CS214802B2 - Method of making the biomass of high contents of proteins - Google Patents
Method of making the biomass of high contents of proteins Download PDFInfo
- Publication number
- CS214802B2 CS214802B2 CS778778A CS877877A CS214802B2 CS 214802 B2 CS214802 B2 CS 214802B2 CS 778778 A CS778778 A CS 778778A CS 877877 A CS877877 A CS 877877A CS 214802 B2 CS214802 B2 CS 214802B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- strain
- biomass
- methanol
- per liter
- yeast
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/32—Processes using, or culture media containing, lower alkanols, i.e. C1 to C6
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
- C12N1/165—Yeast isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
- C12R2001/72—Candida
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Mycology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Botany (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- Fodder In General (AREA)
Abstract
Description
Vynález se týká způsobu výroby mikrobiální biomasy o vysokém obsahu bílkovin kultivací kmene kvasinky rodu Candida, který je schopen využívat methanolu jako jediného zdroje uhlíku a energie.The present invention relates to a method of producing high protein microbial biomass by culturing a yeast strain of the Candida genus which is capable of utilizing methanol as the sole source of carbon and energy.
V důsledku vysoké reprodukční rychlosti mikroorganismů i jejich obsahů bílkovin představuje tvorba mikrobiálních biomas velmi rychlý způsob výroby bílkovin.Due to the high reproductive rate of microorganisms and their protein contents, the formation of microbial biomasses represents a very fast method of protein production.
Pro výrobu biomas byly dosud používány odpadní cukry, například melasy z cukrovarů nebo odpadní sulfitové louhy z papíren.To date, waste sugars have been used, such as molasses from sugar refineries or waste sulphite liquors from paper mills.
V poslední době byly na základě značné dostupnosti a nízké ceny ropy adaptovány způsoby výroby biomasy používající jako substrát buď surové frakce ropy, nebo vysoce čištěné směsi normálních parafinů.Recently, based on considerable availability and low oil prices, biomass production methods have been adapted using either crude oil fractions or highly purified mixtures of normal paraffins as a substrate.
Použití takových substrátů založených na ropě má z technologického hlediska několik nedostatků, které jsou způsobeny jejich nerozpustností ve vodě, značným množstvím kyslíku, který potřebují mikroorganismy к asimilaci a značným množstvím tepla, které se tvoří během fermentace. Běžné náklady při výrobě biomasy jsou kromě toho zvyšovány hutností dokonalého čištění substrátu nebo/a pečlivým promýváním vznikající biomasy, aby se odstranily potenciálně nebezpečné složky ropy.The use of such petroleum-based substrates has several technological disadvantages due to their insolubility in water, the considerable amount of oxygen needed by the microorganisms to assimilate, and the considerable amount of heat generated during fermentation. In addition, the current cost of biomass production is increased by the density of thorough substrate cleaning and / or by careful washing of the biomass produced to remove potentially hazardous oil components.
К takovým potížím nedochází, jestliže se výroba biomasy provádí za použití nižších alkoholů, například methanolu nebo ethanolu jako substrátů. V důsledku jejich dokonalé rozpustnosti ve vodě, těkavosti i skutečnosti, že jsou dostupné ve vysoké čistotě, je možné získávat biomasu, která je prostá nežádoucích zbytků. Mísitelností s vodou jsou odstraněny problémy s míšením, se kterými se setkáváme u frakcí ropy, zatímco skutečnost, že v jejich molekulách je již obsažen kyslík, snižuje potřebu kyslíku na jejich asimilaci: z této skutečnosti pramení další výhoda, totiž, že tvorba biomasy je provázena sníženým vývojem tepla, čehož důsledkem je snížení nákladů na chlazení.Such problems do not occur when biomass production is carried out using lower alcohols such as methanol or ethanol as substrates. Because of their excellent water solubility, volatility and the fact that they are available in high purity, it is possible to obtain biomass that is free of undesirable residues. Miscibility with water removes the mixing problems encountered in oil fractions, while the fact that oxygen is already present in their molecules reduces the oxygen requirement for their assimilation: this has the added benefit of biomass production being accompanied reduced heat generation resulting in reduced cooling costs.
