CS277474B6 - Způsob inaktlvace katalázy - Google Patents

Způsob inaktlvace katalázy Download PDF

Info

Publication number
CS277474B6
CS277474B6 CS896718A CS671889A CS277474B6 CS 277474 B6 CS277474 B6 CS 277474B6 CS 896718 A CS896718 A CS 896718A CS 671889 A CS671889 A CS 671889A CS 277474 B6 CS277474 B6 CS 277474B6
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
glucose oxidase
catalase
aspergillus niger
inactivation
weight
Prior art date
Application number
CS896718A
Other languages
English (en)
Other versions
CS671889A3 (en
Inventor
Michal Ing Csc Rosenberg
Ernest Doc Ing Csc Sturdik
Original Assignee
Univ Slovenska Tech
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Slovenska Tech filed Critical Univ Slovenska Tech
Priority to CS896718A priority Critical patent/CS277474B6/cs
Publication of CS671889A3 publication Critical patent/CS671889A3/cs
Publication of CS277474B6 publication Critical patent/CS277474B6/cs

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Způsob ireverzibilní inaktivace katalázy v buňkách Aspergillus niger a v technických glukózaoxidázových preparátech se provádí tak, Že se mycelium Aspergillus niger nebo technický preparát glukózaoxidázyuvede do styku s 0,1 až 5 % hmot. metanalem a 0,5 až 5 % hmot. peroxidem vodíku při 4 až 15 °C a po 5 až 30 minutách se glukózaoxidáza izoluje a puriflkuje známými postupy. Tímto způsobem je možné jednoduchým způsobem připravit preparáty glukózaoxidázy bez katalázové aktivity, výsledný preparát neobsahuje složky inaktivační směsi.

