CS201481B1 - Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose - Google Patents
Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose Download PDFInfo
- Publication number
- CS201481B1 CS201481B1 CS217579A CS217579A CS201481B1 CS 201481 B1 CS201481 B1 CS 201481B1 CS 217579 A CS217579 A CS 217579A CS 217579 A CS217579 A CS 217579A CS 201481 B1 CS201481 B1 CS 201481B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- vaccine
- medium
- microconidia
- culture
- trichophytosis
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(54) Vakcína proti trichofytóze skotu živá lyofilizované a způsob její výroby(54) A live lyophilized vaccine against bovine trichophytosis and a process for its manufacture
Vynález se týká vakcíny proti trichofytóze skotu Živé lyofilizované a způsobu její zThe present invention relates to a live lyophilized vaccine against bovine trichophytosis and to a method thereof
přípravy z živé virulentní kultury Trichophyton verrucosum Bodin 1902 /kmene Bi-O36-š Strážnice/ a které je určena k profylaxi a terapii trichofytózy skotu.preparation from a live virulent culture of Trichophyton verrucosum Bodin 1902 (strain Bi-O36-š Strážnice) and intended for the prophylaxis and therapy of bovine trichophytosis.
Trichofytóze skotu je velmi závažné infekční onemocnění -anthropozoonoza, které se rozšířila u nás zejména se zvyšováním koncentrace skotu ve velkokapacitních teletnících a u velkých stád skotu. Onemocněni trichofytózou je přenosné na člověka, přičemž léčeni jedné infikované osoby je značně nákladné. Onemocnění způsobuje Vedle rozsáhlých škod v kožedělném průmyslu /nepoužitelné kůže ke kožedělnému zpracování/ i další ekonomické ztráty hlavně v zemědělství - znemožněním moderního způsobu odchovu a možnost přesunů zvířat v rámci velkých zemědělských závodů.Bovine trichophytosis is a very serious infectious disease -anthropozoonosis, which has spread in the Czech Republic especially with the increase of the concentration of cattle in large-capacity calves and in large cattle herds. Trichophytosis is transmissible to humans, and treatment of one infected person is costly. In addition to widespread damage to the leather industry (unusable leather for leather processing), the disease also causes other economic losses, especially in agriculture - by preventing modern breeding and the possibility of moving animals in large farms.
V literatuře je popsána celá řada terapeutických prostředků proti tomuto onemocněni. Tyto přípravky jsou však většinou nedostatečně účinné, značně finančně nákladné a jejich aplikace je náročná na práci a Čas. Celé řada pokusů o vyvinutí vakcíny proti trichofytóze skotu byla neúspěšná, připravené vakcíny byly nedostatečně efektivní. Teprve v SSSR byla připravena v poslední době účinná vakcína k profylaxi trichofytózy hovězího dobytka. Jde o suspenzi mikrokonidií imunógenního kmene Trichophyton faviforme ve fyziologickém roztokuA number of therapeutic agents against the disease are described in the literature. However, these preparations are usually inefficient, costly and labor intensive and time consuming. A number of attempts to develop a vaccine against bovine trichophytosis have been unsuccessful, and the vaccines prepared have been insufficiently effective. Only in the USSR was recently prepared an effective vaccine for the prophylaxis of trichophytosis in cattle. It is a suspension of microconidia of the immunogenic Trichophyton faviforme strain in saline
201 481201 481
201 481 v koncentraci od 6 do 9 milionů v 1 cm\ Vakcína bylá získána pomnožením sovětského výrobního kmene δ. 130 na sladinkovém agaru, homogenizací narostlé kultury v prostředí fyziologického roztoku a zředěním suspenze buněk na výše uvedenou koncentraci mikrokonidií. Přípravek je aplikován zvířatům v intervalu 10 až 14 dnů v dávkách od .5 do 10 cm^ /Sarkisov: Prophylaxie specifique de la Triehophyton des jeunes bovides. Bull, OIB, 85, 1976 : 481 až 488 a čs. autorské osvědčení č. 160324/.201 481 at a concentration of 6 to 9 million in 1 cm \ The vaccine was obtained by propagation of the Soviet production strain δ. 130 on malt agar, homogenizing the grown culture in saline and diluting the cell suspension to the above concentration of microconidia. The preparation is administered to animals at intervals of 10 to 14 days in doses ranging from .5 to 10 cm @ 3. Sarkisov: Prophylaxis specific to triehophyton des jeunes bovides. Bull, OIB, 85, 1976: 481-488 and U.S. Pat. Certificate No 160324 /.
