CS273452B1 - Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination - Google Patents

Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination Download PDF

Info

Publication number
CS273452B1
CS273452B1 CS555888A CS555888A CS273452B1 CS 273452 B1 CS273452 B1 CS 273452B1 CS 555888 A CS555888 A CS 555888A CS 555888 A CS555888 A CS 555888A CS 273452 B1 CS273452 B1 CS 273452B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
solution
proteins
aqueous
water solution
volume
Prior art date
Application number
CS555888A
Other languages
English (en)
Other versions
CS555888A1 (en
Inventor
Jaroslav Korinek
Lubena Ing Hachova
Milos Tadra
Original Assignee
Jaroslav Korinek
Lubena Ing Hachova
Milos Tadra
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jaroslav Korinek, Lubena Ing Hachova, Milos Tadra filed Critical Jaroslav Korinek
Priority to CS555888A priority Critical patent/CS273452B1/cs
Publication of CS555888A1 publication Critical patent/CS555888A1/cs
Publication of CS273452B1 publication Critical patent/CS273452B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Vynález řeší na bázi polymerace bílkovin glutaraldehydem způsob výroby Široké palety diagnostických protilátek k rychlému stanovení koncentrace bílkovin, technicky a ekonomicky vhodný k výrobě čistých specifických protilátek v průmyslovém měřítku.
Dosud nejkvalitnější precipitační diagnostické protilátky produkuje firma Oakopatts,
Dánsko, v podobě purifikovaného imunoglobulinu s relativně vysokými titry protilátek. Většina ostatních světových výrobců vyrábí obdobná diagnostika v podobě jen částečně purifikovaných imunoglobulinů, nebo jen různým způsobem stabilizovaná zvířecí séra s obsahem specifických protilátek. Přidružené balasty neúčinných bílkovin snižují výrazně hodnotu diagnostika v citlivosti průkazu i rozsahu použití. Toto omezení je výrazné jen zčásti u špičkových produktů firmy Dakopatts, avšak i zde je převážná část imunoglobulinů neúčinná, tj. protilátkovi neaktivní.·Navíc je purifikace těchto imunoglobulinů pracovně a ekonomicky pro výrobce nevýhodná, protože vyžaduje opakovaná přesrážení zvířecího séra síranem amonným při značném objemovém nárůstu. Centrifugace velkých objemů je energetický náročná a také dochází, ke ztrátám imunoglobul^iou v. dalších fázích purifikace na iontoměni-. čích, které jsou pro dočištění produktu nezbytné. Nejzávažnějším nedostatkem je, že k dosažení konkurenceschopného produktu je nutno expedovat purifikovaný imunoglobulin mnohdy až v 5 a 10% vodném roztoku, přičemž obsah účinné protilátky, která je jen částí úhrnného IgG, je vlastně jen zlomkový.-Preparace specifických protilátek v čistém stavu technikami afinitní chromatografie je sice teoreticky známa a technicky dobře propracována, ale její nevýhodou je použitelnost spíše jen v měřítku laboratorním. Rozšířeni výroby v měřítku průmyslovém bráni technická náročnost, pracnost a vysoké náklady spojené s používáním dosti drahých sorbentů, purifikací navázaných imunogénů, uvolňování protilátek elucí v čistém stavu a řada dalších technologických úkonů. Důkazem toho je skutečnost, že preparáty specifických protilátek jsou na.světovém trhu jen omezeně dostupné, některé v podobě monoklonálních protilátek, jejichž využití je například v technikách imunoadherenčních ne však v technikách imunoprecipitačních.
Předmětem vynálezu je způsob výroby čistých specifických protilátek určených k rychlému kvantitativnímu stanovení koncentrace bílkovin, založený na principu polymerace bílkovin glutaraldehydem. Postup je vyznačen tim, že na lidské sérum normální, nebo patologické, nebo na 10% vodný roztok lyofilizovaných bílkovin močových, nebo jiných,; se působí v rozmezí pH 8,0 až 9,0 jednou setinou až jednou desetinou objemu 25% vodného rbztoku glutaraldehydu při 18 až 28 °C po dobu jedné až tří hodin, ke směsi se přidá jedna pětina objemu 10% vodného roztoku síranu hlinitodraselného, vzniklé vločky se promyjí, a na sítě se přenesou do troj- až desetinásobného objemu specifického hyperimunního zvířecího séra, případně do 0,01 až 10% vodného roztoku zvířecích protilátek. V době jednoho až tři dnů se na vločky vyváží protilátky, přičemž pokles protilátek se sleduje imunochemickými metodami.
Potom se vločky promyjí vodovodní vodou, eluují se v 0,2M vodném roztoku kyseliny octové s 2 % sacharózy, eluát se upraví vodným koncentrovaným roztokem amoniaku na pH 6,5 až 7,5 a získaný roztok protilátky, která je prakticky již v čistém stavu, se srazí přídavkem 350 gramu síranu amonného na litr eluční kapaliny, sraženina se ponechá ustát a po dekantaci čirého supernatantu se sraženina rozpustí v 0,15M vodném roztoku chloridu sodného, dialýzuje se a lyofilizuje.
