CS233279B1 - Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě - Google Patents

Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě Download PDF

Info

Publication number
CS233279B1
CS233279B1 CS836759A CS675983A CS233279B1 CS 233279 B1 CS233279 B1 CS 233279B1 CS 836759 A CS836759 A CS 836759A CS 675983 A CS675983 A CS 675983A CS 233279 B1 CS233279 B1 CS 233279B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
vaccine
borne encephalitis
virus
preparing
tick
Prior art date
Application number
CS836759A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS675983A1 (en
Inventor
Milota Gresikova
Magdalena Sekeyova
Valeria Bielikova
Gustav Russ
Original Assignee
Milota Gresikova
Magdalena Sekeyova
Valeria Bielikova
Gustav Russ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Milota Gresikova, Magdalena Sekeyova, Valeria Bielikova, Gustav Russ filed Critical Milota Gresikova
Priority to CS836759A priority Critical patent/CS233279B1/cs
Publication of CS675983A1 publication Critical patent/CS675983A1/cs
Publication of CS233279B1 publication Critical patent/CS233279B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Vynález sa týká sposobu pripravy subjednotkovéj vakcíny ku klieštovej encefalitidě. Podstatou vynálezu je, že· termosenzitívny kmen virusu klieštovej encefalitidy Skalica Cl. gl. 53 sa pomnožuje na tkanivových kulturách kuřácích embryonálnych buniek, virus sa semipurifikuje diferenciálnou centrifugáciou, sediment se resuspenduje do fyziologického roztoku,, štiepi sa tri krát éterom, ktorý sa odstráni, vakcína sa lyofilizuje. Vynález ma použitie v humánně j a veterinárnej praxi.

