CN1748143A - 表达人cd20和/或cd16的转基因小鼠 - Google Patents

Abstract

本发明在通常意义上涉及表达人细胞标志物(包括CD20和/或优选CD16)的非－人转基因动物。

Description

表达人CD20和/或CD16的转基因小鼠

本申请已于2003年12月11日以如下名义申报PCT国际专利申请：健泰科公司，该公司是一家美国国家公司和居民(除美国之外所有国家的申请人)；安德鲁.C-Y.陈，美国公民与居民(仅对美国的申请人)；龚谦，中国公民与美国居民(仅对美国的申请人)；与弗莱维厄斯·马丁，罗马尼亚公民与美国居民(仅对美国的申请人)；本申请指定所有国家，并要求如下优先权：美国临时申请序列号60/434,115，于2002年12月16日提交；与美国临时申请序列号60/476,481，于2003年6月5日提交。

背景技术

T与B细胞两者包含可以被用作分化与识别标志的细胞表面蛋白。一种这样的人B细胞标志是人B淋巴细胞限制的分化抗原Bp35，又名″CD20″。CD20在早期前B细胞发育期间表达，并且保持直到浆细胞分化。人们相信CD20分子调节激活过程中对细胞周期起始和分化所必需的一个步骤，并且通常在肿瘤B细胞上以非常高水平表达。

CD20存在于正常的B细胞以及恶性的B细胞两者上，恶性B细胞的强劲增殖可以导致B细胞淋巴瘤。因此，CD20表面抗原有作为用特异于该抗原的抗体导向B细胞的候选物的可能性。这些抗CD20抗体特定地与正常和恶性的B细胞的CD20细胞表面抗原结合，导致B细胞的破坏与消减。具有破坏肿瘤的潜力的化学试剂或者放射性标记可以被偶联到抗CD20抗体上，以致于该药物被特异地递送给肿瘤B细胞。

通过利用单克隆抗体导向CD20已经被描述(参见，例如Weiner，Semin.Oncol.，26，43-51(1999)；Gopal与Press，J.Lab.Clin.Med.，134，445-450(1999)；White et al.，Pharm.Sci.Technol.Today，2，95-101(1999))。Rituxan^TM是一嵌合的抗CD20单克隆抗体，已经被广泛地作为单个的药剂和与化学疗法一起用于具有新诊断的和复发的淋巴瘤的病人(Davis et al，J.Clin.Oncol.，1851-1857(1999)；Solal-Celigny et al.，Blood，94，摘要，2802(1999)；Foran et al.，J.Clin.Oncol.，18，317-324(2000)。利用放射性同位素标记的抗体偶联物也已经被描述(例如，Bexxar^TM；Zelenetz et al.，Blood，94，摘要2806(1999))。

抗体抗原复合物与免疫系统细胞的交互作用导致多种反应，从效应子功能例如抗体依赖的细胞毒性、肥大细胞脱颗粒与噬菌作用，到免疫调节信号例如调节淋巴细胞增殖与抗体分泌。所有这些交互作用是通过抗体的Fc结构域或者免疫复合物与造血细胞上的特异的细胞表面受体结合而起始的。现在非常明确地确认，由抗体与免疫复合物触发的细胞反应的多样性是Fc受体(FcRs)结构的不均一性(heterogeneity)造成的。

这些受体中的一组，FcγRs，被发现存在于造血谱系的大多数细胞上，并且介导与IgG的高亲合力和低亲合力结合(参见，例如，美国专利号5,877,396，在此引入作为参考)。高亲合力受体，FcγRI，结合单体IgG，并仅仅在巨噬细胞与嗜中性白细胞上表达。它能够响应与抗体交联而介导抗体依赖的细胞介导的细胞毒性(ADCC)与噬菌作用。IgG的低亲合力受体，FcγRII与FcγRIII(CD16)，负责效应细胞对免疫复合物的反应，并且代表主要涉及体内炎性反应的FcγRs。FcγRII在造血细胞上广泛地表达，并在B细胞上作为抑制性的受体起作用，而在髓样谱系细胞上及在血小板上，当被免疫复合物交联时，FcγRII触发ADCC、吞噬作用与炎症介质的释放。FcγRIII在各式各样的白细胞上表达，包括自然杀伤(NK)细胞、巨噬细胞、嗜中性白细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性白细胞与肥大细胞，并且当被免疫复合物交联时介导效应器反应。介导那些细胞上的所有的抗体依赖的反应的是自然杀伤细胞上唯一的FcR。自然杀伤细胞是具有自发性的细胞毒的淋巴细胞的亚群，该细胞溶解性破坏肿瘤细胞，而无明显的抗原特异性或者由组织相容性分子导致的限制。除这些已明确表征的效应细胞通路之外，FcγRIII已在未成熟的胸腺细胞上被发现，在这一细胞中其被假定在早期胸腺细胞发育中起作用。

CD16与免疫球蛋白Fc部分的其它受体一起(例如FcγFcyRI、FcγRII、FcγRI)，在介导自体免疫与炎性反应中发挥重要作用。利用抗CD16单克隆抗体的研究已经确定这个受体在将免疫复合物从循环中去除与在介导ADCC中的作用(参见例如Van de Winkel et al.，Immunol.Today，14，215-221(1993))。IgG与CD16的结合引发NK/LGL细胞活化，并触发ADCC。在高水平可溶性CD16存在时ADCC可以暂停。

已发现(参见Mathiot et al.，J.Clin.Immunol.，13，41-8(1993))，可溶性CD16的水平在患有多发性骨髓瘤的病人中与健康志愿者相比较显著地减少。另外，观察到可溶性CD16阶段依赖性减少，在阶段I与阶段II+III骨髓瘤病人中具有高度显著的差异。因此，血清中可溶性CD16的测量既是骨髓瘤的诊断标志也是预后标志，可以对确定和指导疾病的新的免疫调节治疗有用处。

已经更进一步地发现，CD16存在于人血清及其它体液中，并且在炎症位点是升高的(参见Fleit et al.，Blood，79，2721-8(1992))。似乎有至少两种形式的人CD16，类型A与类型B。CD16-A主要地在巨噬细胞、自然杀伤细胞与大的颗粒淋巴细胞(NK/LGL)表面上表达，而CD16-B主要地在嗜中性白细胞与单核细胞表面上表达。

尽管CD20和CD16在人淋巴瘤与重要免疫反应诱导上具有显著的作用，缺乏共表达人标志物的动物模型。因此，需要有关的动物模型以进行疾病研究与药物研发。

发明概述

本发明通常地涉及表达人细胞标志物—特别地是CD16与CD20的—非自然发生的非人转基因动物。一方面，转基因动物提供鉴定与测试对于与CD20有关的疾病或者病症，例如癌症的新治疗剂的系统。在一个实施方式中，转基因动物对测试针对CD20的治疗的效力与毒性是有用处的。

本发明提供非自然发生的转基因动物，其基因组包含编码异源的CD20，优选人CD20的核苷酸序列。核苷酸序列优选地与人内源启动子可操作地连接，其中人CD20在B淋巴细胞表面上表达。在一个实施方式中，人CD20转基因鼠特征为：人CD20在细胞上的表达水平足以使与表达细胞结合的抗人CD20抗体影响细胞的杀伤，引起至少大约75％、和更优选80％、85％、90％、95％、99％并且甚至100％外周的和/或循环B细胞的B细胞消减。

在本发明的一个具体实施例中，该非自然发生的非人转基因动物的基因组更进一步地包含编码异源FcγIII受体，优选人CD16，和优选人CD16α链的核苷酸序列。该核苷酸序列优选与人内源的启动子可操作地连接，其中异源的受体在白细胞表面上表达，所述白细胞包括一个或多个下列细胞：自然杀伤(NK)细胞、巨噬细胞、嗜中性白细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性白细胞、胸腺细胞与肥大细胞。

根据一个优选实施方式，当动物基因组包含同源内源基因(CD20或CD16，或者其两者)，该基因被破坏或者剔除，以致内源的分子在细胞表面上不表达。

本发明更进一步地提供鉴定能治疗B细胞淋巴瘤的药剂的方法，其中该方法包含给予在B淋巴细胞上表达人CD20的转基因动物一种药剂，并且确定B淋巴细胞数目是否有减少。发明也提供鉴定能消减或者杀死表达人CD20的细胞的方法，包含给予表达人CD20的转基因动物一种药剂，并且确定像这样的细胞的数目是否有减少。更进一步提供根据这样的方法鉴定的药剂。

本发明的动物模型也可以被用于鉴别能诱导效应细胞反应，例如ADCC或者NK细胞介导的免疫反应的药剂。在给予该药剂之后，可以通过例如确定细胞因子水平的增减监视该动物的免疫反应。在给予该药剂之后细胞因子水平增加鉴定出该药剂诱导Fc-介导的效应细胞反应。也可利用合适的标记或者标志评估推定的药剂与CD16的结合。此外，通过在给药一种药剂后比较在CD20⁺转基因动物与CD16⁺CD20⁺转基因动物中B细胞消减，可以筛选该药剂经由CD16介导的免疫反应影响表达人CD20的B细胞(包括恶性细胞)消减的能力。本发明的动物也通过对目前描述的转基因动物给药，而对评估抗-CD20治疗的毒性有用。

治疗特异性，毒性与效力还可以通过将该药剂的效果与在野生型动物或者未处理过的转基因动物中的效果比较而确定。本发明的非人转基因动物可以更进一步提供向人给药的特定的药剂的安全性指示。例如，可以将人源化的抗体或者其它的药剂给予该转基因动物，并且作为该人源化抗体或者药剂的人体内利用的安全性与耐受性的指示、监视作为将该药剂投药给该动物的结果的任何毒性或者副作用。那些可以在短期基础上出现的不利情况包括头痛、感染、发热、寒战、疼痛、恶心、无力、咽炎、腹泻、鼻炎、灌输反应、与肌痛。短期不利情况是处理后数天内计量的。长期的副作用包括某些细胞类型的细胞毒、血小板减少导致的出血、由于炎性和/或变态反应导致的介质释放、对免疫系统的抑制和/或抗治疗剂抗体的激发、终端器官毒性、与感染或者恶性肿瘤发生率增加。长期的不利情况是处理后数月内计量的。

本发明另一个方面涉及确定抗-CD20药剂效力的方法。通过向一组具有人CD20和/或人CD16α链的转基因动物给予一系列剂量的该药剂、确定导致携带人CD20细胞的减少的药剂的至少一个剂量而确定效力。

附图说明

图1显示来源于无转基因(Tg-)、转基因杂合的(Tg+/-)和纯合的(Tg+/+)小鼠的小鼠B220⁺细胞中人CD20的表达。

图2提供在B细胞分化与成熟期间各种细胞表面标志物(CD43、IgM、IgD)表达的示意图。在Tg+小鼠中，hCD20在前-B(pre-B)、未成熟的B细胞与成熟B细胞上表达。

图3显示根据骨髓B细胞上人CD20表达筛选Tg+小鼠的结果。细胞用偶联到FITC的抗-人CD20(BD Pharmingen)染色。用B220与CD43的存在门化(gate)该细胞允许划分成B细胞的各种的群体。为进行门化，细胞用偶联到PerCP的抗-B220抗体(BD Pharmingen)与偶联到PE的抗-CD43抗体(荧光，BD Pharmingen)染色。

图4显示筛选Tg+小鼠脾B细胞人CD20表达的结果。细胞用偶联到FITC的抗-人CD20(BD Pharmingen)染色。用B220与CD21门化该细胞允许划分成B细胞的各种的群体。为进行门化，细胞用偶联到PerCP的抗-B220抗体(BD Pharmingen)与偶联到PE的抗CD21抗体(荧光，BD Pharmingen)染色。在T1区、边缘区与T2/滤泡区发现带有人CD20的B细胞。

图5显示筛选Tg+小鼠肠系膜淋巴结B细胞人CD20表达的结果。细胞用偶联到FITC的抗-人CD20(BD Pharmingen)染色。用B220与CD21门化该细胞允许划分成B细胞的各种的群体。为进行门化，细胞用偶联到PerCP的抗-B220抗体(BD Pharmingen)与偶联到PE的抗CD21抗体(荧光，BD Pharmingen)染色。