Novost vynálezu spočívá v tom, že jednotným pracovním postupem (a to bez použití speciálních sorbentů s vázanými izolovanými bílkovinami) umožňuje efektivní výrobu široké palety nejrůznějších specifických diagnostických protilátek v průmyslovém měřítku, normálních i patologických podle výchozího materiálu použitého k výrobě. Nejvhodnějším materiálem je odpadní (tzv. sběrové) lidské sérum, lze však použít i plazmu, nebo nejrůznější 10% vodné roztoky lyofilizovaných bílkovin. Pozaduje-li se výroba specifických čistých protilátek proti bílkovině patologické, například myelomové, je vstupním materiálem sérum patologické, například myelomové, sérum se zvýšeným obsahem beta-2 mikroglobulinu získané plazmaferézou, případně i směs séra s 10 % lyofilizátu moče obsahující požadovanou patologickou složku. V průběhu pracovního procesu vznikají účinkem síranu hlinitodraCS 273 452 Bl selného na polymerovanou bílkovinu vločky s příznivými vlastnostmi, které jsou mnohonásob ně opakovaně použitelné k vychytání protilátek z hyperimunního zvířecího séra obsahujícího specifickou protilátku proti požadované bílkovině. Eluční systém je volen co nejvýhodněji k dosažení co nejvyšších výtěžků čisté protilátky, která je dostatečně stabilní pro komerční využití. Výtěžek čisté protilátky se pohybuje podle druhu hyperimunního séra v rozmezí 75 až 85 % veškeré protilátky obsažené v hyperimunním séru. Zvýšený účinek vynálezu spočívá v příznivé ekonomické efektivnosti výroby, .z velkých objemů hyperimunního séra se zkoncentrují specifické protilátky na relativně malý objem pouhou dekantací, a zároveň odpadá nutnost použití drahých dovozových sorbentů. Centrifugace se pak již omezuje jen na hustou suspenzi síranové sraženiny po dekantací supernatantu. Vynález byl pro zkoušen na více než patnácti druzích specifických hyperimunních sér: alfa-1 antitrypsin, orosomukoid, transferrin, hemopexin, IgG, IgA, Ig komplexní, Gc globulin, alfa- 2 T globulin, F ab fragment, prealbumin, C 3 globulin, a další. Výhody čistých protilátek se projevují všude tam, kde-'se požaduje citlivéra rychlé stanovení' bílkovin bez rušivého pozadí způsobeného bílkovinnými balasty, tedftv metodách imunofluorescenčních, nefelometric kých, imunoadherenčních, konjugačních, atd. V raketkové technice podle Laurella a v jednoduché radiální imunodifúzi odpadá vypírání agarového gelu, vzhledem k nízké koncentraci bílkovin v gelu. K novosti a vysokému účinku vynálezu lzé připsat již i skutečnost, že preparáty této kvality nejsou na světovém trhu běžně dostupné, protože izolace čistých protilátek je v laboratorním měřítku již řadu let využívána. Výrobní náklady při použití uvedeného postupu jsou souměřitelné nebo i nižší, než náklady vynakládané k průmyslové produkci diagnostik typu purifikovaného IgG, přitom však preparáty vyrobené podle vynálezu předstihují světovou špičku, například Dako. Další rozsáhlou možností spojenou s reali žací výroby čistých specifických protilátek podle vynálezu je příprava čistých imunogénů pro výrobu specifických zvířecích antisér. Disociací imunoprecipitátu lze získat imunogény v čistém stavu, což umožňuje eliminovat nákladné a často velmi obtížné postupy izolace a purifikace imunogénů z lidské plazmy a jiných biologických materiálů. Bylo by tak možno snížit výrobní náklady spojené s produkcí specifických hyperimunních sér, a nahradit dosavadní technologie výhodným a jednoduchým postupem.
Příklad 1
Ke 3 litrům smíšeného séra dárců krve bylo postupně přidáno 66 ml 25% vodného roztoku glutaraldehydu a za 3 hodiny stání při 21 °C bylo přilito 600 ml 10% vodného.roztoku síranu hlinitodraselného. Směs byla promíchána, vločky zachyceny sítem a v průběhu 24 hodin několikrát promyty nadbytkem vodovodní vody. Vločky byly pak zachyceny sítem a ponořeny do 0,15M vodného roztoku chloridu sodného s 0,1 % azidu sodného.
Příklad 2
K 1 kg vlhkých vloček z příkladu 1 byly přidány 4 litry prasečího hyperimunního séra precipitujícího specificky alfa-1 antitrypsin. Směs byla ponechána při +5 °C 72 hodin, přičemž vločky byly občas rozmíchány a denně sledován pokles alfa-1 antitrypsinových protilátek v tekutině nad vločkami. Poté byly vločky zachyceny sítem, promyty několikrát během 24 hodin vodovodní vodou, a izolovány sítem.
Příklad 3
Promyté vločky z příkladu 2 byly eluovány 2 hodiny dvěma litry Q,2M vodného roztoku kyseliny octové s 2 % sacharózy a eluát neutralizován koncentrovaným vodným roztokem amoniaku na pH 6,5. Eluované vločky byly pak znovu eluovány opět 2 litry elučního roztoku 24 hodin při +5 θθ, eluát neutralizován, a přilit k eluátu prvnímu.
Příklad 4
Ke změřenému objemu eluátu z příkladu 3 byl přidán pevný síran amonný v množství
CS 273 452 Bl
350 g na litr eluátu, rozpuštěn mícháním, a suspenze ponechána při +5 °C 16 hodin. Čirý supernatant byl dekantován, hustá sraženina odstředěním zbavena přebytečné kapaliny, rozpuštěna v 0,15M vodném roztoku chloridu sodného, dialyzována v nadbytku 0,15M vodném roztoku chloridu sodného a lyofilizována.

