CN114657158B - Ido1相关疫苗及其应用 - Google Patents

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    • C12Y113/11052—Indoleamine 2,3-dioxygenase (1.13.11.52), i.e. indoleamine 2,3-dioxygenase 1

Abstract

本发明提出了IDO1相关疫苗及其应用，所述IDO1相关疫苗包括：分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体，所述分离的多肽具有如SEQ ID NO：2、3、5、6、8、9、11、13‑15、18‑20、22‑24、26‑28、30、32‑36任一项所示的氨基酸序列或其功能类似物。本发明的疫苗能够以免疫抑制蛋白IDO1表位作为靶点，提高肿瘤微环境中的抗肿瘤免疫抑制细胞活性、数目，特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞、表达IDO1的肿瘤细胞，安全性高，在预防和治疗癌症方面具有重要意义。

Description

IDO1相关疫苗及其应用
技术领域
本发明涉及生物医药领域。具体地，本发明涉及IDO1相关疫苗及其应用。
背景技术
免疫系统中包含许多类型的调节性免疫细胞，它们的作用是控制机体免疫反应的强度，维持免疫平衡。调节性免疫细胞主要包括调节性T细胞(Tregs，Regulatory Tcells)、M2巨噬细胞（M2 macrophage）、骨髓来源抑制细胞(MDSCs，myeloid-derivedsuppressor cells)和不同的树突状细胞（DCs，dendritic cell）亚群。调节性免疫细胞参与的免疫抑制过程，是控制特定免疫反应规模和时长的一种机制。免疫抑制与免疫耐受的不同之处在于免疫调节是一种主动的免疫激活。已有研究表明，调节性免疫细胞能够表达多种免疫抑制相关蛋白，如IDO、PD-L1、TDO、Arginase、CCL22等，减弱免疫应答效果，其机理有以下三种：（1）分解氨基酸代谢酶，减少免疫细胞生长和功能所需氨基酸，如色氨酸和精氨酸；（2）诱导靶细胞和T细胞上调免疫检查点相关分子表达，如PD-1、PD-L1、PD-L2；（3）分泌趋化因子，招募更多调节性免疫细胞亚群到炎症区域。
调节性免疫细胞在健康人的免疫环境中被认为是有正向意义的，能够避免过强的免疫反应损伤自身细胞。然而，在肿瘤免疫环境中，调节性免疫细胞可能会抑制机体对恶性细胞的免疫杀伤反应。而且已有研究表明，许多类型的癌细胞已经适应了调节性免疫细胞的表型，和调节性免疫细胞一样能够表达多种免疫抑制蛋白，抑制抗肿瘤特异性T细胞在肿瘤微环境中的活性。为了平衡调节性免疫细胞引起的免疫抑制，免疫系统中同时也形成了拮抗免疫抑制的机制。在肿瘤免疫微环境中，部分促炎T细胞能够靶向识别表达免疫抑制蛋白的调节性免疫细胞，减少调节性免疫细胞数目，拮抗肿瘤免疫抑制作用，并通过在炎症部位分泌促炎细胞因子辅助增强适应性免疫应答，我们将这类细胞定义为Anti-TIS细胞。
Anti-TIS（Tumor ImmunoSuppression）技术即是基于Anti-TIS细胞的作用机理所提出的一种创新型的免疫治疗方案，旨在激活人体抗肿瘤免疫抑制的细胞，靶向调节性免疫细胞和肿瘤细胞，在可接受的毒性范围内，打破免疫抑制，尽可能多地激活免疫反应，产生抗肿瘤治疗效果。
发明内容
需要说明的是，本发明是基于发明人的下列发现而完成的：
HLA是人类的主要组织相容性复合体（MHC）的表达产物，是具有高度多态性的同种异体抗原，不同地域人群的HLA等位分型会存在差异，例如欧美地区覆盖度较高的等位分型主要是HLA-A02:01，中国覆盖度最高的前两种等位分型是HLA-A11:01和HLA-A24:02。
吲哚胺 2, 3-双加氧酶 (IDO1)是一种色氨酸分解代谢酶，可催化色氨酸转化为犬尿氨酸。色氨酸的消耗和犬尿氨酸的累积可以激活调节性T细胞和髓源性抑制细胞，进而抑制效应T细胞和自然杀伤细胞的免疫功能，刺激Treg细胞的扩张活化，促进实体瘤的新生血管形成，发挥重要的免疫抑制功能。大多数癌症组织中均有高IDO1表达，具体而言，IDO1在肿瘤微环境中的癌细胞和多种免疫细胞中表达，包括 DC、内皮细胞、肿瘤相关巨噬细胞、肿瘤相关成纤维细胞、间充质基质细胞 (MSC) 和MDSC。多项临床研究也已证明，IDO1的高表达与较差的生存率和预后直接相关。基于IDO1在癌症免疫耐受和肿瘤发育中的重要作用，靶向IDO1治疗正在成为癌症治疗发展中的新方案。
有鉴于此，基于上述机制，发明人从众多癌症相关基因中选取IDO1蛋白来筛选抗肿瘤免疫抑制的靶标。进一步地，IDO1蛋白全长403个氨基酸，分子量大小为45326，按照1步长位移滑动剪切，共计可得到8、9、10、11mer肽段1578条。发明人对所有的肽段进行分析，发现仅有极少数的肽段能够结合HLA-A11:01或HLA-A24:02分子形成HLA复合物，并与机体中的T细胞受体进一步结合，刺激机体产生免疫反应，而其余绝大多数肽段不具备HLA亲和力和免疫原性，不存在开发抗肿瘤免疫抑制疫苗的研究价值。因而，发明人从众多表位中筛选得到有免疫学功能的表位。这些多肽可以作为疫苗或药物，能够以免疫抑制蛋白IDO1表位作为靶点，提高肿瘤微环境中的Anti-TIS细胞活性、数目，特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞、表达IDO1的肿瘤细胞。另外，由于Anti-TIS细胞在体内自然存在，机体必然存在一种确保免疫稳态以控制它们的机制，因此触发自身免疫相关不良事件的风险极低。目前已开展的试验表明，接种了上述多肽的小鼠没有发生不良反应，而临床研究数据也证明了这种方法的安全性。由此，在预防和治疗癌症方面具有重要意义。
在本发明的一个方面，本发明提出了一种分离的多肽。根据本发明的实施例，所述分离的多肽具有如SEQ ID NO：2、3、5、6、8、9、11、13-15、18-20、22-24、26-28、30、32-36任一项所示的氨基酸序列或其功能类似物。上述多肽对HLA-A11:01和/或HLA-A24:02具有亲和力，能够自然呈递到细胞表面并与特定的免疫效应细胞结合，并特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，具备成为免疫治疗靶点的潜在价值，在预防和治疗癌症方面具有重要意义。
在本发明的另一方面，本发明提出了一种分离的核酸。根据本发明的实施例，所述分离的核酸编码前述所述多肽或其功能类似物。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种抗原递呈细胞。根据本发明的实施例，所述抗原递呈细胞用于递呈前面所述多肽。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种免疫细胞。根据本发明的实施例，所述免疫细胞的结合靶标为前述分离的多肽或者前述抗原呈递细胞。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种抗体。根据本发明的实施例，所述抗体特异性识别前述分离的多肽。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种疫苗。根据本发明的实施例，所述疫苗包括：前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种药物。根据本发明的实施例，所述药物包括：前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体。
在本发明的又一方面，本发明提出了前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体在制备疫苗中的用途。根据本发明的实施例，所述疫苗用于预防癌症。
在本发明的又一方面，本发明提出了前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体在制备药物中的用途。根据本发明的实施例，所述药物用于治疗癌症。
