CS268052B1 - A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin - Google Patents

A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin Download PDF

Info

Publication number
CS268052B1
CS268052B1 CS857047A CS704785A CS268052B1 CS 268052 B1 CS268052 B1 CS 268052B1 CS 857047 A CS857047 A CS 857047A CS 704785 A CS704785 A CS 704785A CS 268052 B1 CS268052 B1 CS 268052B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
antitrypsin
human
animal
serum
fraction
Prior art date
Application number
CS857047A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS704785A1 (en
Inventor
Jaroslav Korinek
Original Assignee
Jaroslav Korinek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jaroslav Korinek filed Critical Jaroslav Korinek
Priority to CS857047A priority Critical patent/CS268052B1/en
Publication of CS704785A1 publication Critical patent/CS704785A1/en
Publication of CS268052B1 publication Critical patent/CS268052B1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Způsob výroby diagnostického přípravku ke stanovení c< j- antitrypsinu v biologickém materiálu na známém principu imunizace zvířat, vyznačený purifikací imunogénu působením jednoho až čtyř hmotnostních dílů zvířecího imunoglobulinu na jeden hmotnostní díl lyofilizovaného lidského o/,- antitrypsinu, získaného z lidského séra dvojím srážením balastních sérových bílkovin pevným síranem amonným při koncentraci 400 g síranu amonného na 1 litr roztoku lidských sérových bílkovin. Zví- . řečí imunoglobulín protilátkově aktivní proti minoritním komponentům lidské <X globulinové frakce se vyrobí imunizací zvířete surovým nepuriFi kovaným lidským i- antitrypsinem a upraví se vysycením,tj. přídavkem purifikovaného lidského pí ,- antitrypsinu k antiséru tak, aby ancisérum neprecipitovalo C< antrítrypsin, ale aby precipitova lo minoritní ,- globulinové Frakce. Směs obou lyofilizátů, tj. OÍ j- antitrypsinu a imunoglobulinu proti minoritním komponentům se rozpustí y 0,06 M fosfátovém nárazníku, profiltruje vrstvou dietylaminoetylcelulózy při pH 6,8 a θζj- antitrypsin se oddělí od volné protilátky a od komplexů v rozmezí molarity 0,06 M- 0,3 M, čímž se zbaví minoritních komponentů, které rozhodují o hospodárnosti výroby. Imunizace prasat purifikovaným lidským cA ,- antitrypsinem se provede ve třech až pěti dávkách, injikací po 5 ml aluminumhydroxidové suspenze, vpichuje se 0,02% až 1% roztok Xj- antitrypsinu pětkrát ředěný suspenzí, imunizace kozse provádí kontinuálně po delší časová období v menších dávkách, úměrných hmotnosti zvířete. K séru imunizovaných zvířat se přidá albumin, orosomukoid, nebo jiná frakce lidského séra, a produkt se izoluje.A method for producing a diagnostic preparation for determining c< j- antitrypsin in biological material on the known principle of animal immunization, characterized by purification of the immunogen by the action of one to four parts by weight of animal immunoglobulin on one part by weight of lyophilized human o/,- antitrypsin, obtained from human serum by double precipitation of ballast serum proteins with solid ammonium sulfate at a concentration of 400 g of ammonium sulfate per 1 liter of human serum protein solution. Animal immunoglobulin antibody-active against minor components of the human <X globulin fraction is produced by immunizing an animal with crude unpurified human i- antitrypsin and is adjusted by saturation, i.e. by adding purified human p1,- antitrypsin to the antiserum so that the antiserum does not precipitate C< antitrypsin, but rather precipitates the minor ,- globulin fractions. The mixture of both lyophilizates, i.e. αΙ j-antitrypsin and immunoglobulin against minor components, is dissolved in 0.06 M phosphate buffer, filtered through a layer of diethylaminoethylcellulose at pH 6.8 and αζj-antitrypsin is separated from free antibody and from complexes in the molarity range of 0.06 M- 0.3 M, thereby removing minor components that determine the cost-effectiveness of production. Immunization of pigs with purified human αζ-antitrypsin is performed in three to five doses, by injection of 5 ml of aluminum hydroxide suspension, a 0.02% to 1% solution of αζ-antitrypsin diluted five times with the suspension is injected, immunization of goats is performed continuously for longer periods of time in smaller doses, proportional to the weight of the animal. Albumin, orosomucoid, or other fraction of human serum is added to the serum of immunized animals, and the product is isolated.

