CS265772B1 - A method for removing heparin from blood in vitro - Google Patents
A method for removing heparin from blood in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- CS265772B1 CS265772B1 CS871442A CS144287A CS265772B1 CS 265772 B1 CS265772 B1 CS 265772B1 CS 871442 A CS871442 A CS 871442A CS 144287 A CS144287 A CS 144287A CS 265772 B1 CS265772 B1 CS 265772B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- cellulose
- starch
- blood
- propyl
- cross
- Prior art date
Links
Landscapes
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Riešenie sa týká zpósobu odstraňovania heparínu z krvi in vitro. Podstata spósobu odstraňovania heparínu z krvi, najmS z krvnej plazmy, in vitro spočívá v tom, že k 0,5 až 3 obj. dielom krvi alebo krvnej plazmy sa přidá prípravok, s výhodou vo formě tablety, obsahujúci 5 až 150 hmot. dielov aspoň jedného v krvi nerozpustného derivátu polysacharidů s naviazanými terciárnymi alebo kvartérnymi aminoskupinami s výměnnou kapacitou 0,3 až 1,3 mmol.g-1, nechá sa napučaf aspoň po dobu 1 minúty, zmes sa intenzívně mieša alebo nechá stač, až kým sa heparín naadsorbuje, pevný podiel sa oddělí a krvná plazma sa použije na testy. Prípravok přidávájúci sa ku krvi, alebo krvnej plazme, obsahuje navýše mikrokryštaliokú celulózu v množstve až 12 hmot. dielov vztiahnuté na 1 hmot. diel derivátu polysacharidů. Derivát polysacharidů sú s výhodou deriváty celulózy alebo deriváty škrobu. Riešenie má použitie v medicíně, najmS hematologii pri vyšetřovaní pacientov úžívajúcich heparín na reálny hemostatický potenciál. Ďalej všade tam, kde sa vyžaduje jednoduchý a rýchly spósob odstránenia heparínu z krvi alebo krvenj plazmy.The solution relates to a method for removing heparin from blood in vitro. The essence of the method for removing heparin from blood, especially from blood plasma, in vitro consists in adding a preparation, preferably in the form of a tablet, containing 5 to 150 parts by weight of at least one blood-insoluble polysaccharide derivative with bound tertiary or quaternary amino groups with an exchange capacity of 0.3 to 1.3 mmol.g-1 to 0.5 to 3 parts by volume of blood or blood plasma, and allowing the mixture to swell for at least 1 minute, stirring the mixture vigorously or leaving it to stand until the heparin is adsorbed, separating the solid portion and using the blood plasma for testing. The preparation added to blood or blood plasma additionally contains microcrystalline cellulose in an amount of up to 12 parts by weight based on 1 part by weight of the polysaccharide derivative. The polysaccharide derivatives are preferably cellulose derivatives or starch derivatives. The solution has applications in medicine, especially in hematology when examining patients taking heparin for real hemostatic potential. Furthermore, wherever a simple and rapid method of removing heparin from blood or blood plasma is required.
Description
265772 2265772 2
Vynález sa týká spósobu odstraňovania heparínu z krvi, najma krvnej plazmy, in vitro.The invention relates to a method for removing heparin from blood, in particular blood plasma, in vitro.
