CS257782B2 - Method and reagent for transaminases determination - Google Patents

Method and reagent for transaminases determination Download PDF

Info

Publication number
CS257782B2
CS257782B2 CS846297A CS629784A CS257782B2 CS 257782 B2 CS257782 B2 CS 257782B2 CS 846297 A CS846297 A CS 846297A CS 629784 A CS629784 A CS 629784A CS 257782 B2 CS257782 B2 CS 257782B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
mmol
lactate dehydrogenase
dsm
reagent
lactobacillus
Prior art date
Application number
CS846297A
Other languages
English (en)
Other versions
CS629784A2 (en
Inventor
Gerald Moeller
Original Assignee
Boehringer Mannheim Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Boehringer Mannheim Gmbh filed Critical Boehringer Mannheim Gmbh
Publication of CS629784A2 publication Critical patent/CS629784A2/cs
Publication of CS257782B2 publication Critical patent/CS257782B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/26Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
    • C12Q1/32Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase involving dehydrogenase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/48Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
    • C12Q1/52Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase involving transaminase
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/81Packaged device or kit
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/853Lactobacillus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/853Lactobacillus
    • Y10S435/857Lactobacillus plantarum

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Solid State Image Pick-Up Elements (AREA)
  • Photovoltaic Devices (AREA)
  • Semiconductor Lasers (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Reinforced Plastic Materials (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu a reagenčního činidla pro stanovení transamináz.
Lidská tkáň obsahuje transaminázy glutamát-pyruvát-transaminázu ЕС 2.6.1.2 a glutamát-oxalacetát-transaminázu ЕС 2.6.1.1 ve svalech, séru a orgánech. Měření obsahu glutamát-pyruvát-transaminázy zejména v séru představuje důležitý klinický parametr pro rozlišení onemocnění jater od onemocnění srdce.
Glutamát-pyruvát-transaminázu se vyskytuje výhradně v játrech, kde je obsažena pouze v cytoplazmě parenchymových buněk, zatímco glutamát-oxalacetát-transamináza je vždy asi z 50 % obsažena v cytoplazmě a v mitochondriích. Z této lokalizace obou těchto transamináz vyplývají cenné diagnostické náznaky při různých onemocněních jater. Vyšší obsahy glutamát-oxalacetát-transaminázy naznačují vážné poškození parenchymatických jaterních buněk.
Při akutní hepatitidě jsou obsahy glutamát-oxalacetát-transaminázy a glutamát-pyruvát-transaminázy v séru vždy zvýšeny, i při anikterickém průběhu. Často je možno dokázat zvýšení aktivity enzymu již před výskytem ikteru.
Při chronické hepatitidě a cirhóze jsou obsahy glutamát-oxalacetát-transaminázy a glutamát-pyruvát-transaminázy nižší než při virové hepatitidě. Jejich stanovení je cenné při chronických zánětech jater především pro sledování průběhu onemocnění a léčení.
Stanovení glutamát-oxalacetát-transaminázy se kromě toho využívá i při diagnostice onemocnění srdečního svalu.
Při obvyklém a hojně používaném způsobu stanovení glutamát-pyruvát-tranaminázy, popřípadě glutamát-oxalacetát-transaminázy se používá transaminace kyseliny α-ketoglutarové alaninem, popřípadě aspartatcm, která je těmito enzymy katalyzována a vede ke vzniku kyseliny glutamové a pyruvátu, popřípadě oxalacetátu. Pyruvát, popřípadě oxalacetát se redukcí pomocí NADH v přítomnosti laktátdehydrogenázy a popřípadě malátdehydrogenázy přemění v laktát, popřípadě v malát a NAD+, přičemž se posledně uvedené látky stanoví známými postupy buď přímo v UV oblasti, nebo pomocí následné barevné reakce.
