CS259090B1 - A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. - Google Patents
A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. Download PDFInfo
- Publication number
- CS259090B1 CS259090B1 CS87713A CS71387A CS259090B1 CS 259090 B1 CS259090 B1 CS 259090B1 CS 87713 A CS87713 A CS 87713A CS 71387 A CS71387 A CS 71387A CS 259090 B1 CS259090 B1 CS 259090B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- starch
- cultivation
- galactose
- xylose
- radioactive
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Biosynteza fluoridového škrobu a xy- . ložy značených radioaktivním uhlíkem není známá. Biosynteza galaktózy značená radioaktivním iBOtopem uhlíku se dosud prováděla kultivací stélkaté ruduchy rodu Iridaea, jejíž nevýhody jsou pomalý růst a nízká výtěžnost (2 >í), nízká specifioká aktivita a neekonomické využití cenného 14co2. Způsob řízení biosyntézy podle vynálezu se- provádí jednorázovou kultivací dceřinných buněk synchronní kultury řas rodu Porphyridium zbavených slizových látek v prostředí čistého radioaktivního C02 a v živném roztoku bez dusíkatých sloučenin (teplota 24 - 28 °C, osvětlení povrchu kultivační nádoby 60 - 80 iYm~2 PAR, prostředí: směs plynného dusíku a radioaktivního CO2). Dosahuje se vygoké výtěžnosti florideového škrobu, glaktozy a xylozy, jakož i' jejich vysoké specifická aktivity. Postup výroby se vyznačuje jednoduchosti a vysokou bezpečnosti prače.The biosynthesis of fluoride starch and xylose labeled with radioactive carbon is not known. The biosynthesis of galactose labeled with radioactive carbon isotope has so far been carried out by cultivating the stele red algae of the genus Iridaea, the disadvantages of which are slow growth and low yield (2 > í), low specific activity and uneconomical use of valuable 14co2. The method of controlling biosynthesis according to the invention is carried out by a single cultivation of daughter cells of a synchronous culture of algae of the genus Porphyridium free from slime substances in an environment of pure radioactive CO2 and in a nutrient solution without nitrogen compounds (temperature 24 - 28 ° C, illumination of the surface of the culture vessel 60 - 80 μm~2 PAR, environment: mixture of gaseous nitrogen and radioactive CO2). A high yield of fluoride starch, galactose and xylose is achieved, as well as their high specific activity. The production process is characterized by simplicity and high safety of the washer.
Description
Vynález se týká způsobu řízeni biosyntézy, galaktózy, xylózy a florideového škrobu, nespecificky značených radio14 izotopem uhlíku / C/ u synchronní kultury ruduchy roduThe invention relates to a method of controlling the biosynthesis of galactose, xylose and floride starch, non-specifically labeled with the radio14 carbon isotope /C/ in a synchronous culture of the genus Redbud.
Porphyridium, pěstované za fotoautotrofnich podmínek.Porphyridium, grown under photoautotrophic conditions.
Postupy výroby florideového škrobu a xylózy/značených radioaktivním uhlíkem/nejsou z literatury známy. Postup přípravy galaktózy, značené radioaktivním izotopem uhlíku biosyntézou je popsán v práci Beana et al. /4.B1ol.Chem. 204: 169-173, 1953/.The procedures for the production of radiocarbon-labeled starch and xylose are not known from the literature. The procedure for the preparation of radiocarbon-labeled galactose by biosynthesis is described in the work of Bean et al. /4.B1ol.Chem. 204: 169-173, 1953/.
K biosyntéze radioaktivního C02 byl v této práci použito stélkaté ruduchy rodu Iridaea, jejiž nevýhodou je pomalý růst a nizká výtěžnost požadovaného produktu, nebol galaktóza tvoři pouze % veškeré organické hmoty. Postup se vyznačuje neekonomickým 14 využitím cenného CO.,, který je při fotosyntéze zabudován do všech jejich konečných produktů a nízkou specifickou aktivitou, nepřesahující 100 uc.mg. galaktózy.For the biosynthesis of radioactive C0 2, the stele of the genus Iridaea was used in this work, the disadvantage of which is slow growth and low yield of the desired product, since galactose constitutes only % of all organic matter. The procedure is characterized by uneconomical 14 utilization of valuable CO.,, which is incorporated into all their final products during photosynthesis, and low specific activity, not exceeding 100 uc.mg. of galactose.