Pri liečbe tromboembolických onemocnění heparínom je nutné robit u pacienta komplexněhemokoagulačné testy, ktoré charakterizujú zdravotný stav pacienta a ukazujú úspěšnost,resp, neúspěšnost liečebného procesu. Heparín přítomný v odobratých vzrokách krvi všaktieto testy značné skresluje. Preto je potřebná rýchla a spolahlivá metoda na jeho odstrá-nenie bez akýchkolvek vedíajších efektov na krvnú plazmu. Heparín sa bežne v klinickejpraxi neutralizuje s protamínom [ J. G. Allen a kol.: J. Lab. Clin. Med. 34, 473 (1949); H. A. Perkins a kol.: J. Lab. Clin. Med. 48, 223 (1956)J, avšak titráciu sťažuje skutočnost,že v odobratej krvnej plazme pacientov sa nevie dostatočne presne hladina heparínu. Vyplývá z toho, že prebytok protaminu v plazme zostáva nedetegovaný resp. v krvnej plazme zostanenezneutralizovaný heparín, čo negativné ovplyvňuje výsledky hemokoagulačných testov. Vosvojej práci J. S. Wright a kol. už poukázali na tieto problémy [j. S. Wright a kol.: J.Cardiovas. Surg. 5, 244 <1964)3. Za účelom vyhnúť sa uvedeným problémom použili Thompsona kol. [_A. R. Thompson, R. B. Counts: J. Lab. Clin. Med. 88, 922 (1976)3 kolónovú chromato-grafiu na zachytenie heparínu a protaminu zo vzoriek krvnej plazmy. Použili stredne zásaditýanex na báze celulózy k zachyteniu heparínu a na karboxymetylcelulóze sa adsorboval protamín.Použitie kolónovej chromatografie je časovo náročné a vyžaduje odborné skúsenosti v chromato-grafii. Ďalej, část krvnej plazmy sa zachytí na stlpcoch ionomeničov, čo je nevýhodou pripediatrických prípadoch, kde sa na testovanie používá malé množstvo plazmy.When treating thromboembolic diseases with heparin, it is necessary to perform complex haemocoagulation tests in the patient, which characterize the patient's health status and show the success or failure of the treatment process. Heparin present in the collected blood samples has a great deal of distortion. Therefore, a rapid and reliable method is needed to remove it without any side effects on blood plasma. Heparin is commonly neutralized with protamine in clinical practice [J. G. Allen et al., J. Lab. Clin. Copper. 34, 473 (1949); Perkins et al., J. Lab. Clin. Copper. 48, 223 (1956) J, however, the fact that heparin blood levels are not accurately known in the collected blood plasma of patients is difficult to titrate. It follows that the protamine excess in the plasma remains undetected or undetected. unneutralized heparin remains in blood plasma, which negatively affects the results of hemocoagulation tests. J. S. Wright et al. have already pointed out these problems [j. Wright et al., J. Cardiovas. Surg. 5, 244 <1964) 3. To avoid these problems, Thompson used bikes. [_AND. R. Thompson, R. B. Counts: J. Lab. Clin. Copper. 88, 922 (1976) 3 column chromatography to capture heparin and protamine from blood plasma samples. They used medium-base cellulose-based hexane to capture heparin, and protamine was adsorbed on carboxymethylcellulose. Further, a portion of the blood plasma is trapped on the columns of ion exchangers, which is a disadvantage of the prepatric cases where a small amount of plasma is used for testing.
Uvedené nevýhody v podstatnéj miere elminuje spósob odstraňovania heparínu z krvi,najmá z krvnej plazmy, in vitro podlá vynálezu, ktorého podstata spočívá v tom, že k 0,5až 3 obj. dielom krvi *lebo krvnej plazmy sa přidá prípravok, s výhodou vo formě tablety,obsahujúci 5 až 150 hmot. dielov aspoň jedného v krvi nerozpustného derivátu polysacharidus naviazanými terciárnymi alebo kvartérnymi aminoskupinami s výměnnou kapacitou 0,3 až I, 3 mmol.g-!, nechá sa napučať aspoň po dobu 1 minúty, zmes sa intenzivně mieša alebo nechástát, až kým sa heparín naadsorbuje, pevný podřel sa oddělí a krvná plazma sa použije natesty. Prípravok přidávájúci sa ku krvi, alebo krvnej plazme, obsahuje navýše mikrokryštalickúcelulózu v množstve až 12 hmot. dielov vztiahnuté na 1 hmot. diel derivátu polysacharidu.Derivát polysacharidu sú s výhodou deriváty celulózy alebo deriváty škrobu. Derivát celulózyje vybratý zo skupiny: dietylaminoetyl celulóza, dimetylaminoetyl celulóza, trimetylamónium-atyl celulóza, dietylaminopropyl celulóza, trietylamóniumpropyl celulóza, dimetylamino-propyl celulóza, trimetylamóniumpropyl celulóza, dietylamino-2-hydroxypropyl celulóza,polyetylénimín celulóza, trietylamónium-2-hydroxypropyl celulóza, dimetylamino-2-hydroxy-propyl celulóza, celulóza sieťovaná zmesou