CS258054B1 - Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů - Google Patents
Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů Download PDFInfo
- Publication number
- CS258054B1 CS258054B1 CS852176A CS217685A CS258054B1 CS 258054 B1 CS258054 B1 CS 258054B1 CS 852176 A CS852176 A CS 852176A CS 217685 A CS217685 A CS 217685A CS 258054 B1 CS258054 B1 CS 258054B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- fibers
- toxicity
- irritation
- test material
- animal cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Způsob biologického sledování dráždivosti a toxicity vláken nebo ^lošnýoh tvarů spočívá v tom, že zkoušeny materiál ve formě vláken nebo plošných tvarů se uv$de do kontaktu s živými živočišnými buňkami v kultivačním médiu a biologická odezva .živočišných buněk na vložený zkoušený materiál se sleduje mikroskopicky, popřípadě mikrofotografioky nebo mikrokinematografioky.
Description
Vynález se týká způsobu biologického sledování dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů.
V současné dobé je zjišťována biologická dráždivost chirurgických materiálů výhradně všíváním nebo implantací těchto materiálů do tkání pokusných zvířat a histologiekým vyhodnocováním okolní tkáně. Tyto zkoušky trvají několik měsíců, jsou pracné a nákladné. Při ověřování všitých mikrochirurgických vláken se často stává, že v důsledku jejich migrace a nepatrných rozměrů se nepodaří zhotovit preparát z okolí vlákna. Naproti tomu například u monofilních vláken vyšších průměrů dochází často k projevu dráždění tkáně v důsledku působení většího cizího tělesa.
Výše uvedené nedostatky jsou podstatně odstraněny způsobem biologického sledování dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se zkoušený materiál ve formě vláken nebo proužků uvede do kontaktu s živými živočišnými buňkami v kultivačním mediu a biologická odezva buněk na vložený zkoušený materiál se sleduje mikroskopicky, mikrofotografický nebo mikrokinematograficky. Zkoušený materiál lze na podložku na níž je narostlé vrstva živočišných buněk fixovat pomocí proužku filtrační membrány. Narostlá vrstva živočišných buněk s přiloženým zkoušeným materiálem se přelije kultivačním mediem. Zkoušený materiál lze též na čistou podložku fixovat pomocí bílkovinného lepidla a přelít suspenzí živočišných buněk v kultivačním médiu.
Hlavní výhody biologického sledování dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných útvarů podle vynálezu spočívají ve zkrá258054 cení doby zkoušek z několika měsíců na několik hodin. Dále jsou podstatně nižší náklady na tyto zkoušky. V případě zkoušek in vivo vyžaduje každé časové sledování utracení několika laboratorních zvířat. U zkoušek in vitro lze snímat stav biologické odezvy buněk v kteroukoliv dobu jejich kultivace, a to zachycením změn v jejich množení, nárůstu v čase, případně morfologiekých změn bez zvýšení nákladů na zkoušení. V případě toxicity se vytvoří pathologické změny na buňkách narostlých na skle nebo v případě použití buněčné suspenze nedojde k rozprostření nebo adhesi buněk v blízkosti zkoušeného materiálu. Zóna poškozených nebo nerozprostřených a neadhezovaných buněk je tím větší, čím je zkoušený materiál toxičtější. Dokonalé upevnění zkoušených vláken nebo proužků umožňuje mikrofotografické snímky téhož místa a Vzájemné srovnání snímků z různých časových, údobí. Jako kontrolní jsou záběry buněk ničím neovlivněné kultury, bez zkoušených vláken nebo proužků, přechovávané po stejnou dobu v týchž podmínkách. Způsob dle vynálezu je citlivější než zkoušky in vivo a umožňuje sériové ověřování vzorků vláken. Pro velkou potřebu laboratorních zvířat a pracnost není u metod in vivo možná práce ve větších sériích. Metoda podle vynálezu umožňuje sledovat i biologickou odezvu živočišných buněk na vnitřní části zkoušeného materiálu,použije-li se řez monofilních vláken, cévní protézou nebo dutými vlákny.