本发明的附加方面和优点将在下面的描述中部分给出，部分将从下面的描述中变得明显，或通过本发明的实践了解到。
附图说明
本发明的上述和/或附加的方面和优点从结合下面附图对实施例的描述中将变得明显和容易理解，其中：
图1显示了根据本发明实施例的多肽与体外免疫原性ELISPOTs检测的电镜图；
图2~图4分别显示了根据本发明实施例的免疫细胞特异性杀伤呈递多肽的靶细胞分析示意图；
图5和图6分别显示了根据本发明实施例的多肽疫苗控制小鼠肿瘤生长分析示意图。
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例。下面描述的实施例是示例性的，仅用于解释本发明，而不能理解为对本发明的限制。
在本文中所披露的范围的端点和任何值都不限于该精确的范围或值，这些范围或值应当理解为包含接近这些范围或值的值。对于数值范围来说，各个范围的端点值之间、各个范围的端点值和单独的点值之间，以及单独的点值之间可以彼此组合而得到一个或多个新的数值范围，这些数值范围应被视为在本文中具体公开。
为了更容易理解本发明，以下具体定义了某些技术和科学术语。除显而易见在本文件中的它处另有明确定义，否则本文中使用的所有其它技术和科学术语都具有本发明所属领域的一般技术人员通常理解的含义。氨基酸残基的缩写是本领域中所用的指代20个常用L-氨基酸之一的标准3字母和/或1字母代码。
在本发明的一个方面，本发明提出了一种分离的多肽。根据本发明的实施例，该分离的多肽具有如SEQ ID NO：2、3、5、6、8、9、11、13-15、18-20、22-24、26-28、30、32-36任一项所示的氨基酸序列或其功能类似物。上述多肽对HLA-A11:01和/或HLA-A24:02具有亲和力，能够自然呈递到细胞表面并与特定的免疫效应细胞结合，并特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，具备成为免疫治疗靶点的潜在价值，在预防和治疗癌症方面具有重要意义。
具体地，在上述多肽中，SEQ ID NO：5、8、9、11、13、14、18、20、23、24、26、28、30、33、36任一项所示的氨基酸序列或其功能类似物的多肽效果较佳。SEQ ID NO：9、11、18、23、26、36任一项所示的氨基酸序列或其功能类似物的多肽效果更佳，经鉴定能够表达并呈递于细胞表面的HLA分子，具有较强的免疫原性，具有刺激产生高杀伤效率特异性T细胞的能力。
在本发明的另一方面，本发明提出了一种分离的核酸。根据本发明的实施例，所述分离的核酸编码前述多肽或其互补序列。如前所述，上述本发明实施例所提出的核酸在合适条件下表达的多肽能够用于预防或治疗肿瘤，从而发挥免疫杀伤作用。进而，本发明实施例所提出的核酸在合适条件下表达的多肽能够用于预防或治疗肿瘤。
根据本发明的实施例，所述分离的核酸具有如SEQ ID NO：38、39、41、42、44、45、47、49-51、54-56、58-60、62-64、66、68-72任一项所示的核苷酸序列或其功能类似物。具体的，上述分离的核酸中，SEQ ID NO：41、44、45、47、49、50、54、56、59、60、62、64、66、69、72任一项所示的核苷酸序列或其功能类似物的核酸效果较佳，SEQ ID NO：45、47、54、59、62、72任一项所示的核苷酸序列或其功能类似物的核酸效果更佳。
表1 多肽和核酸序列
基因 氨基酸位点 SEQ ID 多肽序列 SEQ ID 核酸序列
IDO1 3-13 NO:1 HAMENSWTISK NO:37 CACGCTATGGAAAACTCCTGGACAATCAGTAAA
IDO1 4-13 NO:2 AMENSWTISK NO:38 GCTATGGAAAACTCCTGGACAATCAGTAAA
IDO1 53-61 NO:3 GQLRERVEK NO:39 GGCCAGCTTCGAGAAAGAGTTGAGAAG
IDO1 66-74 NO:4 SIDHLTDHK NO:40 AGCATTGATCATCTCACAGACCACAAG
IDO1 86-94 NO:5 ITMAYVWGK NO:41 ATCACCATGGCATATGTGTGGGGCAAA
IDO1 107-116 NO:6 IAVPYCQLSK NO:42 ATTGCTGTTCCTTACTGCCAACTCTCCAAG
IDO1 108-116 NO:7 AVPYCQLSK NO:43 GCTGTTCCTTACTGCCAACTCTCCAAG
IDO1 108-117 NO:8 AVPYCQLSKK NO:44 GCTGTTCCTTACTGCCAACTCTCCAAGAAA
IDO1 125-134 NO:9 VYADCVLANW NO:45 GTTTATGCAGACTGTGTCTTGGCAAACTGG
IDO1 144-152 NO:10 TYENMDVLF NO:46 ACTTATGAGAACATGGACGTTTTGTTC
IDO1 144-154 NO:11 TYENMDVLFSF NO:47 ACTTATGAGAACATGGACGTTTTGTTCTCATTT
IDO1 170-179 NO:12 VEIAAASAIK NO:48 GTGGAAATAGCAGCTGCTTCTGCAATCAAA
IDO1 176-186 NO:13 SAIKVIPTVFK NO:49 TCTGCAATCAAAGTAATTCCTACTGTATTCAAG
IDO1 177-186 NO:14 AIKVIPTVFK NO:50 GCAATCAAAGTAATTCCTACTGTATTCAAG
IDO1 179-186 NO:15 KVIPTVFK NO:51 AAAGTAATTCCTACTGTATTCAAG
IDO1 188-198 NO:16 MQMQERDTLLK NO:52 ATGCAAATGCAAGAACGGGACACTTTGCTAAAG
IDO1 189-198 NO:17 QMQERDTLLK NO:53 CAAATGCAAGAACGGGACACTTTGCTAAAG
IDO1 199-209 NO:18 ALLEIASCLEK NO:54 GCGCTGTTGGAAATAGCTTCTTGCTTGGAGAAA
IDO1 215-224 NO:19 HQIHDHVNPK NO:55 CACCAAATCCACGATCATGTGAACCCAAAA
IDO1 216-224 NO:20 QIHDHVNPK NO:56 CAAATCCACGATCATGTGAACCCAAAA
IDO1 228-238 NO:21 SVLRIYLSGWK NO:57 AGTGTTCTTCGCATATATTTGTCTGGCTGGAAA
IDO1 247-257 NO:22 LVYEGFWEDPK NO:58 CTGGTGTATGAAGGGTTCTGGGAAGACCCAAAG
IDO1 297-306 NO:23 RYMPPAHRNF NO:59 AGATATATGCCACCAGCTCACAGGAACTTC
IDO1 297-307 NO:24 RYMPPAHRNFL NO:60 AGATATATGCCACCAGCTCACAGGAACTTCCTG
IDO1 298-306 NO:25 YMPPAHRNF NO:61 TATATGCCACCAGCTCACAGGAACTTC
IDO1 315-323 NO:26 SVREFVLSK NO:62 TCAGTCCGTGAGTTTGTCCTTTCAAAA
IDO1 343-352 NO:27 RSYHLQIVTK NO:63 AGGAGCTACCATCTGCAAATCGTGACTAAG
IDO1 354-363 NO:28 ILIPASQQPK NO:64 ATCCTGATTCCTGCAAGCCAGCAGCCAAAG
IDO1 355-363 NO:29 LIPASQQPK NO:65 CTGATTCCTGCAAGCCAGCAGCCAAAG
IDO1 358-366 NO:30 ASQQPKENK NO:66 GCAAGCCAGCAGCCAAAGGAGAATAAG
IDO1 379-389 NO:31 TGGTDLMNFLK NO:67 ACTGGAGGCACTGATTTAATGAATTTCCTGAAG