Podstatnou nevýhodou tohoto způsobu je, že laktátdehydrogenáza sama vykazuje nespecifičnost (vedlejší aktivitu), která vede к reakci rz-ketokyselin, zejména kyseliny α-ketoglutarové, za vzniku kyseliny a-hydroxyglutarové a kterou je možno označit jako a-hydroxy?;lutarát-dehydrogenázovou aktivitou.
Tato nespecifičnost má kromě toho za následek, že příslušné reagenční činidlo к provádění tohoto známého způsobu vykazuje jen nedostačující stabilitu, poněvadž při vzniku tt-hydroxyglutarátu se NADH oxiduje v NAD, což je příčinou plíživé reakce.
Podnětem к vynálezu byl úkol tento problém vyřešit.
Předmětem vynálezu je proto způsob stanovení transamináz reakcí příslušné aminokyseliny s kyselinou α-ketoglutarovou za vzniku kyseliny glutamové a a-ketokyseliny odpovídající použité aminokyselině a stanovením vzniklé α-ketokyseliny redukcí pomocí NADH v přítomnosti laktátdehydrogenázy a popřípadě malátdehydrogenázy za vzniku NAD+ a α-oxykyseliny, kterýžto způsob se vyznačuje tím. že se použije D-laktátdehydrogenázy mléčné bakterie.
Vynález spočívá na překvapivém objevu, že D-laktátdehydrogenáza mléčných bakterií neredukuje kyselinu α-oxoglutarovou ani v přítomnosti NADH. Nahradí-li se proto při výše popsaném postupu až dosud obvykle používaná laktátdehydrogenáza ze srdce vepře podle vynálezu D-laktátdehydrogenázou mléčné bakterie, nedochází již к rušivé plíživé reakci a získá se reagenční činidlo, jehož stabilita při skladování je značně zlepšena.
Výhodných výsledků podle vynálezu se dosáhne s každou D-laktátdehydrogenázou z mléčných bakterií. Mléčné bakterie vytvářející D-laktátdehydrogenázu patří v podstatě do rodů Lactobacillus, Pediococcus a Leuconostoc (Antonie van Leeuwenhoek, 49, 1983, str. 210). Pokud mléčné bakterie vytvářejí L-laktátdehydrogenázu, není tato vhodná pro činidlo a způsob podle vynálezu. Pokud některý kmen vytváří jak D-laktátdehydrogenázu, tak i L-laktátdehydrogenázu, je nutno oba tyto enzymy od sebe oddělit. Výhodné jsou proto D-laktátdehydrogenázové preparáty z kmenů, které obsahují pouze D-laktátdehydrogenázu. Obzvláště dobré výsledky skýtá laktátdehydrogenáza z Lactobacillus leichmannii, DSM 2699, u níž jde o D-laktátdehydrogenázu. Dalšími výhodnými kmeny jsou Lactobacillus lactis, DSM 20072, Lactobacillus ulantarum, DSM 20174, Leuconostoc mesenteroides DSM 20193 nebo Pedicoccus pentosaceus DSM 20280.
Použije-li se způsobu podle vynálezu pro stanovení glutamát-pyruvát-transaminázy, použije se jako aminokyseliny alaninu, který se desaminuje v pyruvát a pak se redukuje v laktát. Jde-li o stanovení glutamát-oxalacetát-transaminázy, použije se jako aminokyseliny aspartatu, který se desaminuje v oxalacetát a pak se redukuje v malát.
Reagenční činidlo podle vynálezu pro stanovení transamináz, obsahující laktátdehydrogenázu, α-oxoglutarát, příslušnou aminokyselinu, NADH, pufr pH 6,5 až 8,5 a popřípadně malátdehydrogenázu, se tedy vyznačuje tím, že obsahuje D-laktátdehydrogenázu mléčné bakterie.
Jde-li o stanovení glutamátpyruváttransaminázy, obsahuje reagenční činidlo jakožto aminokyselinu alanin. V případě stáno257782 verrí glutamát-oxalacotát--transaminázy obsahuje reagenční Činidlo jakožto aminokyselinu aspartat a kromě toho malátdehydrogenázu.
Při výhodném provedení obsahuje reagenční činidlo podle vynálezu pro stanovení glutamátpyruvát-transaminázy
250 až 20 000 jedn. . 1J D-laktátdehydrogenázy z mléčných bakterií,
2,5 až 100 mmolů . I1 a-oxoglutarátu, až 1 000 mmolů . I1 alaninu,
0,01 až 0,25 mmolů . Г1 NADH a až 500 mmolů . I1 pufru pH 6,5 až 8,5.
Při dalším výhodném provedení obsahuje reagenční činidlo podle vynálezu pro stanovení glutamát-oxalacetát-transaminázy
250 až 20 000 jedn. .I1 D-laktátdehydrogenázy z mléčných bakterií,
2,5 až 100 mmolů .l“1 a-oxoglutarátu, až 1 000 mmolů . Г1 aspartatu,
0,01 až 0,25 mmolů . 1_1 NADH,
100 až 20 000 jedn. Г1 malátdehydrogenázy a až 500 mmolů . I*1 pufru pH 6,5 až 8,5.
V rámci vynálezu jsou obzvláště výhodné konečné koncentrace jednotlivých složek ' činidla při testu pro stanovení glutamát-pyruvát-transaminázy:
