CN114042072A - Stm2457的新用途 - Google Patents

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Abstract

本发明属于STM2457研究技术领域,尤其涉及STM2457的新用途。STM2457在制备防治肿瘤疾病药物中的应用。在一些方式中,所述肺癌为非小细胞肺癌;所述STM2457的作用浓度为5μM。STM2457在制备NSCLC细胞阻滞增殖制剂、NSCLC细胞转移抑制剂、NSCLC细胞促进凋亡制剂至少之一中的应用。STM2457在制备CYP19A1表达抑制剂中的应用;所述CYP19A1表达为CYP19A1蛋白;所述STM2457的作用浓度为5μM。STM2457在制备雌激素信号通路抑制剂中的应用;所述雌激素信号通路为NSCLC关联雌激素信号通路。STM2457在制备METTL3活性抑制剂中的应用。本发明针对NSCLC开发了新的治疗药物,提供了新的治疗方案,有望在克服肿瘤异质性的基础上抑制NSCLC进展;针对METTL3提供了有效的活性抑制剂,并明确了分子靶点的变化规律和肿瘤抑制的潜在机制。同时针对STM2457研究一些新用途。

Description

STM2457的新用途
技术领域
本发明属于STM2457研究技术领域,尤其涉及STM2457的新用途。
背景技术
在中国乃至全世界范围内,肺癌尤其是非小细胞肺癌(Non-small cell lungcancer,NSCLC)的死亡率在所有肿瘤中居于首位,肿瘤转移显著降低了NSCLC患者的生存率。我国NSCLC的高负担和晚期NSCLC转移的高比例,亟待挖掘抑制NSCLC转移的新靶点进而开发晚期NSCLC治疗的新策略。
近几十年来,NSCLC被进一步定义为一类具有基因和细胞异质性的独特疾病,表现为瘤灶中包含有多种多样的细胞集合,这些细胞具有不同的遗传和分子特征,对临床治疗具有不同的敏感性,为药物耐受提供了沃土,严重影响了晚期NSCLC临床疗效。
无论NSCLC在基因和细胞水平上的异质性程度如何,蛋白质始终是病理生理过程中必不可少的效应分子。翻译作为蛋白表达的终末阶段,在致癌基因蛋白表达中发挥着广泛而至关重要的作用,已有研究表明,翻译失调是肿瘤细胞的普遍特征。鉴于翻译调控整合了肿瘤内几乎所有的致癌信号通路的表达和激活,靶向翻译调控能够有效地避免肿瘤内异质性对临床疗效的不良影响。然而,翻译调控的分子复杂多样,翻译调控的过程精密脆弱,一直困囿着翻译机制的研究,随着相关组学技术的发展,翻译调控的全局研究直到近些年才取得突破性进展,形成了“翻译组学”这一新兴研究领域。随着翻译调控的临床价值凸显,加之翻译组学的科研技术革新,靶向特异性翻译调控因子有望在克服异质性的基础上,有效地抑制NSCLC转移,为晚期NSCLC治疗带来新的曙光。
m6A(N6-mehtyladenosine,6-甲基腺嘌呤)甲基化作为最常见、最丰富且最保守的mRNA内源性表观修饰,能够调控mRNA的转录、加工、剪接和翻译等诸多过程,越来越多的研究发现m6A甲基化与肿瘤转移密切相关。METTL3(Methyltransferase-like 3,甲基转移酶样3)作为m6A甲基化表观修饰中唯一的催化酶,在各种恶性肿瘤侵袭转移中发挥着复杂多样且至关重要的作用。而目前的研究表明,METTL3作为致癌基因在NSCLC中显著高表达,促进NSCLC的侵袭转移。
STM2457在NSCLC中的应用尚未见报道,其能否作为一种新的NSCLC治疗策略亟待进一步研究。
发明内容
针对上述问题,本发明提供STM2457的新用途,主要解决了STM2457一些应用领域研究问题的缺失,主要是在肿瘤治疗中应用的缺失。
为了解决上述问题,本发明采用如下技术方案:
STM2457在制备防治肿瘤疾病药物中的应用。
在一些方式中,所述肿瘤疾病为肺癌。
在一些方式中,所述肺癌为非小细胞肺癌;所述STM2457的作用浓度为5μM。
