CS263450B1 - Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component - Google Patents
Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component Download PDFInfo
- Publication number
- CS263450B1 CS263450B1 CS8710005A CS1000587A CS263450B1 CS 263450 B1 CS263450 B1 CS 263450B1 CS 8710005 A CS8710005 A CS 8710005A CS 1000587 A CS1000587 A CS 1000587A CS 263450 B1 CS263450 B1 CS 263450B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- secretory component
- hybridoma
- antibody
- secretory
- antibody against
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Řešení se týká myšího lymfocytúrního hybridomu, produkujícího protilátku proti lidské sekreční komponente, uloženého ve sbírce hybridotnů Výzkumného ústavu klinické experimentální onkologie v Brně pod označením RICEO-SC-O5· Samotná monoklonální protilátka hybridomu RICE0-SC-05 je vhodná pro použití v enzymoimunologické a radioimunologické analýze tělních tekutin, jakož i k imunoblotin^u a k histocheijjickému průkazu sejjrečni komponenty na tkáňových řezech a buňkách na úrovní optického a elektronového mikroskopu.The solution concerns a mouse lymphocyte hybridoma producing an antibody against a human secretory component, stored in the hybridoma collection of the Research Institute of Clinical Experimental Oncology in Brno under the designation RICEO-SC-05. The monoclonal antibody of the hybridoma RICE0-SC-05 itself is suitable for use in enzyme-immunological and radioimmunological analysis of body fluids, as well as for immunoblotting and for histochemical detection of the secretory component on tissue sections and cells at the optical and electron microscope level.
Description
(54) Myší lymfocytární hybridom produkující protilátku proti sekrecní komponentně(54) Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component
Řešení se týká myšího lymfocytúrního hybridomu, produkujícího protilátku proti lidské sekreční komponente, uloženého ve sbírce hybridotnů Výzkumného ústavu klinické experimentální onkologie v Brně pod označením RICEO-SC-O5· Samotná monoklonální protilátka hybridomu RICE0-SC-05 je vhodná pro použití v enzymoimunologické a radioimunologické analýze tělních tekutin, jakož i k imunoblotin^u a k histocheijjickému průkazu sejjrečni komponenty na tkáňových řezech a buňkách na úrovní optického a elektronového mikroskopu.The solution concerns a mouse lymphocyte hybridoma producing an antibody against a human secretory component, stored in the hybridoma collection of the Research Institute of Clinical Experimental Oncology in Brno under the designation RICEO-SC-05. The monoclonal antibody of the hybridoma RICE0-SC-05 itself is suitable for use in enzyme-immunological and radioimmunological analysis of body fluids, as well as for immunoblotting and for histochemical detection of the secretory component on tissue sections and cells at the optical and electron microscope level.
2634 oO2634 oO
263 430263,430
Vynález se týká nového hybridomu, t j. hybridního jednobuněčného organismu, sestrojeného buněčnou fúz.í myší myelomové linie P3-X63-Ag8.653 a myší slezinné lymfoidní buňky, produkující protilátku proti lidské sekreční komponentě.The invention relates to a novel hybridoma, i.e. a hybrid unicellular organism, constructed by cell fusion of the mouse myeloma line P3-X63-Ag8.653 and a mouse splenic lymphoid cell, producing an antibody against a human secretory component.
Doposud se protilátky proti sekreční komponentě vyrábějí tak, že je sekreční komponenta opakovaně injikována jako antigen (zpravidla spolu s adjuvans) pokusným zvířatům, a to nejčastěji králíkům či morčatům. Sérum takto imunizovaných zvířat, odebírané po určité době působení antigenu, slouží jako zdroj protilátek, užívaných zejména pro průkaz sekreční komponenty ve tkáních a tělních tekutinách. Tento postup, nazývaný konvenční imunizací, má něko7.ík nevýhod. V séru imunizovaných zvířat se nachází heterogenní směs protilátek, jejichž spektrum je v každém jednotlivém organismu různé a neopakovatelné. Organismus zpravidla vytvoří kromě protilátek vůči žádanému antigenu i protilátky proti nečistotám antigenního preparátu, které je nutné ze sér odstraňovat složitým způsobem, zvaným vysycování.Until now, antibodies against the secretory component have been produced by repeatedly injecting the secretory component as an antigen (usually together with an adjuvant) into experimental animals, most often rabbits or guinea pigs. The serum of animals immunized in this way, collected after a certain period of exposure to the antigen, serves as a source of antibodies, used mainly for the detection of the secretory component in tissues and body fluids. This procedure, called conventional immunization, has several disadvantages. The serum of immunized animals contains a heterogeneous mixture of antibodies, the spectrum of which is different and unrepeatable in each individual organism. As a rule, the organism produces, in addition to antibodies against the desired antigen, antibodies against impurities of the antigen preparation, which must be removed from the serum in a complex manner called saturation.
