CS249200B1 - A method of isolating proteolytic enzymes - Google Patents
A method of isolating proteolytic enzymes Download PDFInfo
- Publication number
- CS249200B1 CS249200B1 CS906285A CS906285A CS249200B1 CS 249200 B1 CS249200 B1 CS 249200B1 CS 906285 A CS906285 A CS 906285A CS 906285 A CS906285 A CS 906285A CS 249200 B1 CS249200 B1 CS 249200B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- proteinases
- proteolytic enzymes
- elution
- eluted
- activity
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Izolace se provádí adsorpcí proteinas na částice materiálu, který obsahuje vysoké množství nerozpustné bílkoviny keratinu, jako vlasy a rohovina. Eluce proteinas se provádí roztoky anorganických solí, například sírany a chloridy sodným, draselným nebo amonným, nebo změnou pH elučního roztoku.Isolation is carried out by adsorption of proteinases onto particles of material containing high amounts of the insoluble protein keratin, such as hair and horn. Elution of proteinases is carried out with solutions of inorganic salts, such as sodium, potassium or ammonium sulfates and chlorides, or by changing the pH of the elution solution.
Description
Vynález se týká způsobu izolace proteolytických enzymů.The invention relates to a process for the isolation of proteolytic enzymes.
Proteolytické enzymy se používají v nejrůznějších oblastech průmyslu, v medicíně i v biochemických laboratořích. Proteolytické enzymy se většinou z výchozích surovin izolují pomocí různých separačních technik, jako je srážení síranem amonným nebo vychlazenými organickými rozpouštědly, ionexová chromatografie, gelová chromatografie nebo afinitní c^hromatografie.Proteolytic enzymes are used in a wide variety of industries, in medicine and in biochemical laboratories. Proteolytic enzymes are usually isolated from the starting raw materials by various separation techniques, such as ammonium sulfate precipitation or chilled organic solvents, ion exchange chromatography, gel chromatography, or affinity chromatography.
Z těchto technik je výhodná zejména afinitní chromatografie, která umožňuje získat velmi XXXXKK čisté preparáty proteinas v jednom kroku. Využívá se přitom specifických reverzibilních interakcí mezi ligandem, který bývá imobilizovén na vhodném inertním nosiči, a izolovanou proteinasou (Lowe,C.R., Dean,P.D.G.: Afinitní chromatografie, SNTL Praha, 1979, str. 154J Glemža,A.A.: Prikl. Biochim. Mikrobiol. J8, 792 (1982); Uf Vesa,V.l.: Prikl. Biochim. Mikrobiol. 16, 629 (1980)).Among these techniques, affinity chromatography is particularly preferred, which allows very XXXXKK pure proteinase preparations to be obtained in one step. It uses specific reversible interactions between the ligand, which is usually immobilized on a suitable inert carrier, and isolated proteinase (Lowe, CR, Dean, PDG: Affinity Chromatography, SNTL Praha, 1979, p. 154J Glemza, AA: Ex. Biochim. Microbiol. J8, 792 (1982), Uf Vesa, Vl: Example Biochim, Microbiol., 16, 629 (1980)).
Příprava typických afinitních sorbentů bývá v mnoha pří·» pádech náročná, často je nutno použít několikastupňový proces pro aktivaci nosiče, jsou požadovány speciální chemikálie pro aktivaci apod.The preparation of typical affinity sorbents is in many cases difficult, often it is necessary to use a multi-step process for the activation of the carrier, special chemicals for activation etc. are required.
-3 249 200-3 249 200
Způsob izolace proteolytických enzymů z komplexních směsí podle vynálezu spočívá v tom, že se proteinasy obsažené v rottoku adsorbují na materiál, obsahující vysoké množství nerozpustné bílkoviny UJDI keratinu, s výhodou na vlasy nebo na rohovinu. Jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí, s výjimkou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými, nebo je možno eluci provést·změnou pH elučního roztoku. Výhodou tohoto způsobu je použití velmi dostupné suroviny (v mnoha případech odpadu) a rovněž to, že uvedený materiál je možno pro izolaci připravit velmi jednoduchým způsobem.A method for isolating proteolytic enzymes from the complex compositions of the present invention is to adsorb the proteinases contained in the flow to a material containing a high amount of insoluble UJDI protein keratin, preferably hair or horn. They are eluted with solutions of inorganic salts, with the exception of salts affecting the enzymatic activity, preferably sodium, potassium and ammonium sulphates and chlorides, or they can be eluted by varying the pH of the elution solution. The advantage of this method is the use of a highly available raw material (in many cases of waste) and also that the material can be prepared for the insulation in a very simple manner.