图6显示筛选Tg+小鼠派伊尔斑B细胞人CD20表达的结果。细胞用偶联到FITC的抗-人CD20(BD Pharmingen)染色。用B220与CD38门化该细胞允许划分成B细胞的各种的群体。为进行门化，细胞用偶联到PerCP的抗-B220抗体(BD Pharmingen)与偶联到PE的抗CD38抗体(荧光，BDPharmingen)染色。带有人CD20的B细胞是成熟B细胞与生发中心的细胞。

图7是一示意图，示意将抗-人CD20单克隆抗体给药给Tg+小鼠，并且分析具有人CD20细胞的存在或者缺少。在第0天给予单一剂量1毫克的抗-人CD20单克隆抗体。在第-1、1、2、3、4、7、14与21天从各种组织取样品。如同以前描述经过FACS分析来自不同组织例如外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑的样品。也监视抗-CD20单克隆抗体的血清水平。

图8显示在用抗-人CD20单克隆抗体m2H7(BD Pharmingen)处理的转基因小鼠中外周B细胞的消减。如同在图7简图中的概括以总计1mg的剂量将抗体给予转基因小鼠。如同以前描述地进行门化在外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑上做FACS分析。

图9显示用抗-人CD20单克隆抗体m2H7处理过的转基因小鼠中成熟外周淋巴结B细胞的消减。如同在图7简图中的概括以总计1mg的剂量将抗体给予转基因小鼠。如同以前描述地进行门化在外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑上做FACS分析。

图10显示用抗-人CD20单克隆抗体m2H7处理的转基因小鼠中脾T2与滤泡的B细胞的消减。如同在图7简图中的概括以总计1mg的剂量将抗体给予转基因小鼠。如同以前描述地进行门化在外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑上做FACS分析。

图11显示用抗-人CD20单克隆抗体m2H7处理过的转基因小鼠中再循环成熟B细胞的消减。如同在图7简图中的概括以总计1mg的剂量将抗体给予转基因小鼠。如同以前描述地进行门化在外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑上做FACS分析。

图12显示在用抗人CD20单克隆抗体m2H7处理过的转基因小鼠中成熟B细胞的消减与派伊尔斑生发中心B细胞对消减的抵抗。如同在图7简图中的概括以总计1mg的剂量将抗体给予转基因小鼠。如同以前描述地进行门化在外周血、脾、淋巴结、骨髓、与派伊尔斑上做FACS分析。

图13显示用抗-CD20单克隆抗体给药后B细胞的消减与恢复。在第1天给予小鼠抗体。在抗体处理后第6天，表达人CD20的B细胞在外周血液中检测不到。在第6周，抗体刚一清除，hCD20+细胞开始被检测到。到第14周，B细胞似乎已经恢复到正常水平。恢复来自前体B细胞，该细胞不表达CD20而且然后随后发展成为具有人CD20+的成熟B细胞。

图14显示FACS图，指示脾生发中心B细胞对短期抗-CD20单克隆抗体治疗的抵抗。小鼠在第1天由腹膜内注射用绵羊红细胞(SRBC)非免疫或者免疫以在脾中诱导生发中心。生发中心在第7天出现。在第8天，一组小鼠用抗-CD20抗体m2H7处理。对照组的小鼠用mIgG2a同种型对照抗体处理。在第12天对来自小鼠的脾细胞进行分析。使用对生发中心染色的PNA(花生凝集素)。在未用SRBC免疫的小鼠脾中没有见到可检测的生发中心细胞，而免疫小鼠脾显示0.3％的PNA染色细胞。尽管T2/滤泡的B细胞被用抗-CD20抗体处理消减，脾中边缘中心B细胞对抗体是有抗性的。

图15显示在用抗-CD20单克隆抗体处理过的小鼠与对照中不依赖T细胞的反应。小鼠用m2H7或者同种型对照抗体mIgG2a在第0天处理。在第3-7天，B细胞消减已经发生。在第7天，小鼠用肺炎链球菌IV静脉注射以诱导对多糖的反应。在第11天建立不依赖T细胞的反应。结果显示，用抗-人CD20m2H7处理不影响来自边缘区与B1细胞的B细胞反应，即非消减的边缘区与B1B细胞给予对T-非依赖的抗原的保护。

图16显示BR3与2H7抗体处理在Tg⁺小鼠效应上的比较。表达编码人CD20的细菌人工染色体的人CD20转基因小鼠(命名为hCD20⁺小鼠)用抗CD20单克隆抗体(在第9天以100微克单一剂注射)，BR3-Fc(从第1天至第12天，每隔一天100微克)，或者抗-CD20单克隆抗体与BR3-Fc的组合进行腹膜内注射进行处理。每组包括4只小鼠。最后一次注射后两天，将小鼠杀死，分析hCD20⁺B细胞。针对B细胞标志(CD21⁺CD23⁺)对脾、血、淋巴结与派伊尔斑进行FACS分析。抗-CD20单克隆抗体治疗消减T2与滤泡的B细胞，然而并非脾中的边缘区B细胞，而BR3-Fc处理在脾中降低T2/滤泡的与边缘区B细胞。

图17显示在派伊尔斑上抗-CD20单克隆抗体处理效应的缺乏。表达编码人CD20的细菌人工染色体的人CD20转基因小鼠(命名为hCD20⁺小鼠)用抗CD20单克隆抗体(在第9天单一剂注射100微克)、BR3-Fc(从第1天至第12天、每隔一天100微克)、或者抗-CD20单克隆抗体与BR3-Fc的组合进行腹膜内注射进行处理。每组包括4只小鼠。最后一次注射后两天，将小鼠杀死，分析hCD20⁺B细胞。针对B细胞标志(CD21⁺CD23⁺)对脾、血、淋巴结与派伊尔斑进行FACS分析。BR3-Fc、2H7以及两者的组合对派伊尔斑中的生发中心B细胞都没有影响。

图18显示长期抗-CD20单克隆抗体处理后浆细胞未被消减。人CD20阳性的转基因Tg+小鼠用抗-人CD20mH27抗体如同以前描述地进行处理。通过检测骨髓与脾中对于syndican(CD-138浆细胞标志)阳性的细胞分析小鼠中浆细胞的存在或者缺乏。在抗-人CD20处理之后也监视IgA或者IgM阳性的浆细胞的数目。结果表明在Tg+小鼠中浆细胞不受抗-人CD20抗体处理的影响，指示Tg+小鼠仍然具有产生抗体的能力。

图19显示用PK-136单克隆抗体在Tg⁺小鼠中消减自然杀伤细胞。产生PK-136单克隆抗体(特异针对小鼠NK1.1)的杂交瘤克隆从ATCC获得。分别用对照单克隆抗体、PK-136、抗-CD20单克隆抗体与PK-136/抗-CD20的组合腹膜内注射给四组人CD20转基因小鼠。腹膜内注射给予的剂量如下：

对照单克隆抗体：200μg/ip，3ip/周，共1周

PK-136：200μg/ip，3ip/周，共1周

抗-CD20单克隆抗体：10μg/ip，单一剂量

用抗体处理后分析来自外周血，肝脏与脾的自然杀伤细胞。数据用平均数+/-标准误差来表示，n＝8。

图20表明自然杀伤细胞在Tg⁺小鼠的2H7介导的B细胞消减中起作用。产生PK-136单克隆抗体(特异针对小鼠NK1.1)的杂交瘤克隆从ATCC获得。四组人CD20转基因小鼠腹膜内分别注射对照单克隆抗体、PK-136、抗-CD20单克隆抗体与PK-136/抗-CD20的组合。腹膜内注射给予的剂量如下：

对照单克隆抗体：200μg/ip，3ip/周，共1周

PK-136：200μg/ip，3ip/周，共1周

抗-CD20单克隆抗体：10μg/ip，单一剂量

在抗-CD20单克隆抗体腹膜内注射3天后分析来自外周血的、淋巴结与脾的淋巴细胞。数据用平均数+/-标准误差来表示，n＝8。

图21显示在转基因小鼠不同细胞群体中人CD20与人CD16的表达。来自CD20Tg-/Cd16Tg-(对照小鼠)、CD20Tg+/CD16Tg-、CD20Tg-/CD16Tg+、与CD20Tg+/CD16+小鼠的血细胞用标记有FITC的标记抗-人CD20抗体、偶联至PerCP的抗-B220抗体与用PE标记的抗-人CD16抗体(BDPharmingen)染色，用FACS分析。结果表明在B细胞上发现人CD20，并且在缺乏B220标记、因而不是B细胞的细胞上发现人CD16。对于两个标记均呈阳性的转基因小鼠显示两种细胞群体。

图22A显示人CD16α链同种型A的代表性氨基酸序列(SEQ ID NO：1)(GenBank登记号NM 000569)、的cDNA(SEQ ID NO：2)(GenBank登记号NM 000569)(图22B)与人CD16α链同种型A的基因组DNA序列(SEQ ID NO：3)(GenBank登记号Z46222)(图22C)。图22D显示小鼠CD16α链(GenBank登记号码NM010188)代表性DNA序列(SEQ ID NO：9)。图22E显示人CD16α链同种型B代表性氨基酸顺序(SEQ ID NO：10)和cDNA序列(SEQ ID NO：11)(GenBank登记号码NM 000570)。图22F显示编码人CD16α链同种型B的代表性基因组序列(SEQ ID NO：12)(GenBank登记号码Z46223)。图22G显示编码鼠CD16α链的cDNA序列(SEQ ID NO：13)(GenBank登记号码NM010188)。

图23A显示人CD20的氨基酸序列(SEQ ID NO：4)(GenBank登记号码BC 002807)、人CD20cDNA序列(图23B)(SEQ ID NO：5)(GenBank登记号码BC002807)与人CD20的基因组序列(SEQ ID NO：6)(GenBank登记号码AH005353)(图23C)。图23D显示鼠CD20的代表性cDNA序列(SEQ ID NO：14)(GenBank登记号码M62541)。

图24显示比较人CD16Tg^-小鼠与人CD16Tg⁺小鼠中人CD16的表达。细胞用偶联至PE的抗-人CD16(BD Pharmingen)染色，也用抗-DX5-FITC(BDPhanningen)染色以鉴定NK细胞，或用偶联至APC(别藻蓝蛋白)的抗-F4/80鉴别巨噬细胞。结果表明在人CD16Tg⁺小鼠NK与巨噬细胞中都表达人CD16转基因。

图25显示人Fc受体γ链氨基酸(GenBank登记号码P30273)(SEQ IDNO：7)和cDNA序列(GenBank登记号码M33915)(SEQ ID NO：8)。

图26显示用FACS分析在巨噬细胞上小鼠CD16表达的存在或者缺少。来自缺乏鼠CD16(CD16^-/-)小鼠与来自具有鼠CD16(CD16^+/-)的对照小鼠的外周血细胞用抗-小鼠CD16抗体染色。利用抗-mac1抗体门化细胞对于巨噬细胞标志物mac-1的表达。

图27显示用FACS分析来自CD16-/-小鼠外周血细胞上小鼠CD64表达的存在或者缺乏。CD64是FcγRI，并且这个受体在小鼠细胞上的表达表明其它的Fc受体的表达不受FcγRIII(CD16)α链敲除的影向。来自缺乏鼠CD16小鼠(CD16-/-)与来自同种型对照小鼠的外周血细胞用抗-小鼠CD64抗体染色。利用抗-mac 1抗体门化细胞对于巨噬细胞标志物mac-1的表达。

图28显示与人外周血细胞上CD20表达比较，在来自人CD20转基因小鼠的外周血细胞上人CD20表达的表达水平的代表性比较。外周血细胞获自人供体和来自hCD20Tg+小鼠，并且用标记的抗-人CD20抗体(mH27)染色。细胞用FACS分析，门化人CD19+和B220+群体。在图上的数字表示平均荧光强度。

发明详述

以下术语除非另外规定具有在下面对其所赋予的含义。

术语″构建物″或者″导向构建物″指包含导向区的多核苷酸分子。导向区包含基本上与靶组织、细胞或者动物中的内源序列同源的序列，使得该导向构建物能向靶组织基因组整合。典型的，导向构建物也包括特别感兴趣的基因或者核酸序列、标记基因与合适的控制序列。