STM2457在制备NSCLC细胞阻滞增殖制剂、NSCLC抑制转移制剂、NSCLC细胞促进凋亡制剂至少之一中的应用。
STM2457在制备CYP19A1表达抑制剂中的应用。
在一些方式中,所述CYP19A1表达为CYP19A1蛋白。
在一些方式中,所述STM2457的作用浓度为5μM。
STM2457在制备雌激素信号通路抑制剂中的应用。
在一些方式中,所述雌激素信号通路为NSCLC关联雌激素信号通路。
STM2457在制备METTL3活性抑制剂、METTL3表达促进剂中的应用。
其中,STM2457为化合物,其分子结构如图1中A所示。
STM2457在制备m6A甲基化表观修饰催化抑制剂中的应用。
本发明的有益效果是:
针对NSCLC开发了新的治疗药物,提供了新的治疗方案,有望在克服肿瘤异质性的基础上抑制NSCLC进展;针对METTL3提供了有效的活性抑制剂,并明确了分子靶点的变化规律和肿瘤抑制的潜在机制。同时针对STM2457研究一些新用途。
附图说明
图1-4中展示STM2457在NSCLC细胞中的基本性质,其中:
A为STM2457的分子结构式(CAS#2499663-01-1);
B-C为H1975/A549干预1,3和6天对STM2457的量效反应曲线(平均值±标准差,n=3);
D为NSCLC和正常肺上皮细胞系对STM2457的量效反应曲线(平均值±标准差,n=3),括号内为每个细胞株的半数最大抑制浓度(IC50);
E为安慰剂处理6天或5μM STM2457处理梯度时间(0-6天),A549/H1975中METTL3蛋白表达变化;
F为安慰剂或梯度浓度STM2457(0,0.01,0.05,0.1,0.5,1,5,10,50μM)处理3天或6天,A549/H1975中METTL3蛋白表达变化;
G为5μM STM2457处理梯度时间(0-6天),检测A549/H1975中m6A表达水平变化;
H为梯度浓度STM2457(0,0.01,0.05,0.1,0.5,1,5,10,50μM)处理6天,检测A549/H1975中m6A表达水平变化;
I为STM2457诱导的METTL3表达上调及其活性抑制效应模型图。
图5-6中展示METTL3能够促进NSCLC转移和进展,其中:
A为NSCLC患者(8例)配对的癌灶和癌旁组织中METTL3蛋白表达水平;
B-C为NSCLC患者(93例)配对的癌旁、癌灶和转移淋巴结中METTL3蛋白表达水平;
D为瞬时过表达或敲降METTL3前后,扫描电子显微镜观察A549细胞形态变化;
E为瞬时敲降METTL3或CRISPR Cas9稳定敲除METTL3前后,荧光基质降解实验评估A549细胞基质降解能力和侵袭性伪足形成;
F为瞬时敲降或稳定敲除METTL3前后,划痕实验评估A549细胞迁移能力的变化;
G为瞬时敲降或稳定敲除METTL3前后,Tranwell侵袭实验评估A549细胞侵袭能力的变化。
图7中展示STM2457能够在NSCLC中阻滞增殖、抑制转移和促进耐药,其中:
A为安慰剂或STM2457(0μM,1μM和5μM)处理10天,克隆形成检测A549/H1975的增殖能力变化;
B-C为安慰剂处理6天或STM2457(5μM)处理1天、3天和6天,划痕实验检测A549/H1975的迁移能力变化;
D为安慰剂处理6天或STM2457(5μM)处理1天、3天和6天,Tranwell侵袭实验检测A549/H1975的侵袭能力变化;
E为安慰剂或STM2457(1μM或5μM)处理3天,western-blot检测A549中凋亡相关蛋白(PARP,caspase-3,Bcl2和Bax)的表达变化;
F为安慰剂或STM2457(5μM)处理3天或6天,western-blot检测H1975中凋亡相关蛋白(PARP,caspase-3,Bcl2和Bax)的表达变化。
图8中展示STM2457可能通过阻断CYP19A1的翻译抑制NSCLC进展,其中:
A为瞬时敲降METTL3前后,western-blot检测A549细胞中CYP19A1蛋白水平的表达变化;
