CZ307768B6 - 2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci - Google Patents

2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci Download PDF

Info

Publication number
CZ307768B6
CZ307768B6 CZ2016-682A CZ2016682A CZ307768B6 CZ 307768 B6 CZ307768 B6 CZ 307768B6 CZ 2016682 A CZ2016682 A CZ 2016682A CZ 307768 B6 CZ307768 B6 CZ 307768B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
alkyl
fluorescence
dimethinium
lysosomes
salt
Prior art date
Application number
CZ2016-682A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2016682A3 (cs
Inventor
Tomáš BŘÍZA
Silvie Rimpelová
Martin HavlĂ­k
Zdeněk Kejík
Robert KAPLÁNEK
Milan Jakubek
Jarmila KRÁLOVÁ
Tomáš Ruml
Aleš Benda
Pavel Martásek
Vladimír KRÁL
Original Assignee
Univerzita Karlova
Vysoká škola chemicko-technologická v Praze
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univerzita Karlova, Vysoká škola chemicko-technologická v Praze filed Critical Univerzita Karlova
Priority to CZ2016-682A priority Critical patent/CZ307768B6/cs
Publication of CZ2016682A3 publication Critical patent/CZ2016682A3/cs
Publication of CZ307768B6 publication Critical patent/CZ307768B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D277/00Heterocyclic compounds containing 1,3-thiazole or hydrogenated 1,3-thiazole rings
    • C07D277/60Heterocyclic compounds containing 1,3-thiazole or hydrogenated 1,3-thiazole rings condensed with carbocyclic rings or ring systems
    • C07D277/84Naphthothiazoles
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D277/00Heterocyclic compounds containing 1,3-thiazole or hydrogenated 1,3-thiazole rings
    • C07D277/60Heterocyclic compounds containing 1,3-thiazole or hydrogenated 1,3-thiazole rings condensed with carbocyclic rings or ring systems
    • C07D277/62Benzothiazoles
    • C07D277/64Benzothiazoles with only hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals attached in position 2
    • C07D277/66Benzothiazoles with only hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals attached in position 2 with aromatic rings or ring systems directly attached in position 2
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5076Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving cell organelles, e.g. Golgi complex, endoplasmic reticulum
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5076Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving cell organelles, e.g. Golgi complex, endoplasmic reticulum
    • G01N33/5079Mitochondria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C09DYES; PAINTS; POLISHES; NATURAL RESINS; ADHESIVES; COMPOSITIONS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; APPLICATIONS OF MATERIALS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR
    • C09BORGANIC DYES OR CLOSELY-RELATED COMPOUNDS FOR PRODUCING DYES, e.g. PIGMENTS; MORDANTS; LAKES
    • C09B23/00Methine or polymethine dyes, e.g. cyanine dyes
    • C09B23/16Methine or polymethine dyes, e.g. cyanine dyes the polymethine chain containing hetero atoms
    • C09B23/162Methine or polymethine dyes, e.g. cyanine dyes the polymethine chain containing hetero atoms only nitrogen atoms
    • C09B23/166Methine or polymethine dyes, e.g. cyanine dyes the polymethine chain containing hetero atoms only nitrogen atoms containing two or more nitrogen atoms

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

2-β-Anilidovinyl-N-alkyl-heteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci2-β-Anilidovinyl-N-alkyl-heteroaromatická dimethiniová sůl obecného vzorce I a II. Tyto sloučeniny mohou být využity jako duální proby pro zobrazování jak mitochondrií, tak lysozomů zároveň, zejména ve fluorescenční mikroskopii.