术语″CD16″或者″FcγRIII″可互换使用，并且指IgG免疫球蛋白Fc部分的细胞表面受体蛋白。这个受体是对于IgG的低亲合力受体，并且优先地与免疫复合物中的IgG结合。FcγRIII由作为配体结合链的α链与同二聚体或者杂二聚物组成。当FcγRIII在巨噬细胞上表达时，α链与γ链的同二聚体相结合。当FcγRIII在NK细胞上表达时，a链通过δ链与γ链的杂二聚体相联系。γ链参与FcγRIII的细胞表面表达。“自然发生的CD16″具有获得自自然的细胞表面受体蛋白质的氨基酸顺序，并且包括自然发生的变体形式包括等位基因的变体、同种型与截短的形式。人CD16包括α链的所有的同种型包括CD16或FcγIII-A(GenBank登记号码Z46222)和CD16或者FcγRIII-B(GenBank登记号码Z46223)。FcγRIII的α链代表性氨基酸与核苷酸序列在图22A/B/C/D/E中显示。人γ链的代表性序列示于图25(GenBank登记号码P30273与M33195)。本发明也考虑CD16或者FcγRIII变体。与源序列比较起来，变体经过普遍已知的技术加以改变，并且优选保有自然发生的人CD16或者FcγRIII的生物活性。FcγRIII的一些变体为本领域技术人员所已知。

术语″CD20″指在免疫系统的某些细胞上表达的细胞表面蛋白，特定地是B淋巴细胞-限制的分化抗原Bp35。″自然发生的CD20″具有获得自自然的蛋白质的氨基酸序列，并且包括自然发生的变体例如等位基因变体、同种型与截短的形式。更特别地，″CD20″包括人CD20(AH003353；GenBank登记号码M27395，J03574)。代表性的人与鼠CD20的氨基酸序列、cDNA序列与基因组序列示于图23。本发明也考虑CD20变体。与源序列比较起来，变体经过普遍已知的技术加以改变，并且优选保有自然发生的人CD20的生物活性。优选该变体不是在自然发生的人CD20氨基酸位置170与172改变，因为这些位置已经被证明是如Polyak et al.，Blood 99：3256(2002)中所描述的被几个不同抗-人CD20单克隆抗体所识别的表位的一部分。

当一DNA片段定位于内源同源序列并且与内源的同源序列重组时发生基因的″破坏″。这些序列破坏或者修饰可以包括DNA序列的插入、错义、移码、缺失、或者取代或者替换，或者其任何组合。插入包括插入整个的基因，其可能是动物、植物、真菌的、昆虫、原核的、或者病毒来源。破坏，例如，可以经过部分地或者完全地抑制它的生产或者经过增强正常的基因产物的活动改变正常的基因产物。在一优选实施方式中，该破坏是一没有该基因的显著表达的无效破坏(null discruption)。

术语″内源的位点″意味着包括在将变成转基因的宿主动物中发现的天然存在的基因位点。

术语″异源的″当与多肽或者基因联合使用时指具有一氨基酸序列的多肽或编码多肽的DNA，所述多肽或氨基酸序列在转基因非人宿主动物中未找到的。因此，具有人CD20基因的转基因小鼠可以被描述为具有异源的CD20基因。可以利用种种的方法包括PCR、蛋白质印迹、或者Southern印迹检测转基因。术语″人内源的启动子″指与编码将被引入动物以形成转基因动物的人蛋白质的多核苷酸序列有自然联系的启动子。

“术语非人动物″意图包括任何脊椎动物例如哺乳动物、鸟类、爬行动物、与两栖动物。合适的哺乳动物包括啮齿类动物、非人灵长类动物、羊、狗与母牛。合适的鸟类包括鸡、鹅与火鸡。优选的非人动物是从啮齿科包括大鼠和小鼠中选出来的，最优选小鼠。

术语″自然发生″或者″自然相关的″如同在这里应用于一对象时所使用的指一对象可以在自然中被发现这一事实。例如，存在于一可以从自然来源分离的有机体(包括病毒)、并且没有被人在实验室中有意地修饰的一多肽或者多核苷酸序列是自然发生的。

对于核酸而言，术语″基本上同源″指两个核酸或者其中指定的序列，当最佳地比对并且与合适的核苷酸插入或者删除相比较时彼此具有至少大约80％序列同一性，更优选大约81％序列同一性，更优选大约82％序列同一性，更优选大约83％序列同一性，更优选大约84％序列同一性，更优选大约85％序列同一性，更优选大约86％序列同一性，更优选大约87％序列同一性，更优选大约88％序列同一性，更优选大约89％序列同一性，更优选大约90％序列同一性，更优选大约91％序列同一性，更优选大约92％序列同一性，更优选大约93％序列同一性，更优选大约94％序列同一性，更优选大约95％序列同一性，更优选大约96％序列同一性，更优选大约97％序列同一性，更优选大约98％序列同一性，以及更加优选大约99％序列同一性。或者，当该片段在选择性杂交条件下与互补链杂交时存在基本的同源。比对两序列并且鉴定同一性百分比的方法为本领域技术人员所熟知。已有几种用于测定同一性百分比的计算机程序。为了确定核酸序列同一性百分比而进行的比对可以以本领域范围内的多种方式取得，例如，利用公众可以得到的计算机软件例如BLAST、BLAST-2、ALIGN、ALIGN-2或者Megalign(DNASTAR)软件。本领域技术人员可以判定用来测量比对的合适的参数，包括任何对所比较的序列全长达最大比对所需要的算法。

″转录调节序列″指多核苷酸序列，例如起始信号、增强子、与启动子，其诱导或者控制与其可操作连接的蛋白质编码序列的转录。在优选方案中，重组转基因的转录在启动子序列(或者其它的转录调节序列)的控制之下，所述启动子在预期表达的细胞类型中控制重组基因表达。也应该理解，重组基因可以在转录调节序列控制之下，所述转录调节序列与那些控制自然发生的形式的CD20或CD16转录的序列相同或者不同。

如同在这里使用的，术语″转基因″指一个核酸序列(编码，例如，CD20或者CD16)，该序列已经经由人的干预例如经由在这里描述的方法被引入细胞。转基因对其将要被引入的转基因动物或者细胞而言可以是部分地或者完全异源的，即外来的。转基因可以包括一或多个转录调节序列与任何其它核酸，该核酸可能是对所选择的核酸最佳表达所需的，例如内含子。

转基因动物″或″Tg+″可互换地使用，意图包括任何非自然发生的非人动物，其中该动物的一个或多个细胞包含异源核酸，该异源核酸已经经由人的干预例如经过本领域已熟知的转基因技术被引入、并编码人CD20和/或优选人CD16。该核酸经由有意的遗传操纵，例如经过显微注射或者用重组病毒感染，被直接地或者间接地引入该细胞的前体而使核酸引入该细胞。术语遗传操纵未包括经典的杂交育种，而宁可说针对重组DNA分子的引入。这个分子可能被整合入染色体，或者其可以是染色体外复制的DNA。术语″Tg+″包括对于人CD20和/或人CD16而言杂合的和/或纯合的动物。

″CD20相关的疾病″指疾病或者紊乱，该疾病或者紊乱已经被与CD20在细胞上表达、B细胞的异常增殖或者活化联系起来，或者已经用抗-CD20抗体处理过。例如，嵌合的抗-CD20抗体已经被用于治疗淋巴瘤病人。已经用抗-CD20治疗处理过的其它的疾病或者症状包括例如类风湿性关节炎、系统性红斑狼疮、与强直性脊柱炎等自身免疫症状或者疾病。其它的病症包括血或者骨髓移植后的EB病毒有关的疾病、卡波济氏肉瘤相关的与疱疹病毒有关的多中心性Castlemen病(Karposi Sarcoma associated herpes virusrelated multicentric Castlemen disease)、丙型肝炎相关的冷球蛋白血症血管炎、伴有自体免疫性溶血性贫血的淋巴组织增生性紊乱、及与ANCA相关的血管炎。

A.本发明的实施方式

本发明提供表达异源的CD20标志物、异源CD16标志物或者两者的转基因动物。在一个实施方式中，本发明的人CD20转基因动物在相同类型的B细胞上表达CD20。将抗-人CD20抗体给予该目前描述的转基因动物导致表达人CD20B淋巴细胞的消减。由于无法将有效的转录控制区域掺入转基因，先前制备表达人CD20转基因小鼠的尝试未能达成人CD20在合适的B细胞亚群中的表达。在另一个实施方式中，本发明的转基因小鼠表达人CD20与人CD16。

本发明提供转基因动物，所述转基因动物具有以类似于人受试者的方式反应的细胞。将抗-人CD20抗体给予该目前描述的转基因动物导致表达人CD20B淋巴细胞的消减。在一个实施方式中，人CD20转基因鼠特征为：人CD20在细胞上的表达水平足以使与表达细胞结合的抗人CD20抗体影响细胞的杀伤，引起至少大约75％、和更优选80％、85％、90％、95％、99％并且甚至100％外周的和/或循环B细胞的消减。一个类似的反应在人中观察到。这些动物模型能被用于筛选药剂，所述药剂包括然而不限于抗CD20标志物的单克隆抗体。另外，表达人CD16的转基因小鼠提供一种模型，所述模型用于确定一种药剂具有诱导效应细胞反应(例如，NK细胞介导的反应)的能力、或者该药剂具有更进一步地消减表达CD20的B淋巴细胞(包括恶性的B细胞)的能力。另外，该转基因动物可能用来测试抗-CD20所针对的治疗的效力与毒性。

B.DNA构建物

典型的，编码本发明的异源蛋白质的多核苷酸分子被插入载体中，优选DNA载体，以在合适的宿主细胞中复制该多核苷酸分子。将会认识到，CD20和/或CD16转基因可能被分别地制备与插入，或者制备在单一的构建体中用于插入。DNA构建物也可以对制备用于敲除动物的导向载体有用处。

为了分离克隆与转移CD16和/或CD20位点，可以使用酵母人工染色体(YAC)。整个位点可以被克隆、并包含在一个或者几个YAC克隆中。如果使用许多YAC克隆、并且包含重叠同源(overlapping homology)的区域，他们可以在酵母宿主株内部重组，以产生代表整个位点的单一构建物。YAC臂可以另外用哺乳动物选择盒通过改型(retrofitting)来进行修饰，以帮助构建物通过以前概括的方法引入胚胎干细胞或者胚胎。

由于其高稳定性与相对大的插入物、操作容易以及鸟枪法测序，细菌人工染色体(BAC)文库可以为目的基因提供人序列。BAC文库可包含的平均插入物大小为100-150kb。BAC克隆能够携带高达300,000bp的插入物。Shizuya，et al.，(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.，USA 89：8794-8797；Kim，et al.，(1996)Genomics 34213-218；Swiatek，et al.，(1993)Genes andDevelopment 7：2071-2084。人与小鼠的基因组BAC文库已经被构建，并且市场上可买到(Invitrogen，Carlsbad CA)。基因组BAC文库还可以充当人与鼠CD20和/或CD16基因序列以及转录控制区域的来源。

编码人CD20的核酸为本领域技术人员所知。人与鼠CD20代表性的cDNA(SEQ ID NO：5)、基因组(SEQ ID NO：6)与氨基酸序列(SEQ ID NO：4)在图23中所示。其它的序列也可以在GenBank中找到，例如登记号码AH003353。

编码人CD16α链同种型的核酸为本领域技术人员所已知。人α链亚型A的代表性cDNA(SEQ ID NO：2)、基因组(SEQ ID NO：3)与氨基酸序列(SEQID NO：1)示于图22A、B与C(GenBank登记号数NM000569与Z46222)。人CD16α链同种型B代表性的氨基酸(SEQ ID NO：10)与cDNA序列(SEQID NO：11)在图22E中显示(GenBank登记号码NM000570)。编码人CD16α链同种型B的基因组序列示于图22F(GenBank登记号码Z46223)。编码人Fc受体γ链的核酸序列也为本领域技术人员所已知。代表性氨基酸(SEQ IDNO：7)(GenBank登记号码P30273)和cDNA序列(GenBank登记号码M33195)(SEQ ID NO：8)示于图25。

异源的转基因优选包含与将要在转基因非人动物中表达的目的基因可操作连接的种系(germline)调节性DNA序列。术语″可操作连接″指遗传片段操作上(即功能上)与核酸片段、或给定片段或者序列的上游(5′)或者下游(3′)序列连接。那些附近的序列经常影响在所需的细胞类型中核酸片段或者序列的加工和/或表达。