Podstatou našeho vynálezu je výroba živé lyofilizované vakcíny proti trichofytóze skotu z kmene Triehophyton verrucosum, získaného na území ČSSB. Výroba vakcíny je realizována podle našeho technologického postupu tak, že výrobní kmen se pomnoží na tekutá Sabouraudově půdě, tekuté sladinkové půdě nebo na pevných půdách Sabeuraudově glukozovém agaru a sladinkovém agaru /půdy jsou obohaceny proti běžným předpisům o thiamin a kyselinu glutamovou/, provede se homogenizace narostlé kultury v prostředí pufrovaného fyziologického roztoku, přidá se pufrované lyofilizační méaium s neomycinem a mikroskopicky se stanoví počet mikrokonidií v jednotce vakcíny a na základě koncentrace mikrokonidií se provede rozplnění vakcíny tak, že jejich počet v 1 cm^ vakcíny je 10 až 20 milionů. Hozplněná . vakcína je zamražena na -40 °C a usušena v lyofilizačním zařízení.The essence of our invention is the production of live lyophilized vaccine against bovine trichophytosis from Triehophyton verrucosum strain obtained in the territory of the CSB. The production of the vaccine is carried out according to our technological process, so that the production strain is propagated on liquid Sabouraud soil, liquid sweet soil or on solid soils Sabeuraud glucose agar and sweeten agar (soil enriched against the usual thiamine and glutamic acid regulations). grown cultures in a buffered saline medium, buffered lyophilization medium with neomycin is added and the number of microconidia in a vaccine unit is microscopically determined and the vaccine concentration is filled to 10-20 million based on the concentration of microconidia. Hozplněná. the vaccine is frozen at -40 ° C and dried in a lyophilizer.
Lyofilizací stabilizovaný imunogenní kmen Triehophyton verrucosum se stává součástí tohoto vynálezu a je uložen v Čs. sbírce mikroorganismů - sbírce zoopatogenních mikroorganismů - Brno, třída Obránců míru 10, a to kultura Triehophyton verrucosum, kmen Bi-036-S /CCM-E-650/ používaná k výrobě československé vakcíny proti trichofytóze skotu, která byla izolována z telat postižených trichofytózou v JZD Strážnice okres Hodonín/. Kultivací na sladinkovém agaru se objevuje růst již 2,až 3· den po inokulaci. Povrch kultury je jasně bílý, bez pigmentů, střed kolonií je vyvýšený, okraje široce hvězdicovitě rozlézavé. Porost kultury určený k výrobě vakcíny /stáří 14 až 21 dnů/ pokrývá souvisle kultivační médium, je bílý, povrch je jemný, vláknitý, mírně rozrýhovaný. Při mikroskopickém vyšetřováni zjištujeme mikrokonidie /téměř kulaté, hruškovité nebo kyjovité, 1,5 až 2 x 2 až 5 ^urn \ velké/, makrokonidie /tenkostěnné kyjovité spory s četnými přepážkami, 4 až 6 x 10 až 50 velké/, mycelium a chlamydospory. Optimální pH pro růst a sporulaci je 6,0 až 6,9.The lyophilization-stabilized immunogenic strain Triehophyton verrucosum becomes part of this invention and is deposited in Cs. collection of microorganisms - collection of zoopathogenic microorganisms - Brno, Class of Defenders of Peace 10, namely the culture Triehophyton verrucosum, strain Bi-036-S / CCM-E-650 / used for the production of Czechoslovak vaccine against bovine trichophytosis isolated from District of Hodonín. Cultivation on malt agar shows growth as early as 2-3 days after inoculation. The surface of the culture is bright white, without pigments, the center of the colonies is raised, the edges are broadly star-shaped. The culture stand for vaccine production (14 to 21 days old) covers continuously the culture medium, is white, the surface is fine, fibrous, slightly scored. Microscopy reveals microconidia (almost round, pear or clublike, 1.5 to 2 x 2 to 5 µm large), macroconidia (thin-walled club spores with numerous baffles, 4 to 6 x 10 to 50 large), mycelium and chlamydospores . The optimum pH for growth and sporulation is 6.0 to 6.9.
