DE19859110A1 - Bispezifische und trispezifische Antikörper, die spezifisch mit induzierbaren Oberflächenantigenen als operationelle Zielstrukturen reagieren - Google Patents
Bispezifische und trispezifische Antikörper, die spezifisch mit induzierbaren Oberflächenantigenen als operationelle Zielstrukturen reagierenInfo
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Abstract
Erfindungsgemäß wird bereitgestellt ein intakter bispezifischer oder trispezifischer Antikörper, der zumindest die nachfolgenden Eigenschaften aufweist: DOLLAR A a) Binden an eine T-Zelle; DOLLAR A b) Binden an zumindest ein Antigen auf einer Zielzelle; DOLLAR A c) Binden durch ihren Fc-Teil (bei bispezifischen Antikörpern) oder durch eine dritte Spezifität (bei trispezifischen Antikörpern) an Fc-Rezeptor positive Zellen DOLLAR A und der hierdurch eine Immunantwort induziert und/oder die Zielzellen zerstört, wobei der Antikörper so ausgewählt ist, daß er an ein Oberflächenantigen als Zielantigen auf der Zielzelle bindet, welches induzierbar ist und im nicht induzierten Zustand (Normalzustand) auf der Zielzelle nicht vorkommt oder in einer derart geringen Zahl, daß die Anzahl für eine Zerstörung der Zielzelle nicht ausreicht. DOLLAR A Weiterhin beschrieben werden eine pharmazeutische Zusammensetzung, die die erfindungsgemäßen Antikörper enthält sowie Verwendungen des Antikörpers.
Description
Die vorliegende Erfindung betrifft neue bispezifische und tri
spezifische Antikörper, Verfahren zur Herstellung dieser Anti
körper sowie ihre Verwendung in der Immuntherapie.
Die Immuntherapie durch Antikörper, insbesondere durch bispezi
fische oder trispezifische Antikörper, hat in den letzten Jah
ren an Bedeutung stetig zugenommen. Ein wesentliches Problem
bei der Verwendung derartiger Antikörper in der Immuntherapie
ist die spezifische Erkennung der Zielzelle durch die Antikör
per, d. h. eine möglichst genaue Differenzierung zu den Zellen,
die durch die Antikörper nicht angegriffen werden sollen, d. h.
den Zellen im normalen, physiologischen Zustand. Je spezifi
scher die Erkennung von Zielstrukturen auf den Zielzellen durch
die Antikörper ist, desto schonender verläuft eine Therapie mit
derartigen Antikörpern für einen Patienten und desto geringer
sind die Nebenwirkungen.
Die Lösung diese Problems wird umso wichtiger, je stärker die
Effizienz von Immuntherapien mit der Möglichkeit starker Neben
wirkungen zunimmt.
In der DE 196 49 223 und der DE 197 10 495 sind intakte bispe
zifische und trispezifische Antikörper beschrieben, die zur
Immuntherapie eingesetzt werden. Diese bispezfischen und tri
spezifischen Antikörper sind befähigt, an eine T-Zelle, zumin
dest ein Antigen auf einer Zielzelle und durch ihren Fc-Teil
oder durch eine dritte Spezifität an Fc-Rezeptor positive Zellen
(akzessorische Zellen) zu binden.
Während beispielsweise monoklonale Antikörper bei ihrer Anwen
dung in der Immuntherapie nur bestimmte, klar umgrenzte Teilbe
reiche des Immunsystems an einer Zielzelle aktivieren und des
halb die bei einem Patienten auftretenden Nebenwirkungen eben
falls begrenzt und deshalb relativ leicht zu kontrollieren
sind, rufen intakte bispezifische und trispezifische Antikörper
wesentlich stärkere Nebenwirkungen hervor, wenn die Spezifität
des Bindungsarmes, der ein Antigen auf einer Zielzelle erkennt,
gering ist. Der Grund liegt darin, daß intakte bispezifische
und trispezifische Antikörper nicht nur T-Zellen aktivieren,
sondern gleichzeitig auch akzessorische Zellen, beispielsweise
Monozyten, Makrophagen und dendritische Zellen. Diese Nebenwir
kungen könnten dadurch verringert werden, daß eine hochspezi
fische Erkennung der Zielzelle durch den Antikörper ermöglicht
wird.
Es ist somit eine wichtige Aufgabe der vorliegenden Erfindung,
intakte bispezifische und trispezifische Antikörper bereitzu
stellen, die hochspezifisch ein Antigen auf einer Zielzelle
erkennen.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß durch einen intakten bispe
zifischen oder trispezifischen Antikörper gelöst, die zumindest
die nachfolgenden Eigenschaften aufweisen:
- a) Binden an eine T-Zelle;
- b) Binden an zumindest ein Antigen auf einer Zielzelle;
- c) Binden durch ihren Fc-Teil (bei bispezifischen Antikör pern) oder durch eine dritte Spezifität (bei trispezifi schen Antikörpern) an Fc-Rezeptor positive Zellen
und der hierdurch eine Immunantwort induziert und/oder die
Zielzellen zerstört, wobei der Antikörper so ausgewählt ist,
daß er an ein Oberflächenantigen als Zielantigen auf der Ziel
zelle bindet, welches induzierbar ist und im nicht induzierten
Zustand (Normalzustand) auf der Zielzelle nicht vorkommt oder
in einer derart geringen Zahl, daß die Anzahl für eine Zerstö
rung der Zielzelle nicht ausreicht.
Erfindungsgemäß konnte gezeigt werden, daß nach Induktion be
reits eine relativ geringe Anzahl der Zielantigene auf der
Zielzelle ausreichend ist, um die intakten bispezifischen und
trispezifischen Antikörper zu binden und eine Zerstörung der
Zielzelle und/oder eine Immunantwort einzuleiten. Unter "gerin
ge Anzahl" wird erfindungsgemäß eine Anzahl von Zielantigenen
auf der Zielzelle von mehr als 100 Zielantigenen pro Zielzelle,
bevorzugt mehr als 300 und weiterhin bevorzugt mehr als 1000
Zielantigenen pro Zelle verstanden. Die induzierbaren Zielanti
gene können auch in einer Menge von bis zu 500.000 pro Zielzel
le vorliegen, wobei auch Mengen bis zu 400.000, bis zu 300.000,
bis zu 200.000 oder bis zu 100.000 pro Zielzelle induzierbar
sind. Ein weiterer bevorzugter Mengenbereich, in dem die Ziel
antigene vorliegen können, ist von 50.000 bis 100.000 und von
5000 bis 50.000.
Beispiele für induzierbare Oberflächenantigene auf Zielzellen
(Zielantigene), die für eine Immuntherapie durch intakte bispe
zifische und trispezifische Antikörper einsetzbar sind, sind
Hitzeschock-Proteine und "MHC-Klasse I-verwandte" MIC-Moleküle.
Hitzeschock-Proteine (Hsp) werden von der Zelle als Antwort auf
Zellstreß synthetisiert. Unter "Zellstreß" ist erfindungsgemäß
beispielsweise eine Entartung der Zelle, das Einwirken von
Strahlen, chemischen Substanzen und von erhöhter Temperatur auf
die Zelle sowie die Infektion der Zelle durch Mikroorganismen
zu subsumieren. Zur Zeit sind vier Familien von Hitzeschock-
Proteinen bekannt, die aufgrund ihres unterschiedlichen Moleku
largewichts differenziert werden. Diese Familien werden als
Hsp25, Hsp60, Hsp70 und Hsp90 bezeichnet, wobei die Zahl das
ungefähre Molekulargewicht der Streßproteine in Kilo-Dalton
wiedergibt. Die Hitzeschock-Proteine zeichnen sich durch hoch
konservierte Aminosäuresequenzen aus, wobei der Grad der Kon
servierung bei über 35% Aminosäure-Identität, bevorzugt bei 35
-55%, weiterhin bevorzugt 55-75% und am bevorzugtesten zwi
schen 75% bis 85% Amiriösäure-Identität liegt.
Auf folgende Übersichtsartikel wird verwiesen: Annu. Rev. Ge
net. 27, 437-496 (1993); Biochimie 76, 737-747 (1994); Cell.
Mol. Life Sci. 53, 80-129, 168-211 (1997); Experientia 48, 621-
656 (1992); Kabakov u. Gabai, Heat Shock Proteins and Cytopro
tection, Berlin: Springer 1997.
Hitzeschock-Proteine werden im Normalfall auf gesundem Gewebe
nicht exprimiert. Es gibt jedoch Untersuchungen, die zeigen,
daß Hitzeschock-Proteine beispielsweise auf Tumorzellinien und
auf Tumormaterial aus Patienten exprimiert werden können (Mel
cher et al., Nature Medicine, 4: 581, 1998). Die Expression der
Hitzeschock-Proteine auf den Tumorzellinien ist aber relativ
schwach und deshalb für bisher bekannte immuntherapeutische
Ansätze mit monoklonalen Antikörpern und unvollständigen
(F(ab)2) bispezifischen Antikörpern ungeeignet.
Beispiele für Hitzeschock-Proteine sind Hsp60 und Hsp70/72.
Gleiches gilt für MIC-Moleküle. Auch diese Moleküle sind durch
Zellstreß, wie oben näher definiert, induzierbar. MIC-Moleküle
sind MHC I-verwandte Moleküle, die unter Kontrolle von Hitze
schock-Promoter-Elementen stehen (Groh et al., PNAS 93: 12445,
1996). Beispiele für MIC-Moleküle sind MIC A und MIC B. Auch
für MIC-Moleküle konnte gezeigt werden, daß sie auf Normalge
webe nicht oder nur in so geringer Menge exprimiert werden, daß
sie als Zielstruktur zur Erkennung durch einen Antikörper, um
eine Zerstörung der Zielzelle zu erreichen, nicht geeignet
sind, während sie auf beispielsweise epithelialen Tumoren in
einer solchen Menge exprimiert werden, daß sie durch die erfin
dungsgemäß bereitgestellten bispezifischen und trispezifischen
Antikörper bei einer Immuntherapie als Zielantigene einsetzbar
sind.
Die erfindungsgemäß bereitgestellten intakten bispezifischen
oder trispezifischen Antikörper werden so ausgewählt, daß sie
gegen zumindest ein Zielantigen auf einer Zielzelle gerichtet
sind, welches induzierbar ist und auf der Zielzelle im nicht
induzierten Zustand nicht oder im wesentlichen nicht vorkommt.
Diese Zahl liegt beispielsweise bei ca. 100 Zielantigenen/Zel
le. Dies heißt jedoch nicht, daß derartige Zielantigene auf
anderen Zellen, d. h. Nicht-Zielzellen, nicht vorkommen können.
