CS270770B1 - Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby - Google Patents

Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby Download PDF

Info

Publication number
CS270770B1
CS270770B1 CS888644A CS864488A CS270770B1 CS 270770 B1 CS270770 B1 CS 270770B1 CS 888644 A CS888644 A CS 888644A CS 864488 A CS864488 A CS 864488A CS 270770 B1 CS270770 B1 CS 270770B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
vaccine
inactivated
rabbits
organ
virus
Prior art date
Application number
CS888644A
Other languages
English (en)
Other versions
CS864488A1 (en
Inventor
Bedrich Mvdr Csc Smid
Lubomir Mvdr Csc Valicek
Ladislav Mvdr Csc Rodak
Jan Mvdr Csc Stepanek
Evzen Doc Mvdr Drsc Jurak
Ladislav Mvdr Csc Dedek
Vladimir Mvdr Jordan
Original Assignee
Bedrich Mvdr Csc Smid
Lubomir Mvdr Csc Valicek
Ladislav Mvdr Csc Rodak
Stepanek Jan
Evzen Doc Mvdr Drsc Jurak
Dedek Ladislav
Vladimir Mvdr Jordan
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bedrich Mvdr Csc Smid, Lubomir Mvdr Csc Valicek, Ladislav Mvdr Csc Rodak, Stepanek Jan, Evzen Doc Mvdr Drsc Jurak, Dedek Ladislav, Vladimir Mvdr Jordan filed Critical Bedrich Mvdr Csc Smid
Priority to CS888644A priority Critical patent/CS270770B1/cs
Publication of CS864488A1 publication Critical patent/CS864488A1/cs
Publication of CS270770B1 publication Critical patent/CS270770B1/cs

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Řešení zahrnuje vakcínu proti virovému hemoraglckému onemocnění králíků (moru králíků). Jde o inaktivovanou orgánovou vakcínu, která obsahuje králičí calicivirus, kmen CAPM V-351, izolovaný a prokázaný v CSSR jako původce onemocnění. Vakcína se připravuje z orgánů králíků uhynulých po infekci virem. Chemická inaktivace viru se ■provádí beta-propiolaktonem nebo formaldehydem při výsledné koncentraci o,2 až o,4 hmotnostních. Jako adjuvantní látky se používají hydroxid hlinitý se saponinem, nebo llpoidní adjuvans. Vakcína se používá « kprevenci onemocnění u domácích králíků, a tía k zabránění vysokým ztrátám úhynem

Description

Vynález ee týká inaktivovaná vakcíny proti moru králíků a způsobu její výroby. Vyrobená vakcína řeší problém ochrany domácích králíků před novým virovým onemocněním, které se vyskytlo v ČSSR, a zabraňuje tak vyeokým ekonomickým ztrátám úhynem, které virue vyvolává (60 až 80 %),
Mor králíků je hromadné onemocnění domácích králíků virového původu, které ee poprvé vyekytlo v Číně v r. 1984 až 1986 (LIU aj., Anim. Hueb. Vet. Med., 16, 1984, e.253 až 255j CAO aj., Chin. J. Vet. Med., 12, 1986, e.9 až 11). Mimo označení mor králíků byla pro onemocnění použita další pojmenování: hemoragické onemocnění, hemoragická pneumonie, virová eeptikémie (PU aj., Chin. J, Vet. Med., 11, 1985, e,16 až 17? XU aj., Anim. Hueb. Vet. Med., 17, 1985, e.153 až 155). Názory na etiologii onemocnění a taxonomické zařazení viru však nejeou jednotné. Zatímco jedna skupina pracovníků klasifikuje virus o velikosti 35 nm jako picornavirus, tj. virus s RNA genomem (PU aj., Chin. J, Vet. Med., 11, 1985, s,16 až 17), jiní ee domnívají, že jde o virue s DNA genomem (SHEN aj., Chin, J. Virol., 2, 1986, e.32o až 322). Třetí ekupina pracovníků prokázala v játrech králíků eoučaeně dva druhy odlišných virových partikulí bez obalu, a to v průměru 34 až 36 nm a dále o průměru 22 nm (YANG a WU, J, Nanjing Agric. Univ,, 6, 1987, e.llo až 114). Podle neúplných literárních údajů byla v Číně připravena orgánová vakcína inaktivovaná o,4 % formaIdehydem, která dávala uepokojivé výeledky (LIU aj,, 1984? WEI aj,, 1987). Bližší údaje o složení a použití vakcíny však chybějí, I když v SSSR dosud nebyly publikovány žádné práce zabývající se morem králíků, podle zpráv veterinární služby proběhlo toto onemocnění také v SSSR a za jeho původce je pokládán picornavirus,
V ČSSR se v r, 1987 vyekytlo na Slovensku hromadné onemocnění domácích králíků, jehož klinický průběh a patoanatomický obraz odpovídal onemocnění popsanému v Číně (Šeševičková aj., Veterinářství, 38, 1988, s,25o až 255). V červenci 1988 byla oficiálně zjištěna prvá ohniska nákazy také v ČSR, Nákaza postihuje domácí králíky všech plemen ve etáří nad 2 měeíce, má velmi akutní průběh s hromadným hynutím, které dosahuje 6o až 8o %.