Při pokusném ověřování účinnosti vakcíny proti trichofytóze skotu československého původu bylo dosaženo velmi dobrých výsledků /Komárek Surveillance dermatomykóz domácích zvířat 1976, 102 až 112, Čstav vet. osvěty Pardubice/. Při použiti vakcíny ve velkokapacil nich teletnících dosahoval léčebný efekt 98%, profylaktický 97,5% /Jaroš : Zkušenoeti s tlumením trichofytózy ve Velkokapacitním teletníku Trutnov, Veterinářství 26, 1976» 256/ Telata vakcinovaná profylaktickými dávkami a umístěná do zamořeného prostředí mezi skot postižený trichofytózou, touto chorobou neonemocněla. Při vakcinaci nemocných kusů došlo k jejich uzdravení. Vakcína je neškodná, při její aplikaci nedošlo u zdravých zvířat k on mocnění trichofytózou.Experimental verification of the efficacy of vaccine against bovine trichophytosis of Czechoslovak origin gave very good results / Komárek Surveillance of dermatomycoses of domestic animals 1976, 102 to 112, Nos. enlightenment Pardubice. When using the vaccine in large calves of calves, the therapeutic effect was 98%, prophylactic 97.5% / Jaroš: Experienced Trichophytosis Suppression in Large-calf Calf Trutnov, Veterinary 26, 1976 »256 / , she did not become ill with this disease. Vaccination of sick pieces led to their recovery. The vaccine is harmless, it was not potentiated by trichophytosis in healthy animals.
201 401201 401
Použití vakcíny proti trichofytóze skotu přináší značný ekonomický přínos, usnadnění práce veterinární služby a příznivý dopad má i na oblast zdravotnictví. Použití této vakoíny v chovech skotu vedlo již ke snížení zamořenoeti okresů, obcí a ohnisek v ČSR při porovnání epizootologické situace v roce 1977 a v roce 1978, jak je zřejmé z tabulky:The use of a vaccine against bovine trichophytosis brings considerable economic benefits, facilitates the work of the veterinary service and has a positive impact on the health sector. The use of this vacoin in cattle breeding has already led to a reduction in infestations of districts, municipalities and outbreaks in Czechoslovakia when comparing the epidemiological situation in 1977 and 1978, as can be seen from the table:
Podstata technologického postupu vynálezu spočívá v tom, že čs. výrobní kmen Trichophyton cerrucosum pomnožený na vhodném kultivačním médiu se homogenizuje v prostředí pufrovaného fyziologického roztoku po dobu 5 až 10 minut, přidá se pufrované lyofilizační médium s neomycinem v koncentraci 0,2 g/1, mikroskopicky se stanoví počet zárodků, urči se množství koncentrátu k rozplnění tak, aby počet mikrokonidií v 1 cm^ vakcíny byl 15+5 milionů, provede se rozplnění do lékovek a lyofilizace vakcíny. Vakcína je rozplněna do lékovek o obsahu 50 nebo 100 cm^ a ke každé lékovce je přibalen jako zřeáovač pufrovaný fyziologický roztok.The essence of the technological process of the invention lies in the fact that MS. the Trichophyton cerrucosum production strain propagated on a suitable culture medium is homogenized in a buffered saline medium for 5 to 10 minutes, buffered lyophilization medium with neomycin at a concentration of 0.2 g / l is added, the number of germs is determined microscopically, the amount of concentrate is determined filling so that the number of microconidia in 1 cm @ 2 of vaccine was 15 + 5 million, vialing and lyophilizing the vaccine were performed. The vaccine is dispensed into vials of 50 or 100 cc and buffered saline is added to each vial as a diluent.
Dávkování vakcíny je následující :The vaccine dosage is as follows:
a/ profylaktické dávky : 2 x 2,5 cm^ telatům 1 až 2 měsíčním 2x5 em^ skotu nad 2 měsíce b/ léčebné dávky : dvojnásobné dávky profylaktické podle stáří a kategorie zvířat,a) prophylactic doses: 2 x 2.5 cm ^ calves 1 to 2 months 2x5 em ^ cattle over 2 months b / treatment doses: twice the prophylactic doses according to age and animal category,
U zvířat silně postižených je možno použít bez obav ještě další revakcinační dávku.An additional revaccination dose can be used safely in animals severely affected.
Vakcína se aplikuje hluboko intramuskulárně v krajině bederní, křížové nebo stehenní, vakcinační dávka v levé, revakcinační dávka v pravé polovině těla zvířete. Mezi vakcinací a revakcinací je rozmezí 10 až 14 dnů.The vaccine is administered deep intramuscularly in the lumbar, sacral or thigh landscape, the vaccine dose in the left, the revaccination dose in the right half of the animal. There is a range of 10 to 14 days between vaccination and revaccination.
Příklady provedeníExamples
Příklad 1 - pomnožení výrobní kultury Trichophyton verrucosum ha Sabouraudově půdě - výroba 20.000 dávek vakcíny.Example 1 - Multiplication of Trichophyton verrucosum production culture in Sabouraud soil - Production of 20,000 doses of vaccine.