优选，这些调节性序列是基因组来源的，并且包括一个或者多个内含子。例如，转基因构建物可以包括位于编码CD20和/或CD16的基因的5’-旁侧区的调节区，该调节区以能在宿主细胞中复制与表达该基因的方式可操作地与编码序列连接。在一个实施方式中，调节性序列包含与CD20与/或CD16有自然联系的内源的启动子序列。在一些实施方式中，启动子以与该序列所来源的动物中的表达水平类似的水平提供组织特定的表达。如果额外的旁侧序列在优化表达中有用，像这样的序列可以利用现有的序列作为探针被克隆。使转基因的加工或者表达达最大化所需的附加序列可以源自于基因组序列。

或者，启动子可以是那些与转基因宿主动物中相应的内源基因有联系的启动子。例如，如果鼠基因CD20和/或CD16基因通过与相应的人基因整合而被破坏，该相应的人基因优选是整合的，以使其分别与内源的鼠CD20和/或CD16的鼠转录控制区域可操作地连接。

优选，调节性序列在合适的细胞中并以一定的水平提供该转基因的表达，从而可以利用标准方法例如用抗体检测来检测表达。在一个实施方式中，调节序列以人细胞上CD20表达的至少40％的水平提供该人CD20转基因的表达。

编码转基因的表达系统或者构建物可以从构建物表达，所述构建物包括特异于CD20标志物和/或CD16受体的转录调节序列，例如人内源的启动子(参见，例如，美国专利号5,877,396，在此引入作为参考)。

编码如同在这里描述的转基因的表达系统或者构建物还可以包括DNA序列下游的3′非翻译区。像这样的区域可以使表达系统的RNA转录本稳定，并因此增加从该表达系统中所需蛋白质的产量。对本发明的构建物有用的3′非翻译区是那些提供多聚腺苷酸化信号的序列。像这样的序列可以源自，例如SV40小t抗原、CD20和/或CD16非翻译区或者其它本领域熟知的3′非翻译序列。

任选地，表达系统或者构建物包括在启动子与编码信号序列的DNA序列之间的5′非翻译区。像这样的非翻译区可以与启动子来自相同的控制区域，或者可以来自于不同基因，例如他们可能是来源于其它人造、半-人造或者天然来源。

另外，可以利用与该转基因不天然相关的其它启动子或者其它转录调节序列。例如，异源的启动子可以表达或者组织特异性表达水平增强。具有不同强度的各种启动子可以被利用，只要该启动子在该非人动物或者在所需组织类型中发挥作用。许多启动子为本领域技术人员所已知。

表达系统可以利用本领域已知的方法制备。例如，表达系统可以作为较大质粒的一部分被制备。像这样的制备允许以本领域已知的有效方式克隆与选择正确构建物。表达系统可以位于质粒上便利的限制性位点之间以致他们可以容易地从余下的质粒序列中分离以掺入所需的哺乳动物。优选，编码人CD20和/或CD16的DNA构建物包含细菌人工染色体，所述细菌人工染色体包括自然相关的转录调节序列，以提供组织特异性的表达。

质粒制备与宿主有机体转化中使用的各种方法在本领域是已知的。用于原核与真核细胞的其它合适的表达系统，以及一般的重组操作，参见Molecular Cloning A Laboratory Manual，第二版，Sambrook、Fritsch与Maniatis编辑(冷泉港实验室出版社：1989)第16与17章。

C.转基因动物的生产

生产本发明的转基因动物的方法，包括敲除(knock-out)与“敲入”(knock-in)法，在本领域是熟知的(一般地，参见，“Gene Targeting：APractical Approach”，Joyner编辑.，牛津大学出版社有限公司(2000)))。转基因小鼠的产生可以任选涉及鼠标志物基因位点的破坏与将编码人标志物的基因引入鼠基因组，优选与内源基因在相同的位置。

根据本发明，当人CD20已经被引入该鼠基因组时，生产出转基因小鼠模型(huCD20⁺；或者称为huCD20Tg⁺)。内源的鼠CD20多肽存在于鼠淋巴细胞上，但是已知的抗-人CD20单克隆抗体不与鼠B细胞结合。因此，可以破坏内源的鼠CD20基因但不是必须要破坏。当内源的鼠CD20不被破坏时，则编码人CD20的基因优选插入在编码鼠CD20的基因的位置之外的位置。

在一优选实施方案中，该转基因动物的基因组更进一步地包含编码人CD16的序列，优选，α链，以及更优选亚型Aα链。当使用小鼠时，敲除系是优选产生的，其中鼠CD16基因，优选α链，已经被破坏(mCD16^-/-)。独立地，当人CD16α链基因已经被引入基因组时产生转基因鼠系(huCD16⁺；或者被称为huCD16Tg⁺)。mCD16^-/-与huCD16⁺小鼠系然后杂交，产生表达人CD16α链但不表达内源CD16的小鼠系(huCD16⁺mCD16^-/-)。或者，该人基因可以被引入来源于mCD16^-/-系的ES细胞，或者被用于破坏鼠CD16基因。

内源位点的灭活

在一个优选实施方案中，内源位点的灭活是通过胚胎干细胞内的同源重组造成的导向性破坏取得的。在一个实施方式中，DNA被引入宿主细胞并且在内源位点重组以破坏内源CD16的生产。类似地，在另一个实施方式中，DNA被引入宿主细胞并且在内源CD20位点重组以破坏内源CD20的生产。

利用本领域已知的标准方法可以生产导向构建物，(参见，例如Sambrook et al.，1989，Molecular Cloning：A Laboratoy Manual，SecondEdition，Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，NewYork；E.N.Glover(eds.)，1985，DNA Cloning：A Practical Approach，Volumes I and II；M.J.Gait(ed.)，1984，Oligonucleotide Synthesis；B.D.Hames & S.J.Higgins(eds.)，1985，Nucleic Acid Hybridization；B.D.Hames& S.J.Higgins(eds.)，1984，Transcription and Translation；R.I.Freshney(ed.)，1986，Animal Cell Culture；Immobilized Cells and Enzymes，IRLPress，1986；B.Perbal，1984，A Practical Guide To Molecular Cloning；F.M.Ausubel et al.，1994，Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley &Sons，)。例如，该导向构建体可以依照常规的方式制备，其中序列可以被合成、从天然来源分离、操纵、克隆、连接、进行体外诱变、引物修复、等等。在各个阶段，所连接的序列可以被克隆，并通过限制性内切酶酶切分析进行分析、测序等等。

导向DNA可以利用本领域熟知的技术获得。例如，导向DNA可以通过寡核苷酸的化学合成、双链DNA模板的切口翻译、序列的聚合酶链式反应扩增(或者连接酶链式反应扩增)、携带目的序列的原核的或者靶克隆载体的纯化(例如克隆的cDNA或者基因组DNA，合成DNA或者来自任何前面提到过的组合的DNA)而产生，所述原核或靶克隆载体例如质粒、噬粒、YAC、粘粒、BAC、噬菌体DNA、其它的病毒DNA或者复制中间产品、或者其纯化的限制性片段、以及具有所需核苷酸序列的单与双链多核苷酸的其它来源。此外，可利用本领域已知方法选择同源性的长度。例如，选择可以以预先确定的内源靶DNA序列的序列组成与复杂性为基础。

在一个实施方式中，本发明的导向构建物包含导向区，所述导向区包含与要被破坏的CD16基因和/或CD20的一部分或者区域同源的第一序列(或者臂)，和与该基因的第二部分或者区域同源的第二序列。该导向构建物可以更进一步地包含正选择标记，其优选位于第一与第二DNA序列之间。该正选择标记可可操作地与启动子和聚腺苷酸化信号连接。

在另一个实施方式中，该导向构建物可以包含超过一个可选择标记基因，包括负的选择性标记，例如单纯疱疹病毒tk(HSV-tk)基因，其优选位于该导向构建物的一个或两个同源臂的外面。负的可选择标记可以与启动子和聚腺苷酸化信号可操作地连接(参见，例如，美国专利号5,464,764；5,487,992；5,627,059及5,631,153)。

一旦合适的导向构建物已经被制备，该导向构建物可能利用任何本领域已知方法被引入合适的宿主细胞。各种的技术可被用于本发明，包括，例如：原核显微注射；逆转录病毒介导的基因转移入种系；在胚胎干细胞中的基因导向；胚胎的电穿孔；精液介导的基因转移；与磷酸钙/DNA共沉淀；显微注射DNA入细胞核；细菌的原生质体与完整细胞融合；转染；聚阳离子例如1，5-二甲基-1，5-二氮十一亚甲基聚甲溴化物(polybrene)、聚乌氨酸等等。(参见例如，美国专利号4,873,191；Van der Putten et al.，1985，Proc.Natl.Acad.Sci.，USA 82：6148-6152；Thompson et al.，1989，Cell56：313-321；Lo，1983，Mol Cell.Biol.3：1803-1814；Lavitrano et al.，1989，Cell，57：717-723)。转化哺乳动物细胞的各种技术在本领域是已知的。(参见，例如，Gordon，1989，Intl.Rev.Cytol.，115：171-229；Keown et al.，1989，Methods in Enzymology；Keown et al.，1990，Methods andEnzymology，Vol.185，pp.527-537；Mansour et al.，1988，Nature，336：348-352)。

能同源重组的任何细胞类型可被用于本发明的操作。像这样的靶细胞的例子包括来源于脊椎动物的细胞包括哺乳动物例如人、牛的物种、羊的物种、鼠的物种、猿的物种、与其它真核生物例如丝状真菌、与高等的多细胞有机体例如植物。

优选的细胞类型包括胚胎干(ES)细胞，其典型的获得自体外培养的移植前胚胎(参见，例如，Evans，M.J.et al.，1981，Nature 292：154-156；Bradley，M.O.et al.，1984，Nature 309：255-258；Gossler et al.，1986，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 83：9065-9069；和Robertson et al.，1986，Nature322：445-448)。利用本领域技术人员熟知的方法培养与制备ES细胞用于该导向构建物的导入。(参见，例如，Robertson，E.J.ed.″Teratocarcinomas andEmbryonic Stem Cells，a Practical Approach″，IRL Press，Washington D.C.，1987；Bradley et al.，1986，Current Topics in Devel.Biol.20：357-371；Hogan et al.，在″Manipulating the Mouse Embryo”：A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor N.Y，1986中；Thomas et al.，1987，Cell 51：503；Koller et al.，1991，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，88：10730；Dorin et al.，1992，Transgenic Res.1：101；and Veis et al.，1993，Cell 75：229)。将要用该导向构建物插入的ES细胞源自于与他们将被引入的发育胚胎相同物种的胚胎或者胚泡。ES细胞典型的针对他们的整合入内细胞群(inner cell mass)的能力被选择，并且当在发育的胚泡阶段被引入该哺乳动物胚胎时成为个体的种系的一部分。因此，任何具有这一能力的ES细胞系适于在本发明的操作中应用。

在该导向构建物已经被引入细胞之后，鉴别其中已经发生成功基因导向的细胞。该导向构建物插入靶基因典型的是经过鉴定表达该标记基因的细胞而检测。在一优选实施方案中，用本发明的导向构建物转化的细胞用选择未表达该选择性标记的细胞的合适的药剂处理。只有那些表达选择性标记基因的细胞在一定条件下成活和/或生长。例如，那些表达引入的新霉素抗性基因的细胞抗化合物G418，而那些不表达neo基因标记的细胞被G418杀死。如果该导向构建物也包含筛选标记例如GFP，同源重组可以通过在荧光下筛选细胞菌落而鉴别。那些已经进行同源重组的细胞将已经删除该GFP基因，并且不会发荧光。

或者，正-负选择技术可能用来选择同源的重组体。这个技术涉及一种方法，其中第一药物，例如新霉素样药物被加入该细胞群体，来选择转染细胞的生长，即正选择。第二药物，例如FIAU随后被加入以杀死那些表达负选择标记的细胞，即负选择。那些包含与表达负选择标记的细胞被选择药剂杀死，而那些没有包含与表达该负选择标记的细胞成活。例如，用构建物非同源插入的细胞表达HSV胸苷激酶，并因此对疱疹药物例如更昔洛韦(GANC)或者FIAU(1-(2-脱氧2-氟代-B-D-阿拉伯呋喃糖基)-5-碘代尿嘧啶)敏感。(参见，例如，Mansour et al.，Nature 336：348-352：(1988)；Capecchi，Science 244：1288-1292，(1989)；Capecchi，Trends in Genet.5：70-76(1989))。其它的方法包括受调节的正选择(参见U.S.20030032175A1)，其中要求加入单一选择剂。