Beispielsweise kommen auf sich schnell regenerierendem Gewebe,
z. B. den Schleimhautzellen des Magen-Darm-Traktes, auch im phy
siologischen Zustand, konstitutiv exprimiert, Hitzeschockpro
teine vor. Diese Hitzeschockproteine werden jedoch von der vor
liegenden Erfindung nicht mit umfaßt, da sie nicht induzierbar
sind, sondern bereits auf Normalgewebe vorkommen. Bei Verwen
dung der erfindungsgemäßen Antikörper, die gegen Hitzeschock
proteine gerichtet sind, können auch bestimmte Schleimhautzel
len des Magen-Darm-Traktes zerstört werden, da diese, wie oben
ausgeführt, konstitutiv Hitzeschockproteine auf ihrer Zellober
fläche exprimieren. Die mögliche Zerstörung dieser Zellen ist
für einen Patienten zwar mit gewissen Nachteilen verbunden, die
jedoch im Vergleich zur erzielbaren Tumorzerstörung gering an
zusetzen sind.
Das sich schnell regenerierende Gewebe ist somit nicht primäres
Target der erfindungsgemäßen Antikörper, kann jedoch dann von
den Antikörpern "getroffen" werden, wenn der erfindungsgemäße
Antikörper nicht nur die induzierbaren Zielantigene auf der
Zielzelle erkennt, sondern diese Antigene z. B. auch auf sich
schnell regenerierendem Gewebe vorkommen. Da sich dieses Gewebe
jedoch schnell teilt, kann nach Absetzen der Antikörper-Thera
pie der ursprüngliche Zustand dieses Gewebes relativ rasch so
wieder hergestellt werden, daß es seine physiologische Aufgabe
wieder erfüllen kann. Die Erfindung ist also nicht darauf ge
richtet, daß die erfindungsgemäßen bispezifischen und trispezi
fischen Antikörper Antigene auf z. B. sich schnell regenerieren
dem Gewebe erkennen, welche dort unter Umständen konstitutiv
exprimiert werden, sondern die Erfindung umfaßt ausschließlich
solche Antikörper, die gegen Zielantigene gerichtet sind, die
auf der Zielzelle induzierbar sind und nach Induktion, bei
spielsweise auch konstitutiv, exprimierbar sind.
Erfindungsgemäß werden unter "induzierbar" solche Zielantigene
verstanden, die hier operationell tumorspezifisch sind und im
physiologischen Zustand auf der Zelle nicht oder nur in einer
solchen Anzahl vorkommen, daß eine Immunantwort gegen sie nicht
induzierbar ist oder eine Zerstörung der Zielzellen aufgrund
dieser geringen Anzahl nicht oder in einem nicht wesentlichen,
therapeutisch nutzbaren Umfang stattfindet.
Als induzierbare Zielantigene auf einer Zielzelle sind nicht
nur solche auf einer Tumorzelle zu verstehen, sondern auch An
tigene, die induziert werden, wenn die Zielzelle beispielsweise
durch einen Mikrooganismus infiziert wird. Unter "Mikroorganis
mus" wird erfindungsgemäß jeder Organismus verstanden, der die
Zielzelle so beeinflußt, daß auf seiner Oberfläche ein vom Mi
kroorganismus induziertes Zielantigen im oben beschriebenen
Umfang exprimiert wird. Unter Mikroorganismen werden erfin
dungsgemäß beispielsweise Bakterien, Viren, Protozoen und Pilze
verstanden. Zu den Bakterien gehören beispielsweise Gram-posi
tive und und Gram-negative Bakterien, Mycoplasmen und Rickett
sien. Von den Protozoen mitumfaßt werden insbesondere Plasmo
dien. Von den Viren umfaßt werden beispielsweise Retroviren,
Adenoviren, Herpesviren, Hepatitis-Viren, Togaviren, Pockenvi
ren usw. Entscheidend ist, daß in Zellen, die von einem oder
mehreren dieser Mikroorganismen infiziert wurden, auf der Zell
oberfläche Antigene exprimiert werden, die durch die Mikroor
ganismen-Infektion induziert werden. Dabei handelt es sich um
Antigene, die von den Zielzellen als Antwort auf die Mikroorga
nismen-Infektion produziert werden und auf der Zelloberfläche
erscheinen (wirtseigene Antigene), nicht dagegen um Zielantige
ne, die durch die Mikroorganismen selbst produziert werden. Die
Infektion einer Zielzelle durch einen Mikroorganismus führt
ebenfalls zu einer Zellstreß-Situation für die Zelle, die als
Antwort hierauf die Expression bestimmter Proteine induziert,
beispielsweise von Hitzeschock-Proteinen und von MIC-Proteinen.
Die erfindungsgemäß bereitgestellten intakten bispezifischen
und trispezifischen Antikörper führen nicht nur einen Typ von
Immunzellen, sondern T-Zellen und akzessorische Zellen an die
Zielzelle heran, und sie sind aus diesem Grund für die Erken
nung induzierbarer Oberflächenantigene als operationelle Ziel
strukturen besonders geeignet. Es konnte gezeigt werden, daß
bereits wenige Zielantigene in einer Menge von 100 bis 5000 pro
Zelle auf der Zielzelle ausreichend sind, um diese zu zerstö
ren. Die hierzu durchgeführten in vitro-Experimente mit Stamm
zellpräparaten (PBSZ) sind im nachfolgenden Beispiel 1 be
schrieben. Somit ist die erfindungsgemäße Klasse intakter bi
spezifischer und trispezifischer Antikörper befähigt, auch bei
einer sehr geringen Expression der Zielantigene Tumorzellen
oder Zielzellen zu zerstören oder nach deren Erkennung eine
Immunantwort zu initiieren.
Die erfindungsgemäßen Antikörper können, da sie gegen induzier
bare Antigene gerichtet sind, dazu beitragen, das Problem feh
lender zielzellspezifischer, für eine Immuntherapie notwendige
Zielantigene auf Tumorzellen und auf durch Mikroorganismen in
fizierten Zellen zu lösen. Da derartige induzierbare Antigene
nicht nur auf Tumorzellen vorkommen, sondern generell in Streß
situationen produziert werden, können auch Erkrankungen immun
therapeutisch angegangen werden, die durch Infektion von bei
spielsweise Viren, Einzellern, Bakterien oder Pilzen ausgelöst
wurden. Hierbei handelt es sich um die oben bereits näher be
schriebenen MIC-Moleküle und Hitzeschock-Proteine.
Die oben beschriebenen intakten bispezifischen oder trispezifi
schen Antikörper werden zur Induktion einer Immunantwort und/
oder zur Zerstörung der Zielzelle therapeutisch eingesetzt. Die
Antikörper werden in Form einer pharmazeutischen Zubereitung
verabreicht, die übliche Träger und/oder Hilfsstoffe enthalten
kann, um eine Stabilität und eine günstige Verabreichungsform
verbunden mit hoher Verträglichkeit und Wirksamkeit zu ermögli
chen. Durch die Applikation der Antikörper kann eine Prophylaxe
und Behandlung von beispielsweise Tumorerkrankungen erreicht
werden, so daß eine Immunität gegen den Erreger bzw. gegen den
Tumor, bevorzugt eine Langzeit-Immunität, erreicht wird.
Die erfindungsgemäß bereitgestellten Antikörper können in einer
relativ geringen Menge eingesetzt werden, d. h. sie sind bereits
in einer Menge von 5 µg bis 10 mg pro Patient wirksam, um die
erfindungsgemäße Immunität, beispielsweise Tumorimmunität, oder
die erfindungsgemäß erreichbare Zerstörung der Zielzelle zu
bewirken. Bevorzugt liegt die Applikationsmenge im Bereich von
10 µg bis 100 µg pro Patient, sie kann jedoch auch, falls not
wendig, darüber liegen, also im Bereich von 100 µg bis 5 mg pro
Patient.
Bei einem Tumorpatienten sollte, da die Induktion einer Tumor
immunität eine gewisse Zeit benötigt, bei Beginn der Therapie
eine Minimal Residual Disease (MRD) Situation mit wenigen ver
bliebenen Tumorzellen vorliegen. Unter MRD versteht man den
Zeitraum nach der Reduktion von größeren Tumormengen mit geeig
neten Methoden, wie beispielsweise der Entfernung des Primärtu
mors durch chirurgische Maßnahmen, indem noch residuelle Tumor
zellen existieren, die zwar u. U. nicht nachweisbar sind, aber
nach einer gewissen Zeit zum Rezidiv führen. Der Beginn der
Therapie kann aber bereits vor Entfernung des Tumors liegen, um
sicherzustellen, daß genügend Tumorzellen durch die bispezifi
schen oder trispezifischen Antikörper gebunden und dem Immunsy
stem präsentiert werden.
Bei den erfindungsgemäß verwendbaren geringen Mengen von ver
abreichten intakten bispezifischen oder trispezifischen Anti
körpern ist die Gefahr schwerwiegender Nebenwirkungen wesent
lich verringert. Ein weiterer Vorteil liegt darin, daß eine
humorale Immunantwort mit komplement-fixierenden Antikörpern
(bei Menschen die Isotypen IgG1 und IgG3), die in der Lage
sind, Tumorzellen zu zerstören, induziert wird.
Durch die Bindung des Antikörpers an die Fc-Rezeptor positive
Zelle wird diese aktiviert, wodurch die Expression von Zytoki
nen und/oder von co-stimulatorischen Antigenen initiiert oder
erhöht wird.
Die erfindungsgemäßen Antikörper übertragen durch die co-sti
mulatorischen Antigene auf der akzessorischen Zelle an die T-
Zelle zumindest ein zweites Aktivierungssignal, welches für
eine physiologische Aktivierung der T-Zelle benötigt wird, wo
bei sich diese Aktivierung in der Hochregulation von Aktivie
rungsmarkern, der Zerstörung der Zielzelle und/oder in einer
Proliferation der T-Zelle zeigt. Nach Verabreichung des Anti
körpers an den Patienten wird hierdurch eine Tumorimmunität,
bevorzugt eine Langzeit-Tumorimmunität, initiiert.
Die erfindungsgemäß erreichbare Immunantwort ist dadurch cha
rakterisiert, daß in einem Organismus das körpereigene Immunsy
stem derart aktiviert wird, daß es zu einer dauerhaften Zerstö
rung und/oder Kontrolle des Tumors oder der Infektionserkran
kung kommt. Weiterhin vorteilhaft ist bei Verwendung der hier
beschriebenen Antikörper die Reduktion von Nebenwirkungen, die
üblicherweise eingesetzte Antikörper, beispielsweise monoklona
le Antikörper, besitzen. Zielstruktur für die erfindungsgemäßen
Antikörper sind induzierbare Oberflächenantigene gemäß der De
finition der vorliegenden Erfindung, d. h. also solche, die auf
der Zielzelle nicht vorkommen oder in einer vernachlässigbaren
Menge, so daß eine direkte Zerstörung der Zielzelle oder eine
Immunantwort, insbesondere eine lang andauernde Immunantwort
bzw. Immunität nicht induziert oder zumindest nicht in einem
therapeutisch vernünftigen Ausmaß induziert wird.
