CS246791B1 - Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production - Google Patents
Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production Download PDFInfo
- Publication number
- CS246791B1 CS246791B1 CS230285A CS230285A CS246791B1 CS 246791 B1 CS246791 B1 CS 246791B1 CS 230285 A CS230285 A CS 230285A CS 230285 A CS230285 A CS 230285A CS 246791 B1 CS246791 B1 CS 246791B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- vaccine
- culture
- strain
- trichophyton
- avirulent
- Prior art date
Links
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims description 61
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 title claims description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title description 16
- 208000002474 Tinea Diseases 0.000 claims description 14
- 206010067409 Trichophytosis Diseases 0.000 claims description 14
- 241000893966 Trichophyton verrucosum Species 0.000 claims description 11
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 10
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 9
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 claims description 8
- 241000223238 Trichophyton Species 0.000 claims description 5
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 5
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims description 5
- 229940055035 trichophyton verrucosum Drugs 0.000 claims description 5
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 claims description 4
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 claims description 4
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 claims description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 3
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 claims description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 3
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims description 2
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 claims description 2
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000002045 lasting effect Effects 0.000 claims 2
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 claims 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 claims 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 claims 1
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 claims 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 11
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 8
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 7
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 6
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 5
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 5
- 244000309466 calf Species 0.000 description 5
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 4
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 3
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 3
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 3
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 3
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000700198 Cavia Species 0.000 description 2
- WHUUTDBJXJRKMK-VKHMYHEASA-N L-glutamic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-VKHMYHEASA-N 0.000 description 2
- 239000006159 Sabouraud's agar Substances 0.000 description 2
- 206010039509 Scab Diseases 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000011088 parchment paper Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000012770 revaccination Methods 0.000 description 2
- 239000012449 sabouraud dextrose agar Substances 0.000 description 2
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 2
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 229920000298 Cellophane Polymers 0.000 description 1
- 229920000742 Cotton Polymers 0.000 description 1
- 239000001828 Gelatine Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N Thiamine Natural products CC1=C(CCO)SC=[N+]1CC1=CN=C(C)N=C1N JZRWCGZRTZMZEH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000000680 avirulence Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000006161 blood agar Substances 0.000 description 1
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 description 1
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 229960002989 glutamic acid Drugs 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 230000036074 healthy skin Effects 0.000 description 1
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 1
- -1 hydrogen ions Chemical class 0.000 description 1
- GPRLSGONYQIRFK-UHFFFAOYSA-N hydron Chemical compound [H+] GPRLSGONYQIRFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 1
- 244000144972 livestock Species 0.000 description 1
- 239000013028 medium composition Substances 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 238000009304 pastoral farming Methods 0.000 description 1
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000000069 prophylactic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011321 prophylaxis Methods 0.000 description 1
- 238000013094 purity test Methods 0.000 description 1
- 208000017520 skin disease Diseases 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 1
- 230000028070 sporulation Effects 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N thiamine Chemical compound CC1=C(CCO)SCN1CC1=CN=C(C)N=C1N KYMBYSLLVAOCFI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960003495 thiamine Drugs 0.000 description 1
- 235000019157 thiamine Nutrition 0.000 description 1
- 239000011721 thiamine Substances 0.000 description 1
- 230000004580 weight loss Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
Vynález se týká avírulentní vakcíny proti trichofytóze skotu a způsobu její výroby. Vakcína je určena k profylaxi trichofytózy skotu.The present invention relates to an avululent vaccine against bovine trichophytosis and to a process for its manufacture. The vaccine is intended for the prophylaxis of cattle trichophytosis.