可通过分析被选择细胞的DNA来鉴别成功重组以印证同源重组。各种的技术在本领域已知，例如PCR和/或Southern分析可用来印证同源重组事件。

被选细胞然后被注射入动物(例如小鼠)的胚泡(或者其它的适于创造能生存的动物的用途的发育阶段，例如，桑椹胚)，以形成嵌合体(参见，例如Bradley.A.，在“Teratocarcinomas and Embryonic Stem Cells：A PracticalApproach”中，J.Robertson编辑，IRL，Oxford，pp.113-152(1987))。或者，可以让被选的ES细胞与离解的小鼠胚胎细胞聚集以形成集合体嵌合体。嵌合胚可随后被移植入合适的假孕雌性代孕动物并且该胚胎被培育至足月。在其性细胞中携带同源重组DNA的嵌合后代可用于繁殖动物，其中该动物的所有的细胞包含同源重组的DNA。在一个实施方式中，嵌合后代小鼠被用来产生在CD16或者CD20基因具有杂合破坏的小鼠。杂合转基因小鼠可随后交配。本领域已熟知，典型的，这种交配的后代中1/4将在CD16或者CD20基因中有纯合破坏。

除以上所述灭活内源的位点的方法之外，有其它的优选灭活方法，并且可以包括例如利用tet转录系统来利用特异目的基因的时序控制(Proc.Natl.Acad.Sci.91：9302-9306(1994)或者引入脱氧细胞周期蛋白(deoxycycline)转录调节控制进行组织特定的控制(Proc.Natl.Acad.Sci.93：10933-10938(1996)。

用于功能性灭活的另外优选的方法包括使用cre-lox删除、用于遗传位点的导向敲除的位点特异性重组系统，其中loxP位点被插入目的基因的侧翼，并且cre重组酶被激活以删除基因(Curr.Opin.Biotechnol.：521-527(1994))。

或者，反义或RNAi方法可能被利用以抑制该所需位点的转录，因此导致内源位点的功能性破坏(knock-down方法)。在这样的情形中，生产导向指定的目的位点的特定序列的寡核苷酸，其中成功导向导致功能蛋白的生产抑制。

缺乏鼠FcγRIII受体的敲除小鼠株可从Taconic买到。这些小鼠缺乏鼠FcγRIIIγ链，从而也导致FcγRI与FcγRIII表达的丧失。另外，缺乏功能性γ链并且因此缺乏鼠FcγRIII受体的敲除小鼠可以如美国专利号5,877,396描述地加以制备，在此引入作为参考。

缺乏功能性的鼠FcγRIIIα链的小鼠可以利用类似方法生产。简要地说，在一个实施方式中，可以利用如图22G所示鼠CD16α链cDNA序列(GenBank登记号码NM010188)制备导向载体。导向载体优选包括编码序列上游5′序列以及该编码序列的至少300个核苷酸。该构建物可以被克隆入编码新霉素抗性基因的载体例如pMC1neo(Stratagene)。所得到的载体能随后用电穿孔被引入ES细胞。ES细胞被铺于neo抗性的胚胎成纤维细胞饲养层上，然后在G418存在下被选择。被选ES细胞被注射入胚泡。鼠CD 16a链的合适导向可以利用RT-PCR或者细胞上鼠CD16α链的表达的丧失测定。PCR引物可以利用鼠CD16α链cDNA序列加以设计。

对于内源CD20的丧失纯合的敲除小鼠可以如WO 02/062946中描述制备。简要地，在一个实施方式中，CD20-缺陷的小鼠可以通过利用同源重组导向破坏胚胎干(ES)细胞中鼠CD20基因而生产。导向载体可以生产，其中用新霉素抗性基因替换编码第二细胞外环的一部分的外显子、第四跨膜结构域、和鼠CD20的羧基末端大的细胞质结构域。鼠CD20的核苷酸序列为本领域技术人员所已知。(GenBank登记号码M62541)。在一个实施方式中，合适的基因寻靶产生在氨基酸位置157截断、并且与Neo基因序列编码的88个氨基酸的蛋白质融合的异常的CD20蛋白质。

在DNA转染之后，携带被导向的等位基因的neo-抗性的ES细胞克隆通过Southem印迹分析加以确定。一个ES细胞克隆的细胞可被注射入可被转移入代孕母亲的那些胚泡。高度嵌合的雄性后代(根据毛色80-100％)可以用C57BL/6(B6)雌性加以繁殖，以将突变传递给他们的后代。对于CD20基因的破坏纯合的小鼠可以通过杂交杂合的后代以预期的孟德尔频率获得。

CD20的合适导向可以更进一步地通过来自纯合后代的基因组DNA的PCR分析来证实。野生型CD20mRNA在CD20^-/-小鼠中存在或者缺乏可以通过CD20^-/-小鼠脾细胞产生的cDNA的PCR扩增来证实。CD20^-/-小鼠中细胞表面CD20蛋白质表达的缺乏可以更进一步地通过用鼠抗-CD20单克隆抗体染色B220⁺脾细胞证实。CD20基因的导向突变使细胞表面CD20蛋白质不表达。

将转基因引入非人动物

本发明的非人转基因动物优选通过将转基因引入该动物的种系加以生产。在各种发育阶段的胚胎靶细胞可用于引入转基因。依赖于胚胎靶细胞的发育阶段使用不同的方法。以一般健康、良好胚胎产量、胚胎中良好原核能见度与良好生殖适应度为标准，选择任何被用来实施本发明的动物的特定的谱系。当将生产转基因小鼠时，株例如C57BL/6或者C57BL/6xDBA/2F₁、或者FVB系是经常使用的(商业上获得自Charles RiverLabs，Boston，Mass，The Jackson Laboratory，Bar Harbor，ME，或Taconic Labs.)。优选的株是具有H-2^b、H2^d或者H-2^q单倍体的株例如C57BL/6或者DBA/1。裸鼠可以被利用以允许人肿瘤细胞的引入。裸鼠的繁殖与维持更困难，因为其对感染与疾病敏感。用来实行本发明的系可以本身是转基因的，和/或可以是敲除的。优选相同的系被用来制备初始敲除哺乳动物与转基因哺乳动物。这会使以后的繁殖与回交更有效。

转基因引入胚胎可以通过任何本领域已知的方式完成，例如，显微注射、电穿孔法、或者脂转染。例如，该转基因可以通过将构建物显微注射入已受精的哺乳动物卵的原核而被引入哺乳动物，使得一或多拷贝的该构建物保留在发育哺乳动物的细胞中。转基因构建物被引入受精卵后，该卵可以体外孵化一可变量的时间，或者再植入代理宿主内，或者两者都有。体外孵化至成熟是在本发明范围之内的。一个常见的方法是体外孵化该胚胎大约1-7天(取决于物种)然后将其再植入代理宿主内。

再植入术利用标准方法完成。通常，代理宿主是被麻醉的，并且胚胎被插入输卵管中。移植入特定宿主的胚胎数目将随物种改变，但是通常与该物种自然生产的后代数目具有可比性。

还可以使用逆转录病毒感染将转基因引入非人动物。发育的非人胚胎可以体外培养至胚泡阶段。在这一时期，可以针对卵裂球进行逆转录病毒感染(Jaenich，R.(1976)PNAS 73：1260-1264)。通过酶处理除去透明带以获得卵裂球的有效感染((Manipulating the Mouse Embryo，Hogan eds.(Cold SpringHarbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，1986)。用来引入转基因的病毒载体系统典型的是携带该转基因的复制缺陷的逆转录病毒(Jahner etal.(1985)PNAS 82：6927-6931；Van der Putten et al.(1985)PNAS 82：6148-6152)。通过在生成病毒的细胞单层上培养卵裂球容易与有效地获得转染(Van der Putten，见上；Stewart et al.(1987)EMBO J.6：383-388)。或者，感染可以在以后阶段进行。病毒或者生产病毒的细胞可以被注射入囊胚腔(Jahner et al(1982)Nature 298：623-628)。大多数建立者(founder)对于该转基因是嵌合体，因为掺入仅仅发生在形成该转基因非人动物的细胞亚群上。更进一步地，建立者可以在基因组不同位置包含转基因的各种逆转录病毒插入物，其通常将分散在后代中。另外，可能通过妊娠中期胚胎的子宫内逆转录病毒感染来将转基因引入种系(Jahner et al.(1982)见上)。

转基因引入的第三种类型的靶细胞是胚胎干细胞。转基因可以通过DNA转染或者通过逆转录病毒介导的转导有效地被引入ES细胞。这样转化的ES细胞可以此后与来自非人动物的胚泡结合。ES细胞此后移植入胚胎，并且构成所得到的嵌合动物种系的一部分。

在一个实施方式中，编码例如图23所示人CD20的cDNA或者基因组克隆可以利用显微注射或转染被引入FVB小鼠受精卵或者ES细胞。胚胎体外孵化大约1-7天，然后移植入代理宿主。ES细胞与来自自然交配的宿主动物的胚泡结合，并且胚泡被再植入代理母亲。

在另一个实施方式中，编码例如图22所示人CD16α链亚型A的cDNA或者基因组克隆可以使用转染或者显微注射被引入ES细胞或者已受精的胚胎。在可选的实施方式中，编码人Fc受体γ链的cDNA或者基因组克隆也可以与人CD16α链一起被引入ES或者已受精的胚胎。受精卵体外孵化1-7天然后再植入代理宿主。ES细胞与来自自然交配的宿主动物的胚泡结合，并且胚泡被再植入代理母亲。人CD16α链(FcγRIIIα链)在小鼠细胞中的表达将发生在小鼠γ链存在时，因为小鼠与人γ链在序列上相仿。

在本发明的一个实施方式中，在非人宿主中的内源CD20或CD16通过异源的CD20或CD16α链基因的同源整合作用被功能上破坏，以致于异源CD20或CD16基因实质上分别替换内源CD20或CD16基因，并且优选完全替换内源CD20或者CD16基因的编码序列。优选，作为同源整合作用的结果，异源CD20或者CD16基因分别地连接于内源CD20或CD16基因的调节性序列(例如增强子启动子)，以致该异源基因在内源CD20或CD16基因位点的调控元件的转录控制之下被表达。对于像这样的替换等位基因纯合的非人类的宿主可以根据在这里描述的方法生产。像这样的纯合的非人类宿主一般将表达异源CD20或CD16，或者两者，但是不表达内源CD20或CD16蛋白质。通常，异源CD20或CD16基因的表达模式实质上分别模仿在自然发生的(非转基因)非人类宿主中内源CD20或CD16基因的表达模式。

例如，可以生产人CD20基因序列已经代替内源的鼠CD20基因序列、并且转录上受内源鼠调节序列控制的转基因小鼠。人CD20一般地类似于在自然发生的非转基因小鼠中鼠CD20的方式加以表达。

例如，可以生产具有人CD16α链序列并且转录上受内源的鼠调节序列控制的转基因小鼠。或者，该人CD16α链可以被引入小鼠，并且随后与缺乏鼠CD16α链表达的小鼠杂交。人CD16α链的表达预计在鼠γ链存在时发生。

一般地，使用替换类型(replacement-type)的导向构建物进行同源基因替换。在导向构建物的内源CD20或CD16α基因序列之间双交叉同源重组导致异源CD20或CD16基因片段的靶向整合作用。通常，该转基因的同源导向区域包含内源的CD20和/或CD16α基因片段侧翼的序列，以致同源重组导致内源CD20和/或CD16基因片段各自伴随性地删除，以及异源基因片段的同源整合作用。实质上整个内源CD20和/或CD16基因可以通过单一导向事件或者通过多重导向事件(例如，单个外显子的依序替换)用异源CD20和/或CD16基因替换。通常以正的或者负的选择表达盒形式的一或多个选择性标记可被置于导向构建物中。通常优选选择性标记位于异源替换区域的内含子区域。