IDO1 380-389 NO:32 GGTDLMNFLK NO:68 GGAGGCACTGATTTAATGAATTTCCTGAAG
IDO1 381-389 NO:33 GTDLMNFLK NO:69 GGCACTGATTTAATGAATTTCCTGAAG
IDO1 389-397 NO:34 KTVRSTTEK NO:70 AAGACTGTAAGAAGTACAACTGAGAAA
IDO1 392-401 NO:35 RSTTEKSLLK NO:71 AGAAGTACAACTGAGAAATCCCTTTTGAAG
IDO1 393-401 NO:36 STTEKSLLK NO:72 AGTACAACTGAGAAATCCCTTTTGAAG
需要说明的是，对于本发明说明书和权利要求书中所提及的核酸，本领域技术人员应当理解，实际包括互补双链的任意一条，或者两条。为了方便，在本说明书和权利要求书中，虽然多数情况下只给出了一条链，但实际上也公开了与之互补的另一条链。另外，本申请中的基因序列包括DNA形式或RNA形式，公开其中一种，意味着另一种也被公开。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种抗原递呈细胞。根据本发明的实施例，所述抗原递呈细胞用于呈递前面所述分离的核酸。由此，利用本发明的抗原递呈细胞可以将多肽递送至抗肿瘤特异性T细胞上，从而激活T细胞特异性杀伤功能，有效地用于肿瘤的预防或治疗。
根据本发明的实施例，所述抗原递呈细胞为树突状细胞、B细胞或单核-吞噬细胞，优选树突细胞。树突细胞具有极强的抗原内吞和加工处理能力，可将抗原呈递在细胞的表面。发明人选择树突细胞作为抗原呈递细胞，抗原呈递细胞在机体内启动、调节和维持针对所述多肽的免疫反应更加强烈。
根据本发明的实施例，所述抗原递呈细胞表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02。上述多肽对HLA-A11:01和/或HLA-A24:02具有亲和力，能够自然呈递并与特定的免疫效应细胞结合，并特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，具备成为免疫治疗靶点的潜在价值，在预防和治疗癌症方面具有重要意义。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种免疫细胞。根据本发明的实施例，所述免疫细胞的结合靶标为前面所述的分离的多肽或者前面所述抗原呈递细胞。由此，可以发挥免疫杀伤功能。
根据本发明的实施例，所述免疫细胞是通过下列方式获得的：将前面所述的抗原呈递细胞与具有免疫效应能力的细胞接触，或从肿瘤组织中分选培养（如肿瘤浸润T细胞，Tumor-infiltrating lymphocytes，TILs），或将能识别前面所述分离的多肽的T细胞受体（T cell recepter，TCR）基因转入T细胞（如TCR-T）。所具体地，所述具有免疫效应能力的细胞为CD8+T细胞。通过呈递前面所述的分离的肽的抗原呈递细胞与具有免疫效应能力的细胞接触，抗原呈递细胞可活化具有免疫效应能力的未激活细胞，递呈抗原-前面所述的多肽，进而激活具有免疫效应能力的细胞，大量产生免疫效应细胞，该免疫效应细胞具有特异性杀伤呈递抗原-所述多肽的靶细胞的作用。CD8+T细胞接受抗原呈递细胞激活作用的能力更强，获得的CD8+T细胞的特异性杀伤呈递抗原-所述分离的肽的靶细胞的作用更强。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种抗体。根据本发明的实施例，所述抗体特异性识别前面所述的分离的多肽。由此，可特异性识别肿瘤抗原。根据本发明的实施例，发明发现，所述抗体可特异性识别抗原，与肿瘤细胞或被病毒（如HBV、HCV、HIV、EBV等）感染的细胞特异性结合，进而使得肿瘤细胞或被病毒感染的细胞被吞噬细胞吞噬，实现对肿瘤细胞或被病毒感染的细胞的特异性清除。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种疫苗。根据本发明的实施例，所述疫苗包括：前面所述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体。由此，根据本发明实施例的疫苗进入机体内，可以特异性激活特异性T细胞（如CTL、TIL），达到特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，安全性好，在预防癌症方面具有重要意义。
根据本发明的实施例，所述疫苗进一步包括佐剂。本发明对于佐剂的类型不做严格限定，可以选择本领域常规佐剂，具体可以根据实际需要灵活选择。
在本发明的又一方面，本发明提出了一种药物。根据本发明的实施例，所述药物包括：前面所述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体。由此，根据本发明实施例的药物进入机体内，可以特异性激活特异性T细胞（如CTL、TIL），达到特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，安全性好，在治疗癌症方面具有重要意义。
根据本发明的实施例，所述药物进一步包括药学上可接受的辅料。
在本发明的又一方面，本发明提出了前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体在制备疫苗中的用途。根据本发明的实施例，所述疫苗用于预防癌症。疫苗进入机体内，可以特异性激活特异性T细胞（如CTL、TIL），达到特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，在预防癌症方面具有重要意义。
相应地，本发明提出一种预防癌症的方法，包括：向受试者施用前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体。
根据本发明的实施例，所述疫苗的受试者表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02。如前所述，上述多肽对HLA-A11:01和/或HLA-A24:02具有亲和力，能够自然呈递到细胞表面并与特定的免疫效应细胞结合，并特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，安全性高，在预防癌症方面具有重要意义。
在本发明的又一方面，本发明提出了前述分离的多肽、分离的核酸、抗原递呈细胞、免疫细胞和/或抗体在制备药物中的用途。根据本发明的实施例，所述药物用于治疗癌症。药物进入机体内，可以特异性激活特异性T细胞（如CTL、TIL），达到特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，在治疗癌症方面具有重要意义。
根据本发明的实施例，所述癌症为乳腺癌、肺癌、鼻咽癌、肝癌、胃癌、食道癌、结直肠癌、胰腺癌、黑色素瘤、皮肤癌、前列腺癌、宫颈癌、白血病、甲状腺癌、淋巴瘤、膀胱癌、肾癌、子宫体癌、卵巢癌、胆囊癌、口腔癌、喉癌、骨癌、睾丸癌或脑癌。
根据本发明的实施例，所述药物的受试者表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02。如前所述，上述多肽对HLA-A11:01和/或HLA-A24:02具有亲和力，能够自然呈递到细胞表面并与特定的免疫效应细胞结合，并特异性清除肿瘤微环境中基质细胞、免疫细胞等负向调节的细胞以及表达IDO1的肿瘤细胞，安全性高，在治疗癌症方面具有重要意义。
下面将结合实施例对本发明的方案进行解释。本领域技术人员将会理解，下面的实施例仅用于说明本发明，而不应视为限定本发明的范围。实施例中未注明具体技术或条件的，按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市购获得的常规产品。
实施例1 多肽的免疫原性预测
