CN116747196A - 脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途 - Google Patents

脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途 Download PDF

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Abstract

本发明属于药物制剂技术领域,具体涉及脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途。所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒是将小尺寸甲氨蝶呤‑白蛋白复合物(MTX‑HSA)包载在酸敏感脂质体中获得。本发明提供的脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒能显著提高药物在炎症微环境中积累和保留时间,并且通游离药物相比,具有更高的治疗效果和更小的副作用。此外,脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒可利用炎症微环境具有ELVIS效应,静脉注射给药后可以实现被动靶向,在炎症部位释放出更小的人血清白蛋白载药复合物,增强在炎症部位的蓄积,提高治疗效果。

Description

脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途
技术领域
本发明属于药物制剂技术领域,具体涉及脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途。
背景技术
炎症(Inflammation)是具有血管系统的活体组织对各种损伤因子的刺激所发生的以防御反应为主的基本病理过程。炎症是损伤、抗损伤和修复的动态过程,包括如下步骤:①各种损伤因子对机体的组织和细胞造成损伤;②在损伤周围组织中的前哨细胞(例如巨噬细胞),识别损伤因子及组织坏死物,产生炎症介质;③炎症介质激活宿主的血管反应及白细胞反应,使损伤局部的血液循环中的白细胞及血浆蛋白渗出到损伤因子所在部位,稀释、中和、杀伤及清除有害物质;④炎症反应的消退与终止;⑤实质细胞和间质细胞增生,修复受损伤的组织。致炎因子持续存在并且损伤组织是发生慢性炎症的根本原因。炎症灶内主要是巨噬细胞、淋巴细胞和浆细胞浸润。激活的巨噬细胞分泌多种生物活性产物,是造成慢性炎症中的组织破坏和纤维化的重要介质。因此,促进炎症型巨噬细胞的凋亡是一种有希望治疗慢性炎症的策略。
目前临床用于治疗炎症的药物包括抗炎药和抗生素。甲氨蝶呤(MTX)具有与叶酸相似的化学结构,对二氢叶酸还原酶(Dihydrofolate Reductase,DHFR)具有竞争性抑制作用,可导致四氢叶酸的生成受阻。除此之外,MTX还可以抑制胸腺核苷酸合成酶,同时可以抑制TNF-α等促炎细胞因子的产生,延缓炎症的发展。但是MTX在体内不具有靶向性,若患者长期服用,可能会导致比较严重的毒副作用,包括胃肠道窘迫、骨髓抑制、食欲不振和肝毒性等。同时,体内给药时,药物制剂也会分布在全身各处,导致在靶组织的治疗效果受损和副作用风险增加。最重要的是,即使药物制剂到达炎症微环境处,它仍然会从炎症部位迅速被清除。
根据文献报道,在炎症组织中增强渗透性和保留EPR效应也类似存在,这被称为通过泄漏血管的外渗和随后的炎症细胞介导的隔离(ELVIS)效应,这是因为随着炎症的发展,导致血管渗漏,炎症部位内皮细胞间的间隙高达600nm。当与患病部位微环境的特征性病理生理特征相结合时,NMs也能实现主动靶向策略。
与外源性纳米递药系统相比,天然仿生纳米递药系统具有更好的生物相容性、低细胞毒性和非免疫原性等优点。人血清白蛋白(HSA)是血清蛋白的主要成分,具有天然的生物相容性、可降解性、易生产及成本低等优点,是一种具有炎症靶向能力的多功能治疗和诊断药物载体。但由于炎症组织中纤维组织增生,致密的成纤维细胞阻止了大粒径载体的渗透,降低了治疗效果。最近,一种小尺寸的白蛋白-紫杉醇纳米复合物(10nm)被用于有效穿透肿瘤成纤维细胞,这与炎症中纤维性细胞的特点是一致的。脂质体作为应用最广泛的纳米颗粒之一,具有生物相容性高、易于获得和表面修饰等特点,在临床中得到了广泛的应用。此外,由于炎症细胞的快速增殖导致厌氧糖酵解和乳酸水平升高,酸性环境是炎性滑膜组织的典型特征。因此,特定的病理环境为设计治疗慢性炎症的按需给药系统提供了潜在的靶点。
