DE10045961A1 - Neue antiinflammatorische Triterpene aus Ganoderma colossum - Google Patents

Neue antiinflammatorische Triterpene aus Ganoderma colossum

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DE10045961A1 DE2000145961 DE10045961A DE10045961A1 DE 10045961 A1 DE10045961 A1 DE 10045961A1 DE 2000145961 DE2000145961 DE 2000145961 DE 10045961 A DE10045961 A DE 10045961A DE 10045961 A1 DE10045961 A1 DE 10045961A1
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Peter Kleinwaechter
Albert Haertl
Brigitte Schlegel
Udo Gaefe
Trinh Tam Kiet
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    • C07ORGANIC CHEMISTRY
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    • C07J17/00Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen, having an oxygen-containing hetero ring not condensed with the cyclopenta(a)hydrophenanthrene skeleton
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    • C07JSTEROIDS
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Abstract

Die Erfindung betrifft die Herstellung von neuen antiinflammatorischen triterpenoiden Substanzen der Formel I aus dem Fruchtkörper und Myzel des Basidiomyceten Ganoderma colossum und deren Verwendung als antiinflammatorische Arzneimittel, Grundheitspflegemittel oder Kosmetika. Die neuen antiinflammatorischen Triterpene zeigen eine starke antiinflammatorische Wirksamkeit. Die neuen Substanzen können als solche oder in Form von antiinflammatorischen Zubereitungen, enthaltend die Verbindungen der Formel I, als Gemische oder Einzelkomponenten angewendet werden. DOLLAR F1 worin R1 = DOLLAR F2 oder DOLLAR F3 R2 = OH oder O-COCH3; DOLLAR A R3 und R4 unabhängig voneinander = H oder OH; DOLLAR A X = >CH-beta-OH oder -O-CO-; Y = -CH2-CH2- oder -CH=CH- und DOLLAR A Z = >C(-)-CH2O-COCH3 oder >C=CH-.

Description

Die Erfindung betrifft neue Triterpene, die von dem in Indochina häufig vorkommen­ den Basidiomyceten Ganoderma colossum gebildet werden, sowie die Isolierung der neuen Triterpene aus dem Fruchtkörper des Basidiomyceten und deren Verwendung als pharmakologische Wirkstoffe, insbesondere als antiinflammatorische Arzneimit­ tel.
Triterpene sind eine weit verbreitete Klasse von Naturstoffen, deren Verteter sich durch vielseitige und interessante Wirkungen auszeichnen (Turner, W. B., Aldrich, D. C., Fungal Metabolites II, 1983, Academic Press, New York, London; Chapman and Hall Database of Natural Products on CD ROM, Edition 1999, Chapman and Hall Publishers, London). Eine Vielzahl von Triterpenen vom Lanostan-Typ wurde auch aus bestimmten Basidiomyceten der Gattung Ganoderma isoliert (Moncalvo, J. F., Ryvarden, F., Nomenclature of Ganodermataceae, Synopsis Fungorum 11, 1998, 1-109). Ungewöhnliche Sterolstrukturen, deren Aufbau dem der in dieser Er­ findung beschriebenen Triterpene ähnelt, wurden auch aus chinesischen Pflanzen der Gattung Katsura, wie z. B. Katsura heteroclita und Katsura lancilimba isoliert, die in der Volksmedizin als Heilmittel gegen Rheumatitis, Magenverstimmung und Ga­ stroenteritis verwendet werden (Yiping, C. et al., Phytochemistry 1990, 29, 3358-3359; Chen, D. F. et al., J. Nat. Prod. 1999, 62, 94-97). Schließlich wurde auch über die Anti-HIV-Wirkung von Katsura-Triterpenen berichtet (Chen, D. F. et al., J. Nat. Prod. 1999, 62, 94-97).