Ethanol je využíván velkým množstvím mikroorganismů a měl by být ideálním substrátem pro výrobu biomas, avšak jeho cena je poměrně vysoká. Methanol naopak lze vyrábět levně a ve vysokém stupni čistoty. Tato skutečnost se stala podkladem pro úsilí, které bylo vynaloženo na nalezení mikroorganismů, které jsou schopny účinně využívat methanol. Z technické a patentové literatury je známo, že těmto požadavkům sice vyhovují četné bakterie, zatímco účinnost dosud popsaných kvasinek je spíše nízká.Ethanol is used by a large number of microorganisms and should be an ideal substrate for biomass production, but its cost is relatively high. Methanol, on the other hand, can be produced cheaply and in a high degree of purity. This has become the basis for the efforts that have been made to find microorganisms that are able to efficiently use methanol. It is known from the technical and patent literature that, although numerous bacteria meet these requirements, the efficacy of the yeast described so far is rather low.
Obohacením kultivačního média a izolací získaných kvasinkových buněk při kontinuální kultivaci se podle vynálezu podařilo izolovat nový výhodný kmen kvasinky (NRRL Y-11062), který je schopen využívat methanol jako jediný zdroj uhlíku a energie.By enriching the culture medium and isolating the obtained yeast cells in continuous culture, the present invention has succeeded in isolating a new preferred yeast strain (NRRL Y-11062) which is able to use methanol as the sole source of carbon and energy.
Podstata zdokonaleného způsobu výroby biomasy o vysokém obsahu bílkovin kultivací kvasinkového kmene rodu Candida, kte rý se provádí při teplotě v rozsahu 20 až 35 °G a při pH o hodnotě 2,5 až 6,5 na živné půdě, která sestává z roztoku solí a která jako jediný zdroj uhlíku a energie obsahuje methanol, a izolací získaných kvasinkových buněk, spočívá podle přítomného vynálezu v tom, že se jako kvasinkového kmene používá kmene Candida NRRL Y-11062.An improved method for producing high protein biomass by culturing a yeast Candida strain carried out at a temperature in the range of 20 to 35 ° C and at a pH of 2.5 to 6.5 on a nutrient broth consisting of a salt solution and which contains methanol as the sole carbon and energy source, and by isolating the yeast cells obtained, the present invention consists in using a strain of Candida NRRL Y-11062 as the yeast strain.
Uvedený nový kmen je uložen ve veřejné sbírce kultur mikroorganismů NRRL (Northern Regional Research Laboratory v městě Peoria, Illinods, Spoj státy americké) pod depozitním registračním označením Y-11062.The new strain is deposited in the public collection of cultures of microorganisms NRRL (Northern Regional Research Laboratory in Peoria, Illinods, United States) under the deposit registration number Y-11062.
Vlastnosti tohoto kmene blidou zřejmé z následující specifikace jeho znaků.The properties of this strain are apparent from the following specification of its features.
Kmen NRRLY-11062 se reprodukuje multipolární germinací a vytváří oddělené vejčité buňky nebo shluky tvořené množstvím podlouhlých buněk (pseudomycelium).The NRRLY-11062 strain is reproduced by multipolar germination and produces discrete egg cells or clusters formed by a plurality of elongated cells (pseudomycelium).
V tekutém kultivačním prostředí tvoří sediment, zatímco v pevném prostředí to jsou bud hladké a lesklé kolonie nebo neprůhledné a svraštělé kolonie. Při přípravě subkultur kmene na pevném prostředí kmen nabývá stále více hladkého a lesklého vzhledu, což odpovídá v tekutém prostředí odděleným buňkám, zatímco při kultivaci kmene za určitých podmínek v tekutém prostředí převládá pseudomyceliární forma odpovídající zvrásněným a opakním buňkám. Spory jakéhokoli druhu nebyly pozorovány. Na základě takových morfologických znaků se dospělo к závěru, že kmen náleží do rodu Candida podle klasifikace navržené J. Lodderovou v díle „The Yeasts; A Taxonomie Study“, 1970.In a liquid culture medium they form a sediment, while in a solid medium they are either smooth and shiny colonies or opaque and wrinkled colonies. In the preparation of strain subcultures on a solid medium, the strain becomes more and more smooth and shiny, which corresponds to separate cells in a liquid medium, while the cultivation of the strain under certain conditions in a liquid medium predominates in a pseudomycelial form corresponding to wrinkled and opaque cells. Disputes of any kind were not observed. Based on such morphological features, it was concluded that the strain belongs to the genus Candida according to the classification proposed by J. Lodder in "The Yeasts; A Taxonomy Study ', 1970.