Description

I Vynález uvádí způsob výroby diagnostického přípravku ke stanovenícK·^ - antitrypsinu j v biologickém materiálu,u kterése řeší dosažení požadované specificity diagnostika purí, rifikací antitrypsinového imunogénu a úpravou diagnostického séra se zřetelem k mino řitním komponentům^ - globulinové frakce séra. Tyto minoritní komponenty lidského sé{ ra kontaminuji preparáty- antitrypsinu, jsou obtižnš prokazatelné a odstranitelné, avšak uplatňuji se rozhodujícím způsobem v ekonomice výrobního procesu a v kvalitě antitrypsxnového diagnostika.The present invention provides a method of making a diagnostic composition for the determination of β-antitrypsin β in a biological material, which addresses the desired specificity by purifying diagnostics, modifying the antitrypsin immunogen and treating the diagnostic serum with respect to minor components of the β-globulin fraction. These minor components of human serum contaminate antitrypsin preparations, are difficult to detect and remove, but apply decisively in the economics of the production process and in the quality of antitrypsin diagnostics.

V současné době produkuje diagnostický přípravek několik předních světových výrobců. Z analýz komerčních diagnostik, provedených v Ústavu sér a.očkovacích látek v Praze (odbor imunochemie) vyplývá, že pouze přípravek jednoho výrobce /DAKOPATTS, Dánsko/ splňuje požadavek monospecificity. Ostatní analyzované komerční preparáty, ač'deklarovány jako monospecifické, dávají v imunbelektroforéze ještě nežádoucí vedlejší nespecifickou reakci s neidentifikovaným minoritním proteinem, viditelným vc<^ - frakci jako samostatný precipitačni oblouček. Problematiku odstraněni minoritních složek z antitrypsinu uvádi odborná literatura /Piero Musiani and Thomas B.Thomasi, 3r.: Isolation, chemical, and physical properties of - antitrypsin. Biochemistry, 15,798 (1976)/.At present, the diagnostic product is produced by several leading global manufacturers. Analyzes of commercial diagnostics performed at the Institute of Serums and Vaccines in Prague (Department of Immunochemistry) show that only one product from one manufacturer (DAKOPATTS, Denmark) meets the monospecificity requirement. The other commercial preparations analyzed, although declared monospecific, give an undesirable non-specific side reaction in an immunelelectrophoresis with an unidentified minor protein visible in the α-fraction as a separate precipitation arc. The issue of removing minor components from antitrypsin is reported in the literature / Piero Musiani and Thomas B. Thomas, 3r .: Isolation, chemical, and physical properties of - antitrypsin. Biochemistry, 15,798 (1976) /.

. V ČSSR byl způsob výroby antitrypsinového diagnostika předmětem několikaletého výzkumu, posouzen oponenty a uveden do praxe. Brzy po zahájení výroby se ukázalo, že nelze diagnostikům nadále vyrábět pro neodstranítelné nespecificity, velmi slabý titr protilátek a velký počet neúspěšně imunizovaných zvířat. Byl proto vyhlášen podnikový tématický úkol č. 3/81 Zvýšení hospodárnosti, produktivity a produkce prasečího antiséra - antitrypsin, jehož řešitelem je autor tohoto vynálezu.. In the Czechoslovak Socialist Republic, the method of production of antitrypsin diagnostics was the subject of several years of research, assessed by opponents and put into practice. Soon after the start of production, it became apparent that diagnosticians could no longer produce due to irreversible non-specificities, a very low antibody titer, and a large number of unsuccessfully immunized animals. Therefore, the corporate thematic task No. 3/81 Increasing the economy, productivity and production of porcine antiserum - antitrypsin, which was solved by the author of the present invention, was announced.

