CS250444B1 - Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové - Google Patents

Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové Download PDF

Info

Publication number
CS250444B1
CS250444B1 CS808285A CS808285A CS250444B1 CS 250444 B1 CS250444 B1 CS 250444B1 CS 808285 A CS808285 A CS 808285A CS 808285 A CS808285 A CS 808285A CS 250444 B1 CS250444 B1 CS 250444B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
phe
tyr
bzl
synthesis
cys
Prior art date
Application number
CS808285A
Other languages
English (en)
Inventor
Vaclav Cerovsky
Original Assignee
Vaclav Cerovsky
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vaclav Cerovsky filed Critical Vaclav Cerovsky
Priority to CS808285A priority Critical patent/CS250444B1/cs
Publication of CS250444B1 publication Critical patent/CS250444B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Vynález se týká způsobu přípravy peptidů na bázi molekuly kyseliny pressinové obecného vzorce I Z—Cys—Tyr—Phe—Gin—Asn—Cys—N2H2PÍ] Bzl Bzl (I) přičemž Z je benzyloxykarbonylová chránící skupina, Bzl je benzylová chránící skupina, N2H2PI1 je fenylhydrazidová chránící skupina. Podstatou vynálezu je, že na chráněné aminokyseliny nebo peptidy tvořící fragmenty molekuly kyseliny pressinové, působí proteolytickými enzymi, papainem pro syntézy peptidových vazeb Tyr—Phe, Gin—Asn, chymotrypsinem pro syntézu peptidových vazeb Tyr—Phe, Phe—Gin a termolysinem pro syntézu peptidové vazby Tyr—Phe. Tento způsob přípravy poskytuje čistší produkty, je flexibilnější při volbě syntetického postupu a je i ekonomicky výhodnější, než postupy pro tento účel dosud používané.