Jako pomnožovací půda se použije Sabouraudův roztok složení : 10 litrů destilované vody, 400 g maltózy, 100 g peptonu. PH se upraví na 6,6 až 6,9. Půda se autoklávuje po dobu 30 minut při tlaku 0,05 MPa. Potom se provede rozplnění půdy do Roux lahví obsahu 2 1 po 150 až 200 cm^ na láhev a další autoklávování při stejných poměrech. Po vychladnutí půdy se provede její inokulace kulturou Trichophyton verrucosum. Inekulum bylo připraveno ze 14 až 35 denní kultury Trichophyton verrucosum /výrobní kmen Bi-036-5/ pomnožené na pevné půdě. Porost kultury v celkovém množství asi 3 až 6 χ 1010 mikrokonidií byl homogenizován v 1000 cm^ puírovaného fyziologického roztoku v mixéru po dobu 5 až 10 minut. Do takto připraveného inokula bylo přidáno 0,2 g neomycinu. Inokulace byla prováděna injekční stři~ 8 kačkou tak, že na 1 kultivační láhev bylo použito 10 enr inokula /asi 3 až 6 x 10 mikro201481 konidií této houby/. Po 14 až 21 dnech růstu v temnu při teplotě 28 až 30 °C byla narostlá kultura z 5 až 6 lahví přemístěna do mixéru, přidáno 0,5 litru pufrovaného fyziologického roztoku a byla provedena homogenizace kultury po dobu 5 až 10 minut. Homogenní kultura byla filtrována přes gázu do zásobní láhve objemu 20 litrů, kam bylo přidáno pufrované lyofiliζβδηί médium ve stejném množství jako u pufrovaného fyziologického roztoku.Sabouraud's solution of 10 liters of distilled water, 400 g of maltose, 100 g of peptone is used as propagation medium. The pH is adjusted to 6.6 to 6.9. The soil is autoclaved for 30 minutes at 0.05 MPa. The soil is then dispensed into Roux 2 L bottles of 150 to 200 cm @ 3 per bottle and further autoclaved at the same ratios. After cooling, the soil is inoculated with Trichophyton verrucosum. The inoculum was prepared from a 14-35 day culture of Trichophyton verrucosum (production strain Bi-036-5) propagated on solid soil. The crop growth in a total amount of about 3 to 6 × 10 10 microconidia was homogenized in 1000 cm 3 of buffered saline in a mixer for 5 to 10 minutes. 0.2 g of neomycin was added to the inoculum thus prepared. Inoculation was carried out with a syringe by using 8 shots using 10 enr inoculum (about 3 to 6 x 10 micro201481 conidia of the fungus) per culture flask. After 14-21 days of dark growth at 28-30 ° C, the grown 5-6 bottle culture was transferred to a mixer, 0.5 L buffered saline was added, and the culture was homogenized for 5-10 minutes. The homogeneous culture was filtered through gauze into a 20 liter stock bottle to which buffered lyophilized media was added in the same amount as buffered saline.
Složeni pufrovaného fyziologického roztoku :Composition of buffered saline:
destilované voda 1000 cnp chlorid sodný p.a. 3 8 chlorid draselný p.a. 0,2 g sekundární fosforečnan sodný p,a. /12 HgO/ 2,38 g kyselý fosforečnan draselný p.a. 0,2 gdistilled water 1000 cnp sodium chloride p.a. 3 8 Potassium chloride p.a. 0.2 g secondary sodium phosphate p, a. (12 HgO) 2.38 g potassium phosphate acid p.a. 0.2 g
Složení pufrovaného lyofilizačního média :Composition of buffered lyophilization medium:
redestilovaná voda 1000 cm želatina pro bakt. 50 g sacharóza 75 g sekundární fosforečnan sodný p.a. /12 H^O/ 3,82 g kyselý fosforečnan draselný p.a. 0,36 gredistilled water 1000 cm gelatin for bacteria. 50 g sucrose 75 g secondary sodium phosphate p.a. (12 H 2 O) 3.82 g of potassium potassium phosphate p.a. 0.36 g
Do takto připraveného homogenizátu se přidává neomycin v koncentraci 0,2 g/1.Neomycin at a concentration of 0.2 g / l is added to the homogenate thus prepared.
