CN116515998A - 一种用于肝癌诊断的生物标志物的组合物及其应用 - Google Patents

一种用于肝癌诊断的生物标志物的组合物及其应用 Download PDF

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Abstract

一种含有生物标记物的组合物,所述生物标志物包括FOXD2‑AS1、miR‑9‑5p和STMN1基因,优选的,所述生物标志物还进一步包括COL15A1和CCNE2基因。本发明研究发现,所述生物标志物在肝细胞癌中差异性表达,且FOXD2‑AS1与miR‑9‑5p之间、miR‑9‑5p与STMN1之间具有靶向结合关系,三者构成ceRNA组合,该组合进一步联合COL15A1、CCNE2作为生物学标志物对肝癌患者的诊断价值更高,因此可作为肝癌诊断的生物标志物组合物。

Description

一种用于肝癌诊断的生物标志物的组合物及其应用
技术领域
本发明涉及一种用于肝癌诊断的生物标志物的组合物及其用途。
背景技术
肝细胞癌(HCC)起源于肝脏实质细胞的癌变,是全球癌症发病及死亡的主要原因之一。根据2018年全球癌症数据报道得知每年约有84.1万人被确诊为肝癌,而有78.2万人死于该疾病。目前已知病毒感染(包括HBV、HCV)、饮食(包括大量饮酒、吃霉变食物)、不良生活方式(如肥胖、吸烟)、以及其他疾病(如2型糖尿病、血吸虫感染)等是引起肝癌的主要危险因素。尽管乙肝疫苗纳入国家免疫计划,但仅限于年轻人HBV感染率及其所致肝癌发病率大幅度降低,年长者所面临的形势依然很严峻。所以探究早期诊断标志物对于肝癌疾病的预防和控制很关键。
癌症转录组的特征是蛋白编码和非编码转录本的异常表达和相互调控关系。竞争性内源RNA(competing endogenous RNAs,ceRNA)网络是通过将蛋白编码与非编码RNA二者的功能结合起来构成的。近年来,越来越多的学者聚焦于探索ceRNA在癌症的功能作用。微小RNA(microRNA,miRNA)、长链非编码RNA(long non-coding RNA,lncRNA)、环状RNA(circular RNA,circRNA)、假基因、病毒转录本等均可以在人体中发挥ceRNA功能,参与生理与病理状态下ceRNA大网络调控机制。其中miRNA属于ncRNA的一类,是由22-25个核苷酸组成,主要作用于靶基因的表达。而miRNA表达格局的改变会受到基因座突变、表观遗传甲基化、转录因子调控或成熟miRNA加工过程失调等影响。lncRNA长度大于200bp,包含3′多聚(a)尾巴、5′帽子以及启动子,虽不能编码蛋白质,但其在有机体的正常发育及肿瘤发生过程中仍起着关键作用。circRNA在结构上呈共价闭环结构的单链,是由线性RNA的5′端和3′端直接连接而成的ceRNAs,主要存在于细胞质,也不能够编码蛋白,相比线性RNA稳定性更好。这些非编码RNA构成人体内ceRNA网络池,在人体发育和疾病的进程中实现相互通信和共同调节。例如lncRNA UCA1作为miR-182-5p海绵,正向调节Delta-like ligand 4(DLL4)的表达,促进肾癌细胞恶性表型。
癌症基因组图谱(The Cancer Genome Atlas,TCGA)计划和GEO(Gene ExpressionOmnibus)等数据库作为生物信息学分析中不可或缺的公共数据库,研究者能够从中下载肿瘤相关的数据进行分析,来挖掘某些基因在特定肿瘤中的表达趋势,为进一步探索肿瘤发病机制奠定基础,极大地促进了对癌症生物学研究。
目前,血清AFP、肝脏超声,影像学检查包括CT、MRI、PET、SPECT等在肝癌诊断中各有优势,确诊方式依然为病理活检。新的诊断标志物有血清甲胎蛋白异质体(lensculinaris agglutinin-reactive fraction of AFP,AFP-L3)和异常凝血酶原(protein induced by vitamin Kabsence/antagonist-Ⅱ,PIVKAⅡ)等,但临床实用性差。肝癌的治疗主要包括手术切除、肝动脉栓塞、射频消融和放化疗等,但是由于难以早期明确诊断,治疗效果不尽人意,肝癌患者的预后依然很差。因此,探索肝癌有价值的分子标志物及治疗靶点,对于HCC的攻克至关重要。
发明内容
本发明提供如下技术方案:
一种含有生物标记物的组合物,所述生物标志物包括FOXD2-AS1、miR-9-5p和STMN1基因。
根据本发明的组合物,所述FOXD2-AS1是一种长非编码RNA(lncRNA),miR-9-5p是一种小分子RNA(miRNA),STMN1是一种信使RNA(mRNA)。
根据本发明的组合物,所述生物标志物还进一步包括COL15A1和CCNE2基因。