Podstatou vynálezu je způsob výroby c>^ - antitrypsinového diagnostika, založené1 ho. na známém principu imunizace produkčních zvířat, vyznačující se tím, že na jeden hmotnostní díl lyofilizovaného lidského - antitrypsinu se působí jedním až čtyřmi díly zvířecího imunoglobulinu protilátkově aktivního proti minoritním komponentům cč·^ globulinové frakce lidského séra, roztok obou bílkovin v 0,06 M fosfátovém nárazníku pH 6,8 se profiltruje vrstvou dietylaminoetylcelulózy, jímají se vytékající frakce, frakce - antitrypsinu eluovaná ze sloupce v rozmezí 0,06 až 0,3 14 fosfátového nárazníku se potom injikuje produkčním zvířatům (králíkům, kozám, prasatům, ovcím, nebo jiným zvxřatům)v dávkách 0,2ml až 5 ml v koncentraci 0,02 % až 1 % antitrypsinu, a to ve 3 až 5 injekcích pro 1 zvíře. K séru imunizovaných zvířat se potom přidá albumin, orosomukoid, nebo jiná frakce lidského séra za účelem odstranění (vysycení) průvodních nežádoucích protilátek, které imunizační postup prakticky vždy provázejí. Po vysycení se produkt izoluje bu3 v podobě antiséra, nebo se z antiséra izoluje imunoglobulin, po případě specifická protilátka. Zvířecí imunoglobulin protilátkově aktivní proti minoritním komponentům lidské - globulinové frakce séra se vyrobí tak, že produkčnímu zvířeti stejného živočišného druhu použitému k výrobě diagnostika, se vpichuje surový lidskýoý^ - antitrypsin, alternativně i rozpustná síranová frakce lidského séra sraženého - síranem amonným při 40% nasyceni, a to nejméně ve 3 až 5 injekcích k dosažení co nejvyššího titru protilátek. Za 6 až 10 dnů po poslední injekci se získá zvířecí serum, ke kterému se přidá co nejmenší množství lidského<X^ - antitrypsinu, právě postačující * k odstranění protilátek protio^ - antitrypsinu, přičemž ostatní protilátky v antiséru zůstávají nevysyceny. Přítomnost jakýchkoli jiných protilátek v antiséru-jiných, než antitrypsinových-není na závadu. Z takto vysyceného antiséra se připraví imunoglobulin, jakýmkoli vhodným způsobem, například vysrážením 2M síranem amonným. Izolovaný protilátkový imunoglobulin proti minoritním komponentům - globulinové frakce séra se potom dialýzuje a lyofilizuje. K oddělení volné protilátky od rozpustných antigen-protilátkových komplexů dojde v největší míre v dalším purifikačním stupni ve vrstvě dietylaminoetylcelulozy, jak již bylo uvedeno.The present invention is a method for producing C> ^ - antitrypsinového diagnostics based one him. on the known principle of immunization of production animals, characterized in that one part by weight of lyophilized human antitrypsin is treated with one to four parts of animal immunoglobulin antibody active against minor components of the human serum globulin fraction, a solution of both proteins in 0.06 M phosphate buffer pH 6.8 is filtered through a layer of diethylaminoethylcellulose, the effluent fractions are collected, the antitrypsin fraction eluted from the column in the range of 0.06 to 0.3 14 phosphate buffer is then injected into production animals (rabbits, goats, pigs, sheep, or other animals). ) in doses of 0.2 ml to 5 ml at a concentration of 0.02% to 1% antitrypsin, in 3 to 5 injections per animal. Albumin, orosomucoid, or another fraction of human serum is then added to the serum of the immunized animals to remove the concomitant unwanted antibodies that almost always accompany the immunization process. After saturation, the product is either isolated as an antiserum or an immunoglobulin, optionally a specific antibody, is isolated from the antiserum. Animal immunoglobulin antibody active against minor components of the human serum globulin fraction is prepared by injecting crude human antitrypsin with a production animal of the same species used for diagnostic purposes, alternatively a soluble sulfate fraction of human serum precipitated with ammonium sulfate at 40% saturation. , at least in 3 to 5 injections to obtain the highest possible antibody titer. 6 to 10 days after the last injection, an animal serum is obtained to which as little human β-antitrypsin as is sufficient to remove anti-β-antitrypsin antibodies is added, while the other antibodies in the antiserum remain unsaturated. The presence of any antibodies in the antiserum - other than antitrypsin - is not detrimental. Immunoglobulin is prepared from the thus saturated antiserum by any suitable method, for example by precipitation with 2M ammonium sulfate. The isolated antibody immunoglobulin against minor components - serum globulin fractions - is then dialyzed and lyophilized. Separation of the free antibody from the soluble antigen-antibody complexes occurs to the greatest extent in the next purification step in the diethylaminoethylcellulose layer, as already mentioned.