本发明根据选定的HLA-A11:01和HLA-A24:02等位基因分型，利用自主开发的生物信息分析流程将IDO1蛋白全长切割成8-11 mer氨基酸的多肽序列，IDO1基因编码的蛋白的长度为403个氨基酸，分子量大小为45326道尔顿，切割的多肽序列1578条。对这1578条多肽分别进行呈递能力预测和亲和力预测。呈递能力打分值用0-1的数值表示，打分值越高表明呈递能力越强，打分值大于0.1则表示该多肽具有呈递能力。亲和力打分值用IC50分值表示，IC50小于500表示该多肽具有亲和力，IC50小于50表示该多肽具有高亲和力。筛选条件是满足以下两个条件之一：（1）呈递打分值>0.5；（2）呈递打分值>0.1且IC50<500。满足条件的多肽序列（表2和表3）进行下一步T2亲和力验证。
表2 多肽序列与HLA-A11:01等位的呈递能力和亲和力预测得分
SEQ ID 基因 氨基酸位点 多肽序列 HLA分型 呈递打分值 亲和力打分值
NO:1 IDO1 3-13 HAMENSWTISK HLA-A11:01 0.4027 23.1180
NO:2 IDO1 4-13 AMENSWTISK HLA-A11:01 0.1770 19.7479
NO:3 IDO1 53-61 GQLRERVEK HLA-A11:01 0.2934 194.5400
NO:4 IDO1 66-74 SIDHLTDHK HLA-A11:01 0.2343 51.0259
NO:5 IDO1 86-94 ITMAYVWGK HLA-A11:01 0.6697 3.5893
NO:6 IDO1 107-116 IAVPYCQLSK HLA-A11:01 0.1047 34.6073
NO:7 IDO1 108-116 AVPYCQLSK HLA-A11:01 0.4484 25.1136
NO:8 IDO1 108-117 AVPYCQLSKK HLA-A11:01 0.6177 14.1971
NO:12 IDO1 170-179 VEIAAASAIK HLA-A11:01 0.1340 124.5000
NO:13 IDO1 176-186 SAIKVIPTVFK HLA-A11:01 0.6787 11.6172
NO:14 IDO1 177-186 AIKVIPTVFK HLA-A11:01 0.6550 21.0345
NO:15 IDO1 179-186 KVIPTVFK HLA-A11:01 0.4083 60.6806
NO:16 IDO1 188-198 MQMQERDTLLK HLA-A11:01 0.3989 147.2000
NO:17 IDO1 189-198 QMQERDTLLK HLA-A11:01 0.1602 49.3226
NO:18 IDO1 199-209 ALLEIASCLEK HLA-A11:01 0.4822 52.1706
NO:19 IDO1 215-224 HQIHDHVNPK HLA-A11:01 0.3095 212.4000
NO:20 IDO1 216-224 QIHDHVNPK HLA-A11:01 0.7131 25.1589
NO:21 IDO1 228-238 SVLRIYLSGWK HLA-A11:01 0.2433 35.6533
NO:22 IDO1 247-257 LVYEGFWEDPK HLA-A11:01 0.3639 42.3593
NO:26 IDO1 315-323 SVREFVLSK HLA-A11:01 0.7238 10.3926
NO:27 IDO1 343-352 RSYHLQIVTK HLA-A11:01 0.7038 7.9980
NO:28 IDO1 354-363 ILIPASQQPK HLA-A11:01 0.5535 79.2037
NO:29 IDO1 355-363 LIPASQQPK HLA-A11:01 0.2992 96.2767
NO:30 IDO1 358-366 ASQQPKENK HLA-A11:01 0.5881 78.8155
NO:31 IDO1 379-389 TGGTDLMNFLK HLA-A11:01 0.1878 130.5200
NO:32 IDO1 380-389 GGTDLMNFLK HLA-A11:01 0.2550 36.9853
NO:33 IDO1 381-389 GTDLMNFLK HLA-A11:01 0.5331 5.2592
NO:34 IDO1 389-397 KTVRSTTEK HLA-A11:01 0.4909 16.5169
NO:35 IDO1 392-401 RSTTEKSLLK HLA-A11:01 0.3784 12.6052
NO:36 IDO1 393-401 STTEKSLLK HLA-A11:01 0.8992 9.7822
表3 多肽序列与HLA-A24:02等位的呈递能力和亲和力预测得分
SEQ ID 基因 氨基酸位点 多肽序列 HLA分型 呈递打分值 亲和力打分值
NO:9 IDO1 125-134 VYADCVLANW HLA-A24:02 0.7818 13.6238
NO:10 IDO1 144-152 TYENMDVLF HLA-A24:02 0.5334 16.7625
NO:11 IDO1 144-154 TYENMDVLFSF HLA-A24:02 0.7070 23.0000
NO:23 IDO1 297-306 RYMPPAHRNF HLA-A24:02 0.9101 1.5091
NO:24 IDO1 297-307 RYMPPAHRNFL HLA-A24:02 0.8808 19.6987
NO:25 IDO1 298-306 YMPPAHRNF HLA-A24:02 0.4338 36.2846
实施例2 多肽T2亲和力验证
取2×105个T2细胞铺用500μL含有人类β2微球蛋白（最终浓度，3μg/ml）的IMDM无血清培养基重悬到24孔板里，加入表1中的多肽（最终浓度100μM），在培养箱(37 ˚C, 5%CO2)，培养过夜。每个组2个复孔；没有加多肽的T2细胞被用作背景对照。将细胞200g离心5分钟收集细胞。细胞用PBS洗涤两次后，将细胞直接用抗HLA-A11:01/HLA-A24:02的FITC单克隆抗体孵育，4℃维持30分钟。然后用流式细胞仪进行分析。荧光指数（FI）用下列公式计算：FI =[平均荧光强度（MFI）样品 - MFIbackground] / MFIbackground，其中MFIbackground代表不含肽的值。 FI> 1.5表明该肽具有用于HLA-A11:01或HLA-A24:02分子的高亲和性，1.0 <FI <1.5表明该肽具有对HLA-A11:01或HLA-A24:02分子中等亲和力，以及0.5 <FI <1.0表明该肽为HLA-A11:01或HLA-A24:02分子低亲和力。
结果如下表所示，选择T2亲和力验证具有高亲和力的15条多肽进行后续的质谱呈递验证、体外刺激扩增CD8+T细胞和ELISPOTs方法验证。
表4 多肽序列与HLA等位的亲和力的检测结果
样本 SEQ ID 加入多肽浓度 平均荧光强度 FI 结论
HAMENSWTISK NO:1 100mM 25 -0.84 无亲和力
AMENSWTISK NO:2 100mM 322 1.13 中等亲和力
GQLRERVEK NO:3 100mM 231 0.53 低亲和力
SIDHLTDHK NO:4 100mM 194 0.28 无亲和力
ITMAYVWGK NO:5 100mM 414 1.74 高亲和力
IAVPYCQLSK NO:6 100mM 315 1.09 中等亲和力
AVPYCQLSK NO:7 100mM 14 -0.91 无亲和力
AVPYCQLSKK NO:8 100mM 520 2.44 高亲和力
VYADCVLANW NO:9 100mM 1041 5.90 高亲和力
TYENMDVLF NO:10 100mM 174 0.15 无亲和力
TYENMDVLFSF NO:11 100mM 766 4.08 高亲和力
VEIAAASAIK NO:12 100mM 28 -0.81 无亲和力
SAIKVIPTVFK NO:13 100mM 515 2.41 高亲和力
AIKVIPTVFK NO:14 100mM 473 2.13 高亲和力
KVIPTVFK NO:15 100mM 340 1.25 中等亲和力
