CS248872B1 - Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation - Google Patents
Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation Download PDFInfo
- Publication number
- CS248872B1 CS248872B1 CS561885A CS561885A CS248872B1 CS 248872 B1 CS248872 B1 CS 248872B1 CS 561885 A CS561885 A CS 561885A CS 561885 A CS561885 A CS 561885A CS 248872 B1 CS248872 B1 CS 248872B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- virus
- ducks
- infectious
- duck hepatitis
- vaccine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Tkáňová vakcína proti infekční hepatitidě kachen je určena k aktivní imunoprofylaxi infekční hepatitidy kachen. Obsahuje inaktivovaný virus infekční hepatitidy kachen CAPM V - 296 v lyofllizovaném stavu. Vakcína se k použití připraví rozpuštěním v lipoidním adjuvans. Tkáňová vakcína proti hepatitidě kachen se vyrábí pomnožením kmene viru infekční hepatitidy kachen na primární kultuře epiteliálních buněk ledvin kachňat v růstovém médiu po dobu 70 až 74 hodin při teplotě 35 až 39 °C až do dosažení miniLDg · 105 /0,1 ém3, 11 denní intraalantoidně/, potom se málních titrů kuřecí embryo, virus inaktivuje účinkem glutaraldehydu a Iyofílizuje se.Tissue vaccine against infectious hepatitis ducks is intended for active immunoprophylaxis infectious hepatitis ducks. Contains inactivated duck hepatitis virus CAPM V-296 in lyophilized state. Vaccine is prepared for use by dissolution in lipoid adjuvant. Hepatitis Tissue Vaccine ducks are produced by propagation of the virus strain infectious hepatitis ducks on primary culture kidney epithelial cells in growth medium for 70 to 74 hours at 35-39 ° C until miniLDg is reached · 105 / 0.1 ém3, 11 days intraalantoid / then titers chicken embryo virus inactivates with glutaraldehyde a It is lyophilized.
Description
Vynález se týká tkáňové vakcíny proti infekční hepatitidě kachen a způsobu její přípravyThe invention relates to a tissue vaccine against infectious duck hepatitis and to a method for its preparation
V podmínkách intenzivních velkochovů jsou nutná účinná preventivní opatření před nákazami. Jednou z nákaz, které způsobují velké ztráty v chovech káčat je infekční zánět jater. Toto onemocnění postihuje především káčata v prvních dnech po vylíhnutí. Virus infekční hepatitidy kachen /IHK/ byl klasifikován jako kachní picorna virus /Taurasso N, Μ., G Goghill β. E., Klutch M. J.s Proportions of the attenuated vaccine strain of duck hepatitis virus. Avian D. S. 13, 1969, s. 321 až 329/.In intensive large-scale farming conditions, effective disease prevention measures are necessary. Infectious liver inflammation is one of the diseases that cause large losses in ducklings. This disease mainly affects ducklings in the first days after hatching. Infectious duck hepatitis virus (IHK) has been classified as duck picorna virus / Taurasso N, Μ., G Goghill β. E., Klutch M.J. Proportions of the attenuated vaccine strain of duck hepatitis virus. Avian D. S. 13, 1969, pp. 321-329].
K největším ztrátám následkem infekce virem IHK dochází v prvních dvou týdnech po nalíhnutí /Schoop, Staub: Ober die Virushepatitis der Enten 3. Mitt. Die Bekampfung.The greatest losses due to IHK infection occur in the first two weeks after hatching. Schoop, Staub: Ober die Virushepatitis der Enten 3. Mitt. Die Bekampfung.
