CS277474B6 - Způsob inaktlvace katalázy - Google Patents
Způsob inaktlvace katalázy Download PDFInfo
- Publication number
- CS277474B6 CS277474B6 CS896718A CS671889A CS277474B6 CS 277474 B6 CS277474 B6 CS 277474B6 CS 896718 A CS896718 A CS 896718A CS 671889 A CS671889 A CS 671889A CS 277474 B6 CS277474 B6 CS 277474B6
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- glucose oxidase
- catalase
- aspergillus niger
- inactivation
- weight
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Způsob ireverzibilní inaktivace katalázy v buňkách Aspergillus niger a v technických glukózaoxidázových preparátech se provádí tak, Že se mycelium Aspergillus niger nebo technický preparát glukózaoxidázyuvede do styku s 0,1 až 5 % hmot. metanalem a 0,5 až 5 % hmot. peroxidem vodíku při 4 až 15 °C a po 5 až 30 minutách se glukózaoxidáza izoluje a puriflkuje známými postupy. Tímto způsobem je možné jednoduchým způsobem připravit preparáty glukózaoxidázy bez katalázové aktivity, výsledný preparát neobsahuje složky inaktivační směsi.
Description
Vynález se týká způsobu inaktivace katalázy v buňkách vláknitých hub i v jejich bezbuňkových extraktech.
Enzym glukózaoxidáza má široké použití v klinické diagnostice, desacharizaci potravinářských výrobků, stabilizaci nápojů i v dalších odvětvích. I když je glukózaoxidáza produkovaná různými mikroorganismy, v průmyslovém měřítku se používají jako zdroj tohoto enzymu vláknité houby Aspergillus niger a Penicillium species. V takto získaných enzymových preparátech je však glukózaoxidáza doprovázená enzymem katalázou, který je při mnohých aplikacích glukózaoxidázy nevýhodný, protože působí rušivě na specifickou reakci, kterou tento enzym katalýzuje (Bergmeyer, V. H.: In Methods of Enzymatic Analysis, Vol. 2, Verlag, Weinheim, 1983). Tak tomu je například při přípravě testů, respektive indikátorových papírků na stanovení cukrů, především glukózy v médiích a v tělních tekutinách.
K separaci glukózaoxidázy od katalázy se nejčastěji používá ionová chromatografie se slabým anexem (Pat. ČSSR 103 453, Sasaki et al.: J. Biochem. 91, 1555 (1982), Mikeš, O. et al.: J. of Chromatog. 148, 237 (1978)), ionová hydrofóbní chromatografie na Amberlitě CG-50, gélová filtrace na Sefadexu G-150 a 200 (Brochert, A.: J. of Chromatog. 244, 49, (1982)), afinitní chromatografie na imunosorbentu (Clark, L. C.: Ann. N. Y. Acad. Sci. 102, 29 (1962)) a další metody.
Nevýhodou těchto metod z hlediska průmyslového použití je vysoká cena a dostupnost chromatografických náplní, kapacita kolon, časová náročnost a často i nutnost zařazení nových technologických operací (například odsolení). Při přípravě technického preparátu glukózaoxidázy běžné metody separace enzymu, jako je srážení síranem amonným (Pat. ČSSR 103 453, 143 103), diaminoetoxyakridínlaktátem (Pat. NSR 2 308 013) neumožňuje přípravu glukózaoxidázového preparátu bez katalázové aktivity. Také přídavek inhibitorů katalázy (těžké kovy, azidy, soli hydroxylamínu, 2,4-dichlorfenol, tiazolové deriváty a další) není při mnohých aplikacích glukózaoxidázy žádoucí a navíc je účinek mnohých inhibitorů reverzibilní (Webb J. L.: In Enzyme and Metabolic Inhibitors, Academie Press, New York, (1966)).
Inaktivace katalázy způsobem podle vynálezu je velmi výhodná, protože je možné jednoduchým způsobem vysoce selektivně ireyerzibilně inaktivovat enzym katalázu v glukózaoxidázových preparátech, získaných z buněk vláknitých’ hub. Navíc je možné katalázu inaktivovat přímo v buňkách vláknitých hub a glukózaoxidázu potom izolovat z buněk běžnými separačními postupy, což zjednodušuje podstatně celý izolační proces. Enzymové preparáty, získané způsobem podle vynálezu, neobsahují reziduální látky z inaktivační směsi, protože peroxid vodíku je rozkládán v průběhu inaktivace působením enzymu katalázy a zbytkový formaldehyd se odseparuje od enzymu glukózaoxidázy v procesu izolace enzymu (ultrafiltrace, precipitace).
Způsob inaktivace katalázy podle vynálezu spočívá v tom, že se buněčná hmota vláknité houby Aspergillus niger nebo z ní izolovaný hrubý enzymový preparát glukózaoxidázy uvede do styku s roztokem obsahujícím 0,1 až 5 % metanal a 0,5 až 5 % peroxid vodíku a směs se míchá při 4 až 20 °C po dobu 5 až 20 minut. Po inaktivaci katalázy se glukózaoxidáza izoluje z buněk Aspergillus niger a dále purifikuje běžnými postupy.
Výhodou navrhovaného způsobu inaktivace katalázy v přítomnosti glukózaoxidázy v buňkách vláknitých hub a v technických preparátech glukózaoxidázy v porovnání s doposud používanými postupy je, že předmětný způsob je ekonomicky nenáročný s jednoduchými technologickými operacemi, inaktivace katalázy je ireverzibilní a výsledný preparát neobsahuje složky inaktivační směsi. Navíc je možné inaktivovat selektivně katalázu přímo v buňkách vláknitých hub, což podstatně zjednodušuje přípravu technických preparátů glukózaoxidázy.