Chronische inflammatorische Prozesse bilden eine wachsende Krankheitsursache für die Bevölkerung der Industrieländer infolge des wachsenden Anteils älterer, im­ mungeschwächter oder allergischer Menschen an der Gesamtbevölkerung sowie der Zunahme des allergenen Potentials der Umwelt infolge der Anwendung von immer neuen Produkten mit unbekannten allergenen Eigenschaften. Die als antiinflammato­ rische Heilmittel bisher eingesetzten Pharmaka, wie z. B. Glucocortikoide, Antihista­ minika und steroidale und nichtsteroidale Antiinflammatorika, weisen bei ihrer thera­ peutischen Anwendung eine Reihe von Nachteilen auf, gekennzeichnet z. B. durch ungenügende Wirksamkeit und dosis-limitierende Nebenwirkungen, die die Entwick­ lung neuer Antiinflammatorika mit verbesserten Eigenschaften dringend erforderlich machen.
Aufgabe der Erfindung ist es, neue antiinflammatorische Wirkstoffe mit Triterpen­ struktur und verbesserten Eigenschaften zur Verfügung zu stellen.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, dass Fruchtkörper des in Indo­ china vorkommenden und züchtbaren Basidiomycetein Ganoderma colossum mit or­ ganischen Lösemitteln extrahiert werden, die im Extrakt enthaltenen Triterpene ge­ wonnen, gegebenenfalls in chemische Derivate überführt werden und als Gemisch oder Einzelkomponenten als solche oder in Form von Arzneimittelzubereitungen, Gesundheitspflegemitteln und kosmetischen Präparaten in die Anwendung gebracht werden.
Die Erfindung betrifft dementsprechend die Verbindungen der Formel I
R2 = OH oder O-COCH3;
R3 und R4 unabhängig voneinander = H oder OH;
X = <CH-β-OH oder -O-CO-; Y = -CH2-CH2- oder -CH=CH-; und
Z = <C(-)-CH2O-COCH3 oder <C=CH-.
Die Erfindung betrifft insbesondere die Verbindungen der Formel
Die erfindungsgemäßen Verbindungen besitzen antiinflammatorische Eigenschaften und können insbesondere als Heilmittel für inflammatorische Erkrankungen und In­ haltsstoff gesundheitsfördernder und kosmetischer Päparate eingesetzt werden. Die Erfindung betrifft ferner
  • 1. Ein Verfahren zur Herstellung der Verbindungen der Formel I, gekennzeichnet dadurch, dass Fruchtkörper des Basidiomyceten Ganoderma colossum mit or­ ganischen Lösemitteln, z. B. Essigester, Methanol, Chloroform, Methylenchlorid oder Mischungen davon, extrahiert werden, die im Extrakt enthaltenen Triterpe­ ne gewonnen und gegebenenfalls in chemische Derivate überführt werden.
  • 2. Die Verwendung der Verbindungen der Formel I und deren chemische Derivate als antiinflammatorische Arzneimittel zur Therapie von Entzündungen und Au­ toimmunerkrankungen.
  • 3. Zubereitungen enthaltend eine Verbindung der Formel I und deren Verwendung als Arzneimittel, Gesundheitspflegemittel und Kosmetika.
Die Erfindung wird im folgenden detailliert beschrieben, insbesondere in ihren bevor­ zugten Ausführungsformen. Ferner wird sie durch den Inhalt der Patentansprüche bestimmt.
Definitionen:
  • - Die erfindungsgemäßen Verbindungen werden als Colossolactone A-G (1-7) bezeichnet
  • - Der aus dem Basidiomycetenstamm Ganoderma colossum erhaltene Extrakt mit organischen Lösemittel enthält ein Gemisch der Komponenten 1-7.
Die erfindungsgemäßen antiinflammatorischen Triterpene werden durch Fruchtkör­ per, aber auch durch Myzelien des Basidiomyceten Ganoderma colossum gebildet und in der Biomasse gespeichert. Ganoderma colossum (synonym: Polyporus co­ lossus, Dendrophagus colossus) ist in Indochina weit verbreitet. Er gehört zur Fami­ lie der Ganodermataceae Donk. (Moncalvo, J. F. et al., Nomenclature of Ganoder­ matacae, Synopsis Fungorum 11, 1998, 1-109). Er wächst auf verschiedenen Pflan­ zen wie z. B. Delonix negia, und kann als Fruchtkörper geerntet werden. Diese sind durch folgende, dem Mykologen bekannte morphologische Charakteristika ausge­ zeichnet: annuale Basidiocarpe bis zu 35 cm Durchmesser, 5-8 cm dick, in frischem Zustand Context-Struktur weiß, später chamoid, Basidiosporen ovoid, gelb, bitunicat, space well-Struktur mit klarer Retikulierung, Basidiosporengröße 9-17 × 14-20 µm. Von den Sporen der Fruchtkörper können Reinkulturen angelegt wurden, von denen in üblicher Weise Submerskulturen erhalten werden können.
