DE10037707A1 - Polyelektrolytkapselherstellung durch Oberflächenpräzipitation - Google Patents
Polyelektrolytkapselherstellung durch OberflächenpräzipitationInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Nano- bzw. Mikrokapseln, die eine Polyelektrolythülle umfassen, durch Oberflächenpräzipitation aus der Lösung.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Nano- bzw.
Mikrokapseln, die eine Polyelektrolythülle umfassen, durch Oberflächen
präzipitation aus der Lösung.
DE 198 12 083.4, DE 199 07 552.2, EP 98 113 181.6 und WO 99/47252
offenbaren ein Verfahren zur Herstellung von mit einer Polyelektrolythülle
beschichteten Kapseln durch schichtweises Aufbringen von Polyelektrolyten
auf Templatpartikel. Ein Vorteil dieses Verfahrens gegenüber früheren
Verfahren zur Herstellung von Mikrokapseln besteht darin, dass mono
disperse Kapseln mit definiert eingestellter Wandstärke hergestellt werden
können. Aus wirtschaftlichen Gesichtspunkten ist jedoch problematisch,
dass der schichtweise Aufbau einer Kapselhülle Zeit- und arbeitsaufwendig
sein kann.
Buchhammer und Lunkwitz (Ber. Bunsenges. Phys. Chem. 100 (1996),
1039-1044) und Oertel et al. (Coll. Surf. 57 (1991), 375-381) beschreiben
die Oberflächenmodifikation von organischen und anorganischen Partikeln
durch Ablagerung eines Komplexes aus positiv und negativ geladenen
Polyelektrolyten auf der Partikeloberfläche. Ein Nachteil dieses Verfahrens
ist, dass die resultierenden Schichten eine geringe Stabilität aufweisen.
Eine Aufgabe der Erfindung bestand deshalb darin, ein neues Verfahren zur
Herstellung von Kapseln mit hoher Stabilität und Hüllen geringer Wandstärke
bereitzustellen, bei dem die Nachteile des Standes der Technik mindestens
teilweise beseitigt sind.
Diese Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren zum Aufbringen einer Hülle
auf Templatpartikel mittels Oberflächenpräzipitation aus einer Lösung, wobei
dieses Verfahren die Schritte umfasst:
- a) Bereitstellen einer Dispersion von Templatpartikeln geeigneter Größe in einer salzhaltigen Flüssigphase, die zur Bildung der Hülle erforder liche Komponenten in gelöster Form enthält, und
- b) Präzipitieren der Komponenten aus der Flüssigphase auf die Tem platpartikel unter solchen Bedingungen, dass eine Hülle mit einer Dicke von 1 bis 100 nm um die Templatpartikel erzeugt wird.
Überraschenderweise wurde festgestellt, dass bei Beschichtung von
Templatpartikeln durch Oberflächenpräzipitation aus einer salzhaltigen
Lösung Kapseln mit einer definierten und geringen Hüllendicke und mit
selektiv steuerbaren Permeabilitätseigenschaften erhalten werden können.
Dabei können verschiedene Arten von Hüllen, z. B. Polyelektrolythüllen,
Polyelektrolyt/Ion-Hüllen, aber auch Hüllen aus ungeladenen Polymeren
erzeugt werden.
Die in der Flüssigkeit gelösten Salze tragen wesentlich zur Stabilität der
durch Präzipitation gebildeten Hüllen bei. Beispiele für geeignete Salze sind
alle wasserlöslichen niedermolekularen Salze, darunter anorganische Salze,
wie Chloride, Bromide, Nitrate, Sulfate und Carbonate ein- und mehrwertiger
Alkali-, Erdalkalimetalle oder Übergangsmetalle wie Eisen, Silber, Kupfer. Die
Konzentrationen liegen vorzugsweise im Bereich von 0,5 mM bis 1 M oder
höher in den Fällen, in denen die Wirkung des Salzes in der Minderung der
elektrostatischen Wechselwirkungen zwischen Polyelektrolyten einerseits
und den Polyelektrolyten und den Templatoberflächen andererseits besteht.
Werden spezifische Wechselwirkung und/oder Komplexierung mehrwertiger
niedermolekularer Anionen und Kationen mit den Polyelektrolyten erforder
lich um verteilte Polyelektrolytpools in der Hüllflüssigkeit zu erzeugen,
befinden sich die Konzentrationen der Salze vorzugsweise im Bereich von
0,001 bis 10 mM.
Das erfindungsgemäße Verkapselungsverfahren ermöglicht die Verkapselung
von beliebigen kolloidalen Partikeln. Neben festen Partikeln können auch
flüssige Partikel, z. B. emulgierte Öltröpfchen oder flüssig-kristalline Partikel,
oder gasförmige Partikel, z. B. Luft- oder andere Gasbläschen beschichtet
werden. Die Größe von zu verkapselnden Flüssigkeits- oder Gaspartikeln
kann z. B. durch Zugabe von grenzflächenaktiven Stoffen zur Flüssigphase
eingestellt werden.
Als feste Templatpartikel können beliebige kolloidale Feststoffe, ins
besondere anorganische Materialien, z. B. Metalle, Keramiken, Oxide oder
Salzkristalle, organische Materialien wie Polymerlatizes, organische
Präzipitate, verfestigte Öltröpfchen, Gele oder Kristalle, Melaminformalde
hydpartikel, Lipidvesikel, biologische Templatpartikel wie Zellen oder Pollen
eingesetzt werden. Die Größe der Templatpartikel kann - insbesondere bei
Verwendung biologischer Templatmaterialien - bis zu 50 µm erreichen.
Vorzugsweise ist die Größe der Templatpartikel jedoch bis zu 10 µm,
besonders bevorzugt von 5 nm bis 10 µm und am meisten bevorzugt von
5 nm bis 5 µm. Die Form der Templatpartikel ist nicht kritisch. Sowohl
sphärische als auch anisotrope Partikel können beschichtet werden.
In einer bevorzugten Ausführungsform werden Templatpartikel verkapselt,
die einen Wirkstoff enthalten, z. B. selbst einen Wirkstoff darstellen. Dieser
Wirkstoff kann beispielsweise ausgewählt werden aus Katalysatoren,
insbesondere Enzymen, z. B. Enzymkristallen, Nanopartikeln, z. B. magneti
schen Nanopartikeln, biologischen Makromolekülen etc., pharmazeutischen
Wirkstoffen, Sensormolekülen, z. B. radioaktiven oder nicht-radioaktiven
Markierungsmolekülen wie etwa Fluoreszenzmarkierungen, Kristallen,
Polymeren und Gasen. Die Wirkstoffpartikel können der Flüssigphase
zugesetzt werden oder darin durch Präzipitation erzeugt werden. Die
Präzipitation kann vor oder/und während der Kapselbildung erfolgen und zu
Kristallen oder/und amorphen Strukturen führen.
Beispielsweise können die Kapseln zum Einbringen von organischen
Flüssigkeiten wie etwa Alkoholen oder Kohlenwasserstoffen, z. B. Hexanol,
Octanol, Octan oder Decan, oder zum Verkapseln von Gasen für Ultraschall
kontrastmittel verwendet werden. Solche mit einer organischen, nicht mit
Wasser mischbaren Flüssigkeit gefüllten Kapseln können auch für che
mische Reaktionen, z. B. Polymerisationsreaktionen eingesetzt werden. So
kann das Monomer über dessen Verteilungsgleichgewicht gezielt im
Innenraum der Kapseln angereichert werden. Gegebenenfalls kann die
Monomerenlösung bereits vor Beginn der Synthese im Innenraum eingekapselt
werden.
Es können jedoch auch Wirkstoffe verkapselt werden, die aufgrund ihrer
Größe nicht die Polyelektrolythülle durchdringen können. Hierzu wird der
einzuschließende Wirkstoff an das Templatpartikel gekoppelt bzw.
immobilisiert oder vom Templatpartikel eingekapselt oder aufgenommen,
z. B. durch Phagozytose oder Endozytose bei lebenden Zellen oder durch
Verkapselung von Nanopartikeln in lösliche Templatmaterialien. Nach
Desintegration der Templatpartikel wird der Wirkstoff ins Innere der
Polyelektrolythülle freigesetzt. Dabei werden zweckmäßigerweise die
Bedingungen bei der Desintegration des Templatpartikels so gewählt, dass
keine unerwünschte Zersetzung des Wirkstoffs eintritt.