Description

Vynález se týká způsobu inaktivace katalázy v buňkách vláknitých hub i v jejich bezbuňkových extraktech.
Enzym glukózaoxidáza má široké použití v klinické diagnostice, desacharizaci potravinářských výrobků, stabilizaci nápojů i v dalších odvětvích. I když je glukózaoxidáza produkovaná různými mikroorganismy, v průmyslovém měřítku se používají jako zdroj tohoto enzymu vláknité houby Aspergillus niger a Penicillium species. V takto získaných enzymových preparátech je však glukózaoxidáza doprovázená enzymem katalázou, který je při mnohých aplikacích glukózaoxidázy nevýhodný, protože působí rušivě na specifickou reakci, kterou tento enzym katalýzuje (Bergmeyer, V. H.: In Methods of Enzymatic Analysis, Vol. 2, Verlag, Weinheim, 1983). Tak tomu je například při přípravě testů, respektive indikátorových papírků na stanovení cukrů, především glukózy v médiích a v tělních tekutinách.
K separaci glukózaoxidázy od katalázy se nejčastěji používá ionová chromatografie se slabým anexem (Pat. ČSSR 103 453, Sasaki et al.: J. Biochem. 91, 1555 (1982), Mikeš, O. et al.: J. of Chromatog. 148, 237 (1978)), ionová hydrofóbní chromatografie na Amberlitě CG-50, gélová filtrace na Sefadexu G-150 a 200 (Brochert, A.: J. of Chromatog. 244, 49, (1982)), afinitní chromatografie na imunosorbentu (Clark, L. C.: Ann. N. Y. Acad. Sci. 102, 29 (1962)) a další metody.
Nevýhodou těchto metod z hlediska průmyslového použití je vysoká cena a dostupnost chromatografických náplní, kapacita kolon, časová náročnost a často i nutnost zařazení nových technologických operací (například odsolení). Při přípravě technického preparátu glukózaoxidázy běžné metody separace enzymu, jako je srážení síranem amonným (Pat. ČSSR 103 453, 143 103), diaminoetoxyakridínlaktátem (Pat. NSR 2 308 013) neumožňuje přípravu glukózaoxidázového preparátu bez katalázové aktivity. Také přídavek inhibitorů katalázy (těžké kovy, azidy, soli hydroxylamínu, 2,4-dichlorfenol, tiazolové deriváty a další) není při mnohých aplikacích glukózaoxidázy žádoucí a navíc je účinek mnohých inhibitorů reverzibilní (Webb J. L.: In Enzyme and Metabolic Inhibitors, Academie Press, New York, (1966)).
Inaktivace katalázy způsobem podle vynálezu je velmi výhodná, protože je možné jednoduchým způsobem vysoce selektivně ireyerzibilně inaktivovat enzym katalázu v glukózaoxidázových preparátech, získaných z buněk vláknitých’ hub. Navíc je možné katalázu inaktivovat přímo v buňkách vláknitých hub a glukózaoxidázu potom izolovat z buněk běžnými separačními postupy, což zjednodušuje podstatně celý izolační proces. Enzymové preparáty, získané způsobem podle vynálezu, neobsahují reziduální látky z inaktivační směsi, protože peroxid vodíku je rozkládán v průběhu inaktivace působením enzymu katalázy a zbytkový formaldehyd se odseparuje od enzymu glukózaoxidázy v procesu izolace enzymu (ultrafiltrace, precipitace).
Způsob inaktivace katalázy podle vynálezu spočívá v tom, že se buněčná hmota vláknité houby Aspergillus niger nebo z ní izolovaný hrubý enzymový preparát glukózaoxidázy uvede do styku s roztokem obsahujícím 0,1 až 5 % metanal a 0,5 až 5 % peroxid vodíku a směs se míchá při 4 až 20 °C po dobu 5 až 20 minut. Po inaktivaci katalázy se glukózaoxidáza izoluje z buněk Aspergillus niger a dále purifikuje běžnými postupy.
Výhodou navrhovaného způsobu inaktivace katalázy v přítomnosti glukózaoxidázy v buňkách vláknitých hub a v technických preparátech glukózaoxidázy v porovnání s doposud používanými postupy je, že předmětný způsob je ekonomicky nenáročný s jednoduchými technologickými operacemi, inaktivace katalázy je ireverzibilní a výsledný preparát neobsahuje složky inaktivační směsi. Navíc je možné inaktivovat selektivně katalázu přímo v buňkách vláknitých hub, což podstatně zjednodušuje přípravu technických preparátů glukózaoxidázy.
Vynález ilustrují následující příklady provedení, kterými se však rozsah vynálezu v žádném směru neomezuje.
Příklad 1
Do 500 ml vodní suspenze mycelia Aspergillus niger CCM 8004 (sušina 15 g/dm3) s aktivitou glukózaoxidázy 40.103U/g (suchá váha) a katalázy 2,5.106 U/g (suchá váha) (definice U - viz Wortington Enzyme Manual, Wortington Biochemical Corp. Freehold, New Yersey, 1972) bylo přilito 500 ml vodního roztoku obsahujícího metanal (1 % hmot.) a peroxid vodíku (1 % hmot.). Směs se míchala při 6 °C po dobu 10 min a potom se mycelium oddělilo od tekutého podílu filtrací. Mycelium obsahovalo 94 % glukózaoxidázové a 2 % katalázové aktivity, původně obsažené v myceliu. ’
Příklad 2
Do 50 ml vodního roztoku technické glukózaoxidázy (aktivita glukózaoxidázy 130 U/cm3, katalázy 7 500 U/cm3) bylo přilito 50 ml vodního roztoku obsahujícího 1 % (hmot.) metanalu a 2 % (hmot.) peroxidu vodíku. Směs se míchala při 4 °C po dobu 5 minut. Enzymy byly v daném čase precipitované ledovým etanolem (poměr voda : etanol =9 : 5) a oddělené centrifugací. Po resuspendování sedimentu obsahoval preparát 90 % původní glukózaoxidázové a 1 % katalázové aktivity.