Vynález ilustrují následující příklady provedení, kterými se však rozsah vynálezu v žádném směru neomezuje.
Příklad 1
Do 500 ml vodní suspenze mycelia Aspergillus niger CCM 8004 (sušina 15 g/dm3) s aktivitou glukózaoxidázy 40.103U/g (suchá váha) a katalázy 2,5.106 U/g (suchá váha) (definice U - viz Wortington Enzyme Manual, Wortington Biochemical Corp. Freehold, New Yersey, 1972) bylo přilito 500 ml vodního roztoku obsahujícího metanal (1 % hmot.) a peroxid vodíku (1 % hmot.). Směs se míchala při 6 °C po dobu 10 min a potom se mycelium oddělilo od tekutého podílu filtrací. Mycelium obsahovalo 94 % glukózaoxidázové a 2 % katalázové aktivity, původně obsažené v myceliu. ’
Příklad 2
Do 50 ml vodního roztoku technické glukózaoxidázy (aktivita glukózaoxidázy 130 U/cm3, katalázy 7 500 U/cm3) bylo přilito 50 ml vodního roztoku obsahujícího 1 % (hmot.) metanalu a 2 % (hmot.) peroxidu vodíku. Směs se míchala při 4 °C po dobu 5 minut. Enzymy byly v daném čase precipitované ledovým etanolem (poměr voda : etanol =9 : 5) a oddělené centrifugací. Po resuspendování sedimentu obsahoval preparát 90 % původní glukózaoxidázové a 1 % katalázové aktivity.
Claims (1)
- Způsob inaktivace katalázy vedle glukózaoxidázy, vyznačující se tím, že se buňky vláknité houby Aspergillus niger nebo vodné technické glukózaoxidázové preparáty připravené z mycélia vláknité houby Aspergillus niger uvedou do styku s vodným roztokem, obsahujícím metanal v koncentraci 0,1 až 5 % hmot, a peroxid vodíku v koncentraci 0,5 až 5 % hmot, a směs se míchá při 4 až 15 °C po dobu 5 až 30 minut.Konec dokumentu
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS896718A CS277474B6 (cs) | 1989-11-29 | 1989-11-29 | Způsob inaktlvace katalázy |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS896718A CS277474B6 (cs) | 1989-11-29 | 1989-11-29 | Způsob inaktlvace katalázy |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS671889A3 CS671889A3 (en) | 1992-11-18 |
| CS277474B6 true CS277474B6 (cs) | 1993-03-17 |
Family
ID=5414871
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS896718A CS277474B6 (cs) | 1989-11-29 | 1989-11-29 | Způsob inaktlvace katalázy |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS277474B6 (cs) |
-
1989
- 1989-11-29 CS CS896718A patent/CS277474B6/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS671889A3 (en) | 1992-11-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Richmond | Preparation and properties of a cholesterol oxidase from Nocardia sp. and its application to the enzymatic assay of total cholesterol in serum | |
| Nilsson et al. | p‐Toluenesulfonyl chloride as an activating agent of agarose for the preparation of immobilized affinity ligands and proteins | |
| Doyle et al. | Hydrophobic characteristics of Bacillus spores | |
| Ziegler et al. | Microsomal oxidase IV: Properties of a mixed-function amine oxidase isolated from pig liver microsomes | |
| Osborne et al. | Partial purification and properties of the common inherited forms of adenosine deaminase from human erythrocytes | |
| Goldstein et al. | The inhibition of enzymes by tannins | |
| Misra et al. | Glyoxalase III from Escherichia coli: a single novel enzyme for the conversion of methylglyoxal into D-lactate without reduced glutathione | |
| JP3068061B2 (ja) | 非酵素的グリコシル化タンパク質の測定方法 | |
| DANNEEL et al. | Purification and characterization of a pyranose oxidase from the basidiomycete Peniophora gigantea and chemical analyses of its reaction products | |
| AU574931B2 (en) | Specific determination of hdl cholesterol in serum | |
| Jacobs et al. | Isolation and chemical properties of a repressible acid phosphatase in Neurospora crassa | |
| DeVries et al. | N-acetylneuraminic acid aldolase of Clostridium perfringens: Purification, properties and mechanism of action | |
| Assolant-Vinet et al. | A novel enzyme membrane electrode for oxalate determination in foodstuffs | |
| de Barreiro | 5-Aminolaevulinate hydro-lyase from yeast isolation and purification | |
| Quayle | Carbon assimilation by Pseudomonas oxalaticus (Ox 1). 7. Decarboxylation of oxalyl-coenzyme A to formyl-coenzyme A | |
| Wieland et al. | Isozymes and heteroenzymes | |
| Spielmann et al. | The separation of lactate dehydrogenase X from other lactate dehydrogenase isozymes of mouse testes by affinity chromatography | |
| Takagi et al. | Polygalactosamine produced by a microorganism | |
| CS277474B6 (cs) | Způsob inaktlvace katalázy | |
| Schräder et al. | Purification and characterization of protein PC, a component of glycine reductase from Eubacterium acidaminophilum | |
| Sung | Effect of novobiocin on DNA-dependent DNA polymerases from developing rat brain | |
| O'Flaherty et al. | A kinetic locking-on strategy for bioaffinity purification: Further studies with alcohol dehydrogenase | |
| Oltmann et al. | Solubilization and purification of a cytoplasmic membrane bound enzyme catalyzing tetrathionate and thiosulphate reduction in Proteus mirabilis | |
| McEuen et al. | Superoxide, hydrogen peroxide, and the gelling of phloem sap from Cucurbita pepo | |
| Cerny et al. | Comparative polyacrylamide electrophoresis of periplasmic proteins released from gram-negative bacteria by polymyxin B |