Für die Isolierung der Triterpene 1-7 (Colossolactone A-G) werden Fruchtkörper oder Myzelien mit organischen Lösemitteln extrahiert. Aus dem Extrakt werden die Kom­ ponenten 1-7 durch mehrere aufeinanderfolgende chromatographische Schritte (z. B. Säulenchromatographie an organophilen Dextrangelen, Chromatographie an Kiesel­ gel 60, präparative Dünnschichtchromatographie) in reiner Form isoliert. Dabei wer­ den aus 200 g Trockengewicht eines Fruchtkörpers die Komponenten 1-7 in Mengen von 15-35 mg isoliert.
Die chemischen Strukturen der Colossolactone 1-7 werden durch die Ergebnisse der spektroskopischen, massenspektrometrischen und NMR-spektroskopischen Mes­ sungen bewiesen, die zusammen mit anderen physikochemischen Eigenschaften im experimentellen Teil aufgeführt sind.
Colossolactone (1-7) inhibieren in gleicher Stärke wie der bekannte Inhibitor Indo­ methacin die 3α-Hydroxysteroid-Dehydrogenase als Indikator-Enzymassay für anti­ inflammatorisch wirksame Substanzen.
Die Erfindung wird durch die nachfolgenden Ausführungsbeispiele näher erläutert.
Experimenteller Teil 1. Extraktion von Colossolactonen 1-7 aus dem Fruchtkörper von Ganoderma co­ lossum und chromatographische Isolierung der reinen Komponenten 1-7
Ca. 200 g getrockneter Fruchtkörper von Ganoderma colossum werden mit 1 l Chlo­ roform/Methanol (1 : 1) und nachfolgend mit 1 l Ethylacetat extrahiert. Die Extrakte werden im Vakuum eingeengt, und die Rückstände werden vereinigt. Der auf diese Weise erhaltene Rückstand auf eine Kieselgelsäule (10 × 500 cm, Merck, 0.063-0.1 mm, Chloroform) aufgegeben und zunächst mit 5 Säulenvolumina Chloroform, spä­ ter mit Chloroform/Methanol (95 : 5) entwickelt. Es werden Fraktionen von 20 ml ge­ sammelt. Die darin enthaltenen Colossolactone werden durch ihre charakteristische blauviolette Anfärbung beim Besprühen der von den Fraktionen angefertigten Dünn­ schichtchromatogramme (Merck Kieselgel Aluminiumfolie, Chloroform/Methanol, 90 : 10) erkannt. Fraktionen mit gleichem Rf-Wert werden zusammengefasst und durch präparative Dünnschichtchromatographie an Merck Kieselgel Alufolie (Chlo­ roform/Methanol, 90 : 10) bis zur völligen chromatographischen Einheitlichkeit weiter aufgereinigt. Dabei werden die erfindungsgemäßen Substanzen 1-7 in Mengen von 15-35 mg erhalten. Die Verbindungen 1-7 sind durch folgende physikochemischen Eigenschaften charakterisiert:
Colossolacton A (1): farblose Masse (CHCl3); Fp. 135-137°C; [α] 20|D +50.2° (c 0.25, MeOH); IR (KBr) νmax 3425, 2925, 1705, 1451, 1371, 1250, 1137, 1022 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.55, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 5.49 (1H, t, J = 7.6 Hz, H-24), 4.27 (1H, d, J = 11.7 Hz, HA-26), 3.99 (1H, d, J = 11.4 Hz, HA-19), 3.90 (1H, d, J = 11.7 Hz, HB-26), 3.66 (1H, m, H-22), 3.55 (1H, d, J = 11.4 Hz, HB-19), 3.26 (1H, dd, J = 11.7 Hz, 4.4 Hz, H-3), 2.47 (1H, m, HA-23), 2.13 (2H, m, H-7), 2.12 (2H, m, H-11), 2.00 (3H, s, H-2'), 