综上,如何解决小尺寸载药纳米颗粒在血液中的滞留,有效将纳米颗粒积累到炎症组织中是本发明所要解决的技术问题。
发明内容
有鉴于上述技术问题,本发明提供了脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒及其制备方法和用途。
第一方面,本发明提供一种脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒的制备方法,包括以下步骤:
用甲醇将甲氨蝶呤MTX溶解为1-5mg/mL的试液I,用PBS缓冲液将人血清白蛋白HSA溶解为3-6mg/mL的试液II,以摩尔比HSA:MTX为1:1-6将试液I和试液II混合,反应2-4h,然后除去游离MTX与甲醇,再通过冷冻干燥得到MTX-HSA复合物;
2)用无水乙醇将蛋黄卵磷脂、胆固醇琥珀酸单酯溶解成油相,MTX-HSA复合物溶于PBS溶液中作为水相;将油相注入水相,并在38-42℃下反应2-3h,将反应液过滤,即得所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒。
进一步的,步骤1),通过超滤离心除去游离MTX与甲醇,参数为5000-7000r/min,20-40min。
更进一步的,步骤2),油相中蛋黄卵磷脂和胆固醇琥珀酸单酯的质量比为3-5:1。
更进一步的,步骤2),油相注入水相的速率为0.5-2mL/min。
更进一步的,步骤2),MTX-HSA复合物与胆固醇琥珀酸单酯的质量比为1-2:1。
第二方面,本发明提供所述方法制备得到的脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒。
第三方面,本发明提供所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒在制备治疗炎症性疾病的药物中的用途。
进一步的,所述炎症性疾病包括类风湿性关节炎、骨关节炎、动脉粥样硬化、心肌梗死、脓毒症、慢性肾炎和胰腺炎。
第四方面,本发明提供一种用于治疗炎症性疾病的药物,其包括所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒,以及药学上可接受的辅料或载体。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
1、本发明得到粒径为10nm左右的人血清白蛋白MTX复合物,载药量为2.4%。
2、本发明用脂质体包人血清白蛋白MTX复合物(Lipo/MTX-HSA),包封率为85.1%,载药量为8.2%。此外,该纳米粒形态圆整规则,大小均一,粒径基本在100nm左右,Zeta电位为-14.43±0.39mV。Lipo/MTX-HSA可以作为一种优异的药物递送纳米载体。
3、本发明制备了脂质体包人血清白蛋白载MTX纳米粒,利用炎症部位具有通透性增加的脉管系统的渗漏作用和随后的炎症细胞介导的滞留效应(ELVIS),静脉注射给药后可以实现被动靶向性,在炎症部位释放出小粒径的MTX-HSA,增强在炎症部位的蓄积,提高治疗效果。
4、本发明选用人血清白蛋白载MTX和脂质体包裹作为载体材料,制备出高载药量、高生物相容性、低毒性以及低免疫原性的靶向炎症微环境的纳米药物。体外试验结果显示,该纳米药物能够靶向炎症部位,被活化的巨噬细胞靶向摄取,表现出降低促炎因子TNF-α、IL-1β,升高抗炎因子IL-10的作用,将巨噬细胞表型从M1型转化为M2型的能力,调节炎症微环境,进一步抑制炎症的发展,并且通过JC-1可发现MTX相关制剂可导致线粒体膜电位下降,诱导巨噬细胞的线粒体功能障碍;在类风湿性关节炎大鼠模型中,活体成像研究显示出:该纳米药物可以延长循环时间,表现出良好的炎症关节靶向性;体内试验显示:该纳米药物对疾病大鼠表现出优异的疗效,共载药纳米粒可以有效改善关节炎症微环境,调节炎症因子的分泌,同时显著改善疾病组织的病理状况;体内安全性评价显示:该纳米药物未发生任何溶血情况,具备良好的安全性。