V případě antisér proti .sekreční komponentě (vis Brandtsaeg Role of <J chain and secretory component in receptor-mediated glandular and hepatic transport of ímmunoglobulins in man. Scand. J. Immunol. 22, 111 aí 146, 1935) je situace ještě komplikována kovalentní vazbou sekreční komponenty s imunoglobulinovými řetězci sekrečního IgA a IgM, které jsou (případně ještě s dalšími bílkovinami) častou kontaminantou purifikováných preparátů sekreční komponenty, takže připravit konvenční antisérum, specifické výhradně pro sekreční komponentu vysycování^. je velmi pracné a jen zřídka vede k uspokojivému výsledku. Výrobní šarže konvenčních antisér se proto dají jen velmi nesnadno standardizovat a vycházejí z výroby v širokém rozmezí kvality.In the case of antisera against the secretory component (vis Brandtsaeg Role of <J chain and secretory component in receptor-mediated glandular and hepatic transport of immunoglobulins in man. Scand. J. Immunol. 22, 111 aí 146, 1935) the situation is further complicated by the covalent binding of the secretory component with the immunoglobulin chains of secretory IgA and IgM, which are (possibly with other proteins) a frequent contaminant of purified preparations of the secretory component, so that preparing a conventional antiserum specific exclusively for the secretory component saturation^. is very laborious and rarely leads to a satisfactory result. Production batches of conventional antisera can therefore only be standardized with great difficulty and come out of production with a wide range of quality.
,?ů ,?ů
263 450263,450
Pro výrobu každé Serže je třeba připravit značně čistý imunizační antigen a další antigeny pro vysycení balastních protilátek proti nečistotám či proti podobným molekulám,jako jsou např. výše uvedené imunoglobuliny.For the production of each Serge, it is necessary to prepare a highly pure immunization antigen and other antigens to saturate ballast antibodies against impurities or similar molecules, such as the immunoglobulins mentioned above.
Uvedené nedostatky výše zmíněného a dosud používaného postupu odpadnou, je-li k dispozici hybridem, produkující monoklonální protilátku proti sekreČní komponentě, uložený ve sbírce hybridomů Výzkumného ústavu klinické a experimentální onkologie v Brně, žlutý kopec 7, pod označením RICE0-SC-05.The above-mentioned shortcomings of the previously used procedure will be eliminated if a hybridoma producing a monoclonal antibody against the secretory component is available, stored in the hybridoma collection of the Research Institute of Clinical and Experimental Oncology in Brno, Yellow Hill 7, under the designation RICE0-SC-05.
Uvedený hybridom byl získán způsobem.známým z odborné literatury (Pazekas de St. Groth S., Scheidigger Ώ,: Production of monoclonal antibodies s Stratégy and tactios, J. Tmtnvinol. Meth. 35« 1 « 21, 1980, Galfré G., Howe S.C., Mílstein C., Butcher G.W., Howard J.O.: Antibodies to major histocompatibility antigens produced by hybrid cell lineš, Naturé 266: 550 - , 1977) klonováním souboru hybridních buněk, vzniklých fúzí buněk myší myelomové linie P3-X63-Ag8.653 a buněk, získaných ze sleziny myší kmene BALB/c, imunizovaných sekreční komponentou izolovanou z lidského kolostra.The hybridoma was obtained in a manner known from the literature (Pazekas de St. Groth S., Scheidigger Ώ,: Production of monoclonal antibodies with Strategies and tactics, J. Tmtnvinol. Meth. 35« 1 « 21, 1980, Galfré G., Howe S.C., Mílstein C., Butcher G.W., Howard J.O.: Antibodies to major histocompatibility antigens produced by hybrid cell lines, Nature 266: 550 - , 1977) by cloning a set of hybrid cells, resulting from the fusion of cells of the mouse myeloma line P3-X63-Ag8.653 and cells obtained from the spleen of BALB/c mice, immunized with a secretory component isolated from human colostrum.