B为瞬时敲降METTL3前后,RT-PCR检测A549细胞中CYP19A1 mRNA水平的表达变化;
C为稳定敲除METTL3,Western-blot检测A549细胞中CYP19A1蛋白水平的表达变化;
D为稳定敲除METTL3,RT-PCR检测A549细胞中CYP19A1 mRNA水平的表达变化;
E为瞬时敲降METTL3前后,ELISA检测A549细胞内外雌激素合成和分泌水平;
F为稳定敲除METTL3前后,ELISA检测A549细胞内外雌激素合成和分泌水平;
G为安慰剂或STM2457(5μM)处理3天后,Western-blot检测A549细胞中CYP19A1蛋白水平的表达变化;
H为安慰剂或STM2457(5μM)处理3天后,RT-PCR检测A549细胞中CYP19A1 mRNA水平的表达变化;
I为安慰剂或STM2457(5μM)处理3天后,ELISA检测A549细胞内雌激素的合成水平。
具体实施方式
下面对本发明作进一步介绍:
本部分第一方面介绍STM2457在一些疾病治疗中的用途:
STM2457在制备防治肿瘤疾病药物中的应用。
在一些方式中,所述肿瘤疾病为肺癌。
在一些方式中,所述肺癌为非小细胞肺癌;所述STM2457的作用浓度为5μM。
STM2457能够克服肿瘤异质性,同时有效抑制肿瘤细胞的转移。进而为相关肿瘤的治疗提供新的治疗思路和产品。
本部分第二方面介绍STM2457在一些机理调节中的用途:
STM2457在制备NSCLC细胞阻滞增殖制剂、NSCLC细胞抑制转移制剂、NSCLC细胞促进凋亡制剂至少之一中的应用。“至少之一”表示其中任一或多个。
STM2457在制备CYP19A1表达抑制剂中的应用。
在一些方式中,所述CYP19A1表达为CYP19A1蛋白表达。
在一些方式中,所述STM2457的作用浓度为5μM。
STM2457在制备雌激素信号通路抑制剂中的应用。
在一些方式中,所述雌激素信号通路为NSCLC关联雌激素信号通路。
其应用方式之一为制备相应的治疗药物,至少包括:a.防治肿瘤疾病药物,有效成分包括化合物STM2457;b.抑制CYP19A1表达的药物,包含有效成分化合物STM2457,所述药物为抑制NSCLC细胞阻滞增殖制剂、抑制NSCLC细胞转移制剂和促进NSCLC细胞凋亡制剂;
其应用方式之二为在相关商业研究实验中作为调节试剂(第一、三方面部分在商业中应用说明同本部分),至少包括:
A.在一些肿瘤疾病研究中,为了控制肿瘤细胞迁移等,通过化合物STM2457实现控制;
B.在研究肿瘤细胞影响因素实验中,通过STM2457实现对肿瘤细胞迁移、增殖速度等的调节,包括有利和不利因素控制;
C.在肿瘤细胞其他研究项目中,需要控制转移等,通过STM2457实现控制;
D.在研究与CYP19A1蛋白表达相关项目中,通过STM2457实现控制表达水平。
本部分第三方面介绍STM2457在影响因子调节中的用途:
STM2457在制备METTL3活性抑制剂、METTL3表达促进剂中的应用。STM2457通过靶向翻译调控因子METTL3。通过靶向翻译调控因子METTL3,实现对一些与METTL3相关的调节。
其中,‘METTL3活性’表现为‘METTL3酶活性’,‘METTL3表达’表现为‘METTL3的蛋白表达’。
STM2457在制备m6A甲基化表观修饰催化抑制剂中的应用。其中一种表现方式为,在m6A甲基化表观修饰进行催化过程中,反应速度过快,可通过加入STM2457进行降速,或者在m6A甲基化表观修饰过程中通过STM2457与METTL3配合实现反应速率调整。
STM2457的衍生物等,当其性质与STM2457基本相同,且用途与本发明基本相同时,均应当等同在本发明的范围内。比如,部分位置的H-被取代后,只要不影响性质突变,均应当在本发明范围内。
前述三个方面中,前述仅是列举了部分使用场景,其他采用与本发明机理一致目的相近的均应在本发明范围内。