附图说明
图1:本发明实施例提供的纳米粒紫外可见光光谱、荧光共振能量转移。A、MTX、HSA、MTX-HSA、Lipo/MTX-HSA的紫外可见光光谱图;B、DIO-Lipo/DIL-HSA在1:1/2:1的荧光共振能量转移图。
图2:本发明实施例提供的粒子的马尔文粒径图。A、MTX-HSA;B、Lipo/MTX-HSA。
图3:本发明实施例提供的粒子的透射电镜图。A、MTX-HSA;B、Lipo/MTX-HSA。
图4:本发明实施例提供的药物释放能力评价。Lipo/MTX-HSA在不同pH条件下的释放效率。
图5:本发明实施例提供的稳定性评价。A、Lipo/MTX-HSA一周内的粒径变化;B、Lipo/MTX-HSA一周内的PDI变化。
图6:本发明实施例提供的体外生物相容性评价。MTX、MTX-HSA、Lipo/MTX-HSA在0.5-30μg/mL浓度下在RAW264.7细胞中的生物相容性。
图7:本发明实施例提供的巨噬细胞细胞摄取评价。A、用Cy5代替MTX,用共聚焦显微镜进行巨噬细胞摄取研究;B、用共聚焦显微镜进行药物内吞机制研究;C、流式检测活化前后的RAW264.7对荧光制剂的摄取情况;D、流式检测不同内吞抑制剂对荧光制剂的摄取方式情况。
图8:本发明实施例提供的滑膜成纤维细胞摄取评价。A、用Cy5代替MTX,用共聚焦显微镜进行FLS细胞摄取研究;B、A图中摄取实验放大倍数图;C、采用JC-1研究MTX相关制剂对FLS细胞的线粒体损伤情况;D、对FLS进行AM/PI钙黄蛋白染色的定量分析。E、AM/PI钙黄蛋白染色不同处理的FLS细胞的荧光显微镜图像。
图9:本发明实施例提供的体外细胞抗炎评价。A-C、采用RT-qPCR检测促炎因子TNF-α、IL-1β,以及抗炎因子IL-10的表达。
图10:本发明实施例提供的线粒体损伤评价。采用JC-1研究MTX相关制剂对RAW264.7细胞的线粒体损伤情况。
图11:本发明实施例提供的体内组织分布评价。CIA大鼠给DID荧光制剂后,进行活体成像。A、分别在1、6、12、24h拍摄了尾静脉注射Cy5-HSA、Lipo/Cy5-HSA后的荧光照片;B、给荧光制剂24h后,牺牲大鼠,对心、肝、脾、肺、肾、关节、血液进行荧光拍照;C、对A的荧光定量分析。
图12:本发明实施例提供的体内药效学评价。经normal组、control组、MTX、MTX-HSA、Lipo/MTX-HSA组治疗前后CIA大鼠,A、关节肿胀程度变化;B、足体积变化;C、关节评分;D、踝关节直径/足掌厚度;E、大鼠体重变化。
图13:本发明实施例提供的体内抗炎评价。A-C:经normal组、control组、MTX、MTX-HSA、Lipo/MTX-HSA组治疗前后CIA大鼠,取血清进行ELISA检测促炎因子TNF-α、IL-1β;以及抗炎因子IL-10。
图14:本发明实施例提供的关节组织病理学评价。对关节组织进行病理学研究,A-B、H&E染色;C-D、SO染色;E-F、甲苯胺蓝染色。
图15:本发明实施例提供的体内安全性评价。MTX、MTX-HSA、Lipo/MTX-HSA组的溶血实验。
图16:本发明实施例提供的动脉粥样硬化小鼠模型的体内分布研究。
图17:本发明实施例提供的动脉粥样硬化小鼠血管油红O染色。
图18:本发明实施例提供的动脉粥样硬化小鼠血管HE染色。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明进行详细说明,但不应理解为本发明的限制。如未特殊说明,下述实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段,下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1:脂质体包人血清白蛋白载药(Lipo/MTX-HSA)纳米粒制备和表征
本实施例的Lipo/MTX-HSA纳米粒制备方法如下:
步骤1:合成MTX-HSA复合物,具体地,①精密称取处方量的MTX,用甲醇/无水乙醇/水溶解为2mg/mL的试液;②精密称取处方量的HSA,用PBS缓冲液溶解为4mg/mL的试液;③按摩尔比HSA:MTX=1:1/1:2/1:4/1:6量取两试液,混合搅拌3h后,通过超滤离心除去游离MTX与甲醇(6000r/min,30min);④再通过冷冻干燥即可制得MTX-HSA复合物(MTX-HSA使用前溶解在PBS溶液中)。
步骤2:合成Lipo/MTX-HSA纳米粒,具体地,①精密称取处方中所述的蛋黄卵磷脂E80、胆固醇琥珀酸单酯(CHS),无水乙醇作为溶剂涡旋溶解制成3mL的油相(蛋黄卵磷脂:CHS=3:1/4:1/5:1,w/w),处方中所述的MTX-HSA复合物溶于5mL pH 7.4的PBS溶液中作为水相;②将注入速度设置为0.5/1/2mL/min,使用针孔注射器将制备的油相缓慢注入水相中(边搅拌边注入,MTX-HSA:CHS=1:1/1.5:1/2:1,w/w),在40℃水浴条件下以200/300/400/500r/min的转速缓慢搅拌反应2h;③将搅拌2h的反应液先后用0.45μm与0.22μm的微孔滤膜过滤,则可以得到所需Lipo/MTX-HSA溶液。
通过粒径(Size)、Zeta电位和分散指数(PDI)对MTX-HSA复合物及Lipo/MTX-HSA纳米粒进行表征。
表1显示,步骤1所制得的MTX-HSA复合物,制备的优选有机溶剂为甲醇,摩尔比HSA:MTX为1:4。
表2、3、4、5显示,步骤2所制得的Lipo/MTX-HSA纳米粒制备的优选MTX-HSA:CHS质量比为1.5:1,蛋黄卵磷脂E80:CHS质量比为4:1,磁力搅拌速度的选择为300r/min,针孔注射器注入速度的选择0.5mL/min。
表6为最终的实验处方。
表1MTX和HSA剂量比的单因素研究
表2MTX-HSA与CHS比值(w/w)的单因素研究
表3蛋黄卵磷脂E80和CHS剂量比(w/w)的单因素研究
表4磁性搅拌速度的单因素研究
表5针孔注射器注射速度的单因素研究
表6最终的实验处方
图1A通过紫外可见光光谱全波长扫描Lipo/MTX-HSA,观察到MTX在302nm处有明显的吸收峰,证实了脂质体中成功包载了MTX。并且HSA和Lipo/MTX-HSA的蛋白特定吸收峰也存在,表明蛋白结构不受载药的影响。图1B通过荧光共振能量转移(FRET)可以确认脂质体上装载了HSA。DIO作为供体与脂质体结合,而DIL作为受体与HSA结合。随着DIL-HSA浓度的增加,受体(DIL,569nm)的荧光强度增加,而供体(DIO)在501nm处的荧光强度降低,表明存在FERT效应。
图2A显示MTX-HSA粒径约为10nm,图2B显示Lipo/MTX-HSA的粒径约为100nm。此外,Lipo/MTX-HSA的PDI为0.171±0.013,Zeta电位为-14.43±0.39mV。通过MTX的浓度可计算得到MTX-HSA复合物的载药量约为2.4%,所制备的Lipo/MTX-HSA的包封率约为85.1%,载药量约为8.2%。
图3A显示,通过透射电镜观察MTX-HSA为20nm的圆形纳米粒,图3B可以看出Lipo/MTX-HSA的形态圆整规则,大小均一,粒径基本在100nm左右。
图4显示Lipo/MTX-HSA在不同pH条件下的释放。与pH=7.4组相比,Lipo/MTX-HSA在pH=5.5的释放速度较快。在12h内pH=5.5组的释放速率较快,pH=5.5和pH=7.4分别释放了70%和57%的MTX。表明Lipo/MTX-HSA能响应炎症的微酸性环境,加速MTX的释放。
图5A、B显示,Lipo/MTX-HSA的粒径和PDI连续7天几乎没有变化,在体外表现出良好的稳定性。
实施例2:Lipo/MTX-HSA纳米粒的体外细胞学研究
(1)采用MTT法评价不同剂型的细胞毒性。从图6可以看出,与RAW264.7细胞孵育24h后,MTX和MTX-HSA表现出浓度依赖性的抑制作用(0.5~30μg/mL)。在浓度为30μg/mL时,MTX和MTX-HSA的存活率分别低于50%和60%。然而,通过Lipo/MTX-HSA处理,我们可以看到细胞活力显著增加,在高浓度(30μg/mL)下达到70%以上(*P<0.05)。证实脂质体包被提高了纳米颗粒对巨噬细胞的生物相容性和选择性。
