CS263695B1 - Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c - Google Patents

Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c Download PDF

Info

Publication number
CS263695B1
CS263695B1 CS871157A CS115787A CS263695B1 CS 263695 B1 CS263695 B1 CS 263695B1 CS 871157 A CS871157 A CS 871157A CS 115787 A CS115787 A CS 115787A CS 263695 B1 CS263695 B1 CS 263695B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
culture
nutrient solution
galactose
production
starch
Prior art date
Application number
CS871157A
Other languages
Czech (cs)
Other versions
CS115787A1 (en
Inventor
Jiri Ing Csc Doucha
Jiri Ing Kopecky
Josef Ing Csc Kolina
Miroslav Ing Smazik
Original Assignee
Jiri Ing Csc Doucha
Jiri Ing Kopecky
Kolina Josef
Miroslav Ing Smazik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiri Ing Csc Doucha, Jiri Ing Kopecky, Kolina Josef, Miroslav Ing Smazik filed Critical Jiri Ing Csc Doucha
Priority to CS871157A priority Critical patent/CS263695B1/en
Publication of CS115787A1 publication Critical patent/CS115787A1/en
Publication of CS263695B1 publication Critical patent/CS263695B1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Způsob řízení biosyntézy se provádí jednorázovou kultivací dceřiných buněk synchronní kultury řas rodu Porphyridium v minerálním živném roztoku bez dusíkatých sloučenin (teplota 24 až 28 °C, osvětlení povrchu kultivační nádoby 60 až 80 Hm-2 FAR, prostředí: směs plynného dusíku a stabilního izotopu uhlíku ve formě CO2)· Na začátku výrobní kultivace se odstraní slizové látky vyloučené během předvýrobní kultivace v prostředí neradioaktivního “CO? buňkami řas do živného roztoku obsahujícího dusíkaté sloučeniny. Dosahuje se vysoké výtěžnosti florideového škrobu, galaktózy a xylózy, jakož i jejich vysokého izotopového obohacení. Postup výroby se vyznačuje jednoduchostí a vysokou bezpečností práce.A method of controlling biosynthesis is performed single culturing of daughter cells synchronous Porphyridium algae culture in mineral nutrient solution without nitrogen compounds (temperature 24 to 28 ° C, illumination the surface of the culture vessel 60 to 80 Hm -2 FAR, medium: nitrogen gas mixture and stable of carbon isotope in the form of CO2) the mucilage is removed from the production culture excreted during pre-production in the environment non-radioactive “CO? algal cells into a nutrient solution containing nitrogen compounds. High yield is achieved florida starch, galactose and xylose, as well as their high isotopic enrichment. The manufacturing process is characterized by simplicity and high work safety.

Description

Vynález se týká způsobu řízené blosyntézy galaktozy, xylozy a florIdeového škrobu, nespecificky značených stabilním izotopem uhlíku ( C).The present invention relates to a process for the controlled blosynthesis of galactose, xylosis and florid starch not specifically labeled with the stable carbon isotope (C).

Postupy výroby florideového škrobu a xylózy značených stabilním izotopem uhlíku nejsou z literatury známy. Postup přípravy galaktozy nespecificky značené stabilním izotopem uhlíku popisuje ve své práci Kollman et al. (J. Labell. Corap. Radioph. XVI: 833-841, 1979). K biosyntéze galaktozy bylo použito stélkaté ruduchy rodu Gigartina vyznačující se velmi pomalým růstem, neboř doba zdvojení organické hmoty pěstované kultury se pohybuje řádově ve stovkách hodin. Další nevýhodou popsaného postupu je nízké izotopové obohacení konečného produktu 13 13 (55 ») a veliké ztráty suroviny, C02, neboř pouze 3 % z celkového množství C02 bylo inkorporováno do požadované D-galaktózy.Methods for producing stable isotope labeled floride starch and xylose are not known in the literature. The procedure for the preparation of galactose not specifically labeled with a stable carbon isotope is described in Kollman et al. (J. Labell. Corap. Radioph. XVI: 833-841, 1979). The galactose biosynthesis was performed by Gigartina, an insect ore, characterized by very slow growth, since the doubling time of the cultivated organic matter is in the order of hundreds of hours. Another disadvantage of the described process is the low isotopic enrichment of the final product 13 13 (55%) and the high loss of raw material, CO 2 , since only 3% of the total amount of CO 2 has been incorporated into the desired D-galactose.