其中抑制表现为降低、水平保持不增长,不限定其必须在使用后使得该信号通路或蛋白表达或活性降低。促进表现为提高或使其保持不降低。
本部分第四方面结合一些具体的实验项目进行说明:
实验一:如图1-4中,STM2457在NSCLC细胞中的基本性质
本发明确定STM2457对NSCLC细胞系最佳处理条件,即浓度为5μM处理时间6天;明确相比于正常肺上皮细胞系,NSCLC细胞系对STM2457更敏感;发现METTL3作为直接靶点在STM2457处理下酶活性受到抑制的同时表达出现上调。具体步骤如下:
(1)随机选取A549和H1975作为NSCLC细胞系的典型代表,两株细胞以适宜的细胞密度接种到96孔板中,在0~500μM的浓度范围内初步设置了11个药物处理的浓度梯度,即0、0.01、0.05、0.1、0.5、1、5、10、50、100和500μM,将上述浓度梯度的药物预混至200ul的完全培养基中加入96孔板中,每个浓度梯度设置3个复孔。分别培养1天、3天和6天后,吸出培养基,按照1:9的比例将CCK-8试剂与完全培养基预混至100ul分别加入上述96孔板中,37℃孵育1小时,酶标仪测定450nm处各样品孔的吸光光度值,并绘制两株细胞系对STM2457的量效反应曲线,初步确定5μM为STM2457在NSCLC细胞系实验中的最适处理浓度,6天为STM2457在NSCLC细胞系实验中的最佳处理时间。
(2)围绕STM2457在NSCLC细胞系实验中的最佳处理条件(5μM和6天),我们纳入了更多的NSCLC细胞系(PC-9、H1793和HCC827)和正常的人肺上皮细胞系(BEAS-2B和HBE),将上述细胞系以适宜的细胞密度分别接种于96孔板中,在0~100μM范围内设置了10个浓度梯度即0、0.01、0.05、0.1、0.5、1、5、10、50和100μM,将上述浓度梯度的药物预混至200ul的完全培养基中加入96孔板,每个浓度梯度设置3个复孔,培养6天后,同(1)绘制上述细胞系对STM2457的量效反应曲线,并确定各个细胞系在STM2457处理下的半数最大抑制浓度(IC50)。经对比IC50值,我们发现相比于正常肺上皮细胞系(HBE:20.21μM和BEAS-2B:22.187),NSCLC细胞系(A549:4.101μM,H1975:8.343μM,PC-9:3.758μM,H1793:11.66μM和HCC827:14.59μM)对STM2457的反应更为敏感。
(3)对A549和H1975两株NSCLC细胞系开展后续的STM2457处理相关实验。将两株细胞系接种至6孔板中,每株细胞分别给予5μM STM2457处理0、1、2、3、4、5、6天,作为对照等量的DMSO处理6天。药物处理结束后,收取A549和H1975两株细胞中的总蛋白,并测定浓度,western-blot检测STM2457靶点METTL3的蛋白表达水平,同时测定内参蛋白GAPDH以作标准化分析。相比于对照组,NSCLC细胞在STM2457处理下METTL3的表达显著上升,并且随着处理时间的逐渐延长,其蛋白表达的水平也逐渐提高。
(4)将A549和H1975两株NSCLC细胞系接种到6孔板中,每株细胞分别给予梯度浓度(0、0.01、0.05、0.1、0.5、1、5、10和50μM)STM2457处理3天或6天,作为对照与50μM组等量的DMSO同样处理3天或6天。药物处理结束后,收取A549和H1975两株细胞中的总蛋白,并测定浓度,western-blot检测METTL3的蛋白表达水平,并测定内参蛋白GAPDH以作标准化分析。我们进一步发现,无论是处理3天还是处理6天,相比于对照组,随着STM2457处理浓度的逐渐上升,NSCLC细胞中METTL3的蛋白表达水平同样逐渐提高。