Veškeré práce při výrobě vakcíny je nutno provádět za podmínek sterilního prostředí, materiál a potřeby použité k přípravě vakcíny musí být autoklávovány a před použitím opalovány nad plynovým kahanem. Ze zásobní láhve s homogenizátem vakcíny se odebere vzorek v množství asi 5 pro provedeni kontrolních zkoušek. Ve vzorku vakcíny je mikroskopicky stanoven počet mikrokonidií pomocí počítací komůrky dle Btlrkera. Na základě dosaženého výsledku je vypočten poměr rozplnění vakcíny tak, aby její koncentrace konečná' byla 15 + 5 milionů mikrokonidií na 1 cm^ vakcíny.All work on vaccine production should be done under sterile environmental conditions, and the material and supplies used to prepare the vaccine must be autoclaved and burnt over a gas burner before use. A sample of about 5 is taken from the vaccine homogenate stock bottle to perform control tests. The number of microconidia in a vaccine sample is microscopically determined using a Btlrker counting chamber. Based on the result obtained, the loading ratio of the vaccine is calculated so that its final concentration is 15 + 5 million microconidia per cm @ -1 of vaccine.
Vakcína je rozplněna do lékovek obsahu 50 nebo 100 cm}. Následuje zamražení na -40 °C nejméně po dobu 4 až 5 hodin a sušení v lyofilizačním zařízení po dobu 24 až 48 hodin s přihřivánim do 25 °C, Lyofilizaoe je ukončena tehdy, když teplota produktu dosáhne teploty sušícího kotle a nejméně 4 hodiny se nemění. Po ukončení sušení se vakuum v zařízení ruší dusíkem. Lékovky s usušenou vakcínou se uzavírají gumovými zátkami ve vakuu.The vaccine is dispensed into 50 or 100 cm vials. Following freezing to -40 ° C for at least 4 to 5 hours and drying in a lyophilizer for 24 to 48 hours with reheating to 25 ° C, the lyophilization is terminated when the temperature of the product reaches the temperature of the drying boiler and does not change for at least 4 hours . After drying, the vacuum in the apparatus is canceled with nitrogen. The dried vaccine vials are closed with rubber stoppers under vacuum.
Před upotřebením se lyofilizovaná vakcína ředí zřeďovačem. U lyofilizované vakcíny /Before use, the lyophilized vaccine is diluted with a diluent. For lyophilized vaccine /
jsou prováděny následující kontrolní zkoušky : zkouška čistoty a bakteriální sterility je prováděna výsevem vakcíny na krevní agar, masopeptonový agar, masopeptonový bujón, glukozový agar a Sabouraudův agar. Zjišlování bakteriální sterility při 37 °C trvalo po dobu 72 hodin a 7 dnů a při teplotě 20°0 9 dnů. Sledování nepřítomnosti cizích plísní na Sabouraudově agaru probíhalo po dobu 12 dní.při teplotě 28 až 30°C, Stanovení koncentrace vodíkových iontů se provádí na pH metru. Přípustné pH zředěné vakcíny je 6,0 až 7,5. Zkouška účinnosti se provádí stanovením počtu živých zárodků. Zjištuje se plotnovou metodou na Sabouraudově agaru. Vakcína musí obsahovat nejméně 10 až 20 milionů zárodků, živých zárod201 481 ků Trichophyton verrucosum v 1 cm3, Zkouška na vakuum se prováůí pomooí vysokofrekvenčního elektrického zkoušeče vakua. Zkouška neškodnosti se provádí na 2 králících váhy kolem 3 kg. Králíkům se aplikuje hluboko intramuskulárně 2,5 cm3 vakcíny do svaloviny zadní-končetiny. Šarže s nevyhovujícími parametry nejsou vhodné k imunizaci a je nutno je inaktivovat autoklávovánim.the following control tests are performed: the purity and bacterial sterility test is performed by sowing the vaccine on blood agar, masopepton agar, masopepton broth, glucose agar and Sabouraud agar. The determination of bacterial sterility at 37 ° C lasted for 72 hours and 7 days and at 20 ° C for 9 days. Monitoring of the absence of foreign fungi on Sabouraud agar was carried out for 12 days at a temperature of 28-30 ° C. The determination of hydrogen ion concentration was carried out at pH meter. The permissible pH of the diluted vaccine is 6.0 to 7.5. The potency test is performed by determining the number of viable germs. It is determined by the plate method on Sabouraud agar. The vaccine should contain at least 10 to 20 million germs live zárod201 481 ing Trichophyton verrucosum in 1 cm 3, to test the vacuum prováůí pomooí high-frequency electrical tester vacuum. The harmlessness test is carried out on 2 rabbits weighing around 3 kg. The rabbits are injected deeply intramuscularly with a 2.5 cm 3 vaccine into the hind limb muscle. Batches with unsatisfactory parameters are not suitable for immunization and must be inactivated by autoclaving.
