CS248764B1 - Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum - Google Patents
Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum Download PDFInfo
- Publication number
- CS248764B1 CS248764B1 CS200485A CS200485A CS248764B1 CS 248764 B1 CS248764 B1 CS 248764B1 CS 200485 A CS200485 A CS 200485A CS 200485 A CS200485 A CS 200485A CS 248764 B1 CS248764 B1 CS 248764B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- toxic
- production
- clostridium septicum
- nutrient medium
- cultures
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Je popsán způsob výroby diazylovaných toxických kultur Clostridium septicum pro přípravu filtrátů k hyperimunizaci produkčních zvířat pro získávání antitoxických sér; příslušný mikroorganismus se kultivuje v kapalném živném médiu, které se naplní do dialyzační trubice, na obou koncích uzavřené a svými protilehlými konci upevněné ke stěnám nádoby, do níž se naplní totéž kapalné živné médium.
Description
Vynález se týká způsobu výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridíum septicum pro přípravu filtrátů, sloužících k hyperimunizaci produkčních zvířat, zejména koní, pro získávání antítoxického séra.
Anaerobní mikroorganismus Clostridium septicum je jedním z původců anaerobních traumatos. V průběhu kultivace produkuje řadu toxických proteinů do kultivačního média. Tohoto média se po sterilizaČní filtraci, případně po dalších úpravách, používá k hyperimunizaci koní za účelem získání antítoxického léčebného séra. Protože tvorba protilátek u imunizovaných zvířat je výraznější po aplikaci účinnějších toxických filtrátů, trvá zájem na vypracování kultivačních metod, které by umožnily produkci toxických proteinů mikroba v co nejvyšším titru.
Dosud se získávaly toxické filtráty kultur mikroba Clostridium septicum kultivací na tekutých živných půdách, rozplněných do lahví (Lettl A., Blasko B., Háza J., J. Hyg. Epidemiol. Microbiol. Immunol. 6, 343, 1962).
Jiný způsob představovala kultivace v celofánovém váčku, ponořeném do sterilního živného média. Dialyzační membrána ve tvaru váčku byla vyplněna fyziologickým roztokem chloridu sodného, a pouze v tomto roztoku se prováděla vlastní kultivace (Schaafsma A. W., Ann. Rep.
A. Afr. Inst. 24, 1949? 31, 1950), zatímco okolní sterilní živné médium sloužilo jako rezervoár živin, difundujících membránou do kultivačního roztoku.
Nevýhoda prvého postupu spočívá v produkci jen nízkých koncentrací toxického proteinu, nedostatečných pro účinnou hyperimunizaci zvířat. Nevýhoda druhého postupu spočívá ve skutečnosti, že růst baktérií ve fyziologickém roztoku v celofánovém váčku neprobíhá uspokojivým způsobem, protože je brzděn pomalou difúzí živin přes malou plochu váčku, nedostatkem látek s větší molekulou, které membránou neprojdou, i nižší koncentrací živin v důsledku jejich naředění ve fyziologickém roztoku. Dosahované titry toxického proteinu jsou velmi nízké. Navíc poměr mezi kultivačním a nutričním objemem je zhruba 1:8 až .1:10, takže dochází k plýtvání živného média, kterého je při krátkodobé kultivací v díalyzačním váčku o malé ploše velmi špatně využito.
Uvedené nevýhody popsaných postupů jsou odstraněny vynálezem způsobu výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum pro přípravu filtrátů, sloužících k hyperimunizaci produkčních zvířat, zejména koní, pro získávání antítoxického séra.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že mikroorganismus se kultivuje v kapalném živném médiu, které se naplní do dialyzační trubice na obou koncích uzavřené a upevněné svými protilehlými konci ke stěnám nádoby, do které se naplní totéž kapalné živné médium. Vynález je tedy založen na zjištění, že při vyplnění nejen nutričního, ale i kultivačního prostoru uvnitř dialyzační membrány živným médiem namísto fyziologického roztoku chloridu sodného je pro Clostridium septicum zajištěna dostatečná koncentrace živin.