Tyto nevýhody odstraňuje způsob řízené biosyntézy podle vynálezu, jehož podstatou je, že se provede jednorázová kultivace dceřiných buněk synchronní kultury řas rodu Porphyridium po dobu 32 až 38 hodin v minerálním živném roztoku bez sloučenin dusíku pří teplotě 24 až °C v prostředí směsi plynného dusíku a stabilního izotopu uhlíku ve formě kysličníku “2 uhličitého při osvětlení povrchu kultivační nádoby 60 až 80 Wm FAR, přičemž se na začátku výrobní kultivace odstraní slizové látky, vyloučené během předvýrobní kultivace v prostředí 12 neradioaktivního kysličníku uhličitého CO2 bunakmi řas do živného roztoku, obsahujícího dusíkaté sloučeniny.These disadvantages are overcome by the controlled biosynthesis process of the present invention, which consists in carrying out a one-time culture of daughter cells of synchronous algae of the genus Porphyridium for 32-38 hours in a nitrogen-free mineral nutrient solution at 24 ° C in a nitrogen gas mixture and stable carbon isotope in the form of carbon dioxide 2 by illuminating the surface of the cultivation vessel 60 to 80 Wm FAR, removing at the beginning of the production cultivation the mucilages deposited during pre-production in environment 12 of non-radioactive CO 2 by algae cells into a nutrient-containing nutrient solution compounds.

Zásobním vnitrobuněčným pólysacharidem ruduch rodu Porphyridium je florideový škrob, který je vzhledem k chemické struktuře velmi vhodným substrátem pro enzymatické zpracováni amylázami. Kromě produkce florideového škrobu vylučují použité ruduchy při metabolismu do živného roztoku slizové látky, jejichž hlavním podílem jsou kyselé pólysacharidy, které po hydrolýze poskytují D a L galaktózu, D-xylózu a D-glukózu.The storage intracellular polysaccharide of the porphyridium species is Florida starch, which, due to its chemical structure, is a very suitable substrate for the enzymatic treatment of amylases. In addition to the production of Florida starch, the red ores used during the metabolism secrete into the nutrient solution mucilages, the main part of which are acidic polysaccharides, which after hydrolysis yield D and L galactose, D-xylose and D-glucose.

Množství slizů tvoří za obvyklých kultivačních podmínek 10 až 20 % suché hmoty buněk řas; podíl sacharidů v suché hmotě extracelulárníchs lizů zpravidla nepřesahuje 30 %. Množství florideového škrobu se pohybuje nejčastěji v rozmezí od 10 do 20 % suché hmoty buněk.The amount of mucilages constitutes 10 to 20% of the dry mass of algae cells under normal culture conditions; the proportion of carbohydrates in the dry matter of extracellular lesions generally does not exceed 30%. The amount of Florida starch is most often in the range of 10 to 20% dry cell mass.

Řízená syntéza uvedených sacharidů probíhá v prostředí, kde výhradním zdrojem uhlíku je 13CO2. Ke kultivaci se použije dceřiných buněk synchronní populace vybraného kmene řas jednobuněčné ruduchy Porphyridium, převedené do minrálniho živného roztoku bez dusíkatých sloučenin. Odstranění dusíkatých iontů ze živného roztoku má za následek zastavení proteosyntézy, což způsobuje hromadění florideového škrobu v buňkách a zvýšenou rychlost syatézy slizů vylučovaných do živného roztoku vně buněk současně se zvýšením obsahu galaktozy a xylózy v poměru ke glukóze.The controlled synthesis of these carbohydrates takes place in an environment where the exclusive carbon source is 13 CO 2 . For cultivation, daughter cells of a synchronous population of a selected strain of algae of the unicellular Porphyridium algae transferred to a mineral nutrient-free solution are used. Removal of nitrogen ions from the nutrient solution results in a halt of proteosynthesis, causing the accumulation of Florida starch in the cells and an increased rate of syseesis of mucus secreted into the nutrient solution outside the cells simultaneously with an increase in galactose and xylose content relative to glucose.