Tyto nevýhody odstraňuje způsob řízené biosyntézy podle vynálezu, jehož podstatou je, že se provede jednorázová kultivace dceřiných buněk synchronní kultury řas rodu Porphyridum po dobu 32 až 38 hodin v minerálním živném roztoku bez sloučenin dusíku při teplotě 24-28°C v prostředí směsi plynného dusíku a radioaktivního kysličníku uhličitého při osvětleni povrchu kultivační nádoby 60-80 Wm”^ FAR, přičemž se na začátku výrobni kultivace odstraní slizové látky, vyloučené během předvýrobní kultivace .12» v prostředí ne ra di oa kt i vni ho kysličníku uhličitého C02 buňkamiThese disadvantages are eliminated by the method of controlled biosynthesis according to the invention, the essence of which is that a single cultivation of daughter cells of a synchronous culture of algae of the genus Porphyridum is carried out for 32 to 38 hours in a mineral nutrient solution without nitrogen compounds at a temperature of 24-28°C in an environment of a mixture of gaseous nitrogen and radioactive carbon dioxide under illumination of the surface of the culture vessel with 60-80 Wm"^ FAR, while at the beginning of the production cultivation, slime substances secreted during the pre-production cultivation .12» in an environment of non-radioactive carbon dioxide C0 2 by the cells are removed
- 2 řas do živného roztoku, obsahujícího dusíkaté sloučeniny.- 2 algae in a nutrient solution containing nitrogen compounds.
Zásobním vnitrobuněčným polyeacharidem ruduch rodu Porphyridium je florideový škrob, který js vzhledem k chemické struktuře velmi vhodným substrátem pro enzymatické zpracování amylázami. Kromě produkce florideového škrobu vylučuji použité ruduchy při metabolismu do živného roztoku slizové látky, jejichž hlavním podílem jsou kyselé polysacharidy, které po hydrolýze poskytují 0 a L galaktózu, D-xylózu a D-glukózu.The storage intracellular polysaccharide of the red fungus of the genus Porphyridium is floride starch, which is, due to its chemical structure, a very suitable substrate for enzymatic processing by amylases. In addition to the production of floride starch, the used red fungi secrete mucilage substances into the nutrient solution during metabolism, the main share of which are acidic polysaccharides, which after hydrolysis yield 0 and L galactose, D-xylose and D-glucose.
Množství sllzů tvoři za obvyklých kultivačních podmínek 10-20 % suché hmoty buněk řas; podíl sacharidů v suché hmotě extracelulárních sllzů zpravidla nepřesahuje 30 %. Množství florideového škrobu se pohybuje nejčastěji v rozmezí od 20 do ZO % suché hmoty buněk.The amount of slzs under usual cultivation conditions constitutes 10-20% of the dry mass of algal cells; the proportion of carbohydrates in the dry mass of extracellular slzs usually does not exceed 30%. The amount of floride starch most often ranges from 20 to 20% of the dry mass of cells.
Slzená syntéza uvedených sacharidů probíhá v prostředí, kde výhradním zdrojem uhlíku je 14C02. Ke kultivaci se použije dceřiných buněk synchronní populace vybraného kmene řas jednobuněčné ruduchy Pprphyrídiura, převedená do minerálního živného roztoku bez dusíkatých sloučenin. Odstraněni dusíkatých iontů ze živného roztoku má za následek zastavení proteosyntózy, což způsobuje hromaděni florideového škrobu v buňkách a zvýšenou rychlost syntézy slizů vylučovaných do živného roztoku vně buněk současně se zvýšením obsahu galaktózy a xylózy v poměru ke glukóze.The lacrimal synthesis of the above-mentioned carbohydrates takes place in an environment where the sole source of carbon is 14 C0 2 . Daughter cells of a synchronous population of a selected strain of unicellular red algae Pprphyrídiura are used for cultivation, transferred to a mineral nutrient solution without nitrogen compounds. Removal of nitrogen ions from the nutrient solution results in the cessation of proteosynthesis, which causes the accumulation of floride starch in the cells and an increased rate of synthesis of slimes secreted into the nutrient solution outside the cells, simultaneously with an increase in the content of galactose and xylose in relation to glucose.
