CN117180458A - 草酰乙酸在溶融动态核极化中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了草酰乙酸在溶融动态核极化中的应用,本发明以草酰乙酸作为溶融动态核极化的自由基极化剂,通过使用UV光照草酰乙酸产生的草酰乙酸自由基,同时草酰乙酸自身也可以作为目标代谢探针小分子,超极化后可以注射入活体内,实现草酰乙酸相关疾病代谢途径的实时监测,对于人体相关疾病研究具有十分重要的意义。本发明还可以以草酰乙酸作为溶融动态核极化的自由基极化剂,去极化其他(如丙酸等)与人体内代谢相关的小分子,超极化后的目标代谢探针分子在溶融过程中,通过UV光照草酰乙酸产生的草酰乙酸自由基会淬灭掉,减少目标代谢探针分子转移过程中超极化态的损失,同时草酰乙酸本身作为内源性分子,对人体无害。
Description
技术领域
本发明属于核磁共振及电子顺磁共振技术领域,具体涉及草酰乙酸在溶融动态核极化中的应用。
背景技术
草酰乙酸是一个非常重要的代谢小分子,它参与多个代谢过程包括TCA循环途径、天冬氨酸合成途径以及糖原合成途径等。尤其重要的是,它是TCA循环中一个非常重要的中间产物,它是合成柠檬酸的重要前体物质并在TCA循环的终端重新生成,起到一个相当于催化的作用。草酰乙酸作为在TCA循环里关键的限速物质,其代谢通量影响着整个细胞内的能量流通,亦可反应有机体不同的生理或病理状态。
相关文献报道,草酰乙酸可通过提高NAD+水平抑制Warburg效应从而抑制肿瘤生长。以人体肝癌细胞HepG2细胞、裸鼠肝癌移植瘤和临床肝癌组织原代培养细胞作为三个模型的研究中,发现并证实了草酰乙酸对肝癌细胞增殖有明显的抑制作用并可以诱导肝癌细胞凋亡,因此,研究草酰乙酸在有机体中的代谢通量对于疾病的诊断至关重要,然而对草酰乙酸在有机体内的无损代谢通量检测方向目前并没有十分成熟的方法。
溶融动态核极化(dDNP, dissolution Dynamic Nuclear Polarization),可以将核磁共振的检测灵敏度提高4个数量级,结合NMR在体无损检测的优势,有望实现对草酰乙酸代谢通量的在体检测。然而dDNP技术需要自由基提供电子,目前溶融动态核极化技术中使用到的自由基包括常规的人工合成自由基(如TEMPOL、BDPA以及Trityl等)和生物内源性自由基(如丙酮酸以及α-酮戊二酸等)。无论使用上述哪种自由基,必定会引入新的物质,对草酰乙酸实际的代谢通量会有潜在的影响,增加了分析草酰乙酸代谢过程的复杂性。
发明内容
为了解决上述现有技术存在的问题,本发明提供了草酰乙酸在溶融动态核极化中的应用,本发明将草酰乙酸作为自由基极化剂,可产生草酰乙酸自由基并直接进行极化增强,不会引入其他影响生物代谢过程的外源自由基。
实现本发明上述目的所采用的技术方案为:
草酰乙酸在作为溶融动态核极化自由基极化剂中的应用。
进一步,所述的草酰乙酸作为自由基极化剂时,将草酰乙酸溶解于乙醇与水的混合溶剂中,乙醇与水的体积比为1~9:9~1,制备成草酰乙酸溶液,草酰乙酸的浓度为0.8~1.2M。
进一步,所述的草酰乙酸作为自由基极化剂时,通过光照草酰乙酸溶液产生草酰乙酸自由基,光照条件如下:光源波长范围为280nm-400nm,光照功率为7~40W/cm2,光照时间为100~600s。
一种目标代谢小分子的实时代谢通量示踪的方法,包括如下步骤:
将目标代谢小分子和草酰乙酸进行UV光照处理产生草酰乙酸自由基,随后进行溶融动态核极化,最后实时检测溶融动态核极化后的目标代谢小分子的代谢通量。
进一步,所述的目标代谢小分子为草酰乙酸自身或其他代谢小分子。
进一步,所述的其他代谢小分子为丙酸或其他代谢小分子。
与现有技术相比,本发明的优点与有益效果在于:
1、本发明以草酰乙酸作为溶融动态核极化的自由基极化剂,可以使用13C标记的草酰乙酸,通过使用UV光照产生草酰乙酸自由基,同时草酰乙酸自身也可以作为目标代谢探针小分子,超极化后可以注射入活体内,实现草酰乙酸相关疾病代谢途径的实时监测,对于人体相关疾病研究具有十分重要的意义。
2、本发明以草酰乙酸作为溶融动态核极化的自由基极化剂的基础上,提出了基于溶融动态核极化增强核磁共振信号的方法实现草酰乙酸在有机体内的无损代谢通量检测。