Claims (2)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    Způsob výroby čistých specifických protilátek k rychlému kvantitativnímu stanovení koncentrace bílkovin na principu polymerace bílkovin glutaraldehydem, vyznačený tím, že na lidské normální nebo patologické sérum nebo na 10¾ vodný roztok bílkovin močových nebo jiných, se působí v rozmezí pH 8,0 až 9,0 jednou setinou až jednou desetinou objemu 25¾ vodného roztoku glutaraldehydu při 18 až 28 °C po dobu jedné až tří hodin, ke směsi se přidá jedna dvacetina až jedna pětina objemu 10¾ vodného'roztoku síranu hlinitodraselného, vločky se izolují, promyjí, přenesou^se do trojnásobného až desetinásobného objemu zvířecího hyperimunního séra nebo do 0,01¾ až 10¾ vodného roztoku protilátek, poté se vločky promyjí, eluují se v 0,2M vodném roztoku kyseliny octové s
  2. 2 V sacharózy, eluát se upraví na pH 6,5 až 7,5 koncentrovaným vodným roztokem amoniaku, roztok protilátek se srazí 350 g pevného síranu amonného na litr eluátu, produkt se izoluje, dialyzuje a lyofilizuje.
CS555888A 1988-08-10 1988-08-10 Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination CS273452B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS555888A CS273452B1 (en) 1988-08-10 1988-08-10 Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS555888A CS273452B1 (en) 1988-08-10 1988-08-10 Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS555888A1 CS555888A1 (en) 1990-07-12
CS273452B1 true CS273452B1 (en) 1991-03-12

Family

ID=5400704

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS555888A CS273452B1 (en) 1988-08-10 1988-08-10 Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS273452B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS555888A1 (en) 1990-07-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nishi et al. Purification of human, dog and rabbit α-fetoprotein by immunoadsorbents of Sepharose coupled with anti-human α-fetoprotein
US4470925A (en) Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies
US3966898A (en) Method and reagent for determining immunologic materials
LAURELL et al. Purification of α1‐Antitrypsin from Plasma through Thiol‐Disulfide Interchange
US4479895A (en) Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies
US4350760A (en) Method for the separation of a protein substance from a solution containing the same by affinity filtration and application of said method to enzymatic assays
JPH04234899A (ja) 免疫グロブリンg分子の単離方法
Senior Relation of cysteine and tyrosine residues to adenosine triphosphate hydrolysis by mitochondrial adenosine triphosphatase
JPH01114758A (ja) パパインを含まない抗体フラグメント調製物の製造方法
EP0282308A2 (en) Immobilized immunoglobulin-binding proteins
EP0096463B1 (en) Immunoglobulin half-molecules and process for producing hybrid antibodies
CA1101847A (en) Process for the concentration of a placenta-specific glycoprotein
US4264449A (en) Antibody-specific solid phase immunoadsorbent, preparation thereof, and antibody purification therewith
Peng et al. Stability of antibody attachment in immunosorbent chromatography
US4325866A (en) Protein, PP11, a process for its preparation and its use
CS273452B1 (en) Method of pure specific antibodies production for proteins concentration's quick quantitative determination
Humayun et al. Immunologic studies on nucleic acids and their components II. Reversible inhibition of anti-nucleoside antibodies in aqueous pyridine and its application in antibody purification
US4374061A (en) Means and methods for purifying Clq, Clr and Cls
US4841024A (en) Purification of antibodies
McDonald et al. Purification of the subunit Clq from the first component of equine complement
Pele et al. Purification of biologically active rubella virus antigens by immunoaffinity chromatography
US20090259028A1 (en) Prevention of leaching of ligands from affinity-based purification systems
Urasawa et al. STUDIES ON POLIOVIRUS INHIBITORS IN SERA OF DOMESTIC ANIMALS IV. FRACTIONATION AND IDENTIFICATION OF POLIOVIRUS INHIBITORS
CA1065305A (en) PROCESS FOR THE ENRICHMENT OF THE PREGNANCY-SPECIFIC .beta.1-GLYCOPROTEIN
US5177020A (en) Method for the immunological determination of heparan sulfate-proteoglycan and process for the preparation and purification of heparan sulfate-proteoglycan suitable for this purpose from tissues containing basal membrane