Dosaženi vysoké specifické aktivity škrobu je podmíněno použitím synchronní kultury, tj. takové, u niž jsou všechny buňky ve stejném stadiu životního cyklu. Synchronizace se provádí metodou střídáni period světla a tmy. K výrobní kultivaci je použito nejmladšich buněk, u nichž je množství florideového škrobu nejnižší, nebot byl spotřebován v energeticky náročných metabollckých procesech během děleni buněk v temné periodě předchozího synchronního cyklu. Nízké počáteční množství škrobu na začátku výrobní kultivace je jednou z podmínek jeho vysoké specifické aktivity na konci výrobního cyklu. Odstraněni slizových obalů před inkorporaci značeného uhlíku do buněčných struktur a do nově se tvořícího slizu má za následek dosaženi vysoké specifické aktivity ellzových sacharidů.Achieving a high specific activity of starch is conditioned by the use of a synchronous culture, i.e. one in which all cells are in the same stage of the life cycle. Synchronization is carried out by the method of alternating periods of light and darkness. For production cultivation, the youngest cells are used, in which the amount of floride starch is the lowest, since it was consumed in energy-intensive metabolic processes during cell division in the dark period of the previous synchronous cycle. The low initial amount of starch at the beginning of the production cultivation is one of the conditions for its high specific activity at the end of the production cycle. Removal of the slime envelopes before incorporation of labeled carbon into cell structures and into the newly formed slime results in achieving a high specific activity of ellagic carbohydrates.
Výhody navrhovaného způsobu řízené kultivace řas podle vynálezu spočívají zejména:The advantages of the proposed method of controlled algae cultivation according to the invention consist mainly of:
·» 3 Μ·» 3 M
- ve vysoké výtěžnosti florldeového škrobu, nebol běhen řízené výrobní kultivace probíhá v buňkách jeho výhradní syntéze, takže jeho množství na konci výrobního cylu dosahuje 50-60 % suchá hnoty buněk řas,- in a high yield of floride starch, because during controlled production cultivation its exclusive synthesis takes place in the cells, so that its amount at the end of the production cycle reaches 50-60% of the dry mass of algae cells,
- ve zvýšená výtěžnosti extrecelulárnich polysacharidů, jejichž podlí po ukončení kultivace doeahuje 25 % suchá hnoty buněk*,- in increased yield of extracellular polysaccharides, which after the end of cultivation reach 25% of the dry mass of cells*,
- ve výhodném zastoupeni jednotlivých sacharidů v těchto elizeeh,- in the preferential representation of individual carbohydrates in these elixirs,
- ve vyeoká specifické aktivitě produktů, způsobená u florideováho škrobu, tim, že oo jeho nnožstvi během řízená kultivace zvýši přibližně 7x. U extrecelulárnich polysacharidů je vysoké specifické aktivity dosaženo jejich syntézou de novo na 14C02,- it increases the specific activity of the products caused by florid starch, by increasing its amount approximately 7 times during controlled cultivation. In the case of extracellular polysaccharides, high specific activity is achieved by their de novo synthesis on 14 C0 2 ,
- v jednoduchosti a bezpečnosti výrobních operaci,- in the simplicity and safety of production operations,
- ve vyeoká rentabilitě výroby uvedených sloučenin.- in the high profitability of the production of the said compounds.
Dále je uveden přiklad způsobu řízené,blosyntázy podle vynálezu.An example of a controlled blo synthase process according to the invention is given below.
PřikladExample
e) Předvýrobní kultivacee) Pre-production cultivation
Přípravná kultivace a vlastni výrobní kultivace se provádějí v kultivačním zařízeni, popsaném v čs. A.O. 197 918, Ke kultivaci ee použije vybraná kultura řaey rodu Porphyridlum přechovávaná ve zkumavkách na agarových půdách, obohacených minerálním živným roztokem při teplotů 15°C a ozářenosti 10 Wm“2FAR. FAR znamená fotoeynteticky účinná zářeni měřená spektrálně neselektivním čidlem, citlivým pouze v oblasti 400-700 nm.Preparatory cultivation and actual production cultivation are carried out in a cultivation device described in Czechoslovak Patent Application No. AO 197 918. For cultivation, a selected culture of algae of the genus Porphyridlum is used, kept in test tubes on agar media enriched with mineral nutrient solution at temperatures of 15°C and irradiance of 10 Wm- 2 FAR. FAR means photosynthetically effective radiation measured by a spectrally non-selective sensor, sensitive only in the range of 400-700 nm.