3、本发明以草酰乙酸作为溶融动态核极化的自由基极化剂,可以去极化其他目标代谢探针小分子,目标代谢探针小分子可以选择丙酸等与人体内代谢相关的小分子,超极化后的目标代谢探针分子在溶融过程中,通过UV光照草酰乙酸产生的草酰乙酸自由基会淬灭掉,减少目标代谢探针分子转移过程中超极化态的损失,同时草酰乙酸本身作为内源性分子,对人体无害。
附图说明
图1为不同浓度草酰乙酸溶液与自由基产量的关系图。
图2为不同溶剂配比的草酰乙酸溶液与自由基产量的关系图。
图3为自由基稳定性与温度的关系图。
图4为不同光照时间与草酰乙酸溶液产生的自由基产量的关系图。
图5为不同光照功率与草酰乙酸溶液产生的自由基产量的关系图。
图6为1-13C丙酸低温下极化后NMR信号增强随时间变化图。
图7为1-13C丙酸溶融转移后的超极化NMR信号衰减随时间变化图。
图8为1-13C丙酸超极化状态下1次采集和热平衡状态下累加3000次采集NMR信号强度对比图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行详细说明
试验一、不同浓度草酰乙酸溶液与自由基产量的关系试验
试验方法:
S1、制备样品溶液:
分别称取13.2mg,33mg,52.8mg,66mg,99mg和132mg草酰乙酸粉末,分别溶于7组0.5ml混合溶剂中,混合溶剂为乙醇与水以体积比1:1混合而成,分别得到7组摩尔浓度为0.2M、0.5M、0.8M、1M、1.5M、2M的草酰乙酸溶液。
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取对应浓度的草酰乙酸溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品,依照此方法,制备7组不同浓度的草酰乙酸溶液对应的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
每次选取4颗用一种浓度的草酰乙酸溶液制备成的微珠样品转移至石英杜瓦内。使用光照功率为40W/cm2、波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,对微珠样品进行光照,光照时间为600s。
S4:ESR测试:
将光照处理后的微珠样品转移至X波段ESR谱仪的专用的石英样品管进行测试。测试参数如下:温度123K,微波功率0.2mW,调制场幅度为0.1mT,谱宽为312mT-342mT,采样时间为20s。
S5、重复步骤S3- S4六次,直至7组不同浓度的草酰乙酸溶液制备成的微珠样品全部完成检测。
试验结果:
将测得的ESR谱图结果进行二次积分,得到自由基产量与草酰乙酸溶液浓度的关系图,如图1所示。从图1中可以看出,当草酰乙酸溶液浓度小于0.8M时,自由基产量随着草酰乙酸浓度的增加而增加,当草酰乙酸浓度大于0.8M时,产生自由基的含量基本趋于稳定。
但是对于草酰乙酸溶于该混合溶剂(乙醇与水体积比1:1)而言,当草酰乙酸浓度大于等于1.5M时,其溶解度趋于饱和,较难完全溶于该混合溶剂中,浓度大于等于1.5M的草酰乙酸溶液制备的微珠样品,由于不纯净,也会影响后续光照的效果。因此,草酰乙酸溶液的最佳浓度在0.8M~1.2M之间。
试验二、不同溶剂配比与自由基产量的关系试验
试验方法:
S1、制备样品溶液:
称取66mg草酰乙酸粉末,分别溶于5组0.5ml不同溶剂配比的混合溶剂中,5组混合溶剂中,乙醇与水的体积比分别为1:9、3:7、5:5、7:3、9:1,分别得到5组摩尔浓度为1M的草酰乙酸溶液。
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取对应溶剂配比配制的草酰乙酸溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品,依照此方法,制备5组不同溶剂配比配制的草酰乙酸溶液对应的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
每次选取4颗用一种溶剂配比配制的草酰乙酸溶液制备成的微珠样品转移至石英杜瓦内。使用光照功率为40W/cm2、波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,对微珠样品进行光照,光照时间为600s。