TriChofytóza skotu je kožní onemocnění, postihující především mladý skot do stáří jednoho roku. Průměrný měsíční počeí_ zvířat, postižených touto nákazou, se v ČSSR pohyboval v letech 1970 až 1976 kolem 10 tisíc až 14 000 kusů, což způsobilo našemu národnímu hospodářství velké ztráty. Po zavedení plošné vakcinace telat v roce 1976 se počet ohnisek trichofytózy i počet nemocných zvířat každoročně výrazně snížil, až koncem roku 1983 se podařilo tuto nákazu v ČSSR jako prvnímu státu na světě v chovech skotu utlumit. Hlavní podíl na utlumení trichofytózy skotu u nás měla nesporně vakcína proti trichofytóze skotu živá Iyofilizovaná (čs. autorské osvědčení číslo 201 481J. Vakcína je připravena ze živého silně virulentního kmene Trichophyton verrucosum, takže při její výrobě, kontrole a praktickém použití dochází k ohrožení zdraví lidí a při nesprávné aplikaci i zdraví zvířat. Podobné nevýhody přináší i sovětská vakcína LTF-130 (čs. autorské osvědčení č. 160 324), která obsahuje živý virulentní kmen Trichophyton faviforme. Vakcína, vyvinutá polskými autory (patent PLR čísloTriChofytosis of cattle is a skin disease affecting mainly young cattle up to the age of one year. The average monthly number of animals affected by this disease in the Czechoslovakia ranged from 1970 to 1976 around 10 thousand to 14 000 pieces, which caused our national economy large losses. After the introduction of blanket vaccination of calves in 1976, the number of outbreaks of trichophytosis and the number of sick animals decreased significantly each year, until the end of 1983 the disease was managed in the Czechoslovakia as the first country in the world in cattle breeding. The main contributor to the control of bovine trichophytosis in the Czech Republic was undoubtedly a live vaccine against bovine trichophytosis (Iyophilized). and in the case of improper application and animal health, the Soviet vaccine LTF-130 (US Patent No. 160,324), which contains a live virulent strain Trichophyton faviforme, is similarly disadvantaged.
100 953), je sice připravena z virulentního kmene Trichophyton verrucosum, který má však oproti uvedeným výrobním kmenům a našim avirulentním kmenům CCM F-751 a CCM F-764 podstatně nižší výtěžnost. Také doba expirace polské vakcíny (4 týdny) je v porovnání s naší avirulentní vakcínou podstatně kratší (doba expirace naší vakcíny je 1 rokj.100 953), although it is prepared from the virulent strain Trichophyton verrucosum, which, however, has a significantly lower yield compared to the production strains and our avirulent strains CCM F-751 and CCM F-764. Also the expiration time of the Polish vaccine (4 weeks) is considerably shorter compared to our avirulent vaccine (the expiration time of our vaccine is 1 year).
Předmět našeho vynálezu, avirulentní vakcína proti trichofytóze skotu, zamezuje riziku ohrožení zdraví zvířat a velmi pravděpodobně i lidí, neboť je vyrobena z avirulentního kmene Trichophyton verrucosum. Oproti dříve vyráběné naší i zahraniční vakcíně představuje vakcína kvalitativně vyšší stupeň tohoto výrobního produktu. Také způsob její výroby je oproti předchozím zjednodušen a zkvalitněn. Přitom bylo v pokusech na telatech a morčatech prokázáno, že protekční vlastnosti avirulentní vakcíny jsou plně srovnatelné s vakcínou, připravenou z virulentního kmene T. verrucosum.The object of our invention, avirulent vaccine against bovine trichophytosis, avoids the risk to animal and, most likely, to human health, since it is made from an avirulent strain of Trichophyton verrucosum. Compared to the previously produced Czech and foreign vaccine, the vaccine represents a qualitatively higher level of this product. The method of its production is also simplified and improved compared to the previous ones. Experiments on calves and guinea pigs have shown that the protective properties of an avirulent vaccine are fully comparable to those obtained from a virulent strain of T. verrucosum.