Výhodou lymfooytárního hybridomu SC-05 je, Že produkuje zcela homogenní protilátku, tzv. protilátku monoklonální, fcteje schopna specificky reagovat s lidskou sekreční komponentou. Hybridom SC-05 je možné kultivovat in vitro v médiích vhodných pro pěstování živočišných buněk nebo v podmínkách in vivo v pe ritoneální dutině myší kmene BALB/c . Hybridom SC-05 je vhodný k dlouhodobému uchovávání v konzervách uložených ’v kapalném dusíku. Produkci monoklonální protilátky je možno zahájit po rozmražení buněčné konzervy, aniž by bylo třeba dalšího antigenu. Monoklonálnííprotilátka produkovaná hybridomem SC-05 je specifická výhradně pro glykoprotein o relativní molekulové hmotnosti přibližně 80 000^označovaný jako sekreční komponenta( a nereaguje s žádným dalším sekrětovoným proteinem ani jinými bílkovinami (hapř. sérovými), jak bylo zjištěno imunoblotingem, enzymoimunologickým testem, nepřímou imunoperoxidázovou a nepřímouřimunofluorescenční metodou. Průkaz byl zís- 3 263 450 kán po elektroforetickém přenosu rozsáhlého spektra buněčných a tkáňových lyzátů a preparátů lidského kolostra, a. to po separaci bílkovinných komponent v polyakrylamidovém gelu v prostředí dodecylsulfátu sodného za. redukujících podmínek. Po přenosu rozdělených bílkovin na nitrocelulózovou membránu byla sekreční komponenta specificky vizualizována s použitím protilátky SC-05 a následně králičího antiséra proti myším imunoglobulinům konjugovaného s křenovou peroxidázou. Výsledek byl rovněž potvrzen enzymeimunologickým testem, kde byla prokázána vazba protilátky SC-05 na sekreční komponentu, ale nikoliv na imunoglobulin A, imunoglobulin M čí jiné sérové bílkoviny. Pomocí imunoperoxidázové reakce na tkáňových řezech (potvrzené i výsledky nepřímé imunofluorescenční metody - .viz níže) lidských tkání byla u protilátky SC-05 zjištěna reaktivita s epitelíálními tkáněmi sekrečního typu produkujícími sekreční komponentu, nikoliv však s tkáněmi jinými.The advantage of the SC-05 lymphocyte hybridoma is that it produces a completely homogeneous antibody, the so-called monoclonal antibody, which is capable of specifically reacting with a human secretory component. The SC-05 hybridoma can be cultivated in vitro in media suitable for growing animal cells or under in vivo conditions in the peritoneal cavity of BALB/c mice. The SC-05 hybridoma is suitable for long-term storage in cans stored in liquid nitrogen. The production of the monoclonal antibody can be started after thawing the cell can, without the need for additional antigen. The monoclonal antibody produced by hybridoma SC-05 is specific exclusively for a glycoprotein with a relative molecular mass of approximately 80,000, designated as the secretory component ( and does not react with any other secreted protein or other proteins (e.g. serum), as determined by immunoblotting, enzyme immunoassay, indirect immunoperoxidase and indirect fluorescence methods. The evidence was obtained after electrophoretic transfer of a wide range of cell and tissue lysates and human colostrum preparations, after separation of the protein components in a polyacrylamide gel in sodium dodecyl sulfate medium under reducing conditions. After transfer of the separated proteins to a nitrocellulose membrane, the secretory component was specifically visualized using the SC-05 antibody and subsequently rabbit antiserum against mouse immunoglobulins conjugated to horseradish peroxidase. The result was also confirmed enzyme immunoassay, where the binding of the SC-05 antibody to the secretory component was demonstrated, but not to immunoglobulin A, immunoglobulin M or other serum proteins. Using the immunoperoxidase reaction on tissue sections (also confirmed by the results of the indirect immunofluorescence method - see below) of human tissues, the SC-05 antibody was found to be reactive with epithelial tissues of the secretory type producing the secretory component, but not with other tissues.