MQMQERDTLLK NO:16 100mM 175 0.16 无亲和力
QMQERDTLLK NO:17 100mM 100 -0.34 无亲和力
ALLEIASCLEK NO:18 100mM 774 4.13 高亲和力
HQIHDHVNPK NO:19 100mM 335 1.22 中等亲和力
QIHDHVNPK NO:20 100mM 598 2.96 高亲和力
SVLRIYLSGWK NO:21 100mM 82 -0.46 无亲和力
LVYEGFWEDPK NO:22 100mM 376 1.49 中等亲和力
RYMPPAHRNF NO:23 100mM 771 4.11 高亲和力
RYMPPAHRNFL NO:24 100mM 505 2.34 高亲和力
YMPPAHRNF NO:25 100mM 219 0.45 无亲和力
SVREFVLSK NO:26 100mM 751 3.97 高亲和力
RSYHLQIVTK NO:27 100mM 319 1.11 中等亲和力
ILIPASQQPK NO:28 100mM 580 2.84 高亲和力
LIPASQQPK NO:29 100mM 27 -0.82 无亲和力
ASQQPKENK NO:30 100mM 616 3.08 高亲和力
TGGTDLMNFLK NO:31 100mM 83 -0.45 无亲和力
GGTDLMNFLK NO:32 100mM 227 0.50 低亲和力
GTDLMNFLK NO:33 100mM 515 2.41 高亲和力
KTVRSTTEK NO:34 100mM 359 1.37 中等亲和力
RSTTEKSLLK NO:35 100mM 360 1.39 中等亲和力
STTEKSLLK NO:36 100mM 576 2.81 高亲和力
Blank 0mM 151 0.00 无亲和力
CMV 100mM 672 3.45 高亲和力
实施例3 质谱实验验证多肽在肿瘤细胞表面被HLA分子呈递
本发明通过免疫共沉淀-质谱联合的方式，富集细胞表面的多肽-MHC复合体，对肿瘤细胞表面的MHC分子是否呈递了所述多肽进行了鉴定。具体方法如下：
1）MHC-I限制性T细胞表位肽的分离与纯化：使用pan-MHC-I A/B/C抗体（克隆号：w6/32）与表面偶联protein A分子的sepharose CL-4B beads在4℃结合1小时，使用NanoDrop检测上清残余的抗体含量，抗体结合率>90%视为合格，制备pan-MHC-I A/B/C结合sepharose，4℃备用。SKMEL5及HCT8细胞样本中分别加入40ml RIPA裂解液，4℃孵育1小时，12000rpm离心30min，上清加入sepharose CL-4B beads进行预杂交，4℃孵育1小时；离心去除beads，上清加入pan-MHC-A/B/C结合sepharose CL-4B beads，4℃孵育过夜（16-18小时）。使用4℃预冷的PBS洗涤beads，重复三次；使用超纯水洗涤beads；离心去除洗涤液，使用0.1N acetic acid洗脱beads表面的抗体-MHC-I蛋白复合物，抗体-MHC-I蛋白复合在酸性条件下解离，进一步，使用3kDa超滤管或C18固相萃取柱（25mg，waters）对洗脱产物中的蛋白和多肽进行分离纯化，使用冷冻真空离心机对纯化产物进行浓缩，浓缩产物-20℃保存至质谱上机。
2）MHC-I限制性T细胞表位肽的质谱鉴定：浓缩的MHC-I限制性表位肽溶液通过在线连接nanoflow HPLC (Thermo Fisher Scientific) 的Q Exactive质谱仪(ThermoFisher Scientific) 进行分析，采用ReproSil-PurC18-AQ1.9um填料手工填装长15cm，内径75um的分离柱进行分离，使用线性梯度2-30%的buffer B（80% ACN／0.5% acetic acid）洗脱多肽，流速设置250nl/min，洗脱时间90min。二级质谱采用HCD进行碎片化，数据采集选择数据依赖的“Top 20”方法。MS图谱的采集分辨率为70,000，200m/z，目标值为3E6离子；离子强度排行前10的离子通常采用最大注射时间为120ms进行分离和累积直至自动增益控制器的数值显示为1E5。多肽匹配选项设置“disable”，MS/MS分辨率设置17,500（200 m/z）。
3）MHC-I限制性T细胞表位肽的质谱数据分析：数据分析采用MaxQuant（version1.3.10.15）比对质谱图谱和人全蛋白库（Uniprot，86,749个蛋白）、肿瘤相关抗原、肿瘤特异性突变肽段以及一个包含247个常见污染物（角蛋白、牛血清蛋白和蛋白酶）的数据集生成的图谱列表。可变修饰检测设置：N端乙酰化和甲硫氨酸氧化。第二位多肽鉴定设置：enable；特异性酶切设置：unspecific；多肽鉴定FDR（false discovery rate）设置1%，蛋白鉴定FDR不设置；序列匹配长度限制设置为8-15aa，最大多肽质量设置为1500Da，最大电荷状态设置为3。前导离子的初始允许质量偏差设置为6ppm，最大碎片质量偏差设置为20ppm。“match between runs”设置开启。鉴定结果输出保存在“peptide.txt”文件中，去除匹配到反库和污染库中的多肽，其余为MHC-I限制性表位的鉴定结果。
结果显示，表4的15条高亲和力多肽中，有12条可以在本实验中鉴定表达并呈递于细胞表面的HLA分子。
实施例4 多肽体外刺激扩增CD8+T细胞
取HLA-A11:01亚型阳性健康志愿者的PBMC细胞，2×106个PBMC细胞，用贴壁法分离单核细胞(贴3h)，以及CD8磁珠的方法分离得到CD8+的T细胞。采用GM-CSF（1000U/ml），IL-4（1000U/ml），诱导贴壁单核细胞为未成熟DC，再用IFN-gamma（100U/ml），LPS（10ng/ml），以及表4具有高亲和力的多肽序列诱导贴壁细胞为多肽特异性成熟DC细胞。将负载过多肽的成熟DC细胞辐照，并与同一志愿者的CD8+ T细胞共培养，并加入IL-21, 3天后，补加IL-2 和IL-7，以后于第5，7天补加一次IL-2和IL-7，第10天取共培养的细胞进行计数，和后续的ELISPOTs以及LDH检测。HLA-A24:02亚型也是进行如上操作。计数结果如下，由此表明，表5和表6中的多肽均可在体外刺激扩增CD8+T细胞。
表5 HLA-A11:01分型多肽培养后计数结果
多肽序列 SEQ ID 培养前细胞总数 培养后细胞总数
ITMAYVWGK NO:5 2.0×10^6 7.18×10^6
AVPYCQLSKK NO:8 2.0×10^6 9.28×10^6
SAIKVIPTVFK NO:13 2.0×10^6 8.74×10^6
AIKVIPTVFK NO:14 2.0×10^6 7.62×10^6
ALLEIASCLEK NO:18 2.0×10^6 7.43×10^6
QIHDHVNPK NO:20 2.0×10^6 9.30×10^6
SVREFVLSK NO:26 2.0×10^6 9.80×10^6
ILIPASQQPK NO:28 2.0×10^6 7.04×10^6
ASQQPKENK NO:30 2.0×10^6 7.32×10^6
GTDLMNFLK NO:33 2.0×10^6 8.14×10^6
STTEKSLLK NO:36 2.0×10^6 8.43×10^6
表6 HLA-A24:02分型多肽培养后计数结果
多肽序列 SEQ ID 培养前细胞总数 培养后细胞总数
VYADCVLANW NO:9 2.0×10^6 7.73×10^6
TYENMDVLFSF NO:11 2.0×10^6 8.21×10^6
RYMPPAHRNF NO:23 2.0×10^6 9.37×10^6
RYMPPAHRNFL NO:24 2.0×10^6 8.22×10^6
实施例5 ELISPOTs方法验证多肽激活CD8+T细胞免疫反应
将实施例4中培养的T细胞与负载过实验多肽或无关多肽（ALADGVQKV）的T2分别加入到人IFN-gamma干扰素ELISPOTs板中进行培养，20小时后，依据ELISPOTs检测（见试剂盒说明书）对ELISPOT实验产生的斑点进行计数。实验多肽具有免疫原性的要求如下：斑点数(多肽)/斑点数(无关多肽)≥2，即实验多肽引起的斑点数超过无关多肽斑点数目的两倍及以上。