CS 268052 BlCS 268052 Bl

Vynález řeší zvláště obtížný technologický problém, mající rozhodující význam pro použitelnost- antitrypsinového diagnostika v kvalitativní i kvantitativní imunodiagnostice. PreparátyoCy - antitrypsinu obsahují vždy 3 až 4 stopové minoritní komponenty v oblastic<2 “ - frakce séra, které Jsou velmi nebezpečné pro zdar výroby;The invention solves a particularly difficult technological problem, which is of crucial importance for the applicability of antitrypsin diagnostics in both qualitative and quantitative immunodiagnostics. Antitrypsin preparations always contain 3 to 4 trace minor components in the area of <2 “- serum fractions, which are very dangerous for the success of production;

jsou obtížně prokazatelné přímou imunoprecipitací, avšak injikovány zvířatům, navozuji u zvířat precipitující protilátky. Tyto protilátky jsou na rozdíl od benigních“ protilátek, jako je albumin, orosomukoid a většina ostatních bílkovin, maligní”, protože jsou neodstranítelné, čímž zabraňují dosažení požadované specificity diagnostika. Konečným důsledkem je pak výrobek neprodejný, nepoužitelný k specifickým kvalitativním a kvantitativním analýzám, což vede k hospodářským ztrátám. Důvodem neodstranítelnosti minoritních protilátek je absence minoritních proteinů v dostupných frakcích lidského séra, vhodných k úpravě (vysyceni) diagnostika. 'they are difficult to detect by direct immunoprecipitation, but when injected into animals, they induce precipitating antibodies in the animals. These antibodies, unlike benign "antibodies such as albumin, orosomucoid, and most other proteins, are malignant" because they are indelible, preventing the desired specificity of the diagnostic from being achieved. The end result is a product that is not for sale, unusable for specific qualitative and quantitative analyzes, which leads to economic losses. The reason for the irremovability of minor antibodies is the absence of minor proteins in the available fractions of human serum, suitable for adjustment (saturation) of diagnostics. '

Způsob výroby diagnostika podle vynálezu vede u imunizovaných zvířat ke vzniku anťitrypsinových protilátek s dobrou reprodukovatelností výrobních cyklů. Zvířecí protilátka proti minoritním komponentům je použita v purifikačním stupni preparace imunogénu ve volném, nevázaném stavu, neovlivněném vazbou na pevný nosič. Má proto i větší vazebnou kapacitu, lze ji dobře dávkovat a kontrolovat její účinnost. Protilátkou vázané nežádoucí konteminanty se spolu s nadbytkem nevyvázané protilátky odstraní přímo v purifikačnim stupni, což je nemalou výhodou, protože namísto- antitrypsinu lze použit k přípravě imunogénu celkem jednoduše připravenou rozpustnou síranovou frakcí lidského séra, získanou při 40% nasycení síranem amonným. Průvodní orosomukoid a albumin sice navodí u imunizovaných zvířat precipitační protilátky, ale ty lze snadno odstranit vysycovánim antiséra; navíc tyto frakce mají značný stabilizační vliv a omezují denaturaci antitrypsinu, ke které jinak ve značné míře dochází. Oproti protilátce fixované na pevný nosič (například ňa CN Br/sepharózu) je volná protilátka použitelná v průmyslovém měřítku s minimálními náklady. Vynález dosahuje zjednodušením preparace imunogénu, vysokou produktivitou a dobrou reprodukovatelností výroby nového a vyššího účinku v současné etapě způsobu výroby antitrypsinového diagnostika.The method of production of the diagnostic according to the invention leads to the production of anti-tetrypsin antibodies in immunized animals with good reproducibility of production cycles. The animal antibody against the minor components is used in the purification step of immunogen preparation in a free, unbound state, unaffected by binding to a solid support. It therefore has a larger binding capacity, it can be dosed well and its effectiveness can be controlled. Antibody-bound unwanted contaminants, along with excess unbound antibody, are removed directly in the purification step, which is a significant advantage because the antitrypsin site can be used to prepare the immunogen with a relatively simple soluble human serum sulfate obtained at 40% ammonium sulfate saturation. Although the concomitant orosomucoid and albumin elicit precipitation antibodies in immunized animals, these can be easily removed by saturating the antiserum; in addition, these fractions have a significant stabilizing effect and reduce antitrypsin denaturation, which otherwise occurs to a large extent. Unlike an antibody fixed on a solid support (e.g., CN Br / sepharose), the free antibody is usable on an industrial scale with minimal cost. The invention achieves a new and higher effect in the current stage of the antitrypsin diagnostic production method by simplifying the preparation of the immunogen, high productivity and good reproducibility.