(2)研究荧光制剂在细胞内的分布。图7A显示,LPS激活的巨噬细胞中红色荧光强度明显高于未激活的巨噬细胞。在无LPS刺激的RAW264.7中,Lipo/Cy5-HSA组Cy5荧光强度与Cy5-HSA组相近,且强于游离Cy5组。图7B显示,在LPS刺激的RAW264.7细胞中,Lipo/Cy5-HSA组与Cy5-HSA组的荧光强度存在差异,与流式细胞仪(图7C)检测的荧光强度数据一致。这可能是由于较小的Cy5-HSA纳米颗粒(7nm)比较大的Lipo/Cy5-HSA(80nm)更有利于胞吐。与Cy5-HSA相比,Lipo/Cy5-HSA在一定程度上降低了Cy5-HSA的胞外分泌,延长了LPS激活RAW264.7细胞中Cy5-HSA的停留时间。
图8A显示在FLS细胞中,Lipo/Cy5-HSA组Cy5荧光强度与Cy5-HSA组相近,且强于游离Cy5组。如图8B所示,MTX制剂组JC-1单体的绿色荧光强度明显高于对照组,证实MTX相关制剂可诱导巨噬细胞和FLSs线粒体功能障碍。图8C,D显示,MTX-HSA处理后的细胞活力显著低于相同浓度的MTX或Lipo/MTX-H SA(**P<0.01)。图8E所示,经MTX-HSA和Lipo/MTX-HSA处理的CIA-FLS红色荧光最强。相反,经MTX处理的CIA-FLS发出大量绿色荧光,表明细胞死亡水平较低。这些数据和结果表明,MTX-HSA可以通过抑制FLSs的活力来减轻炎症。
(3)探究制剂的细胞内吞途径。采用甲基-β-CD(小孔介导的内吞抑制剂)、盐酸阿米洛利(大胞饮介导的内吞抑制剂)、氯丙嗪(网格蛋白介导的内吞抑制剂)研究了纳米材料的细胞进入途径。如图7D所示,盐酸阿米洛利显著降低了活化巨噬细胞对Lipo/Cy5-HSA的摄取效率。结果表明,大部分Lipo/Cy5-HSA通过大胞饮进入细胞,这种摄取方式有助于绕过溶酶体。
实施例3:Lipo/MTX-HSA的体外细胞药效学研究
(1)研究制剂的细胞抗炎药效学。通过研究Lipo/MTX-HSA对炎症因子分泌的影响,发现Lipo/MTX-HSA可以抑制活化巨噬细胞中这些细胞因子的分泌,这与正常巨噬细胞的分泌相当(图9A-B)。值得注意的是,Lipo/MTX-HSA增加了抗炎因子IL-10的表达(图9C)。这些数据表明Lipo/MTX-HSA具有较强的抑制炎症因子和增加抗炎因子表达的能力,这对于缓解RA的炎症至关重要。
(2)研究制剂的细胞线粒体功能。为研究MTX相关纳米制剂是否会损伤巨噬细胞的线粒体,使用JC-1作为探针来检测线粒体膜电位的变化。当线粒体膜电位高时,JC-1在线粒体基质中聚集为聚合物,产生红色荧光。相反,JC-1形成的单体在膜电位较低时发出绿色荧光。通过从红色荧光切换到绿色荧光来检测膜电位的降低,这被认为是线粒体损伤的标志。如图10所示,MTX组JC-1单体的绿色荧光强度明显高于对照组,证实MTX相关制剂可诱导巨噬细胞的线粒体功能障碍。
实施例4:Lipo/MTX-HSA的体内分布研究
(1)CIA大鼠模型方法建立。SD大鼠适应饲养一周后于第0天,在大鼠尾根部皮下注射等体积的牛二型胶原蛋白与完全弗式佐剂(Complete Freund'sadjuvant,CFA)充分乳化后的乳剂,每只大鼠注射100μL。初次免疫后第7天,每只大鼠第二次注射等体积的牛二型胶原蛋白与不完全弗式佐剂(Incomplete Freund's adjuvant,IFA)充分乳化后的乳剂100μL,建立SD大鼠胶原蛋白诱导的关节炎(CIA)模型,CIA大鼠关节炎临床症状评分如表7所示。
表7CIA大鼠关节炎临床症状评分系统
(2)荧光活体成像研究。将6只CIA大鼠随机分为Cy5-HSA和Lipo/Cy5-HSA两组(每组n=3),静脉注射Cy5剂量为5μg,观察NPs在炎症关节中的生物分布。在注射后1、6、12和24小时麻醉大鼠,使用Carestream MI对其脚掌成像。荧光成像24h后处死大鼠进行体外组织分布分析。采集的器官和血浆的荧光也成像。
结果如图11所示,Lipo/Cy5-HAS组荧光强度在注射6小时后明显高于Cy5-HAS组。
实施例5:Lipo/MTX-HSA的体内药效学研究