根据本发明的组合物,所述COL15A1和CCNE2均为一种信使RNA(mRNA)。
本发明还提供本发明上述的生物标志物的组合物用于肝细胞癌诊断和预后评估。
具体的,本发明含有生物标志物的组合物的应用方式如下所述:与对照组相比,来自于待诊断或待评估的样本的上述生物标志物的浓度发生变化,由此可诊断样本的来源是否患有肝癌。
因此,本发明还提供一种用于肝癌诊断的组合物,所述组合物包含生物标志物的检测试剂,所述生物标志物包括FOXD2-AS1、miR-9-5p和STMN1基因。优选的,进一步包括COL15A1和CCNE2基因。
根据本发明的组合物,所述检测试剂为,基于核酸水平能够定量分析出所述生物标志物的试剂。
根据本发明的组合物,所述核酸水平的检测试验为用于核酸扩增反应,聚合酶链反应,实时荧光定量聚合酶链反应、逆转录聚合酶链反应的试剂。
所述核酸水平的检测试剂包含所述生物标志物的核酸序列,用于特异性的识别所述核酸序列的引物。
本领域技术人员可以理解,在确定生物标志物后,所上述各种检测生物标志物的试剂和方法是本领域技术人员公知或者根据技术手段可以确定地。
本发明还提供上述组合物的用途,其用于肝癌诊断剂或诊断试剂盒的制备。
本发明所述的生物标志物是指在肝癌个体和正常个体之间的受差异调节的基因。所述的诊断是指,判定检查对象对特定疾病(例如肝癌)的感受性,是否患有该疾病,以及治疗时的状态监测。所述的预后评估包括判断在被诊断为肝癌并接受治疗之后的恢复状态。本发明所述的样本是患者的肿瘤实体组织穿刺标本。
有益效果
本发明研究发现,lncRNA FOXD2-AS1、miRNA miR-9-5p和mRNA STMN1、COL15A1、CCNE2基因在肝癌组织中的相对表达量比癌旁组织普遍要高,表明这5个基因在肝癌组织中呈上调表达。本发明还发现FOXD2-AS1与miR-9-5p之间具有靶向调控关系。miR-9-5p与STMN1之间具有靶向调控关系,而miR-9-5p与COL15A1、CCNE2之间无靶向调控关系,但是COL15A1在分化程度(p=0.036)、病灶大小(p=0.028)及TNM分期(p=0.005)组间均呈现差异表达,CCNE2在TNM分期中差异表达(p=0.005),因此其作为分子标志物的潜力更大。本发明实验研究表明,ceRNA组合联合COL15A1、CCNE2对于HCC的联合诊断效能均比单个基因分别对HCC的诊断效能要高,能够成为HCC诊断的生物标志物。
附图说明
附图1:COX回归模型的构建及其诊断价值分析:A.十倍交叉验证图,B.16个基因的Lasso回归系数分布,C.多变量COX回归模型对应的森林图,D.ROC曲线评估诊断风险评分模型的有效性,E.HCC患者的Kaplan-Meier风险生存曲线;
附图2:ceRNA阵列的Kaplan-Meier生存分析和鉴定:A-H.HCC患者8个基因的Kaplan-Meier生存曲线,I.hsa-miR-9-5p靶向基因的韦恩图,J.筛选的ceRNA阵列;
附图3:lncRNA与mRNA PCR产物电泳图(M:DNA marker,1:β-actin,2:FOXD2-AS1,3:STMN1,4:COL15A1,5:CCNE2);
附图4:测序峰图:A.β-actin测序代表片段,B.FOXD2-AS1测序代表片段,C.STMN1测序代表片段,D.COL15A1测序代表片段,E.CCNE2测序代表片段;
附图5:4个基因与1个内参基因的扩增曲线与标准曲线:A.β-actin,B.FOXD2-AS1,C.STMN1,D.COL15A1,E.CCNE2;
附图6:qRT-PCR结果:A.FOXD2-AS1的扩增与熔解曲线;B.has-miR-9-5p的扩增与熔解曲线;C.STMN1的扩增与熔解曲线;D.COL15A1的扩增与熔解曲线;E.CCNE2的扩增与熔解曲线;
附图7:lncRNA、miRNA和mRNA在癌与癌旁表达的散点图:A.FOXD2-AS1,B.has-miR-9-5p,C.STMN1,D.COL15A1,E.CCNE2;
附图8:结合位点示意图及双荧光素酶检测柱状图:A.has-miR-9-5p与FOXD2-AS1之间双荧光素酶报告实验结果;B.has-miR-9-5p与STMN1之间双荧光素酶报告实验结果;C.has-miR-9-5p与COL15A1之间双荧光素酶报告实验结果;D.has-miR-9-5p与CCNE2之间双荧光素酶报告实验结果。
附图9:ROC曲线:A.FOXD2-AS1,B.has-miR-9-5p,C.STMN1,D.COL15A1,E.CCNE2,F.ceRNA组合(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1),G.ceRNA网络(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2)