Description

Vynález se týká způsobu přípravy peptidů na bázi molekuly kyseliny pressinové a je založený na tom, že se pro tvorbu peptidových vazeb používá proteolytických enzymů.
Již dříve bylo zjištěno, že se proteolytické enzymy, jejichž vlastní funkci v živé hmotě je hydrolýza peptidových vazeb, mohou za určitých podmínek používat i k reakci opačné, tzn. k syntéze peptidových vazeb (přehled viz: Brtník F., Jošt K.: Chem. listy 74, 951 /1980/, Fruton J. S.: Adv. Enzymol. 53, 239 /1982/}, Jakubke II. — D. Kuhl P., Kěnnecke A.: Angev. Chem. 24, 85 /1985/).
Syntéza peptidů na bázi molekuly oxytocinu pomocí proteolytických enzymů je známa (čs. autorské ovědčení č. 244 645). Zde je popsána papainem katalyzovaná syntéza peptidových fragmentů Cys—Tyr a Asn—-Cys, které jsou společné pro sekvenci molekuly oxytocinu i kyseliny pressinové.
Nyní bylo zjištěno, že tento způsob syntézy je výhodný 1 pro syntézu N-koncového chráněného hexapeptidu vasopressinu a dalších strukturních fragmentů kyseliny pressinové. Tento způsob dává chemicky i opticky čisté produkty, provedení reakcí a zpracování vzniklých produktů je jednoduché a ekonomické.
Podstatou přípravy peptidů na bázi molekuly kyseliny pressinové obecného vzorce I je, že se na chráněné aminokyseliny nebo peptidy, tvořící fragmenty kyseliny pressinové, působí proteolytickými enzymy, papinem pro syntézu peptidových vazeb Tyr— —Phe, Gin—Asn, chymotrypsinem pro syntézu peptidových vazeb Tyr—Phe, Phe—Gin a termolysinem pro syntézu peptidové vazby Tyr—Phe.
Způsob přípravy chráněných peptidů sekvence kyseliny pressinové s využitím proteolytických enzymů se dále objasňuje v příkladech provedení.
Příklad 1
Fenylhydrazid terc.butyloxykarbonylfenylalanyl-glutaminu
K roztoku methylesteru terc.butyloxykarbonylfenylalaninu (430 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu glutaminu (650 mg) ve směsi methanolu (4 ml) a 0,2 mol. I-1 karbonát-bikarbonátového pufru pH 10,5 (16 mililitrů) byl po úpravě pH na hodnotu 10 přidán a-chymotrypsin (10 mgj a směs byla míchána 3 hodiny při teplotě místností. Vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo získáno 39|5 mg (52 %] produktu o t. t. 200 až 202 stupňů Celsia. Krystalizací ze směsi methanolu a etheru bylo získáno 324 mg (43 %) o t. t. 202 až 203 qC.
[a]D —11,4 (c 0,3, methanol).
Aminokyselinová analýza:
Glu 1,00, Phe 1,01,
Pro 'C25H33N5O5 . O . 5Ή2Ο (492,6) vypočteno:
60,95 % C, 6,96 % H, 14,21 % N;
f» o I ΟσρΐΎΑ ·
61,25 % C, 6,76 % H, 14,39 θ/ο N.
Příklad 2
Fenylhydrazid terc.butyloxykarbonylfenylalanyl-glutamlnylasparaginyl-S-benzylcysteinu
K roztoku terc.butyloxykarbonylfenylalanyl-glutaminu (200 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu asparaginyl-S-benzylcysteinu (320 mg) ve směsi ethanolu (1,5 ml) a 0,2 mol.l-1 acetátového pufru pH 5,8 (3,5 mililitru) byla přidána kyselina ethylendiaminotetraoctová (3 mg) a hydrochlorid cysteinu (5 mg). pH roztoku bylo 4,8. Po přidání papaínu (20 mg) byla směs inkubována 20 hodin při 38 °C. Vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo získáno 345 mg (87 %) produktu o t. t. 228 až 229 °C. Krystalizací ze směsi methanolu a etheru bylo získáno 315 miligramů (80 %) o t. t. 229 až 230 °C.
[«]D —35,9 (c 0,2, dimethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Asp 1,02, Glu 1,00, Phe 1,00, Cys(Bzl) 0,99, Pro C39H50N8O8S1. O . 5H2O (799,9) vypočteno:
58J56 % C, 6,43 % H, 14,01 «/o N;
nflloyonn'
58,43 «/o C, 6,21 % H, 13,87 % N.
Příklad 3
Fenylhydrazid terc.butyloxykarbonyltyrosyl-fenylalaninu
K roztoku terč. butyloxykarbonyltyrosinu (565 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu fenylalaninu (815 mg) ve směsi ethanolu (4 ml) a 0,2 mol. I-1 acetátového pufru pH 4,8 (16 ml) byla přidána kyselina ethylendiaminotetraoctová (6 mg) a hydrochlorid cysteinu (20 mg). Po úpravě pH na hodnotu 4,8 byl přidán papaln (85 mg) a směs byla inkubována 25 hodin při 38 °C. Produkt byl extrahován mnohonásobně do ethylacetátu a ethylacetátový roztok byl promýt HSOá- pufrem pH 2, vodou, 0,5 mol. I1NaHCO3, vodou, vysušen síranem sodným a odpařen. Odparek byl krystalován ze směsi ethylacetátu a petroletheru. Bylo získáno 370 mg (36 %) produktu o t. t. 203 až 205 “C. Vzorek pro analýzu byl rekrystalován z ethylacetátu, t. t. 207 až 208 °C.
5 β 4 4 4 [a]D —3.1,9 (c 0,3, dimethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Tyr 0,93, Phe 1,07,
Pro C29H34N4O5 (518,6) vypočteno:
67,16 % C, 6,61 % H, 10,80 % N; nalezeno
66,88 O/o C, 6,55 % H, 10,56 «/o N.
Příklad 4
Methylester benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalaninu
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosinu (51 mg) a hydrochloridu methylesteru fenylalaninu (25 mg) ve směsi dimethylformamidu (0,5 ml) a 0,2 mol. I“1 Tris-maleinanového pufru pH 7 (2 ml) byl přidán chlorid vápenatý (0,5 mg) apH bylo upraveno na hodnotu 7,0. Po přidání termolysinu (2 mg) byla směs inkubována 24 hodin při 38 °C. Směs byla okyselena 1 mol. . I“1 HC1 a produkt byl extrahován do ethylacetátu. Ethylacetátový roztok byl promyt 1 mol. I-1 HC1, vodou, 0,5 mol. l~x vodou, vysušen síranem sodným a odpařen. Odparek byl rozetřen etherem. Bylo získáno 40 mg (60 %) produktu o t. t. 162 °C.
(a]D —36,5 (c 0,3, methanol).
Aminokyselinová analýza:
Tyr 0,99, Phe 1,03, Cys(Bzl) 0,98.