Fyziologické vlastnosti uvedeného nového kmene jsou následující:The physiological properties of said new strain are as follows:
1. Fermentační využívání některých zdrojů uhlíku:1. Fermentation of certain carbon sources:
D-glukóza4D-galaktóza— sacharóza— maltóza— trealóza— laktóza—D-glucose4D-galactose - sucrose - maltose - trealose - lactose—
2.Růst:2.Get:
D-glukóza+D-glucose +
D-galaktéza—D-galactesis—
L-sorbóza— sacharóza— maltóza— cellobióza+ trehalóza— laktóza— malibióza— rafinóza— melezitóza— inulin— škrob—L-sorbose - sucrose - maltose - cellobiose + trehalose - lactose - malibiosis - raffinose - melezitose - inulin - starch -
D-xyloza+D-xyloza +
L-arabinóza—L-arabinose—
Srovnání fyziologických vlastností uvedeného nového kmene s vlastnostmi uvedenými vpředu ve studii Lodderové, jakož i s vlastnostmi uvedenými v knize J. A. Barreta a R. J. Pankhursta „A New Key to · the Yeasts“ ukázalo, že tento kmen se liší od všech druhů kvasinek popsaných v těchto knihách.A comparison of the physiological properties of the new strain with those presented in the Lodder study as well as those of J. A. Barret and R. J. Pankhurst's "A New Key to the Yeasts" showed that this strain differs from all the yeast species described in these books.
V technické a patentové literatuře bylo popsáno mnoho kvasinek schopných využívat methanol (viz C. L. Cooney a D. W. Levine: „Singlo-cell protein“ II-ΜΙΤ Press, 1975), avšak vlastnosti kmene SP M 180 se liší od všech kmenů, které jsou vynálezcům známé.Many yeasts capable of using methanol have been described in the technical and patent literature (see CL Cooney and DW Levine: "Singlo-cell protein" II-Press, 1975), but the properties of strain SP M 180 differ from all strains known to the inventors .
Pro tento kmen je svého .druhu · příznačnou jeho schopnost asimilovat . účinněji methanol než ethanol. Kmen lze kultivovat v diskontinuálních i kontinuálních kulturách, avšak jeho vlastnosti se lépe využívají v kontinuálních kulturách.This strain is characterized by its ability to assimilate its species. more effectively methanol than ethanol. The strain can be cultivated in discontinuous and continuous cultures, but its properties are better utilized in continuous cultures.
Kromě toho, v důsledku jeho schopnosti vytvářet pseudomycelium, lze získat kulturu, která velice snadno sedlmentuje: této vlastnosti lze ' využít pro kontinuální kultivaci s částečným odebíráním nebo recyklováním biomasy, což je skutečnost, která . umožňuje vyšší hodinovou produkci. Snadná sedimentace činí mimo to izolaci biomasy pohodlnější.In addition, due to its ability to form pseudomycelium, a culture can be obtained which is very easy to sediment: this property can be used for continuous cultivation with partial removal or recycling of biomass, a fact which. enables higher hourly production. Easy sedimentation also makes biomass insulation more convenient.