Reprodukovatelnost výsledků získaných způsobem podle vynálezu je vyšší než u metod in vivo.
Úseky vláken nebo odstřižky nebo řezy plošných tvarů v délkách 2 až 5 mm se přilepí na očištěné sklo, nejlépe bílkovinným lepidlem. Na sklo se zkoušenými vzorky se nalije buněčná suspenze s přesným počtem buněk v obohaceném kultivačním mediu a za udržované stálé teploty se od prvého styku buněk s vlákny provádí v časových intervalech mikrofotografické snímkování stejného úseku vzorku a jeho okolí. Při druhé metodě se buněčná suspenze s přesným počtem buněk nalije na očištěná skla, kde se ponechá sedimentovat. Na porostlá skla se položí úseky vláken nebo odstřižky nebo řezy plošných tvarů v délkách· 2 až 5 mm a přitlačí se proužky sterilní filtrační membrány. Potom se při258054
- 5 dá obohacené kultivační medium, udržuje se stálé kultivační teplota podle druhu použitých živočišných buněk. Mikrofotografické snímkování se provádí rovněž v časových intervalech od prvého styku buněk se vzorkem. Provádí se rovněž kontrolní snímky původní buněčné kultury bez vzorků, za stejných podmínek Při konečném hodnocení se vzájemně srovnávají snímky z jednotlivých časových úseků i původní buněčné kultury.
Výše uvedené příklady a popisy pouze vynález objasňují, ale neomeszyjí.
Mimo zjišťování dráždivost! a toxicity chirurgických šicích materiálů a zdravotnických materiálů určených k implantaci lze způsob dle vynálezu využít i k ověřování zdravotní nezávadnosti, například textilních materiálů a folií, které přijdou do přímého styku s Živou tkání. Této metody lze použít i pro případ, kdy dojde ke styku živé tkáně pouze s výluhem zkoušeného materiálu.
Způsob podle vynálezu je ilustrován následujícími příklady
Přikladl
Úsek mikrochirurgického Silonu dekadického značení OA podle PNY 830668 v délce 5 mm byl za sterilních kaut,el přiložen k L buňkám ustálené linie HEp 2, narostlým na mikroskopickém krycím sklíčku. Vlákno bylo přitlačeno a fixováno proužkem sterilní filtrační membrány. Buňky byly pozorovány v polosyntetickém mediu MEM, obohaceném 10 % bovinního séra, antibiotiky, bikarbonátovým ústojným roztokem a fenolovou červení, sloužící jako indikátor pH, za teploty 37 °C· živé buňky byly sledovány fázově koru/trastní optikou od okamžiku kontaktu se zkoušeným vláknem po dobu 12 hodin. V intervalech 30 minut byly snímány mikrofotografické záběry.
Příklad 2
Úseky chromovaného catgutu délky 3 mm byly přilepeny bílkovinným lepidlem do středu dna Petriho misky průměru 50 tam.
- 4 Byly přelity buněčnou suspenzí, která obsahovala v 1 ml
2,5 x 1O5 Živých buněk linie HEp 2. V ostatním byl postup obdob ný jako v příkladu 1.
Snímky u každého příkladu byly vzájemně srovnány i porovnány se snímky buněčné kultury, která nebyla ve styku se zkoušenými materiály. U příkladu 1 nevyvolalo zkoušené vlákno žádné změny buněk a jejich organel, ve shodě se zkušebními metodami na pokusných zvířatech dle PNY 83-04-68 a PNY 83-04-78 byl vzorek hodnocen jako tkáňově zcela tolerantní. U příkladu 2 rozprostřely se buňky ve vzdálenosti asi 1 mm od úseku vlákna, rovněž, ve shodě s výše uvedenými oficiálními zkušebními metodami byl vzorek hodnocen jako kontaktně až lokálně mírně toxický.