Přiklad 1Example 1

Nepurifikovaný, surový- antitrypsin se vyrobí tak, že k 1 litru smíšeného séra (odpadního, tak zvaného sběrového) se přilije 1 litr 0,15 M chloridu sodného a ve směsi se rozpustí pevný síran amonný v hmotnostním množství 800 g. Sraženina se odcentrifuguje, filtruje se supernatantni tekutina přes mikrobiologický filtr, díalýzuje proti destilované vodě a lyofilizuje se. Tato lyofilizovaná frakce slouží jednak jako imunogén k získání protilátek proti minoritním frakcím séra, jednak Jako základ k výrobě čistého imunogénu.Unpurified, crude antitrypsin is prepared by adding 1 liter of 0.15 M sodium chloride to 1 liter of mixed serum (waste, so-called collection serum) and dissolving solid ammonium sulphate in an amount of 800 g by weight. The precipitate is centrifuged. the supernatant fluid is filtered through a microbiological filter, dialyzed against distilled water and lyophilized. This lyophilized fraction serves both as an immunogen to obtain antibodies against minor serum fractions and as a basis for the production of pure immunogen.

Příklad 2Example 2

Částečně purifikovaný - antitrypsin se vyrobí tak, že 2,5% roztok surového - antitrypsinu z příkladu 1, rozpuštěný v 0,05 M fosfátu pH 6,B se sráží síranem amonným postupem shodným s příkladem 1. Lyofilizací a rozpuštěním se získá roztok antitrypsinu, vhodný k přípravě imunogénu, purifikovaného protilátkou proti minoritním komponentům.Partially purified antitrypsin was prepared by precipitating a 2.5% solution of the crude antitrypsin from Example 1 dissolved in 0.05 M phosphate pH 6, B with ammonium sulfate according to Example 1. Lyophilization and dissolution gave a solution of antitrypsin. suitable for the preparation of an immunogen purified with an antibody against minor components.

Příklad 3Example 3

Imunoglobulin protilátkově aktivní proti minoritním komponentům - globulinové frakce séra byl získán tak, že produkční zvíře - prase - bylo injikováno 4x v intervalech tří týdnů nepurifikovaným, surovým- antitrypsinem z přikladu 1, přičemž každá imunizační dávka obsahovala 20 mg frakce z příkladu 1. Za 3 týdny po čtvrté injekcí byl k séru imunizovaného zvířete přidán purifikovaný lidskýX^ - antitrypsin v hmotnostním množství právě postačujícím k odstranění protilátek proti Xj - antitrypsinu, a z antiséra byl vysolen imunoglobulin 2M síranem amonným, sraženina rozpuštěna, dialyzována a lyofilizována·Immunoglobulin antibody active against minor components - serum globulin fractions was obtained by injecting the production animal - pig - 4 times at three week intervals with the unpurified, crude antitrypsin from Example 1, each immunization dose containing 20 mg of the fraction from Example 1. One week after the fourth injection, purified human β-antitrypsin was added to the serum of the immunized animal in an amount sufficient to remove antibodies to β-antitrypsin, and the antiserum was salified with 2M ammonium sulfate immunoglobulin, the precipitate was dissolved, dialyzed, and lyophilized.