Description

Oblast techniky
Vynález se týká použití systémů založených na 2-P-anilidovinyl-N-alkylheteroaromatických solích (dimethiniových solích) obecného vzorce I a II. Tyto systémy lze využít v oblasti selektivní intracelulární lokalizace. Pomocí těchto systémů lze selektivně vizualizovat jak mitochondrie, tak lysozomy zároveň.
Dosavadní stav techniky
Intracelulární fluorescenční proby pro vizualizaci buněčných organel pomocí fluorescenční mikroskopie jsou považovány za velmi silný nástroj při získávání informací o vlastnostech a chování komplexních biologických systémů na buněčné úrovni (Stephens, D. J.; Allan, V. J. (2003) Light microscopy techniques fór life cell imaging. Science 300, 82-86.; Chalfie, M.; Tu, Y; Euskirchen, G.; Ward, W. W.; Prasher D. C. (1994) Green fluorescent protein as a markér far gene expression. Science 263, 802-805). Existují dvě hlavní skupiny prob. První skupina zahrnuje malé molekuly - chemické struktury s požadovanými vlastnostmi (Stephens, D. J.; Allan, V. J. (2003) Light microscopy techniques far life cell imaging. Science 300, 82-86), ta druhá je založena na využití specificky cílených fluorescenčních proteinů (Chalfie, M.; Tu, Y; Euskirchen, G.; Ward, W. W.; Prasher D. C. (1994) Green fluorescent protein as a markér far gene expression. Science 263, 802-805). Druhá skupina má bohužel jistá omezení, jako je například nižší intenzita fluorescence, nízká fotostabilita, častá cytotoxicita, fototoxicita a neselektivní lokalizace v jádře. Pozornost současného výzkumu se soustředí především na první skupinu látek, tedy jednoduché chemické struktury využitelné ve fluorescenční mikroskopii pro zobrazování v živých buňkách in vitro anebo i celých organismech in vivo. Tato oblast zažívá v posledních letech nebývalý rozmach (Ueno, T.; Nagano, T. (2011) Fluorescentprobes far sensing and imaging. Nat. Methods 8, 642-645.; Spenst, P.; Wírthner, F. (2015) A perylene bisimide cyclophane as a “Turn-On” and “Turn-Off” fluorescence probe. Angew. Chem. 127, 1030310306).
Jednou z velice zajímavých, slibných a dosud téměř neprozkoumaných oblastí je vývoj a využití fluorescenčních prob nazývaných „duální proby“. Mezi tyto látky se řadí zatím pouze několik málo struktur vykazujících duální charakter. Jedná se v podstatě o to, že daná látka vykazuje dvě rozdílná fluorescenčně emisní maxima (separované excitované elektronové stavy) v různých prostředích (Brancato, G.; Signore, G.; Neyroz, P.; Polli, D.; Cerullo, G.; Abbandonato, G.; Nucara, L.; Barone, V.; Beltram, F.; Bizzarri, R. (2015) Duál fluorescence through Kasha's rule breaking: an unconventional photomechanism far intracellular probe design. J. Phys. Chem. B 119, 6144-6154). Jedním z prvních fluorescenčních barviv vykazujících duální charakter byl azulenový derivát (Eber, G.; Grůneis, F.; Schneider, S.; Dorr, F. (1974) Duál fluorescence emission of azulene derivatives in solution. Chem. Phys. Lett. 29, 397-404), jehož syntéza a vlastnosti byly popsány již v roce 1974. Později byly objeveny další látky s těmito vlastnostmi jako například pyryliové sole (Nikolov, P.; Metzov, S. (2000) Peculiarities in the photophysical properties of some 6-styryl-2,4-disubstituted pyrylium salts. J. Photochem. Photobiol. A 135, 13-25), antraceny (Muralidharan, S.; Yates, K. (1992) Bichromophoric anthracene derivatives with duál absorptive and emissive states. Chem. Phys. Lett. 192, 571-575), naftalimidové deriváty (Nandhikonda, P.; Heagy, M. D. (2010) Duál fluorescent N-aryl-2,3- naphthalimides: applications in ratiometric DNA detection and white organic light-emitting devices. Org. Lett. 12, 4796-4799) a kumariny (Brancato, G.; Signore, G.; Neyroz, P.; Polli, D.; Cerullo, G.; Abbandonato, G.; Nucara, L.; Barone, V.; Beltram, F.; Bizzarri, R. (2015) Duál fluorescence through Kashďs rule breaking: an unconventional photomechanism for intracellular probe design. J. Phys. Chem. B 119, 6144-6154).
- 1 CZ 307768 B6
Rovnováha mezi jednotlivými fluorescenčními maximy fluoroforu silně závisí na jeho okolním prostředí (chemické struktury), jako je například použité rozpouštědlo, teplota, pH, viskozita, polarita, tvorba vodíkových vazeb, nábojová hustota a strukturní motiv cílového vazebného místa. (Spenst, P.; Wírthner, F. (2015) A perylene bisimide cyclophane as a “Turn-On” and “Turn-Off”fluorescenceprobe. Angew. Chem. 127, 10303-10306; Lippert, E.; Luder, W.; Moll, F.; Nagele, W.; Boos, H.; Prigge, H.; Seibold-Blankenstein, I. (1961) Umwandlung von elektronenanregungsenergie. Angew. Chem. 73, 695-706. Bilokin’ M. D.; Shvadchak, V. V.; Yushchenko, D. A.; Duportail, G.; Mély, Y.; Pivovarenko, V. G. (2009) Dual-fluorescence probe of environment basicity (hydrogen bond accepting ability) displaying no sensitivity to polarity J Fluoresc 19, 545-553; Motyka, K.; Vaňková, B.; Hlaváč, J.; Šoural M.; Funk, P. (2011) Purine scaffold effect on fluorescence properties of purine-hydroxyquinolinone bisheterocycles. J Fluoresc 21, 2207-2212; Richter, C.; Schneider, C.; Quick, Μ. T.; Volz, P.; Mahrwald, R.; Hughes, J.; Dick, B.; Alexiev, U., Ernsting, N. P. (2015) Dual-fluorescence pH probe for biolabelling. Phys. Chem. Chem. Phys. 17, 30590-30597; Reers, M.; Smiley, S. T.; MottolaHartshorn, C.; Chen, A.; Fin, M.; Chen, L. B. (1995). Mitochondrial membrane potential monitored by JC-1 dye. Methods Enzymol. 260, 406-417; Okamoto, A.; Tainaka, K.; Nishiza, K.; Saito I. (2005) Monitoring DNA structures by duál fluorescence of pyrene derivatives J. Am. Chem. Soc. 127, 13128-1312; Sun, X.; Liu, P.; Wu L.; Liu B. (2015) Graphene-quantum-dotsbased ratiometric fluorescent probe for visual detection of copper ion. Analyst 140, 6742-6247; Haidekker, M. A.; Theodorakis, E. A. (2010) Environment-sensitive behavior of fluorescent molecular rotors. J. Biol. Eng. 4, 11.