Při praktickém provádění sestává způsob z naočkování půdy kmenem NRRL Y-11062, kterážto půda obsahuje . esenciální prvky (dusík, fosfor, draslík, hořčík, železo, vápník), růstové faktory (kvasničné extrakty a biotin), minerální stopové prvky a methanol jako zdroj uhlíku a energie. Živná půda se inkubuje za míchání při teplotě v rozsahu 20 °C až 30 °C, s výhodou mezi 30 cC a 33 °C, přičemž hodnota pH se udržuje mezi 2,5 a 6,5, s výhodou mezi 4 a 4,5, přičemž se kontinuálně dodává plynná směs s obsahem kyslíku, například vzduch.In practice, the method comprises inoculating the soil with the NRRL Y-11062 strain which contains the soil. essential elements (nitrogen, phosphorus, potassium, magnesium, iron, calcium), growth factors (yeast extracts and biotin), mineral trace elements and methanol as a source of carbon and energy. The broth was incubated under agitation at a temperature in the range 20 ° C to 30 ° C, preferably between 30 DEG C. and 33 DEG C. while the pH was maintained between 2.5 and 6.5, preferably between 4 and 4, 5, wherein an oxygen-containing gas mixture, for example air, is continuously supplied.
Buňky kvasinek, které se množí na ' útraty dodávaných živin, se izolují pomocí sedimentace a filtrace, promývají se vodou a suší zahříváním.Yeast cells, which multiply to expend the nutrients supplied, are isolated by sedimentation and filtration, washed with water and dried by heating.
Takto získanou biomasu lze užívat jako takovou jako bílkovinný souhrn pro potraviny a krmivá, nebo z ní mohou být izolovány z ušlechtěných produktů, například bílkoviny, aminokyseliny a nukleové kyseliny.The biomass thus obtained can be used as such as a protein summary for food and feed, or can be isolated therefrom from refined products such as proteins, amino acids and nucleic acids.
Následující příklady vynález ilustrují, avšak neomezují jeho rozsah.The following examples illustrate the invention but do not limit its scope.
PřikladlHe did
500 ml Erlenmeyerovy baňky obsahovaly každá 500 ml živného prostředí o následujícím složení:500 ml Erlenmeyer flasks each contained 500 ml of medium containing the following composition:
dihydrogenfo-storečnan draselný KH2PO4 dihydrogenfosforečnan sodný NaH2PO/ síran amonný (NH4J.2SO4 síran horečnatý MgSO4.7 H2O síran železnatý FeSO4.7 H2O chlorid vápenatý CaCl2 síran zinečnatý ZnSO/.7 H2Opotassium dihydrogen phosphate KH2PO4 sodium dihydrogen phosphate NaH 2 PO / ammonium sulphate (NH4J.2SO4 magnesium sulphate MgSO 4 .7 H2O ferrous sulphate FeSO 4 .7 H2O calcium chloride CaCl 2 zinc sulphate ZnSO / .7 H 2 O
Kvasničný extraktYeast extract
BiotinBiotin
Stopové prvky (roztoky)Trace Elements (Solutions)
2,0 g v litru2.0 g per liter
2,0 g v litru2.0 g per liter
5,0 g v litru5.0 g per liter
0,2 g v litru0.2 g per liter
2,0 mg2.0 mg
2,0 g v litru2.0 g per liter
2,0 g . . v. litru 200,0 v litru 25,0 μξ v litru ml v litru2,0 g. . v. liter 200,0 in liter 25,0 μξ in liter ml in liter
Roztok stopových prvků,. připravený ve zředěné kyselině chlorovodíkové (1 ml kon centrované kyseliny chlorovodíkové v 1 litru vody), měl následující složeni:Trace element solution. prepared in dilute hydrochloric acid (1 ml of concentrated hydrochloric acid in 1 liter of water), had the following composition:
síran mědnatý GuSO/. 5 H2O kyselina boirltá H3BO3 síran, manganatý MnSO/ . H2O jodid draselný KJ chlorid kobaltinatý CoCl2.6 H2O kysličník molybdenový MoO3copper sulphate. H2O boiling acid H3BO3 sulphate, MnSO4). H2O potassium iodide KJ cobalt (II) chloride CoCl2.6 H2O molybdenum oxide MoO3
200 mg v litru200 mg per liter
500 mg v litru500 mg per liter
500 mg v litru mg v litru mg v litru mg v litru500 mg per liter mg per liter mg per liter mg per liter
Hodnota pH prostředí byla upravena na hodnotu 5,0 a baňka byla potom sterilizována po dobu 20 minut při teplotě 116 °C. Do dvou baněk bylo potom přidáno 0,75 ml (1,9 % objem/objem) methanolu a baňka byla potom zaočkována kmenem NRRL Y-11062 na šikmém agaru. Baňky byly inkubcvány po dobu 72 hodin na rotačním míchacím zařízení (220 ot./min., průměr 3,5 centimetru), přičemž teplota 32,5 °C se udržuje termostaticky.The pH of the medium was adjusted to 5.0 and the flask was then sterilized for 20 minutes at 116 ° C. The two flasks were then charged with 0.75 mL (1.9% v / v) methanol and the flask was then seeded with NRRL Y-11062 slanted agar. The flasks were incubated for 72 hours on a rotary mixer (220 rpm, 3.5 cm diameter) while maintaining a temperature of 32.5 ° C thermostatically.