Dosaženi vysokého izotopového obohacení škrobu je- podmíněno použitím synchronní kultury, tj. takové, u níž jsou všechny buňky ve stejném stadiu životního cyklu. Synchronizace se provádí metodou střídání period světla a tmy. K výrobní kultivaci je použito nejmladších buněk, u nichž je množství florideového škrobu nejnižší, neboř byl spotřebován v energeticky náročných metabolických procesech během dělení buněk v temné periodě předchozího synchronního cyklu. Nízké počáteční množství škrobu na začátku výrobní kultivace je jednou z podmínek jeho vysokého izotopového obohacení na konci výrobního cyklu. Odetranění slizových obalů před inkorporací značeného uhlíku do buněčných struktur a do nově se tvořícího slizu má za následek dosažení vysoké specifické aktivity slizových sacharidů.Achieving high isotopic enrichment of starch is contingent upon the use of a synchronous culture, ie one in which all cells are at the same stage of the life cycle. Synchronization is done by alternating the light and dark periods. The youngest cells with the lowest amount of Florida starch are used for production cultivation, as they have been consumed in energy-intensive metabolic processes during cell division in the dark period of the previous synchronous cycle. The low initial amount of starch at the beginning of the production culture is one of the conditions for its high isotopic enrichment at the end of the production cycle. Removal of the mucilaginous coatings before incorporation of labeled carbon into cell structures and into the newly formed mucilage results in a high specific activity of mucilaginous carbohydrates.

Výhody navrhovaného způsobu řízené kultivace řas podle vynálezu spočívají zejména:Advantages of the proposed method of controlled cultivation of algae according to the invention are in particular:

- racionálním využití cenného 13CO2, neboř ten je během růstu kultury inkorporován z více než 90 » do požadovaných sloučenin- rational use of valuable 13 CO 2 , since it is incorporated from more than 90 »into desired compounds during the growth of the culture

- ve vysoké výtěžnosti floridéového žkrobu, neboř během výrobní kultivace probíhá v buňkách jeho výhradní syntéza, takže na konci výrobního cyklu přesahuje jeho množství 60 % suché hmoty řas ve vysokém izotopovém obohacení škrobu způsobeném tím, že se jeho množství během výrobní kultivace zvýší 15x. To má za následek, že zastoupení atomů v molekulách glukózy je po hydrolýze škrobu vyšší než 80 %.- in the high yield of Florida starch, since during the production cultivation the cells are exclusively synthesized, so that at the end of the production cycle its amount exceeds 60% of dry algae mass in high isotopic enrichment of starch caused by increasing it during production cultivation 15 times. As a result, the proportion of atoms in the glucose molecules is greater than 80% after starch hydrolysis.

- v» vysokém izotopovém obohacení extracelulárních pólysacharidů, dosaženém jejich syntézou de novo na 22CO2 - in »high isotopic enrichment of extracellular polysaccharides achieved by their de novo synthesis to 22 CO 2

- v jednoduchosti a bezpečnosti výrobních operací- in the simplicity and safety of manufacturing operations

- ve vysoké rentabilitě výroby uvedených sloučenin.- high profitability of the production of said compounds.

Dále je uveden příklad způsobu řízené biosyntézy podle vynálezu.The following is an example of a controlled biosynthesis method of the invention.