转基因小鼠的杂交

包含转基因人CD20的转基因小鼠可以与包含转基因人CD16和缺乏鼠CD16转基因小鼠杂交。优选，该转基因小鼠包含人CD16α链并缺乏鼠CD16α链。一种制备方法是产生一系列哺乳动物，每个包含该所需敲除构建物或者转基因中的一个。像这样的哺乳动物通过一系列杂交、回交和选择共同繁殖，最终产生包含所有所需敲除构建物和/或转基因的单一哺乳动物，其中该哺乳动物除了该敲除构建物和/或转基因的存在之外对野生型是同类系的(遗传上同一的)。

典型的，取决于增殖过程中每个特定步骤的目标，通过交配同胞兄弟姐妹或者用后代交配亲本株完成杂交与回交。在某些情况下，也许必需产生许多后代，以产生在适当的染色体位置包含每一敲除构建物和/或转基因的单一后代。另外，也许必需杂交或者回交几代，以最终获得所需的基因型。

一旦该人位点已经或者由同源重组或者由随机整合作用被引入宿主基因组，并且宿主动物已经被产生，在宿主动物中内源CD16位点已经通过各种转基因或者突变动物的适当繁殖而被灭活，可以产生缺乏产生内源CD16α链的天然能力、但是具有产生人CD16α链和/或CD20的能力的宿主。

在一个实施方式中，表达人CD16α链的转基因小鼠与鼠CD16α链缺陷的小鼠交配，从而在CD16多肽缺陷的小鼠中重建特定的人CD16的表达。在另一个实施方式中，这些转基因小鼠可随后与表达人CD20的小鼠繁殖，以制造表达CD16和人CD20然而不表达内源CD16的小鼠系。

D.转基因的存在的证实

可经过任何合适的方法以所需组织、细胞或者动物中该转基因的存在和/或表达筛选代理宿主的转基因后代。筛选经常利用对该转基因的至少一部分互补的探针经过Southern印迹或者Northern印迹分析完成。可以使用利用抗由该转基因编码的蛋白质的抗体进行的蛋白质印迹分析，作为筛选转基因产物存在的可选的或者补充的方法。典型的，DNA制备自尾组织，并且，通过Southern分析或者PCR分析该转基因。或者，利用Southern分析或者PCR，测试被认为以最高水平表达该转基因的组织或者细胞中该转基因的存在与表达，虽然任何组织或者细胞类型也可被用来进行这一分析。

评价转基因存在的其它或者附加方法包括，但不限于，合适的生物化学试验例如酶和/或免疫学测定、对于特定标记物或者酶活性的组织学染色、流式细胞计分析，等等。对血液的分析也可以对检测血中该转基因产物的存在、以及评定该转基因在各种类型血细胞及其它血液组分水平的影响有用处。在一个实施方式中，人CD20或CD16或者两者的表达可以利用抗人CD20或CD16或两者的可检测的标记抗体、并且利用FACS分析标记的细胞，在来自脾、骨髓、外周血、淋巴结、与派伊尔斑的免疫细胞上检测。

对本发明的转基因小鼠中表达模式的检验揭示出对在人B系谱细胞中发现的正常人CD20表达的反映。在细胞百分数与表型特征方面加以考察的其它免疫学参数，包括T细胞、B细胞、NK细胞、巨噬细胞、树突细胞与嗜中性白细胞的百分数与表型特征，揭示在转基因阴性与阳性同窝出生仔畜之间的相似性。对CD20Tg+/CD16Tg+中表达模式的考察显示人CD20与CD16标志物两者的表达。

E.转基因动物的使用

本发明的转基因动物代表人中CD16和/或CD20表达与作用的模型。相应地，这些动物在研究其起作用与相关的事件后面的机制、并且生成及测试对治疗与诊断CD20有关的人类疾病包括癌症与自身免疫病症有用的产物(例如，抗体、双特异性、多特异性等等)中有用。

在优选实施方案中，转基因表达的人CD20和/或CD16保有在人细胞中显示出的类似功能特性。例如，表达人CD20的B淋巴细胞被抗-人CD20抗体识别，并且如同在人中一样，响应人CD20抗体给药而类似地从该转基因动物中消减。如在实施例中更进一步详细描述的，本发明的转基因小鼠中的B淋巴细胞响应抗-人CD20抗体例如Rituxan处理而被消减。在一个实施方式中，人CD20转基因鼠特征为：人CD20在细胞上的表达水平足以使与表达细胞结合的抗人CD20抗体影响细胞的杀伤，引起至少大约75％、和更优选80％、85％、90％、95％、99％并且甚至100％外周的和/或循环B细胞的B细胞消减。另外，人CD20在与人CD20相同种类的B细胞上发现。表达人CD16的细胞也被抗-人CD16抗体识别。

转基因CD16动物优选能介导至少一种Fc-受体介导的效应子细胞功能或者反应。术语″Fc-受体介导的效应子细胞功能″意图包括任何效应子功能，其是由免疫球蛋白(例如IgG)结合至效应细胞上的Fc受体而触发的。例如，免疫球蛋白例如IgG与携带转基因表达的人CD16的细胞结合可以诱导各种各样的效应子功能，例如抗体依赖的细胞细胞毒性(ADCC)，NK细胞介导的反应与溶菌酶生产。

相应地，在一个实施方式中，本发明的转基因动物被用于测试药剂例如抗体、多或者双特异性分子、免疫粘附素(例如对于人体的安全性与效力)与靶表位，例如人CD20、人CD16或者两者的区域的结合。其它药剂可以包括有或者没有Fc区域的抗体的抗原结合片段、单链抗体、微抗体(仅有重链的抗体)、异源多聚体(heteromultimeric)免疫粘附素，其具有多聚(multimer)抗-人CD20和/或抗-人CD16抗原结合区域之一。其它的药剂可以包括抑制或者导致CD20-B细胞消减的小分子，可以包括与CD20结合、但是不激活CD20的CD20配体的变体。例如，像这样的药剂消减CD20表达细胞例如恶性的B细胞的效力可以经过测量测试药剂给药前后转基因动物中B淋巴细胞水平来测定。

相应地，本发明通过给予表达人CD20的转基因动物一种药剂与确定B淋巴细胞数目是否有减少，提供鉴定能治疗B细胞淋巴瘤的药剂，以及能消减或者杀死表达人CD20的B淋巴细胞的药剂的方法。如同在这里使用的，″B细胞消减″指在药物或者抗体处理之后同像这样的处理以前的水平比较起来在动物或者人中B细胞水平的减少。使用如同在这里描述的已知方法可度量B细胞水平。B细胞消减可以是部分或者完全的。优选，该药剂诱导的B细胞消减的水平与疾病或紊乱症状的减轻或者改善相关。该推定药剂的效力(即它消减表达CD20B淋巴细胞的能力)可以通过测量表达CD20的转基因动物中循环B淋巴细胞基线水平、并与同一动物中给药之后水平相比较而评估。B细胞消减效力的比较可以针对已知治疗剂例如抗-人CD20抗体(例如Rituxan)进行，以测量该推定的药剂对于CD20相关症状治疗的效力。或者，B淋巴细胞的基线水平可以在表达人CD20的第一转基因动物的各种组织(例如脾、骨髓、外周血、淋巴结、派伊尔斑)中测量。可随后给予表达人CD20的第二转基因动物该推定的药剂。动物然后被杀死，并且分析B淋巴细胞的水平。在表达人CD20的转基因动物中B淋巴细胞数目减少指示该药剂在减低与B细胞淋巴瘤有联系的癌细胞和/或在人受试者中治疗B细胞淋巴瘤的效力。也可以测试联合治疗来判定消减该所需细胞类型的效力。例如，抗-人CD20抗体可以与另一个药剂例如Br3-Fc结合以引起任何可能是对抗-人CD20杀伤有抗力的携带CD20的B细胞消减。

B淋巴细胞恢复还可以通过随着时间测量在一系列转基因动物中细胞水平来评估。该药剂对人CD20的特异性可以通过比较该药剂对表达人CD20转基因小鼠的影响与对野生型小鼠(不表达CD20标志物)的影响而评估。该药剂的效力还可以与安慰剂或者对照物质例如非特异性抗体或者其它对照剂的效应比较。优选，该药剂导向大多数或者所有携带人CD20的细胞但是不影响提供针对刺激T非依赖性免疫反应的抗原的免疫反应性的细胞。

另外，这些动物对于评估在人中可能的免疫反应是有用的模型，因为在转基因动物中给药像这样的药剂后免疫反应的起始指示该药剂将在人中产生相同的效应。在像这样的转基因动物中对免疫反应的影响可以例如通过细胞因子水平的改变、抗体的生产或者T细胞反应来检测。另外，转基因动物可以在多或者双特异性分子给药之前被改造以包含靶细胞(例如肿瘤、病毒)。

本发明因此提供鉴定能诱发效应细胞反应例如ADCC或者NK细胞介导的免疫反应的药剂。特别地，本发明提供鉴定能诱发Fc-介导的效应子细胞反应、特别是FcγIII-介导的效应子细胞反应的方法。推定的药剂诱导像这样的反应的能力可以通过，例如，分析细胞因子水平而评估。例如，推定药剂的效力可以通过测量一种或更多在表达人CD16的第一转基因动物中与FcγIII-介导的效应子细胞反应有联系的一种或更多细胞因子基线水平、并且与该动物给药之后的水平相比较而评估。或者，比较可在已经给予该药剂的表达人CD16的转基因动物与或者没有给予药剂或者已经给予安慰剂或者对照物质的第二转基因动物之间进行。该药剂的特异性可以通过比较该药剂对表达人CD16的转基因动物与对具有被破坏的内源CD16基因(例如CD16敲除)的转基因动物和/或野生型动物(即具有功能性的内源CD16)的影响而评估。在表达人CD16的转基因动物中与人FcγIII介导的效应子细胞反应相关的细胞因子水平增加指示该药剂在人受试者中诱发像这样的反应的效力。

本发明的一个方面包含将推定药剂至给予人CD20和人CD20/CD16转基因动物中的每一个，并且比较该药剂的效力，例如，杀死或者消减人CD20B细胞。一个实施方式是鉴定能诱发抗表达人CD20的B淋巴细胞的Fc介导的效应子细胞反应的药剂，包含将该药剂给予该CD20转基因动物；测量在该CD20转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞水平；确定B淋巴细胞水平降低的百分率；将该药剂给予该CD20⁺/CD16⁺转基因动物；测量在该CD20⁺/CD16⁺转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞水平；并确定在该CD20⁺/CD16⁺动物中B淋巴细胞水平的降低百分率；其中如果在该CD20⁺/CD16⁺动物中测定的B淋巴细胞降低百分率大于在该CD20动物中测定的降低百分率，该药剂被认为能诱发Fc介导的抗表达人CD20的B淋巴细胞的效应子细胞反应。

为了在抗-CD16和/或抗-CD20抗体或者双或多特异性分子给药至转基因动物后检测抗体结合，可使用任何合适的分析法。例如，可以取动物血样品并且利用本领域已知的筛选试验，例如酶联免疫吸附试验(ELISA)、放射免疫测定(RIA)、或者蛋白质印迹试验，分析抗CD抗体-CD复合物的存在。这些分析中的每一个通常通过使用特异于目的复合物的标记试剂(例如抗体)检测特定目的的蛋白质-抗体复合物的存在。相应地，在本发明中，这些试验被用于检测包含在动物血清中的免疫球蛋白(例如IgG，IgA等等)与在该动物的特定细胞表面上包含的人CD标志物之间形成的CD-抗体复合物。

利用例如识别并特定地与抗体-CD标志物复合物结合的酶联抗体或者抗体片段可以检测该CD标志物-抗体复合物。或者，可以利用各种各样的其它的免疫测定中任何一种检测该复合物。例如，抗体可以是放射性标记的，并且被用于放射免疫测定(RIA)。放射性同位素可以通过像利用γ粒子计数管或者闪烁计数器或者通过放射自显影术的方式检测。

为了在抗体、或者双或者多特异性分子或者其它药剂给药到转基因动物后检测免疫反应，可以使用测量动物血浆或者血清中例如细胞因子、抗体或者T细胞群体浓度方面改变的任何合适的程序。例如，体内细胞因子浓度改变可以通过各种各样的免疫测定检测，例如酶免疫测定(EIA)、放射免疫测定(RIA)或者ELISPOT测定。可以被分析的示范性的细胞因子包括：粒细胞/巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)、粒细胞集落刺激因子(G-CSF)、巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)、白细胞介素1-12(IL-1至IL-12)。