Mh. Tierheilhde, 10, 1958 s 29 až 35/. Současně s narůstajícím věkem káčat se zvyšuje i rezistence proti této nákaze a úhyny jsou podstatně nižší. Další autoři se s těmito údaji ztotožňují. Mortalita je v průběhu onemocnění roždílná^ podle různých autorů kolísá mezi 3 až 95 % /Schoop, Staub: Virushepatitis of ducks. Mh. Tierheilhde, 9, 1957, s. 317 až 322/,Mh. Tierheilhde, 10, 1958, pp. 29-35]. As the age of ducklings increases, resistance to the disease increases and deaths are significantly lower. Other authors agree with this data. According to various authors, mortality varies between 3 and 95% during the disease. Schoop, Staub: Virushepatitis of ducks. Mh. Tierheilhde, 9, 1957, pp. 317-322,
Uvedené údaje jsou důvodem k specifické formě boje proti této nákaze, kterou se stala cílená imunizace a včasná aplikace hyperimunního séra. Aktivní imunizace může být prováděna u chovných kachen živou nebo inaktivovanou vakcínou, nebo vakcinace může být použita u čerstvě vylíhlých kachňat živou vakcínou.These data are the reason for the specific form of the fight against this infection, which was targeted immunization and timely administration of hyperimmune serum. Active immunization can be performed in breeding ducks with live or inactivated vaccine, or vaccination can be used in freshly hatched ducks with live vaccine.
V šedesátých letech byla v ČSSR vyvinuta živá vakcína proti IHK, připravená z atenuovaného kmene TN 62 /žuffa A., Černík Κ. , Rajtár V., Žuffová J.: Imunoprofylaxia infekčného zápalu pečene kačíc. Veterinářství, 11, 1966, s. 490 až 495/. Vakcína byla určena výhradně ke zdolávání nákazové situace v chovech, kde byl virulentní virus přítomný.In the sixties a live vaccine against IHK was prepared in the Czechoslovakia, prepared from the attenuated strain TN 62 / žuffa A., Černík Κ. , Rajtár V., Žuffová J .: Immunoprophylaxis of Infectious Inflammation of the Duck. Veterinar., 11, 1966, pp. 490-495]. The vaccine was intended solely to control the disease situation in breeds where a virulent virus was present.
Současně byla v 60. letech zavedena do výroby adsorbátová inaktivovaná vakcína proti IHK. Výrobní kmen Valdíkov 530 je domácího původu a je antigenně shodný s terénními kmeny Izolovanými v ČSSR i s kmenem TN 60 původem z Anglie /Kožušník Z., Dvořáková D.: Izolace a vlastnosti kmenů virového zánětu jater kachen v ČSSR. Acta vet., 39, 1970, s. 143 až 150/. Virus se pomnožuje a pasážuje na 10 až 11 denních kuřecích zárodcích a při intraalantoidní aplikaci působí hynutí kuřecích zárodků za 2 až 5 dní po inokulaci.At the same time, an adsorbate inactivated vaccine against IHK was introduced in the 1960s. The production strain Valdíkov 530 is of domestic origin and is antigenically identical with the terrain strains Isolated in Czechoslovakia and with TN 60 strain originating from England / Kožušník Z., Dvořáková D .: Isolation and properties of strains of viral inflammation of duck liver in the CSSR. Acta vet., 39, 1970, pp. 143-150]. The virus multiplies and passages on 10 to 11 days of chicken germs and, when administered intraalantoidly, causes germs to die 2 to 5 days after inoculation.
V současné době je v ČSSR imunoprofylaxe proti IHK zajištována 2 druhy vakcín.At present, 2 types of vaccines are provided in the Czechoslovak Socialist Republic against immunoprophylaxis against IHK.
a/ Vakcína proti infekčnímu zánětu jater kachen b/ Vakcína proti infekčnímu zánětu jater kachen lyofilizovaná ad a/ Vakcína proti IHK je suspenze viru IHK pomnoženého v kuřecích embryích inaktivovaná beta-propiolaktonem, adsorbovaná na gel hydroxidu hlinitého, konzervována formalínem.a / Vaccine against infectious liver inflammation of ducks b / Vaccine against infectious liver inflammation of ducks lyophilized ad a / The IHK vaccine is a suspension of IHK virus propagated in chicken embryos inactivated by beta-propiolactone, adsorbed on aluminum hydroxide gel, preserved with formalin.
ad b/ Vakcína je suspenze viru IHK pomnoženého na kuřecích embryích, inaktivovaná glutaraldehydem a lyofilizována. Lyofilizát se před použitím rozpustí v olejovém solvens.ad b) The vaccine is a suspension of IHK virus propagated on chicken embryos, inactivated by glutaraldehyde and lyophilized. The lyophilisate is dissolved in an oil solvate prior to use.