PříkladExample

a) Předvýrobní kultivace(a) Pre-production cultivation

Přípravná kultivace a vlastní výrobní kultivace se provádějí v kultivačním zařízení, popsaném v čs. AO 197 918. Ke kultivaci sepoužije vybraná kultura řas rodu Porphyrldium přechovávané ve zkumavkách na agarových půdách, obohacených minerálním živným roztokem při teplotě 15 °C a ozářenosti 10 Hm2 FAR. FAR znamená fotosynteticky účinné záření, měřené spektrálně neselektivním čidlem, citlivým pouze v oblasti 400-700 nm.The preparatory cultivation and the actual production cultivation are carried out in the cultivation device described in the Czech Republic. AO 197 918. A selected culture of algae of the genus Porphyrldium kept in test tubes on agar soils enriched with a mineral nutrient solution at a temperature of 15 ° C and an irradiation of 10 Hm 2 FAR is used for cultivation. FAR means photosynthetically effective radiation, measured by a spectrally non-selective sensor, sensitive only in the region of 400-700 nm.

Kultura se z agaru převede do tekutého živného roztoku tohoto složení:The culture is transferred from agar to a liquid nutrient solution of the following composition:

sloučenina compound koncentrace, concentration, KC1 KC1 Chlorid draselný Potassium chloride 4 4 010 010 NaCl NaCl chlorid sodný sodium chloride 3 3 130 130 kno3 kno 3 dusičnan draselný potassium nitrate 620 620 MgSO4.7H2OMgSO 4 .7H 2 O síran draselný potassium sulphate 1 1 250 250 k2hp°4 to 2 hp ° 4 hydrogenfosforečnan draselný Potassium hydrogen phosphate 330 330 ca(NO3)2.4H2oca (NO 3 ) 2 .4H 2 o dusičnan vápenatý calcium nitrate 85 85 K1 K1 jodid draselný potassium iodide .25 .25 KBr KBr bromid draselný potassium bromide 25 25 C10H12N2O8Fel,a'aq· C 10 H 12 N 2 O 8 Fel, and 'q · chelatonát železito-sodný ferric sodium chelatonate 18,5 18.5 h3bo4 h 3 bo 4 kyselina boritá boric acid 3,1 3.1 MnSO4.4H2OMnSO 4 .4H 2 O síran manganatý manganese sulphate 1,2 1,2 CoS04.7H2OCoSO 4 .7H 2 O síran kobaltnatý cobalt sulphate 1,4 1.4 CuSO4.5H2OCuSO 4 .5H 2 O síran měňnatý copper sulphate 1,2 1,2 ZnSO4.7H2OZnSO 4 .7H 2 O síran zinečnatý Zinc sulphate 1,4 1.4 (NH4)6Μο7024·4H2O(NH 4 ) 6 ° 7 0 24 · 4H 2 O molybdenan amonný ammonium molybdate 1,8 1,8

V uvedeném živném roztoku se kultura udržuje jako zásobní při trvalém osvětlení 25 Wm~ a teplotě 24 °C a optické hustotě řasové suspenze Α^θ “ 0,200-0,400 a takové koncentraci 12CO2 ve směsi se vzduchem, která odpovídá 2 6 rozpuštěného CO2 v suspenzi řas. Optická hustota A?50 je měřena při vlnové délce 750 nm v 5mm kyvetě na fotometru. Znásobíme-li hodnotu optické hustoty koeficientem 2, získáme přibližnou hodnotu suché hmoty řas.In said nutrient solution, the culture is maintained as a stock under continuous illumination of 25 Wm ~ and a temperature of 24 ° C and an optical density of the algal suspension of 0.200-0.400 and a concentration of 12 CO 2 mixed with air corresponding to 26 dissolved CO 2 in algae suspension. The optical density ?50 is measured at a wavelength of 750 nm in a 5mm cell on a photometer. If we multiply the optical density by 2, we get the approximate value of dry algae mass.

Ze zásobní kultury se odebere část suspenze k přípravě synchronní populace, která se získá vystavením kultury střídavě periodám ozáření a tmy v intervalech 10:14 h při kultivační teplotě 24 °C a ozářenosti povrchu kultivační i nádoby = 80 Wm-2 FAR. Vlastní kultivace synchronních řas probíhá v průtokovém chemostatickém režimu při zředovací rychlosti D = = 0,06 h1.A portion of the suspension is withdrawn from the stock culture to prepare a synchronous population, which is obtained by exposing the culture alternately to irradiation and dark periods at 10:14 h at a culture temperature of 24 ° C and a culture irradiation surface of vessel = 80 Wm -2 FAR. The actual cultivation of synchronous algae takes place in a flow chemostatic regime at a dilution rate D = 0.06 h 1 .