V nepřímé .imunofluorescenci využívající protilátky SC-05 a následné inkubace s králičím nebo prasečím antisérem proti myším imunoglobulinům označeným fluorescein-izo-thiocyanátem docházelo u testovaných tkání k vazbě pouze na apikální, případně bazolaterální membránu sekrečních epítelíí a na sekretovaný materiál (sekret) exokrinnich žláz, u buněk s vysokým stupněm sekrece (např. mléčná žláza v laktaci) bylá reakce patrna i v cytoplazmě sekrečních buněk. Jakékoliv jiné buněčné typy a tkáňové komponenty byly negativní.In indirect immunofluorescence using SC-05 antibodies and subsequent incubation with rabbit or pig antiserum against mouse immunoglobulins labeled with fluorescein isothiocyanate, binding occurred in the tested tissues only to the apical or basolateral membrane of secretory epithelia and to the secreted material (secretion) of exocrine glands, in cells with a high degree of secretion (e.g., the mammary gland in lactation) the reaction was also evident in the cytoplasm of secretory cells. Any other cell types and tissue components were negative.
V ČSSR nebyla dosud podobná monoklonální protilátka dostupná. Lymfocytární hýbridomy produkující protilátky proti sekreční komponentě byly jíž připraveny v zahraničí a jsou též komerčně dostupné a začínají se používat v klinické praxi. Protilátky nabízené v zah.fm J..čí věak postrádají jedinečnou kombinací výhodných.'vlastností charakteristických pro protilátku SC-05» tj· nespojují úzkou specifičnost pro sekreční komponentu s rozpoznáním jak vázané, tak volné formy tohoto glykoproteinu, jakož i'využitelností v různých metodách aplikace včetně imunoblotingu, TCLTSA a RTA a ímunohístochemíe na metacarnem fixovaných parafinových, tkáňových řezech (tedy i v metodách, v nichž protilátky nabízené v zahraničí nelze vůbec použít) ·In the Czechoslovak Socialist Republic, a similar monoclonal antibody has not yet been available. Lymphocyte hybridomas producing antibodies against the secretory component have already been prepared abroad and are also commercially available and are beginning to be used in clinical practice. The antibodies offered in zah.fm J..čí věak lack the unique combination of advantageous properties characteristic of the SC-05 antibody, i.e. they do not combine narrow specificity for the secretory component with recognition of both bound and free forms of this glycoprotein, as well as usability in various application methods including immunoblotting, TCLTSA and RTA and immunohistochemistry on metacarne-fixed paraffin tissue sections (i.e. even in methods in which antibodies offered abroad cannot be used at all)
263 ,ι263 ,ι
Příklad 1 ’Example 1’
Za účelem pomnožení hybridomovýoh buněk in vivo bylo aplikováno 1 x 10^ buněk do peritoneální dutiny myči RAIiB/c. Pro lepší uchycení indikovaných buněk byla myš 20 dní před přenosem buněk hybridomu ovlivněna parafinovým olejem (0,5 ml íntraperítoneálně)· Po 1& dnech růstu hybridomu v peritoneální dutině byla myš zabita a vytvořená ascitická tekuť na odebrána· Celkem bylo získáno 3,5 ml ascitická tekutiny, která obsahovala 9 mg/ml imunoglobulinu. Protilátka reagovala se specifickým antigenem (sekreční komponentou) v etízymoimunoíogickém testu až do ředění 1 t 10^. Specifičnost získaná protilátky byla testována na pahelu různých bílkovinných aul,?genů, a to jak v imunoblotingu, tak v enzymoimunologickém testu s vyučí tib prasečí nebo králičí protilátky proti, myšímu ímnnoglobuliηι\ značené křenovou (peroxidázou. Výsledky jsou ahrnuty v tabulce č.1.In order to propagate hybridoma cells in vivo, 1 x 10^ cells were applied to the peritoneal cavity of RAIiB/c mice. For better attachment of the indicated cells, the mouse was treated with paraffin oil (0.5 ml intraperitoneally) 20 days before the transfer of hybridoma cells. After 1& days of hybridoma growth in the peritoneal cavity, the mouse was killed and the formed ascitic fluid was collected. A total of 3.5 ml of ascitic fluid was obtained, which contained 9 mg/ml of immunoglobulin. The antibody reacted with the specific antigen (secretory component) in an etizymoimmunological test up to a dilution of 1 in 10^. The specificity of the obtained antibody was tested for a number of different protein antigens, both in immunoblotting and in an enzyme-linked immunosorbent assay using porcine or rabbit antibodies against mouse immunoglobulin labeled with horseradish peroxidase. The results are summarized in Table 1.