Vynález je dokumentován příklady použití.The invention is illustrated by examples of use.
Příklad 1Example 1
Lidské vlasy byly umyty vlasovým šamponem, nastříhány na částice 2-3 mm dlouhé a poté byly suspendovány v horkém (60 °C) % roztoku hydroxidu sodného. Promytí v roztoku hydroxidu sodného bylo UnaumyilH několikrát opakováno. Poté byly vlasy důkladně promyty vodou. Takto připravený sorbent byl převeden do kolony, a byl důkladně promyt vodou, roztokem chloridu sodného (1 mol.l ) a opět vodou, dokud absorbance vodných a silných promyvů při 280 nm a tlouštce vrstvy 1 cm neklesla k nule.Human hair was washed with hair shampoo, cut into particles 2-3 mm long and then suspended in hot (60 ° C)% sodium hydroxide solution. Washing in sodium hydroxide solution was repeated several times by UnaumyilH. The hair was then thoroughly washed with water. The sorbent thus prepared was transferred to the column, and washed thoroughly with water, brine (1 mol.l) and again with water until the absorbance of the aqueous and strong washes at 280 nm and the 1 cm layer thickness fell to zero.
(42.x «Οi*,)(42.x «Οi *)
X Na kolonu obsahující lidské vlasy bylo aplikováno 10 mg trypsinu pro bakteriologii rozpuštěného v 10 ml vody. Balastní bílkoviny byly z kolony vymyty vodou. Adsorbovaný trypsin byl z kolony eluován zvýšením iontové sily prostředí (elucí roztokem chloridu sodného, 1 mol.l“1). Obsah bílkovin byl stanoven Lowryho metodou (Lowry,0.H., Rosebrough,N.J., Farr,A.L., Randall,R.J.: J; Biol. Chem. 193. 265 (1951)) a aktivita proteinasy byla stanovena azokaseinovou metodou (Šafařík,I.:X 10 mg trypsin for bacteriology dissolved in 10 ml of water was applied to a column containing human hair. The ballast proteins were eluted from the column with water. The adsorbed trypsin was eluted from the column by increasing the ionic strength of the medium (eluting with sodium chloride solution, 1 mol / l ). Protein content was determined by the Lowry method (Lowry, OH, Rosebrough, NJ, Farr, AL, Randall, RJ: J; Biol. Chem. 193. 265 (1951)) and proteinase activity was determined by the azokassein method (Safarik, I .:
J. Chromatogr. 261. 138 (1983)).J. Chromatogr. 261. 138 (1983)).
Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 13,2 % aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného se vymylo 60 % aktivity. Specifická aktivita trypsinu se po chromatografii zvýšila 2,1-krát.Of the total proteolytic activity applied, 13.2% of the activity eluted with the ballast proteins, eluting with water, and 60% eluting with the sodium chloride solution. The specific trypsin activity increased 2.1-fold after chromatography.
249 200249 200
Příklad 2Example 2
Za analogických podmínek jako v příkladu 1 bylá provedena chromatografie 10 ml kultivačního media po kultivaci Bacillus sp., který produkuje extracelulární proteinasy. Z celkově aplikované proteolytické aktivity ee s balastními bílkovinami při eluci vodoi vymylo 24,4 % aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného XX (1 mol.l”^) se v celkovém objemu 130 ml vymylo 70,3 % aktivity. Specifické aktivita proteinas se po chromatografii zvýšila 15-krát.Under analogous conditions to Example 1, 10 ml of culture medium after culturing Bacillus sp., Which produces extracellular proteinases, was chromatographed. Of the total proteolytic activity ee with ballast proteins eluted 24.4% of the activity eluting with water, eluting with sodium chloride solution XX (1 mol.l -1) in a total volume of 130 ml eluted 70.3% of the activity. The specific activity of proteinases increased 15-fold after chromatography.
Příklad 3Example 3
Částice rohoviny (průměr částic 0,3 - 1 mm) byly opakovaně promyty horkou a studenou vodou. Po naplnění do kolony byly promyty jako v příkladu 1.The horn particles (particle diameter 0.3-1 mm) were repeatedly washed with hot and cold water. After loading into the column, they were washed as in Example 1.