Těmito dvěma biopreparáty je v současné době prováděna pravidelná imunizace chovných hejn ve velkochovech. Vzniklé protilátky v organismu chovných kachen po vakcinaci jsou transovariálně předávány káčatům, vylíhlým z vajec takto imunizovaných kachen. Káčata jsou chráněna těmito získanými protilátkami v nejvíce ohroženém období svého života.These two organic preparations are currently used for regular immunization of breeding flocks in large-scale farms. The resulting antibodies in the breeding duck organism after vaccination are transmitted transovarially to ducks hatched from the eggs of the immunized ducks. Ducklings are protected by these acquired antibodies in the most endangered period of their life.
Přes nesporně dobré výsledky získané při použití těchto dvou druhů vakcín proti IHK vyráběných v n. p. Bioveta Ivanovice na Hané mají tyto vakcíny určité nedostatky. Používání kuřecích zárodků k výrobě vakcíny je z provozních důvodů poměrně nevýhodné /značné množství vajec, několikanásobná manipulace s nimi atd./. Pro nemožnost získání SPF vajec jsou pro výrobu používána vejce z velkochovů slepic, což nezaručuje jejich naprostou bezinfekčnost a zůstává rizikem přenos různých infekčních agens embryonálními vakcínami /mykoplasmata, viry, atd./. Vyrobené vakcíny ve formě embryonální suspenze jsou biopreparáty s vysokým obsahem balastních látek, což komplikuje vytvoření solidní imunity proti žádanému virovému agens. Uvedené nedostatky vedou k vývoji nových vakcín proti IHK, kde virus je pomnožován ve vhodném kultivačním substrátu. Zvláště významná jsou zjištění, že virus IHK se množí v tkáňových kulturách /Richard A. Mason, Nicola M. Taurasso, Robert K. Ginn: Growth of Duck hepatitis in Chicken embryos and in Cell Cultures derived from infected Embryos. Avian Deseases, VOL. 6, š. 5, 1972/ nebo práce /Morris Pollard, Theodore J. Starr: Propagation of Duck Hepatitis Virus in Tissue Culture. Reprinted from Avian Diseases, VOL. 23, NO. 3, July - September, 1979/.Despite the undoubtedly good results obtained with these two types of IHK vaccines produced in Bioveta Ivanovice na Hané, these vaccines have some drawbacks. The use of chicken embryos for vaccine production is relatively disadvantageous due to operational reasons (considerable number of eggs, multiple handling, etc.). Because of the impossibility of obtaining SPF eggs, eggs from large-scale breeding hens are used for production, which does not guarantee complete infectiousness and remains a risk of transmission of various infectious agents by embryonic vaccines / mycoplasmas, viruses, etc./. The manufactured vaccines in the form of an embryonic suspension are biopreparations with a high content of ballasts, which complicates the creation of solid immunity against the desired viral agent. These drawbacks lead to the development of new IHK vaccines where the virus is propagated in a suitable culture substrate. Of particular importance are the findings that IHK virus multiplies in tissue cultures / Richard A. Mason, Nicola M. Taurasso, Robert K. Ginn: Growth of Duck Hepatitis in Chicken Embryos and Cell Cultures derived from infected Embryos. Avian Deseases, Vol. 6, p. 5, 1972 (or work) Morris Pollard, Theodore J. Starr: Propagation of Duck Hepatitis Virus in Tissue Culture. Reprinted from Avian Diseases 23, NO. 3, July-September, 1979].