laktátdehydrogenáza
1000 až 1 400 jedn. .I1, alanin
600 až 800 mmolů .l”1,
NADH
0,10 až 0,20 mmolů . I’1, tt-oxoglutarát až 25 mmolů .l“1, pufr pH 7,3 až 7,5 až 100 mmolů . 1 J.
Odpovídající hodnoty koncentrace jednotlivých složek činidla při testu pro stanovení glutamát-oxalát-transaminázy jsou:
laktátdehydrogenáza
1000 až 1 400 jedn. . Г’, malátdehydrogenáza
500 až 1 000 jedn. . Г ’
NADH
0,10 až 0,20 mmolů . I'“1, aspartat
150 až 250 mmolů .1_1, a-oxoglutarát až 20 mmolů . 1 -t, pufr pH 7,3 až 7,5 až 100 mmolů . I'1.
Jako pufr přicházejí v úvahu pufrovací látky účinné v uvedeném rozsahu pH. Výhodně se používá TRIS-pufrů, TRA-pufrů (triethanolamin) a fosfátových pufrů.
Účinek dosažený podle vynálezu je znázorněn graficky na připojeném výkresu. V tomto výkresu je znázorněna závislost procentuálního úbytku počáteční extinkce (osa Y] na době trvání skladování v hodinách (osa X) u známého způsobu, popřípadě reagenčního činidla v porovnání se způsobem podle vynálezu, popřípadě reagenčním činidlem podle vynálezu. Pro získání hodnot, uvedených v grafu na připojeném výkresu, bylo použito reagenčního činidla pro stanovení glutamát-pyruvát-transaminázy, komerčně dostupného pod označením „MonotestR a ALAT/ALT/GPT“ (výrobek firmy Boehringer Mannheim GmbH), které bylo porovnáno s regulačním činidlem podle vynálezu. Koncentrace při testu byly tyto:
laktátdehydrogenáza
200 jedn. . Г1,
NADH
0,180 mmolů . I1, . a-oxoglutarát mmolů. I1, alanin
500 mmolů . I1,
TRIS-pufr pH 7,5
100 mmolů . I-1.
Známé reagenční činidlo obsahovalo laktátdehydrogenázu za srdce vepře, reagenční činidlo podle vynálezu obsahovalo D-laktátdehydrogenázu z Lactobacillus leichmannii DSM 2699.
V grafu na připojeném výkresu znázorňuje křivka 1 — komerčně dostupné známé reagenční činidlo, použité při teplotě 25 °C (vodní lázeň), křivka 2 — komerčně dostupné známé reagenční činidlo, použité při teplotě +4 °C (ledová lázeň), křivka 3 — reagenční činidlo podle vynálezu, použité při teplotě 25 °C (vodní lázeň), křivka 4 — reagenční činidlo podle vynálezu, použité při teplotě +4°C (ledová lázeň).
Z výsledků znázorněných v grafu vyplývá, že při teplotě 25 °C dojde u známého reagenčního činidla asi po 34 hodinách к vymizení veškeré NADH, zatímco u reagenčního činidla podle vynálezu zůstává zachováno ještě po 120 hodinách přibližně 71 % počáteční extinkce. Příslušné hodnoty při teplotě 4 °C a 120 hodinách skladování jsou u známého reagenčního činidla 30 °/o zbytkové extinkce, u reagenčního činidla podle vynálezu 90 °/o. Analogické výsledky jako s laktátdehydrogenázou ze srdce vepře se získají, když se místo laktátdehydrogenázy ze srdce vepře použije L-laktátdehydrogenázy z Lactobacillus casei, Lactobacillus xylosus, Bacillus stearothermophilus nebo Lactobacillus plantarum.
Identické křivky se též získají, když se místo výše uvedeného komerčně dostupné257782 ho reagenčního činidla pro stanovení glutamát-pyruvát-transaminázy použije příslušného, komerčně pod označením „MonotestR a ASAT/AST/GOT“ dostupného reagenčního činidla pro stanovení glutamát-oxalacetát-transaminázy. Koncentrace při testu zde byly tyto:
laktátdehydrogenáza
600 jedn. . I1, malátdehydrogenáza
420 jedn. . I-1, NADH
0,180 mmolů . I“1, a-oxoglutarát mmolů . I“1, aspartat
240 mmolů . Г1, TRIS-pufr pH 7,8 mmolů . I-1.
U tohoto reagenčního činidla je nutný obsah laktátdehydrogenázy, poněvadž každý vzorek obsahuje endogenní pyruvát a zpravidla i endogenní laktátdehydrogenázu. Toto vede к plíživé reakci pomalým odbouráváním pyruvátu, které přídavkem nadbytku laktátdehydrogenázy podle vynálezu proběhne během krátké doby.
К této vedlejší reakci přirozeně dochází stejným způsobem i při stanovení glutamát-pyruvát-transaminázy, je zde však zastíněna větším problémem, kterým je aktivita a-hydroxyglutarátdehydrogenázy. Vynálezem jsou však oba tyto problémy současně vyřešeny.
Z toho plyne, že aplikací způsobu, popřípadě činidla podle vynálezu se dosáhne mnohonásobně delší stálosti při skladování.