1.99 (1H, m, HA-6, 1H, m, HA-16), 1.96 (1H, m, HB-23), 1.87 (1H, m, H-17), 1.85 (1H, m, HA-1, 3H, s, br, H-27), 1.84 (1H, m, HA-4), 1.72 (1H, m, HB-12), 1.70 (1H, m, HB-6), 1.69 (1H, m, HA-2), 1.66 (1H, m, HA-15), 1.52 (1H, m, HB-2), 1.45 (1H, m, H-20), 1.39 (1H, m, HB-16), 1.31 (1H, m, HB-15), 1.27 (1H, m, HB-1), 1.15 (1H, dd, J = 13.6 Hz, 2.8 Hz, H-5), 1.03 (3H, s, H-28), 0.97 (3H, s, H-30), 0.93 (3H, s, H-29), 0.92 (3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 0.77 (3H, s, H-18); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 170.54 (s, C-1'), 137.86 (s, C-8, C-25), 130.37 (s, C-9), 125.38 (s, C-24), 78.86 (d, C-3), 72.73 (d, C-22), 65.83 (t, C-19), 61.39 (t, C-26), 50.42 (s, C-14), 50.11 (d, C-5), 47.08 (d, C-17), 44.38 (s, C-13), 42.18 (s, C-10), 41.62 (d, C-20), 39.04 (s, C-4), 33.98 (t, C-23), 32.59 (t, C-1), 30.96 (t, C-12), 30.71 (f, C-15), 28.36 (q, C-28), 27.96 (t, C-2), 27.46 (t, C-16), 26.20 (t, C-7), 24.65 (q, C-30), 22.35 (q, C-27), 21.97 (t, C-11), 21.09 (q, C-2'), 17.76 (t, C-6), 16.56 (q, C-18), 15.51 (q, C-29), 12.02 (q, C-21); EIMS m/z 516.2 [M]+ (5), 425.2 (80), 329.2 (100); HREIMS m/z 425.3406 ([M-H2O-C19 Seitenkette]+ (ber. für C29H45O2, 425.3422), 329.2922 (ber. für C23H37O, 329.2846).
Colossolacton B (2): farblose Masse (CHCl3); Fp. 116-118°C; [α] 20|D +54.4° (c 0.32, MeOH); IR (KBr) νmax 3455, 2945, 1701, 1450, 1373, 1342, 1235, 1136, 1089, 1030 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.65, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 6.60 (1H, m, H-24), 4.48 (1H, dd, J = 13.2 Hz, 3.2 Hz, H-22), 4.34 (1H, d, J = 11.3 Hz, HA-19), 4.16 (1H, d, J = 11.3 Hz, HB-19), 3.28 (1H, dd, J = 11.7 Hz, 4.4 Hz, H-3), 2.56 (1H, m, HA-23), 2.14 (2H, m, H-11), 2.13 (2H, m, H-7), 2.12 (1H, m, H-17), 2.04 (1H, m, HA-16), 2.01 (1H, m, HA-1, 3H, s, H-2'), 1.98 (1H, m, HB-23), 1.91 (3H, s, br, H-27), 1.82 (1H, m, HA-12), 1.71 (1H, m, HA-2), 1.70 (2H, m, H-6), 1.66 (1H, m, HB-12), 1.62 (1H, m, HA-15), 1.59 (1H, m, HB-2), 1.53 (1H, m, H-20), 1.33 (1H, m, HB-16), 1.28 (1H, m, HB-1), 1.25 (1H, m, HB-15), 1.21 (1H, dd, J = 12.0 Hz, 4.4 Hz, H-5), 1.03 (3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 1.02 (3H, s, H-28), 0.93 (3H, s, H-30), 0.85 (3H, s, H-29), 0.71 (3H, s, H-18); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 171.07 (s, C-1'), 166.59 (s, C-26), 139.62 (d, C-24), 137.14 (s, C-8), 131.68 (s, C-9), 128.22 (s, C-25), 80.24 (d, C-22), 78.66 (d, C-3), 67.78 (t, C-19), 50.24 (d, C-5, s, C-14), 45.77 (d, C-17), 44.44 (s, C-13), 40.42 (d, C-20), 39.63 (s, C-10), 38.90 (s, C-4), 31.23 (t, C-1), 31.01 (t, C-12), 30.66 (t, C-15), 28.12 (q, C-28), 27.87 (t, C-23), 27.72 (t, C-2), 27.62 (t, C-16), 25.66 (t, C-7), 24.22 (q, C-30), 23.00 (t, C-11), 21.13 (q, C-2'), 17.62 (t, C-6), 17.11 (q, C-27), 15.64 (q, C-18), 15.53 (q, C-29), 13.30 (q, C-21); ESIMS+ m/z 535 [M + Na]+ (100); ESIMS- m/z 511 [M - H]- (39); HREIMS m/z 512.3478 (ber. für C32H48O5, 512.3504).