具体实施方式
下文将结合具体实施例对本发明的生物标志组合物和应用做更进一步的详细说明。应当理解,下列实施例仅为示例性地说明和解释本发明,而不应被解释为对本发明保护范围的限制。凡基于本发明上述内容所实现的技术均涵盖在本发明旨在保护的范围内。除非另有说明,以下实施例中使用的原料和试剂均为市售商品,或者可以通过已知方法制备。
实施例1 FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2标志物的筛选
1.1数据的下载及处理
从TCGA(https://portal.gdc.cancer.gov/)数据库总共下载377例HCC样本和50例对照组样本,排除临床资料不全,基因表达谱缺失、非原发性肝细胞患者以及伴有其他肝胆肿瘤或其他组织脏器肿瘤者,最终将366例HCC样本纳入后续分析,其中有239例患者到随访截止日期处于生存状态,138例患者已死亡。
TCGA数据库下载的肝细胞癌lncRNA,miRNA和mRNA转录本文件,使用R4.0.2软件中的DESeq2包,对下载的所有基因进行差异表达分析((false discovery rate,FDR)<0.05,|log(fold change)|>1),得到差异表达的lncRNA、miRNA、mRNA。分别从数据库miRcode[10]和starBase[11]中查找DElncRNAs-DEmiRNAs、DEmiRNAs-DEmRNAs相互作用关系对(超几何分布检验p<0.05,相关性检验p<0.05)。再用Cytoscape3.7.2软件构建ceRNA网络。在DAVID数据库中对ceRNA网络中的mRNA进行GO注释分析和KEGG通路分析以阐释mRNA在ceRNA网络中的作用,p<0.01具有统计学意义。对ceRNA网络进行单因素COX回归、lasso回归分析以防止发生过度拟合。在此基础上进行多因素COX回归分析,构建风险评分模型,并采用Kaplan-Meier生存曲线和ROC曲线评估该模型的诊断价值。对ceRNA网络中每个基因进行批量Kaplan-Meier生存分析以评估每个基因的风险性。将关键miRNA在starBase数据库匹配的DEmRNA与TargetScan、miRDB、PicTar 3个数据库匹配的靶基因进行取交集。
1.2 ceRNA阵列的筛选
以单因素COX回归、lasso回归分析筛选出9个基因(图1A,B),进一步多因素COX回归分析后,发现CCNE1、EZH2、CTHRC1、CBX2、COL15A1、miR-9-5p 6个基因用于构建风险评分模型最佳(图1C)。生存曲线表明高风险患者的生存时间明显降低(图1E)。ROC曲线对应1、3、5年生存期的曲线下面积(Area under curve,AUC)分别为0.77、0.73、0.764,表明该模型对HCC患者生存预测准确性较高(图1D)。
对网络中的所有基因批量进行Kaplan-Meier生存分析,筛选出1个miRNA miR-9-5p和1个lncRNA FOXD2-AS1与HCC预后相关(图2A,B)。为使与miR-9-5p靶向的mRNA更准确,对预测的StarBase(7个靶基因)、TargetScan(1292个靶基因)、miRDB(1236个靶基因)和PicTar(642个靶基因)取交集,显示COL15A1、CCNE2、STMN1在4个数据库均与miR-9-5p具有靶向结合关系(图2I)。对ceRNA相关基因构建ceRNA网络图(图2J)。综上,从TCGA数据库中确立FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2轴为HCC诊断及预后相关的ceRNA阵列。
1.3 ceRNA阵列与HCC临床特征的关系
采用卡方检验分别分析了FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2的表达量与TCGA数据库下载的临床资料中的年龄、性别、Grade分级、TNM分期、Stage分期的关系。结果表明miR-9-5p与TNM-T分期(p=0.040)、Stage分期(p=0.024),STMN1与Grade分级(p=0.001),COL15A1与TNM-T分期(p=0.000)、Stage分期(p=0.003),CCNE2与年龄(p=0.009)、Grade分级(p=0.000)组间具有差异,且均以p<0.05作为有统计价值,而各个基因与其他临床信息不具备相关性(p>0.05),具体结果详见下表:
表1.FOXD2-AS1、Has-miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2与肝癌患者临床特征的关系
表2
1.4结论
本发明基于TCGA数据库在HCC中构建了ceRNA网络,最终发现1个lncRNA(FOXD2-AS1),1个miRNA(miR-9-5P),3个mRNA(STMN1、COL15A1、CCNE2)有成为HCC诊断及预后标志物的潜能。这种基于ceRNA分布的网络基因为研究对象,不仅缩小了目标ncRNA的范围,而且为评估HCC的预后提供了特定的候选分子生物标志物,这将有助于扩大我们对参与HCC早期开发的ceRNA机制的了解。但这5个基因在HCC临床组织中的表达趋势及相互之间的调控关系尚需进一步验证。
实施例2 5个关键基因在肝癌组织中的诊断价值
2.1实验对象组织芯片:
HCC lncRNA、miRNA和mRNA组织cDNA芯片阵列,均购于上海芯超生物科技有限公司。芯片批号为:cDNA-HLivH30PG02和cDNA-HLivH087Su02。两组组织芯片中共包含癌症样本96例(实验组),癌旁样本51例(对照组)。
2.2实验试剂与仪器
表3.实验试剂
表4.实验仪器
2.3 ceRNA网络中关键基因的引物纯度
从blast软件中设计FOXD2-AS1、STMN1、COL15A1、CCNE2共4个基因及β-actin内参基因的引物,以此对HCC组织中提取的cDNA分别进行普通PCR扩增,将这4个基因及1个内参基因的PCR产物进行水平核酸电泳,以120V等压进行电泳,以RNase-free ddH2O作为阴性对照。同时将这4个基因与1个内参基因的PCR产物送上海生工Sangon Biotech公司进行测序,将测序结果与从blast软件中设计的引物序列进行比对。比对一致者才能用于实时荧光定量PCR(Quantitative Real-time PCR,qRT-PCR)检测。采用加尾法对miRNA进行逆转录,引物为通用,故不需要验证miR-9-5p的引物特异性。
结论:得到β-actin(132bp)、FOXD2-AS1(234bp)、STMN1(109bp)、COL15A1(124bp)、CCNE2(159bp)的电泳目的条带,如图3所示。结果表明用上述基因扩增出来的产物所对应的电泳条带单一且清晰,说明验证的引物纯度较高,可用于后续qRT-PCR实验。
对普通PCR扩增产物进行测序,对测序结果与从blast软件中设计的每个基因对应的引物序列进行比对后,发现β-actin、FOXD2-AS1、STMN1、COL15A1、CCNE2对应引物的比对结果均为一致,说明引物扩增特异性较高,可用于后续实验。图4为上述4个关键基因与β-actin的测序结果。
表5. 4个关键基因及1个内参的PCR引物
表6.普通PCR反应体系
表7.普通PCR反应程序
2.4关键基因引物扩增效率检测
将普通PCR扩增产物进行1万倍稀释后作为qRT-PCR的原液,以此进行10倍浓度梯度稀释后再作为qRT-PCR的cDNA,对FOXD2-AS1、STMN1、COL15A1、CCNE2及β-actin基因的qRT-PCR反应结果进行标准曲线绘制,分析其对应引物的扩增效率(qRT-PCR按PerfectStartTM Green qPCR SuperMix试剂盒说明书进行操作)。
结论:如图5所示,扩增曲线均呈S型,β-actin、FOXD2-AS、STMN1、COL15A1、CCNE2的标准曲线所对应的E值依次为123.5%、122.9%、95.7%、123.7%、96.0%,R2值依次为0.868、0.957、0.994、0.937、0.991,结果表明E值均在100.0%附近,R2值均接近1.000,提示扩增效率较好。
2.5 qRT-PCR检测
严格按照PerfectStartTM Green qPCR SuperMix试剂盒说明书在HCC组织cDNA芯片中对FOXD2-AS1、STMN1、COL15A1、CCNE2进行qRT-PCR操作,以β-actin作为内参进行均一化处理。按照miRcute Plus miRNA qPCR Detection Kit(SYBR Green)说明书对miR-9-5p进行qRT-PCR操作,以U6作为内参进行均一化处理。均以RNase-free ddH2O作为阴性对照,在qRT-PCR仪上设置为无模板参照(NTC)。
Real time PCR结果显示,FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2基因的扩增曲线呈S型,且阴性对照孔未扩增,溶解曲线的Tm值均呈单峰,见图6。因此扩增曲线与阈值线交点所得到的Ct值可用于后续统计分析。