Eine Kopplung des Wirkstoffs an das Templat kann direkt erfolgen, aber
auch durch einen Bindevermittler bewirkt werden. Als Bindevermittler
werden bevorzugt Moleküle verwendet, die bei bestimmten Bedingungen
degradierbar oder abbaubar sind. Besonders bevorzugt wird als Bindever
mittler Polymilchsäure verwendet. Hierzu wird der Wirkstoff mittels des
Bindevermittlers, insbesondere Polymilchsäure, an das Templatpartikel,
beispielsweise ein teilvernetztes Melaminformaldehydpartikel immobilisiert.
Auf diese Weise wird der einzuschließende Wirkstoff selbst Bestandteil des
Schichtaufbaus bei der Beschichtung des Kerns. Nach der Auflösung der
Templatpartikel und gegebenenfalls Degradation der Bindemoleküle wird der
Wirkstoff ins Innere der Hülle freigesetzt. Mit diesem Verfahren können
beliebige Wirkstoffe in die Hülle eingeschlossen werden, insbesondere
Nanopartikel und nicht-biologische makromolekulare Komponenten und
bevorzugt biologische Makromoleküle, wie etwa Proteine, insbesondere
Enzyme.
Weiterhin können z. B. mit 4-Pyrensulfat (4-PS) kationische Polymere oder
Partikel in der Hülle fixiert werden. Durch Herauslösen von 4-PS in
Salzlösungen werden diese Partikel dann in das Innere der Hülle freigesetzt.
Die Inkorporation von Wirkstoffen in den von den Hüllen umschlossenen
Innenraum kann durch vorherige Einbringung der Wirkstoffe in die Templat
partikel bei Verwendung von reversiblen Mikrogelen als Templatpartikel
durchgeführt werden. So ermöglicht beispielsweise die Verwendung von
teilvernetzten Methylolmelaminkernen vor der Beschichtung, in gequollene
Kerne Substanzen zu inkorporieren, die nach einer reversiblen Schrumpfung
im Kern eingeschlossen sind.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Verfahrens können lösliche Partikel als Templatpartikel verwendet werden.
Diese löslichen Partikel lassen sich ohne Zerstörung der um die Partikel
herum durch Präzipitation gebildeten Hülle zumindest teilweise desintegrie
ren. Beispiele für lösliche Partikel sind teilvernetzte Melaminformaldehyd
partikel, die durch Einstellung des pH-Werts in dem die umhüllten Partikel
enthaltenden Medium auf einen sauren Wert, z. B. B ≦ 1,5, aufgelöst werden
können, während die Hüllschicht selbst zumindest teilweise intakt bleibt.
Teilvernetzte Melaminformaldehydpartikel können auch durch chemische
Reaktionen, insbesondere durch Sulfonierung in wässrigen Medien aufgelöst
werden. Die Herstellung solcher teilvernetzter Melaminformaldehydpartikel
ist ausführlich in WO 99/47252 beschrieben. Weitere Beispiele für
auflösbare Templatpartikel sind lösliche Polymerkerne, z. B. Harnstoff-Form
aldehyd-Partikel oder Salzkristalle, oder Salzkristalle, z. B. Carbonatver
bindungen, deren wässrige Löslichkeit steuerbar ist, oder nicht in Wasser
aber in Ethanol lösliche organische Verbindungen, z. B. Cyaninfarbstoffe.
Außerdem können als Templatmaterialien beispielsweise Zellen, z. B.
eukaryontische Zellen, wie etwa Säugererythrozyten oder Pflanzenzellen,
einzellige Organismen wie etwa Hefen, Bakterienzellen wie etwa E.coli
Zellen, Zellaggregate, subzelluläre Partikel wie etwa Zellorganellen, Pollen,
Membranpräparationen oder Zellkerne oder durch chemische oder/und
biologische Verfahren erzeugte hohle Zellwand- oder Pollenwandpräparate,
Viruspartikel und Aggregate von Biomolekülen, z. B. Proteinaggregate wie
etwa Immunkomplexe, kondensierte Nukleinsäuren, Ligand-Rezeptor-Komplexe
etc. verwendet werden. Das erfindungsgemäße Verfahren eignet
sich auch zur Verkapselung lebender biologischer Zellen und Organismen.
Ebenso als Template geeignet sind Aggregate amphiphiler Materialien,
insbesondere Membranstrukturen wie etwa Vesikel, z. B. Liposomen oder
Micellen sowie andere Lipidaggregate.
Die Desintegration biologischer Templatpartikel kann durch Zugabe von
Lysereagenzien erfolgen. Dabei sind Lysereagenzien geeignet, die biolo
gische Materialien wie Proteine oder/und Lipide auflösen können. Vorzugs
weise enthalten die Lysereagenzien ein Deproteinisierungsmittel, beispiels
weise Peroxoverbindungen wie etwa H2O2 oder/und Hypochloritver
bindungen wie etwa Natrium- oder Kaliumhypochlorit. Überraschenderweise
erfolgt die Desintegration der Templatpartikel innerhalb einer kurzen
Inkubationsdauer, z. B. 1 min bis 1 h bei Raumtemperatur. Die Desintegra
tion der Templatpartikel ist weitgehend vollständig, da selbst bei elek
tronenmikroskopischer Betrachtung der verbleibenden Hüllen keine Reste der
Partikel mehr nachweisbar sind. Bei Einbau biologischer Materialien in die
Hülle können Kapseln mit teilaufgelösten Hüllen erzeugt werden.
Die bei der Desintegration der Templatpartikel gebildeten Fragmente, z. B.
im Fall von teilvernetzten Melaminformaledhypartikeln, die bei Auflösung
entstandenen Oligomere, können durch Poren, insbesondere Nanoporen, der
Hüllwand aus dem Inneren der Kapseln nach außen austreten. Anschließend
können sie - sofern gewünscht - von den Kapseln abgetrennt werden. Diese
Abtrennung kann durch dem Fachmann bekannte Verfahren durchgeführt
werden, z. B. durch Dialyse, Filtration, Zentrifugation oder/und kontrollierte
Phasenseparation abgetrennt. Eine Abtrennung von Templatpartikel
fragmenten ist oftmals jedoch nicht notwendig. Die Kapseln können auch
ohne Abtrennungsschritt verwendet werden.
Darüber hinaus können auch flüssige oder gasförmige Templatpartikel
verwendet werden, z. B. Tropfen einer Mikro- oder Miniemulsion oder
Gasblasen entsprechender Größe. Besonders bevorzugt werden als flüssige
Templatpartikel Öltropfen verwendet, die durch Ultraschall in einer
wässrigen salzhaltigen Lösung emulgiert werden können. Die Größe der
Flüssigkeitströpfchen bzw. Gasbläschen lässt sich durch entsprechende
Maßnahmen, z. B. Leistung und Dauer einer Ultraschallbehandlung, auf die
gewünschten Größen einstellen. Bei dieser Ausführungsform des erfindungs
gemäßen Verfahrens können beispielsweise flüssige Wirkstoffe wie etwa
Parfümöle, pharmazeutisch wirksame Öle, in Ölen gelöste lipophile feste
Wirkstoffe oder Gasbläschen als Kontrastmittel verkapselt werden.
Mit dem erfindungsgemäßen Verfahren ist es auch möglich, Kapseln zum
Einschluss von Wirkstoffen herzustellen. Die Beladung des Innenraums mit
Molekülen kann dadurch erfolgen, dass die Permeabilität der Hülle als
Funktion der externen physikalischen und chemischen Parameter variiert
wird. Zur Beladung wird ein Zustand hoher Permeabilität eingestellt. Das
eingeschlossene Material wird anschließend durch Veränderung der äußeren
Parameter oder/und Verschluss der Poren, beispielsweise durch Kon
densation der Hülle oder chemische oder/und thermische Modifikation der
Poren oder Kanäle zurückgehalten.
Das erfindungsgemäße Präzipitationsverfahren erlaubt die Abscheidung
geladener oder/und nicht geladener Komponenten auf dem Templatpartikel.
In einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung enthalten die zur
Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten zumindest einen Polyelek
trolyten, beispielsweise zwei entgegengesetzt geladene Polyelektrolyten
oder/und ein polyvalentes Metallkation und einen negativ geladenen
Polyelektrolyten.