Colossolacton C (3): farblose Masse (CHCl3); Fp. 128-130°C; [α] 20|D +64.5° (c 0.64, CHCl3); IR (KBr) νmax 3445, 2945, 1709, 1452, 1372, 1341, 1249, 1195, 1139, 1077, 1044 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.70, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 6.60 (1H, m, H-24), 4.48 (1H, dd, J = 13.2 Hz, 3.5 Hz, H-22), 4.42 (1H, d, J = 12.0 Hz, HA-19), 4.24 (1H, d, J = 12.0 Hz, HB-19), 2.59 (1H, m, HA-1), 2.56 (1H, m, HA-23), 2.28 (1H, m, HA-2), 2.21 (1H, m, HB-2), 2.12 (1H, m, H-17), 2.05 (1H, m, HA-7), 2.04 (1H, m, HA-16), 2.00 (3H, s, H-2'), 1.98 (1H, m, HB-23), 1.96 (2H, m, H-11), 1.95 (1H, m, HB-7), 1.90 (3H, s, br, H-27), 1.87 (1H, m, HA-12), 1.70 (1H, m, HA-6), 1.69 (1H, m, HB-12), 1.66 (1H, m, HB-1), 1.64 (1H, m, HA-15), 1.54 (1H, m, H-20), 1.50 (1H, m, H-5, 1H, m, HB-6), 1.35 (1H, m, HB-16), 1.32 (3H, s, H-28), 1.28 (1H, m, HB-15), 1.20 (3H, s, H-29), 1.01 (3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 0.98 (3H, s, H-30), 0.74 (3H, s, H-18); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 178.98 (s, C-3), 170.66 (s, C-1'), 166.67 (s, C-26), 143.27 (s, C-8), 139.72 (d, C-24), 128.17 (s, C-25), 126.14 (s, C-9), 80.29 (d, C-22), 75.25 (s, C-4), 67.26 (t, C-19), 51.50 (s, C-14), 47.89 (s, C-5), 45.85 (d, C-17), 45.41 (s, C-10), 44.26 (s, C-13), 40.34 (s, C-20), 33.69 (q, C-28), 31.26 (t, C-15), 30.98 (t, C-12), 28.72 (t, C-1), 28.44 (t, C-2), 27.79 (t, C-23), 27.37 (t, C-16), 26.72 (t, C-7), 26.08 (q, C-29), 24.94 (q, C-30), 23.89 (t, C-6), 21.07 (q, C-2'), 20.84 (t, C-11), 17.08 (q, C-27), 15.91 (q, C-18), 13.39 (q, 0-21); ESIMS+ m/z 527 [M + H]+ (10); HREIMS m/z 526.3274 (ber. für C32H46O6, 526.3296).