epichlórhydrínu a dietylamínu v alkalickomprostředí, imidazólio-N,N'-diyl-bis-/2-hydroxy-3-propyl/-ový éter celulózy, chlorid dimetyl-amino-bis-/2-hydroxy-3-propyl/-ový éter celulózy, benzyldimetylamónium-2-hydroxypropylcelulóza. Derivát škrobu je vybratý zo skupiny: dietylaminoetyl sietovaný škrob, dimetyl-aminoetyl sieťovaný škrob, trietylamóniumpropyl sietovaný škrob, dimetylaminopropyl sietovanýškrob, trimetylamóniumpropyl sietovaný škrob, dietylamino-2-hydroxypropyl sietovaný škrob,polyetylénimín sietovaný škrob, trietylamónium-2-hydroxypropyl sietovaný škrob, dimetylamino--2-hydroxypropyl sietovaný škrob, trimetylamóniummetyl sietovaný škrob, dietylaminopropylsletovaný škrob, škrob sietovaný zmesou epichlórhydrínu a dietylamínu v alkalickom prostředí,imidazólio-N,N'-diyl-bis-/2-hydroxy-3-propyl/-ový éter sletovaného škrobu, chlorid dimetyl-amino-bis-/2-hydroxy-3-propyl/-ový éter sletovaného škrobu, benzyldimetylamonium-2-hydroxy-propyl sietovaný škrob. Derivát polysacharidu pozostáva z částic o velkosti 50 až 300 um,avšak je možné použit i derivát polysacharidu s menším alebo vSčším rozmerom. Výhodou navrhovaného spósobu odstraňovania heparínu z vyšetřovanéj krvi resp. krvnejplazmy in vitro je, že využívá progresívny spósob testovaciu tabletku, ako rýchlu a jednoduchámetodu na dokonalé odstránenie klinických hladin heparínu z krvnej plazmy pri stanoveniskutočného hemostatického potenciálu a monitorovaní iných koagulačných porúch u vyšetřova-ných pacientov. Ďalšou výhodou je, že testovací prípravok s adsorbovaným heparínom sa doko-nale oddělí v plazme, takže nemóže ovplyvnit následné hemokoagulačné testy na rozdiel odpredošlých spósobov. 3 265772 Příklad 1 <· K 0,5 ml krvnej plazmy v skúmavke (12x95 mm) sa přidá tableta obsahujúca 5 mg chloridimidazólio-N,N'~diyl-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy s výměnnou kapacitou1,3 mmol.g 1 a 6Ό mg mikrokryštalickej celulózy a nechá sa napučať 0,5 min pri teplote20 °C. Potom sa obsah skúmavky intenzívně zamieša na vibrátore, až kým sa čiastočky tabletyrovnoměrně rozložia v plazme a mieša sa dalej na miešadle 10 min pri teplote 20 °C. Tabletovásubstancia s adsorbovaným heparínom sa odstředí na laboratórnej centrifúge (1 200xg, 5 min)a příslušné alikvóty plazmy sa použijú na hemokoagulačné testy. Příklad 2 K 1 ml krvnej plazmy v skúmavkem (12x95 mm) sa přidá tableta obsahujúca 20 mg chloridimidazólio-N,N'-diyl-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy s výměnnou kapacitou0,7 mmol.g 1 a 60 raj mikrokryštalickej celulózy a nechá sa napučať aspoň 1 min pri teplote 22 °C.Potom sa obsah skúmavky intenzívně zamieša na vibrátore až kým sa tabletová substranciarovnoměrně rozloží v plazme a mieša sa dalej na magnetickom miešadle 10 min pri 22 °C.Tabletová substancia s adsorbovaným heparínom sa odstředí na laboratórnej centrifúge(1 200xg, 5 min) a příslušné alikvóty plazmy sa použijú na hemokoagulačné testy. Příklad 3 K 3 ml krvnej plazmy v skúmavke (12x95 mm) sa přidá tableta obsahujúca 30 mg chloridimidazólio-N,N'-diyl-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy s výměnnou kapacitou1,3 mmol.g 1 a 150 mg mikrokryštalickej celulózy a nechá sa napučať 2 min pri teplote22 °C. Potom sa obsah skúmavky intenzívně zamieša na vibrátore, až kým sa tabletová substanciarovnoměrně rozloží v plazme a nechá sa stáť pri teplote 22 °C po dobu 15 min. Tabletovásubstancia s adsorbovaným heparínom sa odstředí na laboratórnej centrifúge a příslušnéalikvóty plazmy sa použijú na hemokoagulačné testy. PřikládáThe above drawbacks are substantially altered by a method of removing heparin from blood, in particular from blood plasma, in vitro, according to the invention, which adds a preparation, preferably in the form of 0.5 to 3 parts by volume of blood or blood plasma. tablets containing 5 to 150 wt. parts of at least one blood-insoluble polysaccharide derivative bound by tertiary or quaternary amino groups having an exchange capacity of 0.3-1.3 mmol.g-1, allowed to swell for at least 1 minute, agitated vigorously or not until heparin is adsorbed the solid support is separated and the blood plasma is used in the test. The blood or blood plasma addition preparation contains up to 12 wt.