Enzymový preparát z Lactobacillus leichmannii DSM 2699, vhodný pro činidlo a způsob podle vynálezu, je možno připravit známými postupy pro získávání mikrobiální laktátdehydrogenázy, například postupem popsaným v časopisu J. of Generál Microbiology (1972), 62? str. 243. Tento způsob se v podstatě provádí takto:
Rozklad buněk mikroorganismu Lactobacillus, suspendovaného v 0,005molárním pufrovém roztoku fosforečnanu draselného o pH 7 pomocí ultrazvuku. Odstředění a odstranění zbytků rozložených buněk.
Získaný surový extrakt mikroorganismu se okyselí kyselinou octovou na pH 5,5, přidá se protaminsulfát na koncentraci 0,3 % hmotnost/objem a sraženina se odstraní odstředěním. Kapalina nad sraženinou se upraví na pH 7 a získá se frakce, vylučující se působením síranu amonného při koncentraci v rozmezí 50 až 85 % nasycení. Tato frakce se v pufru s pH 7 chromatografuje na slabém měniči aniontů a eluuje elučním činidlem s gradientem chloridu sodného.
V přibližně 25% výtěžku se získá laktátdehydrogenázový preparát, který je oproti surovému extraktu třicetinásobně i více čistší. Tento postup je vhodný i pro ostatní kmeny rodu Lactobacillus a rod Leuconostoc, například pro Lactobacillus lactis DSM 20 072, Lactobacillus plantarum DSM 20 174 a Leuconostoc mesenteroides DSM 20 193. U kmenů rodu Pediococcus ,se používá způsobu popsaného v časopisu J. of Bacteriology, sv. 121, str. 602.
Dále uvedené příklady vynález blíže objasňují.
Příklad 1
Stanovení aktivity glutamát-pyruvát-transaminázy (provedení s fosfátovým pufrem)
Materiál vzorku: sérum, heparinová nebo EDTA-plazma
Reagenční činidla: (konečná koncentrace při testu) fosfátový pufr mmolů . I1 pH 7,4
L-alanin
800 mmolů . I1 laktátdehydrogenáza
200 jedn. . 1-1
NADH
0,18 mmolů . l_i a-ketoglutarát
18,0 mmolů .l“1
Násada pro stanovení:
Vlnová délka:
Hg 365 nm, 340 nm nebo Hg 334 nm Kyveta:
tloušťka vrstvy 1 cm
Teplota při měření:
°C
Měření vůči vzduchu:
(úbytek extinkce)
U fotometrů s analogovým údajem je nutno počáteční extinkce nad 0,5000 kompenzovat stupňovitým zapojením.
Do kyvety se napipetuje:
reakční směs (25 °C) 2,5 ml vzorek 0,5 ml
Po promíchání se asi po 1 minutě odečte extinkce a současně se uvedou do chodu stopky. Po přesně dalších 1, 2 a 3 minutách se odečtení opakuje.
U rozdílů extinkce za minutu (ЛЕ. min“1) v rozmezí 0,06 až 0,08 (Hg 365), popřípadě 0,11 až 0,18 (Hg 334 a 340 nm) se berou v úvahu jen měření prvých dvou minut (1 minutu inkubovat a 2 minuty měřit).
Z rozdílů extinkce za minutu (ΔΕ . min“1) se vypočte střední hodnota, které se použije pro výpočty.
Výpočet:
Aktivita glutamát-pyruvát-transaminázy ve vzorku se vypočte podle vztahů:
jedn.. l“1 (25 °C) = = 1 765 x ЛЕзб5 nm . min'1 jedn.. I'1 (25 °C) = = 952 x ΔΕ340 nm . min-1 jedn.. I’1 (25 °C) = = 971 x ΔΕ334 nm. min-1.
Příklad 2
Stanovení aktivity glutamát-oxalacetát-transaminázy (obměna s TRIS-pufrem)
Materiál vzorku: sérum, heparinová nebo EDTA-plazma
Reagenční činidla: (konečné koncentrace při testu)
TRIS-pufr
100 mmolů . I“1 pH 7,5
NADH
0,18 mmolu . I“1 malátdehydrogenáza
600 jedn.. I“1 laktátdehydrogenáza
200 jedn. . I“1 a-ketoglutarát mmolů . I1
L-aspartat
200 mmolů. I“1
Násada pro stanovení:
délka vlny: Hg 365 nm, 340 nm nebo 334 nm kyveta: tloušťka vrstvy 1 cm teplota při měření: 25 CC měření vůči roztoku (úbytek extinkce) roztok reagenčního činidla (25°C) 2,5 ml vzorek 0,5 ml
Po promísení se roztok vlije do kyvety.
Po asi 1 minutě se odečte extinkce a současně se uvedou do chodu stopky. Po přesně dalších 1, 2 a 3 minutách se odečtení opakuje.
Z rozdílů extinkce za minutu (ΔΕ . min'1) se vypočte střední hodnota, které se použije pro výpočty.
Výpočet
Aktivita glutamát-oxalacetát-transaminázy ve vzorku se zjistí z tabulky nebo se vypočte podle vztahu
jedn.. I“1 (25°C)
= 2 059 X AE365 nm . min-1
jedn.. I'1 (25°C) --
= 1 111 x АЕзю nm. min“1
jedn.. I1 (25°C)
- 1133 x ΔΕ334 nm. min “1
předmět vynálezu