Colossolacton D (4): farblose Masse (CHCl3); Fp. 122-125°C; [α] 20|D +72.5° (c 0.20, MeOH); IR (KBr) νmax 3435, 2925, 1707, 1682, 1597, 11569, 1446, 1379, 1341, 1286, 1237, 1206, 1181, 1131, 1047 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.85, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 6.66 (1H, d, J = 12.2 Hz, H-1), 6.62 (1H, m, H-24), 6.23 (1H, s, H-19), 5.82 (1H, d, J = 12.2 Hz, H-2), 4.49 (1H, dd, J = 13.2 Hz, 2.8 Hz, H-22), 4.05 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-15), 2.64 (1H, ddd, J = 15.1 Hz, 9.1 Hz, 7.9 Hz, HA-16), 2.59 (1H, m, HA-23), 2.56 (1H, m, H-5), 2.42 (1H, m, HA-6), 2.34 (1H, m, HA-7), 2.30 (1H, m, HB-6), 2.26 (1H, m, HA-11), 2.14 (1H, m, HB-7, 1H, m, H-17), 2.05 (1H, m, HB-11), 2.02 (1H, m, HB-23), 1.92 (3H, s, br, H-27), 1.90 (1H, m, HA-12), 1.76 (1H, m, HB-12), 1.73 (1H, m, H-20), 1.55 (3H, s, H-29), 1.46 (1H, m, HB-16), 1.42 (3H, s, H-28), 1.09 (3H, s, H-18, 3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 1.08 (3H, s, H-30); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 167.10 (s, C-3), 166.42 (s, C-26), 147.56 (s, C-8), 143.69 (d, C-1), 142.98 (d, C-19), 139.60 (d, C-24), 139.10 (s, C-110), 130.52 (s, C-9), 128.25 (s, C-25), 118.00 (d, C-2), 80.53 (s, C-4), 80.00 (d, C-22), 76.21 (d, C-15), 56.43 (s, C-14), 49.00 (d, C-5), 45.59 (d, C-17), 43.68 (s, C-13), 40.56 (t, C-16), 40.00 (d, C-20), 38.65 (t, C-6), 31.41 (t, C-12), 28.97 (q, C-28), 27.81 (t, C-23), 27.63 (t, C-7), 26.87 (t, C-11), 26.61 (q, C-30), 26.33 (q, C-29), 17.25 (q, C-18), 17.11 (q, C-27), 13.41 (q, C-21); ESIMS+ m/z 503 [M + Na]+ (100); ESIMS- m/z 479 [M - H]- (100); HREIMS m/z 480.2871 (ber. für C30H40O5, 480.2878).
Colossolacton E (5): farblose Masse (CHCl3); Fp. 141-146°C; [α] 20|D +80.6° (c 0.40, MeOH); IR (KBr) νmax 3430, 2935, 1708, 1684, 1597, 1569, 1446, 1372, 1341, 1284, 1250, 1207, 1130, 1043 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.80, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 6.66 (1H, d, J = 12.1 Hz, H-1), 6.60 (1H, m, H-24), 6.22 (1H, s, H-19), 5.82 (1H, d, J = 12.1 Hz, H-2), 4.87 (1H, dd, J = 7.4 Hz, 1.3 Hz, H-15), 4.43 (1H, ddd, J = 13.6 Hz, 3.1 Hz, 1.3 Hz, H-22), 2.72 (1H, ddd, J = 15.4 Hz, 8.8 Hz, 7.4 Hz, HA-16), 2.56 (1H, m, HA-23), 2.52 (1H, m, H-5), 2.35 (1H, m, HA-6), 2.26 (1H, m, HA-11), 2.20 (1H, m, HB-6), 2.17 (1H, m, H-17), 2.11 (1H, m, HB-11), 2.02 (1H, m, HA-7, 1H, m, HB-23), 1.96 (1H, m, HB-7), 1.95 (3H, s, H-2'), 1.91 (1H, m, HA-12, 3H, s, br, H-27), 1.79 (1H, m, HB-12), 1.64 (1H, m, H-20), 1.54 (3H, s, H-29), 1.40 (3H, s, H-28), 1.38 (1H, m, HB-16), 1.14 (3H, s, H-30), 1.08 (3H, d, J = 6.6 Hz, H-21), 1.01 (3H, s, H-18); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 170.36 (s, C-1'), 166.98 (s, C-3), 166.26 (s, C-26), 147.03 (s, C-8), 143.63 (d, C-1), 142.76 (d, C-19), 139.35 (d, C-24), 139.26 (s, C-10), 129.87 (s, C-9), 128.36 (s, C-25), 118.13 (d, C-2), 80.52 (s, C-4), 79.77 (d, C-22), 78.01 (d, C-15), 54.89 (s, C-14), 49.02 (d, C-5), 45.30 (d, C-17), 44.29 (s, C-13), 39.94 (d, C-20), 38.63 (t, C-16), 38.39 (t, C-6), 31.11 (t, C-12), 28.83 (q, C-28), 27.76 (t, C-23), 27.22 (t, C-7), 26.79 (t, C-11), 26.35 (q, C-29, C-30), 21.42 (q, C-2'), 17.06 (q, C-27), 16.74 (q, C-18), 13.31 (q, 0-21); ESIMS+ m/z 545 [M + Na]+ (100); ESIMS- m/z 521 [M - H]- (12); HREIMS m/z 522.2976 (ber. für C32H42O6, 522.2983).