CS 268052 BlCS 268052 Bl

Příklad 4Example 4

Κ 0,5 g lyofilizovaného lidského - antitrypsinu podle příkl.2 byl přidán 1 g lyofilizovaného prasečího imunoglobulinu proti minoritním komponentům- globulinové frakce lidského séra, směs rozpuštěna v 50 ml 0,06 M fosfátového nárazníku pH 6,8 a profiltrována vrstvou dietylaminoetylcelulózy, frakce purifikovaného o< χ - antitrypsinu eluována z vrstvy při zvýšené molaritě nárazníku v rozmezí 0,06M až 0,3M. Frakce obsahujících - antitrypsin byla potom použita jako imunogén k injikaci zvířat. Příklad 5Κ 0.5 g of lyophilized human antitrypsin according to Example 2 was added 1 g of lyophilized porcine immunoglobulin against minor components - human serum globulin fraction, the mixture was dissolved in 50 ml of 0.06 M phosphate buffer pH 6.8 and filtered through a layer of diethylaminoethylcellulose, fraction of purified o <χ - antitrypsin eluted from the layer at an increased buffer molarity in the range of 0.06M to 0.3M. The antitrypsin-containing fraction was then used as an immunogen to inject the animals. Example 5

Injikace prasat byla prováděna ve třech injekcích po 3 týdnech po 5 ml aluminiumhydroxidové suspenze (Al-Span) obsahující 0,1 mg až 0,3 mg purifikovanéhoantitrypsinu z přikladu 4, poslední injekce obsahovala 10 mg imunogénu (čtvrtá injekce). Za týden až 10 dnů byla získána antiséra, vysycena přídavkem roztoku lidského albuminu a individuálně podle imunoalektroforetického spektra orosomukoidovou, nebo i jinou frakci lidského séra za účelem dosažení požadované specifičnosti produktu. Příklad 6The pigs were injected in three injections 3 weeks after 5 ml of aluminum hydroxide suspension (Al-Span) containing 0.1 mg to 0.3 mg of purified antitrypsin from Example 4, the last injection containing 10 mg of immunogen (fourth injection). After one to 10 days, antisera were obtained, saturated with the addition of a solution of human albumin and, individually according to the immunoelectrophoretic spectrum, with an orosomucoid or other fraction of human serum in order to achieve the desired specificity of the product. Example 6

Injikace koz byla prováděna kontinuálně po dlouhá časová období vpíchnutím (po poradě s veterinářem) minimálního objemu emulze z příkladu 5, který zpravidla nepřevyšoval 2 až 3 ml. Podle zdravotního stavu zvířete byly potom prováděny odběry krve a při pozorovatelném poklesu titru protilátek bylo zvíře reimunizováno. Vysycení antiséra prováděno analogicky.Goats were injected continuously for long periods of time by injecting (in consultation with a veterinarian) the minimum volume of emulsion from Example 5, which generally did not exceed 2 to 3 ml. Depending on the animal's health, blood samples were taken and the animal was reimmunized with an observable decrease in antibody titer. Antiserum saturation is performed analogously.

Claims (1)