Claims (11)

1. Způsob stanovení transamináz reakcí příslušné aminokyseliny s kyselinou a-ketoglutarovou za vzniku kyseliny glutamové a α-ketokyseliny odpovídající použité aminokyselině a měřením vzniklé a-ketokyseliny redukcí pomocí NADH v přítomnosti laktátdehydrogenázy a popřípadě malátdehydrogenázy za vzniku NAD+ a a-oxykyseliny, vyznačující se tím, že se použije D-laktátdehydrogenázy mléčné bakterie.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačující se tím, že se použije D-laktátdehydrogenázy z mikroorganismů rodu Lactobacillus pediococcus a/nebo#Leuconostoc.
3. Způsob podle bodů 1 nebo 2 vyznačující se tím, že se stanoví glutamátpyruváttransamináza a jako aminokyseliny se použije alanin, který se desaminuje v pyruvát a redukuje v laktát.
4. Způsob podle bodů 1 nebo 2 vyznačující se tím, že se stanoví glutamátoxalacetáttransamináza a jako aminokyselina se použije aspartat, který se desaminuje v oxalacetát a redukuje v malát.
5. Způsob podle bodů 2 až 4 vyznačující se tím, že se použije D-laktátdehydrogenázy z Lactobacillus lactic DSM 20 072, Lactobacillus plantarum DSM 20 174, Leuconostoc mesenteroides DSM 20 193 nebo Pediococcus pantosaceus DSM 20 280.
6. Způsob podle bodu 5 vyznačující se tím, že se použije D-laktátdehydrogenázy z Lactobacillus leichmannii DSM 2 699,
7. Reagenční činidlo pro stanovení transmináz, obsahující laktátdehydrogenázu, a-oxoglutarát, příslušnou aminokyselinu, NADH, pufr pH 6,5 až 8,5 a popřípadě malátdehydrogenázu, vyznačující se tím, že obsahuje
250 až 20 000 jedn.. Г1 D-laktátdehydrogenázy z mléčných bakterií.
8. Reagenční činidlo podle bodu 7 pro stanovení glutemát-pyruvát-transaminázy, vyznačující se tím, že obsahuje
250 až 20 000 jedn.. I“1 D-laktátdehydrogenázy z mléčných bakterií,
2,5 až 100 mmolů . I“1 a-oxoglutarátu,
50 až 1 000 mmolů . I-1 alaninu,
0,01 až 0,25 mmolu . I’1 NADH a
10 až 500 mmolů . I“1 pufru pH 6,5 až 8,5.
9. Reagenční činidlo podle bodu 7, pro stanovení glutamát-oxalacetát-transaminázy, vyznačující se tím, že obsahuje
250 až 20 000 jedn..!“1 D-laktátdehydrogenázy z mléčných bakterií,
2,5 až 100 mmolů . I1 a-oxoglutarátu,
20 až 1 000 mmolů . I“1 aspartatu,
0,01 až 0,25 mmolu . I1 NADH,
1Ό0 až 20 000 jedn.. I'1 malátdehydrogenázy a
10 až 500 mmolů . I“1 pufru pH 6,5 až 8,5.
10. Reagenční činidlo podle bodů 7 až 9 vyznačující se tím, že obsahuje D-laktátde-
2577S2 hydrogenázu z mikroorganismů rodu Lactobacillus pediococcus nebo/a Leuconostoc.
11. Reagenční činidlo podle bodu 10 vyznačující se tím, že obsahuje D-laktátdehydrogenázu z Lactobacillus leichmanniii
DSM 2 699, Lactobacillus lactis DSM 20 072, Lactobacilus plantarum DSM 20 174, Laueonostoc mesenteroides DSM 20174, Laueodiococcus pentosaceus DSM 20 280.
CS846297A 1983-08-22 1984-08-20 Method and reagent for transaminases determination CS257782B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19833330246 DE3330246A1 (de) 1983-08-22 1983-08-22 Verfahren und reagenz zur bestimmung von transaminasen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS629784A2 CS629784A2 (en) 1987-11-12
CS257782B2 true CS257782B2 (en) 1988-06-15