Unter Polyelektrolyten werden allgemein Polymere mit ionisch dissoziierbaren
Gruppen, die Bestandteil oder Substituent der Polymerkette sein
können, verstanden. Üblicherweise ist die Zahl dieser ionisch dissoziierbaren
Gruppen in Polyelektrolyten so groß, dass die Polymeren in der dissoziierten
Form (auch Polyionen genannt) wasserlöslich sind. Hierin werden unter dem
Begriff Polyelektrolyte auch Ionomere verstanden, bei denen die Konzen
tration der ionischen Gruppen für eine Wasserlöslichkeit nicht ausreichend
sind, die jedoch genügend Ladungen aufweisen, um eine Selbstassem
blierung einzugehen. Bevorzugt umfasst die Hülle "echte" Polyelektrolyte.
Je nach Art der dissoziierbaren Gruppen werden Polyelektrolyte in
Polysäuren und Polybasen unterteilt. Aus Polysäuren entstehen bei der
Dissoziation unter Abspaltung von Protonen Polyanionen, die sowohl
anorganische als auch organische Polymere sein können.
Polybasen enthalten Gruppen, die in der Lage sind, Protonen, z. B. durch
Reaktion mit Säuren unter Salzbildung, aufzunehmen. Polybasen können
ketten- bzw. seitenständige dissoziierbare Gruppen aufweisen und bilden
durch Aufnahme von Protonen Polykationen.
Erfindungsgemäß geeignete Polyelektrolyte sind sowohl Biopolymere, wie
etwa Alginsäure, Gummi Arabicum, Nukleinsäuren, Pektine, Proteine und
andere, sowie chemisch modifizierte Biopolymere, wie etwa ionische oder
ionisierbare Polysaccharide, z. B. Carboxymethylcellulose, Chitosan und
Chitosansulfat, Ligninsulfonate sowie synthetische Polymere, wie etwa
Polymethacrylsäure, Polyvinylsulfonsäure, Polyvinylphosphonsäure und
Polyethylenimin.
Geeignete Polyanionen umfassen natürlich vorkommende Polyanionen und
synthetische Polyanionen. Beispiele für natürlich vorkommende Polyanionen
sind Alginat, Carboxymethylamylose, Carboxymethylcellulose, Carboxy
methyldextran, Carageenan, Cellulosesulfat, Chondroitinsulfat, Chitosansul
fat, Dextransulfat, Gummi Arabicum, Gummi Guar, Gummi Gellan, Heparin,
Hyaluronsäure, Pektin, Xanthan und Proteine bei einem entsprechenden pH-Wert.
Beispiele für synthetische Polyanionen sind Polyacrylate (Salze der
Polyacrylsäure), Anionen von Polyaminosäuren und deren Copolymeren,
Polymaleinat, Polymethacrylat, Polystyrolsulfat, Polystyrolsulfonat,
Polyvinylphosphat, Polyvinylphosphonat, Polyvinylsulfat, Polyacrylamid
methylpropansulfonat, Polylactat, Poly(butadien/maleinat),
Poly(ethylen/maleinat), Poly(ethacrylat/acrylat) und Poly(glycerin
methacrylat).
Geeignete Polybasen umfassen natürlich vorkommende Polykationen und
synthetische Polykationen. Beispiele für geeignete natürlich vorkommende
Polykationen sind Chitosan, modifizierte Dextrane, z. B. Diethylaminoethyl-mo
difizierte Dextrane, Hydroxymethylcellulosetrimethylamin, Lysozym,
Polylysin, Protaminsulfat, Hydroxyethylcellulosetrimethylamin und Proteine
bei entsprechenden pH-Wert. Beispiele für synthetische Polykationen sind
Polyallylamin, Polyallylaminhydrochlorid, Polyamine, Polyvinylbenzyl
trimethylammoniumchlorid, Polybren, Polydiallyldimethylammoniumchlorid,
Polyethylenimin, Polyimidazolin, Polyvinylamin, Polyvinylpyridin, Poly(acryl
amid/methacryloxypropyltrimethylammoniumbromid), Poly(diallyldimethyl
ammoniumchlorid/N-lisopropylacrylamid), Poly(dimethylaminoethyl
acrylat/acrylamid), Polydimethylaminoethylmethacrylat, Polydimethylamino
epichlorhydrin, Polyethyleniminoepichlorhydrin, Polymethacryloxyethyl
trimethylammoniumbromid, Hydroxypropylmethacryloxyethyldimethyl
ammoniumchlorid, Poly(methyldiethylaminoethylmethacrylat/acrylamid),
Poly(methyl/guanidin), Polymethylvinylpyridiniumbromid, Poly(vinylpyrroli
don/dimethylaminoethylmethacrylat)undPolyvinylmethylpyridiniumbromid.
Es können lineare oder verzweigte Polyelektrolyte eingesetzt werden. Die
Verwendung verzweigter Polyelektrolyte führt zu weniger kompakten
Polyelektrolytmultifilmen mit einem höheren Grad der Wandporosität. Zur
Erhöhung der Kapselstabilität können Polyelektrolytmoleküle innerhalb
oder/und zwischen den einzelnen Schichten vernetzt werden, z. B. durch
Crosslinking von Aminogruppen mit Aldehyden. Weiterhin können amphi
phile Polyelektrolyte, z. B. amphiphile Block- oder Randomcopolymere mit
partiellem Polyelektrolytcharakter zur Verringering der Permeabilität
gegenüber polaren kleinen Molekülen eingesetzt werden. Solche amphiphilen
Copolymere bestehen aus Einheiten unterschiedlicher Funktionalität, z. B.
einerseits sauren oder basischen Einheiten und andererseits hydrophoben
Einheiten wie Styrolen, Dienen oder Siloxanen etc. die als Blöcke oder
statistisch verteilt über das Polymer angeordnet sein können. Durch
Verwendung von Copolymeren, die als Funktion äußerer Bedingungen ihre
Struktur ändern, können die Kapselwände bezüglich ihrer Permeabilität oder
anderer Eigenschaften definiert gesteuert werden. Hierzu bieten sich
beispielsweise schwache Polyelektrolyte, Polyampholyte oder Copolymere
mit einem Poly(N-isopropylacrylamid)-Anteil, z. B. Poly(N-isopropylacryl
amid-acrylsäure) an, die über das Gleichgewicht von Wasserstoffbrücken
bindungen ihre Wasserlöslichkeit als Funktion der Temperatur ändern, was
mit einer Quellung einhergeht.
Durch Verwendung von unter bestimmten Bedingungen abbaubaren, z. B.
photo-, säure-, base-, salz- oder thermolabilen Polyelektrolyten kann über
die Auflösung der Kapselwände die Freisetzung von eingeschlossenen
Wirkstoffen gesteuert werden. Weiterhin können für bestimmte Anwen
dungsmöglichkeiten auch leitende Polyelektrolyte oder Polyelektrolyte mit
optisch aktiven Gruppen als Kapselkomponenten verwendet werden.
Durch geeignete Wahl der Polyelektrolyte ist es möglich, die Eigenschaften
und Zusammensetzung der Polyelektrolythülle der erfindungsgemäßen
Kapseln definiert einzustellen. Dabei kann die Zusammensetzung der Hüllen
durch die Wahl der Substanzen beim Schichtaufbau in weiten Grenzen
variiert werden. Grundsätzlich ergeben sich keine Einschränkungen
hinsichtlich der zu verwendenden Polyelektrolyte bzw. Ionomere, solange
die verwendeten Moleküle eine genügend hohe Ladung aufweisen oder/und
die Fähigkeit besitzen, über andere Wechselwirkungsarten, wie beispiels
weise Wasserstoffbrückenbindungen und/oder hydrophobe Wechselwirkun
gen, eine Bindung mit der darunter liegenden Schicht einzugehen.
Geeignete Polyelektrolyte sind somit sowohl niedermolekulare Polyelek
trolyte bzw. Polyionen als auch makromolekulare Polyelektrolyte, beispiels
weise Polyelektrolyte biologischer Herkunft.
Von besonderer Bedeutung für die Verwendung der Kapseln ist die
Permeabilität der Hüllwand. Wie bereits oben ausgeführt, ermöglicht die
Vielzahl der zur Verfügung stehenden Polyelektrolyte die Herstellung einer
Vielzahl von Hüllkompositionen mit unterschiedlichen Eigenschaften.