Dle dostupných informací není v zahraničí vyráběna vakcína proti IHK na tkáňových kulturách. V zahraničí je imunoprofylaxe proti infekční hepatitidě kachen zabezpečována podobně jako v ČSSR inaktivovanými vakcínami pro imunizaci chovných hejn kachen a tím zajišňění chráněnosti kachňat cestou transovariálně jim předaných protilátek od imunizovaných matek, nebo se používají vakcíny vyráběné z atenuovaných kmenů virů infekční hepatitidy kachen, které se aplikují čerstvě vylíhnutým kachňatům.According to available information, the IHK vaccine is not produced abroad on tissue cultures. Abroad, immunoprophylaxis against infectious duck hepatitis is provided by inactivated vaccines for immunization of breeding flocks of ducks and thus ensuring protection of ducks by transovariously passed antibodies from immunized mothers, or using vaccines made from attenuated strains of infectious duck hepatitis viruses. freshly hatched ducklings.
Podstatou našeho vynálezu je tkáňová vakcína proti infekční hepatitidě kachen a způscb její přípravy. Tkáňová vakcína proti IHK je určena k aktivní imunoprofylaxi proti IHK vakcinací chovných kachen. Cestou transovariálního přenosu postvakcinačních protilátek proti IHK od imunizovaných matek jsou chráněna proti této nemoci vnímavá kachňata v nejmladším věkovém období. 1 cm3 vakcíny obsahuje minimálně 1 milión LD5Q inaktivovaného virusu infekční hepatitidy kachen CAPM V-296 v lyofilizovaném stavu.The essence of our invention is a tissue vaccine against infectious duck hepatitis and a method for its preparation. The IHK tissue vaccine is intended for active immunoprophylaxis against IHK by vaccination of breeding ducks. The susceptible ducklings in the youngest age are protected by the transovarian transmission of IHC post-vaccination antibodies from immunized mothers. 1 cm 3 of the vaccine contains at least 1 million LD 5Q inactivated virus duck hepatitis CAPM V-296 in a lyophilized state.
Způsob přípravy tkáňové vakcíny proti infekční hepatitidě kachen se vyznačuje tím, že vakcinační virus IHK je získán kultivací a pomnožením v kultuře primárních buněk kachních ledvin, po sklizni je inaktivován glutaraldehydem a lyofilizován. Imunogenni účinnost vakcíny proti IHK, obsahující virus získaný pomnožením na tkáňových kulturách, je stimulována zředovačen ve formě lipoidního adjuvans.A method for preparing a tissue vaccine against infectious duck hepatitis is characterized in that the IHK vaccine virus is obtained by cultivation and propagation in a primary duck kidney cell culture, is inactivated by glutaraldehyde after harvest and lyophilized. The immunogenic efficacy of the IHK vaccine, containing the virus obtained by propagation on tissue cultures, is stimulated diluted in the form of a lipoid adjuvant.
Vakcína představuje suspenzi inaktivovaného viru infekční hepatitidy kachen, růstové médium, lyofilizační médium a olejový zředovač, který slouží zárověň jako adjuvans vakcíny.The vaccine is a suspension of inactivated duck hepatitis virus, a growth medium, a lyophilization medium, and an oil diluent which also serves as a vaccine adjuvant.
Komponenty pro přípravu tkáňové vakcíny proti infekční hepatitidě kachen:Components for the preparation of a tissue vaccine against infectious duck hepatitis:
1. Kmen viru infekční hepatitidy kachen - uložený v Československé sbírce mikroorganismů, sbírce zoopatogenních mikroorganismů Výzkumného ústavu veterinárního lékařství, Brno 21, Medlánky, pod označením CAPM V - 296.1. Duck infectious hepatitis virus strain - deposited in the Czechoslovak Collection of Microorganisms, Collection of Zoopathogenic Microorganisms of the Research Institute of Veterinary Medicine, Brno 21, Medlánky, under the designation CAPM V - 296.
2. Buněčná kultura pro pomnožování viru IHK2. Cell culture for IHK virus propagation
3. Růstové a udržovací médium3. Growth and maintenance medium
4. Antibiotika4. Antibiotics
5. Inaktivní činidlo a způsob provedení inaktivace viru IHK5. An inactive agent and method for performing inactivation of the IHK virus
6. Lyofilizační ochranné médium pufrované, koncentrované6. Buffered, concentrated lyophilization protective medium
7. Zředovač a adjuvans vakcíny ad 1 - Pro výrobu tkáňové vakcíny proti infekčnímu zánětu jater kachen se používá kmen viru infekční hepatitidy kachen izolovaný z území ČSSR, pod označením Valdíkov 530, uložený ve sbírce mikroorganismů pod označením CAPM V - 296.7. Vaccine Diluent and Adjuvant Ad 1 - For the production of a tissue vaccine against infectious liver inflammation of ducks, a strain of infectious duck hepatitis virus isolated from the territory of Czechoslovakia under the designation Valdikov 530, deposited in the collection of microorganisms under the designation CAPM V - 296, is used.