Erfindungsgemäß ist jede Art von Tumoren behandelbar, die unter
die oben angegebene Definition fällt. Insbesondere therapierbar
sind epitheliale Tumore, Adenokarzinome, Kolonkarzinome, Mamma
karzinome, Ovarialkarzinome, Lungenkarzinome und Hals-, Nasen-
und/oder Ohrentumore. Weiterhin behandelbar sind nicht-epithe
liale Tumoren wie Leukämien und Lymphome. Weiterhin therapier
bar sind virusinduzierte Tumoren, beispielsweise Lebertumore
oder Cervixkarzinome.
Durch die Anwendung der erfindungsgemäß bereitgestellten Anti
körper sind auch durch Mikroorganismen infizierte Zielzellen
und die hierdurch induzierten Erkrankungen therapierbar. Hierzu
gehören beispielsweise Infektionen durch CMV und HIV.
Unter "Zielzelle" sind erfindungsgemäß alle Zellen zu verste
hen, die in Form einer Tumorzelle entartet sind oder die durch
einen Mikroorganismus infiziert wurden und die als Antwort auf
die Zell-Entartung oder die Mikroorganismus-Infektion ein Anti
gen exprimieren, welches in der Zielzelle im Normalzustand,
d. h. ohne Entartung bzw. ohne Infektion, nicht produziert wird
oder in einem so geringen Maße, daß hierdurch eine Immunthera
pie nicht induzierbar ist oder eine immuntherapeutische Zerstö
rung der Zielzelle nicht möglich ist.
Erfindungsgemäß sind nicht beliebige Antikörper verwendbar,
sondern diese müssen intakt sein, d. h. sie müssen einen funk
tionellen Fc-Teil besitzen, und sie sind bevorzugt heterologer
Natur sein, d. h. die Antikörper sind dann aus schweren Immung
lobulinketten unterschiedlicher Subklassen(-Kombinationen,
auch Fragmente bzw. einzelne ausgetauschte Aminosäuren) und/
oder Herkunft (Spezies) zusammengesetzt.
In einer bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung
werden bispezifische und/oder trispezifische Antikörper einge
setzt, die in der Lage sind, die Fc-Rezeptor-positive Zelle zu
aktivieren. Hierdurch wird die Expression von Cytokinen und/
oder co-stimulatorischen Antigenen initiiert oder erhöht.
Bei den trispezifischen Antikörpern erfolgt die Bindung an die
Fc-Rezeptor positiven Zellen bevorzugt beispielsweise über den
Fc-Rezeptor von Fc-Rezeptor positiven Zellen oder auch über
andere Antigene auf Fc-Rezeptor positiven Zellen (Antigen-prä
sentierenden Zellen), wie z. B. den Mannose-Rezeptor.
Die erfindungsgemäß verwendbaren heterologen bispezifischen
und/oder trispezifischen Antikörper sind zum Teil an sich be
kannt, zum Teil werden sie aber auch in der vorstehenden Anmel
dung zum ersten Mal beschrieben.
Nachfolgend wird die Erfindung insbesondere anhand von bispezi
fischen Antikörpern beschrieben. Die bispezifischen Antikörper
stellen jedoch nur eine Ausführungsform der Erfindung dar. Es
ist auch möglich, trispezifische Antikörper mit den oben ange
gebenen Eigenschaften einzusetzen. Weiterhin wird die Erfindung
insbesondere am Beispiel der Induktion einer Tumorimmunität
dargestellt. Dies ist jedoch ebenfalls nur eine mögliche Aus
führungsform der Erfindung, die ganz allgemein für immunthera
peutische Zwecke einsetzbar ist. Beispielsweise ist es auch
möglich, durch die Anwendung der erfindungsgemäß bereitgestell
ten Antikörper eine Immunität gegen Mikroorganismen zu errei
chen, die auf den infizierten Zielzellen u. a. die hier be
schriebenen Zielantigene induzieren.
Bezugnehmend auf das Merkmal (a) wird das 1. Signal beispiels
weise über den T-Zell-Rezeptor-Komplex der T-Zelle übertragen
und kann damit, für sich allein betrachtet, zu einer unphysio
logischen Aktivierung der T-Zelle führen. Die Zelle wird hier
durch anergisiert und kann auf T-Zell-Rezeptor vermittelte Sti
muli nicht mehr angemessen reagieren. Durch die erfindungsgemä
ßen bispezifischen oder trispezifischen Antikörper wird zusätz
lich gleichzeitig durch die kostimulatorischen Antigene auf der
Fc-Rezeptor positiven Zelle an die T-Zelle zumindest ein 2.
Aktivierungssignal übertragen, das zu einer physiologischen
Aktivierung der T-Zelle und in der Folge entweder zu einer Zer
störung der Zielzelle und/oder einer Proliferation der T-Zelle
führt. Als weiteres Kriterium für die Aktivierung der T-Zelle
kann die Hochregulation von Oberflächenantigenen wie z. B. CD2,
CD25 und/oder CD28 und/oder die Sekretion von Cytokinen wie
z. B. IL-2 oder INF-γ herangezogen werden.
Mit den erfindungsgemäß verwendeten bsAk werden also T-Zellen
aktiviert und gegen die Zielzellen redirigiert. Unspezifische
Aktivierungen von T-Zellen ohne Redirektion hatten in der Im
muntherapie generell wenig Erfolg.
Auf der Zielzelle erfolgt eine Hochregulation von MHC 1, sowie
eine Aktivierung der intrazellulären Prozessierungsmaschinerie
(Proteasom-Komplex) aufgrund der Freisetzung von Zytokinen (wie
z. B. INF-γ und TNF-α) in unmittelbarer Nachbarschaft der Ziel
zelle. Die Zytokine werden aufgrund bispezifischer Antikörper
vermittelter Aktivierung von T-Zellen und akzessorischen Zellen
freigesetzt (siehe Abb. 1 und 3). D. h. durch den intakten bsAk
werden nicht nur Zielzellen zerstört oder phagozytiert, sondern
indirekt auch deren Immunität, beispielsweise gegen den Tumor,
erhöht.
Die Aktivierung der Fc-Rezeptor positiven Zelle durch den bsAk
ist von der Subklasse bzw. der Subklassenkombination des bsAk
abhängig. Wie in in vitro-Versuchen nachgewiesen werden konnte,
sind beispielsweise bsAk der Subklassenkombination Maus-IgG2a/
Ratte-IgG2b in der Lage, an Fc-Rezeptor positive Zellen zu bin
den und diese gleichzeitig zu aktivieren, was zur Hochregula
tion bzw. Neuausbildung (Expression) von kostimulatorischen
Antigenen, wie z. B. CD40, CD80 oder CD86, auf der Zelloberflä
che dieser Zellen führt. Dagegen sind bsAk der Subklassenkom
bination Maus-IgG1/IgG2b zwar in der Lage an Fc-Rezeptor posi
tive Zellen zu binden (1), können diese aber offenbar nicht in
vergleichbarem Maße aktivieren (2).
Während der intakte bsAk die T-Zelle mit einem Bindungsarm
(z. B. an CD3 oder CD2) bindet und gleichzeitig aktiviert, kön
nen kostimulatorische Signale von der, an den Fc-Teil des bsAk
gebundenen Fc-Rezeptor positiven Zelle, an die T-Zelle übermit
telt werden. D. h. erst die Kombination von Aktivierung der T-
Zelle über einen Bindungsarm des bsAk und der gleichzeitigen
Übertragung von kostimulatorischen Signalen von der Fc-Rezeptor
positiven Zelle auf die T-Zelle, führt zu einer effizienten T-
Zellaktivierung. Zielzellspezifische T-Zellen, die an der
Zielzelle ungenügend aktiviert wurden und anergisch sind, kön
nen nach einer ex vivo-Langzeit-Inkubationsbehandlung ebenfalls
reaktiviert werden.
Ein weiterer wichtiger Aspekt bei der Induktion einer Zielzell
immunität ist die mögliche Phagozytose, Prozessierung und Prä
sentation von Zielzellbestandteilen durch die vom bsAk herange
führten und aktivierten akzessorischen Zellen (Monozyten/Makro
phagen, dendritische Zellen und NK-"Natural Killer"-Zellen).
Durch diesen klassischen Mechanismus der Präsentation von Anti
genen können sowohl zielzellspezifische CD4- wie auch CD8-posi
tive Zellen generiert werden. Zielzellspezifische CD4-Zellen
spielen darüberhinaus eine wichtige Rolle für die Induktion
einer humoralen Immunantwort im Zusammenhang mit der T-B-Zell
Kooperation.
Bispezifische und trispezifische Antikörper können mit einem
Bindungsarm an den T-Zellrezeptor-Komplex der T-Zelle, mit dem
zweiten Bindungsarm an zielzellassoziierte Antigene auf der
Zielzelle binden. Sie aktivieren dabei T-Zellen, die durch
Freisetzung von Zytokinen oder Apoptose-vermittelnde Mechanis
men die Zielzellen zerstören. Darüber hinaus besteht offenbar
die Möglichkeit, daß T-Zellen im Rahmen der Aktivierung mit
bispezifischen Antikörpern tumorspezifische Antigene über ihren
Rezeptor erkennen und dadurch eine dauerhafte Immunisierung
eingeleitet wird. Von besonderer Bedeutung ist dabei der intak
te Fc-Teil des bispezifischen oder trispezifischen Antikörpers,
der die Bindung an akzessorische Zellen wie z. B. Monozyten/Ma
krophagen und dendritische Zellen vermittelt und diese veran
laßt selbst zytotoxisch zu werden und/oder gleichzeitig wichti
ge kostimulatorische Signale an die T-Zelle weiterzugeben (Abb.
1). Auf diese Weise kann offensichtlich eine T-Zellantwort u. U.
auch gegen bislang unbekannte, zielspezifische Peptide indu
ziert werden.