ELISPOTs检测方法原理：由于T2细胞表达HLA-A11:01/HLA-A24:02，因此，T2细胞可以向T细胞提呈HLA-A11:01/HLA-A24:02抗原肽。CD8+T细胞特异识别HLA-A11:01/HLA-A24:02和多肽的复合物之后，T细胞能再次激活并分泌IFN-gamma干扰素。而CD8+T细胞被激活分泌的IFN-gamma干扰素可以被ELISPOTs板子上的抗体所捕获，识别IFN-gamma的抗体可以通过偶联在抗体上的酶，降解底物显色，最终产生斑点。斑点的数目代表了被激活分泌IFN-gamma干扰素的细胞数目。ELISPOTs结果见图1和表7。累计有9条多肽的实验组斑点数超过无关组斑点数的2倍及以上，具有较强的免疫原性。
表7 多肽刺激特异性CD8+T细胞分泌IFN-gamma干扰素
SEQ ID 多肽序列 多肽斑点数 无关多肽斑点数 倍数(实验/无关)
NO:5 ITMAYVWGK 21±3.98 22±1.41 0.95
NO:8 AVPYCQLSKK 55±2.00 22±1.41 2.5
NO:9 VYADCVLANW 62±3.11 22±1.41 2.82
NO:11 TYENMDVLFSF 64±1.40 22±1.41 2.91
NO:13 SAIKVIPTVFK 9±1.65 22±1.41 0.41
NO:14 AIKVIPTVFK 9±0.64 22±1.41 0.41
NO:18 ALLEIASCLEK 65±2.09 22±1.41 2.95
NO:20 QIHDHVNPK 27±1.45 22±1.41 1.23
NO:23 RYMPPAHRNF 61±2.90 22±1.41 2.77
NO:24 RYMPPAHRNFL 18±4.64 22±1.41 0.82
NO:26 SVREFVLSK 65±1.80 22±1.41 2.95
NO:28 ILIPASQQPK 60±1.18 22±1.41 2.73
NO:30 ASQQPKENK 14±4.67 22±1.41 0.64
NO:33 GTDLMNFLK 60±0.31 22±1.41 2.73
NO:36 STTEKSLLK 64±3.19 22±1.41 2.91
Melan-A NLVPMVATV 888±13.44 22±1.41 40.3
实施例6 LDH释放实验证明CD8+T细胞多肽特异性杀伤活性
将实施例4中培养的细胞与负载过实验多肽或无关多肽或未负载多肽的T2细胞进行共培养，实验中设置最大释放孔、体积校正孔、培养基对照孔、自发释放孔、不同效靶比（T细胞与T2细胞的数目比）作为对照，每组设置3个复孔，4h后，取出共培养的细胞上清50μl，并加入到50μlLDH底物混合液中，使细胞上清催化LDH底物反应，最终读取490nm波长和680nm参考波长，并根据对照孔，按照下列公式计算靶细胞杀伤T2的杀伤活性。
杀伤活性计算公式为：杀伤效率(%)=（实验孔-效应细胞自发释放-靶细胞自发释放+培养基孔）/（靶细胞最大释放-体积校正孔-靶细胞自发释放+培养基孔）×100%。
结果见表8、图2~4，前述具备免疫原性的9条多肽，其相对应的9组特异性T细胞在E:T=20:1组的杀伤效率显著高于无关肽组及不负载肽组，且杀伤效率均超过50%，表明这9条多肽具有刺激产生高杀伤效率特异性T细胞的能力。
表8 T细胞特异性识别并杀伤呈递实验多肽的靶细胞
E:T=1:1 E:T=10:1 E:T=20:1
T2 1.38% 5.01% 11.36%
T2+Irrelevant 3.95% 8.39% 13.45%
T2+ITMAYVWGK 4.60% 9.00% 13.28%
T2 0.54% 3.45% 10.72%
T2+Irrelevant 3.86% 8.52% 17.20%
T2+AVPYCQLSKK 5.64% 39.08% 57.00%
T2 -4.01% 6.13% 11.58%
T2+Irrelevant 3.03% 8.28% 18.67%
T2+VYADCVLANW 6.78% 45.59% 78.59%
T2 1.30% 6.63% 10.10%
T2+Irrelevant 3.82% 9.50% 18.63%
T2+TYENMDVLFSF 6.75% 22.27% 76.01%
T2 -4.88% 7.18% 9.71%
T2+Irrelevant -3.42% 8.98% 12.01%
T2+SAIKVIPTVFK 2.07% 6.86% 11.78%
T2 -1.51% 5.21% 14.26%
T2+Irrelevant -0.22% 7.89% 18.75%
T2+AIKVIPTVFK 3.61% 5.74% 13.12%
T2 -3.54% 3.39% 12.40%
T2+Irrelevant 3.04% 6.07% 17.39%
T2+ALLEIASCLEK 8.43% 32.35% 78.99%
T2 -4.77% 3.39% 9.33%
T2+Irrelevant 2.21% 5.44% 10.17%
T2+QIHDHVNPK 4.08% 6.88% 14.57%
T2 -1.41% 4.53% 9.68%
T2+Irrelevant 1.53% 7.59% 13.25%
T2+RYMPPAHRNF 5.06% 25.63% 68.39%
T2 -0.69% 4.26% 9.25%
T2+Irrelevant 1.04% 4.77% 13.03%
T2+RYMPPAHRNFL 3.44% 8.69% 15.40%
T2 -2.51% 5.76% 12.19%
T2+Irrelevant 2.24% 8.40% 19.67%
T2+SVREFVLSK 7.66% 41.53% 73.98%
T2 -3.33% 4.56% 13.68%
T2+Irrelevant 1.69% 9.19% 16.13%
T2+ILIPASQQPK 5.05% 39.57% 59.92%
T2 -0.32% 5.39% 14.75%
T2+Irrelevant 0.89% 7.65% 16.93%
T2+ASQQPKENK 3.26% 7.93% 15.15%
T2 -1.11% 6.94% 13.95%
T2+Irrelevant 1.38% 13.75% 21.55%
T2+GTDLMNFLK 8.84% 39.07% 54.12%
T2 -3.18% 4.23% 12.10%
T2+Irrelevant -0.53% 6.88% 19.09%
T2+STTEKSLLK 5.81% 30.17% 68.17%
实施例7多肽疫苗的制备及治疗方案
1、构建并包装表达多肽的重组慢病毒
合成多肽对应的DNA序列，并分别构建对应的慢病毒载体pHBLV-Puro。将慢病毒质粒与pSPAX2和pMD2G辅助质粒共同转染293T细胞，并包装出多肽的慢病毒。
2、表达多肽的人源细胞系的建立
人肺癌细胞系NCIH1648购买于ATCC（编号：CRL-5882），其HLA亚型为HLA-A11:01阳性。人乳腺癌细胞系HCC1954购买于ATCC（编号:CRL-2338），其HLA亚型为HLA-A24:02。细胞培养于含10%胎牛血清，100 U/mL青霉素和链霉素的DMEM培养基中。37℃，5% CO2的孵箱中培养。将包装好的慢病毒分别转染NCIH1648和HCC1954细胞系，并采用Puromycin 抗生素（嘌吟霉素），持续筛选存活的NCIH1648和HCC1954细胞系，最终建立表达多肽的NCIH1648和HCC1954细胞系。
3、NOD/SCID小鼠人免疫重建
采集健康志愿者抗凝外周血600～900 ml。Ficoll分离外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear, PBMC) ，收集细胞待用。300只排除免疫渗漏的NOD SCID小鼠，每只腹腔注射PBMC 2×107/0.5ml，对NOD SCID小鼠进行人免疫重建。选取4周后免疫重建成功的小鼠准备接种人肺癌细胞系和人乳腺癌细胞系模型。