ad 2 - Buněčná kultura pro kultivaci výše uvedeného kmene je kultura primárních epiteliálních buněk kachních ledvin.ad 2 - The cell culture for cultivation of the above strain is a culture of primary duck kidney epithelial cells.
ad 3 - Složení růstového média:ad 3 - Composition of growth medium:
M- 199 Médium dle Parkera - modifikované bez purinů, pyrimidinů, vit. D2 a cholesterolu /PNY 30-259-79 PN ÚSOL Praha/, Tryptose phosphate Broth - Difco /číslo katalogu 0060-01-6/ Bovinní sérum ultrafiltrované, inaktivované /PN Bl 182/85/ Roztok 7,5% kyselého uhličitanu sodného NaHCO^ p.a. /ČsL 3/. Jednotlivé složky dle pořadí jsou v poměru: 90 : 10 : 5 : 1.M-199 Parker medium - modified without purines, pyrimidines, vit. D2 and cholesterol / PNY 30-259-79 PN ÚSOL Prague /, Tryptose phosphate Broth - Difco / catalog number 0060-01-6 / Bovine serum ultrafiltered, inactivated / PN Bl 182/85 / Sodium bicarbonate solution 7,5% NaHCO ^ pa (CSL 3). The individual components in the order are: 90: 10: 5: 1.
Složení udržovacího média:Maintenance medium composition:
M - 199 Médium dle Parkera - modifikované bez purinů, pyrimidinů, vit. D2 a cholesterolu /PNY 30-259-79 PN ÚSOL Praha/ Tryptose phosphate Broth - Difco /číslo katalogu 0060-01-6/ Bovinní sérum ultrafiltrované, inaktívovaru' /PN Bl 182/85/ Roztok 7,5* kyselého uhličitanu sodného NaHCO^ p.a. /ČsL 3/. Jednotlivé složky dle pořadí jsou V poměru: 90 : 10 : 1 : 1.M - 199 Parker medium - modified without purines, pyrimidines, vit. D 2 and cholesterol / PNY 30-259-79 PN ÚSOL Prague / Tryptose phosphate Broth - Difco / catalog number 0060-01-6 / Bovine serum ultrafiltered, inactivator '/ PN Bl 182/85 / Solution 7,5 * sodium bicarbonate NaHCO 3 (Cs 3). The components are in the order of: 90: 10: 1: 1.
ad 4 - Pro růstová a udržovací média jsou použita antibiotika v následujících koncentracích: Zásobní roztok penicilinu: Penicilín G 10 mil. m.j.ad 4 - Antibiotics are used for growth and maintenance media in the following concentrations: Penicillin stock solution: Penicillin G 10 million IU.
Voda tridestilovaná sterilní ad 300 cm Zásobní roztok streptomycinu: Streptomycin sulfát 10 gStreptomycin sulfate 10 g sterile water, 300 g stock solution: Streptomycin sulfate 10 g
Voda tridestilovaná sterilní ad 300 cm3 Zásobní roztok fungioidinu: Pungioidin 20 gWater tri-distilled sterile ad 300 cm 3 Fungioidin stock solution: Pungioidin 20 g
Etylenglykol p.a. ad 2.000 cm ad 5 - Virus infekční hepatitidy kachen se inaktivuje následujícím způsobem:Ethylene glycol p.a. ad 2.000 cm ad 5 - Infectious duck hepatitis virus is inactivated as follows:
k inaktivaci se používá glutaraldehyd v konečné koncentraci 0,15 až 0,20%, po dobu 1 hodiny při 34 až 38 °C. Inaktivace probíhá ve vodní lázni. Po inaktivaci se upraví pH na hodnotu 6,4 až 7,8.glutaraldehyde is used for inactivation at a final concentration of 0.15 to 0.20%, for 1 hour at 34 to 38 ° C. Inactivation takes place in a water bath. After inactivation, the pH is adjusted to 6.4 to 7.8.