Durch Redirektion von u. U. anergisierten, zielspezifischen T-
Zellen an Zielzellen mittels bispezifischer und/oder trispezi
fischer Antikörper bei gleichzeitiger Kostimulation derartiger
T-Zellen durch akzessorische Zellen, welche an den Fc-Teil des
bispezifischen oder trispezifische Antikörpers binden, könnte
die Anergie von zytotoxischen T-Zellen (CTLs) aufgehoben wer
den. D. h. eine im Patienten gegen die Zielzelle existierende T-
Zell-Toleranz kann mittels intakter heterologer bispezifischer
und/oder trispezifischer Antikörper gebrochen und damit eine
dauerhafte Immunität, z. B. eine Tumorimmunität, induziert wer
den.
Die erfindungsgemäß eingesetzten Antikörper sind bevorzugt zur
Reaktivierung von in Anergie befindlichen, zielspezifischen T-
Zellen befähigt. Weiterhin sind sie zur Induktion von tumorre
aktiven Komplement-bindenden Antikörpern und damit zur Induk
tion einer humoralen Immunantwort in der Lage.
Die Hindung erfolgt bevorzugt über CD3, CD2, CD4, CD5, CD6,
CD8, CD28 und/oder CD44 an die T-Zelle. Die Fc-Rezeptor positi
ven Zellen weisen zumindest einen Fcγ-Rezeptor I, II oder III
auf.
Erfindungsgemäß einsetzbare Antikörper sind zur Bindung an Mo
nozyten, Makrophagen, dendritische Zellen, "Natural Killer"-
Zellen (NK-Zellen) und/oder aktivierte neutrophile Zellen als
Fcγ-Rezeptor 1 positive Zellen befähigt.
Die erfindungsgemäß einsetzbaren Antikörper bewirken, daß die
Expression von CD40, CD80, CD86, ICAM-1 und/oder LFA-3 als ko
stimulatorische Antigene oder/und die Sekretion von Zytokinen
durch die Fc-Rezeptor positive Zelle initiiert oder erhöht
wird. Die Zytokine sind bevorzugt IL-1, IL-2, IL-4, IL-6, IL-
8, IL-12 und/oder TNF-α.
Die Bindung an die T-Zelle erfolgt bevorzugt über den T-Zell-
Rezeptor-Komplex der T-Zelle.
Die erfindungsgemäß einsetzbaren bispezifischen Antikörper sind
bevorzugt:
- - ein anti-CD3 × anti-operationell-induzierbares Zielzell assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD4 × anti-operatio nell-induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD5 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-asso ziiertes Antigen- und/oder anti-CD6 × anti-operationell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder an ti-CD8 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-assozi iertes Antigen- und/oder anti-CD2 × anti-operationell-in duzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder anti- CD28 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-assoziier tes Antigen- und/oder anti-CD44 × anti-operationell-indu zierbares Zielzell-assoziiertes Antigen-Antikörper ist.
Die erfindungsgemäß einsetzbaren trispezifischen Antikörper
sind bevorzugt:
- - ein anti-CD3 × anti-operationell-induzierbares Zielzell assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD4 × anti-operatio nell-induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD5 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-asso ziiertes Antigen- und/oder anti-CD6 × anti-operationell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder an ti-CD5 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-assozi iertes Antigen- und/oder anti-CD2 × anti-operationell-in duzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder anti- CD28 × anti-operationell-induzierbares Zielzell-assoziier tes Antigen- und/oder anti-CD44 × anti-operationell-indu zierbares Zielzell-assoziiertes Antigen-Antikörper.
Bevorzugt einsetzbare Spezifitäten der erfindungsgemäßen Anti
körper, die mit den unten genannten Isotyp-Kombinationen kom
binierbar sind, sind beispielsweise:
Anti-CD3 × Anti-Hsp70
Anti-CD2 × Anti-Hsp70
Anti-CD28 × Anti-Hsp70
Anti-CD5 × Anti-Hsp70
Anti-CD3 × Anti-MICA
Anti-CD2 × Anti-MICA
Anti-CD28 × Anti-MICA
Anti-CD5 × Anti-MICA
Anti-CD3 × Anti-MICB
Anti-CD2 × Anti-MICB
Anti-CD28 × Anti-MICB
Anti-CD5 × Anti-MICB
Anti-CD3 × Anti-Hsp70
Anti-CD2 × Anti-Hsp70
Anti-CD28 × Anti-Hsp70
Anti-CD5 × Anti-Hsp70
Anti-CD3 × Anti-MICA
Anti-CD2 × Anti-MICA
Anti-CD28 × Anti-MICA
Anti-CD5 × Anti-MICA
Anti-CD3 × Anti-MICB
Anti-CD2 × Anti-MICB
Anti-CD28 × Anti-MICB
Anti-CD5 × Anti-MICB
Die erfindungsgemäß einsetzbaren trispezfischen Antikörper wei
sen zumindest eine T-Zell-Bindungsarm, einen Zielzell-Bin
dungsarm und einen an Fc-Rezeptor positive Zellen bindenden
Bindungsarm auf. Dieser zuletzt genannte Bindungsarm kann ein
anti-Fc-Rezeptor-Bindungsarm oder ein Mannose-Rezeptor-Bin
dungsarm sein.
Der bispezifische Antikörper ist bevorzugt ein heterologer in
takter Ratte/Maus bispezifischer Antikörper.
Mit den erfindungsgemäß einsetzbaren bispezifischen und trispe
zifischen Antikörpern werden T-Zellen aktiviert und gegen die
Zielzellen redirigiert. Bevorzugt einsetzbare heterologe intak
te bispezifische Antikörper werden aus einer oder mehreren der
nachfolgenden Isotyp-Kombinationen ausgewählt:
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2a,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2b,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG3,
Ratte-IgG2b/Human-IgG1,
Ratte-IgG2b/Human-IgG2,
Ratte-IgG2b/Human-IgG3[orientaler Allotyp G3m(st) = Bin dung an Protein A],
Ratte-IgG2b/Human-IgG4,
Ratte-IgG2b/Ratte-IgG2c,
Maus-IgG2a/Human-IgG3[kaukasische Allotypen G3m(b+g) = keine Bindung an Protein A, im folgenden mit * gekenn zeichnet]
Maus-IgG2a/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgOl-[Hinge]-Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human- IgG4-[Hinge]-Human-IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human- IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Hu man-IgG3*[CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG3-[Hinge-CH2-CH3, orientaler Allotyp]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge-CH2-CH3]
Human-IgG1/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG2/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Maus-IgG2b/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL] - Human-IgG4-[Hinge]-Human-IgG4-[CH2]-Human-IgG3*-[CH3]
HumanlgG1/Ratte[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1 [Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*[CH3]
HumanlgGl/Maus[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1 [Hinge]-Human-IgG4- [CH2]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG4/Human[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*-[CH3].
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2a,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2b,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG3,
Ratte-IgG2b/Human-IgG1,
Ratte-IgG2b/Human-IgG2,
Ratte-IgG2b/Human-IgG3[orientaler Allotyp G3m(st) = Bin dung an Protein A],
Ratte-IgG2b/Human-IgG4,
Ratte-IgG2b/Ratte-IgG2c,
Maus-IgG2a/Human-IgG3[kaukasische Allotypen G3m(b+g) = keine Bindung an Protein A, im folgenden mit * gekenn zeichnet]
Maus-IgG2a/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgOl-[Hinge]-Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human- IgG4-[Hinge]-Human-IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human- IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Hu man-IgG3*[CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG3-[Hinge-CH2-CH3, orientaler Allotyp]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge-CH2-CH3]
Human-IgG1/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG2/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2 : < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Maus-IgG2b/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL] - Human-IgG4-[Hinge]-Human-IgG4-[CH2]-Human-IgG3*-[CH3]
HumanlgG1/Ratte[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1 [Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*[CH3]
HumanlgGl/Maus[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1 [Hinge]-Human-IgG4- [CH2]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG4/Human[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*-[CH3].
Die oben genannten Antikörper sind beispielhaft genannt. Diese
und andere erfindungsgemäß einsetzbaren Antikörper können vom
Fachmann anhand von speziellen Techniken hergestellt werden.
Beispielhaft hierfür ist die DE 195 31 346 genannt.
Insbesondere Greenwood et. al. beschreiben die Möglichkeit,
einzelne Immunglobulin-Domänen (z. B. CH2) durch geeignete Klo
nierungstechniken auszutauschen. Dadurch wird die Technik be
reitgestellt, um neue Antikörperkombinationen herzustellen,
z. B.: human-(VH-CH1, VL-CL)-human IgG4-(hinge)-human IgG4 (N-
terminale Region von CH2)-human IgG3* (C-terminale Region von
CH2 : < Aminosäureposition 251)-human IgG3* (CH3).
Die Kombination mit einem Antikörper: human IgG4 zur Herstel
lung des bispezifischen Antikörpers: human IgG4/human-(VH-CH1,
VL-CL)-human IgG4-(hinge)-human IgG4 (N-terminale Region von
CH2)-human IgG3* (C-terminale Region von CH2 : < Aminosäureposi
tion 251)- human IgG3* (CH3) wird durch einfache Zellfusion,
wie in Lindhofer et al. (3. Immunol. 155: 219, 1995) beschrie
ben, herbeigeführt.
Bei den erfindungsgemäß verwendbaren Antikörpern handelt es
sich vorzugsweise um monoklonale, chimäre, rekombinante, syn
thetische, halbsynthetische oder chemisch modifizierte intakte
Antikörper mit beispielsweise Fv-, Fab-, scFv- oder F(ab)2-
Fragmenten.
Bevorzugt werden Antikörper oder Derivate oder Fragmente vom
Menschen verwendet oder solche, die derart verändert sind, daß
sie sich für die Anwendung beim Menschen eignen (sogenannte
"humanized antibodies") (siehe z. B. Shalaby et al., J. Exp.
Med. 175 (1992), 217; Mocikat et al., Transplantation 57
(1994), 405).
Die Herstellung der verschiedenen oben genannten Antikörperty
pen und -fragmente ist dem Fachmann geläufig. Die Herstellung
monoklonaler Antikörper, die ihren Ursprung vorzugsweise in
Säugetieren, z. B. Mensch, Ratte, Maus, Kaninchen oder Ziege,
haben, kann mittels herkömmlicher Methoden erfolgen, wie sie
z. B. in Köhler und Milstein (Nature 256 (1975), 495), in Harlow
und Lane (Antibodies, A Laboratory Manual (1988), Cold Spring
Harbor) oder in Galfre (Meth. Enzymol. 73 (1981), 3) beschrie
ben sind.
Ferner ist es möglich, die beschriebenen Antikörper mittels
rekombinanter DNA-Technologie nach dem Fachmann geläufigen
Techniken herzustellen (siehe Kurucz et al., J. Immunol. 154
(1995), 4576; Hollinger et al., Proc. Natl. Acad. Sc. USA 90
(1993), 6444).