Příklad 2 - pomnožení výrobní kultury Trichophyton verrucosum na tekuté sladinkové půdě obohacené thiaminem.Example 2 - Enhancement of Trichophyton verrucosum production culture on thiamine-enriched liquid wort broth.
Ke kultivaci kultury Trichophyton verrucosum je možno použít tekuté sladinkové půdy následujícího složení: 10 litrů destilované vody, 1 kg pevné sládinky získané sušením tekuté pivovarské sládinky v atomizéru, 50 g peptonu, 0,2 g thiaminu.For culturing the Trichophyton verrucosum culture liquid liquid soils of the following composition may be used: 10 liters of distilled water, 1 kg solid brew obtained by drying liquid brewing brew in an atomizer, 50 g peptone, 0.2 g thiamine.
Tato půda je autoklávována při tlaku 0,05 MPa po dobu 30 minut v autoklévu, pH je upraveno na 6,0 až 6,6 a je provedeno rozplnění půdy do Roux lahví objemu 2 litry po 150 až 200 cm3 na láhev. Po uzavření kultivačních lahví vatovými zátkami je provedeno autoklávování při stejných poměrech. Inokulace půdy se provede pomocí injekční stříkačky, na jed* Q nu kultivační láhev připadá asi 3 až 6 x 10 zárodků Trichophyton verrucosum. Kultivace probíhá v temné komoře při teplotě 28 až 30 °C. Po 14 až 21 dnech růstu je kultura přenesena do mixéru, kde je po dobu 5 až 10 minut homogenizována v prostředí pufrovaného fyziologického roztoku. Na 500 cm3 pufrovaného fyziologického roztoku připadá porost z 5 až 6 kultivačních lahví. Po ukončení homogenizace kultury je mixér propláchnut pufrovaným lyofilizačním médiem s neomycinem v koncentraci 0,2 g/1. Množství lyofilizačního média bylo stejné jako množství fyziologického roztoku. Počítáni zárodků v homogenizátu je prováděno mikroskopicky. Rozplnění vakcíny je prováděno na základě výpočtu tak, aby v 1 cm3 vakcíny bylo 15+5 milionů mikrokonidií Trichophyton verrucosum.This soil is autoclaved at a pressure of 0.05 MPa for 30 minutes in an autoclave, the pH is adjusted to 6.0-6.6 and the soil is filled into Roux bottles of 2 liters of 150-200 cm 3 per bottle. After closing the flasks with cotton plugs, autoclaving is performed at the same ratios. The inoculation of the soil is carried out with a syringe, with a 3 x 6 x 10 x Trichophyton verrucosum germ per flask. The cultivation takes place in a dark chamber at a temperature of 28 to 30 ° C. After 14-21 days of growth, the culture is transferred to a mixer where it is homogenized in a buffered saline medium for 5-10 minutes. Per 500 cm 3 of buffered saline, there are 5 to 6 culture flasks. After completion of the homogenization of the culture, the mixer is rinsed with 0.2 g / l of neomycin buffered lyophilization medium. The amount of lyophilization medium was the same as the amount of saline. The germ counting in the homogenate is performed microscopically. Vaccination is performed on the basis of a calculation so that there are 15 + 5 million microconidia of Trichophyton verrucosum per cm 3 of vaccine.
Zamražení a,lyofilizace rozplněného přípravku, jakož i kontrolní zkoušky byly prováděny stejně, jak je uvedeno v příkladě 1. Celkově bylo získáno 20000 dávek vakcíny proti trichofytóze skotu lyof.Freezing and lyophilization of the filled formulation as well as control tests were performed as described in Example 1. A total of 20,000 doses of lyof bovine trichophytosis vaccine were obtained.
Přiklad 3 - pomnožení výrobní kultury Trichophyton verrucosum na ředěném sladinkovém agaru obohaceném o thiamin a kyselinu glutamovou.Example 3 - Multiplication of Trichophyton verrucosum production culture on diluted wort agar enriched with thiamine and glutamic acid.
Jako živné médium byl použit sladinkový agar ředěný a obohacený o thiamin a kyselinu glutamovou v tomto složení : 10 litrů tekuté pivovarské sládinky, 5 litrů destilované vody., 225 g agaru, 75 g peptonu, 0,3 g thiaminu a 0,3 g kyseliny glutamové.The nutrient medium used was dilute and enriched malt agar enriched with thiamine and glutamic acid as follows: 10 liters of liquid brewery malt, 5 liters of distilled water, 225 g of agar, 75 g of peptone, 0.3 g of thiamine and 0.3 g of acid glutamic.