(5)将A549/H1975两株细胞系接种至6孔板中,每株细胞分别给予5μMSTM2457处理0、1、2、3、4、5、6天。药物处理结束后,使用DNA/RNAExtraction Kit(Vazyme,RM201-01)提纯各组细胞样品的RNA,并按照m6A RNA Methylation Quantification Kit(Colorimetric)(EpiQuik,P-9005)指南测定各组RNA的m6ARNA甲基化水平,用以反映METTL3的酶活性和分子功能。结果表明5μM STM2457处理3天时A549/H1975中m6A甲基化表达水平最低,提示METTL3的酶活性受到了最显著的抑制;第3天之前随着处理时间的延长,A549/H1975中METTL3酶活性抑制逐渐增强;而第3天之后随着处理时间的延长,A549/H1975中METTL3酶活性抑制则逐渐减弱。
(6)将A549和H1975两株NSCLC细胞系接种到6孔板中,每株细胞分别给予梯度浓度(0、0.01、0.05、0.1、0.5、1、5、10和50μM)STM2457处理6天。药物处理结束后,方法同(5)测定各组m6ARNA甲基化水平以反映METTL3的酶活性和分子功能。结果进一步表明,同样在处理6天的情况下,5μM STM2457处理的A549/H1975中m6A甲基化表达水平最低,METTL3酶活性受到最显著的抑制;低于5μM时,随着处理浓度的提高,A549/H1975中METTL3酶活性抑制逐渐增强;高于5μM时,随着处理浓度的提高,A549/H1975中METTL3酶活性抑制逐渐减弱。
实验二:如图5-6中,METTL3能够促进NSCLC进展
本发明发现相比于正常癌旁组织,METTL3在NSCLC癌灶中显著高表达;随后扩大样本量发现,相比于正常癌旁组织,METTL3在癌灶和转移淋巴结中显著高表达,提示METTL3可能与NSCLC转移和进展相关;在NSCLC细胞系中,我们进一步明确了METTL3能够促进细胞侵袭性伪足的形成、降解细胞外基质,并显著提高细胞的迁移和侵袭潜能。具体步骤如下:
(1)在武汉协和医院胸外科系统性收集NSCLC患者术中组织标本,筛选标准如下:①在我科接受手术治疗经病理证实为原发性NSCLC患者,准确p-TNM分期(2017UICC第八版)且按高、中、低分化程度分级;②NSCLC所有淋巴结转移灶均经过病理确诊,由两名以上高年资病理医生做出诊断证明;③无内分泌疾病,肝肾功能正常。④项目已获伦理批准(伦理委员会批准号:TJ-IRB-20180403),入组患者均知情同意。将纳入的8例NSCLC患者的癌旁正常肺组织和原发灶标本进行组织研磨后提取蛋白,western-blot检测发现,相比于正常肺组织,NSCLC组织中METTL3的蛋白表达水平显著增高,提示METTL3与NSCLC进展相关。
(2)遵循上述筛选标准,在武汉协和医院胸外科肺癌标本库中筛选NSCLC患者手术标本,将纳入的93例NSCLC患者的癌旁正常肺组织、原发灶和配对的转移淋巴结制成组织芯片,免疫组化检测METTL3的蛋白表达水平,结合预后随访信息,绘制生存曲线评估METTL3的预后价值。结果表明METTL3在癌灶和配对转移淋巴结中METTL3蛋白表达水平均显著高于癌旁,提示METTL3与NSCLC转移相关。
(3)在A549细胞系中使用Lipofectamine 3000(ThermoFisher,L3000001)转染体系,瞬时转染过表达METTL3质粒以上调METTL3,或瞬时转染敲低METTL3的siRNA以下调METTL3,固定细胞后,扫描电子显微镜观察瞬时高表达或敲降METTL3前后细胞的形态变化,发现高表达METTL3后NSCLC细胞形态不规则、突起增多、异型性显著,敲降METTL3则反之。