Insbesondere kann die elektrische Ladung der Außenhülle dem Anwen
dungszweck angepasst werden. Zudem kann die Innenhülle an jeweils
verkapselte Wirkstoffe angepasst werden, wodurch z. B. eine Stabilisierung
des Wirkstoffs erzielt werden kann. Daneben kann auch die Permeabilität
der Hüllwand durch die Wahl der Polyelektrolyte in der Hülle und durch die
Wanddicke sowie die Umgebungsbedingungen beeinflusst werden. Dadurch
ist eine selektive Gestaltung der Permeabilistätseigenschaften sowie eine
definierte Veränderung dieser Eigenschaften möglich.
Die Permeabilitätseigenschaften der Hülle können durch Poren in mindestens
einer der Polyelektrolytschichten weiter modifiziert werden. Solche Poren
können bei geeigneter Wahl durch die Polyelektrolyte selbst gebildet
werden. Neben den Polyelektrolyten kann die Hülle aber auch andere
Substanzen umfassen, um eine gewünschte Permeabilität zu erzielen. So
kann insbesondere durch Einbringen von Nanopartikeln mit anionischen
oder/und kationischen Gruppen oder von grenzflächenaktiven Substanzen,
wie etwa Tensiden oder/und Lipiden, die Permeabilität für polare Kom
ponenten gesenkt werden. Durch die Inkorporation von selektiven Trans
portsystemen, wie z. B. Carriern oder Kanälen, in die Polyelektrolythülle,
insbesondere in Lipidschichten, ist eine genaue Anpassung der transversalen
Transporteigenschaften der Hülle an den jeweiligen Anwendungszweck
möglich. Die Poren oder Kanäle der Hüllwand können durch chemische
Modifizierung oder/und Änderung der Umgebungsbedingungen gezielt
geöffnet bzw. verschlossen werden. So führt beispielsweise eine hohe
Salzkonzentration des Umgebungsmediums zu einer hohen Durchlässigkeit
der Hüllwand.
Eine erste Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens umfasst
eine komplexe Präzipitation oder Koazervation zwei entgegengesetzt
geladener Polyelektrolyte aus alkalischer Lösung, in der beide simultan, ohne
miteinander zu reagieren in Lösung gehalten werden. Zu dieser Lösung
werden die zu beschichtenden Templatpartikel zugegeben. Anschließend
wird mit Säure, z. B. HCl bis in den Neutralbereich titriert, wobei eine
Einkapselung der Templatpartikel stattfindet. Nach Abtrennung der
eingekapselten Partikel von den Komplexen in der freien Lösung, z. B. durch
Filtration, Zentrifugation oder Sedimentation, können die Templatpartikel
gegebenenfalls aufgelöst werden.
In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform kann die Oberflächen
präzipitation aus einer Lösung enthaltend einen Komplex aus einem
niedermolekularen Ion und einem entgegengesetzt geladenen Polyelek
trolyten erfolgen. Beispiele für geeignete niedermolekulare Ionen sind
Metallkationen, anorganische Anionen wie Sulfat, Carbonat, Phosphat,
Nitrat etc., geladene Tenside, geladene Lipide und geladene Oligomere in
Kombination mit einem entsprechend entgegengesetzt geladenen Polyelek
trolyten. Hierbei wird eine verteilte Quelle für den einen Polyelektrolyten bei
gleichzeitiger Anwesenheit des anderen Polyelektrolyten erzeugt. Der
Polyelektrolyt des Komplexes kann sowohl das Polykation als auch das
Polyanion sein. Die Wahl hängt von dem vorgelegten Templatpartikel und
anderen Vorgaben ab. In dieser Ausführungsform wird beispielsweise ein
positiv geladener Polyelektrolyt mit einem mehrfach negativ geladenen
niedermolekularen Anion, z. B. Sulfat zu einer Lösung des negativ geladenen
Polyelektrolyten und einer Suspension der Templatpartikel gegeben, wobei
eine Beschichtung der Templatpartikel stattfindet. Die beschichteten
Templatpartikel können von den freien Komplexen beispielsweise durch
Zentrifugation, Filtration und anschließendes Waschen abgetrennt werden
und - sofern es sich um lösliche Partikel handelt - zur Herstellung von
Mikrokapseln aufgelöst werden.
Noch eine weitere bevorzugte Ausführungsform umfasst die Oberflächen
präzipitation aus einer Lösung enthaltend partiell destabilisierte Polyelek
trolytkomplexe (Polykation/Polyanion) mittels Salzzugabe oder/und pH-Variation.
Hierbei erfolgt eine allmähliche Übertragung von Polyelektrolyten
aus den Komplexen auf die Templatoberfläche. Hierzu können der negativ
und der positiv geladene Polyelektrolyt in eine wässrige Lösung mit hohem
Salzgehalt, vorzugsweise einem Salzgehalt von ≧ 0,5 Mol/l, z. B. 1 M NaCl,
eingebracht und gerührt werden. Nach Zugabe der Templatpartikel werden
diese beschichtet. Die beschichteten Templatpartikel können beispielsweise
durch Zentrifugation oder Filtration und anschließendes Waschen gewonnen
und gegebenenfalls zur Erzeugung von Mikrokapseln aufgelöst werden.
In noch einer weiteren bevorzugten Ausführungsform umfasst die Hülle
Metallkationen und mindestens einen negativ geladenen Polyelektrolyten.
Als Metallkationen kommen beispielsweise divalente Metallkationen und
insbesondere trivalente Metallkationen zum Einsatz. Beispiele für geeignete
Metallkationen sind Erdalkalimetallkationen, Übergangsmetallkationen und
Seltenerdelementkationen, wie etwa Ca2+, Mg2+, Y3+, Tb3+ und Fe3+.
Andererseits können auch monovalente Kationen wie Ag+ eingesetzt
werden. Durch Reduktion der Metallkationen können mit einer Metallschicht
überzogene Templatpartikel erzeugt werden.
In noch einer weiteren bevorzugten Ausführungsform umfassen die zur
Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten zumindest ein Makromolekül,
z. B. ein abiogenes Makromolekül, wie etwa ein organisches Polymer, oder
ein Biomolekül, wie etwa eine Nukleinsäure, z. B. DNA, RNA oder ein
Nukleinsäureanalogon, ein Polypeptid, ein Glykoprotein oder ein Poly
saccharid mit einem Molekulargewicht von vorzugsweise 5 kD, und
besonders bevorzugt ≧ 10 kD. Die Makromoleküle können Ladungen
tragen, z. B. wie Nukleinsäuren oder aber auch ungeladen sein, wie etwa
Polysaccharide, z. B. Dextran. Die Makromoleküle können gegebenenfalls mit
Polyelektrolyten oder/und polyvalenten Metallkationen kombiniert werden,
wobei z. B. Kombinationen von makromolekularen und niedermolekularen
biologischen Zellsubstanzen, makromolekularen und niedermolekularen
abiogenen Substanzen und makromolekularen und biogenen und abiogenen
Substanzen verwendet werden können.
In noch einer weiteren bevorzugten Ausführungsform umfassen die zur
Bildung der Hülle vorgegebenen Komponenten ein Gemisch mehrerer
Polyelektrolyte oder/und Lipide oder/und Proteine oder/und Peptide oder/und
Nukleinsäuren oder/und weiterer organischer und anorganischer Ver
bindungen biogener oder abiogener Herkunft. Durch geeignete Zusammen
setzung des Lösungsmittels bezüglich Salzgehalt, pH-Wert, Co-Lösungs
mittel, Tenside und durch geeignete Wahl der Beschichtungsbedingungen,
z. B. Temperatur, rheologische Bedingungen, Anwesenheit elektrischer
oder/und magnetischer Felder, Anwesenheit von Licht, werden die diversen
Hüllkomponenten zur Selbstassemblierung auf den Templaten veranlasst
unter Bildung komplexer Strukturen mit vielfältigen biomimetischen
Eigenschaften.
Noch eine weitere bevorzugte Ausführungsform des Verfahrens ist dadurch
gekennzeichnet, dass das Zusammenbringen der flüssigen salzhaltigen
Hüllphase mit den Templaten die Systembedingungen derart verändert, dass
ohne weitere äußere Stimulation mit Ausnahme der permanenten Durch
mischung spontan der Aufbau von Hüllen erfolgt, die nach gegebenenfalls
erfolgter Auflösung der Template intakt bleiben.