Description

233 279
Vynález sa týká sposobu*přípravy subjednotkovej vakcínyproti kliešťovej encefalitidě. E. N. Levkovič a tiež Ch. Kunz připravili inaktivovaněvakcíny proti kliešťovej encefalitidě na kuřácích embryonál-nych buňkách s následnou inaktiváciou formaldehydom> /5. N.levkovič: Biology of the tick-borne encephalitis complex.Czechoslovak Acad. Sci. 317 (1962); Ch. Kunz: Arzneim. Porsch.Drug. Res. 28, 10, 1806, (1978)J. Nevýhodou inaktivovánýchvakcín je ich příprava s plné virulentným kmenom virusu klieš-tovej encefalitidy. Mayer a Mitrová připravili živú atenuovanúvakcínu s kmenom Langat /Mayer a Mitrová: Biological works.Slovák Acad. Sci. Bratislava, (1977)J· Nevýhodou atenuovanejvakcíny je, že kmen Langat revertoval a nemóže sa použitk prípravé živej očkovacej látky.
Uvedené nevýhody v podstatnéj miere odstraňuje spósob pří-pravy subjednotkovej vakcíny proti kliešťovej encefalitidě, kto-rého podstata spočívá v tom, že termosenzitívny kmen virusukliešťovej encefalitidy -Cl. gl. 53? sa pomnožuje na tkanivovýchkultúrach kuřácích embryonálnych buniek; virus sa semipurifiku-je diferenciálnou centrifugáciou, resuspenduje do fyziologic-kého roztoku,, štiepi sa 3 krát éterom, ktorý sa odstráni, vak-cína sa vyČíri a lyofilizuje. Výhoda navrhovaného spósobu přípravy subjednotkovej vakcí- - 2 - 233 279 ny je, že sa pracuje s termosenzitívnym kmeňom virusu kliešťovejencefalitidy, ktorý je nepatogenný po podkožnom podáni bielymdospělým myšiam, co je významné z hlad!ska bezpečnosti pri práci.
I
Vakcína obsahuje subjednotky virusu, ktoré indukujú tvorbu pro-tilátok a je zbavená balastných látok. Tento sposob přípravy jeekonomicky nenáročný. Vakcínu možno skladovat po lyofilizácii. Příklad 1
Pripravujú sa tkanivové kultúry z 11 dňových C/E kuřácíchembryí, z ktorých sa odstránia oči a vnútornosti. Tkanivové kul-túry sa kultivujú v bazálnom Eaglovom médiu (BEM) s prímesou5 % fetálneho telacieho séra a antibiotik (penicilín a strepto-mycín). Po 24 hodinovéj kultivácii sa médium odstráni a tkanivo-vé kultúry sa infikujú vírusom kliešťovej encefalitidy (kmenSkalica, ktorý je uložený v čs. zbierke arbovírusov Virologic-kého ústavu SAV pod číslom Cl. gl. 53) so 7,5 log ΒΏ^θ/Ο,ΟΙ ml.Adsorbcia prebieha po dobu 90 min pri teplote 37 °C. Potom sapřidá čerstvé BEM s prímesou 5 % inaktivovaného séra a antibio-tik. Na prvý den sa médium stiahne a vyčíri. Purifikácia virususa robí diferenciálnou centrifugáciou pri 25.000 ot. za min.po dobu 2 h. Odstráni sa supernatant a sediment sa resuspendujedo 100 krát menšieho objemu izotonického fyziologického roztokuo pH 7,2 s prímesou 50yug gentamycínu na 1 ml. Po vyčírení saurčuje titer virusu pomocou hemaglutinačného testu. Preparát saza stálého miešania 3 krát štiepi éterom, 1 krát počas 5 min,druhý krát rovnakým dielom počas 18 h pri teplote 4 °C, 3 krátpočas 5 min. Po vyčírení sa éter odsaje, zbytky éteru sa odstrá-nia dusíkom. Vakcína sa lyofilizuje a skladuje pri teplote-20 °C. Skúšky neškodnosti vakcíny sa robia intracerebrálnou - 3 ” 233 279 inokuláciou očkovacej látky po 0,1 ml úalšej skupině bielych my-ší. Poéas pozorovacej doby 14 dní sa u žiadneho z pokusných zvie-rat neohjavilo poškodenie zdravotného stavu, ktoré by súviselos aplikáciou skúšaného preparátu. Skúška na nepřítomnost živéhovirusu sa robí na 5 až 8 g bielych myšiach. Myšiam sa inokulujepo 0,03 ml Intracerebrálne vakcíny neriedenej a Salšej skupiněmyší sa inokuluje po 0,03 ml vakcína riedená 1:10. Po 7 dnoch saodoberie od poloviny myší mozog na Salšiu pasáž· Celkove sarobia 2 pasáže. Sledovanie tvorby protilátok sa robí na 15 gmyšiach, kto:rým sa podá intraperitoneálne vakcína po 0,1 ml, 7 dní po prvej dávke sa odoberie od myší krv a sérum sa vyšetřu-je v hemaglutinašno-inhiblšnom teste. Druhá dávka vakcíny sa podápo 1 mesiaci. 7 dní po prvej vakcinácii sa vyšetřuje sérum myšína přítomnost hemaglutinačno-inhibičných protilátok. Ochrannýtest sa robí na dospělých bielych myšiach, ktoré sa imunizujújednou dávkou vakcíny intraperitoneálne po 0,1 ml. Po 7 až 8dnoch sa robí challenge živým vírusom. Myši sú chráněné proti100 LD^q (myšie smrtelné dávky) virusu. Skúška sterility vak-oíny sa robí podlá Sel. 3. Příklad 2
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa viruskultivuje prJL 37‘ °C počas 48 h. Příklad 3
Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že sa viru-sové partikule separujú v sacharózovom gradiente hustoty(10 až 30 % saúharóza/. Příklad. 4 233 271
Poetupuje aa ako v příklade 1 a tým rozdielom, že finálnypreparát pe extrakeii éterem ea opracuje formalínom v konešnomriedení 1:2 000, udržuje ea po dobu 3 dni pri teploto 4 °G,formalín ea odetránll tak, že k 100 ml vzorky ea přidalo 1,7 ml5 % pyroeirižitana eodného. Po zmiešaní ea vzorka naplní do dialyzaéného eáška a tento ea dialyzuje v 3. litroch fyziologické-ho roztoku pri teploto 4 °0 po dobu 20 hodin. Vakoína ea po dialýze lyofilizuje·
Vynález mdže nájst široké použiti® v médieíne, ako vakoínaproti vírueu klieštovej encefalitidy.