Family

ID=6207132

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS846297A CS257782B2 (en) 1983-08-22 1984-08-20 Method and reagent for transaminases determination

Country Status (13)

Country Link
US (1) US4728604A (cs)
EP (1) EP0139985B1 (cs)
JP (1) JPS6078598A (cs)
AT (1) ATE31427T1 (cs)
AU (1) AU548110B2 (cs)
CA (1) CA1225316A (cs)
CS (1) CS257782B2 (cs)
DD (1) DD222332A5 (cs)
DE (2) DE3330246A1 (cs)
ES (1) ES535299A0 (cs)
SU (1) SU1431690A3 (cs)
YU (1) YU143584A (cs)
ZA (1) ZA846478B (cs)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0387697A3 (en) * 1989-03-13 1991-11-13 Abbott Laboratories Determination of aminotranferases
EP0471062A4 (en) * 1990-03-01 1992-09-09 Baxter Diagnostics Inc. Method to use a reaction by-product as a calibrator for enzymatic assays
DE4427492A1 (de) * 1994-08-03 1996-02-08 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur Analyse einer medizinischen Probe unter Vermeidung von Störbeiträgen aufgrund von Hämolyse
JP6339789B2 (ja) * 2013-10-23 2018-06-06 株式会社カイノス Alt活性測定試薬およびその試薬を用いたアラニンアミノトランスフェラーゼ活性の測定方法。