(4)在A549细胞系中使用lipo3000转染体系,瞬时转染siRNA-NC和siRNA-METTL3,48小时后进行后续检测,或使用CRISPR Cas9稳定敲除METTL3进行后续检测。首先,配制1×L-赖氨酸溶液,在共聚焦玻璃皿上每孔加入200μL 1×L-赖氨酸,室温孵育20min;其次,移除L-赖氨酸后,每孔加入2mL不含Ca和Mg的DPBS溶液洗涤3次。然后,配制1×戊二醛溶液,在共聚焦玻璃皿上每孔加入200μL 1×戊二醛溶液,室温孵育15min;移除戊二醛,每孔加入DPBS溶液2mL洗涤3次。接着配制1:4混合绿色荧光明胶基质:分别将4×荧光明胶与4×无荧光标记明胶分别用DPBS溶液1:4稀释至1×溶液;将稀释后的两种明胶1:4(荧光明胶:无荧光明胶)混合,水浴60℃加热5min,冷却至室温。接下来,在共聚焦玻璃皿上每孔加入200μL混合荧光明胶基质,避光室温孵育10min,用DPBS每孔2mL洗涤3次。每孔加入2mL培养基灭活自由醛基,避光室温孵育30min。将上述分组的细胞稀释至10000个/200μL,每孔加入200μL细胞悬液至玻璃皿中心凹槽。孵育6h细胞贴壁后再加入2mL培养基培养48小时。标本染色固定后使用双光子共聚焦显微镜观察并采集图像。荧光基质降解实验结果表明,敲降或敲除METTL3后NSCLC细胞系侵袭性伪足形成受到显著抑制,提示METTL3能够促进NSCLC侵袭性伪足相关的细胞外基质降解。
(5)在A549细胞系中使用lipo3000转染体系,瞬时转染siRNA-NC和siRNA-METTL3,48小时后进行后续检测,或使用CRISPR Cas9稳定敲除METTL3进行后续检测。细胞计数取5×104个细胞接种于6孔板划痕小室中(Culture-Insert 2Well inμ-Dish 35mm,ibidi),含<2%FBS的低血清培养基培养过夜,提取小室后继续观察24小时划痕变化,评估细胞的迁移能力;细胞计数取8×104个细胞接种在预先铺有BD Matrigel基质胶的Transwell小室(3422,Corning)中,上室维持无血清培养基,下室选用含20%FBS的高血清培养基,48小时观察侵袭跨膜的细胞量,评估细胞的侵袭能力。对比阴性对照组和METTL3敲降组,我们发现A549瞬时敲降或稳定敲除METTL3后,细胞迁移能力和侵袭能力显著下降。
实验三:如图7中,STM2457能够抑制NSCLC进展
本发明率先明确了STM2457在NSCLC中能够发挥显著地阻滞增殖、抑制迁移、减弱侵袭以及促进凋亡的效应,并且在最适处理浓度(5μM)和最佳处理时间(6天)能够达到更突出的抑制NSCLC进展的效果。具体步骤如下:
(1)A549/H1975以1000个/孔的密度接种到6孔板中,每株细胞分别给予不同浓度(0、1和5μM)STM2457处理,或给予5μM组等量的DMSO作为对照,动态观察至第10天,4%多聚甲醛固定15min后,结晶紫染色15min,光学显微镜下观察克隆形成情况并拍照记录。结果表明,相比于对照组,STM2457处理能够抑制NSCLC细胞的克隆形成,并且随着浓度的提高,NSCLC细胞的增殖能力受到更为显著的抑制。
(2)A549/H1975预先给予5μM STM2457处理1天、3天或6天,或使用等量的DMSO预处理6天后,划痕实验(方法同实施例2:(5))评估各组细胞的迁移能力,transwell侵袭实验(方法同实施例2:(5))评估各组细胞的侵袭能力。对比DMSO组和药物处理组,我们明确了STM2457能够有效地抑制NSCLC细胞的迁移和侵袭,并且随着预处理时间的延长STM2457抑制NSCLC转移的效应会更加显著。
(3)选取A549细胞系,分别给予1μM和5μM STM2457或等量的DMSO处理3天;或选取H1975细胞系,给予5μM STM2457或等量的DMSO分别处理3天或6天。将上述处理的细胞裂解,提取总蛋白并测定浓度后,western-blot检测凋亡相关蛋白如PARP、Caspase-3、Bcl2和Bax。我们进一步证实,STM2457能够有效地促进NSCLC细胞系凋亡的发生,这种促进凋亡的效应与其作用浓度和时间成正相关关系。
实验四:如图8中,STM2457能够抑制NSCLC进展的潜在机制