Literatura uvádí t. t. 154°C, (a]D —33,7 (c 1,5, methanol). (Boissonnas R. A., Guttmann St., Jaquenoud P. — A., Waller J. — P.: Helv, Chim. Acta 39, 1 421 /1956/).
Příklad 5
Fenylhydrazid benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalaninu (příprava termolysinem)
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosinu (,51 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu fenylalaninu (47 mg) ve směsi dimethylformamidu (0,5 ml) a 0,2 mol. .1-1 Tris-maleinanového pufru pH 7 (2 ml) byl přidán chlorid vápenatý (0,5 mg) a pH bylo upraveno na hodnotu 7,0. Po přidání termolysinu (2 mg) byla směs inkubována 6 hodin při 38 °C. Vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo získáno 70 mg (94 %) produktu o t. t. 243 až 245 °C. Krystalizací z methanolu bylo získáno 63 mg (84 %) produktu o t. t. 244 až 245 °C.
[«]□ —41,2 (c 0,3, dimethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Tyr 0,95, Phe 1,11, Cys(Bzl) 0,94.
Pro C42H4N35O6S1. O . 5H2O (754,9) vypočteno:
66,82 % C, 5,87 % H, 9,27 % N; nalezeno:
66,45 % C, 5,73 % H, 9,36 % N.
Příklad 6
Fenylhydrazid benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalaninu (příprava chymotrypsinem)
K roztoku ethylesteru benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosinu (67 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu fenylalaninu (185 mg) ve směsi dimethylformamidu (2,25 mililitru) a 0,2 mol. l~x karbonát-bikarbonátového pufru pH 10,5 (2,75 ml) byl po úpravě pH na hodnotu 10 přidán a-chymotrypsin (5 mg) a směs byla míchána 1 hodinu při teplotě místnosti. Směs byla naředěna 1 mol. I-1 HC1, vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo obdrženo 62 mg surového produktu, který obsahoval zbytek výchozího dipeptidu. Krystalizací z methanolu bylo obdrženo 50 mg (54 %) homogenního produktu o t. t. 243 až 244 °C.
Aminokyselinová analýza:
Tyr 0,97, Phe 1,11, Cys(Bzl) 0,92.
Příklad 7
Fenylhydrazid benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalanyl-glutaminu
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosinu (102 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu fenylalanyl-glutaminu (110 miligramů) ve směsi dimethylformamidu (3 mililitry) a 0,2 mol. I-1 Trismaleinanového pufru pH 7,3 (7 ml) byl přidán chlorid vápenatý (5 mg) (pH roztoku bylo 7,0) a termolysin (5 mg). Směs byla inkubována 20 hodin při 38 °C. Vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo získáno 138 mg (79 %) produktu o t. t. 228 až 231 °C. Krystalizací z methanolu bylo získáno 124 mg (71 %) produktu o t. t. 231 až 233 °C.
(a]u —27,6 (c 0,3, dimethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Glu 1,0, Tyr 0,9, Phe 1,0, Cys(Bzl) 0,9.
Pro C47H51N7O8S . IH2O (892,1)
S3 4 4 4 vypočteno:
63,27 % C, 5,99 % H, 10,99 % N;
nalezeno:
63,36 % C, 5,87 θ/ο H, 11,23 % N.
Příklad 8
Fenylhydrazid benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalanyl-glutaminyl-asparaginyl-S-benzylcysteinu (příprava termolysinem 2 + 4)
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosinu (102 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu fenylalanyl-glutaminyl-asparaginyl-S-benzylcysteinu (180 mg) ve směsi dimethylformamidu (3,5 ml) a 0,2 mol. 1_1 Trysmaleinanového pufru pH 7 (6,5 ml) byl přidán chlorid vápenatý (5 mg) (pH roztoku bylo 7,0) a termolysin (5 mg). Směs byla inkubována 20 hodin při 38 aC. Vyloučená sraženina byla odfiltrována a zpracována běžným způsobem. Bylo získáno 202 mg (86 °/o) produktu o t. t. 260 až 261 °C.
[aju —35,3 (0,2, diinethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Asp 1,07, Glu 1,10, Tyr 0,92, Phe 1,06,
Cys (Bzl) 1,71.
Pro C6iH6sNioOtiS2 . 31120 (1 235) vypočteno:
59,32 % C, 6,04 % H, 11,34 θ/ο N; nalezeno *
59,38 °/o C, 5,58 % H, 11,61 % N.
Příklad 9
Fenylhydrazid benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalanyl-glutaminyl-asparaginyl-S-benzylcysteinu (příprava chymotrypsinem 3 + 3)
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalaninu (13,2 mg] a fenylhydrazidu glutaminyl-asparaginyl-S-benzylcysteinu (12 mg) ve směsi dimethylformamidu (0,3 ml) a 0,2 mol.l-1 Trys-maleinanového pufru pH 7,0 (0,7 ml) byl přidán a-chymotrypsin (5 mg) a směs byla inkubována 20 hodin při 38 °C. Produkt byl zpracován stejným způsobem jak uvedeno výše. Bylo získáno 20 mg (85 %) produktu o t. t. 248 až 250 °C. Krystalizací z methanolu bylo získáno 15 mg (64 %) produktu o t. t. 258 až 260 °C.
[a]u —34,4 (c 0,2, diinethylformamid).
Aminokyselinová analýza:
Asp 1,14, Glu 1,13, Tyr 0,92, Phe 0,95, Cys(Bzl) 1,71.
Příklad 10
Fenylhydrazid benzyloxykiarbonyl-S-beuzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalanyl-giutaminyl-asparaginyl-S-benzylcysteinu (příprava papainem 4 + 2)
K roztoku benzyloxykarbonyl-S-benzylcysteinyl-tyrosyl-fenylalanyl-glutaminu (16 mg) a trifluoracetátu fenylhydrazidu asparaginyl-S-benzylcysteinu (13 mg) ve směsi dimethylformamidu (0,3 ml) a 0,2 mol. I-1 acetátového pufru pH 4,8 (0,7 ml) byla přidána kyselina ethylendiaminotetraoctová (0,3 mg) a hydrochlorid cysteinu (1 mg). Po úpravě pH na hodnotu 4,8 byl přidán papain (2,1 mg) a směs byla inkubována 20 hodin při 38 °C. Produkt byl zpracován stejným způsobem jak uvedeno výše. Bylo získáno 15 mg (64 %) produktu o t. t. 248 až 251 °C. Krystalizací z methanolu bylo získáno 8 mg (34 %) produktu o t. t. 257 až 259 stupňů Celsia.
Aminokyselinová analýza;
Asp 0,97, Glu 1,08, Tyr 0,96, Phe 0,97, Cys(Bzl) 2,04.