Aplikace již známých duálních prob zahrnuje například značení proteinů (Richter, C.; Schneider, C.; Quick, Μ. T.; Volz, P.; Mahrwald, R.; Hughes, J.; Dick, B.; Alexiev, U., Ernsting, N. P. (2015) Dual-fluorescence pH probe for bio-labelling. Phys. Chem. Chem. Phys. 17, 3059030597), biokonjugáty (Zhang, Z.; Kao, J.; D’Avignon, A.; Achilefu, S. (2010) Understanding dichromic fluorescence manifested in certain ICG analogs. Pure Appl Chem. 307-311), měření membránového potenciálu pomocí 3-hydroxyflavinových prob PPZ8 a F8N1S) (Shynkar, V. V.; Klymchenko, A. S.; Duportail, G.; Demchenko, A. P.; Mely, Y. (2005) Two-color fluorescent probes for imaging the dipóle potential of cell plasma membranes. Bioch. Biophys. Acta 1712, 128-136)., měření mitochondriálního membránového potenciálu probou JC-1 (Reers, M.; Smiley, S. T.; Mottola-Hartshorn, C.; Chen, A.; Lín, M.; Chen, L. B. (1995). Mitochondrial membrane potential monitored by JC-1 dye. Methods Enzymol. 260, 406-417) a MitoCaptureTR (Plásek, J.; Sigler, K. (1996) Slow fluorescent indicators of membrane potential: a survey of different approaches to probe response analysis. J Photochem Photobiol B. 33, 101-124), pH stanovení za použití benzo[c]xanthenového barviva SNAFL-1 (Brook, P. F.; Lawry, J.; Cooke, I. D.; Barratt, C. L. (1996) Measurement of intracellular pH in human spermaloz.oa by flow cytometry with the benzo[c]xanthene dye SNAFL-1: a novel, single excitation, duál emission, molecular probe. Mol Hum Reprod. 2, 18-25), 5- a 6-karboxynaftofluoresceinu v polyakrylamidovém gelu (Song, A.; Parus, S.; Kopelman, R. (1997) High-performance fiber-optic pH microsensors for practical physiological measurements using a dual-emission sensitive dye. Anal. Chem. 69, 863-867), akridinové oranže (Millot, C.; Millot, J. M.; Morjani, H.; Desplaces, A.; Manfait, M. (1997) Characterization of acidic vesicles in multidrug-resistant and sensitive cancer cells by aeridine orange staining and confocal microspectrofluorometry. J Histochem Cytochem. 45, 1255-1264), xanto-BODIPY připojeného ke glykolované karboxylové kyselině (Han, J.; Loudet, A.; Barhoumi, R.; Burghardt, R. C.; Burgess, K. (2009) A ratiometric pH reportér for imaging protein-dye conjugates in living cells. J Am Chem Soc. 131, 1642-1643) a IA-SNARF (Richter, C.; Schneider, C.; Quick, Μ. T.; Volz, P.; Mahrwald, R.; Hughes, J.; Dick, B.; Alexiev, U., Ernsting, N. P. (2015) Dual-fluorescence pH probe for bio-labelling. Phys. Chem. Chem. Phys. 17, 30590-30597). Dále lze zmínit monitorování intracelulámí viskozity pomocí prob založených na antracenu a anilinu (Liu, T.; Liu, X.; Spring, D. R.; Qian, X.; Cui, J.; Xu, Z. (2014) Quantitatively mapping cellular viscosity with detailed organelle information via a designed PET fluorescent probe. Sci Rep. 4, 5418) a stanovení glutationu a cysteinu/homocysteinu (Yang, X.F.; Huang, Q.; Zhong, Y.; Li, Z.; Li, H.; Lowry, M.; Escobedo, J. O.; Strongin, R. M. (2014) A
-2CZ 307768 B6 duál emission fluorescent probe enables simultaneous detection of glutathione and cysteine/homocysteine. Chem Sci 5, 2177-2183). Duální proby jsou využívány také pro stanovení koncentrací bioanalytů přímo v živých buňkách: např. Zn2+ pomocí fluoresceinu/naftofluoresceinu (Chang, C. J.; Jaworski, J.; Nolan, E. M.; Sheng, M.; Lippard, S. J. (2004) A tautomeric zinc sensor for ratiometric fluorescence imaging: application to nitric oxide-induced release of intracellular zinc. Proč Nati Acad Sci USA. 101, 1129-1134) a 4metyl-2-(2-pyridyl)-5-(2-thiofenyl)thiazolu) (Zheng, Μ. H.; Hu, X.; Yang Μ. Y.; Jin, J. Y. (2015) Ratiometically fluorescent sensing of Zn(II) based on dual-emission of 2-pyridylthiazole derivatives. J Fluoresc 25, 1831-1834), Cu2+ (Lys-Cu založeném na 1,8-naftalimidu a rhodaminu B) (Ren, M.; Deng, B.; Wang, J.-Y.; Liu, Z.-R.; Lín, W. (2015) A dual-emission fluorescenceenhancedprobe for imaging copper(II) ions in lysosomes. J. Mater. Chem. B 3, 6746-6752), Cd2+ (pomocí BODIPY proby), (Peng, X.; Du, J.; Fan, J.; Wang, J.; Wu, Y.; Zhao, J.; Sun, S.; Xu, T. (2007) A selective fluorescent sensor for imaging Cd2+ in living cells. J. Am. Chem. Soc. 129, 1500-1501), Pb2+/Fe2+/Zn2+ (benzimidazolové rutheniové komplexy) (Kumar, A.; Singh, A. K.; Gupta, T. (2013) A stimuli-responsive smartprobe for selective monitoring of multiple-cations via differential analyses. Analyst 138, 3356-3359) a Hg2+/Fe3+ (rhodaminové-azacrown etherové konjugáty) (Zhang, X.; Shiraishi, Y.; Hirai, T. (2008) Fe(III)- and Hg(II)-selective duál channel fluorescence of a rhodamine-azacrown ether conjugate. Tetrahedron Eett 49, 4178-4181).
Mezi slibné aplikace duálních fluorescenčních prob patří intracelulámí vizualizace dvou rozdílných buněčných organel jednou strukturou, kdy každá z organel je detekována při jiné vlnové délce. V současné době je situace taková, že jedna proba selektivně vizualizuje (barví) jednu organelu. Takovýto typ duálních prob byl popsán zatím v jediném případě, publikovaném v roce 2011 Eoudetem et al. (Eoudet, A.; Ueno, Y.; Wu, L.; Jose, J.; Barhoumi, R.; Burghardt, R.; Burgess, K. (2011) Organelle-selective energy transfer: a fluorescent indicator of intracellular environment. Bioorg Med Chem Lett. 21, 1849-1851). Jedná se o konjugát kationického cyaninového barviva s BODIPY pro vizualizaci lysozomů (zelená fluorescence) a mitochondrií (červená fluorescence). Další práce popisující duální lokalizaci malé organické proby je z roku 2015 od Brancata et al. (Brancato, G.; Signore, G.; Neyroz, P.; Polli, D.; Cerullo, G.; Abbandonato, G.; Nucara, L.; Barone, V.; Beltram, F.; Bizzarri, R. (2015) Duál fluorescence through Kashďs rule breaking: an unconventional photomechanism for intracellular probe design. J. Phys. Chem. B 119, 6144-6154), kde popisují, že látka 3-(benzo[d]thiazol-2-yl)-6,7dimethoxy-2H-chromen-2-one-4-karbonitril vykazuje duální emisi, ale autoři neuvádějí, v jakých buněčných organelách se látka nachází, což snižuje výpovědní hodnotu dané práce.