Avirulentní kmen Trichophyton verrucosum CCM F-751, který je součástí vakcíny, se vyznačuje rychlejším růstem, rychlejším nástupem tvorby mikrokonidií, vyšší sporulací a vyšší schopností přežívat lyofilizaci než virulentní kmen T. verrucosum CCM F-650, který je obsažen ve vakcíně proti tri246791 chofytóze skotu živé lyofilizované (čs. autorské osvědčení č. 201 481). Tyto vlastnosti a především vyšší výtěžnost kmene M-9A, umožňují použít k výrobě vakcíny mladší kulturu od lldenního stáří, což usnadňuje technologii výroby (možnost použití ředěného kultivačního média, menší denzity inokula, kratší doby homogenizace kultury, zastavení menšího množství mikrokonidií v jednotce objemu vakcíny apod. j. Zároveň dochází i ke zvýšení produktivity práce.The avirulent strain Trichophyton verrucosum CCM F-751, which is part of the vaccine, is characterized by faster growth, a faster onset of microconidial formation, higher sporulation and higher ability to survive lyophilization than the virulent strain T. verrucosum CCM F-650 contained in the tri246791 chophytosis vaccine. Live bovine livestock (cf. author's certificate no. 201 481). These features, and in particular the higher yield of the M-9A strain, make it possible to use a younger culture from one day of age to manufacture the vaccine, facilitating production technology (diluted culture medium, lower inoculum density, shorter culture homogenization times) etc. j. At the same time there is an increase in labor productivity.
Podobnými vlastnostmi, jako kmen M-9A, se vyznačuje též avírulentní kmen T. verrucosum TV-M-8 (= CCM F-764), který je možno také použít k výrobě vakcíny.Similar properties to strain M-9A are also characterized by the avululent strain T. verrucosum TV-M-8 (= CCM F-764), which can also be used to produce a vaccine.
Podstatou našeho vynálezu je avírulentní vakcína proti trichofytóze Skotu a způsob její výroby. Avírulentní vakcína proti trichofytóze skotu se vyznačuje tím, že obsahuje 2,5 až 10 miliónů životaschopných mikrokonidií avirulentního kmene Trichophyton verrucosum Bodin 1902 CCM F-751 nebo CCM F-764 v 1 cm3 zředěné vakcíny. Způsob výroby se vyznačuje tím, že avírulentní kmen T. verrucosum se pomnožuje na vhodné živné půdě při pH = 6,6 až 6,9 po dobu 11 až 18 dnů, při teplotě 26 až 28 °C, narostlá kultura se homogenizuje ve sterilním ochranném médiu, rozplní se do lékovek a lyofilizuje.The present invention is based on an avululent vaccine against bovine trichophytosis and a process for its manufacture. The avianulent vaccine against bovine trichophytosis is characterized by containing 2.5 to 10 million viable microconidia of the avirulent strain Trichophyton verrucosum Bodin 1902 CCM F-751 or CCM F-764 per cm 3 of the diluted vaccine. The production method is characterized in that the virulent strain of T. verrucosum is propagated on a suitable medium at pH = 6.6 to 6.9 for 11 to 18 days, at a temperature of 26 to 28 ° C, the grown culture is homogenized in a sterile protective medium, filled into vials and lyophilized.
Zkušenosti sovětských autorů ukazují, že po přerušení vakcinace v oblastech, kde byla trichofytóza skotu utlumena, došlo opět ke vzplanutí této nákazy. Původce onemocnění, houba Trichophyton, je schopný přežívat ve stájovém prostředí po dobu 7 až 10 let při zachování patogenity. Proto se doporučuje provádět vakcinaci všech narozených telat po dobu 10 let od vyléčení posledně nakaženého zvířete v chovu.The experience of Soviet authors shows that after the interruption of vaccination in areas where cattle trichophytosis has been suppressed, the infection has again started. The disease agent, the fungus Trichophyton, is able to survive in the stable environment for 7 to 10 years while maintaining pathogenicity. Therefore, it is recommended to vaccinate all calves born for 10 years after the healing of the last infected animal on the holding.
Vakcinace skotu avírulentní vakcínou proti trichofytóze má významnou přednost z epidemiologického hlediska, neboť zamezuje vnášení živých viruletních elementů T. verrucosum do chovů hospodářských zvířat, jak je tomu při očkování telat vakcínou, připravenou ze silně virulentního kmene T. verrucosum (T. faviforme). V místě vpichu virulentní vakcíny dochází totiž ke vzniku krusty o průměru 1 až 3 cm, která se může stát potenciálním zdrojem nákazy pro vnímavá zvířata a pro člověka, protože obsahuje infekční houbové elementy. Po vakcinaci avírulentní vakcínou k vytvoření uvedených krust nedochází; kultivačním vyšetřením pokožky v místě vpichu vakcíny nebyl vakcinační kmen prokázán.Vaccination of cattle with virulent trichophytosis vaccine is of epidemiological importance since it prevents the introduction of live viruletous T. verrucosum elements into livestock farming, as is the case with calves vaccinated with a vaccine prepared from a highly virulent T. verrucosum strain (T. faviforme). This is because a virulent vaccine injection site develops a crust of 1 to 3 cm in diameter, which can become a potential source of infection for susceptible animals and for humans because it contains infectious fungal elements. No such crusts are formed after vaccination with the virulent vaccine; culture of the skin at the site of injection of the vaccine showed no vaccine strain.