Na základě experimentální praxe a dosavadního morfologického studia viru autoři PV prokázali, že původcem onemocnění v ČSSR je virus s ikoeahedrální symetrií, o velikosti 29 až 33 nm a bez obalu, odpovídající svou strukturou calicivirům. Na území ČSSR jde o onemocnění nové a nevyrábí se žádná očkovací látka určená k léčbě, či specifické prevenci.
V Sovětském Svazu se vyrábí inaktivovaná orgánová vakcína proti hemoragickému onemocnění králíků, která má při intramuekulární aplikaci dobrý účinek. Není však blíže definován virus (antigen) použitý ve vakcíně. Cílem autorského kolektivu proto bylo vyvinout nový, specifický, neškodný a vysoce účinný preparát - inaktivovanou vakcínu a definovat indikace a způsob její aplikace v prevenci této nové nákazy v ČSSR.
Podstatou vynálezu je inaktivovaná orgánová vakcína proti moru králíků, která obsáhuje králičí calicivirus, kmen CAPM V-351, uložený ve Sbírce zoopatogenních mikroor7 ganismů na Výzkumném ústavu veterinárního lékařství v Brně, s titrem viru nejméně lo^ «-až lo6 v 1 cm^ orgánové suspenze. Vakcína se vyrobí tak, že z orgánů králíků, prostých s-specifických antivirových protilátek, kteří uhynuli po infekci virem CAPM V-351 se přitepraví virová orgánová suspenze, která se dále chemicky inaktivuje a upravuje do aplikačΐΐηί Totnuy. Inaktivace se provádí β-propiolaktonem nebo formaIdehydem při konečné koncen:-traci o,2 až o,4 % hmot, při teplotách 18 až 37 °C. Inaktivovaná virová suspenze se ře'dí fyziologickým roztokem s přídavkem o,o5 % hmot, saponinu a po promíchání se přidá hydroxid hlinitý, nebo se inaktivovaná virová orgánová suspenze lyofilizuje a před použitím sa rozpouští v lipoidním adjuvans.
Výhodou navrhované vakcíny je, že se zcela zabraňuje vysokým ekonomickým ztrátám úhynem, které u nevakcinovaných králíků mohou dosáhnout 6o až 8o %. Vakcína je připravena z vírového kmene izolovaného a prokázaného v ČSSR jako specifického původce one
CS 27o77o Bl mocnění, přičemž jedna dávka vakcíny v množství 1 cm navozuje dostačující protilátkovou odpověá a zaručuje zcela chráněnost zvířat před infekcí. Podkožní způsob aplikace vakcíny s hydroxidem hlinitým vylučuje možné změny ve svalovině, což je významné z hlediska konzumace masa.
Předností navrhované vakcíny je dobrá protilátková odpovšň po jednorázové aplikaci 1 cm vakcíny (tabulka 1), která zaručuje dostatečnou chráněnost králíků proti infekci (tabulka 2). Při výběru králíků pro výrobu vakcíny je třeba použít králíky bez specifických antivirových protilátek, neboť jejich přítomnost v séru ovlivňuje mortalitu králíků po experimentální infekci virem moru králíků, kmenem CAPM V-351 (tabulka 3), Počet králíků s přirozenými protilátkami proti virové infekci je věak v našich chovech, kde se dosud onemocnění nevyskytlo, nízký, a dosahuje podle našich zjištění asi 2o % (vyšetřeno celkem 432 králíků z různých lokalit).