Kultura ee z agaru převede do tekutého živného roztoku tohoto složeni:The ee culture from agar is transferred to a liquid nutrient solution of this composition:
V uvedeném živném roztoku ee kultura udržuje jako zásobní při trvalém osvětleni 25 Wm~ a teplotě 24 C a optické hustotě řasovó suspenze A750 B 0,200 - 0,400 a takové koncentraci 12c°2 ve směsi se vzduchem, která odpovídá 2% rozpuštěného COg v suspenzi řas. Optická hustota Α?5θ j® měřena při vlnové délceIn the above nutrient solution, the culture is maintained as a stock under constant illumination of 25 Wm~ and a temperature of 24 C and an optical density of the algal suspension A 750 B 0.200 - 0.400 and such a concentration of 12 c° 2 in a mixture with air that corresponds to 2% of dissolved COg in the algal suspension. The optical density Α ?5θ is measured at a wavelength
750 nm v 5 mm kyvetě na fotometru. Znásobime-ll hodnotu optické *750 nm in a 5 mm cuvette on a photometer. Multiply the optical value *
hustoty koeficientem 2, získáme přibližnou hodnotu suché hmoty řas.density by a coefficient of 2, we obtain an approximate value of the dry mass of algae.
Ze zásobní kultury se odebere část suspenze k přípravě synchronní populace, která se získá vystavením kultury střídavě periodám ozářeni a tmy v Intervalech 10 .* 14 hod. při kultivační teplotě 24°C a ozéřenostl povrchu kultivační nádoby « 80 Wm*2 FAR. Vlastni kultivace synchronních řas probíhá v průtokovém chemostatlckém režimu při zřeSovaci rychlosti D 0,06 h“1.A portion of the suspension is removed from the stock culture to prepare a synchronous population, which is obtained by exposing the culture to alternating periods of light and darkness at intervals of 10 to 14 hours at a cultivation temperature of 24°C and an irradiance of the surface of the culture vessel of 80 Wm2 FAR. The actual cultivation of synchronous algae is carried out in a flow chemostatic mode at a settling rate of D of 0.06 h1 .
ZřeSovací rychlost 0 vyjadřuje podíl celkového objemu kultury;The growth rate 0 expresses the proportion of the total culture volume;
který se za jednotku času plynule nahražuje živným roztokem.which is continuously replaced by nutrient solution per unit of time.
Rovná se u ustálené průtokové kultury specifické růstové rych259090 losti, tj. D e^u. Tento řeži» dovoluje dokonale stabilizovat kultivační podmínky a automatizovat průběh kultivace, V ustálené, plně synchronní kultuře je střední ozéřenost populace, která ovlivňuje rychlosti biochemických procesů v populaci řas konstantní po celou světelnou periodu cyklu; optická hustota předvýrobní kultury ee pohybuje v rozmez! Α75θ » 0,270 - 0,280.In a steady flow culture, it is equal to the specific growth rate, i.e. D e^u. This method allows perfectly stabilizing the cultivation conditions and automating the cultivation process. In a steady, fully synchronous culture, the average population irradiance, which affects the rates of biochemical processes in the algae population, is constant throughout the entire light period of the cycle; the optical density of the pre-production culture ee ranges from Α 75 θ » 0.270 - 0.280.