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3527332A (en) * 1966-06-30 1970-09-08 Calbiochem Method for assaying glutamate pyruvate transaminase
BE786291A (fr) * 1971-07-20 1973-01-15 Technicon Instr Compositions de diagnostic pour determination de la glutamate-oxalate-transaminase (got) et de la glutamate-pyruvate-transaminase (gpt)
IT1162349B (it) * 1979-07-17 1987-03-25 Biodata Spa Metodo per la determinazione delle transaminasi e relativo kit diagnostico

Also Published As

Publication number Publication date
ES8504939A1 (es) 1985-05-16
DD222332A5 (de) 1985-05-15
SU1431690A3 (ru) 1988-10-15
ATE31427T1 (de) 1988-01-15
DE3330246A1 (de) 1985-03-14
YU143584A (en) 1988-10-31
ZA846478B (en) 1986-04-30
JPS6078598A (ja) 1985-05-04
CS629784A2 (en) 1987-11-12
EP0139985A1 (de) 1985-05-08
CA1225316A (en) 1987-08-11
DE3468126D1 (en) 1988-01-28
AU548110B2 (en) 1985-11-21
AU3197484A (en) 1985-02-28
US4728604A (en) 1988-03-01
EP0139985B1 (de) 1987-12-16
JPH0453519B2 (cs) 1992-08-26
ES535299A0 (es) 1985-05-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Williamson et al. Enzymic determination of D (−)-β-hydroxybutyric acid and acetoacetic acid in blood
Ochoa [123] Malic dehydrogenase from pig heart: l-Malate+ DPN+⇆ Oxalacetate+ DPNH+ H+
Wolin Fructose-1, 6-diphosphate requirement of streptococcal lactic dehydrogenases
Lonvaud-Funel et al. Purification and properties of a malolactic enzyme from a strain of Leuconostoc mesenteroides isolated from grapes
Hanson et al. BIOCHEMISTRY OF SPORULATION II: Enzymatic Changes During Sporulation of Bacillus cereus
GB2115926A (en) Method for the quantitative determination of physiological components in biological fluids
Sgorbati et al. Purification and properties of two fructose-6-phosphate phosphoketolases in Bifidobacterium
CS257782B2 (en) Method and reagent for transaminases determination
Virtanen et al. [53] Aspartase
Udaka et al. Lactic oxidase of Pneumococcus
Parsons et al. [108] β-Isopropylmalate dehydrogenase (Salmonella typhimurium)
JPH01117800A (ja) グリセロール定量法
US5100795A (en) Bile acid sulfate sulfatase, process for its preparation and method for assaying bile acid
JPS6233880B2 (cs)
Cazzulo et al. Inhibition of NADP-linked malic enzyme by glyoxylate
JPH09140378A (ja) Pqq依存性グルコースデヒドロゲナーゼ組成物およびグルコース測定用試薬組成物
JP3216735B2 (ja) 新規なアスコルビン酸オキシダーゼ
JPS6022915B2 (ja) L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法
Cowey et al. Studies on crystalline lactate dehydrogenase from cardiac and skeletal muscle of plaice (Pleuronectes platessa) with particular reference to temperature
Puranen et al. Inhibition of glutamic dehydrogenase by clomiphene
JP3035685B2 (ja) ステロイドβ−硫酸サルファターゼ、その製造法及び胆汁酸3β−硫酸エステルの定量法
DH et al. Enzymic determination of D (-)-beta-hydroxybutyric acid and acetoacetic acid in blood.
JPH04117281A (ja) ベタインアルデヒド脱水素酵素の製造方法
Adachi et al. [50] 6-Phospho-d-gluconate dehydrogenase from Gluconobacter su☐ ydans
Bhowmik et al. Purification and partial characterization ofd-(−)-lactate dehydrogenase from Lactobacillus helveticus CNRZ 32