Podstata vynálezu
Předmětem vynálezu jsou dimethiniové sole založené na 2-P-anilidovinyl-Nalkylheteroaromátech obecné struktury I a II a jejich použití. Tyto látky jsou funkční pro použití v oblasti selektivní intracelulámí lokalizace jako duální proby pro specifickou vizualizaci lysozomů a mitochondrií. Pomocí těchto fluorescenčních prob lze selektivně detekovat lysozomy jako organely se zelenou (respektive tyrkysovou) fluorescencí a mitochondrie jako organely s červenou fluorescencí. Barvení mitochondrií je možné kombinovat se značením dalších buněčných organel, jako je např. endoplazmatické retikulum anebo Golgiho komplex. Tyto proby jsou snadno připravitelné, kompatibilní s živými systémy, selektivní a mají požadované vlastnosti pro to, aby našly uplatnění ve fluorescenční mikroskopii pro biologické studie jako duální proby.
-3 CZ 307768 B6
R
R
Předmětem vynálezu je 2-P-anilidovinyl-N-alkyl-heteroaromatická dimethiniová sůl pro použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci, obecného vzorce I
O ; (>R Y X (I)
kde R je H, F, Cl, Br, I, OH, alkyl Cl až C12, glykolový řetězec s počtem 1 až 8 glykolových (OCH2CH2-) opakujících se jednotek končících O-alkyl substituentem Cl až C12 nebo -OH skupinou, alkyl Cl až C8 sulfonová kyselina nebo její odpovídající lithné nebo sodné, nebo draselné, nebo česné, nebo rubidné soli, allyl, propargyl, benzyl, nebo jejich kombinace;
kde Y je alkyl Cl až C18;
kde X je acetát, bromid, fluorid, fosfát, hexafluorfosfát, hydrogensulfát, chlorid, chloristan, jodid, mravenčan, nitrát, sulfát, tetrafluorborát;
a obecného vzorce II
R γΑ-··γ ΗΟΑΥ^'Υ
R Y (II) kde R, Y a X mají výše uvedený význam.
Fluorescenční vlastnosti těchto prob jsou určovány aromatickým systémem, substituenty R, Y neovlivňují fluorescenci, proto je možná jejich poměrně značná variabilita. Bylo zjištěno, že dimethiniové soli je možné inkubovat do koncentrace 500 nM s buněčnými liniemi, s výhodou s buněčnými liniemi U-2 OS, HeLa, MCF-7, HaCaT, HEK293T a 4T1. Pro dosažení co nejúčinnější vizualizace mitochondrií a lysozomů a minimálního nespecifického barvení se ukázala 100 až 200 nM koncentrace dimethiniových solí. Přípravy prob založených na 2-βanilidovinyl-N-alkyl-heteroaromátech jako duálních prob pro zobrazování lysozomů a mitochondrií jsou doloženy následujícími příklady.
Dále jsou předmětem vynálezu následující sloučeniny:
2-P-anilidovinyl-N-alkyl-heteroaromatická dimethiniová sůl obecného vzorce I
-4CZ 307768 B6
(I) nebo obecného vzorce II
NH (Π) kde R je H, F, Cl, Br, I, OH, alkyl Cl až C12, glykolový řetězec s počtem 1 až 8 glykolových (OCH2CH2-) opakujících se jednotek končící O-alkyl substituentem Cl až C12 nebo -OH skupinou, alkyl Cl až C8 sulfonová kyselina nebo odpovídající její lithné nebo sodné, nebo draselné, nebo česné, nebo rubidné soli, allyl, propargyl, benzyl, nebo jejich kombinace;
kde Y je alkyl Cl až C18 vyjma C2, pokud R je H;
kde X je acetát, bromid, fluorid, fosfát, hexafluorfosfát, hydrogensulfát, chlorid, chloristan, jodid, mravenčan, nitrát, sulfát, tetrafluorborát.
Objasnění výkresů
Obr. 1.: Lokalizace látky 1 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z karcinomu děložního čípku (HeLa). Panel mikroskopických snímků: A, E) průchozí světlo; B, F) látka 1 v mitochondriích HeLa buněk (červená emise fluorescence); C, G) látka 1 v lysozomech buněk HeLa (tyrkysová emise fluorescence); D, H) překryv snímků.
Obr. 2.: Lokalizace látky 2 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z karcinomu děložního čípku (HeLa). Panel mikroskopických snímků: A) průchozí světlo; B) látka 2 v mitochondriích HeLa buněk (červená emise fluorescence), C) látka 2 v lysozomech buněk HeLa (tyrkysová emise fluorescence), D) překryv snímků.
Obr. 3.: Lokalizace látky 1 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z osteosarkomu (U-2 OS). Panel mikroskopických snímků: A) procházející světlo; B) látka 1 v mitochondriích U-2 OS buněk (červená emise fluorescence), C) látka 1 v lysozomech buněk U-2 OS (tyrkysová emise fluorescence), D) překryv snímků.
Obr. 4.: Kolokalizace dvou mitochondriálních sond v mitochondriích. Lokalizace látky 1 v mitochondriích (B) a lysozomech (C) buněk odvozených z karcinomu děložního čípku (HeLa, snímek A v procházejícím světle), mitochondriální sonda MitoTracker Green™ v mitochondriích (D) a překryv snímků (E).
Obr. 5.: Kolokalizace látky 1 a lysozomální sondy LysoTracker® Blue v lysosomech.
Lokalizace látky 1 v lysozomech (1), lokalizace lysozomální sondy LysoTracker® Blue (LT-B) v lysozomech a překryv snímků. Panel mikroskopických snímků buněk 4T1.
Obr 6.: Lokalizace látky 2 a lysozomální sondy LysoTracker® Bluev lysosomech. Lokalizace látky 2 v lysozomech (2), lokalizace lysozomální sondy LysoTracker® Blue (LT-B) v lysozomech a překryv snímků. Panel mikroskopických snímků buněk 4T1.
Obr. 7.: Barvení mitochondrií, lysozomů a jader živých buněk. Lokalizace látky 1 v mitochondriích (B) a lysozomech (C) buněk odvozených z osteosarkomu (U-2 OS), snímek (A) v procházejícím světle, překryv snímků B a C (D) a překryv snímku D a barvením jader buněk U-2 OS pomocí DAPI (E).
Obr. 8.: Složení Dulbeccem modifikovaného Eaglova média s obsahem glukózy.
Příklady uskutečnění vynálezu
Příklad 1
Příprava a charakterizace látky 1 spadající pod obecný vzorec I.
Látka 1; Kvartemí heteroaromatická sůl, 2-methyl-3-propylnaftho[2,l-ď|thiazol-3-ium jodid (410 mg, 1,11 mmol) a ((lE)-2-fenyl-2-azavinyl)fenylamin (220 mg, 1,12 mmol) byly smíchány a taveny při 160 °C. Produkt byl získán jako hydrojodid, výtěžek 403 mg, 77 %. Charakterizace látky pomocí NMR je následující:
H NMR (500 MHz, DMSO) δ: 11.39 (s, 1H), 8.74 (d, J = 11.3 Hz, 1H), 8.28 (d, J =9.0 Hz, 1H), 8.18 (d, J = 8.13 Hz, 1H), 8.14 (d, J = 9.05Hz, 1H), 7.99 (d, J = 8.1 Hz, 1H), 7.78 (t, J = 7.3 Hz, 1H), 7.68 (t, J = 7.5 Hz, 1H), 7.46 (m, 4H), 7.21 (t, J = 6.1 Hz, 1H), 6.42 (d, J = 12.1 Hz, 1H), 4.47 (t, J = 8.0 Hz, 2H), 1.87 (sextet, J = 7.1 Hz, 2H), 1.04 (t, J = 7.1 Hz, 3H). 13C-NMR (126 MHz, DMSO) δ: 168.4, 149.2, 139.4, 139.2, 130.9, 130.3, 130.1, 129.6, 129.3, 127.7, 126.5, 125.5, 123.6, 121.9, 117.5, 113.7, 90.3, 49.0, 21.5, 11.2.; HRMS: vypočítáno pro C22H21N2S = 345.1420, nalezeno: 345.1427.
Struktura látky 1, dimethiniové sole 1, (E)- 2-(2-(fenylamino)eten-l-yl)-3-propylnaftho[2,lď|thiazol-3-ium jodid
Fluorescenční maxima látky 1 dokládá tabulka 1.
Tabulka 1. Fluorescenční excitační a fluorescenční emisní maxima látky 1 v prostředí methanolu (MeOH) a lmM fosfátového pufiru (PBS, pH 7,34).
Látka Prostředí Lxmax11 [nm] kemmax^ [nm]
1 MeOH 450 481
PBS 448 486 a 626
[a] Xexmax - vlnová délka maxima fluorescence excitačního spektra [b] Xemmax - vlnová délka maxima fluorescence emisního spektra
Příklad 2
Příprava a charakterizace látky 2 spadající pod obecný vzorec II.
Látka 2; Kvartemí heteroaromatická sůl, 2-methyl-3-propyl-5-hydroxy-benzo[ď|thiazol-3-ium jodid (372 mg, 1,11 mmol) a ((lE)-2-fenyl-2-azavinyl)fenylamin (220 mg, 1,12 mmol) byly smíchány a taveny při 160 °C. Produkt byl získán jako hydrojodid, výtěžek 341 mg, 70 %. Charakterizace látky pomocí NMR je následující:
H NMR (500 MHz, DMSO) δ 11.30 (s, 1H), 10.27 (s, 1H), 8.59 (s, 1H), 7.89 (d, J = 8.7 Hz, 12H), 7.43 (d, J = 4.0 Hz, 4H), 7.26 (d, J = 1.7 Hz, 1H), 7.19 (m, 1H), 6.99 (dd, J = 8.7, 2.0 Hz, 1H), 6.34 (d, J = 12.2 Hz, 1H), 4.30 (t, J = 7.5 Hz, 2H), 1.80 (sextet, J = 7.2 Hz, 2H), 1.00 (t, J = 7.3 Hz, 3H). 13C-NMR (126 MHz, DMSO) δ 169.75, 158.29, 148.79, 142.04, 139.02, 129.72, 124.83, 123.89, 117.16, 114.99, 114.59, 100.83, 89.95, 48.19, 20.63, 10.95.; HRMS: vypočítáno pro C18H19N2OS = 311.1213, nalezeno: 311.1218.
Struktura látky 2, dimethiniové sole 2, (E)-5-hydroxy-2-(2-(fenylamino)eten-l-yl)-3-propylbenzo[í/]thiazol-3-ium jodid
Fluorescenční maxima látky 2 dokládá tabulka 2.
Tabulka 2. Fluorescenční excitační a fluorescenční emisní maxima látky 2 v prostředí methanolu (MeOH) a lmM fosfátového pufiru (PBS, pH 7,34).
Látka Prostředí kexmax[í>] [nm] kemrnax^ [nm]
2 MeOH 426 484
PBS 425 474 a 498
[a] Xexmax - vlnová délka maxima fluorescence excitačního spektra [b] Xemmax - vlnová délka maxima fluorescence emisního spektra
Příklad 3
Selektivní lokalizace látek 1 a 2 v lysozomech (tyrkysová emise fluorescence) a v mitochondriích (červená emise fluorescence)
Příprava zásobního roztoku
Vzhledem k nízké rozpustnosti látek 1 a 2 ve vodě byly sloučeniny rozpuštěny v dimetylsulfoxidu, dimetylformamidu, methanolu a ethanolu. Koncentrace zásobních roztoků, které byly uchovávány ve tmě při -20 °C, byla 10 mM. Před použitím byly roztoky za nepřístupu světla temperovány na laboratorní teplotu (cca 23 °C) a řádně promíchány.
Příprava buněk pro značení mitochondrií
Buňky linie HeLa byly kultivovány v DMEM médiu (Dulbeccem modifikované Eaglovo médium s vysokým obsahem glukózy - složení viz obrázek 8 - D5671, Sigma USA) doplněném o 10% fetální bovinní sérum (FBS, Thermo Scientific, USA). Buňky byly udržovány v logaritmické fázi růstu a kultivovány za standardních podmínek (37 °C, 5% CO2, 95% vlhkosti). Pro mikroskopické experimenty bylo inokulováno 100 000 buněk na kultivační misky se skleněným dnem (průměr 35 mm, MatTek, USA). Buňky byly inkubovány za standardních podmínek po dobu 16 h.
Buňky odvozené od linie osteosarkomu (U-2 OS) byly kultivovány v DMEM médiu (Dulbeccem modifikované Eaglovo médium s obsahem glukózy - složení viz obrázek 8 - D5546, Sigma USA) doplněném o 10% fetální bovinní sérum (FBS, Thermo Scientific, USA). Buňky byly udržovány v logaritmické fázi růstu a kultivovány za standardních podmínek (37 °C, 5% CO2, 95% vlhkosti). Pro mikroskopické experimenty bylo inokulováno 100 000 buněk na kultivační misky se skleněným dnem (průměr 35 mm, MatTek, USA). Buňky byly inkubovány za standardních podmínek po dobu 24 h
Buňky odvozené od buněčné linie 4T1 byly kultivovány v DMEM médiu (Dulbeccem modifikované Eaglovo médium s vysokým obsahem glukózy - složení viz obrázek 8 - D5796, Sigma USA) doplněném o 10% fetální bovinní sérum (FBS, Thermo Scientific, USA). Buňky byly udržovány v logaritmické fázi růstu a kultivovány za standardních podmínek (37 °C, 5% CO2, 95% vlhkosti). Pro mikroskopické experimenty bylo inokulováno 100 000 buněk na kultivační misky se skleněným dnem (průměr 35 mm, MatTek, USA). Buňky byly inkubovány za standardních podmínek po dobu 16 h.
Barvení mitochondrií a lysozomů v živých buňkách pomocí látek 1 a 2
Dvě sady připravených Hela buněk a buněk linie U-2 OS podle popisu výše byly dvakrát omyty předehřátým (37 °C) fosfátovým pufrem (PBS; pH 7,4) a 10 min. inkubovány s dimethiniovou solí 1 nebo 2 ze zásobního roztoku dimethylsulfoxidu, o koncentraci 200 nM v kompletním kultivačním médiu. Po barvení byly buňky dvakrát omyty fosfátovým pufrem a inkubovány v čerstvém kompletním médiu bez fenolové červeně.
Fluorescenční mikroskopie
Buňky byly po inkubaci s dimethiniovou solí 1 nebo 2 omyty fosfátovým pufrem a pozorovány pomocí inverzního fluorescenčního mikroskopu CellAR (Olympus, Japonsko) za použití 60x (numerická apertura 1,4), a lOOx imersního objektivu (Olympus, Japonsko). V závislosti na spektroskopických vlastnostech testované látky byl použit fluorescenční filtr TR1TC, Texas Red, RFP (pro mitochondrie) a FITC, CFP (pro lysozomy). Lokalizace dimethiniových solí v živých buňkách odvozených z buněčné linie HeLa a U-2 OS byla studována v reálném čase. Snímky z mikroskopu jsou zobrazeny na obrázcích 1, 2 a 3. Snímky z fluorescenčního mikroskopu ukazují lokalizaci látky 1 a 2 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z karcinomu děložního čípku (HeLa) a buněk linie U-2 OS. Snímky dokládají červenou emisní fluorescenci mitochondrií a tyrkysovou emisní fluorescenci lysozomů po použití látky 1 nebo látky 2.