ad 6 - Složení lyofilizačního ochranného média pufrovaného, koncentrovaného: Želatina 250 g Sacharóza 375 gad 6 - Composition of the buffered, concentrated lyophilization protective medium: Gelatin 250 g Sucrose 375 g
Hydrofosforečnan sodný /Na2HP0^ x 12H2O/ 12 gSodium hydrogen phosphate / Na 2 HPO 4 x 12H 2 O / 12 g
Dihydrofosforečnan draselný /ΚΗ,,ΡΟ^/ 1,125 gPotassium dihydrophosphate (ΚΗ ,, ΡΟ ^) / 1,125 g
Voda redestilovaná ad 1.000 cm3 ad 7 - Složení solvens a adjuvans:Redistilled water ad 1.000 cm 3 ad 7 - Solvents and adjuvants:
Olej vaselinový medicinální Al 24.000 g Lanolín 8.000 g /Tween 80/ monoolejanester sorbitanu polyetylenglykoléteru 1,600 g Voda redestilovaná 66.400 gOil vaseline medical Al 24.000 g Lanolin 8.000 g / Tween 80 / polyethylene glycol ether sorbitan monoolejanester 1.600 g Water redistilled 66.400 g
Příklad provedení:Example:
Trypsinací ledvin mladých kachňat získáme primární epiteliální ledvinové buňky.Trypsinizing the kidneys of young ducks yields primary epithelial kidney cells.
Suspenze těchto buněk je resuspendována v růstovém médiu na denzitu 300 000 až 400 000 buněk o >33 v 1 cm a rozplní se do Roux lahví a 1 200 cm po 120 cm buněčné suspenze· Kompletně narostlé monolayery primárních kultur ve stáří 4 až 5 dnů jsou infikovány virem IHK. NaThe suspension of these cells is resuspended in growth medium to a density of 300,000 to 400,000 cells of > 33 in 1 cm and filled into Roux bottles and 1,200 cm in 120 cm cell suspensions. Completely grown monolayers of primary cultures 4-5 days old are infected with IHK virus. On
6 3 monolayer navrntvíme 15 cm viru IHK o titru minimálně LD5Q = 10/0,1 cm 11 denní kuřecí embryo, intraalar.toidně/. Necháme adsorbovat po dobu 2 až 3 hodin při teplotě 35 až 39 °C.6 3 monolayer weave 15 cm of IHK virus with a titre of at least LD 5Q = 10 / 0,1 cm 11 day chicken embryo, intraalar.toid /. Allow to adsorb for 2 to 3 hours at 35 to 39 ° C.
Po této době siejeme přebytek viru a doplníme 120 cm udržovacího média.After this time, sieve excess virus and add 120 cm of maintenance medium.
Sklizeň viru se provádí za 72 hodin po infekci buněčné kultury. Pro výrobu vakcíny se 5 3 používají sběry viru o minimálním titru LD5Q - 10 /0,1 cm 11 denní kuřecí embryo, intraulantoídně/. Vhodný sklizený virus se inaktivuje glutaraldehydem v konečné koncentraci 0,15 až 0,20% po dobu 1 hodiny při 35 až 39 °C. Inaktivovaný virus IHK se smísí v poměru 9 dílů viru s 1 dílem lyofilizačního ochranného média pufrovaného, koncentrovaného. Inaktivovaný virus IHK s lyofilizačním médiem se rozplní do lékovek a zamrazí. Pak se provede lyofilizace vakcíny nejšetrnějším způsobem /v průběhu lyofilizace nesmí teplota produktu překročit 25 °c/.Virus harvest is performed 72 hours after infection of the cell culture. For the production of vaccine 5 3 collections of virus used a minimum titer LD 5Q - 10 / 0.1 cm 11 day chicken embryo, intraulantoídně /. A suitable harvested virus is inactivated with glutaraldehyde at a final concentration of 0.15-0.20% for 1 hour at 35-39 ° C. The inactivated IHK virus is mixed in a proportion of 9 parts of the virus with 1 part of the lyophilized protective medium buffered, concentrated. The inactivated IHK virus with the lyophilization medium is filled into vials and frozen. Thereafter, the vaccine is lyophilized in the most gentle manner (during lyophilization the temperature of the product must not exceed 25 ° C).