Praktické využití avírulentní vakcíny proti trichofytóze skotu vytváří předpoklad pro udržení beznákazového stavu v našich chovech skotu pokud jde o trichofytózu a zároveň i předpoklad pro snížení výskytu trichofytózy u lidí. Otevírají se také možnosti nabídky tohoto přípravku zahraničním odběratelům.The practical use of avululent vaccine against bovine trichophytosis creates a prerequisite for maintaining the disease-free state in our cattle breeding as regards trichophytosis and at the same time a prerequisite for reducing the incidence of trichophytosis in humans. There are also opportunities to offer this product to foreign customers.
Použitím avirulentního kmene se sníží náklady na dezinfekční prostředky, které by bylo nutné vynaložit při výrobě virulentní vakcíny a při její praktické aplikaci.The use of an avirulent strain will reduce the cost of disinfectants that would have to be incurred in producing a virulent vaccine and in its practical application.
Způsob vakcinace zvířat avírulentní vakcínou je stejný jako u vakcíny proti trichofytčze skotu živé lyofilizované (AO číslo 201 481); aplikace dvou dávek hluboko intramuskulárně v krajině bederní nebo křížové s intervalem 10 až 14 dnů mezi vakcinací a revakcinací. Vakcinaci doporučujeme provádět v levé a revakcinací v pravé polovině těla. Profylaktické dávky pro telata stáří 1 až 3 měsíce jsou dvakrát 2,5 cm3 a u skotu nad 3 měsíce dvakrát 5 cm3 vakcíny.The method of vaccinating animals with a virulent vaccine is the same as that of live lyophilized cattle trichophyte vaccine (AO No. 201 481); administration of two doses deep intramuscularly in the lumbar or cruciform region with an interval of 10 to 14 days between vaccination and revaccination. Vaccination is recommended in the left and revaccination in the right half of the body. Prophylactic doses for calves aged 1 to 3 months are twice 2.5 cm 3 and for cattle over 3 months twice 5 cm 3 vaccine.
Příklad 1Example 1
IAND
Příprava 160 000 dávek vakcínyPreparation of 160,000 doses of vaccine
Pomnožení výrobní kultury probíhá na živné půdě následujícího složení: 10 litrů čerstvé pivovarské sladinky, 30 1 destilované vody, 600 g agaru, 200 g petonu, 800 mg thiaminu a 800 mg kyseliny L-glutamové. Sterilizace probíhá při přetlaku 60 až 80 kPa po dobu 30 minut. Koncentrace vodíkových iontů živné půdy je upravena na pH 6,6 až 6,9. Ředěný sladinkový agar je rozlit asi po 300 cm3 do kultivačních lahví dle Rouxeho o obsahu 2 litrů. Láhve s živnou půdou, uzavřené vatovými zátkami obalenými pergamenovým papírem nebo celofánem, jsou opět outoklávovány při přetlaku 60 až 80 kPa po dobu 30 minut. Pro potvrzení mikrobiální sterility jsou kultivační láhve se ztuhlým živným médiem inkubovány po dobu 3 až 5 dnů v termostatu při +37 °C.The propagation of the production culture takes place on a nutrient medium of the following composition: 10 liters of fresh brewers, 30 l of distilled water, 600 g of agar, 200 g of petone, 800 mg of thiamine and 800 mg of L-glutamic acid. Sterilization is carried out at an overpressure of 60 to 80 kPa for 30 minutes. The hydrogen ion concentration of the broth is adjusted to a pH of 6.6 to 6.9. Diluted wort agar is poured about 300 cm 3 into 2 liter Roux culture flasks. The flasks with broth, closed with cotton plugs wrapped with parchment paper or cellophane, are again outoclaved at 60 to 80 kPa overpressure for 30 minutes. To confirm microbial sterility, the culture flasks with solidified nutrient medium are incubated for 3 to 5 days in a thermostat at +37 ° C.