Claims (1)

  1. PREDMET VYNÁLEZU 233 279 Spósob přípravy subjednotkove^ takcíny proti kliešfovejencefalitida vyznačujúci sa tým, že termosenzitívny kmen,virusklieštovej encefalitidy Cl. gl. 53 Skalice sa pomnožuje natkanivových kultúrach kuřácích embryonálnych buniek, virus sasemipurifikuje diferenciálnou centrifugáciou, resuspenduje do fyziologického roztoku, štiepi sa 3 krát éterom, ktorý sa i odstráni, vakcína sa vyčíri a lyofilizuje.
CS836759A 1983-09-16 1983-09-16 Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě CS233279B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS836759A CS233279B1 (cs) 1983-09-16 1983-09-16 Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS836759A CS233279B1 (cs) 1983-09-16 1983-09-16 Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS675983A1 CS675983A1 (en) 1984-05-14
CS233279B1 true CS233279B1 (cs) 1985-02-14

Family

ID=5415334

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS836759A CS233279B1 (cs) 1983-09-16 1983-09-16 Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS233279B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS675983A1 (en) 1984-05-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lloyd et al. Modification of the virulence of yellow fever virus by cultivation in tissues in vitro
Sikes et al. Effective protection of monkeys against death from street virus by post-exposure administration of tissue-culture rabies vaccine
Huber et al. Cellular immune mechanisms in Coxsackievirus group B, type 3 induced myocarditis in Balb/C mice
Notkins et al. Studies on the multiplication and the properties of the lactic dehydrogenase agent
CN106119212B (zh) 禽腺病毒毒株、灭活疫苗及制备方法
EP0027347B1 (en) Feline infectious peritonitis virus, its preparation and vaccines containing it
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
US3674861A (en) Live attenuated marek{40 s disease virus vaccine for poultry
US4571386A (en) Feline infectious peritonitis vaccine
US4320115A (en) Rabies virus vaccine
Laufs et al. Latent infection and malignant lymphoma in marmosets (Callithrix jacchus) after infection with two oncogenic herpesviruses from primates
EP0253389B1 (en) Live vaccine for contagious diseases of chickens
Hearn Jr A variant of Venezuelan equine encephalomyelitis virus attenuated for mice and monkeys
CS233279B1 (cs) Sposob pripravy subjednotkovéj vakcíny proti klieštovej encefalitidě
Rees et al. Immune response to adenovirus 12-induced tumour antigens, as measured in vitro by the macrophage migration inhibition test
Vandeputte et al. Influence and production of interferon in Rauscher virus infected mice
Gillette et al. Augmented immunogenicity of tumor cell membranes produced by surface budding viruses: Parameters of optimal immunization
Burden et al. Fasciola hepatica: attempts to immunise rats and mice with metabolic and somatic antigens derived from juvenile flukes
Cole Jr et al. Formalin-inactivated Venezuelan equine encephalomyelitis (Trinidad strain) vaccine produced in rolling-bottle cultures of chicken embryo cells
CN113975412A (zh) 一种评价轮状病毒疫苗有效性的方法
EP0562136A1 (en) Live vaccine to getah virus infectious disease, and trivalent live vaccine to Japanese encephalitis virus, porcine parvovirus and getah virus infectious diseases
US5514376A (en) Cell culture of hepatitis A virus
Gruber Immunogenicity of purified Venezuelan equine encephalitis virus inactivated by ionizing radiation
EP4428231A1 (en) High-titer japanese encephalitis virus genotype 5 and use thereof
KR100693077B1 (ko) 돼지 복합 호흡기 질환 예방 및 치료용 생물학적 조성물