对5个关键基因在癌症组与癌旁组进行qRT-PCR所得到的Ct值采用2-△△Ct算法来计算两组间的相对表达水平。FOXD2-AS1在癌症组与癌旁组Ct值分别为27.65±1.92和29.55±1.78,STMN1在癌症组与癌旁组Ct值分别为26.93±1.91和29.96±1.18,COL15A1在癌症组与癌旁组Ct值分别为26.01±2.19和29.99±1.45,CCNE2在癌症组与癌旁组Ct值分别为26.61±2.15和29.85±1.68,lncRNA和mRNA以β-actin作为内参实现均一化;miR-9-5p在癌症组与癌旁组Ct值分别为23.25±1.84和24.19±1.30,miRNA以U6作为内参实现均一化,且NTC未扩增或所有Ct值均远远小于NTC的Ct值,表明目的基因的Ct值可以用于分析。采用独立样本t检验对基因在两组间的表达差异性进行比较,发现FOXD2-AS1(p=0.016)、miR-9-5p(p=0.042)、STMN1(p=0.000)、COL15A1(p=0.000)、CCNE2(p=0.000)在96例癌症组与51例癌旁组中表达量均有差异,且对应p值均小于0.05,有统计学意义,两组间相对表达量比较的具体结果见下表。
表8.ceRNA网络中关键基因在HCC组织中的相对表达量
通过绘制癌症组与癌旁组相对表达量的的散点图(图7),以便于更直观的展示各个基因在两组间表达水平的差异程度,发现STMN1、COL15A1、CCNE2在肝癌组的表达量均明显要高于癌旁组,FOXD2-AS1、miR-9-5p在肝癌组的表达量稍高于癌旁组,但统计仍具有差异性。
对FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2在HCC组织中的表达量与HCC患者的性别、年龄、分化程度、病灶大小以及TNM分期进行单因素方差分析,来比较基因在不同临床特征中表达量是否具有组间差异。如下表所示,结果发现FOXD2-AS1在不同分化程度中差异表达(p=0.021),在另外4组临床特征中组间表达无差异;COL15A1在分化程度(p=0.036)、病灶大小(p=0.028)及TNM分期(p=0.005)组间均呈现差异表达;CCNE2在TNM分期中差异表达(p=0.005),与其他临床因素无相关。而miR-9-5p和STMN1的表达与临床特征之间无相关性。
表9.HCC组织中5个关键基因的相对表达量和临床病理参数的关系
双荧光素酶报告实验检测ceRNA靶向关系
利用miRBase、TargetScan、miRanda、PicTar和MicroT在线数据库对作用于miR-9-5p种子区域的FOXD2-AS1及STMN1、COL15A1、CCNE2的microRNA反应元件(microRNAresponse element,MRE)的结合序列片段进行预测。将1个lncRNA和3个靶基因的3′-UTR以及3′-UTR与miR-9-5p结合位点突变体分别克隆在pMiR Report载体的Luciferase片段的下游,再对构建好的载体进行测序,用以确认目的序列已经克隆到载体上的目的位置。然后将载体与化学合成的miR-9-5p片段(以NC minics作为对照组)共转染到293T细胞中,由此把细胞分为4个组,即NC minics+lncRNA/靶基因-wt组、miR-9-5p+lncRNA/靶基因-wt组、NCminics+lncRNA/靶基因-mu组、miR-9-5p+lncRNA/靶基因-mu组。按双荧光素酶报告基因检测试剂盒操作说明书完成实验。FOXD2-AS1与miR-9-5p的结合位点具有2个,因此将这两处结合位点的碱基片段进行串联构建FOXD2-AS1基因3′-UTR以及3′-UTR突变体,再克隆到pMiR Report载体中,以进行分析。
双荧光素酶报告基因结果(图8)显示FOXD2-AS1与miR-9-5p之间、miR-9-5p与STMN1之间具有靶向结合关系,而miR-9-5p与COL15A1之间,miR-9-5p与CCNE2之间无结合关系。故在HCC组织中既能差异表达,相互之间又具有靶向调节关系的ceRNA组合为FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1。COL15A1和CCNE2参与以miR-9-5p为核心的ceRNA网络,但无直接靶向关系。
分析HCC组织中ceRNA组合诊断效能
最终根据上一步实验结果来确定与HCC患者生存及预后相关且相互之间具有靶向调控关系的ceRNA组合。基于基因在HCC组织中的相对表达量,对上述所有筛选的关键基因分别绘制ROC曲线,观察每个基因在HCC组织中的诊断准确度。采用二元logistic回归分别计算ceRNA组合(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1)及ceRNA网络(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2)的联合预测因子,并分别绘制ROC曲线,根据AUC值评估单个基因与ceRNA组合以及ceRNA网络联合的诊断效能的差异。