例如，血浆可以从已经进行抗体、双特异性或者多特异性分子或者其它药剂给药的转基因动物获得。可以利用EIA，通过检测细胞因子与同酶偶联的抗体的交互作用测量细胞因子的浓度。用合适的底物—优选显色底物—进行反应，借助于产生可以被检测的化学部分的方法，例如，通过分光光度法、荧光的或者经过视觉的方法，来检测酶活性(Voller，“The EnzymeLinked Immunosorbent Assay(ELISA)”，Diagnostic Horizons 2：1-7，1978，Microbiological Associates Quarterly Publication，Walkersville，MD；Voller，etal.，J.Clin.Pathol.31：507-520(1978)；Butler，Meth.Enzymol.73：482-523(1981)；Maggio，(ed.)Enzyme Immunoassay，CRC Press，Boca Raton，FL，1980；Ishikawa，et al.，(eds.)Enzyme Immunoassay，Kgaku Shoin，Tokyo，1981)。可用于检测性地标记该抗体的酶包括，但是不局限于，苹果酸脱氢酶、葡萄球菌核酸酶、Δ-5-甾体异构酶、酵母乙醇脱氢酶、α-甘油磷酸盐脱氢酶、磷酸丙糖异构酶、辣根过氧化酶、碱性磷酸酶、天冬酰胺酶、葡萄糖氧化酶、β-半乳糖苷酶、核糖核酸酶、尿素酶、过氧化氢酶、葡萄糖-6-磷酸脱氢酶、葡糖淀粉酶与乙酰胆碱酯酶。检测可以通过使用对该酶的显色底物的比色法进行。检测也可以通过视觉上将底物的酶促反应程度同类似制备的标准比较或者利用RIA进行。

也可能用荧光化合物标记抗-细胞因子抗体或者抗CD20药剂。当荧光标记的抗体暴露于适当波长的光时，可随后检测它的存在。最通常使用的荧光标记化合物是异硫氰酸荧光素、若丹明、藻红蛋白、藻青蛋白、别藻蓝蛋白，o-苯二甲醛与荧光胺。抗体还可以利用发荧光金属例如152铕或者其它的镧系进行可检测地标记。这些金属可以利用金属螯合基团例如二乙烯三胺五乙酸(DTPA)或者乙二胺四乙酸(EDTA)来附着于抗体。抗体也可以通过将其偶联至化学发光的化合物而可检测地标记。然后经过检测在化学反应期间产生的荧光确定化学发光示踪的抗体的存在。特别有用的化学发光标记化合物的例子是发光氨、异氨基苯二酰肼、theromatic吖啶酯、咪唑、吖啶盐与乙二酸酯。同样地，生物发光的化合物可能用来标记抗体。生物发光是一类在生物系统中发现的化学萤光，其中催化蛋白质提高化学发光反应的效率。生物发光的蛋白质的存在经过检测荧光的存在而测定。用于标记用途的重要生物发光化合物是荧光素、荧光素酶与水母蛋白。

本发明的非人转基因动物可以更进一步提供向人给药的特定药剂的安全性指示。例如，可以将人源化抗体或者其它药剂给予该转基因动物，并且作为该人源化抗体或者药剂人体内利用的安全性与耐受性指示，监视作为将该药剂投药给该动物的结果的任何毒性或者副作用。可以在短期基础上出现的不利情况包括头痛、感染、发热、寒战、疼痛、恶心、无力、咽炎、腹泻、鼻炎、灌输反应、与肌痛。短期不利情况是处理后数天内测量的。长期的副作用包括某些细胞类型的细胞毒、血小板减少导致的出血、由于炎性和/或变态反应导致的介体释放、免疫系统和/或抗治疗剂抗体发育的抑制、终端器官毒性、和感染或者恶性肿瘤发生率增加。长期的不利情况是处理后数月内测量的。

本发明的另一方面涉及测定抗CD20药剂的效力的方法。通过向一系列具有人CD20和/或人CD16α链的转基因动物给予一剂量范围的该药剂、确定导致携带人CD20细胞减少的至少一个剂量而确定效力。

本发明的转基因动物，包括细胞、组织、或者从其中衍生的其它材料，可以作为疾病模型，特别是与携带CD20细胞有关的或者其介导的疾病模型被使用。任何物种的动物，包括然而不限于，小鼠、大鼠、兔、豚鼠、猪、微型猪(micro-pig)、山羊，和非人灵长目、例如狒狒，猴子和黑猩猩可被用来产生疾病动物模型。这些系统可被用于各种各样的应用。像这样的试验可以作为被设计来鉴别药剂的筛选策略的一部分，所述药剂例如能缓解疾病症状的化合物。因此，以动物和细胞为基础的模型可以用来鉴别可能在治疗疾病中有效的药物、药品、治疗和介入法。

以细胞为基础的系统可被用来鉴别可以对缓解疾病症状起作用的化合物。例如，像这样的细胞系统可能以足够的浓度并且以在该显露的细胞中足够导致这样的疾病症状的缓解的时间内暴露于认为显示出具有缓解疾病症状能力的化合物。暴露后，检查细胞以判定疾病细胞表现型中一个或多个是否已经改变，以类似于更正常的或更野生型的、非疾病表现型。

其它用途对于本领域技术人员来说是显而易见的。

以下非限制性实施例举例说明本发明。在这里所引用的所有文件因此明白地引入作为参考。

实施例

实施例1

本实施例描述人CD20BAC转基因(Tg+)小鼠的产生，并且研究了抗-人CD20抗体处理在hCD20+小鼠中的效果。

利用来自Invitrogen(Invitrogen，Carlsbad，CA)的人CD20CITB人BAC-D-克隆No.117H19生产人CD20转基因小鼠。编码人CD20的DNA从人淋巴细胞中分离，并且送至Invitrogen。Invitrogen用带有来自人BAC文库的克隆的滤纸测试DNA，并且鉴定克隆117H19。先前产生表达人CD20的转基因小鼠的尝试不成功，也许部分由于无法将足够的转录控制区域掺入转基因构建物。通过用克隆117H19制备的人CD20BAC构建物显微注射入小鼠FVB近交系的受精卵而生产转基因小鼠。受精卵孵化1-7天，然后移植入代理小鼠(surrogate mouse)。基于人CD20表达的FACS分析筛选小鼠。如同可以从在图1的FACS图中看到的，对于转基因杂合的(Tg+/-)和纯合的(Tg+/+)小鼠在他们的B220+B细胞上表达人CD20。未有意地破坏鼠CD20基因。

图2提供在B细胞分化与成熟期间各种细胞表面标志物(CD43，IgM，IgD)表达的示意图。在Tg+小鼠中，hCD20在前-B、未成熟B细胞与成熟B细胞上表达。人CD20在与人相同的细胞类型中发现，并且以与人B细胞相比较稍微低的水平在这些细胞类型上表达。

利用偶联至FITC的抗-人CD20抗体(BD Pharmingen)筛选Tg+小鼠骨髓、脾、肠系膜淋巴法与派伊尔斑B细胞上人CD20的表达(结果示于图3-6)。以B220和CD43、CD21、或者CD38对细胞门化使得对来自各种组织的各种B细胞群体进行划分。为了进行门化，细胞用偶联至PerCP的抗-B220抗体(BD Biosciences)染色，并且用偶联至PE的抗CD43抗体，抗-CD21抗体或者抗-CD38抗体(fluorescence，Becton Dickinson)染色。

利用FACS分析并计算平均荧光强度，将在转基因小鼠外周血细胞上人CD20的表达水平与在人外周血细胞上人CD20表达水平相比较。外周血细胞获自人供体和来自hCD20Tg+小鼠，并且用标记的抗-人CD20抗体(mH27)染色。细胞用FACS分析，在人CD19+与B220+群体上门化。图28显示与人外周血细胞上CD20表达比较，在来自人CD20转基因小鼠的外周血细胞上人CD20表达水平的代表性比较。在图上的数字表示平均荧光强度。结果表明人CD20在转基因细胞上以在人细胞上人CD20的大约40％的水平表达。

这些结果表明获自转基因小鼠中许多不同组织的B细胞表达人CD20标志物。人CD20标志物主要地在成熟B细胞上发现，但也可以以类似于在人中观察到的模式在前-B与未成熟B细胞中发现。

该转基因小鼠然后用抗-人CD20单克隆抗体m2H7处理，以判定该抗体处理是否将导致B细胞消减。抗体m2H7可以获得自BD PharMingen(SanDiego，CA)，eBioscience，或者Calbiochem。将m2H7的抗-人CD20活性与体外试验中的Rituxan活性相比较，并且具有可比拟的活性。人源化的抗体，例如Rituxan，也可用于细胞杀伤研究中，因为体内细胞杀死发生在足够短的时间，不用考虑对该人源化抗体的免疫反应。

如同在图7中示意性概括的，以总计1毫克剂量给予该转基因小鼠抗体m2H7，相当于对于70公斤人而言3.5毫克。在箭头指示的日子对外周血、脾、淋巴结、骨髓、和派伊尔斑进行FACS分析。监视抗-CD20单克隆抗体的血清水平。

单独用抗-CD20单克隆抗体(m2H7)处理Tg+小鼠导致外周血、成熟外周淋巴结B细胞、脾T2与滤泡B细胞中B细胞的消减(参见图8-11)。然而，尽管在细胞表面上有非常高，很可能是饱和水平的抗体，也观察到某些B细胞亚群对抗抗-CD20抗体杀伤。这些抗性B细胞是脾边缘区B细胞(图10)，和派伊尔斑(图12)与脾(图14)两者中的生发中心B细胞。在图14中，小鼠用第一剂量的抗-CD20单克隆抗体以100tg在第1天注射，继之以在第3天上以第二剂量100μg注射(可能50μg单一剂量就足够饱和B细胞)。T2/滤泡B细胞被消减，但是派伊尔斑生发中心B细胞显示与抗-CD20单克隆抗体结合，但是对杀伤具抗性。

研究了抗-人CD20抗体处理后B细胞的恢复。在第1天给予小鼠抗体。图13表明抗体处理后第6天，外周血中检测不到B细胞。在第6周，刚一清除抗体，hCD20+细胞就开始被检测，并且到第14周，B细胞似乎回升至正常水平。恢复由前体B细胞引起，该细胞不表达CD20而且然后随后发育成为具有人CD20+的成熟B细胞。

图14显示FACS图，指示脾生发中心B细胞对短期(单一注射)抗-CD20单克隆抗体治疗的抵抗。在第1天通过腹膜内注射，用绵羊红细胞(SRBC)非免疫或者免疫小鼠以在脾中诱导生发中心。生发中心在第7天出现。在第8天，一组小鼠用m2H7处理。对照组的小鼠用mIgG2a同种型对照抗体处理。在第12天对小鼠脾细胞进行分析。使用对生发中心染色的PNA(花生凝集素)。在未用SRBC免疫的小鼠脾中没有见到可检测的生发中心细胞，而免疫小鼠脾显示0.3％的PNA染色细胞。尽管T2/滤泡B细胞被用抗-CD20抗体处理消减，脾边缘中心B细胞对抗体是有抗力的。

然后，测定是否B细胞刚一消减，小鼠就能发展出不依赖于T的免疫反应。在第0天，小鼠用m2H7或同种型对照抗体mIgG2a处理。在第3-7天，B细胞消减已经发生。在第7天，小鼠用肺炎链球菌IV静脉注射以诱导对多糖的反应。在第11天建立起T细胞不依赖的反应。图15中显示的结果表明，用抗-人CD20处理不影响来自边缘区与B1细胞的B细胞反应，即非消减的边缘区与B 1B细胞赋予对T-非依赖的抗原的保护。这个数据显示，尽管用抗-CD20单克隆抗体处理，体液免疫的一些方面，特别地是T-非依赖的B细胞反应(在这种情况下)仍是保留的。