Das Präzipitieren gemäß Schritt (b) des erfindungsgemäßen Verfahrens
erfolgt unter Bedingungen, sodass um das Templat eine Hülle mit definierter
Dicke im Bereich von 1 bis 100 nm, vorzugsweise 1 bis 50 nm, besonders
bevorzugt 5 bis 30 nm und am meisten bevorzugt 10 bis 20 nm gebildet
wird. Die Wandstärke und die Homogenität der Kapselhülle werden durch
die Geschwindigkeit der Polymerpräzipitation bestimmt. Diese hängt im
Wesentlichen von der Konzentration der Templatpartikel, der Konzentration
der Beschichtungskomponenten und der Geschwindigkeit der die Präzipita
tion bewirkenden Löslichkeitsveränderung in der Flüssigkeitsphase ab.
Das Präzipitieren kann beispielsweise dadurch erfolgen, dass ein Teil der die
Hülle bildenden Komponenten in der Flüssigphase vorgelegt und an
schließend eine oder mehrere weitere Hüllkomponenten zugegeben wird. Ein
derartiger Präzipitationsschritt kann beispielsweise für eine Kombination von
Metallkationen und entgegengesetzt geladenen Polyelektrolyten eingesetzt
werden. Eine andere Möglichkeit der Präzipitation besteht darin, dass die zur
Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten bereits vollständig in der
Flüssigphase vorliegen und eine die Präzipitation bewirkende Veränderung
der Flüssigphase erfolgt. Diese Veränderung der Flüssigphase kann
beispielsweise eine Veränderung des pH-Werts und/oder eine Veränderung
der Zusammensetzung der Flüssigphase, z. B. durch Zugabe einer Lösungs
mittelkomponente oder/und Entfernen einer Lösungsmittelkomponente
umfassen. So kann beispielsweise eine Präzipitation von hydrophilen
Biopolymeren wie DNA oder Polysacchariden durch Zugabe von Ethanol zu
einer wäßrigen Flüssigphase bewirkt werden, während die Präzipitation von
Polyelektrolytkombinationen durch Abdampfen eines organischen Lösungs
mittels, wie etwa Aceton aus der Flüssigphase erfolgen kann.
Weiterhin kann das erfindungsgemäße Beschichtungsverfahren die
Durchführung von zumindest einem zusätzlichen Beschichtungsschritt vor
oder/und nach dem Präzipitationsschritt umfassen. Ein derartiger zusätzli
cher Beschichtungsschritt kann beispielsweise das Aufbringen einer oder
mehrerer Lipidschichten oder/und das schichtweise Aufbringen von
Polyelektrolyten umfassen.
Durch Abscheidung von Lipidschichten oder/und amphiphiler Polyelek
trolyten auf der Polyelektrolythülle kann eine Modifizierung der Permeabilität
einer Hülle erreicht werden. Auf diese Weise kann die Permeabilität der
Hüllen für kleine und polare Moleküle sehr stark vermindert werden.
Beispiele für Lipide, die auf den Hüllen abgeschieden werden können, sind
Lipide, die mindestens eine ionische oder ionisierbare Gruppe tragen, z. B.
Phospholipide wie etwa Dipalmitoylphosphatidinsäure oder zwitterionische
Phospholipide wie etwa Dipalmitoylphosphatidylcholin oder auch Fettsäuren
bzw. entsprechende langkettige Alkylsulfonsäuren. Bei Verwendung
zwitterionischer Lipide können Lipidmultischichten auf der Hülle abgeschie
den werden.
Das schichtweise Aufbringen von Polyelektrolyten kann beispielsweise wie
in WO 99/47252 beschrieben, erfolgen. Der schichtweise Hüllenaufbau
kann mit dem erfindungsgemäßen Präzipitationsschritt beispielsweise so
kombiniert werden, dass zunächst auf dem Templatpartikel ein schicht
weiser Aufbau von einer geringen Anzahl, z. B. 1 bis 4 Schichten von
Polyelektrolyten erfolgt, dem sich ein erfindungsgemäßer Präzipitations
schritt anschließt. Alternativ oder zusätzlich kann auch nach den Präzipita
tionsschritten eine schichtweise Abscheidung von Polyelektrolyten auf der
Hülle erfolgen.
Durch das erfindungsgemäße Verfahren lassen sich monodisperse Kapseln
herstellen. So ist es möglich, eine Zusammensetzung mit einer Kapselver
teilung zu erhalten, bei der der Anteil an Kapseln, deren Abweichung vom
mittleren Durchmesser < 50% ist, weniger als 20%, bevorzugt weniger
als 10% und besonders bevorzugt weniger als 1%.
Die Kapseln sind sehr stabil gegenüber chemischen, biologischen, mechani
schen und thermischen Belastungen. Die Kapseln können gegebenenfalls mit
eingeschlossenen Wirkstoffen ohne Beeinträchtigung ihrer Eigenschaften
getrocknet, eingefroren oder/und gefriergetrocknet werden. Nach dem
Auftauen bzw. Resuspendieren in einem Lösungsmittel, z. B. wässrige
Lösung, werden unter geeigneten Medienbedingungen oder/und bei
entsprechender Medienzusammensetzung wieder intakte Kapseln erhalten.
Bei Trocknung oder Gefriertrocknung der Kapseln wird eine pulverförmige
Zusammensetzung erhalten, die in geeigneten Lösungsmitteln, insbesondere
in wässrigen Lösungen resuspendiert werden kann. Die Trocknung kann
nach bekannten Verfahren durchgeführt werden, insbesondere bei erhöhter
oder verringerter Temperatur oder/und reduziertem Druck.
Weiterhin soll die Erfindung durch die nachfolgenden Figuren und Beispiele
erläutert werden.
Fig. 1 zeigt eine Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Verfahrens umfassend die einstufige Bildung einer Polyelektrolyt/Ion-Hülle
auf kolloidalen Templatpartikeln.
Fig. 2 zeigt eine weitere Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Verfahrens, umfassend eine Selbstassemblierung von Polymerfilmen auf der
Oberfläche von kolloidalen Partikeln.
Fig. 3 zeigt ein rastermikroskopisches konfokales Laserbild von
Mikrokapseln, hergestellt durch eine einstufige Präzipitation aus dem
ternären Gemisch Wasser/Aceton/Natriumbromid mit PSS500 und PBVTAC.
Das Templat war ein auflösbares Melaminformaldehydlatexpartikel mit 5,2 µm
Durchmesser. Das Lösungsfenster wurde durch Acetonverdampfung
verlassen.
Fig. 4 zeigt ein rastermikroskopisches konfokales Laserbild von
Mikrokapseln, erhalten durch ein einstufiges Verfahren aus dem ternären
Gemisch Wasser/Aceton/Natriumbromid mit PSS500 und PVBTAC. Das
Templat war ein auflösbares Melaminformaldehydlatexteilchen mit 5,2 µm
Durchmesser. Das Lösungsfenster wurde durch Zugabe von Wasser
verlassen.
Fig. 5 zeigt ein konfokales mikroskopisches Bild von kolloidalen
Partikeln, beschichtet durch auf fluoreszenzmarkierten PSS und Tb-Ionen.
Fig. 6 zeigt ein mikroskopisches konfokales Bild von Kolloidpartikeln,
beschichtet durch Präzipitate von fluoreszenzmarkiertem Dextran (a) und
fluoreszenzmarkierter DNA (b) auf Melaminformaldehydteilchen durch
tropfenweise Zugabe von Ethanol zu einer wässrigen Suspension.
Fig. 7 zeigt leere Hüllen aus dem Polyanion/Metall-Komplex PSS/Tb,
charakterisiert mittels Rasterkraftmikroskopie. In Fig. 7a ist die Draufsicht
auf eine Kapsel aus 20 Hüllschichten dargestellt und in Fig. 7b die
Draufsicht auf mehrere Kapseln aus jeweils etwa 100 Hüllschichten.