PŘEDMĚT VYNÁLEZUOBJECT OF THE INVENTION Způsob výroby diagnostického přípravku ke stanovení - antitrypsinu na principu imunizace zvířat, vyznačující se tim,. že na jeden hmotnostní díl lidského~ antitrypsinu se působí jedním až čtyřmi díly zvířecího imunoglobulinu protilátkově aktivního proti minoritním komponentům tX}. “ globulinové frakce lidského séra, roztok obou bílkovin se profiltruje vrstvou dietylaminoetylcelulózy, frakce 0^^ - antitrypsinu se vpichuje jako 0,02 až 1% roztok v dávkách 0,2 ml až 5 ml ve čtyřech nebo více injekcích králíku, koze, praseti, ovci, nebo jinému zvířeti, k séru imunizovaných zvířat se přidá albumin, oroso.mukoid, nebo jiná frakce lidského séra, a získaný produkt se izoluje.Method for the production of a diagnostic preparation for the determination of antitrypsin on the principle of immunization of animals, characterized in that that one part by weight of human antitrypsin is treated with one to four parts of an animal immunoglobulin antibody active against the minor components of tX}. “Human serum globulin fraction, the solution of both proteins is filtered through a layer of diethylaminoethylcellulose, the N 2 -antitrypsin fraction is injected as a 0.02 to 1% solution in doses of 0.2 ml to 5 ml in four or more injections of rabbit, goat, pig, sheep, or another animal, albumin, oroso.mucoid, or another fraction of human serum is added to the serum of the immunized animals, and the product obtained is isolated.
CS857047A 1986-04-03 1986-04-03 A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin CS268052B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS857047A CS268052B1 (en) 1986-04-03 1986-04-03 A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS857047A CS268052B1 (en) 1986-04-03 1986-04-03 A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS704785A1 CS704785A1 (en) 1989-08-14
CS268052B1 true CS268052B1 (en) 1990-03-14

Family

ID=5418871

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS857047A CS268052B1 (en) 1986-04-03 1986-04-03 A method of making a diagnostic composition for determining <X, - antitrypsin

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS268052B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
CS704785A1 (en) 1989-08-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hyslop Jr et al. The fixation of complement and the activated first component (C1) of complement by complexes formed between antibody and divalent hapten
Linder et al. Assay of tissue ferritin
US5599719A (en) Method for isolating biomolecules from a biological sample with linear polymers
CA1242393A (en) Digitalis antibodies, process for the preparation thereof and the use thereof for the therapy of digitalis intoxications
Corbel Identification of the immunoglobulin class active in the Rose Bengal plate test for bovine brucellosis
Innis et al. Variations in riboflavin binding by human plasma: identification of immunoglobulins as the major proteins responsible
JPH06107561A (en) Preparation of intravenous compatible immunoglobulin-g-formulation
EP3175242A1 (en) Quantifying monoclonal antibody therapeutics by lc-ms/ms
Stålenheim et al. Consumption of human complement components by complexes of IgG with protein A of Staphylococcus aureus
RU2191032C2 (en) Method of preparing immunoglobulin m-base preparation for intravenous using
Ishizaka et al. Biologic activity of soluble antigen-antibody complexes: IV. The inhibition of the skin reactivity of soluble complexes and the PCA reaction by heterologous complexes
US4911910A (en) Purified equine immunologlobulins and method of use thereof
Kaltreider et al. Porcine Immunoglobulins: I. Identification of Classes and Preparation of Specific Antisera
CS268052B1 (en) A method of making a diagnostic composition for determining &lt;X, - antitrypsin
US5147782A (en) Process for the isolation of basement membrane proteins from human and animal tissues
Poon et al. Heterogeneity of human circulating anticoagulants against antihemophilic factor (factor VIII)
Ishizaka et al. Molecular Bases of Passive Sensitization: I. Role of Disulfide Linkages in γ-Globulin Molecule
Hammer et al. Isolation and characterization of a novel plasma protein which binds to activated C4 of the classical complement pathway
RU2189833C2 (en) Method of immunoglobulin preparation preparing
JPS6118699B2 (en)
Urasawa et al. STUDIES ON POLIOVIRUS INHIBITORS IN SERA OF DOMESTIC ANIMALS IV. FRACTIONATION AND IDENTIFICATION OF POLIOVIRUS INHIBITORS
Örstavik et al. IgG subclass identification of inhibitors to factor IX in haemophilia B patients
CN100355785C (en) Method for selectively isolating IgY antibody from eggs of Anseriformes and IgY antibody obtained therefrom
RU2068693C1 (en) Method of preparing human c1-inactivating agent
JP3689888B2 (en) Method for selectively separating lgY and lgY (ΔFc) antibody isoforms from egg yolk