Požadovaná zbytková vlhkost musí být nižší než 3 %. Lyofilizovaná vakclna je uzavřena gu.7«.í>u zátkou ve vakuované iěkcvce. K vakcíné za připraví lipoidní adjuvant, které je současně zředovac.vakcíny. Uvedené Komponenty solvens se emulgují a rozplní do lékovek. Lékovky se neuron;. ·’· uzavřou a jejích obsah se sterilizuje autoklávovánim. Vakclna se k aplikaci připraví tak, že ivoiilnát se rozpustí ' iípoi.c.ín ad j’j· t.ns..The required residual humidity must be less than 3%. The lyophilized vaccine is sealed with a stopper in a vacuum tube. The vaccine is prepared by a lipoid adjuvant, which is also a dilution vaccine. Said components of the solvens are emulsified and filled into vials. Medicine bottles with neuron ;. They are closed and its contents sterilized by autoclaving. The vaccine is prepared for application by dissolving the ivilnate in iipi.c.in ad j'j · t.ns ..
U každé vyrobené šarže vakcíny se provádí výstupní kontrola: Zkoušky sterility, neškodnosti, účinnosti, stanovení pH, vlhkosti, vzhledu a vakua ve vakcíně.For each batch of vaccine produced, a final control is performed: Sterility, harmlessness, efficacy, pH, moisture, appearance and vacuum tests in the vaccine.
Možnosti využití vynálezu:Possibilities of using the invention:
Tkáňová vakcína proti infekční hepatitidě kachen byla pokusně vyrobena a ověřena v rámci laboratorního a klinického ověřování u chovných a vylíhlých kachňat. Bylo použito následující imunizační schéma, dávky a sledování u kachňat.Tissue vaccine against infectious duck hepatitis has been experimentally produced and verified as part of laboratory and clinical testing in breeding and hatched ducks. The following immunization schedule, dosages and monitoring in ducks were used.
Vakcinační dávka pro kachny jsou 2 cm3 rozpuštěné vakcíny aplikované intramuskulárně. Vakcína je určena k aktivní imunizaci dospělých kachen před snáškou. Vakcinace se provádí 6 týdnů před snáškou, revakcinace je těsně před započetím snášky a další revakcinace je v průběhu snášky, tj. 2 až 3 měsíce po zahájení snášky. Transovariálním přenosem vzniká u kachňat vysoká chráněnost trvající do 28 dne po jejich vylíhnutí od vakcinovaných kachen. Při aplikaci ve výše uvedené dávce a postupu byla zjištována dobrá imunizační schopnost vakcíny, detekované u vakcinovaných kachen a jejich kachňat neutralizačním testem v kuřecích zárodcích. /Tab. č. 1./.The vaccine dose for ducks is 2 cm 3 of reconstituted vaccine administered intramuscularly. The vaccine is intended for the active immunization of adult ducks before laying. Vaccination is carried out 6 weeks before laying, revaccination is just before the start of laying, and further revaccination is during the laying, ie 2 to 3 months after the start of laying. Transovarian transmission gives the ducks a high degree of protection lasting up to 28 days after hatching from the vaccinated ducks. When administered at the above dosage and procedure, the immunization ability of the vaccine detected in vaccinated ducks and their ducks by a neutralization test in chicken embryos was determined. / Tab. no. 1./.
Během ověřování nebyly u vakcinovaných zvířat pozorovány postvakcinační reakce po vakci naci či následných revakcinacích místního nebo celkového charakteru.Post-vaccination reactions following vaccination or subsequent local or generalized revaccination were not observed in the vaccinated animals during verification.