% Of microcrystalline cellulose. parts based on 1 wt. The polysaccharide derivative is preferably cellulose derivatives or starch derivatives. The cellulose derivative is selected from the group consisting of: diethylaminoethyl cellulose, dimethylaminoethyl cellulose, trimethylammonium cellulose, diethylaminopropyl cellulose, triethylammonium propyl cellulose, dimethylamino propyl cellulose, trimethylammonium propyl cellulose, diethylamino-2-hydroxypropyl cellulose, polyethyleneimine cellulose, triethylammonium 2-hydroxypropyl cellulose, dimethylamino- 2-hydroxy-propyl cellulose, cellulose crosslinked with a mixture of epichlorohydrin and diethylamine in alkaline medium, imidazolium-N, N'-diyl-bis- (2-hydroxy-3-propyl) cellulose ether, dimethyl amino-bis- (2) chloride -hydroxy-3-propyl / cellulose ether, benzyldimethylammonium 2-hydroxypropylcellulose. The starch derivative is selected from the group consisting of: diethylaminoethyl cross-linked starch; -2-hydroxypropyl cross-linked starch, trimethylammonium methyl cross-linked starch, diethylaminopropyl-starch starch, epichlorohydrin-diethylamine alkaline starch starch, imidazolium-N, N'-diyl-bis- (2-hydroxy-3-propyl) ether starch ether, dimethyl amino-bis- (2-hydroxy-3-propyl) ether starch ether, benzyldimethylammonium 2-hydroxy-propyl cross-linked starch. The polysaccharide derivative consists of particles having a particle size of 50 to 300 µm, but it is also possible to use a polysaccharide derivative with a smaller or larger dimension. The advantage of the proposed method of removing heparin from the blood of interest Blood Plasma In Vitro is that it utilizes a progressive test tablet method, as a quick and easy way to completely eliminate clinical plasma heparin levels at a determined hemostatic potential and to monitor other coagulation disorders in the patients being examined. A further advantage is that the heparin-adsorbed test preparation is well separated in the plasma, so it cannot affect subsequent hemocoagulation assays in contrast to previous methods. EXAMPLE 1 <0.5 ml of blood plasma in a tube (12x95 mm) is supplemented with a tablet containing 5 mg of chloridimidazolium-N, N'-diyl-bis / 2-hydroxy-3-propyl / cellulose ether with exchange. with a capacity of 1.3 mmol.g 1 and 6 mg mg of microcrystalline cellulose and allowed to swell for 0.5 min at 20 ° C. Thereafter, the tube contents are vigorously mixed on the vibrator until the particles are evenly distributed in the plasma and stirred on the stirrer for 10 minutes at 20 ° C. The heparin-adsorbed tablet substitute is centrifuged in a laboratory centrifuge (1200xg, 5 min) and the respective plasma aliquots are used for hemocoagulation assays. Example 2 To 1 ml of blood plasma in a tube (12x95 mm) is added a tablet containing 20 mg of chloridimidazole-N, N'-diyl-bis (2-hydroxy-3-propyl) cellulose ether with a exchange capacity of 0.7 mmol. 1 and 60 microns of microcrystalline cellulose and allowed to swell for at least 1 min at 22 ° C. Thereafter, the vial contents are vigorously stirred until the tablet is evenly distributed in plasma and stirred for 10 min at 22 ° C on a magnetic stirrer. the heparin-adsorbed substance is centrifuged in a laboratory centrifuge (1200xg, 5 min) and the appropriate plasma aliquots are used for hemocoagulation assays. Example 3 A tablet containing 30 mg of chloridimidazole-N, N'-diyl-bis (2-hydroxy-3-propyl) cellulose ether with a exchange capacity of 1.3 mmol is added to 3 ml of blood plasma in a tube (12x95 mm). 1 and 150 mg microcrystalline cellulose and swelled for 2 min at 22 ° C. The tube is then vigorously mixed on the vibrator until the tablet is evenly distributed in the plasma and allowed to stand at 22 ° C for 15 min. Heparin-adsorbed tablet substitutes are centrifuged in a laboratory centrifuge and appropriate plasma aliquots are used for hemocoagulation assays. Attaches
Postupuje sa ako v příklade 3 s tým rozdielom, že sa použije 150 mg tableta chloridimidazólio-N,N'-diyl-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy s výměnnou kapacitou0,3 mmol.g 1. Příklad 5The procedure is as in Example 3 except that a 150 mg tablet of the chlorimidimidazole-N, N'-diyl-bis (2-hydroxy-3-propyl) cellulose ether with an exchange capacity of 0.3 mmol / g is used. 5
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 5 mgdietylaminoetyl celulózy s výměnnou kapacitou 1 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy.The procedure is as in Example 1 except that a tablet containing 5 mg of diethylaminoethyl cellulose with an exchange capacity of 1 mmol / g and 60 mg of microcrystalline cellulose is added.