总之，人CD20转基因动物在血液、骨髓、脾、淋巴结和派伊尔斑的成熟、前-B与未成熟B细胞上表达人CD20。人CD20在转基因细胞上以相当于人细胞上表达的CD20的40％的水平表达。用抗人CD20抗体处理小鼠，除了脾边缘区B细胞(图10)与派伊尔斑(图12)和脾(图14)两者的生发中心B细胞之外，在处理3-4天之内导致B细胞的显著消减。不一定受任何学说束缚，B细胞死亡似乎是由ADCC、依赖于补体的细胞毒性(CDC)或者细胞程序死亡或者该三者的组合所介导。在用抗-人CD20处理过的小鼠中观察到对T非依赖性抗原的反应，其与脾边缘区B细胞对抗-人CD20抗体导致的消减的对抗相一致。对抗-人CD20抗体的杀伤作用有抗力的B细胞引起T-非依赖性免疫反应的保留，和/或提供如果想要的话可能需要联合治疗以消减所有的B细胞的指示。在用抗-人CD20抗体处理后14周观察到表达人CD20的B细胞的恢复，很可能是由于前体B细胞的成熟。这些结果类似于在用Rituxan处理过的人中观察到的。

实施例2

这个实施例显示在抗-CD20单克隆抗体与BR3拮抗剂治疗对于B细胞调制/消减之间的协同作用。BR3-Fc是免疫粘附素，其中人BR3的细胞外结构域与免疫球蛋白序列(在这种情况下是人IgG1)的恒定结构域融合。

表达人CD20转基因小鼠(命名为hCD20⁺小鼠)用抗CD20单克隆抗体(在第9天单个注射100微克)、BR3-Fc(从第1天至第12天，100微克每隔一天)，或者抗-CD20单克隆抗体与BR3-Fc的联合进行腹膜内注射来处理。每组由4只小鼠组成。最后一次注射后两天，杀死小鼠，并且分析hCD20⁺B细胞。针对B细胞标志物(CD21⁺CD23⁺)对脾、血、淋巴结和派伊尔斑进行FACS分析。

结果表示抗-CD20单克隆抗体治疗消减多于99％的血液与淋巴结成熟循环B细胞，并且BR3-Fc处理在血与淋巴结中降低成熟循环B细胞(图16)。抗-CD20单克隆抗体治疗消减T2与滤泡B细胞，但不消减脾边缘区B细胞，而BR3-Fc处理降低脾T2/滤泡与边缘区B细胞。

抗-CD20单克隆抗体与BR3-Fc的联合协同消减脾中所有的B细胞群体。抗-CD20单克隆抗体消减不发生于大部分边缘区与一些滤泡/T2脾B细胞，而BR3-Fc消减主要发生在边缘区与一些滤泡/T2B细胞(图16)。因此，这两试剂的组合完全消减脾的B系谱细胞。BR3-Fc、2H7以及两者的组合对派伊尔斑生发中心B细胞都没有影响(图17)。用抗-CD20单克隆抗体处理后浆细胞没有受到显著影响(图18)，指示免疫反应性的一些方面在用抗-CD20抗体处理过的小鼠中仍保持着。

这些结果表明联合治疗对消减大多数B细胞是有效的。类似于人，转基因小鼠中一些B细胞对用抗-CD20抗体的杀伤作用有抗性。联合治疗导致脾中对抗-CD20抗体有抗力的B细胞的消减。这显示转基因小鼠对鉴定药物组合(combinations of agents)上也有用处，该药物组合在具有抗-CD20抗性细胞或者极具侵袭性的肿瘤的情况下可能更有效。

实施例3

在这个实验中，证实自然杀伤细胞在抗-CD20单克隆抗体介导的B细胞消减中起作用。

产生PK-136单克隆抗体(特异针对小鼠NK1.1)的杂交瘤克隆从ATCC获得。分别用对照单克隆抗体、PK-136、抗-CD20单克隆抗体与PK-136/抗-CD20的联合腹膜内注射给四组人CD20转基因小鼠。腹膜内注射的剂量如下：

对照单克隆抗体：200μg/ip，3ip/周，共1周

PK-136：200μg/ip，3ip/周，共1周

抗-CD20单克隆抗体：10μg/ip，单一剂量

在抗-CD20单克隆抗体腹膜内注射之后3天分析来自外周血、淋巴结与脾的淋巴细胞。数据用平均数+/-标准误差来表示，n＝8。

该结果指示在已检查过的组织之中(肝脏，脾与血液)用PK-136处理导致NK细胞群体大约80％至90％的减少(图19)。在大多数NK细胞缺乏时，2H7介导的B细胞消减有效性降低(图20)。因此，NK细胞在抗-CD20单克隆抗体介导的B细胞消减中起作用。

实施例4

生产表达人CD20/CD16的转基因动物，并且评价人标志物的表达。

如实施例1中的描述从人CD20BAC DNA(Invitrogen，Carlsbad，CA)生产人CD20转基因小鼠。基于人CD20表达的FACS分析筛选小鼠。具有对于人CD16α链亚型A的人转基因与缺乏鼠CD16α链的裸鼠获得自Ravetch博士(洛克菲勒大学)。这些小鼠然后先后与C57B16、FVB、129小鼠交配，以获得在129/裸鼠/FVB/B6背景下对于编码CD16α链的人转基因来说阳性、并且缺乏鼠CD16α链的小鼠。具有人CD20的FVB小鼠然后与具有人CD16α链并缺乏小鼠CD16α链的129/裸鼠/FVB/B6小鼠杂交。

人标志物在huCD20Tg⁺huCD16Tg⁺mCD16^-/-小鼠中的表达通过分离来自外周血细胞的白细胞并且对其染色来评价，染色使用标记的抗-人CD20抗体(m2H7)、抗-B220抗体(获得自BD PharMingen)、与抗-人CD16抗体(获得自BD PharMingen)。利用FACS进行染色的细胞群体的分析。将huCD20Tg⁺huCD 16Tg⁺mCD 16与CD20Tg-/CD16Tg-(对照小鼠)、CD20Tg+/CD16Tg-、CD20Tg-/CD16Tg+小鼠比较。结果示于图21。

结果显示CD20Tg+/CD16Tg-小鼠具有表达人CD20的细胞，而且基于他们与抗-B220抗体的反应性确定这些细胞是B细胞。基于用抗-人CD16进行的染色，CD20Tg-/CD16Tg+小鼠具有表达人CD16的细胞，但是不是B细胞，因为这些细胞不与抗-B220抗体反应。huCD20Tg⁺huCD16Tg⁺mCD16^-/-兼备看来是不同细胞群体的CD20与CD16阳性细胞。结果显示CD20Tg+/CD16Tg+小鼠被成功地生产。这些结果也与如下观点一致，即人CD20在B细胞上存在，并且人CD16主要在自然杀伤细胞、巨噬细胞与粒细胞上表达。

分析表达人CD16转基因的细胞，以判定哪个细胞类型表达该转基因。外周血细胞获自huCD20⁺huCD16⁺mCD16^-/-转基因小鼠，并且用PE标记的抗人CD16抗体(BD Pharmingen)染色，并且用偶联至APC的抗F4/80抗体门化以检测巨噬细胞，或用抗-DX5⁺抗体以检测自然杀伤细胞。结果表明表达huCD16⁺转基因的细胞是自然杀伤细胞与巨噬细胞。

分析来自缺乏鼠CD16α链小鼠的细胞，以判定鼠CD16α链是否在该细胞上存在。来自缺乏鼠CD16α链小鼠和野生型小鼠的外周血细胞用抗-小鼠CD16抗体染色，并且用FACS分析。结果示于图26。结果表明由于该基因的敲除，在缺乏CD16α链小鼠的细胞上没有可检测的鼠CD16α链。

分析缺乏鼠CD16α链小鼠的细胞，以判定是否表达其它的Fc受体。分析该细胞中小鼠FcγRI(CD64)的存在或者缺乏。缺乏鼠CD16α链小鼠与野生型小鼠的外周血细胞用抗-小鼠CD64单克隆抗体(由Genentech制备)染色，并用FACS分析。血细胞通过用抗-mac-1染色对巨噬细胞进行门化。结果示于图27。阴影部分是同种型对照。结果表明在由于CD16α链基因敲除而缺乏CD16α链的小鼠的巨噬细胞上有FcγRI(CD64)表达。染色的微弱漂移(shift)可能是由于该抗体的低亲合力。这些结果暗示鼠CD16α链-/-敲除小鼠表达其它的小鼠Fc受体和小鼠γ链同二聚体。

Claims (22)

1.一种非人转基因动物，所述非人转基因动物的基因组中包含编码人CD20的第一核苷酸序列以及编码异源FcγIII受体的亚单位的第二核苷酸序列。

2.根据权利要求1的转基因动物，其中所述第一核苷酸序列可操作地与人内源启动子连接。

3.根据权利要求2的转基因动物，所述转基因动物的细胞表达人CD20。

4.根据权利要求3的转基因动物，其中人CD20在B淋巴细胞的表面上表达。

5.根据权利要求2的转基因动物，其中所述第二核苷酸序列可操作地与人内源启动子连接。

6.根据权利要求1的转基因动物，其中所述第二核苷酸序列编码人CD16α链亚型A。

7.根据权利要求6的转基因动物，其中所述受体在白细胞表面上表达。

8.根据权利要求7的转基因动物，其中所述受体在包含自然杀伤细胞、巨噬细胞、嗜中性白细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞、肥大细胞或者胸腺细胞或者其混合物的细胞表面上表达。

9.根据权利要求1的转基因动物，其中所述动物的基因组进一步在内源基因上包含破坏，所述内源基因编码基本上与异源FcγIII受体同源的受体亚单位。

10.根据权利要求9的转基因动物，其中内源基因编码鼠CD16α链。

11.鉴定能治疗B细胞淋巴瘤的药物的方法，所述方法包含：

a)测量权利要求1或者9的动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

b)给药根据权利要求1或者9的动物所述药物；并且

c)测量在该动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

其中用该药物处理后在该动物中表达人CD20的B淋巴细胞数目减少，则鉴定该药物为能治疗B细胞淋巴瘤的药物。

12.用根据权利要求11的方法鉴定的药物。

13.鉴定能消减或者杀死表达人CD20的细胞的药物的方法，所述方法包含：

a)测量权利要求1或者9的动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

b)给药根据权利要求1或者9的动物所述药物；并且

c)测量在该动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

其中在该动物中表达人CD20的B淋巴细胞数目减少鉴定能消减或者杀死表达CD20的细胞的药物。

14.根据权利要求13的方法，其中所述细胞是癌细胞。

15.用根据权利要求14的方法鉴定的药物。

16.来源于权利要求1或者9的转基因动物的细胞或者组织。

17.根据权利要求1或者9的转基因动物，其中所述动物是啮齿类动物。

18.根据权利要求17的转基因动物，其中所述啮齿类动物是小鼠。

19.鉴定能诱导Fc-介导的效应子细胞反应的药物的方法，所述方法包含：

a)测量权利要求1的转基因动物中与Fc-介导的效应子细胞反应相关的一个或更多细胞因子的基线水平；

b)给药该转基因动物所述药物；

c)测量该动物中细胞因子的水平；

其中给药之后细胞因子水平增加鉴定能诱导Fc-介导的效应子细胞反应的药物。

20.鉴定能诱导针对表达人CD20的B淋巴细胞的Fc-介导的效应子细胞反应的药物的方法，所述方法包含：

a)测量在第一转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

b)给药第一转基因动物所述药物；

c)测量第一转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

d)确定在步骤(a)与步骤(c)之间B淋巴细胞水平的降低百分率；

e)测量权利要求1的第二转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

f)给药权利要求1的第二转基因动物所述药物；

g)测量第二转基因动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；并且

h)确定在步骤(e)与步骤(g)之间B淋巴细胞水平的降低百分率；

其中如果在步骤(h)中确定的降低百分率大于在步骤(d)中确定的降低百分率，则该药物被鉴定为能诱导针对表达人CD20的B淋巴细胞的Fc-介导的效应子细胞反应的药物。

21.测试抗-人CD20治疗的安全性的方法，所述方法包含：

a)测量权利要求1或者9的动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

b)给药根据权利要求1或者9的动物所述药物；并且

c)测量该动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

其中该动物中表达人CD20的B淋巴细胞数目减少鉴定能消减或者杀死表达CD20的细胞的药物；

d)监视该动物短期或者长期的副作用。

22.测试抗-人CD20治疗效力的方法，所述方法包含：

a)测量权利要求1或者9的一组动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；

b)给药该组的每个动物不同剂量的一种药物；并且

c)测量在每一剂量之后该动物中表达人CD20的B淋巴细胞的水平；和

d)确定导致最多的B细胞消减的药物的至少一个剂量。

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