Příklad 4
Kolokalizace látky 1 a mitochondriální sondy MitoTracker Green™ v mitochondriích
-8CZ 307768 B6
Buňky linie HeLa byly připraveny podle příkladu 3 a barveny roztokem dimethiniové sole 1, jak je popsáno v příkladu 3 ve formě zásobního roztoku s dimethylformamidem, o koncentraci v kultivačním médiu 150 nM. Po barvení byly buňky dvakrát omyty fosfátovým pufrem a barveny 120nM roztokem mitochondriální sondy MitoTracker Grccn™ (Thermo Scientific, USA) rozpuštěné v kompletním kultivačním médiu. Inkubace buněk probíhala za standardních kultivačních podmínek (37 °C, 5 % CO2, 95 % vlhkost) po dobu 10 min. Buňky byly dvakrát omyty fosfátovým pufrem a inkubovány s čerstvým kompletním médiem bez fenolové červeně a mikroskopovány.
Fluorescenční mikroskopie
HeLa buňky byly po inkubaci s dimethiniovou solí 1 a následném obarvení mitochondriální sondou MitoTracker Grccn™ podle postupu výše omyty fosfátovým pufrem a pozorovány pomocí inverzního fluorescenčního mikroskopu CellAR (Olympus, Japonsko) za použití 60x (numerická apertura 1,4), a lOOx imersního objektivu (Olympus, Japonsko). V závislosti na spektroskopických vlastnostech testované látky byl použit fluorescenční filtr TRITC, Texas Red, RFP (pro mitochondrie) a FITC, CFP (pro lysozomy). Lokalizace dimethiniových solí v živých buňkách odvozených z buněčné linie HeLa byla studována v reálném čase. Snímky z mikroskopu jsou zobrazeny na obrázku 4. Snímky z fluorescenčního mikroskopu ukazují kolokalizaci látky 1 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z karcinomu děložního čípku (HeLa) spolu s komerční mitochondriální sondou MitoTracker Grccn™. Snímky dokládají červenou emisní fluorescenci mitochondrií, tyrkysovou emisní fluorescenci lysozomů po použití látky 1 a zelenou emisní flourescenci mitochondriální sondy MitoTracker Grccn™. Po překryvu snímků je patrný i překryv lokalizace látky 1 a mitochondriální sondy.
Příklad 5
Kolokalizace látky 1 a lysozomální sondy LysoTracker® Blue DND-22 v lysosomech
4T1 buňky byly připraveny podle příkladu 3 a barveny roztokem dimethiniové sole 1, jak je popsáno v příkladu 3 ve formě zásobního roztoku s methanolem, o koncentraci v kultivačním médiu 300 nM po dobu 30 min. Po barvení byly buňky dvakrát omyty fosfátovým pufrem a barveny po dobu 30 min. 500nM roztokem sondy pro lysozomy LysoTracker® Blue DND-22 (Thermo Scientific, USA) rozpuštěné v kompletním médiu; buňky byly inkubovány za standardních kultivačních podmínek (37 °C, 5 % CO2, 95 % vlhkost). Poté byly buňky omyty fosfátovým pufrem a inkubovány v čerstvém kompletním kultivačním médiu bez fenolové červeně a mikroskopovány.
Fluorescenční mikroskopie
4T1 buňky byly po inkubaci s dimethiniovou solí 1 a následném obarvení lysozomální sondou LysoTracker® Blue podle postupu výše omyty fosfátovým pufrem a pozorovány pomocí inverzního fluorescenčního mikroskopu CellAR (Olympus, Japonsko) za použití 60x (numerická apertura 1,4), a lOOx imersního objektivu (Olympus, Japonsko). V závislosti na spektroskopických vlastnostech testované látky byl použit fluorescenční filtr FITC, CFP (pro lysozomy). Lokalizace dimethiniových solí v živých buňkách odvozených do buněčné linie 4T1 byla studována v reálném čase. Snímky z mikroskopu jsou zobrazeny na obrázku 6. Snímky z fluorescenčního mikroskopu ukazují kolokalizaci látky 1 v lysozomech buněk odvozených z buněčné linie 4T1 spolu s komerční lysozomální sondou LysoTracker® Blue. Snímky dokládají tyrkysovou emisní fluorescenci lysozomů po použití látky 1 a modrou emisní flourescenci lysozomální sondy LysoTracker® Blue. Po překryvu snímků je patrný i překryv lokalizace látky 1 a lysozomální sondy.
Příklad 6
-9CZ 307768 B6
Barvení mitochondrií, lysozomů a jader živých buněk pomocí látky 1 a jaderné sondy DAPI
U2-OS buňky byly připraveny podle příkladu 3 a barveny roztokem dimethiniové sole 1, jak je popsáno v příkladu 3 ve formě zásobního roztoku s ethanolem, o koncentraci v kultivačním médiu 100 nM. Po obarvení byly buňky dvakrát omyty fosfátovým pufrem a barveny 5 min. roztokem jaderné sondy 4,6'-diamidino-2-fenylindolu (DAPI, 5 pg/ml) v kompletním médiu. Buňky byly inkubovány za standardních kultivačních podmínek (37 °C, 5 % CO2, 95 % vlhkost). Poté byly buňky omyty fosfátovým pufrem a inkubovány v čerstvém kompletním kultivačním médiu bez fenolové červeně a mikroskopovány.
Fluorescenční mikroskopie
U2-OS buňky byly po inkubaci s dimethiniovou solí 1 a následném obarvení jadernou sondou DAPI podle postupu výše omyty fosfátovým pufrem a pozorovány pomocí inverzního fluorescenčního mikroskopu CellAR (Olympus, Japonsko) za použití 60x (numerická apertura 1,4), a lOOx imersního objektivu (Olympus, Japonsko). V závislosti na spektroskopických vlastnostech testované látky byl použit fluorescenční filtr TRITC, Texas Red, RFP (pro mitochondrie) a FITC, CFP (pro lysozomy). Lokalizace dimethiniových solí v živých buňkách odvozených z buněčné linie U-2 OS byla studována v reálném čase. Snímky z mikroskopu jsou zobrazeny na obrázku 7. Snímky z fluorescenčního mikroskopu ukazují kolokalizaci látky 1 v mitochondriích a lysozomech buněk odvozených z buněčné linie U-2 OS spolu s komerční jadernou sondou DAPI. Snímky dokládají červenou emisní fluorescenci mitochondrií, tyrkysovou emisní fluorescenci lysozomů po použití látky 1 a modrou emisní fluorescenci jaderné sondy DAPI. Po překryvu snímků jsou jasně viditelné jednotlivé organely.
Průmyslová využitelnost
2-P-Anilidovinyl-N-alkyl-heteroaromatické sole jsou využitelné jako prostředek pro fluorescenční mikroskopii. Jejich využití spočívá především v tom, že je lze použít jako duální proby pro selektivní značení jak lysozomů, tak i mitochondrií buněk, přičemž lysozomy jsou těmito látkami zbarvovány zeleně (respektive tyrkysové) a mitochondrie červeně.
PATENTOVÉ NÁROKY