Colossolacton F (6): farblose Masse (CHCl3); Fp. 134-136°C; [α] 20|D +26.5° (c 0.20, MeOH); IR (KBr) νmax 3440, 2930, 1717, 1705, 1686, 1572, 1447, 1379, 1342, 1283, 1245, 1209, 1181, 1130, 1084, 1043, 1024 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.92, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDC13, 500 MHz) δ 6.72 (1H, d, J = 12.1 Hz, H-1), 6.70 (1H, s, H-19), 6.61 (1H, m, H-24), 5.85 (1H, d, J = 12.1 Hz, H-2), 4.88 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-15), 4.42 (1H, dd, J = 13.2 Hz, 3.2 Hz, H-22), 4.24 (1H, d, J = 6.9 Hz, H-11), 2.76 (1H, ddd, J = 15.4 Hz, 8.8 Hz, 7.6 Hz, HA-16), 2.58 (1H, m, H-5), 2.57 (1H, m, HA-23), 2.35 (1H, m, HA-6), 2.33 (1H, dd, J = 15.1 Hz, 7.2 Hz, HA-12), 2.19 (1H, m, H-17), 2.17 (1H, m, HB-6), 2.06 (2H, m, H-7), 2.03 (1H, m, HB-12), 2.00 (1H, m, HB-23), 1.97 (3H, s, H-2'), 1.91 (3H, s, br, H-27), 1.68 (1H, m, H-20), 1.53 (3H, s, H-29), 1.43 (1H, m, HB-16), 1.39 (3H, s, H-28), 1.19 (3H, s, H-18), 1.11 (3H, d, J = 6.6 Hz; H-21), 1.10 (3H, s, H-30); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 170.26 (s, C-1'), 166.79 (s, C-3), 166.24 (s, C-26), 149.29 (s, C-8), 144.24 (d, C-1), 141.03 (d, C-19), 140.11 (s, C-10), 139.38 (d, C-24), 131.79 (s, C-9), 128.36 (s, C-25), 118.50 (d, C-2), 80.64 (s, C-4), 79.62 (d, C-22), 77.57 (d, C-15), 67.68 (d, C-11), 55.58 (s, C-14), 49.18 (d, C-5), 45.13 (d, C-17), 43.17 (s, C-13), 42.46 (t, C-12), 39.86 (d, C-20), 38.50 (t, C-16), 37.28 (t, C-6), 28.13 (q, C-28), 27.72 (t, C-23), 27.21 (t, C-7), 26.71 (q, C-29), 25.40 (q, C-30), 21.38 (q, C-2'), 18.87 (q, C-18), 17.07 (q, C-27), 13.24 (q, C-21); ESIMS+ m/z 561 [M + Na]+ (100); HREIMS m/z 538.2891 (ber. für C32H42O7, 538.2932).