Tabulka 1Table 1
Zjištěné průměrné hodnoty PD_ v sérech vakcinovaných kachen a jejich potomstva /log 10/.Observed mean PDs in sera of vaccinated ducks and their offspring (log 10).
Dospělé kachny:Adult ducks:
1. Jeden měsíc po vakcinaci, před revakcinací /před zahájením snáškového období —50 = 5,5/.1. One month after vaccination, before revaccination (before the start of laying period -50 = 5.5).
2. Uprostřed snáškového období PD5Q = 4,02. In the middle of the laying period PD 5Q = 4.0
3. Konec snáškového období PD&0 = 3,33. End of laying period PD & 0 = 3.3
Kachňata: /Transovariální přenos protilátek od vakcinovaných matek/:Ducklings: / Transovarian transmission of antibodies from vaccinated mothers /:
Uvedené výsledky potvrzují dobrý imunizační efekt vakcíny proti infekční hepatitidě kachen u dospělých kachen a vysokou chráněnost jejich potomstva. Ještě 32. den po vylíhnutí od vakcinovaných matek kachen chrání sérum kachňat proti 100 id5Q viru IHK.These results confirm the good immunization effect of the vaccine against infectious duck hepatitis in adult ducks and the high protection of their offspring. Still on day 32 after hatching from vaccinated duck mothers, duck serum protects against 100 id 5Q IHK virus.
Claims (6)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS561885A CS248872B1 (en) | 1985-08-01 | 1985-08-01 | Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS561885A CS248872B1 (en) | 1985-08-01 | 1985-08-01 | Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS248872B1 true CS248872B1 (en) | 1987-02-12 |
Family
ID=5401379
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS561885A CS248872B1 (en) | 1985-08-01 | 1985-08-01 | Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS248872B1 (en) |
-
1985
- 1985-08-01 CS CS561885A patent/CS248872B1/en unknown
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5106619A (en) | Preparation of inactivated viral vaccines | |
FI85222B (en) | HUND OF PARVOVIRUS VACCINATION FOR FRAMSTAELLNING AV ETT HUND OF PARVOVIRUS VACCIN. | |
US4224412A (en) | Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same | |
US4556556A (en) | Vaccine for the prevention of vesicular stomatitis virus infection | |
US4302444A (en) | Vaccines for immunizing egg-laying birds against Egg Drop disease, preparation of said vaccines, and method of use of said vaccines | |
US5807551A (en) | Method to provide artificial passive immunity in birds | |
NO159782B (en) | SPRING SYSTEM DEVICE, FIRST AND FIRST ON VEHICLES. | |
US4320115A (en) | Rabies virus vaccine | |
RU2403063C1 (en) | Inactivated combined vaccine against viral diarrhea, rota-, corona-virus diseases and escherichiosis of cattle | |
HU183765B (en) | Process for producing lyophilized vaccine against duck hepatitis | |
EP0282179B1 (en) | Canine distemper virus vaccine | |
JP3945842B2 (en) | Attenuated Newcastle disease virus vaccine | |
US3423505A (en) | Rabies vaccine and process for preparation thereof | |
US3479430A (en) | Indirect passive immunization against transmissible gastroenteritis virus in nursing piglets at birth by active immunization of sows prior to farrowing with transmissible gastroenteritis vaccine and method of producing the same | |
JPS6327437A (en) | Live vaccine for infectious disease of chicken | |
US3562387A (en) | Mink virus enteritis vaccine and method for the production thereof | |
US3548054A (en) | Method for improving weight gains and reducing gross lesions in chickens exposed to marek's disease | |
US3585108A (en) | Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same | |
CS248872B1 (en) | Tissue vaccine against infection jaundice of ducks and method of its preparation | |
CA2178553A1 (en) | Marek's disease vaccine | |
US3098011A (en) | Process of producing a vaccine against distemper | |
JP2892767B2 (en) | Canine coronavirus vaccine | |
US3704203A (en) | Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same | |
CN111087467A (en) | Preparation method of duck virus hepatitis and duck tongue disease bigeminal polyvalent egg yolk antibody | |
CA2011025A1 (en) | Feline infectious peritonitis vaccine |