Claims (1)

  1. Způsob přípravy peptidů na bázi molekuly kyseliny pressinové obecného vzorce I Z—Cys—Tyr—Phe—Gin—Asn—Cys—N2H2PI1
    Bzl Bzl (I) přičemž Z je benzyloxykarbonylová chrániči skupina, Bzl je benzylová chrániči skuVYNÁLEZU pina, N2H2PI1 je fenylhydrazidová chránicí skupina vyznačený tím, že se na chráněné aminokyseliny nebo peptidy tvořící fragmenty molekuly kyseliny pressinové, působí proteolytickými enzymy, papainem pro syntézu peptidových vazeb Tyr—Phe, Gin—Asn, chymotrypsinem pro syntézu peptidových vazeb Tyr—Phe, Phe—Gin a termolysinem pro syntézu peptidové vazby Tyr—Phe.
CS808285A 1985-11-11 1985-11-11 Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové CS250444B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS808285A CS250444B1 (cs) 1985-11-11 1985-11-11 Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS808285A CS250444B1 (cs) 1985-11-11 1985-11-11 Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS250444B1 true CS250444B1 (cs) 1987-04-16

Family

ID=5430933

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS808285A CS250444B1 (cs) 1985-11-11 1985-11-11 Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS250444B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1773870B1 (en) Methods for the production of peptide having a c-terminal amide
Kemp et al. Synthesis of a 39-peptide and a 25-peptide by thiol capture ligations: observation of a 40-fold rate acceleration of the intramolecular O, N-acyl-transfer reaction between peptide fragments bearing only cysteine protective groups
US4108846A (en) Solid phase synthesis with base N alpha-protecting group cleavage
Nakagawa et al. Synthesis of protected peptide segments and their assembly on a polymer-bound oxime: application to the synthesis of a peptide model for plasma apolipoprotein AI
US4659693A (en) N,N'-dialkyl substituted guanidino amino acyl residue substituted GRF-analog peptides
KR910001724B1 (ko) 향정신성 펩티드류의 제조방법
CS204011B2 (en) Process for preparing substituted pentapeptides
Ruan et al. Synthesis of peptides containing unnatural, metal-ligating residues: aminodiacetic acid as a peptide side chain
US11970551B2 (en) Solution phase routes for WNT hexapeptides
Panneman et al. Derivatives of amino‐acids and peptides IV: The synthesis of peptides by means of ethoxyethyne
CA1231333A (en) Rapid quantitative peptide synthesis using mixed anhydrides
NO166532B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av peptidet h-arg-x-z-y-tyr-r.
HU182866B (en) Process for preparing new tetrapeptide derivatives
US5503989A (en) Production of peptide amides
CZ280726B6 (cs) Pentapeptidické prekurzory biologicky účinných cyklických dipeptidů
US4491541A (en) Peptides
SU993816A3 (ru) Способ получени октапептидов
CS250444B1 (cs) Způsob přípravy pepti ΊΊ na bázi molekuly kyse’iny pressinové
Meyers et al. Enzymes as reagents in peptide synthesis: enzymatic removal of amine protecting groups.
CA1247085A (en) Process for preparing n-carboxyalkylproline- containing tripeptides
KLElN et al. Protease‐catalyzed synthesis of Leu‐enkephalin in a solvent‐free system
CS256897B1 (en) Series thymic factor's analogue-type peptides
US4204991A (en) Sarcosine1 dehydroalanine8 angiotensin II derivatives
CN113646324B (zh) 用于wnt六肽的线性溶液相路径
Ohno et al. Partial enzymic deprotection in the synthesis of a protected octapeptide bearing a free terminal carboxyl group