
| US3770349A (en) * | 1969-03-17 | 1973-11-06 | Sanchez G Legorreta | Method and apparatus for automatically classifying complex, microscopic particles such as human cells |
| GB1302865A (de) * | 1969-07-14 | 1973-01-10 | ||
| US3699336A (en) * | 1969-08-15 | 1972-10-17 | Hycel Inc | Biological cell analyzing system |
| US3705771A (en) * | 1970-01-14 | 1972-12-12 | Bio Physics Systems Inc | Photoanalysis apparatus |
| US3657537A (en) * | 1970-04-03 | 1972-04-18 | Bausch & Lomb | Computerized slit-scan cyto-fluorometer for automated cell recognition |
| US3662176A (en) * | 1970-04-06 | 1972-05-09 | Bio Physics Systems Inc | Photo-optical particle analysis method and apparatus |
| US3714372A (en) * | 1970-06-01 | 1973-01-30 | Cognos Corp | Method and apparatus for counting and classifying microscopic particles |
| US3684377A (en) * | 1970-07-13 | 1972-08-15 | Bio Physics Systems Inc | Method for analysis of blood by optical analysis of living cells |
| US3740143A (en) * | 1970-10-30 | 1973-06-19 | Technicon Instr | Automatic apparatus for determining the percentage population of particulates in a medium |
-
1972
- 1972-09-05 US US00286043A patent/US3851156A/en not_active Expired - Lifetime
-
1973
- 1973-08-28 CA CA179,798A patent/CA1002193A/en not_active Expired
- 1973-08-30 JP JP48096729A patent/JPS4993095A/ja active Pending
- 1973-09-04 DE DE19732344528 patent/DE2344528A1/de not_active Withdrawn
- 1973-09-04 SE SE7312049A patent/SE403657B/xx unknown
- 1973-09-05 FR FR7332075A patent/FR2198634A5/fr not_active Expired
- 1973-09-05 GB GB4181773A patent/GB1449501A/en not_active Expired
-
1977
- 1977-07-19 SE SE7708341A patent/SE7708341L/xx unknown
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3315229A (en) * | 1963-12-31 | 1967-04-18 | Ibm | Blood cell recognizer |
| DE1917628A1 (de) * | 1969-04-05 | 1970-10-08 | Frieseke & Hoepfner Gmbh | Verfahren zur beruehrungslosen Messung der Konzentration von Substanzen in bewegten Messgutbahnen |
| DE1938854A1 (de) * | 1969-07-31 | 1971-04-29 | Leitz Ernst Gmbh | Verfahren zur Analyse eines Bildmusters und Einrichtungen zur Durchfuehrung des Verfahrens |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| US-Z.: Scientific American Nov. 1970, S. 72-82 * |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4404896A1 (de) * | 1993-02-16 | 1994-08-18 | Hitachi Ltd | Verfahren und Vorrichtung zum Analysieren angefärbter Partikel |
| DE19645306A1 (de) * | 1996-05-08 | 1997-11-13 | Neuhaus Neotec Maschinen Und A | Verfahren und Vorrichtung zur Steuerung des Röstvorganges zum Rösten von Kaffee |
| CN118549301A (zh) * | 2024-07-26 | 2024-08-27 | 成都华西海圻医药科技有限公司 | 一种实验动物淋巴结窦内红细胞识别与评估方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| GB1449501A (en) | 1976-09-15 |
| SE7708341L (sv) | 1977-07-19 |
| FR2198634A5 (de) | 1974-03-29 |
| JPS4993095A (de) | 1974-09-04 |
| CA1002193A (en) | 1976-12-21 |
| SE403657B (sv) | 1978-08-28 |
| US3851156A (en) | 1974-11-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE2344528A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur analyse unter verwendung von farb-algebra und von bild-verarbeitungsverfahren | |
| DE2823490C2 (de) | ||
| DE3689856T2 (de) | Analyseverfahren und vorrichtung für biologische specimen. | |
| DE60316113T2 (de) | Verfahren für quantitative video-mikroskopie und vorrichtung und computerprogramm zur durchführung des verfahrens | |
| DE2351490C3 (de) | Blutkörperchen-Analysator | |
| DE69328363T2 (de) | Nichtinvasives testverfahren | |
| DE102005022880B4 (de) | Trennung spektral oder farblich überlagerter Bildbeiträge in einem Mehrfarbbild, insbesondere in transmissionsmikroskopischen Mehrfarbbildern | |
| DE69221668T2 (de) | Gerät zur Zellenanalyse im Urin | |
| DE69030733T2 (de) | Zweifarben Kamera Mikroskop sowie Methodologie zur Anfärben von Zellen sowie Analyse | |
| DE69832167T2 (de) | Identifizierung von gegenständen mittels mehrfacher bilderfassungen | |
| DE3854644T2 (de) | Verfahren und Vorrichtungen zur Zellenbestimmung. | |
| DE69429145T2 (de) | Klassifikation und Prüfvorrichtung für Teilchen in einer Flüssigkeit | |
| DE69031682T2 (de) | Thionin Färbungstechnik | |
| DE1498824A1 (de) | Vorrichtung zur maschinellen Krebsdiagnose | |
| DE2422016A1 (de) | Diagnose von krankheitszustaenden durch fluoreszenzmessungen unter verwendung von abtastlaserstrahlen | |
| DE69229036T2 (de) | Methode und Vorrichtung zur automatischen Zellanalyse | |
| EP3575848A1 (de) | Analyzer zur dreidimensionalen analyse einer medizinischen probe mittels einer lichtfeldkamera | |
| DE10353785B4 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Erfassung von verschiedenen Zelltypen von Zellen in einer biologischen Probe | |
| EP3430565B1 (de) | Verfahren zur untersuchung verteilter objekte unter segmentierung eines übersichtbildes | |
| DE112022003311T5 (de) | Informationsverarbeitungsvorrichtung, system zur beobachtung biologischer proben und bilderzeugungsverfahren | |
| DE2450112B2 (de) | Verfahren und Anordnung zur zerstörungsfreien Analyse biologischer Zellen einer mindestens zwei unterschiedliche, Licht bekannter Wellenlange unterschiedlich stark absorbierende Zellen typen in zueinander festgelegter Lage enthaltenden Probe | |
| EP3828617A1 (de) | Verfahren zur digitalen anfärbung von zellen | |
| DE60310120T2 (de) | Automatisierte histologische Klassifizierung von Tubuli | |
| DE2552657A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur probenanalyse unter verwendung von farb-algebra zum analysieren von bildbereichen | |
| EP1154370A2 (de) | Automatische Bonitierung von biologischen Objekten auf der Basis dynamischer Farbanalyse mit nachfolgender Grössen- und Formanalyse |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| Q176 | The application caused the suspense of an application |
Ref document number: 2552657 Country of ref document: DE |
|
| 8139 | Disposal/non-payment of the annual fee |