Die Herstellung von Antikörpern mit zwei verschiedenen Spezi
fitäten, den sogenannten bispezifischen Antikörpern, ist zum
einen durch Anwendung rekombinanter DNA-Technologie möglich,
aber auch durch die sogenannte Hybrid-Hybridoma-Fusionstechnik
(siehe z. B. Milstein et al., Nature 305 (1983), 537). Hierbei
werden Hybridomazellinien, die Antikörper mit jeweils einer der
gewünschten Spezifitäten produzieren, fusioniert und rekombi
nante Zellinien identifiziert und isoliert, die Antikörper mit
beiden Spezifitäten produzieren.
Das der Erfindung zugrunde liegende Problem kann sowohl durch
bispezifische als auch trispezifische Antikörper gelöst werden,
sofern sie die im Anspruch 1 gekennzeichneten Eigenschaften und
Wirkungen aufweisen. Nachfolgend wird die Herstellung von Anti
körpern mit Zwei- und Dreispezifitäten näher beschrieben. Die
Bereitstellung derartiger bispezifischer und trispezifischer
Antikörper gehört zum Stand der Technik, und auf die derartige
Herstellungstechniken beschreibende Literatur wird hier voll
inhaltlich Bezug genommen.
Die Herstellung von Antikörpern mit drei Spezifitäten, soge
nannten trispezifischen Antikörpern, durch die das der Erfin
dung zugrundeliegende Problem ebenfalls lösbar ist, kann bei
spielsweise derart erfolgen, daß an eine der schweren Ig-Ketten
eines bispezifischen Antikörpers eine dritte Antigenbindungs
stelle mit einer weiteren Spezifität, z. B. in Form eines "sing
le chain variable fragments" (scFv), angekoppelt wird. Das scFv
kann beispielsweise über einen
-S-S(G4S)nD-I-Linker
an eine der schweren Ketten gebunden sein (S = Serin, G = Gly
cin, D = Aspartat, I = Isoleucin).
Analog dazu können trispezifische F(ab)2-Konstrukte hergestellt
werden, indem die CH2-CH3-Regionen der schweren Kette einer
Spezifität eines bispezifischen Antikörpers ersetzt werden
durch ein scFv mit einer dritten Spezifität, während die CH2-
CH3-Regionen der schweren Kette der anderen Spezifität bei
spielsweise durch Einbau eines Stopcodons (am Ende der "Hinge"-
Region) in das codierende Gen, z. B. mittels homologer Rekombi
nation, entfernt werden (siehe Abb. 2).
Möglich ist auch die Herstellung trispezifischer scFv-Kon
strukte. Hierbei werden drei VH-VL-Regionen, die drei ver
schiedene Spezifitäten repräsentieren, hintereinander in Reihe
angeordnet (Abb. 3).
Erfindungsgemäß werden z. B. intakte bispezifische Antikörper
verwendet. Intakte bispezifische Antikörper sind aus zwei Anti
körper-Halbmolekülen (je eine H- und L-Immunglobulinkette), die
jeweils eine Spezifität repräsentieren, zusammengesetzt, und
besitzen darüber hinaus, wie normale Antikörper auch, einen Fc-
Teil mit den bekannten Effektorfunktionen. Sie werden bevorzugt
durch die Quadrom-Technologie hergestellt. Dieses Herstellungs
verfahren ist beispielhaft in der DE-A-44 19 399 beschrieben.
Auf diese Druckschrift, auch bzgl. einer Definition der bispe
zifischen Antikörper, wird zur vollständigen Offenbarung voll
inhaltlich Bezug genommen. Selbstverständlich sind auch andere
Herstellungsverfahren einsetzbar, solange sie zu den erfin
dungsgemäß notwendigen intakten bispezifischen Antikörpern der
obigen Definition führen.
Die Erfindung wurde vorstehend und wird nachstehend insbesonde
re anhand von bispezifischen Antikörpern beschrieben. An die
Stelle der bispezifischen Antikörper sind selbstverständlich
aber auch trispezifische Antikörper einsetzbar, solange sie die
gestellten Bedingungen erfüllen.
Die Erfindung wurde und wird anhand der beiliegenden Abbildun
gen näher beschrieben. Die Abbildungen zeigen:
Abb. 1: Darstellung der Antikörper der Erfindung und ihres
Wirkprinzips;
Abb. 2: Trispezifische F(ab)2-Antikörper
Abb. 3: Trispezifischer scFv-Antikörper
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung
werden die erfindungsgemäßen Antikörper eingesetzt, um durch
ein ex-vivo-Immunisierungsverfahren eine Prophylaxe und Thera
pie von Tumorerkrankungen und von durch Mikroorganismen hervor
gerufenen Erkrankungen zu erreichen, insbesondere um eine Immu
nität gegen einen Tumor oder gegen eine Infektion durch Mi
kroorganismen zu induzieren. Dieses ex-vivo-Immunisierungsver
fahren unter Verwendung der erfindungsgemäß bereitgestellten
Antikörper umfaßt die nachfolgenden Schritte:
- a) Isolierung autologer Zielzellen;
- b) Behandeln der Zielzellen, um ihr Überleben nach Reinfusion zu verhindern;
- c) 30 Minuten bis 4 Stunden, bevorzugt 30 Minuten bis 2 Stun den, vor Reinfusion der inaktivierten Zielzellen erfolgt eine Infusion der erfindungsgemäßen intakten bispezifi schen und/oder trispezifischen Antikörper in den Patien ten;
- d) Reinfundierung der behandelten Zielzellen in den Patien ten.
Unter Zielzellen werden erfindungsgemäß sowohl Tumorzellen ver
standen als auch Zellen, die durch Mikroorganismen, beispiels
weise durch Bakterien, Viren oder Pilze, infiziert wurden.
Nachfolgend wird die bevorzugte Ausführungsform der Erfindung
anhand der Behandlung autologer Tumorzellen dargestellt. Die
Erfindung ist jedoch nicht hierauf beschränkt, sondern kann
auch auf solche Zielzellen angewandt werden, die durch Mikroor
ganismen infiziert wurden und auf denen wirtseigene Antigene
induziert wurden. Zur Induktion von Antigenen und ihrer Bedeu
tung für die vorliegende Erfindung wird auf die obigen Ausfüh
rungen verwiesen.
In der nunmehr beschriebenen Ausführungsform der Erfindung wer
den heterologe intakte bispezifische und/oder trispezifische
Antikörper verwendet. Um ein Überleben der Tumorzellen nach
Reinfusion zu verhindern, wurden die Tumorzellen in an sich
bekannter Weise behandelt, beispielsweise durch Bestrahlung
oder Hitzebehandlung. Die Tumorzellen werden nach Bestrahlung
mit den intakten heterologen bispezifischen und/oder trispezi
fischen Antikörpern in Kontakt gebracht. Erfindungsgemäß sind
nicht beliebige Antikörper verwendbar, sondern diese müssen
intakt sein, d. h. sie müssen einen funktionellen Fc-Teil besit
zen, und sie müssen heterologer Natur sein, d. h. die Antikörper
sind dann aus schweren Immunglobulinketten unterschiedlicher
Subklassen(-Kombinationen, auch Fragmente) und/oder Herkunft
(Spezies) zusammengesetzt.
Durch dieses Verfahren und den Einsatz der hier beschriebenen
Antikörper ist gewährleistet, daß nach Infusion der Antikörper
in den Patienten, aus dem die Tumorzellen zuvor entnommen wur
den, eine Tumorimmunität aufgebaut wird. Die Reinfusion der
behandelten Tumorzellen erfolgt bevorzugt in einen Patienten
nach der Behandlung des Primärtumors, bevorzugt bei Patienten
in einer minimal residual disease (MRD)-Situation. Bei Pa
tienten mit wenig verbliebenen Tumorzellen, bei denen aller
dings die Gefahr eines Rezidivs hoch sein kann, wird das erfin
dungsgemäß bereitgestellte Verfahren besonders erfolgreich an
wendbar sein.
Erfindungsgemäß werden zwei Verfahrens-Varianten unterschieden:
- 1. Kurzzeitinkubation, und
- 2. Langzeitinkubation
Bei der Kurzzeitinkubation werden die autologen Tumorzellen
nach ihrer Gewinnung zunächst inaktiviert. 30 Minuten bis 4
Stunden, bevorzugt 30 Minuten bis 2 Stunden, vor Reinfusion der
behandelten Zielzellen werden die erfindungsgemäßen intakten
bispezifischen und/oder trispezifischen Antikörpern in den Pa
tieten infundiert. Die behandelten Tumorzellen werden dann zur
Reinfusion vorbereitet und infundiert.
Bei der Langzeitinkubation werden die autologen Tumorzellen
ebenfalls zunächst durch beispielsweise Bestrahlung oder Tempe
raturerhöhung inaktiviert. Anschließend werden hierzu Blutzel
len des Patienten, bevorzugt mononukleäre Zellen aus dem peri
pheren Blut (PBMC = peripheral blood mononucleated cells) sowie
die erfindungsgemäßen bispezifischen und/oder trispezifischen
Antikörper zugegeben, und diese Mischung wird dann über einen
längeren Zeitraum, beispielsweise 1 bis 14 Tage lang, bevorzugt
3 bis 10 Tage und weiterhin bevorzugt 6 bis 10 Tage, inkubiert.
Hierdurch wird eine Vielzahl von Immunzellen bereits ex vivo
gegen den Tumor "geprimt". Anschließend werden diese in den
Patienten reinfundiert. Durch die Langzeitinkubation wird auch
eine Internalisierung der Antikörper und ihr Abbau erreicht.
Erste in vitro-Ergebnisse zeigen, daß durch derartig vorbehan
delte Immunzellen Tumorzellen ohne weitere Zugabe von bispezi
fischen und/oder trispezifischen Antikörpern zerstört werden
können.
Sowohl bei der Kurzzeitinkubation als auch bei der Langzeitin
kubation werden T-Zellen an die Tumorzellen mittels der an den
Tumorzellen immobilisierten intakten bispezifischen und/oder
trispezifischen Antikörper redirigiert; gleichzeitig findet
eine Hindung von Fc-Rezeptor positiven Zellen an den Fc-Teil
des bispezifischen und/oder trispezifischen Antikörpers nach
Reinfusion statt. Dabei werden die Fc-Rezeptor positiven Zellen
durch Bindung an die Fc-Teile von (an der T-Zelle bzw. Tumor
zelle)immobilisierten intakten bispezifischen Antikörpern akti
viert.
Zur Verbesserung des Immunisierungserfolges können die entweder
nach dem Kurzzeit-Inkubationsverfahren oder nach dem Langzeit-
Inkubationsverfahren mit den Antikörpern behandelten Tumorzel
len nicht nur einmal an den Patienten appliziert, sondern wahl
weise auch mehrfach verabreicht werden.