(1)在诱发关节炎、初次免疫后的第16、19、22、25、28天,各组分别静脉注射生理盐水、MTX、MTX-HSA或Lipo/MTX-HSA,三只正常大鼠作为对照组。给药剂量按MTX为0.8mg/kg,每三天给药一次,共五次。每次给药前拍照并记录关节(图12A)、足体积(图12B)、关节评分(图12C)、踝关节直径/足掌厚度(图12D)、大鼠体重(图12E)。
(2)给药完成后,取血清完成炎症因子检测(图13),并对组织病理学研究,进行H&E染色(图14A-B)、SO染色(图14C-D)、甲苯胺蓝染色(图14E-F)
图12-15结果证明,Lipo/MTX-HSA可以有效抑制关节肿胀,改善关节炎症微环境,调节炎症因子的分泌,同时显著改善关节组织的病理状况。
实施例6:Lipo/MTX-HSA的体内安全性评价
图15溶血实验结果表明,即便在500μg/mL如此高浓度情况下,Lipo/MTX-HSA仍然未见溶血情况的发生,证明Lipo/MTX-HSA是一种安全有效的纳米粒药物。
实施例7:在动脉粥样硬化疾病模型中的体内分布及药效学评价
(1)动脉粥样硬化模型中的体内血管分布实验表明,Lipo/MTX-HSA组的分布显著高于游离药物组(图16)。
(2)油红染色结果显示,Lipo/MTX-HSA组的斑块显著低于其他组(图17)。
(3)HE染色结果显示,Lipo/MTX-HSA组的斑块显著低于其他组(图18)。
尽管已描述了本发明的优选实施例,但本领域内的技术人员一旦得知了基本创造性概念,则可对这些实施例作出另外的变更和修改。所以,所附权利要求意欲解释为包括优选实施例以及落入本发明范围的所有变更和修改。
显然,本领域的技术人员可以对本发明进行各种改动和变型而不脱离本发明的精神和范围。这样,倘若本发明的这些修改和变型属于本发明权利要求及其等同技术的范围之内,则本发明也意图包含这些改动和变型在内。

Claims (9)

1.一种脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)用甲醇将甲氨蝶呤MTX溶解为1-5mg/mL的试液I,用PBS缓冲液将人血清白蛋白HSA溶解为3-6mg/mL的试液II,以摩尔比HSA:MTX为1:1-6将试液I和试液II混合,反应2-4h,然后除去游离MTX与甲醇,再通过冷冻干燥得到MTX-HSA复合物;
2)用无水乙醇将蛋黄卵磷脂、胆固醇琥珀酸单酯溶解成油相,MTX-HSA复合物溶于PBS溶液中作为水相;将油相注入水相,并在38-42℃下反应2-3h,将反应液过滤,即得所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,步骤1),通过超滤离心除去游离MTX与甲醇,参数为5000-7000r/min,20-40min。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,步骤2),油相中蛋黄卵磷脂和胆固醇琥珀酸单酯的质量比为3-5:1。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,步骤2),油相注入水相的速率为0.5-2mL/min。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤2),MTX-HSA复合物与胆固醇琥珀酸单酯的质量比为1-2:1。
6.权利要求5所述方法制备得到的脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒。
7.权利要求6所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒在制备治疗炎症性疾病的药物中的用途。
8.根据权利要求7所述的用途,其特征在于,所述炎症性疾病包括类风湿性关节炎、骨关节炎、动脉粥样硬化、心肌梗死、脓毒症、慢性肾炎和胰腺。
9.一种用于治疗炎症性疾病的药物,其特征在于,其包括权利要求6所述脂质体包人血清白蛋白载药纳米粒,以及药学上可接受的辅料或载体。
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