Claims (3)

1. 2-P-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl obecného vzorce I (I) nebo obecného vzorce II
- 10CZ 307768 B6
R
HO (II) kde R je H, F, Cl, Br, I, OH, alkyl Cl až Cl2, glykolový řetězec s počtem 1 až 8 glykolových (-OCH2CH2-) opakujících se jednotek končící O-alkyl substituentem Cl až C12 nebo -OH skupinou, alkyl Cl až C8 sulfonová kyselina nebo odpovídající její lithné nebo sodné, nebo draselné, nebo česné, nebo rubidné soli, allyl, propargyl, benzyl, nebo jejich kombinace;
kde Y je alkyl Cl až C18 vyjma C2, pokud R je H;
kde X je acetát, bromid, fluorid, fosfát, hexafluorfosfát, hydrogensulfát, chlorid, chloristan, jodid, mravenčan, nitrát, sulfát, tetrafluorborát.
2. Použití 2-P-anilidovinyl-N-alkylheteroaromatické dimethiniové soli obecného vzorce I nebo II podle nároku 1 jako duální proby pro vizualizaci lysozomů a mitochondrií vedle sebe ve fluorescenční mikroskopii.
3. Použití 2-P-anilidovinyl-N-alkylheteroaromatické dimethiniové soli (I) kde R je Η, Y je alkyl C2, X je acetát, bromid, fluorid, fosfát, hexafluorfosfát, hydrogensulfát, chlorid, chloristan, jodid, mravenčan, nitrát, sulfát, tetrafluorborát jako duální proby pro vizualizaci lysozomů a mitochondrií vedle sebe ve fluorescenční mikroskopii.
CZ2016-682A 2016-11-02 2016-11-02 2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci CZ307768B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2016-682A CZ307768B6 (cs) 2016-11-02 2016-11-02 2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2016-682A CZ307768B6 (cs) 2016-11-02 2016-11-02 2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2016682A3 CZ2016682A3 (cs) 2018-05-09
CZ307768B6 true CZ307768B6 (cs) 2019-04-24