S4:ESR测试:
将光照处理后的微珠样品转移至X波段ESR谱仪的专用石英样品管进行测试。测试参数如下:温度123K,微波功率0.2mW,调制场幅度为0.1mT,谱宽为312mT-342mT,采样时间为20s。
S5、重复步骤S3- S4六次,直至5组不同溶剂配比配制的草酰乙酸溶液制备成的微珠样品全部完成检测。
试验结果:
将测得的ESR谱图结果进行二次积分,得到自由基产量与不同溶剂配比的草酰乙酸溶液的关系图,如图2所示。从图2中可以看出,草酰乙酸溶液中乙醇与水体积比7:3和乙醇与水体积比5:5时,相对于其他溶剂配比的草酰乙酸溶液,自由基产量要高很多,但是两者的自由基产量差别不大。
综合考虑不同溶剂配比中产生自由基的温度稳定性以及自由基产量后,最终选择乙醇与水体积比为5:5为最佳的溶剂配比。
试验三、温度与自由基稳定性的关系试验
试验方法:
S1、制备样品溶液:
称取66mg草酰乙酸粉末,溶于0.5ml混合溶剂中,混合溶剂中,乙醇与水的体积比为5:5,得到摩尔浓度为1M的草酰乙酸溶液。
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取草酰乙酸溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
将微珠样品转移至石英杜瓦内,使用光照功率为40W/cm2、波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,对微珠样品进行光照,光照时间为600s。
S4:ESR测试:
将光照处理后的微珠样品转移至X波段ESR谱仪的专用石英样品管进行测试。测试参数如下:微波功率0.2mW,调制场幅度为0.1mT,谱宽为312mT-342mT,采样时间为20s。从温度123K开始测试,之后温度每升高5K测试一次(每次待温度稳定后测试),直至信号消失。
试验结果:
将测得的ESR谱图结果进行二次积分,得到自由基产量存在稳定性与温度的关系图,如图3所示。从图3可以看出,草酰乙酸产生的自由基从145K开始淬灭,到170K时自由基淬灭完全。
试验四、光照时间与自由基产量的关系试验
试验方法:
S1、制备样品溶液:
称取66mg草酰乙酸粉末,溶于0.5ml混合溶剂中,混合溶剂中,乙醇与水的体积比为5:5,得到摩尔浓度为1M的草酰乙酸溶液。
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取草酰乙酸溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
将微珠样品转移至石英杜瓦内,使用光照功率为40W/cm2、波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,对微珠样品进行光照,光照时间分别设置为100s,200s,300s,400s,500s、600s。
S4:ESR测试:
将不同光照时间处理后的微珠样品分别转移至X波段ESR谱仪的专用石英样品管进行测试。测试参数如下:温度123K,微波功率0.2mW,调制场幅度为0.1mT,谱宽为312mT-342mT,采样时间为20s。
试验结果:
将测得的ESR谱图结果进行二次积分,得到自由基产量与光照时间的关系图,如图4所示。从图4可以看出,光照时间在500s内,自由基产量随着光照时间增长而增加,但光照时间达到500s左右,自由基浓度达到饱和,不再随着光照时间增长而增加。
试验五、光照强度与自由基产量的关系试验
试验方法:
S1、制备样品溶液:
称取66mg草酰乙酸粉末,溶于0.5ml混合溶剂中,混合溶剂中,乙醇与水的体积比为5:5,得到摩尔浓度为1M的草酰乙酸溶液。
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取草酰乙酸溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
将微珠样品转移至石英杜瓦内,使用波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,在7W/cm2、14W/cm2、21W/cm2、28W/cm2、35 W/cm2、40 W/cm2光照功率下分别对微珠样品进行光照,光照时间为600s。