Vynález dále spočívá na zjištění, že při použití dialyzační membrány ve tvaru přímé trubice (Fredette V., Vinet G., Can. J. Med. Sci. 30, 155, 1952) je k dispozici veliká dialyzační plocha, která umožňuje rychlou difúzi živin z nutričního objemu média do objemu kultivačního i difúzi nežádoucích metabolitů opačným směrem. Tato aparatura dosud nebyla pro kultivaci mikroorganismu Clostridium septicum použita.
Přednost navrženého postupu spočívá v tom, že Clostridium septicum se v uvedené aparatuře pomnožuje. Poměr mezi kultivačním a nutričním objemem je přibližně 1:2, takže při užití přímé dialy2·. :ní trubice o velké ploše je média dobře využito i při krátkodobé kultivaci.
Další předností navrženého postupu je skutečnost, že při přiměřené spotřebě kapalného živného média je toxický protein produkován kulturou mikroŠa Clostridíum septicum téměř v dvojnásobném titru ve srovnání s kultivací v živném médiu, plněném do lahví. V důsledku vyššího titru takto připraveného toxického filtrátu odpadá nutnost jeho další chemické koncentrace a purifikace pro účely hyperimunizace.
Výhodou takto připravených toxických filtrátů kultur mikroorganismus Clostridium septicum je skutečnost, že po aplikaci těchto filtrátů produkčním koním dojde k výraznějšímu 2výšení titru protilátek v krvi než po aplikaci filtrátů, připravených dřívějším způsobem.
V následujících příkladech provedení je způsob podle vynálezu popsán a porovnán se známými způsoby tak, aby byly zároveň ilustrovány jeho výhody.
Příklad 1
Trypticky trávená masová živná půda byla plněna do dvoulitrové lahve v množství '1 800 ml (známý způsob? Lettl A., Blasko B., Háza J., J. Hyg. Epidemiol. Microbiol. Immunol. 343, 1962). V druhém případě (způsob podle vynálezu) bylo 1 200 ml téhož média vpraveno do skleněné trubice o průměru 70 mm a délce 600 mm, na obou koncích zúžené. Skleněnou trubicí po celé délce procházela dialyzační trubice o průměru 45 mm. Do ní bylo vpraveno 600 ml téhož média.
Po sterilizaci a aseptickém přidání 0,5 % glukózy byly obě nádoby naočkovány 1 % kultury mikroba Clostridium septicum; u nádoby s dialyzační trubicí (způsob podle vynálezu) bylo inokulum vpraveno pouze do vnitřního prostoru dialyzační trubice. Po 18 hodinách inkubace při 37 °C byly narostlé kultury vypuštěny a buňky z kultur byly odstraněny sterilizační filtrací. Filtrát z lahve (připravený známým způsobem) měl titr toxického proteinu pouze Ι,β+.ιηΐ’1 a 100 DLM.ml-1, zatímco filtrát z dialyzační trubice (způsob podle vynálezu) měl titr 3,01,+ .1111-1 a 300 DLM.ml-1. Tento filtrát byl aplikován koni, jehož titr protilátek v krevním séru byl v době aplikace 200 Ul.ml 1. Titr protilátek se zvýšil na 300 Ul.ml \
U jiného koně, jemuž byl aplikován filtrát z kultury v lahvi (připravený známým způsobem), nedošlo ke změně titru protilátek v krevním séru.
Příklad 2
Masové živné médium (jako v příkladu 1) bylo plněno do dvoulitrové lahve v množství 1 600 ml. Do média byl ponořen celofánový váček, obsahující 200 ml fyziologického roztoku chloridu sodného (známý způsob? Schaafsma A. W.,Ann. Rep. S. Afr. Inst. 24, 1949? 31, 1950).
V druhém případě (způsob podle vynálezu) bylo 1 200 ml média vpraveno do skleněné trubice na obou koncích zúžené a 600 ml média do dialyzační trubice, která procházela po celé délce touto skleněnou trubicí jako v příkladu 1.