Tabulka 3s
Vliv přirazených sérových protilátek na mortalitu -králíků po experimentální infekci virem králičího moru, kmenem CAPM V-351
Počet uhynulých králíků z celkové počtu ve skupině (%)
Celk. počet králíků r---------------1- “T ---------------Γ
1 Neg. <o,l ! 1 1 1 i í o,l - o,3 1 1 + 0,3 - o,7 1 1 +++ 0,7
1 ! 117 1 1 ! 69/71 J 11/14 1 1 1 1 1 2/9 } 1/23
!(97,2 %) J (78,6 %) 1 1 1 (22,2 %) 1 (4,3 %)
Přirozené protilátky byly stanoveny ELISA metodou v krvi při ředění 1 : loo. Při dosažení absorbance nižší než o,l bylo sérum hodnoceno jako negativní, při absorbanci o,l až o,3 jako dubiózní (±), o,3 až o,7 pozitivní (+) a při absorbanci vyšší než o,7 jako silně pozitivní (+++).
Uvedený příklad předmět vynálezu nijak neomezuje ani nevyčerpává.
Příklad 1
Virový antigen a jeho pomnožení
Pro výrobu vakcíny se použije králičí calieivirus (virus moru králíků), kmen CAM 1^-351, uložený ve Sbírce zoopatogenních mikroorganismů ve Výzkumném ústavu veterinárního lékařství. Virus je koncentrovaná suspenze připravená z orgánů experimentálně infikovaných a uhynulých králíků způsobem uvedeným dále.
Přítomnost viru v suspenzi je prokazovaná elektronově mikroskopicky a titr viru je — lo$ až lo$ v 1 cm^. Pro pomnožení viru ee infikují králíci starší dvou měsíců, bez specifických protilátek, o hmotnosti kolem 2 kg, a to intranasálně nebo intramuskulárně 1 ml orgánové virové suspenze. K úhynu dochází od 18 do 96 hod. po infekci. Z čerstvě uhynulých králíků ee odeberou plíce, játra, slezina a ledviny a zarazí se při teplotě -45 °C a níže. .
Příprava virové orgánové suspenze
Po rozmražení se orgány zvážili, na 375 g ee přidalo 550 csP pufrovaného fyziologického roztoku, penicilinu G 5oo ooo mj. , streptonyčinu o,5 g. Směs se homogenizovala a po důkladném rozmělnění ee provedlo odstředění v chlazené odstředivce při 3 ooo G po
CS 27o77o Bl dobu 3o minut. Supernatant se slil a inaktivoval se. Získala se tak koncentrovaná inaktivovaná virová orgánová suspenze.
Inaktivace viru
Králičí calicivirus v orgánové suspenzi se chemicky inaktivoval ň-propiolaktonem při 37 °C nejméně 1 hodinu, při výsledné koncentraci inaktivační látky o,2 až o,4 % hmotnosti.
Adjuvantia
Použil se hydroxid hlinitý se saponinem.
Příprava vakcíny
Vakcína se připravila smísením 5oo cm^ koncentrované inaktivované virové orgánové o 2 suspenze, 4 x 4oo cnr pufrovaného fyziologického roztoku, 5o cm 5 % hmot, saponinu a 5o cm^ 1 % hmot, roztoku merthiolátu. Po dobrém promíchání se suspenze rozdělila na O dvě poloviny a ke každé polovině suspenze se přidalo 2 5oo cm hydroxidu hlinitého.
Po promíchání se láhve se suspenzí protřepávali při laboratorní teplotě po dobu 4 hodin.
Po skončení tohoto poetupu je vakcína připravená a skladuje se do použití při teplotě + 4 °C. Vakcína se aplikuje subkutánně, nejlépe pod volnou kůži v krajině za lopatkou, v množství 1 cnP bez ohledu na stáří a velikost zvířete. Vakcína nevyvolává žádné vedlejší účinky.