Claims (1)

  1. Způsob inaktivace katalázy vedle glukózaoxidázy, vyznačující se tím, že se buňky vláknité houby Aspergillus niger nebo vodné technické glukózaoxidázové preparáty připravené z mycélia vláknité houby Aspergillus niger uvedou do styku s vodným roztokem, obsahujícím metanal v koncentraci 0,1 až 5 % hmot, a peroxid vodíku v koncentraci 0,5 až 5 % hmot, a směs se míchá při 4 až 15 °C po dobu 5 až 30 minut.
    Konec dokumentu
CS896718A 1989-11-29 1989-11-29 Způsob inaktlvace katalázy CS277474B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS896718A CS277474B6 (cs) 1989-11-29 1989-11-29 Způsob inaktlvace katalázy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS896718A CS277474B6 (cs) 1989-11-29 1989-11-29 Způsob inaktlvace katalázy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS671889A3 CS671889A3 (en) 1992-11-18
CS277474B6 true CS277474B6 (cs) 1993-03-17

Family

ID=5414871

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS896718A CS277474B6 (cs) 1989-11-29 1989-11-29 Způsob inaktlvace katalázy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS277474B6 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS671889A3 (en) 1992-11-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Richmond Preparation and properties of a cholesterol oxidase from Nocardia sp. and its application to the enzymatic assay of total cholesterol in serum
Nilsson et al. p‐Toluenesulfonyl chloride as an activating agent of agarose for the preparation of immobilized affinity ligands and proteins
Doyle et al. Hydrophobic characteristics of Bacillus spores
Ziegler et al. Microsomal oxidase IV: Properties of a mixed-function amine oxidase isolated from pig liver microsomes
Osborne et al. Partial purification and properties of the common inherited forms of adenosine deaminase from human erythrocytes
Goldstein et al. The inhibition of enzymes by tannins
Misra et al. Glyoxalase III from Escherichia coli: a single novel enzyme for the conversion of methylglyoxal into D-lactate without reduced glutathione
JP3068061B2 (ja) 非酵素的グリコシル化タンパク質の測定方法
DANNEEL et al. Purification and characterization of a pyranose oxidase from the basidiomycete Peniophora gigantea and chemical analyses of its reaction products
AU574931B2 (en) Specific determination of hdl cholesterol in serum
Jacobs et al. Isolation and chemical properties of a repressible acid phosphatase in Neurospora crassa
DeVries et al. N-acetylneuraminic acid aldolase of Clostridium perfringens: Purification, properties and mechanism of action
Assolant-Vinet et al. A novel enzyme membrane electrode for oxalate determination in foodstuffs
de Barreiro 5-Aminolaevulinate hydro-lyase from yeast isolation and purification
Quayle Carbon assimilation by Pseudomonas oxalaticus (Ox 1). 7. Decarboxylation of oxalyl-coenzyme A to formyl-coenzyme A
Wieland et al. Isozymes and heteroenzymes
Spielmann et al. The separation of lactate dehydrogenase X from other lactate dehydrogenase isozymes of mouse testes by affinity chromatography
Takagi et al. Polygalactosamine produced by a microorganism
CS277474B6 (cs) Způsob inaktlvace katalázy
Schräder et al. Purification and characterization of protein PC, a component of glycine reductase from Eubacterium acidaminophilum
Sung Effect of novobiocin on DNA-dependent DNA polymerases from developing rat brain
O'Flaherty et al. A kinetic locking-on strategy for bioaffinity purification: Further studies with alcohol dehydrogenase
Oltmann et al. Solubilization and purification of a cytoplasmic membrane bound enzyme catalyzing tetrathionate and thiosulphate reduction in Proteus mirabilis
McEuen et al. Superoxide, hydrogen peroxide, and the gelling of phloem sap from Cucurbita pepo
Cerny et al. Comparative polyacrylamide electrophoresis of periplasmic proteins released from gram-negative bacteria by polymyxin B