Colossolacton G (7): farblose Masse (CHCl3); Fp. 143-145°C; [α] 20|D +23.5° (c 0.10, MeOH); IR (KBr) νmax 3430, 2935, 1696, 1685, 1576, 1435, 1378, 1250, 1206, 1181, 1134, 1044, 1023 cm-1; Rf (DC Si gel) 0.85, Eluent CHCl3/MeOH (95 : 5); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ 6.93 (1H, d, J = 9.8 Hz, H-1), 6.60 (1H, m, H-24), 6.24 (1H, s, H-19), 5.89 (1H, d, J = 9.8 Hz, H-2), 4.85 (1H, d, J = 7.2 Hz, H-15), 4.43 (1H, dd, J = 13.2 Hz, 2.5 Hz, H-22), 2.74 (1H, ddd, J = 15.4 Hz, 8.5 Hz, 7.6 Hz, HA-16), 2.55 (1H, m, HA-23), 2.44 (1H, m, HA-6), 2.29 (1H, m, HB-6), 2.2 7 (2H, m, H-11), 2.17 (1H, m, H-17), 2.10 (2H, m, H-7), 2.03 (3H, s, H-2'), 2.00 (1H, m, HB-23), 1.94 (1H, m, HA- 12), 1.92 (3H, s, br, H-27), 1.80 (1H, m, HB-12), 1.66 (1H, m, H-20), 1.41 (1H, m, HB-16), 1.24 (3H, s, H-29), 1.18 (3H, s, H-28), 1.08 (3H, d, J = 6.0 Hz, H-21), 1.07 (3H, s, H-18), 0.99 (3H, s, H-30); 13C NMR (CDCl3, 125 MHz) δ 170.06 (s, C-1'), 166.20 (s, C-26), 163.91 (s, C-3), 149.46 (s, C-8), 147.89 (d, C-1), 139.42 (d, C-19), 139.31 (d, C-24), 132.85 (s, C-10), 128.38 (s, C-25), 127.62 (s, C-9), 116.71 (d, C-2), 92.64 (s, C-5), 79.70 (d, C-22), 78.39 (d, C-15), 77.52 (s, C-4), 55.14 (s, C-14), 45.73 (d, C-17), 44.27 (s, C-13), 44.09 (t, C-6), 39.80 (d, C-20), 38.37 (t, C-16), 31.09 (t, C-12), 28.01 (t, C-11), 27.70 (t, C-23), 26.79 (t, C-7), 24.92 (q, C-28), 24.81 (q, C-29), 24.41 (q, C-30), 21.31 (q, C-2'), 17.07 (q, C-27), 16.81 (q, 0-18), 13.29 (q, C-21); ESIMS+ m/z 561 [M + Na]+ (100); ESIMS- m/z 537 [M - H]- (48); HRESIMS m/z 561.2812 (ber. für C32H42O7Na, 561.2830).
2. Nachweis der antiinflammatorischen Eigenschaften von 1-7 im 3α-Hydroxysteroid- Dehydrogenase-Modell
Die Colossomycine 1-7 werden in Ethanol gelöst, und die Lösungen werden in ad­ äquater Weise verdünnt zur Anwendung gebracht. Der 3a-Hydroxysteroid- Dehydrogenase-Test wird entsprechend Penning, T. M. (J. of Pharmaceut. Sci. 1985, 74, 651-654; Inhibition of 5β-dihydrocortison reduction in rat liver cytosol: a rapid spectrophotometric assay for nonsteroidal antiinflammatory drug potency) durchge­ führt. Als Vergleichssubstanz für die Anzeige einer starken Inhibitionswirkung dient Indomethacin. Dabei zeigen die Substanzen 1-7 eine starke Inhibitionswirkung auf das Enzym, in gleicher Weise wie das zum Vergleich eingesetzte Indomethacin.

Claims (5)

1. Verbindungen der Formel I
R2 = OH oder O-COCH3;
R3 und R4 unabhängig voneinander = H oder OH;
X = <CH-β-OH oder -O-CO-; Y = -CH2-CH2- oder -CH=CH-; und
Z = <C(-)-CH2O-COCH3 oder <C=CH-.
2. Verbindungen der Formel I gemäß Anspruch 1, ausgewählt aus der Gruppe
3. Verfahren zur Herstellung der Verbindungen der Formel I gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Fruchtkörper oder Myzel des Basidiomyceten Ganoderma colossum extrahiert und die Verbindungen der Formel I isoliert werden.
4. Verwendung von Substanzen der Formel I gemäß Anspruch 1 als antiinflammatorische Arzneimittel zur Bekämpfung von Entzündungen und Autoimmunerkrankungen.
5. Pharmazeutische Zubereitung enthaltend eine Substanz der Formel I gemäß Anspruch 1.
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