Příklad 2
Virový antigen, způsob jeho pomnožení, příprava virové orgánové suspenze, adjuvantia a příprava vakcíny a její aplikace se shodují s postupem uvedeným v příkladu 1. Odlišná je chemická inaktivace virové orgánové suspenze, která se provedla formaIdehydem, a to 3 hod. při 37 °C a dále nejméně 3 dny při pokojové teplotě při výsledné koncentraci o,2 až o,4 % hmot, formaIdehydu.
Příklad 3
Virová orgánová suspenze připravená a inaktivovaná podle příkladu 1 se lyofilizo3 3 vala, 1 cnr lyofilícovaného antigenu se před použitím ředí 2 cm lipoidního adjuvans. Po rozpuštění se aplikuje po 1 cm^ intramuskulárně na králíka,
K ředění vakcíny se používá lipoidní adjuvans následujícího složení hmotnostně!
destilovaná voda...... 6o% parafinový olej ............... . 32 % lanolin farmaceutický . .............. 6 % tween 8o (polyoxiethylensorbitan monooleát) ............... 2 %
CS 27o77o Bl
Tvorba tíérových protilátek+ po s, c. aplikaci 1 cnr vakcíny proti moru králíků (n
1 1 1 1 1 1 1 CO 1 1 1 1 1 o 1
1 CA | o I
1 co |
1 CA i 1 OJ 1
60 | HS3 1 i
0 ! rM 1 0 1 1
© 1 * I 1 na i
Ό I I OJ i © 1
1 CO 1 1
* 1 I * O 1
CO t 1 * o 1
OJ 1 1 1 1 O 1 1 1 co 1 1 1
1 1 1 1 1 i 60 i 1 i 1 O 1
1 | o |
1 CO 1
| 1 OJ |
60 | MJ |
0 1 O 1 © 1 1
© 1 o 1 1 >ta i
Ό 1 60 1 © 1
1 CJ 1 1
• | | O 1
1 i I o 1
*4 1 1 1 O 1 1 1 OJ | 1 1
1 1 1 1 1 60 1 1 1 t 1
60 | O 1 ©
i 1 o 1 ř>
i a 1 co 1 c
1 ^—1 1 1 Aj
1 1 OJ |
KJ 1 0
C i 1 © i 1 c
© 1 o | 1 na i
Ό | ca 1 © 1
o ! O 1 1 »d
• 1 1 OJ i o 1 o
o t 1 •k f O I
I O 1 OJ | o
1 1 « Λ
1 1 1 1 1 c
t 1 1
1 t 1 Rd
1 m i 1
1 LA 1 1
•H 1 60 | o 1 cx
O 1 o | to
© 1 O 1 CD 1 AI
c 1 1 1 o
CO 1 na 1 na i h
o CA 1 © I © 1 AI
0 i i 1 1 •d
0 © 1 > 1 CA i O 1 H
> Ό 1 ° 1 O 1 0
O 1 1
P. t*— 1 O 1 t +*
1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 IA i 1 1 1 1 1 1 na &
1 1 O 1 0
I CA 1 o |
i * t 0
i O 1 1 Φ
CO 1 1 >N 1
OJ 1 na l 0 1 m
i © i 1 ©
0 I ·. 1 • g
© 1 O 1 ca i ω i
*C 1 1 60 i © 1 *4
1 O 1 0 1 co
< 1 * I 1 H
m i 1 O 1 1 H?
1 1 1 M
1 I 1 1 1 1 t>>
1 1 1 0
M 1 1 ΙΑ | 1 xc
O 1 1 ca i 1 ř>
© 1 1 O 1 1 o
C 1 1 A I C 1 >-P
I O 1 4 no
O 1 1 4 4
44 1 cr% । MS 4 ·<
60 | S 4 © 4 ta
1 > | o | 1 t»o 4
O 1 ro i © 1
Ό 1 O 1 4 43 4 <4
0 © 1 1 O 4 4
©>k 1 1 * 4 «0
Q CX 1 1 • I O I 1 1 1 4 4
I 1 1
1 © 1 K 1 t?AÍ H · *05
o 1 S J 4* © Λ 4 _j a A «Η
β 4 © 1 4a · 4 •n *3 * 4**0 4 O
1 1 4 4 4 •4 1 1 £
O 1 W -P « 1
co i C 1 HOC 4
X» | Η | 4-
^ © 4 Ίί ! wa.e i
CS 27o77o Bl
Kontrola účinnosti vakcíriy. Přežívání králíků po experimentální infekci calicivirem kmenem CAPM V-351 (dávkou orgánové suspenze i. m.)