b) Výrobní kultivaceb) Production cultivation
Hodinu před ukončením temné periody přípravného synchronního cyklu se výrobní fotoreaktor naplní 1000 ml anorganického roztoku, který se liší od živného roztoku předvýrobní kultivace tlm, že je z něho odstraněn KNO3 a Ca(N03)2.4H20 je nahražen CaCl2 tak, aby množství Ca++ v roztoku zůstalo zachováno. Takto upravený živný roztok se zbavuje veškerého fyzikálně rozpuštěného 3*2CO2 zahřát ím na 100°C. Z plynného prostoru kultivační aparatury se vytěsni vzduch a náhrad! plynným dusíkem, načež se tento uzavřený prostor částečně evakuuje (na cca 500 torů). Poté se živný roztok v bioreaktoru nasytí 14C0«, který vzniká ve vyviječl dávkováním 1 N HCIO^ do suspenze Ba C03· Rovnovážný stav v živném roztoku rozpuštěného C02 s atmosférou, obsahující 2 % C02, nastane asi po 30 minutá intenzivního probubláváni. Během úpravy živného roztoku ae odstředí populace dceřiných buněk synchronní kultury z předvýrobní kultivace. Supernatant s extracelulárnimi sllzovým látkami ee odstraní. Sediment řas se promyje živným roztokem, určeným k výrobní kultivaci a znovu se odstředí. Odstřelování se provádí po dobu 10 min. při 4000 g a teplotě 5®C. Po druhé centrifugad se sediment dceřiných buněk šetrně roztřepe a ve formě hustého Inokula se vpraví do kultivačního válce s uvedeným optimallaovaným živným roztokem.One hour before the end of the dark period of the preparatory synchronous cycle, the production photoreactor is filled with 1000 ml of an inorganic solution, which differs from the nutrient solution of the pre-production cultivation in that KNO 3 is removed from it and Ca(N0 3 ) 2 .4H 2 0 is replaced by CaCl 2 so that the amount of Ca ++ in the solution remains unchanged. The nutrient solution thus prepared is freed from all physically dissolved 3* 2 CO2 by heating to 100°C. The air is displaced from the gaseous space of the cultivation apparatus and replaced with nitrogen gas, after which this enclosed space is partially evacuated (to approximately 500 torr). Then the nutrient solution in the bioreactor is saturated with 14 C0«, which is formed in the developer by dosing 1 N HCIO^ into the Ba C03 suspension. The equilibrium state in the nutrient solution of dissolved C0 2 with an atmosphere containing 2% C0 2 occurs after about 30 minutes of intensive bubbling. During the preparation of the nutrient solution, the daughter cell population of the synchronous culture from the pre-production cultivation is centrifuged. The supernatant with extracellular substances is removed. The algae sediment is washed with the nutrient solution intended for production cultivation and centrifuged again. The centrifugation is carried out for 10 min. at 4000 g and a temperature of 5®C. After the second centrifugation, the daughter cell sediment is gently shaken and, in the form of a dense inoculum, is introduced into the culture cylinder with the specified optimized nutrient solution.
Vlastni výrobní kultivace probíhá jednorázově po dobu 36 hodin. Za tuto dobu oe hmota buněk ztrojnásob! a množství škrobu se zvýši z 20 % na 55-60 % suché hmoty buněk. Vytvoří ee tolik elizových látek vně buněk, ktoré představuji cca 25 % suché hmoty buněk.The actual production cultivation takes place once for 36 hours. During this time, the cell mass triples! and the amount of starch increases from 20% to 55-60% of the dry cell mass. It creates so many iron substances outside the cells that they represent about 25% of the dry cell mass.
- 6 Podmínky výrobní kultivace:- 6 Production cultivation conditions:
Počáteční optická hustota suspenze A75Q · 0,500, kultivační teplota 24°C, parciální tlak 14C02 « 0,02 at., ozářeňoetInitial optical density of the suspension A 75Q · 0.500, cultivation temperature 24°C, partial pressure 14 C0 2 « 0.02 at., irradiated
E^ 50 Wm”2, po 8 hodinách kultivace ee E^ zvyšuje na 80 Wb2,E^ 50 Wm” 2 , after 8 hours of cultivation ee E^ increases to 80 Wb 2 ,
Po ukončení kultivace ee suspenze řas ochladí na 2°C a při této teplotě centrifuguje.After the cultivation is completed, the algae suspension is cooled to 2°C and centrifuged at this temperature.
Supernatant ee promíchá v poměru 1 : 1 až 2 β 96 % etanolem.Mix the supernatant ee in a ratio of 1 : 1 to 2 β with 96% ethanol.
Po protřepánl ee získá bílá sraženina elizovýoh látek, která po promytí slouží jako výchozí surovina pro výrobu značené galaktózy, xylózy a glukózy. Z biomasy buněk se jejich deslntegraci a gradientovou centrifugaci získává florideový škrob jako konečný produkt.After shaking, a white precipitate of lysate is obtained, which after washing serves as the starting material for the production of labeled galactose, xylose and glucose. From the biomass of the cells, by their disintegration and gradient centrifugation, florid starch is obtained as the final product.