Die Fig. 1 und 2 zeigen eine schematische Darstellung von zwei
Ausführungsformen des erfindungsgemäßen Verfahrens. Gemäß Fig. 1
wird eine Suspension von Templatpartikeln (2) hergestellt, die Metallionen,
z. B. Ionen eines polyvalenten Metalles oder Ionen eines Edelmetalles, wie
etwa Ag+ (4) enthält. Durch tropfenweise Zugabe einer Lösung mit negativ
geladenen Polyelektrolytmolekülen (6) erfolgt eine Präzipitation einer
Ion/Polyelektrolyt-Hülle auf den Templatpartikeln. Die beschichteten
Templatpartikel (8) können auf unterschiedliche Art und Weise weiter
prozessiert werden. So können durch Auflösung der Templatpartikel leere
Kapseln (10) erzeugt werden. Durch Reduktion der Metallionen werden
metallbeschichtete Kapseln (12) erhalten. Durch schichtweises Aufbringen
entgegengesetzt geladener Polyelektrolyte (14a, 14b) werden Kapseln mit
einer anisotropen Hülle hergestellt, wobei der innere Teil eine Ion/Polyelek
trolyt-Hülle und der äußere Teil eine durch schichtweisen Aufbau erzeugte
Polyelektrolyt/Polyelektrolythülle ist. Durch Auflösung der Templatpartikel
können anschließend leere Kapseln (18) erzeugt werden. Durch Entfernung
der Metallionen (4) kann der innere Ion/Polyelektrolyt-Teil der Hülle aufgelöst
werden, sodass das Polymer (6) im Inneren der aus den entgegengesetzt
geladenen Polyelektrolyten (14a, 14b) gebildeten Hülle verkapselt ist (20).
Eine weitere Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens ist in
Fig. 2 gezeigt. Es wird eine Suspension kolloidaler Templatpartikel (32) in
einer Flüssigphase vorgelegt, die ein Polymer, z. B. eine Nukleinsäure, ein
Protein, ein Polysaccharid oder ein synthetisches Polymer, in gelöster Form
enthält. Durch Veränderung der Lösungsmittelzusammensetzung, z. B.
tropfenweise Zugabe von Ethanol oder eines anderen Lösungsmittels, in
dem das Polymer nicht oder nur schlecht löslich ist, erfolgt eine Präzipitation
des Polymers, wobei mit dem Polymer beschichtete Templatpartikel (36)
entstehen. Durch schichtweise Abscheidung von entgegengesetzt
geladenen Polyelektrolyten (38a, 38b) werden beschichtete Templatpartikel
mit anisotroper Hülle (40) erzeugt, wobei der innere Abschnitt der Hülle
durch das präzipitierte Polymer und der äußere Abschnitt durch Schichten
entgegengesetzt geladener Polyelektrolyten gebildet wird. Bei Verwendung
löslicher Templatpartikel können diese aufgelöst werden, wobei ein in der
Polyelektrolyt/Polyelektrolyt-Hülle verkapseltes Polymer (42) gebildet wird.
Natriumpolystyrolsulfat mit einem Molekulargewicht von etwa 500.000
(PSS500) und Poly(vinylbenzyltrimethylammonium)chlorid mit einem
Molekulargewicht von etwa 180.000 (PVBTAC) wurden von Polysiences
Europe GmbH bezogen. Natriumpolystyrolsulfatmiteinem Molekulargewicht
von etwa 70.000 (PSS70) und Poly(allylaminhydrochlorid) mit einem
Molekulargewicht von 50 bis 65.000 (PAH) wurden von Aldrich bezogen.
Teilvernetzte monodisperse Melamin-Formaldehyd-Partikel (MF-Latex) mit
Durchmessern von 5,2 und 10 µm wurden von Microparticles GmbH, Berlin,
Deutschland, bezogen. Diese Partikel sind in sauren Lösungen von HCl (pH
~ 1), Natriumpyrosulfitlösungen oder organischen Lösungsmitteln
zersetzbar.
Die Beschichtung von Templatpartikeln durch Membranfiltration erfolgte wie
bei Voigt et al. (Ind. Eng. Chem. Res. 38 (1999), 4037) beschrieben.
PSS500- oder PVBTAC-Adsorptions- (1 g/l, in 0,5 M NaCl) und Wasch-Zyklen
wurden in einer Membranfiltrationsvorrichtung (Millipore/Amicon Ultrafil
trationszelle 8200 und Millipore Membranfilter SSWP 090 25) abwechselnd
durchgeführt. Aufgrund der negativen Ladung des MF-Latex wurde mit einer
Adsorption von PSS500 begonnen. Nach Adsorption von zehn Schichten
(jeweils fünf Schichten PSS500 und PVBTAC) wurden die beschichteten
Teilchen gesammelt und in einem großen Volumen einer HCl-Lösung mit pH
1 suspendiert. Innerhalb weniger Sekunden wurde die Suspension
transparent als Ergebnis einer Zersetzung der MF-Latex-Templatpartikel.
Nach weiteren Waschschritten durch Membranfiltration wurden schicht
weise überzogene Mikrokapseln in anwendungsfertiger Form erhalten.
Das System PSS500 (3 g/l,)/PVBTAC (1 g/l,) in Wasser (60 Gew.-%)/Aceton
(20 Gew.-%)/Natriumbromid (20 Gew.-%) verhält sich gemäß dem von
Michaels (Industrial Engineering Chemistry 57 (1965), 32) und Michaels et
al. (J. Phys. Chem. 69 (1965), 1456), supra, veröffentlichten Phasendia
gramm und ergibt eine klare Lösung ohne nachweisbare Turbidität. 5 ml
dieses Systems wurden mit 1 ml gepackten 5,2 µm MF-Latexpartikel
(positiv geladen) entsprechend etwa 0,85 m2 Teilchenoberfläche versetzt.
Das Lösungsfenster wurde auf zwei unterschiedliche Arten, nämlich durch
langsame Verdampfung von Aceton bzw. durch langsame Zugabe von
Wasser verlassen. Der Präzipitationsprozess wurde bei 20°C für eine Dauer
von etwa 2 h durchgeführt. Dann wurde die Suspension gewonnen und
weiter untersucht.
SFM-Bilder wurden unter Verwendung eines Digital Instruments Nanoscope
IIIa erhalten. Die Probe wurde durch Aufbringen eines Tropfens der
Mikrokapselsuspension auf eine saubere Glimmeroberfläche und Trocknen
an Luft hergestellt. Die getrockneten Mikrokapseln wurden im Kontaktmo
dus untersucht.
Konfokale Bilder wurden mit dem konfokalen Laserrastermikroskop TCS SP
von Leica unter Verwendung eines Aristoplan 100× Öl-Immersionsobjektivs
erhalten. 10 µl der Suspension von beschichteten Teilchen wurden auf einen
Objektträger gegeben. Zu dieser Suspension wurden 50 µl 0,1 Mol/l HCl
gegeben. Nach 2 min wurden weitere 50 µl 0,1 Mol/l NaOH zugegeben.
Geringe Mengen von Rhodamin 6G wurden als Fluoreszenzmarker für die
Kapselwände zugesetzt.
Durch schichtweise Abscheidung gemäß dem Stand der Technik herge
stellte Mikrokapseln zeigten eine typische ultradünne Schalenstruktur mit
einer geringen Wanddicke von etwa 15 nm. Durch Zugabe des ternären
Gemisches Wasser/Aceton/Natriumbromid konnten diese Mikrokapseln
vollständig aufgelöst werden.
CLSM-Bilder von Kapseln, die durch die erfindungsgemäße Einschritt-Ober
flächenpräzipitation hergestellt wurden, sind in den Fig. 3 und 4
gezeigt. In Fig. 3 wurde das Lösungsfenster durch Acetonverdampfung
und in Fig. 4 durch Zugabe von Wasser verlassen. Größe und Form der
Mikrokapseln ähneln denjenigen der Templatpartikel. Ein großer Anteil der
Mikrokapseln ist etwas kleiner als die ursprünglichen Templatpartikel. Eine
Untersuchung der Permeabilitätseigenschaften zeigte, dass - ebenso wie im
Fall der schrittweise hergestellten Kapseln - kleine polare Farbstoffe die
Hülle durchdringen können.
PSS mit einem Molekulargewicht von 70.000, PAH mit einem Molekularge
wicht von 50.000 und Acridinorange (AO) wurden von Aldrich bezogen.
Y(NO3)3, FeCl3 und TbCl3 wurden von Merck bezogen. Dipicolinsäure (DPA)
und 4-Pyrensulfat (4-PS) wurden von Molecular probes erhalten. DNA und
Dextran (Molekulargewicht 76.000) markiert mit Rhodamin (Rd) wurden von
Sigma erworben.
Polystyrolatexpartikel (PS) modifiziert mit Sulfatgruppen (Durchmesser 468 nm)
wurden wie bei Furizava et al. (Kolloid-Z. Z. Polym. 250 (1972), 908)
beschrieben, hergestellt. Dispersionen von säurelöslichen Melaminformalde
hydpartikeln (MF-Latex) mit Durchmessern von 4 und 6,5 µm wurden von
Microparticels GmbH, Berlin, Deutschland bezogen.