Médium bylo autoklévováno 30 minut při tlaku 0,05 MPa, pH upraveno na 6,0 až 6,6 a půda byla rozpínána asi po 400 cm3 do Roux lahví objemu 2 litry. Láhve byly uzavřeny vatovými zátkami a autoklávovány znovu při stejných poměrech. Po ztuhnutí média byly láhveThe medium was autoclaved at 0.05 MPa for 30 minutes, the pH adjusted to 6.0-6.6 and the soil expanded by about 400 cm 3 into 2 liter Roux bottles. The bottles were sealed with cotton plugs and autoclaved again at the same ratios. After the medium had solidified, the bottles were
201 481 přemístěny do komory s teplotou 28 až 30 °C, kde byly ponechány po dobu 5 až 9 dnů pro zjištění sterility média. Inokulace byla provedena injekční stříkačkou, na 1 kultivační láhev připadlo asi 3 až 6 x 10 mikrokonidií Trichophyton verrucosum. Po inokulaci byly láhve umístěny do temné komory s teplotou 28 až 30°C kultivačním médiem dolů. Po 1 až 2 dnech * po uchycení kultury k živnému médiu byly láhve obráceny kultivačním médiem vzhůru. Kultura byla každodenně makroskopicky prohlížena na nepřítomnost cizí flory. Po 14 až 21 dnech růstu byla narostlá kultura oddělena pomocí kovové kličky od kultivačního média a pomocí kovových motyček přemístěna do mixéru. Na 500 cm^ pufrovaného fyziologického roztoku byl použit porost ze 4 kultivačních lahví, doba homogenizace tohoto množství byla 5 až 10 minut. Homogenizát byl filtrován přes gázu do skleněné zásobní láhve objemu 20 litrů a proplachován pufrovaným lyofilizačním médiem s neomycinem v koncentraci 0,2 g/1. Celkové množství pufrovaného lyofilizačního; média bylo stejné jako celkové množství pufrovaného fyziologického roztoku. V získaném homogenizátu byl mikroskopicky v počítací komůrce dle Btirkera stanoven počet mikrokonidií. Na základě zjištěné hodnoty byl proveden výpočet poměru rozplnění vakcíny do lékovek obsahu 50 nebo 100 cm^ tak, aby hotový výrobek obsahoval; 15+5 milionů mikrokonidií v 1 cm\201,481 were transferred to a chamber at 28-30 ° C, where they were left for 5 to 9 days to determine the sterility of the medium. Inoculation was by syringe, per culture flask with about 3 to 6 x 10 microconidia of Trichophyton verrucosum. After inoculation, the bottles were placed in a dark chamber at 28-30 ° C with culture medium down. After 1 to 2 days after attachment of the culture to the nutrient medium, the flasks were inverted with the culture medium. The culture was examined macroscopically daily for the absence of foreign flora. After 14 to 21 days of growth, the grown culture was separated from the culture medium by means of a metal loop and transferred to a mixer using metal hoes. The growth from 4 culture flasks was used per 500 cm < 3 > of buffered saline, and the homogenization time was 5-10 minutes. The homogenate was filtered through gauze into a 20 liter glass bottle and rinsed with 0.2 g / L buffered lyophilization medium with neomycin. Total amount of buffered lyophilization; the medium was the same as the total amount of buffered saline. In the obtained homogenate, the number of microconidia was determined microscopically in a Btirker counting chamber. On the basis of the value determined, the ratio of the vaccine to 50 or 100 cm 2 vials was calculated to contain the finished product; 15 + 5 million microconidia in 1 cm \
Provedení zamražení a lyofilizace výrobku a kontrolních zkoušek je stejné, jak je uvedeno v příkladě 1.The freezing and freeze-drying of the product and the control tests are the same as in Example 1.
Výše popsaným způsobem se získá asi 16 000 dávek vakcíny proti trichofytóze skotu.About 16,000 doses of bovine trichophytosis vaccine are obtained as described above.