Zředovací rychlost D vyjadřuje podíl celkového objemu kultury, který se za jednotku času plynule nahražuje živným roztokem. Rovná se u ustálené průtokové kultury specifické růstové rychlosti, tj. D » u. Tento režim dovoluje dokonale stabilizovat kultivační podmínky a automatizovat průběh kultivace. V ustálené, plně synchronní kultuře je střední ozářenost populace, která ovlivňuje rychlost biochemických procesů v populaci řas konstantní po celou světelnou priodu cyklu» optická hustota předvýrobní kultury se pohybuje v rozmezíThe dilution rate D is the proportion of the total culture volume that is continuously replaced by the nutrient solution per unit time. It is equal to a specific growth rate for a steady-state flow culture, ie D »u. This mode allows perfectly stabilizing the cultivation conditions and automating the cultivation process. In a stable, fully synchronous culture, the mean population irradiance that affects the rate of biochemical processes in the algae population is constant throughout the light cycle of the cycle »the optical density of the pre-production culture is in the range

A750 - 0,270-0,280.A 750 - 0.270-0.280.

b) Výrobní kultivace(b) Production cultivation

Hodinu před ukončením temné periody přípravného synchronního cyklu se výrobní fotoreaktor naplní 1 000 ml anorganického roztoku, který se liší od živného roztoku předvýrobní kultivace tím, že je z něho odstraněn KNO-j a Ca (NO^^·*^0 je nahrazen CaCl2 tak, aby množství Ca++ v roztoku zůstalo zachováno. Takto upravený živný roztok se zbavuje veškerého fyzikálně rozpuštěného 12CO2 zahřátím na 100 °C. Z plynného prostoru kultivační aparatury se vytěsní vzduch a nahradí plynným dusíkem, načež se tento uzavřený prostor částečně evakuuje (na cca 500 torů). Poté se živný roztok v bioreaktoru nasytí 13C0,, který vzniká, ve vyviječi 13 dávkováním 1 N HCIO^ do suspenze Ba CO^. Rovnovážný stav v živném roztoku rozpuštěného CC>2 s atmosférou, obsahující 2 % CO2, nastane asi po 30 minutách intenzivního probublávání. Během úpravy živného roztoku se odstředí populace dceřiných buněk synchronní kultury z předvýrobní kultivace. Supernatant s extracelulárnlmi slizovými látkami se odstraní. Sediment řas se promyje živným roztokem, určeným k výrobní kultivaci a znovu se odstředí. Odstřelování se provádí po dobu 10 minut při 4 000 g a teplotě 5 °C. Po druhé centrifugaci se sediment dceřiných buněk šetrně roztřepe a ve formě hustého inokula se vpraví do kultivačního válce s uvedeným optimalizovaným živným roztokem.One hour before the end of the dark period of initial synchronous cycle production photoreactor filled with 1000 ml of inorganic solution, which differs from the pre-culture broth by being removed therefrom and KNO-j Ca (NO · ^^ * ^ 0 is replaced by a CaCl 2 and that the amount of Ca ++ in the solution remained unchanged. the treated broth is freed of all physically dissolved CO2 12 by heating to 100 ° C. from the gas space of the culture apparatus, the air is displaced and replaced with nitrogen gas, whereupon this enclosed space is partially evacuated (to Then, the nutrient solution in the bioreactor is saturated with 13 CO, which is produced, in the generator 13, by adding 1 N HClO2 to the BaCO2 suspension. Equilibrium in the nutrient solution dissolved in CC> 2 with an atmosphere containing 2% CO 2 , occurs after about 30 minutes of vigorous bubbling. The supernatant with extracellular mucilages is removed and the algae sediment is washed with the nutrient solution to be cultivated and centrifuged again. The centrifugation is carried out for 10 minutes at 4000 g and a temperature of 5 ° C. After the second centrifugation, the sediment of the daughter cells is gently shaken and introduced in the form of a thick inoculum into a culture cylinder with said optimized nutrient solution.