a Λ 1 1 1 I 1 1 1 ! Ví i o 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 i 1 1 1 1 Ví 1 1 o t O 1 1 1 1 1 4 1 1 1 1 1 1 1 I 1 1 ví ! 1 O 1 O 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
β 1 1 1 1 1 1 I 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
1 o 1 o 1
ř>> kD 1 1 CM 1 1 'O
Λ ! o* MD i o 1 β
1 CM 1 ©
1 1 1 >
j 1 4 Ο
1 1 1 t >p
1 I 1 1 1 1 φ
I 1 1 KO
1 1 1 >>
1 1 1 >
1 I 1 1 1 1 φ
1 1 1
1 1 i 1 1 1 44
1 1 1 Φ
! 1 1 1 1 1 1 i XS
1 t 1 1 1 1 1 1 ο
Φ o 1 1 S i 1 1 ρ CL
>4 1 1
Φ 1 se i 1 Λ
1 I 1 Ο
fl 1 I 44 1
1 1 Φ 1 >
I o 1 1 ο
XD 1 Li 1 sd 1
43 1 CL 1 1
O 1 1 ύΗ 4 >
Ό+ 1 *Φ 1 1
1 β 1 O 1
► 3 1 M Φ 1 Li 1 β
O 1 P 64 1 CL 1 ©
44 Ό 1 64 0 1 1
Φ O 1 *o Ρ 1 1
•F^ 1 64 1 ο
xd φ 1 β >k 1 O 1 ©
H S 1 > s a i P 1 ρ
•H 1 Ή Ό / 1 β •H 1
P *4 1 > >P 1 C
O W 1 1 1 CL 1 φ
1 64 1 1 ο
1 o f\ 1 64 1 β
M 1 ft a 1 to © 1 ο
1 o 1 Φ 1 44
CD O O β 1 1 1 >64 1 1 β 1 1 Χ5
β Φ 1 o © 1 1 1 β
§ o 1 1 Μ
o o i 1 f—( 1
+» β 1 * 1 Ε
Μ »© o 1 o 1 *3
>h o ! 1 v 1
ΑΛ 1 1 1 Ο
1 1 1 I ε
1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 CL
t 1 1 1 1 4 ©
1 1 1 Τ-3
a t xo 1 XS 4
1 β 1 β 1 Φ
β 1 XS © 1 a 4 Ο
1 β 1 c. 1 C
1 © o o 0
1 > β c 43
CL 1 o 1
i β O 1 o Ο
3 * 1 44 0
1 o © 4 jd .4» 42
Jd i M > 4 1 ©
1 C0 Φ 4 φ 1
ca 1 ► β -c 1 ©
1 t 1 «♦->
4 1 4 ο
1 1 C
«ď 4 1 1 *0
44 4 4 1 ο
1 4 J
Φ«Μ >oxd i O 1 1 o i 1
o A<44 1 JD 4 t 1 1 4 CM 4 1 1 -4-

Claims (6)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU .
    1. Inaktivovaná orgánová vakcína proti moru králíků, vyznačující se tím, že jako imunogenně účinnou složku obsahuje králičí calicivirus kmen CAPM V-351, s titrem viru nejméně lo^ v 1 cm^ orgánové suspenze.
  2. 2. Způaob výroby vakcíny podle bodu 1, vyznačující se tím, že z orgánů králíků prostých specifických antivirových protilátek, kteří uhynuli po infekci virem CAPM V-351, se připraví orgánová suspenze, která se zbaví buněčného detritu centrifugací, chemicky se inaktivuje a upravuje do aplikační formy.
  3. 3. Způsob výroby vakcíny podle bodu 2, vyznačující se tím, že chemická inaktivaoe virového antigenu se provádí β-propiolaktonem po dobu nejméně 1 hod. při 37 °C, při výsledné koncentraci inaktivační látky .o,2 až o,4 % hmotnostních.