Auf der Tumorzelle erfolgt eine Hochregulation von MHC 1, sowie
eine Aktivierung der intrazellulären Prozessierungsmaschinerie
(Proteasom-Komplex) aufgrund der Freisetzung von Zytokinen (wie
z. B. INF-γ und TNF-α) in unmittelbarer Nachbarschaft der Tumor
zelle. Die Zytokine werden aufgrund bispezifischer Antikörper
vermittelter Aktivierung von T-Zellen und akzessorischen Zellen
freigesetzt (siehe Abb. 1 und 3). D. h. durch den intakten bsAk
werden nicht nur Tumorzellen zerstört oder phagozytiert, son
dern indirekt auch deren Tumorimmunität erhöht.
Die Aktivierung der Fc-Rezeptor positiven Zelle durch den bsAk
ist von der Subklasse bzw. der Subklassenkombination des bsAk
abhängig. Wie in in vitro-Versuchen nachgewiesen werden konnte,
sind beispielsweise bsAk der Subklassenkombination Maus-IgG2a/
Ratte-IgG2b in der Lage, an Fc-Rezeptor positive Zellen zu bin
den und diese gleichzeitig zu aktivieren, was zur Hochregula
tion bzw. Neuausbildung (Expression) von kostimulatorischen
Antigenen, wie z. B. CD40, CD80 oder CD86, auf der Zelloberflä
che dieser Zellen führt. Dagegen sind bsAk der Subklassenkom
bination Maus-IgG1/IgG2b zwar in der Lage an Fc-Rezeptor posi
tive Zellen zu binden (1), können diese aber offenbar nicht in
vergleichbarem Maße aktivieren (2).
Während der intakte bsAk die T-Zelle mit einem Bindungsarm
(z. B. an CD3 oder CD2) bindet und gleichzeitig aktiviert, kön
nen kostimulatorische Signale von der, an den Fc-Teil des bsAk
gebundenen Fc-Rezeptor positiven Zelle, an die T-Zelle übermit
telt werden. D. h. erst die Kombination von Aktivierung der T-
Zelle über einen Bindungsarm des bsAk und der gleichzeitigen
Übertragung von kostimulatorischen Signalen von der Fc-Rezeptor
positiven Zelle auf die T-Zelle, führt zu einer effizienten T-
Zellaktivierung. Tumorspezifische T-Zellen, die an der Tumor
zelle ungenügend aktiviert wurden und anergisch sind, können
nach der erfindungsgemäßen ex vivo-Vorbehandlung ebenfalls re
aktiviert werden.
Ein weiterer wichtiger Aspekt bei der Induktion einer Tumorim
munität ist die mögliche Phagozytose, Prozessierung und Präsen
tation von Tumorbestandteilen durch die vom bsAk herangeführten
und aktivierten akzessorischen Zellen (Monozyten/Makrophagen,
dendritische Zellen und NK-"Natural Killer"-Zellen). Durch die
sen klassischen Mechanismus der Präsentation von Antigenen kön
nen sowohl tumorspezifische CD4- wie auch CD8-positive Zellen
generiert werden. Tumorspezifische CD4-Zellen spielen darüber
hinaus eine wichtige Rolle für die Induktion einer humoralen
Immunantwort im Zusammenhang mit der T-B-Zell-Kooperation.
Es gibt erste in vivo-Daten aus Mausversuchen, die auf eine
derartige dauerhafte Tumorimmuntät nach Behandlung mit einem
syngenen Tumor und intakten bsAk hinweisen. In diesen Versuchen
überlebten insgesamt 14 von 14 Tieren, die nach einer ersten
Tumorinjektion erfolgreich mit bsAk behandelt werden konnten,
eine weitere Tumorinjektion 144 Tage nach der ersten Tumorin
jektion - ohne eine erneute Gabe von bsAk.
Weitere Vorteile bei der ex vivo-Immunisierung mittels bispezi
fischer und/oder trispezifischer Antikörper sind (i) die Mini
mierung von möglichen Nebenwirkungen, (ii) die kontrollierte
Bindung des Tumorbindungsarms an die Tumorzelle außerhalb des
Körpers, (iii) ein möglichst geringer Verbrauch von bispezifi
schen und trispezifischen Antikörpern, (iv) und die Reprodu
zierbarkeit bzw. Steuerung des Immunisierungserfolges durch
Verabreichung einer definierten Anzahl von Tumorzellen. Dabei
sind grundsätzlich zwei Vorgehensweisen möglich, die unten im
einzelnen erläutert werden. Ein wichtiger Aspekt bei der Lang
zeitinkubation ist, daß der eingesetzte bispezifische oder tri
spezifische Antikörper innerhalb der projektierten Inkubations
zeit verbraucht und abgebaut wird. Damit würde für eine derar
tige Immunisierung die langwierige Arzneimittelanmeldung ent
fallen.
Beim Langzeit-Inkubationsverfahren werden die mononukleären
Zellen aus dem peripheren Blut mit den inaktivierten, autologen
Tumorzellen vermischt und zusammen mit den Antikörpern für ei
nen Zeitraum von 1-14 Tagen, bevorzugter 3 bis 10 Tagen, wei
terhin bevorzugt 6 bis 10 Tagen, inkubiert. Diese Inkubation
erfolgt bevorzugt bei 37°C unter sterilen Bedingungen und unter
GMP-Bedingungen (Good Manufacturing Production = GMP) in einem
Brutschrank.
Die obengenannten Inkubationsbedingungen sind nur beispielhaft
zu verstehen. In Abhängigkeit von den Tumorzellen und den ver
wendeten Antikörpern können auch andere Zeiträume, Temperatur
bedingungen etc., allgemein andere Inkubationsbedingungen, ge
wählt werden. Der Fachmann kann durch einfache Versuche diese
Bedingungen festlegen.
Bei der Ex-vivo-Immunisierung werden die Tumorzellen bevorzugt
in einer Menge von 107 bis 109 Zellen, weiterhin bevorzugt in
einer Menge von ca. 108 Zellen, verwendet. Die mononukleären
Zellen aus dem peripheren Blut werden in einer Menge von ca.
108 bis 1010 Zellen zugegeben. Selbstverständlich ist es für den
Fachmann auch möglich, andere Inkubationsbedingungen zu wählen,
die durch Laborversuche ermittelt werden können (bspw. Änderun
gen in der Zellzahl und Inkubationsdauer).
Die eingesetzten autologen Tumorzellen werden, um nach Reinfu
sion ein weiteres Überleben der Tumorzellen zu verhindern,
bspw. bestrahlt. Beispielsweise werden γ-Strahlen verwendet,
die bspw. in einer Dosisstärke von 20 bis 200 Gy eingesetzt
werden.
Die erfindungsgemäß eingesetzten Antikörper sind bevorzugt zur
Reaktivierung von in Anergie befindlichen, tumorspezifischen T-
Zellen befähigt. Weiterhin sind sie zur Induktion von tumorre
aktiven Komplement-bindenden Antikörpern und damit zur Induk
tion einer humoralen Immunantwort in der Lage.
- 1. Herstellung einer Einzelzellsuspension (107-109 Zellen) aus autologem Tumormaterial (oder allogenen Tumorzellen des selben Tumortyps) mit anschließender γ-Bestrahlung (20-100 Gy) oder Hitzebehandlung (zunächst ca. 42°C für 30 min; anschließend ca. 60°C für 1 Stunde);
- 2. Infusion der bispezifischen und/oder trispezifischen Anti körper (5-100 µg) 2 bis 4 Stunden vor Reinfusion des Zell gemisches in den Patienten;
- 3. Reinfusion des Zellgemisches (i.v.).
- 1. Herstellung einer Einzelzellsuspension (107-109 Zellen) aus autologem Tumormaterial (oder allogenen Tumorzellen des selben Tumortyps) mit anschließender γ-Bestrahlung (50-100 Gy) bzw. Hitzebehandlung;
- 2. Zugabe von bispezifischen und/oder trispezifischen Anti körpern (5-50 µg), und Zugabe von PBMC (108-1010), [alternativ: 1 × 109 Zellen aus T-Zellapherese]
- 3. nach 5 bis 7 Tagen Kontrolle der T-Zell-Reaktivität durch Transfer von Aliquots auf z. B. allogene Brustkrebszelli nien (MCF-7, MX-1)
- 4. Reinfusion (i.v.) der kultivierten PBMC am Tag 4 bis 14 in
den Patienten (bei T-Zellapherese Kryokonservierung).
Abkürzungen: PBMC, peripheral blood mononucleated cells = mono nukleäre Zellen aus dem peripheren Blut; i.v., intravenös.
Ein ähnlicher aber auf den Zusatz von Zytokinen angewiesener
und mit konventionellen bsAk (keine Aktivierung von akzessori
schen Zellen durch bsAk der Subklassenkombination Ratte IgG2B ×
Ratte IgCl) durchgeführter Ansatz zeigte die prinzipielle Wirk
samkeit einer derartigen ex vivo-Immunisierung im Tiermodell
(5).
Im Gegensatz dazu liegt der Vorteil des hier offengelegten Ver
fahrens in der "Selbstversorgung" mit den für die Hochregula
tion von z. B. MHC 1 auf der Tumorzelle benötigten Zytokinen
(wie INF-γ oder TNF-α) durch die gleichzeitige Aktivierung von
T-Zellen und akzessorischen Zellen (Monozyten/Makrophagen,
Abbildung) an der Tumorzelle. Dies wird durch die eingangs erwähnte
besondere Subklassenkombination des hier verwendeten intakten
bsAk erreicht. Bei der Kurzzeitinkubation finden diese Vorgänge
im Patienten statt. Weitere Vorteile bei der Kurzzeitinkubation
sind (i) Umgehung der sonst notwendigen Kultivierung der Zell
suspension mit serumhaltigen Medium. (ii) Damit entfällt auch
die kostenintensive Kultivierung unter GMP-Richtlinien.
Vorteil bei der Langzeitinkubation ist, daß der bsAk sich in
vitro nach einiger Zeit selber verbraucht (und somit auch diese
Methode nicht als Medikament, sondern als "medical device" eta
bliert werden kann).