Vlastní výrobní kultivace probíhá jednorázově po dobu 36 hodin. Za tuto dobu se hmota buněk zvýší 5x a mnžoství škrobu se zvýší z 20 % na 60-65 % suché hmoty buněk. V živném roztoku se vytvoří tolik slizových látek, které představují cca 20 4 suché hmoty buněk.The actual production cultivation is carried out once for 36 hours. During this time, the cell mass is increased 5-fold and the amount of starch is increased from 20% to 60-65% dry cell mass. In the nutrient solution, so many slime substances are formed which represent approximately 20 4 dry cell masses.

Podmínky výrobní kultivace:Production cultivation conditions:

počáteční optická hustota suspenze A--n “ 0,500, kultivační teplota 24 °C, parciální tlakInitial optical density of suspension A-- n '0.500, culture temperature 24 ° C, partial pressure

-2-2

CO2 1,96 kPa, ozářenost E^ « 50 Wra , po 8 hodinách kultivace se E^ zvyšuje naCO 2 1.96 kPa, irradiance E «50 Wra, after 8 hours of cultivation, E zvyšuje increases to

Wm2.Wm 2 .

Po ukončení kultivace se suspenze řas ochladl na 2 °C a při této teplotě centrifuguje.After cultivation, the algae suspension was cooled to 2 ° C and centrifuged at this temperature.

Supernatant se promíchá v poměru 1:1 až 2 s 964 etanolem. Po protřepánl se získá bílá sraženina slizových látek, která po promytí slouží jako výchozí surovina pro výrobu značené galaktózy, xylózy a glukózy. Ž biomasy buněk se jejich desintegrací a gradientovou centrifugací získává florideový škrob jako konečný produkt.The supernatant is mixed 1: 1 to 2 with 964 ethanol. After shaking, a white slime precipitate is obtained which, after washing, serves as a starting material for the production of labeled galactose, xylose and glucose. By biomass of cells by their disintegration and gradient centrifugation, Florida starch is obtained as the final product.

Produkce jednotlivých sacharidů v průběhu výrobní kultivace je uvedena v tabulce.The production of individual carbohydrates during production cultivation is shown in the table.

TabulkaTable

Produkce 13C značených sacharidů v průběhu výrobní kultivaceProduction of 13 C-labeled carbohydrates during production cultivation

Hodina Hour Suchá hmota Dry matter Florideový Florida Sacharidy po hydrolýze póly- Carbohydrates after hydrolysis kultivace cultivation buňky extracel. slizy extracel. slime škrob. starch. sacharidů slizů (mg.l1)carbohydrate slime (mg.l 1 ) mg.l1 mg.I-1 mg.l 1 mg.I -1 mg.l-1 mg.l -1 xylóza galaktóza glukóza xylose galactose glucose

0 0 220 220 0 0 59 59 0 0 0 0 0 0 8 8 410 410 28 28 230 230 5,1 5.1 4,2 4.2 4,0 4.0 16 16 760 760 55 55 481 481 12,8 12.8 8,2 8.2 6,7 6.7 24 24 1 060 1 060 138 138 676 676 24,8 24.8 14,3 14.3 12,6 12.6 36 36 1 220 1 220 230 230 890 890 38,7 38.7 26,7 26.7 16,3 16.3