Produkce jednotlivých sacharide v průběhu výrobní kultivace je uvedena v tabulce.The production of individual carbohydrates during production cultivation is shown in the table.
o oabout about
¢8 >¢8 >
•rl•rl
JíHer
X «0X «0
X oX o
uat
o.O.
<C3<C3
ΌOh
WW
U (0U (0
XX
O ffl aAbout
x ox o
>* c>* c
φφ
Mi «Me «
cC
N oNo
rl arl and
jíher
ΌOh
OO
UAT
CL aCL and
jí r-leats r-l
X aX and
HH
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS87713A CS259090B1 (en) | 1987-02-04 | 1987-02-04 | A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS87713A CS259090B1 (en) | 1987-02-04 | 1987-02-04 | A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS71387A1 CS71387A1 (en) | 1988-01-15 |
CS259090B1 true CS259090B1 (en) | 1988-10-14 |
Family
ID=5339751
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS87713A CS259090B1 (en) | 1987-02-04 | 1987-02-04 | A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS259090B1 (en) |
-
1987
- 1987-02-04 CS CS87713A patent/CS259090B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS71387A1 (en) | 1988-01-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Tolmach | Effects of triphosphopyridine nucleotide upon oxygen evolution and carbon dioxide fixation by illuminated chloroplasts | |
Habicht et al. | Sulfur isotope fractionation during bacterial reduction and disproportionation of thiosulfate and sulfite | |
Seliger et al. | Stereospecificity and firefly bioluminescence, a comparison of natural and synthetic luciferins | |
US4532210A (en) | Process for producing hydrogen by alga in alternating light/dark cycle and environmental aerobic/microaerobic conditions | |
Vajravel et al. | Towards sustainable ethylene production with cyanobacterial artificial biofilms | |
Chojnacka et al. | Evaluation of growth yield of Spirulina (Arthrospira) sp. in photoautotrophic, heterotrophic and mixotrophic cultures | |
Van Niel et al. | On the photochemical reduction of nitrate by algae | |
Cacchio et al. | INVOLVEMENT OF BACTERIA IN THE ORIGIN OF A NEWLY DESCRIBED SPELEOTHEM IN THE GYPSUM CAVE OF GRAVE GRUBBO(CROTONE, ITALY) | |
Kim et al. | Quantitative analysis of Spirulina platensis growth with CO 2 mixed aeration | |
Han et al. | Isolation of Leclercia adcarboxglata strain JLS1 from dolostone sample and characterization of its induced struvite minerals | |
Warthmann et al. | Photoproduction of H2 from acetate by syntrophic cocultures of green sulfur bacteria and sulfur-reducing bacteria | |
Sassano et al. | Kinetics and bioenergetics of Spirulina platensis cultivation by fed-batch addition of urea as nitrogen source | |
CS259090B1 (en) | A method for the controlled biosynthesis of galactose, xylose, and non-specifically carbonated starch-labeled starch. | |
Yao et al. | Mechanism of sulfate reduction hampered in anaerobic biosystem under the progressive decrease of chemical oxygen demand to sulfate ratios: Long-term performance and key microbial community dynamics | |
Bongers | Kinetic aspects of nitrate reduction | |
Lacourciere et al. | Utilization of selenocysteine as a source of selenium for selenophosphate biosynthesis | |
Zyakun et al. | Fractionation of stable carbon isotopes by photoautotrophically growing anoxygenic purple and green sulfur bacteria | |
DK287887A (en) | PROCEDURE AND CONTAINER FOR THE PREPARATION OF POLYSACCARIDES, NAME XANTHAN | |
Vílchez et al. | Glycolate photoproduction by free and alginate-entrapped cells of Chlamydomonas reinhardtii | |
Russell et al. | Evidence for the participation of the reductive pentose phosphate cycle in photoreduction and the oxyhydrogen reaction | |
US20180179512A1 (en) | Novel self-photosensitized nonphotosynthetic microorganism | |
JP3224992B2 (en) | Hydrogen-producing photosynthetic microorganism and method for producing hydrogen using the same | |
Smith et al. | An outdoor biophotolytic system using the cyanobacterium Anabaena cylindrica B629 | |
JP2021058134A (en) | Method for producing culture using closed culture of microalgae | |
Arnason et al. | An investigation of water splitting in the Kok scheme of photosynthetic oxygen evolution |