4、人肺癌和人乳腺癌肿瘤模型的构建
已建系的人肺癌细胞系和人乳腺癌细胞系，培养于含10%胎牛血清，100 U/mL青霉素和链霉素的DMEM培养基中。37℃, 5% CO2的孵箱中培养。收集肿瘤细胞，200g/min离心，用无菌生理盐水洗涤肿瘤细胞3 次。做适当稀释，取40微升细胞悬液加入10微升0.4%台酚蓝染色并镜检计数，制成浓度为1×108个/ml 的肿瘤细胞悬液，选取免疫重建后的NOD/SCID小鼠，每只小鼠皮下接种肿瘤细胞悬液100ml。接种完成后，逐日观察接种部位有无感染，肿瘤生长后有无自然消退。7天后，小鼠皮下瘤可摸到约米粒大小肿瘤，表明NCIH1648或HCC1954皮下瘤模型NOD/SCID小鼠模型构建成功。
5、多肽疫苗的制备
（1）选择实施例3和实施例5中等位分型为HLA-A11:01，并且具有双阳性结果（呈递验证阳性且免疫原性验证阳性）的3条多肽序列：ALLEIASCLEK（SEQ ID NO:18）、SVREFVLSK（SEQ ID NO:26）和STTEKSLLK（SEQ ID NO:36）进行多肽疫苗的制备。
将免疫重建4周的NCIH1648皮下瘤模型NOD/SCID小鼠随机分为6组：佐剂组、佐剂+无关多肽组、佐剂+ALLEIASCLEK多肽组、佐剂+SVREFVLSK多肽组、佐剂+STTEKSLLK多肽组、佐剂+多肽（多肽序列为SEQ ID NO:18、26和36）组合组，每组各8只。无关多肽组和多肽组合的首次免疫剂量为100ml/只。上述多肽用PBS重悬后，与150ml/只弗氏完全佐剂混匀后，用PBS调整至300ml/只，于背部皮下双点注射。2周后，使用相同剂量进行加强免疫（第1次使用完全弗氏佐剂，以后均用不完全弗氏佐剂），共免疫4次。注射结束后观察小鼠生命体征，每3-4天用游标卡尺测量肿瘤纵横大小。肿瘤体积计算为:肿瘤体积=1/2*长*宽2。同时，记录小鼠体重变化情况。结果见图5中的A和B。
（2）选择实施例3和实施例5中等位分型为HLA-A24:02，并且具有双阳性结果（呈递验证阳性且免疫原性验证阳性）的3条多肽序列：VYADCVLANW（SEQ ID NO:9）、TYENMDVLFSF（SEQ ID NO:11）、RYMPPAHRNF（SEQ ID NO:23）进行多肽疫苗的制备。
将免疫重建4周的HCC1954皮下瘤模型NOD/SCID小鼠随机分为6组：佐剂组、佐剂+无关多肽组、佐剂+VYADCVLANW多肽组、佐剂+TYENMDVLFSF多肽组、佐剂+RYMPPAHRNF多肽组、佐剂+多肽（多肽序列为SEQ ID NO:9、11和23）组合组，每组各8只。无关多肽组和多肽组合的首次免疫剂量为100ml/只。上述多肽用PBS重悬后，与150ml/只弗氏完全佐剂混匀后，用PBS调整至300ml/只，于背部皮下双点注射。2周后，使用相同剂量进行加强免疫（第1次使用完全弗氏佐剂，以后均用不完全弗氏佐剂），共免疫4次。注射结束后观察小鼠生命体征，每3-4天用游标卡尺测量肿瘤纵横大小。肿瘤体积计算为:肿瘤体积=1/2*长*宽2。同时，记录小鼠体重变化情况。结果见图6中的C和D。
结果显示，相对于无关多肽负载的多肽疫苗组和佐剂组，佐剂+核心多肽或多肽组合负载的多肽疫苗组可以明显的减缓小鼠肿瘤的生长，并延长小鼠的生存期。
在本说明书的描述中，参考术语“一个实施例”、“一些实施例”、 “示例”、“具体示例”、或“一些示例”等的描述意指结合该实施例或示例描述的具体特征、结构、材料或者特点包含于本发明的至少一个实施例或示例中。在本说明书中，对上述术语的示意性表述不必须针对的是相同的实施例或示例。而且，描述的具体特征、结构、材料或者特点可以在任一个或多个实施例或示例中以合适的方式结合。此外，在不相互矛盾的情况下，本领域的技术人员可以将本说明书中描述的不同实施例或示例以及不同实施例或示例的特征进行结合和组合。
尽管上面已经示出和描述了本发明的实施例，可以理解的是，上述实施例是示例性的，不能理解为对本发明的限制，本领域的普通技术人员在本发明的范围内可以对上述实施例进行变化、修改、替换和变型。
SEQUENCE LISTING
<110> 深圳吉诺因生物科技有限公司；武汉华大吉诺因生物科技有限公司
<120> IDO1相关疫苗及其应用
<130> PDI220226
<160> 72
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 11
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 1
<400> 1
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<213> Artificial Sequence
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gctgttcctt actgccaact ctccaag 27
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acttatgaga acatggacgt tttgttctca ttt 33
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gtggaaatag cagctgcttc tgcaatcaaa 30
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tctgcaatca aagtaattcc tactgtattc aag 33
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<220>
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gcaatcaaag taattcctac tgtattcaag 30
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aaagtaattc ctactgtatt caag 24
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<220>
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caaatgcaag aacgggacac tttgctaaag 30
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<213> Artificial Sequence
<220>
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gcgctgttgg aaatagcttc ttgcttggag aaa 33
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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caccaaatcc acgatcatgt gaacccaaaa 30
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<212> DNA
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<220>
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caaatccacg atcatgtgaa cccaaaa 27
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 57
<400> 57
agtgttcttc gcatatattt gtctggctgg aaa 33
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<212> DNA
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ctggtgtatg aagggttctg ggaagaccca aag 33