K inokulaci živné půdy je použito inokulum výrobního kmene CCM F-751 (nebo CCM F-764), udržované v lyofilizovaném nebo ve zmrazeném stavu. Inokulace se provádí' pipetovací stříkačkou, na jednu kultivační láhev použijeme 2 až 20X107 životaschopných vegetativních forem, aplikovaných v 10 cm3 fyziologického roztoku. Inokulum je nutno ihned po inokulaci rozmístit po celém povrchu živné půdy krouživými pohyby kultivačních lahví. Inkubace výrobní kultury probíhá při teplotě +26 až +28 °C v poloze kultivačních lahví živným médiem dolů. 11 až 18denní kultura výrobního kmene je oddělena pomocí kovových kliček a motyček od živné půdy a homogenizována v homogenizátoru. K homogenizaci porostu ze 2 až 4 kultivačních lahví použijeme 1 litr ochranného média (500 cm3 fyziologického roztoku + 500 cm3 lyofilizačního média složení: destilovaná voda 1 litr, želatina pro bacto 50 g, sacharóza 75 g). Doba homogenizace při postupném zvyšování počtu otáček homogenizátoru (6 500 až 10 000 otáček za min) je 3 až 5 minut. Koncentrát vakcíny je filtrován přes gázu do zásobní láhve. V odebraném vzorku koncentrátu je mikroskopicky určen počet mikrokonidií a podle zjištěných hodnot jsou pak určeny dávky pro rozplnění koncentrátu vakcíny tak, aby výsledná koncentrace byla 2,5 až 10 miliónů mikrokonidií v 1 cm3.The inoculum of the production strain CCM F-751 (or CCM F-764) maintained in a lyophilized or frozen state is used to inoculate the culture broth. Inoculation is by pipetting syringe, using 2 to 20X10 7 viable vegetative forms applied per 10 cm 3 of saline per culture flask. Immediately after inoculation, the inoculum should be distributed over the entire surface of the culture medium by circular movements of the culture flasks. Incubation of the production culture takes place at a temperature of +26 to +28 ° C in the position of the culture flasks downwards. The 11 to 18-day culture of the production strain is separated from the broth with metal loops and hoes and homogenized in a homogenizer. Use 1 liter of preservation medium (500 cm 3 of saline + 500 cm 3 of lyophilization medium composition: distilled water 1 liter, gelatine for bacto 50 g, sucrose 75 g) to homogenize the stand from 2 to 4 cultivation bottles. The homogenization time for a stepwise increase in the speed of the homogenizer (6,500 to 10,000 rpm) is 3 to 5 minutes. The vaccine concentrate is filtered through gauze into a storage bottle. The number of microconidia in the collected concentrate sample is microscopically determined and the doses determined for filling the vaccine concentrate are determined to a final concentration of 2.5 to 10 million microconidia per cm 3 .
Koncentrát vakcíny je rozplněn do lékovek obsahu 20 cm3 a zmrazen po dobu alespoň 6 až 12 hodin při teplotě —40 -C nebo 4 až 8 hodin při teplotě —50 °C. Pvní fáze sušení v lyofilizačním zařízení probíhá při maximální teplotě desek 4 -50 °C a maximální teplotě produktu 0 CC po dobu 6 až 15 hodin. Při druhé fázi sušení (18 až 30 h) je maximální teplota desek -(-28 CC a maximální teplota produktu -j- 25 °C. Sušení je ukončena, když dojde k souběhu křivek teploty desek a materiálu po dobu 12 až 14 hodin. Lékovky s usušenou vakcínou jsou uzavírány gumovými zátkami ve vakuu a zajíšEují se hliníkovými pertlemi.The vaccine concentrate is dispensed into vials of 20 cm 3 and frozen for at least 6-12 hours at -40 ° C or 4-8 hours at -50 ° C. The first drying stage in the lyophilizer is carried out at a maximum plate temperature of 4-50 ° C and a maximum product temperature of 0 ° C for 6 to 15 hours. In the second drying phase (18 to 30 h), the maximum plate temperature is - (- 28 ° C and the maximum product temperature is -25 ° C.) Drying is terminated when the plate and material temperature curves coincide for 12 to 14 hours The dried vaccine vials are closed with rubber stoppers under vacuum and are sealed with aluminum caps.