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung
werden die erfindungsgemäßen Antikörper eingesetzt, um die An
zahl kontaminierender Zielzellen in Stammzelltransplantaten ex
vivo zu vermindern. Dieses Verfahren ist dadurch gekennzeich
net, daß die erfindungsgemäß bereitgestellten intakten bispezi
fischen und trispezifischen Antikörper für einen ausreichend
langen Zeitraum mit Stammzelltransplantaten, die kontaminieren
de Zielzellen enthalten können, in Kontakt gebracht werden, um
die Anzahl von kontaminierenden Zielzellen im Stammzelltrans
plantat zumindest zu verringern. Z. B. werden hier Stammzell
transplantate aus Patientinnen mit einem Mammakarzinom oder
Ovarialkarzinom oder aus Patienten mit Leukämien, Lymphom, Ho
denkarzinom oder anderen Chemotherapie sensitiven Karzinomen,
behandelt. Erfindungsgemäß können aber auch Stammzelltransplan
tate aus Patienten behandelt werden, die durch Mikroorganismen,
beispielsweise durch Viren, infiziert sind. Beispiele für mit
Viren infizierte Stammzelltransplantate sind solche, die durch
CMV oder HIV infiziert wurden. Die erfindungsgemäß verwendbaren
bispezifischen und trispezifischen Antikörper wurden bereits
vorstehend beschrieben.
Das Stammzelltransplantat wird mit den bispezifischen Antikör
pern für einen Zeitraum von 4 bis 72 Stunden, bevorzugt für
einen Zeitraum von 24 bis 48 Stunden, inkubiert, wobei bei
spielsweise eine Temperatur im Bereich von 20 bis 25°C, vor
zugsweise Raumtemperatur, gewählt wird. Die Zellen im Stamm
zelltransplantat liegen beispielsweise in einer Dichte von
30.000 bis 75.000 Zellen pro µl vor.
Nach erfolgter ex-vivo Behandlung werden die Stammzelltrans
plantate in den Patienten, möglicherweise auch nach weiterer
Aufreinigung, reinfundiert. Vollinhaltlich wird hier auf die DE
196 49 223.8 hingewiesen, deren Offenbarungsgehalt in die vor
stehende Anmeldung voll mit integriert wird.
In dieser Ausführungsform der Erfindung mit dem erfindungsgemä
ßen Verfahren werden kontaminierende Tumorzellen in Stammzell
präparaten (Leukaphereseprodukten) mittels bispezifischer oder
trispezifischer Antikörper in vitro eliminiert. Diese Antikör
per weisen die im Anspruch 1 spezifizierten Merkmale auf, ins
besondere werden diese Antikörper so ausgewählt, daß sie an ein
Oberflächenantigen als Zielantigen auf der Zielzelle binden,
welches induzierbar ist und im nicht-induzierten Zustand (Nor
malzustand) nicht vorkommt oder in einer derart geringen Zahl,
daß die Anzahl für eine Zerstörung der Zielzelle oder die In
duktion einer Immunantwort durch den Antikörper nicht aus
reicht.
Beispiele für die verwendbaren, durch die vorliegende Erfindung
bereitgestellten Antikörper wurden gegeben. Diese weisen ins
besondere die bereits oben dargestellen Spezifitäten auf und
können bevorzugt mit den dargestellten Isotyp-Kombinationen
verknüpft werden.
Das Inkontaktbringen der bispezifischen Antikörper und der
Stammzellen mit den kontaminierenden Zielzellen erfolgt unter
solchen Bedingungen, die sowohl eine Hindung der bispezifischen
oder trispezifischen Antikörper an die Zielzellen und die T-
Zellen als auch eine Beibehaltung der Lebensfähigkeit der
Stammzellen gestatten. Die Einhaltung dieser Parameter ist für
die Erhaltung und die Vitalität der Stammzellen wie auch der
Lymphozyten notwendig. Beispielsweise wird das Stammzelltrans
plantat (Leukaphereseprodukt) etwa 4-72 Stunden, bevorzugt 24-48
Stunden, mit bispezifischen Antikörpern bei Raumtemperatur
und einer Zelldichte von 30.000-75.000 Zellen/µl, bevorzugt
30.000-50.000 Zellen/µl, unter leichtem Schwenken inkubiert.
Bei einer Gesamtzellzahl von ca. 10 × 109 Zellen/Stammzell
transplantat ist eine bsAk-Menge von 5-50, 50-100, 100-500 µg
für die Tumorzellzerstörung ausreichend. Ein weiterer
wichtiger Punkt des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die Ver
wendung von sogenannten intakten bispezifischen oder trispezi
fischen Antikörpern. Diese sind nicht nur in der Lage (aufgrund
der hier verwendeten Spezifitäten) T-Zellen an die Tumorzellen
zu führen, sondern sie sind aufgrund der Effektorfunktionen des
Fc-Teils darüber hinaus geeignet, mittels Komplement vermittel
ter Lyse oder durch Hindung von Fc-Rezeptor positiven Zellen,
wie z. B. Makrophagen, Monozyten oder aktivierten neutrophilen
Granulozyten, Tumorzellen zu zerstören. Es können somit durch
intakte bsAk mehrere tumorzell-zerstörende Mechanismen gleich
zeitig aktiviert werden.
Nachfolgend wird anhand eines Beispiels gezeigt, daß die erfin
dungsgemäß bereitgestellten Antikörper befähigt sind, induzier
bare Oberflächenantigene auf Zielzellen zu erkennen und an sie
zu binden und eine Immunantwort einzuleiten bzw. die Zielzelle
zu zerstören, auch wenn die Zielstrukturen in einer äußerst
geringen Menge auf der Zielzelle vorliegen, beispielsweise in
einer Menge von 100 bis 10.000 pro Zelle. Die Zielstrukturen
können auch in höherer Anzahl vorliegen, beispielsweise bis zu
500.000 (weitere bevorzugte Bereiche sind oben dargestellt).
Die erfindungsgemäßen Antikörper wirken jedoch überraschender
weise auch dann, wenn die Zielstrukturen auf der Zielzelle in
einer Anzahl von ca. 100 vorliegen, wobei erstaunlicherweise,
selbst bei dieser geringen Anzahl von Zielstrukturen auch nur
geringste Mengen des Antikörpers notwendig sind, um eine Wirk
same therapeutische Behandlung durchzuführen, d. h. Mengen von
ca. 5 µg können zur Behandlung ausreichend sein.
Zur Verbesserung des Immunisierungserfolges wird die Kombina
tion aus Antikörper und Tumorzellen bevorzugt mehrfach an den
Patienten verabreicht, wobei die Zahl der Infusionen vom zu
behandelnden Tumor und vom Patienten und eventuell weiteren
Faktoren abhängt.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform wird die Immuno
genität der Tumorzellen dadurch erhöht, daß sie vor Verabrei
chung einer Hitzevorbehandlung unterzogen werden. Eine bevor
zugte Hitzevorbehandlung wird über einen Zeitraum von bei
spielsweise 1-6 Stunden, bevorzugt ca. 3 Stunden, über einen
Temperaturbereich von 41-42°C, bevorzugt bei einer Temperatur
von ca. 41,8°C, durchgeführt. Sowohl die Behandlungsdauer als
auch die Behandlungstemperatur hängen vom zu behandelnden Tu
mortyp ab. Dien einzusetzende Temperatur und der Hitzevorbe
handlungszeitraum können vom Fachmann durch Versuche ermittelt
werden.
Die Erfindung wird nachfolgend anhand eines Ausführungsbei
spiels dargestellt. Die Erfindung ist jedoch nicht auf dieses
spezielle Bespiel beschränkt, sondern kann im Rahmen der vor
liegenden Beschreibung und der anliegenden Ansprüche abgewan
delt werden.
Nachdem in präklinischen Tiermodellen die herausrangende Wirk
samkeit von intakten bsAk nicht nur in vitro, sondern auch in
vivo belegt werden konnte (Lindhofer et al., Blood, 88: 4651,
1996), wurde die Reinigung von Stammzellpräparaten von kontami
nierenden Tumorzellen als weitere Anwendungsmöglichkeit entwic
kelt (Lindhofer et al., Exp. Hematol. 25: 879, 1997).
Auf diesen Versuchen aufbauend, konnte in Folgeversuchen mit
kompletten Stammzellpräparaten (ca. 2 × 10e10 Zellen), insbe
sondere die Wirksamkeit im untergesättigten Bereich der Zielan
tigene nachgewiesen werden. D. h. es wurde, in Titrationsversu
chen, so wenig intakter bsAk verabreicht, daß in einem PBSZ
(Periphere Blut-Stammzellen)-Präparat mit ca. 6,5 × 10e9 T-Zel
len, bei einer Gabe von 5 µg Antiköper/Präparat, lediglich 3000
CD3 Moleküle von ca. 30.000 CD3 Molekülen/T-Zelle mit dem bsAk
gebunden vorlagen (siehe Berechnung). Trotzdem waren die intak
ten bsAk in der Lage, auch unter diesen Bedingungen, die Ziel
zellen (hier Tumorzelle: HCT-8) zu zerstören.
Die Versuche waren so aufgebaut, daß von derartig behandelten
PBSZ-Präparaten Aliquots entnommen und mit einer definierten
Menge von Tumorzellen kontaminiert wurden. Es konnte gezeigt
werden, daß die Tumorzellen selbst bei dieser geringen Konzen
tration von intakten bsAk, bei der nur ein Teil der Zielanti
gene besetzt vorliegen, zerstört werden.
Die Auswertung des oben beschriebenen Experiments führte zu
folgenden Ergebnissen:
Ein intakter bsAk hat ein Molekulargewicht von 150 KDa. D. h. 1 Mol
sind 150 kg und entsprechen definitionsgemäß 6 × 1023 Molekü
len. Damit entsprechen 5 µg ca. 2 × 1013 Molekülen.
Nachdem in einem Stammzellpräparat 6,5 × 109 T-Zellen bestimmt
wurden und eine T-Zelle ca. 30.000 CD3 Moleküle trägt, kommt
man auf eine Gesamtzahl von 19,5 × 1013 CD3 Molekülen im Stamm
zellpräparat.
Da jeder bsAk einen anti-CD3 Bindungsarm besitzt, kann gefol
gert werden, daß theoretisch, setzt man die beiden oben berech
neten Molekülmengen in Bezug, in diesem konkreten Beispiel
nicht mehr als ca. 3000 CD3 Moleküle von den bsAk besetzt wer
den können.
1. Haagen et al., Interaction of human moncyte Fcγ receptors
with rat IgG2b, J. Immunolog., 1995, 154: 1852-1860
2. Gast G. C., Haagen I.-A., von Houten A. A., Klein S., Duits
A. J., de Weger R. A., Vroom T. M., Clark M. R., J. Phillips,
von Dijk A. J. G., de Lau W. B. M., Bast B. J. E. G. CD8 T-cell
activation after intravenous administration of CD3 × CD19
bispecific antibody in patients with non-Hodgkin lymphoma.