通过绘制ROC曲线来探讨FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2作为可能的生物标志物在HCC诊断及预后中的价值,并分别对ceRNA组合(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1)及ceRNA网络(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2)的诊断能力进行了分析。如图9所示,FOXD2-AS1对应ROC曲线的曲线下面积(AUC值)为0.687(95%CI:0.589-0.785,p=0.002),miR-9-5p的AUC值为0.633(95%CI:0.527-0.739,p=0.025),STMN1的AUC值为0.741(95%CI:0.642-0.839,p=0.000),COL15A1的AUC值为0.824(95%CI:0.744-0.903,p=0.000),CCNE2的AUC值为0.835(95%CI:0.744-0.926,p=0.000)以上分析均具有统计学意义。采用二元Logistic回归分析分别求出ceRNA组合及其联合两个基因的联合预测因子,并用于绘制ROC曲线,其AUC值分别为0.818(95%CI:0.732-0.905,p=0.000)、0.926(95%CI:0.867-0.985,p=0.000)。以上分析表明ceRNA组合(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1)的ROC曲线的AUC值比各组成部分要大,其诊断效能也要高;ceRNA组合联合两个基因的ROC曲线的AUC值也比每个基因单独对应的AUC值要大,其诊断效能也要更高。
应用约登指数计算FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2、c ceRNA组合(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1)及ceRNA网络(FOXD2-AS1/miR-9-5p/STMN1/COL15A1/CCNE2)的ROC曲线所对应的灵敏度和特异度。如下表所示,FOXD2-AS1、miR-9-5p、STMN1、COL15A1、CCNE2、ceRNA组合及其联合两个基因的cutoff值依次为10.237、9.616、9.442、8.931、9.336、0.751、0.768,对应敏感度依次为62.1%、62.0%、65.5%、65.5%、75.9%、70.1%、84.4%,特异度依次为66.2%、64.7%、70.5%、83.1%、83.1%、79.3%、93.1%。综合以上结果来看,将ceRNA组合联合COL15A1、CCNE2作为生物学标志物对HCC患者的诊断价值更高,HCC患者被确诊的可能性就更大。
表10.ceRNA阵列在肝癌组织中的诊断价值分析
以上,对本发明的实施方式进行了说明。但是,本发明不限定于上述实施方式。凡在本发明的精神和原则之内,任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种含有生物标记物的组合物,所述生物标志物包括FOXD2-AS1、miR-9-5p和STMN1基因。
2.根据权利要求1的组合物,所述生物标志物还进一步包括COL15A1和CCNE2基因。
3.一种用于肝癌诊断的组合物,所述组合物包含生物标志物的检测试剂,所述生物标志物包括FOXD2-AS1、miR-9-5p和STMN1基因。优选的,进一步包括COL15A1和CCNE2基因。
4.根据权利要求3所述的组合物,所述检测试剂为,基于核酸水平能够定量分析出所述生物标志物的试剂。
5.根据权利要求4所述的组合物,所述核酸水平的检测试验为用于核酸扩增反应,聚合酶链反应,逆转录聚合酶链反应,荧光定量聚合酶链反应的试剂。
6.根据权利要求4所述的组合物,所述核酸水平的检测试剂包含所述生物标志物的核酸序列,用于特异性的识别所述核酸序列片段的引物。
7.权利要求1-2任一项所述的组合物在制备肝癌诊断剂或肝癌诊断试剂盒中的应用。
8.权利要求3-6任一项所述的组合物在制备肝癌诊断剂或肝癌诊断试剂盒中的应用。
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