Konfokale Laserrastermikroskopie und Rasterkraftmikroskopie wurden wie
in Beispiel 1 beschrieben, durchgeführt.
Eine Suspension der MF-Latexpartikel wurde mit Tb3+-Ionen vermischt.
Nach Zugabe des Polyanions PSS wurden Tb3+/PSS-Präzipitate gebildet. Die
Suspension (1 ml) wurde kontinuierlich während des Zutropfens (10 µl)
einer PSS-Rd-Lösung (1 mg/ml) gerührt, bis die PSS-Rd in Konzentration
einen bestimmten Wert erreichte (Tabelle 1). Nach 10 bis 15 min wurden
die Partikel abzentrifugiert und der Anteil an PSS-Rd-Molekülen, die nicht an
die Partikel gebunden waren, durch Fluoreszenzbestimmung im Überstand
bestimmt. Tabelle 1 zeigt die Daten bezüglich der Endkonzentration an
MF-Teilchen, Tb3+-Ionen und die Konzentration von PSS nach Zugabe zur
Suspension. Bemerkenswerterweise wurden etwa 80 bis 85% des
eingesetzten PSS bei allen untersuchten Konzentrationen an die
MF-Latexpartikel adsorbiert.
Die MF-Partikel wurden durch konfokale Mikroskopie untersucht. Ein
typisches Bild für mit PSS/Tb3+ beschichtete MF-Partikel ist in Fig. 5
gezeigt. Die Bedeckung der MF-Partikel mit Fluoreszenzmarkierung ist
gleichmäßig. Außerhalb der Partikel wurde praktisch keine Fluoreszenzmar
kierung gefunden.
Die kontrollierte Präzipitation von Polymeren auf die Oberfläche von
Kolloidpartikeln wurde durch Löslichkeitsverringerung von Polymeren
durchgeführt. Als Polymere wurden DNA und Dextran aufgrund ihrer
geringen Löslichkeit in Ethanol verwendet.
Zunächst wurden 1,5 ml einer MF-Latexpartikelsuspension (Teilchenkonzen
tration 5 × 108/cm3) mit einer DNA-Konzentration von 3 × 1014 Molekülen
pro cm3 hergestellt. Dann wurde Ethanol tropfenweise zur Suspension bis
zu einem Volumen von 4,5 ml gegeben. Während des Zutropfens von
Ethanol wurde die Suspension geschüttelt. Nach 15 min wurde die
Suspension zentrifugiert. Durch Bestimmung der Fluoreszenz (AO) im
Überstand wurde gefunden, dass etwa 20% der DNA nicht an die Partikel
gebunden waren.
Ein entsprechendes Experiment wurde auch unter Verwendung von mit
Rhodamin markiertem Dextran (Dextran-Rd) durchgeführt. Hierzu wurden 1
ml einer MF-Latexpartikelsuspension (Konzentration 5 × 108 Partikel pro
cm3) und Dextran-Rd (3 × 1015 Moleküle pro cm3) hergestellt. Nach der
Präzipitation wurden etwa 5% des Dextrans im Überstand gefunden.
Typische Fluoreszenzkonfokalmikroskopbilder sind in den Fig. 6a und b
dargestellt. Wie aus den Bildern ersichtlich ist, ist die Fluoreszenzmarkierung
auf der Teilchenoberfläche homogen. Eine Abschätzung der mittleren Dicke
des Polymerfilms auf dem Partikel ergibt für DNA einen Wert von etwa 50
monomolekularen Schichten an DNA, d. h. eine Dicke von etwa 100 nm.
Die in 2.3.1 hergestellten Tb/PSS-beschichteten MF-Latexpartikel wurden
mit 0,1 MCl zersetzt. Die Proben wurden durch SFM untersucht. Fig. 7a
zeigt ein typisches Bild (Draufsicht) einer Kapsel mit 20 monomolekularen
Tb/PSS-Schichten. Die in Lösung durch Konfokalmikroskopie beobachtete
sphärische Form verändert sich nach dem Trocknen zu einer mehr
polygonalen Gestalt. Die durchschnittliche minimale, aus mehreren
Messungen erhaltene Höhe der Kapseln beträgt etwa 20 nm.
In Fig. 7b ist die Draufsicht eines SFM-Bildes einer Probe mit mehreren
Kapseln, bestehend aus etwa 100 monomolekularen Schichten von Tb/PSS
gezeigt. Eine Anzahl der Kapseln ist zerbrochen. Es wird angenommen, dass
diese geringere Stabilität auf die höhere Dicke der Hülle zurückzuführen ist,
die die Permeabilität der Kapsel verringert. Dies führt beim Auflösen des
MF-Latex zu einem höheren osmotischen Druck und somit zu einem leichteren
Brechen der Kapseln.
Es wurde eine Ausgangslösung der beiden Polyelektrolyte hergestellt, in der
beide simultan ohne miteinander zu reagieren (ähnlich wie im ternären
Lösungsmittel), in Lösung gehalten werden. Das wurde erreicht durch
Vorlage von 10 ml 0,1% (w/w) NaOH-Lösung mit 0,1 M NaCl. In dieser
Lösung wurden nacheinander 15 mg PSS (MG 70.000) und 10 mg PAH
(MG 50.000 bis 65.000) gelöst. Es wurde bis zur vollständigen Auflösung
geschüttelt (ca. 15 Minuten). Diese Lösung ist anschließend für mehrere
Stunden stabil. Es wurde 1 ml Melamin Formaldehyd (MF) Latex mit einem
Durchmesser von z. B. 4,7 µm hinzugefügt. Anschließend wurde mit 1%
(w/w) HCl bis in den Neutralbereich titriert. Mikroskopische Kontrolle zeigt
die Einkapselung der MF-Kerne. Nach Separation der gekapselten Teilchen
von den Komplexen in der freien Lösung (z. B. Filtration, Zentrifugation,
Sedimentation) führte die Auflösung der MF-Kerne in HCl-Lösung von pH 1
innerhalb kurzer Zeit (etwa einige Sekunden bis zu einigen Minuten) zu den
gewünschten Mikrokapseln.
Durch die Zugabe der Säure wurden die Löslichkeitsbedingungen für beide
Partner, separat betrachtet, verbessert. Ihre gegenseitige Anwesenheit
führte dann allerdings zu weniger löslichen Komplexen.
Hierbei wird eine Ausgangslösung der beiden Polyelektrolyte hergestellt, in
der beide simultan ohne miteinander zu reagieren in Lösung sind. Das wird
erreicht durch Vorlage von 100 ml 0,1% (w/w) NaOH-Lösung mit 0,1 M
NaCl. In dieser Lösung werden nacheinander 300 mg PSS (MG 70.000) und
200 mg PAH (MG 50-65.000) gelöst. Es wird bis zur vollständigen
Auflösung geschüttelt. Diese Lösung ist für mehrere Stunden stabil. Es
werden 20 ml Parfümöl dazugegeben. Mit dem Ultra-Turrax wird an
schließend emulgiert und danach rasch mit 10% (w/w) HCl bis in den
Neutralbereich tritriert. Anschließend wird die Emulsion gereinigt, z. B. im
Scheidetrichter mehrfach gewaschen. Es ergab sich eine über Monate
stabile Emulsion.
Lösung I: 0,5 ml PAH-Lösung (MG 50.000-65.000, 1 mg/ml) mit NaCl
(0,01-100 mM) + 750 µl Natriumsulfat-Lösung (10-5 M); Lösung II: 0,5 ml
PSS (MG 70.000, 5 mg/ml) + 10 µl Melamin Formaldehyd Templatpartikel
mit 6,1 µm Durchmesser. Lösung II wird zu Lösung I gegeben und gerührt.
Nach etwa 1 Stunde wird das System gereinigt (Separation der beschichte
ten Template von den freien Komplexen mittels Zentrifugation oder Filtration
mit anschließenden Waschungen). Die Templatpartikel werden durch
Überführen in HCl-Lösung von pH 1 aufgelöst und die Mikrokapseln werden
durch weitere Reinigungsschritte gewonnen.
In 10 ml 1 M NaCl werden 20 mg PSS und 10 mg PAH eingebracht. Das
System wird 10 Minuten gerührt. Anschließend wird 1 ml MF Latex von 4,7 µm
zugegeben. Das System wird für mehrere Stunden gerührt. Anschlie
ßend wird gereinigt bzw. gewaschen mittels Zentrifugation oder Filtration
und die Template in verdünnter HCl (pH ~ 1) aufgelöst und die Kapseln
werden gewonnen.