Cancer Immunol. Immunother. 40: 390, 1995
3. Tenny, C., Jacobs, S., Stoller, R., Earle, M., and Kirk
wood, J. Adoptive cellualr immunotherapy with high-dose
chemotherapy and autologous bone marrow rescue (ABMR) for
recurrent breast cancer (meeting abstract).
Proc. Annu. Meet. Am. Soc. Clin. Oncol; 11: A88, 1992 ISSN:
0736-7589. CO: PMAODO - 7589 CO, 1993.
4. Early Breast Cancer Trialists' Collaborative Group,
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women. Part II Lancet 339: 71-85, 1992
5. Guo et al., Effective tumor vaccines generated by in vitro
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monoclonal antibodies. Nature Medicine 3: 451, 1997
6. Lindhofer et al., Preferential species-restricted heavy
light chain pairing in rat-mouse quadromas: Implications
for a single step purification of bispecific antibodies,
J. Immunology 1995, 155: 219
Claims (23)
1. Intakter bispezifischer oder trispezifischer Antikörper,
der zumindest die nachfolgenden Eigenschaften aufweist:
- a) Binden an eine T-Zelle;
- b) Binden an zumindest ein Antigen auf einer Zielzelle;
- c) Binden durch ihren Fc-Teil (bei bispezifischen Anti körpern) oder durch eine dritte Spezifität (bei tri spezifischen Antikörpern) an Fc-Rezeptor positive Zellen
2. Antikörper nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß als induzierbare Antigene Hitze-Schock-Proteine oder
MHC-Klasse-I verwandte MIC-Moleküle eingesetzt werden.
3. Antikörper nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet,
daß als Hitze-Schock-Proteine HSP25-, HSP60- oder HSP70-
(HSP72-) oder HSP90-Proteine und als MIC-Moleküle MIC-A-
und MIC-B-Moleküle eingesetzt werden.
4. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß er gegen solche Zielantigene gerichtet ist, die nach
Induktion auf der Zielzelle in einer Anzahl von mindestens
100 und höchstens 500.000 pro Zielzelle vorliegen.
5. Antikörper nach Anspruch 4,
dadurch gekennzeichnet,
daß der Antikörper weiterhin so ausgewählt wird, daß er
zur Aktivierung Fc-Rezeptor positiver Zellen befähigt ist,
wodurch die Expression von Cytokinen und/oder co-stimmu
latorischen Antigenen initiiert oder erhöht wird.
6. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
daß die Antikörper so ausgewählt werden, daß sie zur Bin
dung Fc-Rezeptor positiven Zellen befähigt sind, die einen
Fcγ-Rezeptor I, II oder III aufweisen.
7. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Antikörper zur Bindung an Monozyten, Makrophagen,
dendritische Zellen, "Natural Killer"-Zellen (NK-Zellen)
und/oder aktivierte neutrophile Zellen als Fcγ-Rezeptor I
+ III positive Zellen befähigt sind.
8. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Antikörper zur Induktion von zielzellreaktiven,
insbesondere tumorreaktiven Komplement-bindenden Antikör
pern und damit zur Induktion einer humoralen Immunantwort
befähigt sind.
9. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Antikörper so ausgewählt werden, daß sie über CD2,
CD3, CD4, CD5, CD6, CD8, CD28 und/oder CD44 an die T-Zel
len binden.
10. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Antikörper so ausgewählt werden, daß nach ihrer
Bindung an die Fc-Rezeptor positiven Zellen die Expression
von CD40, CD80, CD86, ICAM-1 und/oder LFA-3 als kostimula
torische Antigene und/oder die Sekretion von Zytokinen
durch die Fc-Rezeptor positive Zelle initiiert oder erhöht
wird.
11. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Antikörper so ausgewählt werden, daß die Sekretion
von IL-1, IL-2, IL-4, IL-6, IL-8, IL-12, INF-γ als Zytoki
ne und/oder von TNF-α erhöht wird.
12. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der bispezifische Antikörper so ausgewählt wird, daß
er ein anti-CD3 × anti-operationell induzierbares
Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD4 × anti
operationell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen-
und/oder anti-CD5 × anti-operationell induzierbares Ziel
zell-assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD6 × anti-opera
tionell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/
oder anti-CD8 × anti-operationell induzierbares Zielzell
assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD2 × anti-operatio
nell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder
anti-CD28 × anti-operationell induzierbares Zielzell-asso
ziiertes Antigen- und/oder anti-CD44 × anti-operationell
induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen-Antikörper
ist.
13. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der bispezifische Antikörper aus einer oder mehreren
der nachfolgenden Isotypkombinationen ausgewählt wird:
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2a,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2b,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG3,
Ratte-IgG2b/Human-IgG1,
Ratte-IgG2b/Human-IgG2,
Ratte-IgG2b/Human-IgG3[orientaler Allotyp G3m(st) = Bin dung an Protein A],
Ratte-IgG2b/Human-IgG4,
Ratte-IgG2b/Ratte-IgG2c,
Maus-IgG2a/Human-IgG3[kaukasische Allotypen G3m(b+g) = keine Bindung an Protein A, im folgenden mit * gekenn zeichnet]
Maus-IgG2a/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgG1-[Hinge]-Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human- IgG4-[Hinge]-Human-IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human- IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Hu man-IgG3*[CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG3-[Hinge-CH2-CH3, orientaler Allotyp]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge-CH2-CH3]
Human-IgG1/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG2/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Maus-IgG2b/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgG4-[Hinge]-Human-IgG4-[CH2]-Human-IgG3*-[CH3]
HumanIgG1/Ratte[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*[CH3]
HumanIgG1/Maus[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1[Hinge]-Human-IgG4- [CH2]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG4/Human[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*-[CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2a,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG2b,
Ratte-IgG2b/Maus-IgG3,
Ratte-IgG2b/Human-IgG1,
Ratte-IgG2b/Human-IgG2,
Ratte-IgG2b/Human-IgG3[orientaler Allotyp G3m(st) = Bin dung an Protein A],
Ratte-IgG2b/Human-IgG4,
Ratte-IgG2b/Ratte-IgG2c,
Maus-IgG2a/Human-IgG3[kaukasische Allotypen G3m(b+g) = keine Bindung an Protein A, im folgenden mit * gekenn zeichnet]
Maus-IgG2a/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2a/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgG1-[Hinge]-Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human- IgG4-[Hinge]-Human-IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human- IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Hu man-IgG3*[CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge-CH2-CH3]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG3-[Hinge-CH2-CH3, orientaler Allotyp]
Ratte-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge-CH2-CH3]
Human-IgG1/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]- Human-IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG2[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG1/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG1/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG2/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG2-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Human-IgG4/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4[N-terminale Region von CH2]-Human-IgG3*[C-terminale Region von CH2: < AS-Position 251]-Human-IgG3*[CH3]
Maus-IgG2b/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Human-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-IgG2b/Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1-[Hinge]-Human- IgG3*-[CH2-CH3]
Maus-[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4/Ratte-[VH-CH1,VL-CL]- Human-IgG4-[Hinge]-Human-IgG4-[CH2]-Human-IgG3*-[CH3]
HumanIgG1/Ratte[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*[CH3]
HumanIgG1/Maus[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG1[Hinge]-Human-IgG4- [CH2]-Human-IgG3*[CH3]
Human-IgG4/Human[VH-CH1,VL-CL]-Human-IgG4-[Hinge]-Human- IgG4-[CH2]-HumanIgG3*-[CH3]
14. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der bispezifische Antikörper aus einem heterologen
Ratte/Maus bispezifischen Antikörper ausgewählt wird.
15. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der trispezifische Antikörper einen T-Zell-Bindungs
arm, einen Zielzell-Bindungsarm und eine dritte Spezifität
zur Bindung an Fc-Rezeptor positive Zellen besitzt.
16. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß der trispezifische Antikörper so ausgewählt wird, daß
er ein anti-CD3 × anti-operationell induzierbares Ziel
zell-assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD4 × anti-opera
tionell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/-
oder anti-CD5 × anti-operationell induzierbares Zielzell
assoziiertes Antigen- und/oder anti-CD6 × anti-operatio
nell induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder
anti-CD8 × anti-operationell induzierbares Zielzell-asso
ziiertes Antigen- und/oder anti-CD2 × anti-operationell
induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen- und/oder an
ti-CD28 × anti-operationell induzierbares Zielzell-assozi
iertes Antigen- und/oder anti-CD44 × anti-operationell
induzierbares Zielzell-assoziiertes Antigen-Antikörper,
bevorzugt mit einem zusätzlichen Anti-Fc-Rezeptor-Bin
dungsarm, ist.
17. Antikörper nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
daß die Zielzelle eine Tumorzelle oder eine durch Mikroor
ganismen infizierte Zelle ist.
18. Pharmazeutische Zusammensetzung,
dadurch gekennzeichnet,
daß sie einen oder mehreren der Antikörper nach einem oder
mehreren der vorhergehenden Ansprüche, wahlweise zusammen
mit einem oder mehreren üblichen pharmazeutischen Träger-
und/oder Hilfsstoffen, in einer therapeutisch wirksamen
Menge enthält.
19. Verwendung eines Antikörpers nach einem oder mehreren der
vorhergehenden Ansprüche zur Induktion einer Immunantwort
und/oder zur Zerstörung der Zielzelle.
20. Verwendung eines Antikörpers nach einem oder mehreren der
vorhergehenden Ansprüche zur Prophylaxe und Therapie von
Tumorerkrankungen und von Erkrankungen, die durch Infek
tion mit Mikroorganismen induziert wurden.
21. Verwendung eines Antikörpers nach einem oder mehreren der
vorhergehenden Ansprüche zur Induktion einer Zielzellimmu
nität, bevorzugt einer Langzeit-Zielzellimmunität.
22. Verwendung eines Antikörpers nach einem oder mehreren der
vorhergehenden Ansprüche zur Verminderung der Anzahl kon
taminierender Zielzellen in Stammzelltransplantaten ex
vivo, wobei der Antikörper für einen ausreichend langen
Zeitraum mit aus Transplantaten gewonnenen Stammzellen,
die kontaminierende Zielzellen enthalten können, in Kon
takt gebracht wird, um die Anzahl an kontaminierenden
Zielzellen im Stammzelltransplantat zumindest zu verrin
gern.
23. Verwendung nach einem oder mehreren der vorhergehenden
Ansprüche, wobei als Zielzelle eine Tumorzelle oder eine
durch Mikroorganismen infizierte Zelle eingesetzt wird.
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- 1998-12-21 DE DE19859110A patent/DE19859110A1/de not_active Withdrawn
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- 1999-09-22 DE DE59907958T patent/DE59907958D1/de not_active Expired - Lifetime
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