本发明率先发现METTL3能够在不影响CYP19A1 mRNA表达的基础上有效地抑制其蛋白表达,推测能够调控CYP19A1的翻译,进而激活雌激素信号通路促进NSCLC进展;作为METTL3新型小分子抑制剂的STM2457则能够通过阻断CYP19A1的翻译,进而抑制雌激素信号通路激活抑制NSCLC进展。具体步骤如下:
(1)选取A549细胞系,分别予以瞬时转染敲降METTL3的siRNA以下调METTL3或使用CRISRP Cas9稳定敲除METTL3,并设置相应的阴性对照组。Westernblot检测CYP19A1的蛋白表达水平,RT-PCR检测CYP19A1的蛋白表达水平。我们发现敲降或敲除METTL3能够显著的下调CYP19A1的蛋白表达,而不影响其mRNA的表达,甚至在某种程度上会代偿性的上调其mRNA的表达。下调METTL3引起的CYP19A1这种蛋白和mRNA表达变化的不一致,提示METTL3可能在翻译调控过程中影响了CYP19A1的表达,从而能够在CYP19A1低mRNA表达的基础上显著上调其蛋白表达。
(2)选用A549细胞系,予以瞬时转染敲降METTL3的siRNA以下调METTL3或使用CRISRP Cas9稳定敲除METTL3,并设置相应的阴性对照组。细胞计数取5×105个细胞置于新的完全培养基中超声裂解,使用人雌激素酶联免疫试剂盒(CSB-E07286h,CUBABIO)测定5×105个细胞内雌激素合成水平;同法检测上清培养基中雌激素含量,并根据细胞总数,标准化至5×105个细胞的雌激素分泌水平。对比阴性对照组和METTL3敲降组,我们发现A549瞬时敲降或稳定敲除METTL3后,细胞胞内合成和胞外分泌的雌激素水平均显著下降,提示METTL3可能通过调控CYP19A1的翻译参与NSCLC细胞的雌激素合成与分泌。
(3)选用A549细胞系,予以5μM STM2457或等量的DMSO处理3天后,对上述处理的NSCLC细胞,使用western-blot检测CYP19A1的蛋白表达水平,结合RT-PCR结合CYP19A1的mRNA表达水平,最后使用ELISA(方法同实施例4:(2))评估NSCLC细胞中雌激素合成水平。结果表明,STM2457能够有效地抑制CYP19A1的蛋白水平表达,而代偿性上调CYP19A1的mRNA水平表达,提示在CYP19A1的翻译过程中可能发挥着重要的阻断作用,进而最终有效地抑制了NSCLC细胞系的雌激素合成。
本领域的技术人员可以明确,在不脱离本发明的总体精神以及构思的情形下,可以做出对于以上实施例的各种变型。其均落入本发明的保护范围之内。本发明的保护方案以本发明所附的权利要求书为准。

Claims (10)

1.STM2457或其衍生物在制备防治肿瘤疾病药物中的应用。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述肿瘤疾病为肺癌。
3.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述肺癌为非小细胞肺癌;所述STM2457的作用浓度为5μM。
4.STM2457或其衍生物在制备NSCLC细胞阻滞增殖制剂、NSCLC细胞抑制转移制剂、NSCLC细胞促进凋亡制剂至少之一中的应用。
5.STM2457或其衍生物在制备CYP19A1表达抑制剂中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,所述CYP19A1表达为CYP19A1蛋白表达;所述STM2457的作用浓度为5μM。
7.STM2457或其衍生物在制备雌激素信号通路抑制剂中的应用。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于,所述雌激素信号通路为NSCLC关联雌激素信号通路。
9.STM2457或其衍生物在制备METTL3活性抑制剂或METTL3表达促进剂中的应用。
10.STM2457或其衍生物在制备m6A甲基化表观修饰催化抑制剂中的应用。
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