Veškeré práce při přípravě ihokula, při inokulaci, výrobě vakcíny, při jejím rozplňování a lyofilizaoi, jakož i při uzavírání lékovek, je nutno provádět sterilně. Sterilizace laboratoří je prováděna UV zářením a desinfekčními prostředky, roztoky a pomůcky potřebné k přípravě výrobku je nutno autoklávovat dvakrát po dobu 30 minut při tlaku 0,05 MPa. Eozplňování koncentrátu do lékovek před lyofilizaoi‘se děje v proudu laminérního sterilního vzduchu. Pracovníci jsou povinni při práci s kulturou Trichophyton verrucosum používat ochranné oděvy, gumové rukavice, obličejovou roušku a pokrývku hlavy. Použité kultivační půdy a ostatní pomůcky kontaminované kulturou Trichophyton verrucosum je nutno autoklávovat po dobu 1 hodiny při tlaku 0,2 MPa. Podobně se inaktivují nevyhovující šarže vakcíny, popřípadě prázdné lékovky po provedené vakcinaci v terénu.All work on the preparation of ihoculum, inoculation, vaccine production, filling and lyophilization, as well as closure of vials, should be done in a sterile manner. Laboratories are sterilized by UV radiation and disinfectants. The solutions and aids needed to prepare the product must be autoclaved twice for 30 minutes at 0.05 MPa. E-filling the concentrate into vials before lyophilizaoi‘se going in a stream of laminar sterile air. Workers are required to wear protective clothing, rubber gloves, a face mask, and a headgear when working with the Trichophyton verrucosum culture. Used culture broths and other aids contaminated with Trichophyton verrucosum must be autoclaved for 1 hour at 0.2 MPa. Similarly, inadequate batches of vaccine or empty vials are inactivated after vaccination in the field.
Přípravek má exspirační dobu 1 rok. Skladování přípravku je přípustné pouze při teplotě 4 °C a v temnu.The product has an expiry date of 1 year. The product should only be stored at 4 ° C and in the dark.
Claims (6)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS217579A CS201481B1 (en) | 1979-03-31 | 1979-03-31 | Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS217579A CS201481B1 (en) | 1979-03-31 | 1979-03-31 | Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS201481B1 true CS201481B1 (en) | 1980-11-28 |
Family
ID=5358115
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS217579A CS201481B1 (en) | 1979-03-31 | 1979-03-31 | Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS201481B1 (en) |
-
1979
- 1979-03-31 CS CS217579A patent/CS201481B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Eigelsbach et al. | Prophylactic effectiveness of live and killed tularemia vaccines: I. Production of vaccine and evaluation in the white mouse and guinea pig | |
| JP3040467B2 (en) | Inactivated mycoplasma hyopneumoniae bacterin and method of using the same | |
| CN102258776A (en) | Combined inactivated vaccine against mycoplasma hyopneumoniae (MHP) and mycoplasma hyorhinis and preparation method thereof | |
| US6585981B1 (en) | Temperature-sensitive live vaccine for Mycoplasma hyopneumoniae | |
| FI66122C (en) | SAETT ATT FRAMSTAELLA ETT VACCIN VILKET AER ANVAENDBART FOERPROFYLAX OCH BEHANDLING AV TRIKOFYTOS HOS PAELSDJUR OCH KAN NER FOERORSAKAD AV EN PATOGEN ORGANISM TRICHOPHYTON MENTAGR PHYTES | |
| RU1066074C (en) | Pseudomonose vaccine for fur-bearing animals, mainly, minks and method of producing the same and method of its prophylaxis | |
| RU2020959C1 (en) | Vaccine for prevention and treatment of dermatophytoses in animals | |
| CN101703769B (en) | Novel tetravalent inactivated vaccine for streptococcus suis disease | |
| US4229434A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
| CN113832068A (en) | Streptococcus strain and vaccine for preventing and treating swine streptococcosis | |
| CS201481B1 (en) | Live lyofilized vaccine against the horned cattle trichofytose | |
| CN116813718B (en) | Recombinant porcine circovirus 2 type Cap protein trimer, expression system and application thereof | |
| SU835446A1 (en) | Vaccine for specific prophylaxis and treatment of trichophytosis in fur-bearing animals and rabbits mentavak,method of vaccine preparation and use | |
| EP0135951B1 (en) | Method for production of an anti-mastitis polyvalent vaccine | |
| KR101210082B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
| CN104250623A (en) | Mycoplasma hyorhinis strain, vaccine composition, preparation method and application thereof | |
| US3843451A (en) | Microorganism production | |
| KR20120039113A (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
| US4770875A (en) | Process for preparation of improved mutant strain of Bordetella bronchiseptica useful for live attenuated vaccine for protection of B. bronchiseptica infection and live attenuated AR vaccine produced therefrom | |
| US4287179A (en) | Immersion vaccine for enteric redmouth | |
| Sotoodehnia et al. | The comparision of two anthrax spore vaccines prepared with sterne 34F2 and native C5 strains in sheep and goats in Iran | |
| CA1067824A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
| RU2253467C1 (en) | Dermatophitosis prevention and treatment vaccine for veterinary and medical use | |
| RU2727766C1 (en) | Method for producing an inactivated animal dermatophytosis vaccine | |
| CS246791B1 (en) | Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production |