Ostatní baňky, obsahující totéž prostředí a do kterých bylo přidáno 1 % (objem/ /objem) methanolu, 2 °/o (objem/objem) ethanolu a 2 % (hmotnost/objem) glukózy byly zaočkovány jednotlivě 5 ml výše specifikované subkulťury. Po 24 hodinách inkubace bylo do každé baňky přidáno další 1 °/o‘ objem/objem methanolu. Po celkem· 43 hodinách inkubace byl měřen obsah biomasy v baňce, přičemž byly získány následující výsledky:Other flasks containing the same medium and to which 1% (v / v) methanol, 2% (v / v) ethanol and 2% (w / v) glucose were added were inoculated individually with 5 ml of the above subculture. After 24 hours of incubation, an additional 1% / volume of methanol was added to each flask. After a total of 43 hours incubation, the biomass content of the flask was measured and the following results were obtained:
Substrát Optická hustota (1 : 10) při Suchá biomasaSubstrate Optical Density (1: 10) at Dry Biomass
660 nm gramy v litru bílkoviny660 nm grams per liter of protein
Obsah bílkovin byl stanoven biuretovou metodou.Protein content was determined by the biuret method.
Příklad 2Example 2
Do fermentoru s účinným objemem asi 8 litrů a obsahujícím kultivační médium z příkladu 1 byla naočkována suspenze kmene NRRL Y-11062. Do fermentoru, jehož teplota byla řízena termostatem na 32,5 “C byl přidáván měthanol tak, aby se zajistilo, že zbytková koncentrace živného prostředí nepřekročí 1 % objemu, vyjádřeno objemově.A suspension of NRRL Y-11062 strain was seeded into a fermenter with an effective volume of about 8 liters and containing the culture medium of Example 1. Methanol was added to a fermenter whose temperature was controlled by a thermostat at 32.5 ° C to ensure that the residual culture medium concentration did not exceed 1% by volume, expressed in volume.
Když kultura dodatečně narostla, započalo se s kontinuálním přidáváním sterilního živného prostředí do fermentoru, přičemž sterilní živné prostředí obsahovaloWhen the culture subsequently grew, the continuous addition of sterile culture medium to the fermenter was started, with the sterile culture medium containing
29,6 g methanolu v litru, zatímco· se současně odebíralo množství živné kultury rovnající se množství přidanému ke kultivačnímu prostředí. Množství přidaného prostředí a odběr živné kultury byly zvyšovány, až dosáhly rychlosti ředění (D — poměr vstupního přítoku ku objemu kultury) 0,166 h_1. Vycházející proud obsahoval za těchto pod mínek 10,28 g suché biomasy v litru a 146 ppm zbytkového methanolu, s výtěžkem 35 proč, a hodinovou produkcí 1,72 g biomasy na litr. Takto získaná biomasa obsahovala 55,6 % bílkovin (podle biuretové metody).29.6 g of methanol per liter, while a quantity of nutrient culture equal to the amount added to the culture medium was simultaneously collected. The amount of medium added and the culture culture collection were increased until they reached a dilution rate (D - feed inflow to culture volume ratio) of 0.166 hr -1 . Under these conditions, the effluent contained 10.28 g dry biomass per liter and 146 ppm residual methanol, with a yield of 35 why, and an hourly production of 1.72 g biomass per liter. The biomass thus obtained contained 55.6% protein (according to the biuret method).