  4. 4. Způsob výroby vakcíny podle bodu 2, vyznačující se tím, že chemická inaktivaoe virového antigenu se provádí formaldehydem, a to 3 hod. při 37 °C a dále nejméně 3 dny při pokojové teplotě při výsledné koncentraci o,2 až o,4 % hmot, formaldehydu.
  5. 5. Způsob výroby vakcíny podle bodu 2, vyznačující se tím, že inaktivovaná virová orgánová suspenze se ředí fyziologickým roztokem s přídavkem o,o5 % hmot, saponinu a po promíchání se smíchá s hydroxidem hlinitým do podoby tekuté vakcíny.
  6. 6. Způsob výroby vakcíny podle bodu 2, vyznačující se tím, že inaktivovaná virová orgánová suspenze se lyofilizuje a před použitím se rozpustí v lipoidním adjuvans.
CS888644A 1988-12-22 1988-12-22 Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby CS270770B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS888644A CS270770B1 (cs) 1988-12-22 1988-12-22 Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS888644A CS270770B1 (cs) 1988-12-22 1988-12-22 Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS864488A1 CS864488A1 (en) 1989-12-13
CS270770B1 true CS270770B1 (cs) 1990-07-12

Family

ID=5437276

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS888644A CS270770B1 (cs) 1988-12-22 1988-12-22 Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS270770B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS864488A1 (en) 1989-12-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0020356B1 (en) Pasteurellosis vaccines
Briody Response of mice to ectromelia and vaccinia viruses
Weinbren et al. The occurrence of chikungunya virus in Uganda I. Isolation from mosquitoes
Weinbren, MP,* Kokernot, RH* & Smithburn Strains of sindbis-like virus isolated from culcine mosquitoes in the Union of South Africa-I. Isolation and Properties
McKercher et al. Foot-and-mouth disease in swine: I. The immune response of swine to chemically-treated and non-treated foot-and-mouth disease virus
CN115068599B (zh) 猪流行性腹泻病疫苗组合物、制备方法和应用
Kulkarni et al. Assessment of the immune response to duck plague vaccinations
CS270770B1 (cs) Inaktivovaná vakcína proti moru králíků a způsob Její výroby
Biglake Preliminary communication on the cultivation of Besnoitia besnoiti (Morotel, 1912) in tissue culture and embryonated eggs
US3470294A (en) Vaccine for immunization of dogs and foxes against distemper,hepatitis contagiosa and leptospirosis and process for preparing it
JONES et al. Vector capacity of Rhipicephalus appendiculatus and Amblyomma variegatum for Thogoto and Dhori viruses
Schaaf Avian encephalomyelitis immunization with inactivated virus
JP2007119499A (ja) エリシペロスリクス・ルシオパシエ抗原及びワクチン組成物
Palya Manual for the production of Marek's disease, Gumboro disease and inactivated Newcastle disease vaccines
Mazija et al. Immunogenicity and safety of Queensland V4 and Ulster 2C strains of Newcastle disease virus given to maternally immune, newly hatched chickens by nebulization
CN103599531A (zh) 一种鸡传染性支气管炎活疫苗、耐热保护剂及其制备方法
McKercher et al. Foot-and-mouth disease in swine: Response to inactivated vaccines
US3585108A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
RU2517733C1 (ru) Вакцина ассоциированная против аденовирусной, герпесвирусной инфекцией, парагриппа-3 и вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота инактивированная эмульсионная
CN104498440B (zh) 鹅副黏病毒鸡胚成纤维细胞适应株及其应用
CN111686246A (zh) 一种用于猪流行性腹泻病毒的抗原抗体复合物疫苗及其制备方法
GB2029219A (en) Pasteurellosis vaccines
Li et al. Multiplication of poliomyelitis virus in monkey tissues grafted onto chorioallantois of chick embryos
Van der Heide The fluorescent antibody technique in the diagnosis of avian encephalomyelitis
RU2221040C1 (ru) Штамм &#34;вниизж&#34; вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота для изготовления вакцинных и диагностических препаратов