Claims (3)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZU1. Způsob biologického sledování dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů, vyznačující se tím, že zkoušený materiál ve formě vláken nebo plošných tvarů se uvede do kontaktu s živými živočišnými buňkami v kultivačním médiu a biologická odezva živočišných buněk na vložený zkoušený materiál se sleduje mikroskopicky, případně mikrofotograficky nebo mikrokinematograficky.
- 2. Způsob podle bodu l^vyznačující se tím, že na vrstvu živočišných buněk narostlých na podložce se pomocí proužku filtrační membrány fixuje zkoušený materiál a přelije se kultivačním médiem. .
- 3. Způsob podle bodu 1,vyznačující se tím, že zkoušený materiál se fixuje na čistou podložku pomoci bílkovinného lepidla a přelije se suspenzí živých živočišných buněk v kultivačním médiu.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS852176A CS258054B1 (cs) | 1985-03-26 | 1985-03-26 | Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS852176A CS258054B1 (cs) | 1985-03-26 | 1985-03-26 | Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS217685A1 CS217685A1 (en) | 1987-12-17 |
| CS258054B1 true CS258054B1 (cs) | 1988-07-15 |
Family
ID=5358133
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS852176A CS258054B1 (cs) | 1985-03-26 | 1985-03-26 | Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS258054B1 (cs) |
-
1985
- 1985-03-26 CS CS852176A patent/CS258054B1/cs unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS217685A1 (en) | 1987-12-17 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP4099236B2 (ja) | 複数の細胞を培養し、その中の単個細胞の状態を決定する装置及び方法 | |
| AU2021215201B2 (en) | Nerve culture system | |
| KR102641616B1 (ko) | 남성 수정능력 상태의 판정 방법 및 시험 키트 | |
| Schmitd et al. | The chick chorioallantoic membrane in vivo model to assess perineural invasion in head and neck cancer | |
| Meurer et al. | Isolation, purification, and culture of primary murine hepatic stellate cells: An update | |
| US3989591A (en) | Test method for separating and/or isolating bacteria and tissue cells | |
| US6706520B2 (en) | Assessment of invasive potential of tumor cells | |
| Aparicio et al. | Human Schwann cells in vitro I. Nerve tissue processing, pre-degeneration, isolation, and culturing of primary cells | |
| CS258054B1 (cs) | Způsob biologického sledováni dráždivosti a toxicity vláken nebo plošných tvarů | |
| Tuttle et al. | An in vitro bioassay for neurite growth using cryostat sections of nervous tissue as a substratum | |
| Beebe et al. | A tissue culture system for studying lens cell differentiation | |
| US11085916B2 (en) | Method for observing dynamics of sweat glands | |
| DE19751581C2 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Prüfung von Materialien hinsichtlich ihrer potentiellen antimikrobiellen Wirksamkeit und der Adhäsion auf ihrer Oberfläche | |
| Middleton et al. | Cell locomotion in vitro: techniques and observations | |
| Watson et al. | Evidence for a coelomic maturation factor controlling oocyte maturation in the polychaete Arenicola marina (L.) | |
| Baier et al. | Axon guidance and growth cone collapse in vitro | |
| Januschke et al. | Applications of immobilization of drosophila tissues with fibrin clots for live imaging | |
| Ly et al. | Fixation and staining of Drosophila L1 larval brains for immunofluorescence microscopy and preparation for live imaging | |
| Gil Fernández et al. | Generation of 3D collagen-based hydrogels to analyze axonal growth and behavior during nervous system development | |
| RU2204135C2 (ru) | Способ прижизненного определения цитопролиферативного фактора в организме стареющих млекопитающих и человека | |
| CN117969481A (zh) | 一种用于Transwell膜上迁移细胞计数和行为评估的方法 | |
| RU2736806C2 (ru) | Способ диагностики сосудистого бактериоза крестоцветных методом дот-иммуноанализа | |
| EP1581613A1 (de) | Verfahren zur behandlung von zellkulturen | |
| Sigot-Luizard et al. | In vitro cytocompatibility tests | |
| Priscott | Commercially available equipment suitable for post-implantation embryo culture |