Výroba vakcíny probíhá v podmínkách sterilního prostředí, materiálu a pomůcek.The vaccine is manufactured under conditions of sterile environment, material and equipment.
Lyofilizovaná vakcína se těsně před použitím ředí zřeďovačem A (pufrovaný fyziologický roztok].The lyophilized vaccine is diluted with diluent A (buffered saline) immediately prior to use.
S vakcínou jsou prováděny tyto kontrolní zkoušky:The following control tests are carried out with the vaccine:
1. Zkouška čistoty kultury a bakteriální sterility se provádí s 0,5 cm3 vakcíny a jejím rozočkováním na krevním agaru, masopeptonovém agaru, masopeptonovém bujónu, glukózovém agaru a Sabouraudově agaru. Zkouška bakteriální sterility je posuzována po dobu 72 h (Petriho misky la 7 dnů (zkumavky) při teplotě -j-37 °C a po dobu 9 dnů při teplotě +20 °C (zkumavky). Zkouška čistoty kultury je ukončena po 10 dnech inkubace při teplotě +26 až +28 °C.1. The culture purity and bacterial sterility test shall be carried out with 0,5 cm 3 of vaccine and seeded on blood agar, masopepton agar, masopepton broth, glucose agar and Sabouraud agar. The bacterial sterility test is assessed for 72 h (Petri dishes and 7 days (test tubes) at -j-37 ° C and for 9 days at + 20 ° C (test tubes). The culture purity test is terminated after 10 days of incubation. at +26 to +28 ° C.
2. Zkouška neškodnosti vakcíny se provádí očkováním 3 cm3 vakcíny dvěma králíkům (hmotnost 2,5 až 3,5 kg) hluboko intramuskulárně. Po aplikaci vakcíny nesmí v průběhu 14 dnů doiít k úhynu ani místním či celkovým změnám zdravotního stavu zvířat.2. The vaccine harmlessness test is carried out by inoculating 3 cm 3 of the vaccine to two rabbits (2.5 to 3.5 kg) deep intramuscularly. No death or local or general changes in animal health may occur within 14 days after vaccine administration.
3. Zkouška aVirulence vakcíny. Do oholené skarafikované zdravé pokožky tří morčat (hmotnost 250 až 350 g) se vetře na plochu asi 3X4 cm 0,2 cm3 vakcíny. Po inokulaci nesmí dojít v místě aplikace k vytvoření typických trichofytických lézí. Doba pozorování: 14 dnů.3. Test aVirulence of the vaccine. Inject into a shaved, scarified, healthy skin of three guinea pigs (250-350 g) to an area of about 3 x 4 cm 0.2 cm 3 vaccine. Typical trichophytic lesions must not develop at the injection site after inoculation. Observation period: 14 days.
4. Zkouška účinnosti vakcíny stanovením počtu životaschopných vegetativních forem výrobního kmene. Provádí se výsevem ředěné vakcíny (ředění 10~5 a 10 6) na Sabouraudův agar s následným počítáním narostlých kolonií výrobního kmene po 9 dnech inkubace při +-26 až +28 °C. Zkouška účinnosti je vyhovující, obsahuje-li 1 cm3 zředěné vakcíny 2.5 až 10xl0s životaschopných vegetativních forem výrobního kmene.4. Vaccine efficacy assay by determining the number of viable vegetative forms of the production strain. This is done by sowing the diluted vaccine (10 -5 and 10 6 dilutions) on Sabouraud agar followed by counting the grown production strain colonies after 9 days incubation at + -26 to +28 ° C. The potency test is satisfactory if it contains 1 cm 3 of the diluted vaccine 2.5 to 10x10 with viable vegetative forms of the production strain.
'5. Stanovení koncentrace vodíkových iontů se provádí měřením pH na pH-metru. pH vakcíny je 6,0 až 7,5.'5. The determination of the concentration of hydrogen ions is carried out by measuring the pH on a pH meter. The pH of the vaccine is 6.0 to 7.5.