Tabulka č.1. Reaktivita protilátky SC-05 s různými bílkovinnými antigeny a buněčnými homoganáty (+' pozitivita,- - negativita)·Table 1. Reactivity of the SC-05 antibody with various protein antigens and cell homogenates (+' positivity, - - negativity)
Z výsledků uvedených v Tabulce 1 je zřejmé, že protilátka 3(3-05 reaguje s volnou i vázanou sekreční komponentou, zatímco je negativní na jiných sérových či buněčných bílkovinách.From the results presented in Table 1, it is clear that the 3(3-05 antibody reacts with both free and bound secretory component, while being negative for other serum or cellular proteins.
263 450263,450
Příklad 2Example 2
Pro pomnožení buněk hybridomu RICE0-SC-05 v podmínkách in vitro bylo vpraveno 1 x 10^ hybridomových buněk do kultivační lahve Legroux obsahující 20 ml kultivačního média DMEM s 10% fetálního telecího séra a antibiotiky (viz níže)· Po 5 dnech růstu kultury hybridoroových buněk bylo z lahve získáno kultivační médium obohacené o monoklonální protilátku 30-0¾ uvolňovanou do média hybridomovými buňkami. Tkáňová specifičnost reakce protilátky byla testována nepřímým imunofluorescenčním testem a potvrzena rovněž nepřímou imunoperoxidázovou reakcí, v obou případech na tkáňových řezech. Vzorky tkání uvedených v tabulce č.2 byly odebrány z operačního nebo pitevního materiálu, tkáňové bločky o velikostí 0,5 X 0,5 x 1 cm byly zmraženy v kapalném dusíku a uchovávány pri teplotě -70°0. Pro vlastní testování byly zmražené bločky adaptovány na teplotu -25 až -30°C a na kryostátu byly z každého z nich připraveny řezy o tloušťce 5«7 mikrometrů. Tkáňové řezy byly pak přeneseny na podle žní hi.etologická skla, po zaschnutí na vzduchu byly pak řezy fixovány 10 minut směsí' metanolu''e·· acetonem (1:1) předchíazenou na ~15°O a po vymytí zbylého f'ixatíva 2 x 10 minut ve fyziologickém roztoku s fosfátovým ústojem o pH 7,4 (PBS) byla ra řezy aplikována monoklonální protilátka 30-05· Po inknbnční době 1 hodiny bylá nenavázaná protilátka z řezu odstraněna opakovaným promytím (3 x 5 min) v PBS a na řez byla'nanesen« králičí'nebo prasečí pro tilátka s fluorescein-izo-thiocyanátem» Inkubace (40 - 60 min) byla ukončena trojím, promytím ·ν PBS po 5 min», řezy byly ponechány při pokojové teplotě do zaschnutí a preparáty montovány např· do média s glycerinem.'Výsledky hodnocení reakce protilátky SC-05 s vybranými tkáněmi jsou uvedeny v tabulce č»2.For the in vitro propagation of RICE0-SC-05 hybridoma cells, 1 x 10^ hybridoma cells were inoculated into a Legroux culture flask containing 20 ml of DMEM culture medium with 10% fetal calf serum and antibiotics (see below). After 5 days of growth of the hybridoma cell culture, the culture medium enriched with monoclonal antibody 30-0¾ released into the medium by the hybridoma cells was obtained from the flask. The tissue specificity of the antibody reaction was tested by indirect immunofluorescence and also confirmed by indirect immunoperoxidase reaction, in both cases on tissue sections. The tissue samples listed in Table 2 were taken from surgical or autopsy material, tissue blocks measuring 0.5 X 0.5 x 1 cm were frozen in liquid nitrogen and stored at -70°C. For the actual testing, the frozen blocks were adapted to a temperature of -25 to -30°C and sections 5-7 micrometers thick were prepared from each of them on a cryostat. The tissue sections were then transferred to appropriate histological slides, after air drying the sections were fixed for 10 minutes with a mixture of methanol and acetone (1:1) previously heated to ~15°C and after washing out the remaining fixative for 2 x 10 minutes in phosphate-buffered saline (PBS) pH 7.4, the monoclonal antibody 30-05 was applied to the sections. After an incubation period of 1 hour, the unbound antibody was removed from the section by repeated washing (3 x 5 min) in PBS and rabbit or pig antibodies with fluorescein isothiocyanate were applied to the section. The incubation (40 - 60 min) was terminated by washing three times with PBS for 5 min. The sections were left at room temperature until dry and the preparations were mounted, for example, in a medium with glycerin. The results of the evaluation of the reaction of the SC-05 antibody with selected tissues are shown in Table 2.