P ř í к 1 a d 3Example 1 a d 3
К fermentoru druhu popsaného v příkladu 2 byl připojen usazovací tank pro vycházející proud, a část živného prostředí obohacená biomasou byla pravidelně vracena do fermentoru. Přidáváním čerstvého živného prostředí do fermentoru, přičemž živné prostředí obsahovalo 24 g methanolu v litru, za takového přítoku, aby se dosáhlo rychlosti ředění P, 267 h1, byla získána v nerecyklovaném. podílu vycházejícím ze sedimentačního tanku vyfermentovaná kultura obsahující 7,80 g biomasy v litru, a 120 ppm zbytkového methanolu, s výtěžkem 32,5 °/o a hodinovou produkcí 2,08 g v litru. Takto získaná biomasa obsahovala 53,0 % bílkovin (podle biuretové metody).A settling tank for the outgoing stream was connected to a fermenter of the type described in Example 2, and a portion of the biomass-enriched culture medium was regularly returned to the fermenter. By adding fresh broth to the fermenter, the broth containing 24 g of methanol per liter, at a flow rate such that a dilution rate of P, 267 h 1 was achieved, was recovered in non-recycled form. a fermentation culture containing 7.80 g of biomass per liter, and 120 ppm of residual methanol, with a yield of 32.5% / h and an hourly production of 2.08 g per liter. The biomass thus obtained contained 53.0% protein (according to the biuret method).
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT30798/76A IT1123648B (en) | 1976-12-23 | 1976-12-23 | PROCEDURE FOR THE PRODUCTION OF HIGH PROTEIN CONTENT AND MEANS SUITABLE FOR THE PURPOSE |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS214802B2 true CS214802B2 (en) | 1982-06-25 |
Family
ID=11232120
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS778778A CS214802B2 (en) | 1976-12-23 | 1977-12-23 | Method of making the biomass of high contents of proteins |
Country Status (20)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5379089A (en) |
AU (1) | AU517658B2 (en) |
BE (1) | BE862291A (en) |
CA (1) | CA1106786A (en) |
CH (1) | CH631054A5 (en) |
CS (1) | CS214802B2 (en) |
DD (1) | DD137120A5 (en) |
DE (1) | DE2757877C3 (en) |
DK (1) | DK143765C (en) |
FR (1) | FR2375322A1 (en) |
GB (1) | GB1578200A (en) |
HU (1) | HU178342B (en) |
IT (1) | IT1123648B (en) |
LU (1) | LU78772A1 (en) |
NL (1) | NL7714383A (en) |
NO (1) | NO146207C (en) |
SE (1) | SE7714710L (en) |
SU (1) | SU759055A3 (en) |
YU (1) | YU307077A (en) |
ZA (1) | ZA777212B (en) |
-
1976
- 1976-12-23 IT IT30798/76A patent/IT1123648B/en active
-
1977
- 1977-12-05 ZA ZA00777212A patent/ZA777212B/en unknown
- 1977-12-08 AU AU31346/77A patent/AU517658B2/en not_active Expired
- 1977-12-08 CA CA292,704A patent/CA1106786A/en not_active Expired
- 1977-12-14 CH CH1538377A patent/CH631054A5/en not_active IP Right Cessation
- 1977-12-15 DK DK560477A patent/DK143765C/en not_active IP Right Cessation
- 1977-12-22 HU HU77SA3085A patent/HU178342B/en unknown
- 1977-12-23 SE SE7714710A patent/SE7714710L/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-23 CS CS778778A patent/CS214802B2/en unknown
- 1977-12-23 SU SU772558413A patent/SU759055A3/en active
- 1977-12-23 DD DD77202928A patent/DD137120A5/en unknown
- 1977-12-23 YU YU03070/77A patent/YU307077A/en unknown