Po sterilizaci a aseptickém přidání 0,5 % glukózy byly vnitřní objemy dialyzačních membrán naočkovány 1 % kultury mikroba Clostridium septicum. Po 18 hodinách kultivace při 37 °C byly narostlé kultury vypuštěny a buňky z kultur byly odstraněny sterilizační filtrací. Filtrát z celofánového váčku (připravený známým způsobem) mel titr 0,3L+.ml 1 a byl vyřazen jako nepoužitelný pro hyperimunizaci. Filtrát kultury z dialyzační trubice (způsob podle vynálezu) -1 -1 měl titr 3,6L+.ml a 500 DLM.ml . Byl aplikován koni, u něhož vyvolal zvýšení titru antitoxinu v krevním séru z 250 na 350 Ul.ml 1.
Příklad 3
Byl připraven sterilní filtrát kultury z aparatury s přímo vedenou dialyzační trubicí podle příkladu 1 (způsob podle vynálezu). Filtrát měl titr 5,0L+.ml 1 a 400 DLM.ml 1. Byl aplikován koni, u kterého vyvolal zvýšení titru antitoxinu v krevním séru z 225 na 300 Ul.ml -1.
Claims (1)
- Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum pro přípravu filtrátů, sloužících k hyperimunizaci produkčních zvířat, zejména koní, pro získávání antitoxického séra, vyznačující se tím, že mikroorganismus se kultivuje v kapalném živ ném médiu, které se naplní do óialyzačni trubice na obou koncích uzavřené a upevněné svými protilehlými konci ke stěnám nádoby, do které se naplní totéž kapalné živné médium.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS200485A CS248764B1 (cs) | 1985-03-21 | 1985-03-21 | Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS200485A CS248764B1 (cs) | 1985-03-21 | 1985-03-21 | Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS248764B1 true CS248764B1 (cs) | 1987-02-12 |
Family
ID=5355871
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS200485A CS248764B1 (cs) | 1985-03-21 | 1985-03-21 | Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS248764B1 (cs) |
-
1985
- 1985-03-21 CS CS200485A patent/CS248764B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Somasegaran et al. | Methods in legume-Rhizobium technology | |
| US6001585A (en) | Micro hollow fiber bioreactor | |
| JPS59141067A (ja) | 汚染された生物学的媒質中の病原性微生物の免疫細菌学的検出方法 | |
| CA2182403A1 (en) | Plant Propagation System and Method | |
| GB1567899A (en) | Ev method of in vitro biosynthesis of hormones particularly insulin | |
| JP2660148B2 (ja) | 培養容器 | |
| Sternberg | A manual of bacteriology | |
| EP0460414B1 (en) | Culture and detection method for sterile-filterable autonomously replicating biological particles | |
| SU927126A3 (ru) | Способ получени урокиназы | |
| JPH062076B2 (ja) | 特定の運動性微生物を検出する方法及びそのための装置 | |
| US4421849A (en) | Method for biological screening | |
| ES2006114A6 (es) | Procedimiento de preparacion de algas dotadas de perfeccionados efectos biologicos. | |
| Burrell | A simplified double immunodiffusion technique for detection of Corynebacterium ovis antitoxin | |
| Gilbert | Monoxenic cultivation of the rotifer Brachionus calyciflorus in a defined medium | |
| CS248764B1 (cs) | Způsob výroby dialyzovaných toxických kultur mikroorganismu Clostridium septicum | |
| AU658364B2 (en) | Method of testing potentially infectious substances | |
| Nakamura | Cultivation of Trypanosoma cruzi in a protein-free dialysate medium. | |
| Quarles et al. | Hemodialysis culture of Serratia marcescens in a goat-artificial kidney-fermentor system | |
| PT83400B (fr) | Procede de liaison et stabilisation d'anticorps avec des cellules de staphylo-coccus aureus et d'exempt-essai | |
| US3441479A (en) | Method and apparatus for in vivo-like maintenance of blood in vitro | |
| JPS5851888A (ja) | 藻類および非光合成微生物類の透析培養方法 | |
| RU94033868A (ru) | Способ воздействия на микрообъект магнитным полем и устройство для его осуществления | |
| Hall | Papers | |
| JP3461556B2 (ja) | 中空糸を用いた微生物の検査方法 | |
| Ikigai et al. | Simplified method for preparation of concentrated exoproteins produced by Staphylococcus aureus grown on surface of cellophane bag containing liquid medium |