In 10 ml Wasser werden 20 mg PAH und 10 mg PSS und nach der
Komplexbildung 10 ml 1 M NaCl eingebracht. Dazu wird 1 ml MF Latex von
4,7 µm gegeben. Das System wird für mehrere Stunden gerührt. An
schließend wird gereinigt bzw. gewaschen mittels Zentrifugation oder
Filtration und die Template in verdünnter HCl (pH ~ 1) aufgelöst und die
Kapseln werden gewonnen.
Lösung I: 1 ml PSS-Lösung (2 mg/ml) wird mit 20 µl einer Y(NO3)3-Lösung
(2× 10-2 M) gemischt. Das resultierende Ladungsverhältnis zwischen Sulfat
und Yttrium ist 5 : 3.
Lösung II: 400 µl Öl werden mit 1 ml Wasser gemischt. Die Mischung wird
für 3 bis 4 Minuten mit Ultraschall in einem Ultra-Turrax emulgiert.
Lösung I wird anschließend rasch zu Lösung II gegeben und die resultie
rende Emulsion für 2 Minuten im Vortex geschüttelt. Die Emulsion ist für
mehr als 20 Stunden stabil und kann gegebenenfalls als Ausgangssystem
für weitere Beschichtungen dienen.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist universell anwendbar. Die physikoche
mischen Bedingungen des Mediums werden so eingestellt, z. B. durch hohen
Salzgehalt, dass die präformierten oder/und sich frisch bildenden Poly
elektrolytkomplexe in der Hüllflüssigkeit instabil sind. Es zeigt sich dann
überraschenderweise, dass eine Verteilung der Polyelektrolyte auf alle
beteiligten Compartments in endlicher Zeit, die man durch geeignete
Parameter steuern kann, erfolgt. Dazu zählt natürlich auch die Phasengrenze
Partikel/Medium oder Öl/Medium. Hier können sich die Polyelektrolyte in der
bekannten dreidimensionalen Netzstruktur mit mehr oder weniger Wasser
anordnen. Durch Nachbehandlung, z. B. in wässrigen Lösungen hoher
Salzkonzentration, lässt sich diese in andere Konfigurationen überführen.
Beispielsweise lässt sich eine ungenügend vernetzte Hülle in eine stärker
vernetzte überführen. Es ergibt sich die Möglichkeit, sowohl Strukturen in
der Nähe des thermodynamischen Gleichgewichtes zu erzeugen als auch
solche, die Anpassungen an vorgegebene Ungleichgewichtssituationen
bedeuten.
Claims (29)
1. Verfahren zum Aufbringen einer Hülle auf Templatpartikel umfassend
die Schritte:
- a) Bereitstellen einer Dispersion von Templatpartikeln geeigneter Größe in einer salzhaltigen Flüssigphase, die zur Bildung der Hülle erforderliche Komponenten in gelöster Form enthält, und
- b) Präzipitieren der Komponenten aus der Flüssigphase auf die Templatpartikel unter solchen Bedingungen, dass eine Hülle mit einer Dicke von 1 bis 100 nm um die Templatpartikel erzeugt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Templatpartikel ausgewählt werden aus festen, flüssigen,
flüssig-kristallinen und gasförmigen Partikeln.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Templatpartikel aus Partikeln mit einem Durchmesser von bis
zu 50 µm, insbesondere bis zu 10 µm ausgewählt werden.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Templatpartikel einen Wirkstoff enthalten.
5. Verfahren nach Anspruch 4,
dadurch gekennzeichnet,
dass der Wirkstoff ausgewählt wird aus Katalysatoren, insbesondere
Enzymen, Nanopartikeln, pharmazeutischen Wirkstoffen, Sensormole
külen, Kristallen, Polymeren und Gasen.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet,
dass hohle Zellwandpartikel gewinnbar von Hefen oder anderen
einzelligen oder mehrzelligen zellwandhaltigen Lebewesen oder hohle
Pollenwandpartikel als Template verwendet werden.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3 oder 6,
dadurch gekennzeichnet,
dass als Templatpartikel lösliche Partikel verwendet werden.
8. Verfahren nach Anspruch 7,
dadurch gekennzeichnet,
dass als lösliche Partikel teilvernetzte Melamin-Formaldehyd-Partikel
oder biologische Partikel wie etwa Zellen verwendet werden.
9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass die zur Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten zumindest
einen Polyelektrolyten umfassen.
10. Verfahren nach Anspruch 9,
dadurch gekennzeichnet,
dass die zur Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten zwei
entgegengesetzt geladene Polyelektrolyten umfassen.
11. Verfahren nach Anspruch 9,
dadurch gekennzeichnet,
dass die zur Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten ein
polyvalentes niedermolekulares Kation und einen negativ geladenen
Polyelektrolyten umfassen.
12. Verfahren nach Anspruch 11,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein di- oder trivalentes niedermolekulares Kation verwendet
wird.
13. Verfahren nach Anspruch 9,
dadurch gekennzeichnet,
dass die zur Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten ein
polyvalentes niedermolekulares Anion und einen positiv geladenen
Polyelektrolyten umfassen.
14. Verfahren nach Anspruch 13,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein di- oder trivalentes niedermolekulares Anion verwendet wird.
15. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass die zur Bildung der Hülle erforderlichen Komponenten zumindest
ein Makromolekül umfassen.
16. Verfahren nach Anspruch 15,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein Biopolymer verwendet wird.
17. Verfahren nach Anspruch 15,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein Gemisch aus makromolekularen und niedermolekularen
biologischen Zellsubstanzen verwendet wird.
18. Verfahren nach Anspruch 15,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein Gemisch aus makromolekularen und niedermolekularen
abiogenen Substanzen verwendet wird.
19. Verfahren nach Anspruch 15,
dadurch gekennzeichnet,
dass ein Gemisch aus makromolekularen und niedermolekularen
biogenen und abiogenen Substanzen verwendet wird.
20. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 19,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Präzipitieren gemäß Schritt (b) die Zugabe einer Kom
ponente der Hülle zur Flüssigphase umfasst.
21. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 19,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Präzipitieren gemäß Schritt (b) eine die Präzipitation der
Komponenten der Hülle bewirkende Veränderung der Flüssigphase
umfasst.
22. Verfahren nach Anspruch 21,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Veränderung der Flüssigphase eine Veränderung des pH-Werts
oder/und eine Veränderung der Zusammensetzung der
Flüssigphase umfasst.
23. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 19,
dadurch gekennzeichnet,
dass das Zusammenbringen der flüssigen salzhaltigen Hüllphase mit
den Templaten die Systembedingungen derart verändert, dass ohne
weitere äußere Stimulation mit Ausnahme der permanenten Durch
mischung spontan der Aufbau von Hüllen erfolgt, die nach gegeben
enfalls erfolgter Auflösung der Template intakt bleiben.
24. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, weiterhin
umfassend die Durchführung von zumindest einem zusätzlichen
Beschichtungsschritt vor oder/und nach dem Präzipitationsschritt.
25. Verfahren nach Anspruch 24,
dadurch gekennzeichnet,
dass der zusätzliche Beschichtungsschritt das Aufbringen einer
Lipidschicht oder/und das schichtweise Aufbringen eines Polyelek
trolyten umfasst.
26. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, weiterhin
umfassend die Desintegration von löslichen Templatpartikeln.
27. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, weiterhin
umfassend eine zumindest teilweise Desintegration der Hülle.
28. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass eine Hülle mit einer Dicke von 1 bis 50 nm um die Templat
partikel erzeugt wird.
29. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet,
dass eine Hülle mit einer Dicke von 5 bis 30 nm um die Templat
partikel erzeugt wird.
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---|---|---|---|
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DE (1) | DE10037707A1 (de) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10127526A1 (de) * | 2001-05-31 | 2002-12-12 | Novosom Ag | Verfahren zur Herstellung und Auflösung von Nano- und Mikrokapseln |
WO2009016091A1 (en) * | 2007-08-01 | 2009-02-05 | Unilever Plc | Coated particles |
US8187583B2 (en) | 2009-01-30 | 2012-05-29 | Conopco, Inc. | Oil-in-water emulsions |
-
2000
- 2000-08-02 DE DE2000137707 patent/DE10037707A1/de not_active Withdrawn
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---|---|---|---|---|
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