Tabulka č.2 Reaktivita protilátky SC-05 a normálními lidskými tkáněmi '(+ pozitiv! ta> - egativní reakce)Table 2 Reactivity of the SC-05 antibody with normal human tissues (+ positive and - negative reactions)
Druh TkáněTissue Type
Produkce sekreční Reakce komponentySecretory production Reaction components
Sekreční epitel mléčné žlázy Sllznice střevaSecretory epithelium of the mammary gland Mucus of the intestine
ANO . +YES. +
ABC +ABC +
263 450263,450
Tabulka č. 2 - pokrač.Table No. 2 - continued.
í'iý /UM;í'iý /UM;
SC-C5 je zřejmé, ze yéechhy tkáně produkující sekreční komponentu jsou pozitivní, kdežto všechny tkáně postrádající tento glykoprotein jsou negativní, cos jé dalším důkazem specifičnosti protilátky 30-05 pro sekreční kfftponéntu.SC-C5 shows that all tissues producing the secretory component are positive, whereas all tissues lacking this glycoprotein are negative, which is further evidence of the specificity of antibody 30-05 for the secretory component.
Buňky hybridomů ^XCEO-SO-C5 mají morfologieký obraz typických myelomových bual^.. V podmínkách in vitro rostou v podobě polosuspenzních kultur» Základním kultivačním médiem je Bulbeccova modifikace minimálního esenciálního média (DUEM) doplněnáThe hybridoma cells ^XCEO-SO-C5 have a morphological appearance of typical myeloma bulbs^.. Under in vitro conditions they grow in the form of semi-suspension cultures. The basic culture medium is Bulbec's modification of minimal essential medium (DUEM) supplemented with
L-glutaminem (3mM), penicilinem, streptomycinem a inaktivovanýmL-glutamine (3mM), penicillin, streptomycin and inactivated
2S3 450 fetálním telecím sérem dom je kultivován při 3 19,2 hodin. Produkovaná noglobulin Třídy IgG1,2S3 450 fetal calf serum is cultured at 3 19.2 hours. The produced immunoglobulins are of the IgG1 class,
Z ,T7;From ,T7;
>?O /t · i υ h. jeao pro bílátka specif1oky>?O /t · i υ h. jeao for white specif1oky
I) Sokolnice u Brno. Hýbr.i střední generační čas je je myší >nonoklonální imu vážící epitop lidská sokreční komponenty.I) Sokolnice near Brno. Hybrid medium generation time is mouse >nonclonal immuno binding epitope human secretory components.
Monoklonální protilá.tka, produkovaná hybřidomem RICSOS0-05 reaguje s volnou i vázanou sekreční komponentou a jo použitelná v různých testech včetně irounohistochemie na tká nových řezech, imunoblotingu, enzymoimunologických a rádioimunologických stanovení. Protilátka SC-05 je tedy zejména vhodná k detekcí a kvantifikaci sekreční komponenty v různých tělních tekutinách, ni ční imunity), ale nal.E diagnos,tice na odděleních p k odlišení positivně reaguj / s* v · v < V? s * JP ' £'* v — - .* cnr oplatnč.u.í taká v defektů slis— d i f e r e i1 c .1 á lni etologická rnstonde, jako pomůck '.<pí ch. produkční ch ad.e n.okarc inomů • od jiných typů nádorů jako např. sarkomů, melanomů, lymfomů či karcinomů neprodukujících sekreční komponentu (např. kar cinomů z vícevrstevných epltelů). Kromě lékařská praxe je pro své vlastností využitelná i v řadě aplikací ve výzkumu, biologie normální i transformované epitolíální buňky a studiu mechanismů sekrece, a to potenciálně v .resortech zdravotnictví, Školství i ČSAV a SAV.The monoclonal antibody produced by the RICSOS0-05 hybridoma reacts with both free and bound secretory components and is useful in various tests including histochemistry on tissue sections, immunoblotting, enzyme-immunological and radioimmunological assays. The SC- 05 antibody is therefore particularly suitable for the detection and quantification of the secretory component in various body fluids, not only in the field of immunology), but also in the diagnosis of diseases of the respiratory tract, as well as production ch ad.e n.ocarcinomas • from other types of tumors such as sarcomas, melanomas, lymphomas or carcinomas not producing a secretory component (e.g. carcinomas from multilayered epithelium). In addition to medical practice, its properties can also be used in a number of applications in research, biology of normal and transformed epithelial cells and the study of secretion mechanisms, potentially in the health care, education and Czech Academy of Sciences and Slovak Academy of Sciences.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS8710005A CS263450B1 (en) | 1987-12-29 | 1987-12-29 | Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS8710005A CS263450B1 (en) | 1987-12-29 | 1987-12-29 | Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS1000587A1 CS1000587A1 (en) | 1988-08-16 |