Príklad6Example6
Postupuje sa ako v příklade 2 a tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 20 mgtrimetylamóniumetyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,7 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickejcelulózy. Příklad 7The procedure is as in Example 2, except that a tablet containing 20 mg of trimethylammonium ethyl cellulose with an exchange capacity of 0.7 mmol / g and 60 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 7
Postupuje sa ako v příkladě 3 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 30 mgtrietylamóniumpropyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,7 mmol.g-1 a 150 mg mikrokryštalickejcelulózy. Příklad 8The procedure is as in Example 3 except that a tablet containing 30 mg of triethylammonium propyl cellulose with an exchange capacity of 0.7 mmol / g and 150 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 8
Postupuje sa ako v příklade 4 s tým rozdielom, že sa přidá 150 mg tableta dietylamino--2-hydroxypropyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,3 mmol.g 1. 265772 4Proceed as in Example 4, except that a 150 mg tablet of diethylamino-2-hydroxypropyl cellulose with an exchange capacity of 0.3 mmol / g is added.
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 5 mg aktivněj látky pripravenej reakciou celulózy, epichlórhydrínu a dietylamínu v alkalickom prostředí s výměnnou kapacitou 1,3 mmol.g 1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy. Příklad 9 Příklad 10The procedure is as in Example 1 except that a tablet containing 5 mg of active substance prepared by reaction of cellulose, epichlorohydrin and diethylamine in an alkaline medium with an exchange capacity of 1.3 mmol / l and 60 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 9 Example 10
Postupuje sa ako v příklade 2 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 20 mgpolyetylénimín celulózy s výměnnou kapacitou 0,6 mmol.g 1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy. Příklad 11The procedure is as in Example 2 except that a tablet containing 20 mg of polyethyleneimine cellulose with an exchange capacity of 0.6 mmol / l and 60 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 11
Postupuje sa ako v příklade 3 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 30 mgdimetylaminoetyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,7 mmol.g 1 a 150 mg mikrokryštalickejcelulózy. Příklad 12The procedure is as in Example 3 except that a tablet containing 30 mg of dimethylaminoethyl cellulose with an exchange capacity of 0.7 mmol / l and 150 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 12
Postupuje sa ako v příklade 4 s tým rozdielom, že sa přidá 150 mg tableta trietylamónium--2-hydroxypropyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,3 mmol.g 1. Příklad 13 postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 5 mgtrimetylamóniumpropyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,6 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickejcelulózy. Příklad 14The procedure is as in Example 4 except that a 150 mg tablet of triethylammonium 2-hydroxypropyl cellulose with an exchange capacity of 0.3 mmol g is added. Example 13 is followed as in Example 1 except that a tablet is added containing 5 mg of trimethylammonium propyl cellulose with an exchange capacity of 0.6 mmol / g and 60 mg of microcrystalline cellulose. Example 14
Postupuje sa ako v příklade 2 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 20 mgchlorid dimetylamino-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy s výměnnou kapacitou0,6 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy. Příklad 15The procedure is as in Example 2 except that a tablet containing 20 mg of dimethylamino-bis / 2-hydroxy-3-propyl / cellulose ether with an exchange capacity of 0.6 mmol / g and 60 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 15
Postupuje sa ako v příklade 3 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 30 mgbenzyldimetylamónium-2-hydroxypropyl celulózy s výměnnou kapacitou 0,6 mmol.g 1 a 150 mgmikrokryštalickej celulózy. Příklad 16 í;The procedure is as in Example 3 except that a tablet containing 30 mg of benzyldimethylammonium 2-hydroxypropyl cellulose with an exchange capacity of 0.6 mmol / l and 150 mg of microcrystalline cellulose is added. Example 16 I;
VivViv
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 5 mgchlorid imidazólio-N,N'-diyl-bis/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru sletovaného škrobu s výměn-nou kapacitou 1,3 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy. Příklad 17The procedure is as in Example 1, except that a tablet containing 5 mg of imidazolium-N, N'-diyl-bis / 2-hydroxy-3-propyl / ether-starch ether with a capacity of 1.3 mmol is added. g-1 and 60 mg of microcrystalline cellulose. Example 17
Postupuje sa ako v příklade 2 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 10 mgdietylaminoetyl celulózy a 10 mg dietylaminohydroxypropyl celulózy s výměnnou kapacitou0,7 mmol.g-1 a 60 mg mikrokryštalickej celulózy. Příklad 18The procedure is as in Example 2 except that a tablet containing 10 mg diethylaminoethyl cellulose and 10 mg diethylaminohydroxypropyl cellulose with an exchange capacity of 0.7 mmol / g and 60 mg microcrystalline cellulose is added. Example 18
Postupuje sa ako v příklade 3 s tým rozdielom, že sa přidá tableta obsahujúca 15 mgchlorid imidazólio-N,N'-diyl-bis-/2-hydroxy-3-propyl/-ového éteru celulózy a 15 mg chloridThe procedure is as in Example 3 except that a tablet containing 15 mg of imidazolium-N, N'-diyl-bis- (2-hydroxy-3-propyl) cellulose ether and 15 mg of chloride is added.