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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<212> DNA
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<220>
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agatatatgc caccagctca caggaacttc ctg 33
<210> 61
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<212> DNA
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<220>
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<400> 61
tatatgccac cagctcacag gaacttc 27
<210> 62
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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tcagtccgtg agtttgtcct ttcaaaa 27
<210> 63
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 63
<400> 63
aggagctacc atctgcaaat cgtgactaag 30
<210> 64
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 64
<400> 64
atcctgattc ctgcaagcca gcagccaaag 30
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<400> 65
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<210> 66
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 66
<400> 66
gcaagccagc agccaaagga gaataag 27
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<212> DNA
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<220>
<223> 67
<400> 67
actggaggca ctgatttaat gaatttcctg aag 33
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<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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<400> 68
ggaggcactg atttaatgaa tttcctgaag 30
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<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 69
<400> 69
ggcactgatt taatgaattt cctgaag 27
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<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
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<400> 70
aagactgtaa gaagtacaac tgagaaa 27
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agaagtacaa ctgagaaatc ccttttgaag 30
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 72
<400> 72
agtacaactg agaaatccct tttgaag 27

Claims (15)

1.一种分离的多肽，其特征在于，所述分离的多肽的氨基酸序列为SEQ ID NO：9或11。
2.一种分离的核酸，其特征在于，所述分离的核酸编码权利要求1所述多肽。
3.根据权利要求2所述的分离的核酸，其特征在于，所述分离的核酸的核苷酸序列为SEQ ID NO：45或47。
4.一种分离的抗原递呈细胞，其特征在于，所述分离的抗原递呈细胞负载氨基酸序列为SEQ ID NO：9、11或18的分离的多肽且表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02，所述分离的抗原递呈细胞是通过将氨基酸序列为SEQ ID NO：9、11或18的分离的多肽负载到未成熟的抗原递呈细胞表面以诱导其成熟所获得的。
5.根据权利要求4所述分离的抗原递呈细胞，其特征在于，所述分离的抗原递呈细胞为树突状细胞、B细胞或单核-吞噬细胞。
6.一种分离的免疫细胞，其特征在于，所述分离的免疫细胞的结合靶标为氨基酸序列为SEQ ID NO：9、11或18的分离的多肽，所述分离的免疫细胞是通过将权利要求4或5所述分离的抗原递呈细胞与具有免疫效应能力的细胞接触所获得的。
7.根据权利要求6所述分离的免疫细胞，其特征在于，所述具有免疫效应能力的细胞为CD8+T细胞。
8.一种疫苗，其特征在于，包括：氨基酸序列为SEQ ID NO：9或11的分离的多肽、权利要求2或3所述分离的核酸、权利要求4或5所述分离的抗原递呈细胞和/或权利要求6或7所述分离的免疫细胞。
9.根据权利要求8所述疫苗，其特征在于，所述疫苗进一步包括佐剂。
10.一种药物，其特征在于，包括：氨基酸序列为SEQ ID NO：9或11的分离的多肽、权利要求2或3所述分离的核酸、权利要求4或5所述分离的抗原递呈细胞和/或权利要求6或7所述分离的免疫细胞。
11.根据权利要求10所述药物，其特征在于，所述药物进一步包括药学上可接受的辅料。
12.氨基酸序列为SEQ ID NO：9、11或18的分离的多肽、权利要求2或3所述分离的核酸、权利要求4或5所述分离的抗原递呈细胞和/或权利要求6或7所述分离的免疫细胞在制备疫苗中的用途，其特征在于，所述疫苗用于预防癌症，所述癌症的肿瘤细胞表达IDO1；
所述癌症为乳腺癌、肺癌、鼻咽癌、肝癌、胃癌、食道癌、结直肠癌、胰腺癌、黑色素瘤、皮肤癌、前列腺癌、宫颈癌、白血病、甲状腺癌、淋巴瘤、膀胱癌、肾癌、子宫体癌、卵巢癌、胆囊癌、口腔癌、喉癌、骨癌、睾丸癌或脑癌。
13.根据权利要求12所述的用途，其特征在于，所述疫苗的受试者表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02。
14.氨基酸序列为SEQ ID NO：9、11或18的分离的多肽、权利要求2或3所述分离的核酸、权利要求4或5所述分离的抗原递呈细胞和/或权利要求6或7所述分离的免疫细胞在制备药物中的用途，其特征在于，所述药物用于治疗癌症，所述癌症的肿瘤细胞表达IDO1；
所述癌症为乳腺癌、肺癌、鼻咽癌、肝癌、胃癌、食道癌、结直肠癌、胰腺癌、黑色素瘤、皮肤癌、前列腺癌、宫颈癌、白血病、甲状腺癌、淋巴瘤、膀胱癌、肾癌、子宫体癌、卵巢癌、胆囊癌、口腔癌、喉癌、骨癌、睾丸癌或脑癌。
15.根据权利要求14所述的用途，其特征在于，所述药物的受试者表达HLA-A11:01和/或HLA-A24:02。
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