Family

ID=62068377

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2016-682A CZ307768B6 (cs) 2016-11-02 2016-11-02 2-β-Anilidovinyl-N-alkylheteroaromatická dimethiniová sůl a její použití jako duální proba pro mitochondriální a lysozomální vizualizaci

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ307768B6 (cs)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2369509A (en) * 1940-12-04 1945-02-13 Eastman Kodak Co Polymethine compounds and process for preparing them
US5183813A (en) * 1992-02-19 1993-02-02 Sterling Winthrop Inc. Antiarrhythmic agents

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2369509A (en) * 1940-12-04 1945-02-13 Eastman Kodak Co Polymethine compounds and process for preparing them
US5183813A (en) * 1992-02-19 1993-02-02 Sterling Winthrop Inc. Antiarrhythmic agents

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Brancato, Giuseppe, et al. "Dual Fluorescence through Kasha’s Rule Breaking: An Unconventional Photomechanism for Intracellular Probe Design." The Journal of Physical Chemistry B 119.20 (2015): 6144-6154. *
Bříza, Tomáš, et al. "Optical sensing of sulfate by polymethinium salt receptors: colorimetric sensor for heparin." Chemical Communications 16 (2008): 1901-1903. *
Loudet, Aurore, et al. "Organelle-selective energy transfer: A fluorescent indicator of intracellular environment." Bioorganic & medicinal chemistry letters 21.6 (2011): 1849-1851. *

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2016682A3 (cs) 2018-05-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Liu et al. A coumarin–indole-based near-infrared ratiometric pH probe for intracellular fluorescence imaging
Guy et al. Convergent preparation and photophysical characterization of dimaleimide dansyl fluorogens: elucidation of the maleimide fluorescence quenching mechanism
Ge et al. A simple fluorescent probe for monitoring pH in cellsbased on new fluorophorepyrido [1, 2-a] benzimidazole
WO2015153813A1 (en) Azetidine-substituted fluorescent compounds
Hou et al. Sensitive detection and imaging of endogenous peroxynitrite using a benzo [d] thiazole derived cyanine probe
Lin et al. Highly selective, red emitting BODIPY-based fluorescent indicators for intracellular Mg 2+ imaging
Dai et al. A quick response fluorescent probe based on coumarin and quinone for glutathione and its application in living cells
Cui et al. A novel polarity-sensitive fluorescent probe for lighting up lipid droplets and its application in discriminating dead and living zebrafish
CA3004831A1 (en) Fluorochromes for organelle tracing and multi-color imaging
Liu et al. ICT-based near infrared fluorescent switch-on probe for nitric oxide bioimaging in vivo
Sabouri et al. Construction of a Highly Sensitive Thiol‐Reactive AIEgen‐Peptide Conjugate for Monitoring Protein Unfolding and Aggregation in Cells
Chen et al. FRET-based sensor for visualizing pH variation with colorimetric/ratiometric strategy and application for bioimaging in living cells, bacteria and zebrafish
CN111004246B (zh) 监测线粒体自噬的罗丹明类pH荧光探针及制备和应用
Liu et al. A squaraine-based red emission off–on chemosensor for biothiols and its application in living cells imaging
Jin et al. Novel near-infrared pH-sensitive cyanine-based fluorescent probes for intracellular pH monitoring
Dong et al. Two-photon fluorescence visualization of lysosomal pH changes during mitophagy and cell apoptosis
Zhang et al. Hemicyanine based naked-eye ratiometric fluorescent probe for monitoring lysosomal pH and its application
Reddy et al. Luminescent Trimethoprim–Polyaminocarboxylate Lanthanide Complex Conjugates for Selective Protein Labeling and Time-Resolved Bioassays
Li et al. A lysosomal probe for monitoring of pH in living cells and ovarian tumour
CN105062467B (zh) 一种转子型的双红线粒体荧光探针及其应用
Niu et al. A novel pH fluorescent probe based on indocyanine for imaging of living cells
Tian et al. A series of water-soluble pyridinium derivatives with two-photon absorption in the near infrared region for mitochondria targeting under stimulated emission depletion (STED) nanoscopy
JP6456592B2 (ja) 蛍光寿命イメージングプローブ
Shi et al. Highly lipophilic coumarin fluorophore with excimer-monomer transition property for lipid droplet imaging
Wang et al. Fluorescent probes based on aza-Nile Red for visualizing mitochondrial polarity fluctuation

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20191102