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS871442A CS265772B1 (en) | 1987-03-04 | 1987-03-04 | A method for removing heparin from blood in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS871442A CS265772B1 (en) | 1987-03-04 | 1987-03-04 | A method for removing heparin from blood in vitro |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS144287A1 CS144287A1 (en) | 1989-02-10 |
CS265772B1 true CS265772B1 (en) | 1989-11-14 |
Family
ID=5348796
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS871442A CS265772B1 (en) | 1987-03-04 | 1987-03-04 | A method for removing heparin from blood in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS265772B1 (en) |
-
1987
- 1987-03-04 CS CS871442A patent/CS265772B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS144287A1 (en) | 1989-02-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AT507846B1 (en) | SORPTION FOR ENDOTOXINES | |
DE3880577T2 (en) | HEPARINE DERIVATIVES, METHOD FOR THE PRODUCTION AND USE THEREOF FOR PHARMACEUTICAL PURPOSES. | |
DE102006055558A1 (en) | Adsorbent for removing endotoxins from solutions comprises a ligand in the form of an amine-functional molecule in which some of the amine groups are modified with an amine-reactive molecule | |
AT509192A4 (en) | SORPTION FOR ENDOTOXINES | |
RU2608743C2 (en) | Production of molecular-imprinted polymers as result of cross-linking | |
EP0851871A1 (en) | Inhibition of tumor growth | |
SE449753B (en) | MUCOPOLYSACCARIDE COMPOSITION WITH REGULATORY EFFECTS ON COAGULATION, MEDICINAL CONTAINING ITS SAME AND PROCEDURE FOR PREPARING THEREOF | |
CN103055822A (en) | Blood-purifying adsorbent for clearing blood bilirubin and preparation method thereof | |
DE3926539C2 (en) | ||
CA1243309A (en) | Products based on polymers or copolymers and process for the preparation thereof | |
CZ299652B6 (en) | Process for preparing an extract of ginkgo biloba leaves highly enriched with active principles | |
JP2003524680A (en) | Affinity control type material using stimulus-responsive polymer and separation / purification method using the material | |
CS265772B1 (en) | A method for removing heparin from blood in vitro | |
EP1256380B1 (en) | Adsorbents for blood perfusion and their preparation method | |
CS261814B1 (en) | Agent for heparine removing from blood in vitro | |
EP0321597B1 (en) | Selective adsorbent for binding low-density lipoproteins | |
Hampton | The study of platelet behaviour and its relevance to thrombosis | |
JP2020173228A (en) | Glycosaminoglycan analysis method | |
US5843920A (en) | Anionic saccharides for extraction of anti-angiogenic protein from cartilage | |
KR0149793B1 (en) | Purification method of high molecular weight hyaluronic acid | |
CH660634A5 (en) | METHOD FOR PRODUCING NATURAL IMMUNOADSORB. | |
JP2022026938A (en) | Method and kit for labeling sugar chains | |
CN116037081B (en) | A cell membrane chitosan ferroferric oxide microsphere and its preparation method and application | |
DE19818485B4 (en) | Reaction vessels coated with a cis-diol-specific affinity medium, as well as processes for their preparation | |
Bhattarai et al. | Separation and Purification of Bioactive Molecules by Ion Exchange |