S4:ESR测试:
将不同光照功率处理后的微珠样品分别转移至X波段ESR谱仪的专用石英样品管进行测试。测试参数如下:温度123K,微波功率0.2mW,调制场幅度为0.1mT,谱宽为312mT-342mT,采样时间为20s。
试验结果:
将测得的ESR谱图结果进行二次积分,得到自由基产量与光照功率的关系图,如图5所示。从图5可以看出,光照功率在35 W/cm2内,自由基产量随着光照功率的增加而增加,但光照功率在35 W/cm2左右,自由基浓度达到饱和,不再随着光照功率增加而增加。
实施例1
S1、制备样品溶液:
称取13.21mg草酰乙酸粉末,依次加入50μl乙醇、50μl水、50μl[1- 13C]标记的丙酸,混合均匀,得到样品溶液;
S2:制备样品微珠:
用5μl移液枪吸取样品溶液滴入半球形液氮杜瓦内,滴成微珠状,制备成外观饱满透明的微珠样品。
S3:对微珠样品进行光照处理:
将微珠样品转移至石英杜瓦内,使用光照功率为40W/cm2、波长范围为280nm-400nm宽波段的光源,对微珠样品进行光照,光照时间为400s。
S4:DNP极化饱和实验:
将光照后的30颗微珠样品(共计约150μl)转移至极化器的样品区中,在磁场强度5T、温度1.69K环境下,设置微波源施加频率为139.908GHz、功率约100mW的连续微波对样品进行微波极化,同时每隔5分钟使用0.8μs的小角度脉冲(5°),检测NMR信号,观测NMR信号峰强度随时间的变化情况。
1-13C丙酸低温下极化增强NMR信号随时间变化如图6所示,由图6可知,NMR信号强度在90min后不再增长趋于稳定,此时1-13C丙酸低温极化达到饱和。
S5:极化样品溶融转移检测实验:
当低温下检测到1-13C丙酸NMR信号峰强度不在增加时,使用0.5MPa压力大小的氦气将8ml高温高压重水或缓冲液溶液(2MPa、190℃)推送入极化器的样品区中将低温极化样品溶融,随后快速定量转移至另一个5T核磁共振谱仪的8mm核磁管(室温)中(转移时间约为12s,定量的样品容量约2ml),转移完成后,立刻进行NMR检测,每隔3s,使用1.5μs小角度脉冲,观测样品极化信号峰的变化。
溶融转移后1-13C丙酸溶液超极化信号随时间变化如图7所示,由图7可知,1-13C丙酸超极化信号强度随时间呈指数衰减。
S6:进行热平衡信号累加实验:
当溶融转移后的样品溶液超极化状态完全褪去后(30min后),再使用与S6中相同脉冲参数对样品溶液的热平衡信号进行累加,检测NMR信号。
1-13C丙酸超极化状态下一次采集的信号与热平衡状态3000次累加后的NMR信号强度如图8所示,由图8可知,超极化后1-13C丙酸NMR信号强度增强了约15000倍。需要说明的是,将低温下极化完成后的固体样品溶融转移后,得到超极化后的样品溶液可以注入到细胞或是小鼠体内,进行丙酸相关代谢途径实时代谢检测。
Claims (6)
1.草酰乙酸在作为溶融动态核极化自由基极化剂中的应用。
2.根据权利要求1所述的草酰乙酸在作为溶融动态核极化自由基极化剂中的应用,其特征在于:所述的草酰乙酸作为自由基极化剂时,将草酰乙酸溶解于乙醇与水的混合溶剂中,乙醇与水的体积比为1~9:9~1,制备成草酰乙酸溶液,草酰乙酸的浓度为0.8~1.2M。
3.根据权利要求1所述的草酰乙酸在作为溶融动态核极化自由基极化剂中的应用,其特征在于:所述的草酰乙酸作为自由基极化剂时,通过光照草酰乙酸溶液产生草酰乙酸自由基,光照条件如下:光源波长范围为280nm-400nm,光照功率为7~40W/cm2,光照时间为100~600s。
4.一种目标代谢小分子的实时代谢通量示踪的方法,其特征在于包括如下步骤:
将目标代谢小分子和草酰乙酸进行UV光照处理产生草酰乙酸自由基,随后进行溶融动态核极化,最后实时检测溶融动态核极化后的目标代谢小分子的代谢通量。
5.根据权利要求4所述的目标代谢小分子的实时代谢通量示踪的方法,其特征在于:所述的目标代谢小分子为草酰乙酸自身或其他代谢小分子。
6.根据权利要求5所述的目标代谢小分子的实时代谢通量示踪的方法,其特征在于:所述的目标代谢小分子为丙酸或草酰乙酸自身。
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