Na sloupec částic rohoviny o rozměrech 140 x 12 mm bylo naneseno 10 ml kultivačního media po kultivaci Bacillus sp., jako v příkladu 2. Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 39 % aktivity, při eluci roztokem NaCl (1 mol.l“^) se v celkovém objemu 140 ml vymylo 58 % aktivity. Specifická aktivita proteinas ae po chromatografii zvýšila 35-krát.10 ml of Bacillus sp. Cultivation medium was applied to a 140 x 12 mm horn particle column as in Example 2. 39% of the total proteolytic activity eluted with the ballast proteins eluted with water eluted with NaCl solution (1). 58% of the activity was eluted in a total volume of 140 ml. The specific activity of proteinase ae increased 35-fold after chromatography.
Příklad 4Example 4
Za analogických podmínek jako v příkladu 1 byla provedena chromatografie trypsin^u. K eluci aktivní proteinasy bylo rovněž možno použít roztoky chloridu draselného a síranu amonného (1 mol.1 ).Under analogous conditions to Example 1, trypsin chromatography was performed. Potassium chloride and ammonium sulfate solutions (1 mol. 1) could also be used to elute the active proteinase.
Příklad 5Example 5
Za analogických podmínek jako v příkladu 3 byla provedena chromatografie extracelulárních bakteriálních proteinas.Extracellular bacterial proteinases were chromatographed under analogous conditions to Example 3.
K eluci aktivních proteinas bylo rovněž možno použít roztok kyseliny chlorovodíkové (cca 0^01 mol.l”^)It was also possible to use a hydrochloric acid solution (about 0 ^ 01 mol.l -1) for the elution of the active proteinases.
Příklad 6Example 6
Za analogických podmínek jako v příkladech t a 3 bylo rovněž možno izolovat proteinasy z pankreatického extraktu a přečistit komerční preparát chymotrypsinu.Under analogous conditions to Examples t and 3, proteinases could also be isolated from the pancreatic extract and the commercial chymotrypsin preparation purified.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS906285A CS249200B1 (en) | 1985-12-10 | 1985-12-10 | A method of isolating proteolytic enzymes |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS906285A CS249200B1 (en) | 1985-12-10 | 1985-12-10 | A method of isolating proteolytic enzymes |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS249200B1 true CS249200B1 (en) | 1987-03-12 |
Family
ID=5441923
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS906285A CS249200B1 (en) | 1985-12-10 | 1985-12-10 | A method of isolating proteolytic enzymes |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS249200B1 (en) |
-
1985
- 1985-12-10 CS CS906285A patent/CS249200B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0168363B1 (en) | Sulfone activated thioether adsorbents for the separation of proteins and the like | |
| JP3676817B2 (en) | Novel factor IX purification method | |
| JP4559216B2 (en) | Method, use and kit for separating albumin from contaminants in liquid | |
| JPH04505014A (en) | Novel protein and its production method | |
| JPS6037996A (en) | Recovery of cell wall protein | |
| JPS6356501A (en) | Cellulose gel having biochemical affinity and production thereof | |
| Pangburn et al. | Affinity chromatography of thermolysin and of neutral proteases from B. subtilis | |
| Safarik et al. | Magnetic cation exchange isolation of lysozyme from native hen egg white | |
| O'Carra et al. | [77] Lactate dehydrogenase: Specific ligand approach | |
| CS249200B1 (en) | A method of isolating proteolytic enzymes | |
| US4510248A (en) | Process for concentrating and purifying human urinary kallikrein | |
| RU2008353C1 (en) | Method of collagenase preparation producing | |
| SU644796A1 (en) | Method of purifying proteolytic ferments | |
| US4318990A (en) | Separation of proteases from fluids | |
| US3926730A (en) | Separation and purification of alpha-amylase | |
| US5698104A (en) | Purification process for hirudin using affinity chromatography | |
| CS241812B1 (en) | A method of isolating proteolytic enzymes | |
| JPH0871412A (en) | Basic protein adsorbent | |
| JPS5838151B2 (en) | Kallikrein purification method | |
| CS243322B1 (en) | A method of isolating proteolytic enzymes | |
| SU942427A1 (en) | Method for purifying proteolytic enzymes | |
| Hsu et al. | Purification of epidermidins, new antibiotics from Staphylococci | |
| CS248897B1 (en) | A method of isolating proteolytic enzymes | |
| CS246696B1 (en) | A method of isolating proteolytic enzymes | |
| SU721449A1 (en) | Method of preparing sorbent for isolating and purifying serine proteases |