- 1977-12-23 FR FR7738955A patent/FR2375322A1/en active Granted
- 1977-12-23 BE BE183819A patent/BE862291A/en not_active IP Right Cessation
- 1977-12-23 LU LU78772A patent/LU78772A1/xx unknown
- 1977-12-23 NL NL7714383A patent/NL7714383A/en not_active Application Discontinuation
- 1977-12-23 JP JP15460677A patent/JPS5379089A/en active Pending
- 1977-12-23 DE DE2757877A patent/DE2757877C3/en not_active Expired
- 1977-12-23 NO NO774441A patent/NO146207C/en unknown
- 1977-12-23 GB GB53855/77A patent/GB1578200A/en not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CA1106786A (en) | 1981-08-11 |
SU759055A3 (en) | 1980-08-23 |
AU517658B2 (en) | 1981-08-20 |
GB1578200A (en) | 1980-11-05 |
DK560477A (en) | 1978-06-24 |
YU307077A (en) | 1983-04-30 |
DE2757877C3 (en) | 1980-01-17 |
AU3134677A (en) | 1979-06-14 |
NO146207B (en) | 1982-05-10 |
NO774441L (en) | 1978-06-26 |
BE862291A (en) | 1978-06-23 |
FR2375322B1 (en) | 1980-06-06 |
DE2757877B2 (en) | 1979-05-23 |
DK143765C (en) | 1982-03-22 |
HU178342B (en) | 1982-04-28 |
IT1123648B (en) | 1986-04-30 |
SE7714710L (en) | 1978-06-24 |
JPS5379089A (en) | 1978-07-13 |
FR2375322A1 (en) | 1978-07-21 |
NL7714383A (en) | 1978-06-27 |
ZA777212B (en) | 1978-10-25 |
DD137120A5 (en) | 1979-08-15 |
NO146207C (en) | 1982-08-18 |
DE2757877A1 (en) | 1978-06-29 |
DK143765B (en) | 1981-10-05 |
LU78772A1 (en) | 1978-04-17 |
CH631054A5 (en) | 1982-07-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3922194A (en) | Process for producing 2-keto-L-gulonic acid | |
US5658793A (en) | Pseudomonas aeruginosa and its use in a process for the biotechnological preparation of L-rhamnose | |
US3959076A (en) | Process for producing 2-keto-L-gulonic acid | |
US4652527A (en) | Process for culturing methylophilus methylotrophus | |
CA1329161C (en) | Process for the preparation of difructose dianhydride iii | |
US3630842A (en) | Production of 3{40 ,5{40 -cyclic adenylic acid with micro-organisms | |
CS214802B2 (en) | Method of making the biomass of high contents of proteins | |
JPS5937076B2 (en) | Fermentation method Vitamin B↓1↓2 manufacturing method | |
JP2876416B2 (en) | Method for producing D-psicose | |
US3152967A (en) | Process for preparing guanylic acid | |
US4317884A (en) | Method for the production of yeast on ethanol and means therefor | |
CN116515795B (en) | Application of Aspergillus tubingensis in preparing phytase and/or degrading phytic acid | |
KR950009200B1 (en) | Process for producing d-alanine | |
WO1992018637A1 (en) | Method for the production of d-gluconic acid | |
US4647534A (en) | Ethanol production by high performance bacterial fermentation | |
Barton et al. | Biochemical engineering | |
JPH0378106B2 (en) | ||
JPH0419835B2 (en) | ||
KR0162168B1 (en) | A process for preparing erythritol | |
JPS6328385A (en) | Production of cell body of microorganism | |
JPH0716403B2 (en) | Kyandeida Boydini PC-31 stock | |
JPH0479892A (en) | Production of fr-901228 substance | |
JPH05176767A (en) | Production of beta-1,4-mannanase by microorganism | |
PL63144B1 (en) | ||
Tahir et al. | From Scraps to Protein Powerhouse: Transforming Potato Peels into Single Cell Protein |