6. Stanovení zbytkové vlhkosti lyofilizátu: maximální přípustná hodnota je do 3 %. Zjistí se z úbytku hmotnosti lyofilizátu po vysušení.6. Determination of residual moisture of the lyophilisate: the maximum permissible value is up to 3%. It is determined from the weight loss of the lyophilisate after drying.
7. Zkouška na vakuum se provádí pomocí vysokofrekvenčního elektrického zkoušeče vakua. Vakuum je vyhovující, je-li tlak menší než 2,66 Pa.7. The vacuum test shall be carried out by means of a high-frequency electrical vacuum tester. The vacuum is satisfactory if the pressure is less than 2.66 Pa.
Příklad 2Example 2
Příprava vakcíny s použitím jednoduchého lyofilizačního médiaPreparation of the vaccine using a simple lyophilization medium
Jako kultivační médium je použit agar se sladinovým extraktem (Imuna, n. p, Šarišské Michalany). Sterilizace živné půdy a její rozplnění proběhlo stejně jako v příkladu 1. Inokulace živného média výrobním kmenem CCM F-751 (nebo CCM F-764) se provádí v množství 2 až 20X107 životaschopných vegetativních forem na jednu kultivační láhev. Kultura je inkubována při teplotě +26 až +28 °C. Kultivační láhve s pomnožující se kulturou jsou každodenně prohlíženy a makroskopicky je hodnocena čistota kultury. Kultivace je ukončena po 11 až 18 dnech růstu. Kultura narostlá ve dvou až čtyřech kultivačních lahvích je homogenizována v prostředí 500 cm3 protektivního lyofilizačního média (7,5% nebo 15% roztok sacharózy v destilované vodě) a suspenze je přelita přes řídkou gázu do zásobní láhve. Zásobní láhev s vakcínou je uzavřena gumovou zátkou s pergamenovými papíry a umístěna na 24 hr.din do chladné místnosti při +2 až +8 CC, nebo umístěna po dobu několika dnů do mrazící místnosti při teplotě —18 CC. Po uvedené době je podle výsledků zkoušek čistoty kultury a bakteriální sterility (viz shora) koncentrát vakcíny rozplněn, zmrazen a Iyofilizován. Rozplnění koncentrátu je provedeno tak, aby v 1 cm3 vakcíny po zředění bylo 2,5 až 10 miliónů mikrokonidií.Malt extract agar (Imuna, n. P, Saris Michalany) is used as culture medium. Sterilization of the nutrient broth and filling was performed as in Example 1. Inoculation of the nutrient broth with CCM F-751 (or CCM F-764) production strain is performed in an amount of 2 to 20X10 7 viable vegetative forms per culture flask. The culture is incubated at a temperature of +26 to +28 ° C. Cultivation flasks with a growing culture are inspected daily and the purity of the culture is evaluated macroscopically. Cultivation is complete after 11 to 18 days of growth. The culture grown in two to four culture flasks is homogenized in 500 cm 3 of protective lyophilization medium (7.5% or 15% sucrose solution in distilled water) and the suspension is poured over a thin gauze into a stock bottle. The vaccine bottle is sealed with a rubber stopper with parchment paper and placed for 24 hrs in a cold room at +2 to +8 ° C, or placed in a freezer at -18 ° C for several days. according to the results of culture purity and bacterial sterility tests (see above), the vaccine concentrate was filled, frozen and lyophilized. Dilution of the concentrate is carried out so that there are 2.5 to 10 million microconidia in 1 cm 3 of vaccine after dilution.
Tímto způsobem dojde k úspoře lyofilizační kapacity, protože je zkrácena doba sušení lyofilizátu, je rozplněno menší množství koncentrátu vakcíny do lékiovek a nepoužívá se kontaminovaná vakcína k lyofilizaci. Počet dávek výrobku ze stejného množství kultivačního média je přitom stejný jako v příkladu 1.In this way, the lyophilization capacity is saved because the drying time of the lyophilisate is shortened, a smaller amount of the vaccine concentrate is filled into the vials and the contaminated vaccine is not used for lyophilization. The number of batches of product from the same amount of culture medium is the same as in Example 1.