CS263450B1 true CS263450B1 (en) | 1989-04-14 |
Family
ID=5447548
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS8710005A CS263450B1 (en) | 1987-12-29 | 1987-12-29 | Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS263450B1 (en) |
-
1987
- 1987-12-29 CS CS8710005A patent/CS263450B1/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS1000587A1 (en) | 1988-08-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Halstensen et al. | Epithelial deposits of immunoglobulin G1 and activated complement colocalise with the M (r) 40 kD putative autoantigen in ulcerative colitis. | |
Gelzayd et al. | Distribution of immunoglobulins in human rectal mucosa: I. Normal control subjects | |
JP2540179B2 (en) | Monoclonal antibody against non-reducing non-enzymatic glycosylation protein | |
IE58974B1 (en) | Monoclonal anti-human breast cancer antibodies, their production and use, and hybridomas for producing the same and their preparation | |
JPH025893A (en) | Novel antibody | |
Björck et al. | Relationships between β2‐microglobulin and alloantigens coded for by the major histocompatibility complexes of the rabbit and the guinea pig | |
Preud'Homme et al. | Celluar immunoglobulins in human gamma-and alpha-heavy chain diseases | |
JP2831852B2 (en) | Cell surface proteins expressed on human thymic cortical cells and uses thereof | |
CS263450B1 (en) | Mouse lymphocyte hybridoma producing antibody against secretory component | |
Margni et al. | The proportion of symmetric and asymmetric IgG antibody molecules synthesized by a cellular clone (hybridoma) can be regulated by placental culture supernatants | |
KANTOR et al. | Analysis of the NIH workshop monoclonal antibodies to human melanoma antigens | |
Murphy et al. | Detection and localization of antigens on the surface of mouse spermatozoa. Antigen synthesis in the epididymis | |
Gorr et al. | A novel marker glycoprotein for the microvillus membrane of surface colonocytes of rat large intestine and its presence in small-intestinal crypt cells. | |
RU2105062C1 (en) | ANTI-iGM-ANTIBODY-BASE CONJUGATE (VARIANTS) AND METHOD OF DECREASE OF IGM-ANTIBODY SECRETION BY LYMPHOCYTES (VARIANTS) | |
CA2141025C (en) | Anti-mucus glycoprotein monoclonal antibody | |
Choe et al. | Immunohistological approaches to human prostatic epithelial cells | |
Klima et al. | Bovine early pregnancy factor (EPF) activity dependent on a 67-kDa polypeptide | |
Saurat et al. | Antibodies to outer root sheath of hair: DISTINCT ANTIGENIC PROPERTIES OF THE BASAL CELL LAYER OF THE OUTER ROOT SHEATH BELOW THE SEBACEOUS GLAND CANAL | |
Isahakia | Monoclonal antibody localization of sperm surface antigen secreted by the epididymis of the baboon (Papio cynocephalus) | |
CS263087B1 (en) | Mouse lymphocyte hybridoma producing anti-human keratin 18 antibody | |
Viac et al. | Alterations in the expression of two epidermal differentiation antigens in human epidermal disorders | |
Hinrichsen et al. | Immunological approach to the characterization of the outer acrosomal membrane of boar spermatozoa | |
Micouin et al. | A human immunoglobulin in myeloma protein with anti-gastric parietal cell autoantigen activity | |
Candelier et al. | Demonstration of human kidney differentiation antigens with monoclonal antibodies. | |
CS262046B1 (en) | Mouse lymphocyte hybrid 3-04 producing anti-keratin 18 antibody |