Claims (1)

předmět vynálezuobject of the invention Způsob řízené biosyntézy galaktózy, xylózy a florideového škrobu nespecificky značených 13 stabilním izotopem uhlíku C vyznačující se tím, že se provede jednorázová kultivace dceřiných buněk synchronní kultury řas rodu Porphyridium po dobu 32 až 38 hodin v minerálním živném roztoku bez sloučenin dusíku při teplotě 24 až 28 °C v prostředí směsi plynného dusíku a stabilního izotopu uhlíku ve formě kysličníku uhličitého při osvětlení povrchu kultivační “2 nádoby 60 až 80 Mm FAR, přičemž se na začátku výrobní kultivace odstraní slizové látky, vyloučené během předvýrobní kultivace v prostředí neradioaktivního kysličníku uhličitého 12Process for the controlled biosynthesis of galactose, xylose and florid starch not specifically labeled with a 13 stable carbon C isotope, characterized in that a single cultivation of daughter cells of a synchronous algae culture of the genus Porphyridium for 32 to 38 hours is carried out in a nitrogen-free mineral nutrient solution at 24-28 ° C in a mixture of nitrogen gas and a stable carbon isotope in the form of carbon dioxide while illuminating the surface of a culture vessel of 60 to 80 µm FAR, eliminating the slime substances precipitated during pre-production cultivation in a non-radioactive carbon dioxide environment 12 CO2 buňkami řas do živného roztoku, obsahujícího dusíkaté sloučeniny.CO 2 cells of algae into a nutrient solution containing nitrogen compounds.
CS871157A 1987-02-23 1987-02-23 Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c CS263695B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS871157A CS263695B1 (en) 1987-02-23 1987-02-23 Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS871157A CS263695B1 (en) 1987-02-23 1987-02-23 Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS115787A1 CS115787A1 (en) 1988-09-16
CS263695B1 true CS263695B1 (en) 1989-04-14

Family

ID=5345233

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS871157A CS263695B1 (en) 1987-02-23 1987-02-23 Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS263695B1 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
CS115787A1 (en) 1988-09-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU741734B2 (en) Method for producing biomass by photosynthesis
US4933281A (en) Method for producing rhamnose
US5001059A (en) L-ascorbic acid production in microorganisms
KR950009199B1 (en) A method for producing 2-keto-l-gulonis acid
CH650274A5 (en) PROCEDURE FOR THE ENZYMATIC PRODUCTION OF L-CARNITINA.
US4897349A (en) Biosynthesis of hyaluronic acid
Vargas et al. Influence of culture age, ammonium and organic carbon in hydrogen production and nutrient removal by Anabaena sp. in nitrogen-limited cultures
HUT47590A (en) New process for production of 2',2'-difluor-nucleozids
Baddiley et al. Synthesis of adenosine triphosphate
Reinhard et al. Semicontinuous cultivation of Digitalis lanata cells: Production of β‐methyldigoxin in a 300‐L airlift bioreactor
Ballin et al. Macromolecular syntheses and the course of cell cycle events in the chlorococcal alga Scenedesmus quadricauda under nutrient starvation: effect of nitrogen starvation
JPH0630599B2 (en) Process for producing fructose-1,6-diphosphate
CS263695B1 (en) Process for controlled biosynthesis of galactose,xylose and fluoride starch non-specific labelled by isotope 13c
US2651592A (en) Enzymatic process for producing gluconic acid
Burggraaf et al. Heterogeneity within Frankia sp. LDAgpl studied among clones and reisolates
DE69611331T2 (en) Process for the production of S-phenyl-L-cysteine
Russell et al. Evidence for the participation of the reductive pentose phosphate cycle in photoreduction and the oxyhydrogen reaction
NO123096B (en)
Grimme et al. The regreening of nitrogen-deficient Chlorella fusca: I. The development of photosynthetic activity during the synchronous regreening of nitrogen-deficient Chlorella
US3986933A (en) Method of preparing yeasts enriched in l-lysine and capable of excreting organic acids
CS259090B1 (en) Method of galactose's,xylose's and fluorinated starch's controlled biosynthesis with non-specifically labelled carbon's radioisotopes
JPS60145095A (en) Preparation of xylitol by immobilized microorganism
King The biodegradation of nepheline by Aspergillus niger
JPS6291177A (en) Selenium-containing microbial cells
CZ285449B6 (en) PROCESS FOR PREPARING D-p-HYDROXYPHENYLGLYCINE OR DERIVATIVES THEREOF