Zmrazení a lyofilizace vakcíny probíhá při stejných poměrech, jak je uvedeno v příkladě 1. Po skončeném sušení jsou lékovky uzavřeny ve vakuu a provedou se zkoušky u vakcíny stejně jako v příkladu 1.Vaccine freezing and lyophilization are performed at the same ratios as described in Example 1. After drying, the vials are vacuum sealed and tested for vaccine as in Example 1.
Doba expirace vakcíny je 12 měsíců od ukončení kontrolních zkoušek při dodržení zásad uchovávání biopreparátů (v temnu, suchu, při teplotě +2 až +8 °C).The period of expiration of the vaccine is 12 months from the completion of the control tests, in compliance with the principles of storage of organic products (in the dark, dry, at a temperature of +2 to +8 ° C).
Claims (7)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS230285A CS246791B1 (en) | 1985-03-29 | 1985-03-29 | Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS230285A CS246791B1 (en) | 1985-03-29 | 1985-03-29 | Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS246791B1 true CS246791B1 (en) | 1986-11-13 |
Family
ID=5359750
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS230285A CS246791B1 (en) | 1985-03-29 | 1985-03-29 | Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS246791B1 (en) |
-
1985
- 1985-03-29 CS CS230285A patent/CS246791B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| HU183765B (en) | Process for producing lyophilized vaccine against duck hepatitis | |
| FI66122C (en) | SAETT ATT FRAMSTAELLA ETT VACCIN VILKET AER ANVAENDBART FOERPROFYLAX OCH BEHANDLING AV TRIKOFYTOS HOS PAELSDJUR OCH KAN NER FOERORSAKAD AV EN PATOGEN ORGANISM TRICHOPHYTON MENTAGR PHYTES | |
| Buchanan et al. | Immunity to gonococcal infection induced by vaccination with isolated outer membranes of Neisseria gonorrhoeae in guinea pigs | |
| US3853990A (en) | Infectious kerating bacterin and antiserum and method of preparing same | |
| DE2360118B2 (en) | Piglet colibacillosis vaccine | |
| Collier | The preservation of vaccinia virus | |
| US4229434A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
| US4472378A (en) | Live vaccine for the prevention of salmonellosis in water fowl, a process for making and applying the same | |
| RU2099084C1 (en) | Vaccine for control over streptococcosis and pasteurellosis in nutria | |
| CS246791B1 (en) | Avirulent vaccine against trichofytozis of cattle and method of its production | |
| SU835446A1 (en) | Vaccine for specific prophylaxis and treatment of trichophytosis in fur-bearing animals and rabbits mentavak,method of vaccine preparation and use | |
| KR101210082B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
| EP0135951B1 (en) | Method for production of an anti-mastitis polyvalent vaccine | |
| KR101209964B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
| US5198214A (en) | Anti-mastitis polyvalent vaccine, method of administration and method for production thereof | |
| CN106822888A (en) | PPR, goatpox bigeminal live vaccine and its production method | |
| US3843451A (en) | Microorganism production | |
| RU2099081C1 (en) | Method of preparing the vaccine for streptococcosis prophylaxis in nutria | |
| CA1067824A (en) | Vaccine for prophylaxis of trichophytosis in horse and method of preparing same | |
| RU2099083C1 (en) | Method of preparing the vaccine for control over streptococcosis and pasteurellosis in nutria | |
| RU2763991C1 (en) | Vaccine against infectious atrophic rhinitis and pasterellosis in pigs inactivated, method for its preparation | |
| RU2799603C1 (en) | Sa-21 strain of bacteria of streptococcus genus of streptococcus agalactiae species for the manufacture of biological products for the specific prevention of mastitis in cows | |
| RU2741643C1 (en) | Associated vaccine against myxomatosis, pasteurellosis and viral haemorrhagic disease 1 and type 2 of rabbits | |
| CZ279278B6 (en) | Vaccine against trichophytosis of fur animals and p rocess for preparing thereof | |
| NO138215B (en) | PROCEDURE FOR PREPARING A PREPARATION OF TRICHOPHYTOSE PROFESSIONAL IN CATTLE |